Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Внутривенное ультрафиолетовое облучение крови у кардиохирургических больных с инфекционным эндокардитом

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В послеоперационном периоде у больных приобретенными пороками сердца с инфекционным эндокардитом защитный иммуновоспалительный ответ имеет гетерогенный характер: с длительным напряжением или ранним угнетением реактивного нейтропоэза, и метаболической дисфункцией нейтрофилов. Характерным нарушением клеточного звена иммунитета является пролонгированная депрессия Т-лимфоцитов. Дополнительными… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. Перспективы использования ультрафиолетового облучения крови у кардиохирургических больных с инфекционным эндокардитом: современное состояние проблемы
  • Обзор литературы)

Внутривенное ультрафиолетовое облучение крови у кардиохирургических больных с инфекционным эндокардитом (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

эндокардитом.11.

1.1.1. Этиопатогенез, иммунопатология и диагностика инфекционного эндокардита.13.

Возбудители инфекционного эндокардита.13.

Предрасполагающие факторы.14.

Роль антисарколеммалъных антител в патогенезе ИЭ.15.

Роль нарушений клеточного и гуморального иммунитета в патогенезе ИЭ. 15.

Роль иммунных комплексов и комплемента в патогенезе ИЭ.17.

Роль патогенных факторов микроорганизмов в активации ИЭ.18.

Цитокины и механизмы воспаления при ИЭ.19.

Вопросы диагностики ИЭ.22.

1.1.2. Взаимосвязи инфекционного воспаления и факторов операционно-перфузионного стресса у больных ИЭ.24.

1.1.3. Применение квантовой фотогемотерапии у кардиохирургических больных с целью коррекции иммунных и метаболических нарушений.29.

Моделирование УФО лейкоцитарно — эндотелиального взаимодействия.

Молекулы адгезии.31.

Окись азота пероксидация липидов и У ФОК.33.

Воздействие ультрафиолета на клеточный и гуморальный иммунитет.

Роль цитокинов.34.

Влияние ультрафиолета на апоптоз иммунных клеток.

Иммунная толерантность и гшмуносупрессия.36.

Заключение

38.

1.1.4. Резюме.40.

ВЫВОДЫ.

1. В послеоперационном периоде у больных приобретенными пороками сердца с инфекционным эндокардитом защитный иммуновоспалительный ответ имеет гетерогенный характер: с длительным напряжением или ранним угнетением реактивного нейтропоэза, и метаболической дисфункцией нейтрофилов. Характерным нарушением клеточного звена иммунитета является пролонгированная депрессия Т-лимфоцитов.

2. Сохранение активности процессов перекисного окисления липидов у больных приобретенными пороками сердца с инфекционным эндокардитом в послеоперационном периоде сопровождается умеренным напряжением системы антиоксидантной защиты, с возрастанием уровня церулоплазмина до 40%.

3. Внутривенное ультрафиолетовое облучение крови в применявшемся режиме не увеличивает исходную активность перекисных процессов и способствует восстановлению антиоксидантной защиты: на второй неделе — за счет антирадикального, а на третьей — и антиперекисного звена.

4. Ранний курс внутривенного ультрафиолетового облучения крови у больных приобретенными пороками сердца с инфекционным эндокардитом в послеоперационном периоде уменьшает частоту инфекционно-септических осложнений более чем в 4 раза. Иммуномодулирующие механизмы ВУФОК заключаются в улучшении фагоцитирующей функции нейтрофилов и пролиферативного статуса Т — клеточного звена на фоне сбалансированных процессов перекисного окисления липидов.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОММЕНДАЦИИ.

1. У больных с ИЭ любой степени активности с 3−4 суток после операции с целью немедикаментозной иммунокоррекции при отсутствии противопоказаний рекомендуется курс внутривенного УФОК среднеи длинноволнового спектра (№ 5 -7).

2. Дополнительными показаниями для ВУФОК независимо от исходной степени активности ИЭ являются периоперационные осложнения, интраоперационные находки (абсцессы, вегетации), положительные микробиологические результаты посевов крови и интракардиальных структур, сниженные показатели НСТ-теста, тенденция к лимфопении на протяжении нескольких суток после операции.

3. В качестве сосудистого доступа могут использоваться локтевая, подключичная или бедренная вена, с расчетом времени лечения по средней скорости кровотока в указанных сосудах (для взрослого: 30−40, 120−140 и 160−180 мл/мин, соответственно).

4. При использовании комбинации второго и третьего режима ВУФОК, обладающих максимальными иммуномодулирующими свойствами, средний объем облучаемой крови должен быть не менее 20% ОЦК для каждого (суммарно 40% ОЦК).

5. В качестве лабораторных критериев длительности и эффективности курса ВУФОК информативна динамика следующих иммунологических параметров: показатели НСТ-теста, динамика регенеративных форм нейтрофилов и абсолютного числа лимфоцитов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A. Основы биохимии. М. «Высшая школа». 1986. 441−459 С.
  2. Берлиен Х-П., Мюллер Г. Й.(пер.с нем. Коротеева Н.И.) Прикладная лазерная медицинам. «Интерэксперт». 1997. С. 88−89.
  3. М.В. Ишемические и реперфузионные повреждения органов. М. «Медицина», 1989. 45−68С.
  4. Ю.А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М. «Наука», 1972. 35−51 С.
  5. И.А., Налимов А. Г., Яровинский Б. Г., Лившиц Р. И. Сопоставление различных подходов к определению продуктов ПОЛ в гептанизопропальных экстрактах крови.// Вопросы медицинской химии. 1989. № 1. С. 127−131.
  6. A.M., Погребняк А. Н., Руденко A.B. // Пероксидация липидов и активность антиоксидантной системы у пациентов с инфекционным эндокардитом. //Клин. Хирургия. 1996. № 8. С. 23−25.
  7. A.M., Баланник З. Т., Списаренко С. П. Механизмы иммунологических нарушений при инфекционном эндокардите // Клиническая хирургия. 1996. № 10. С. 19−21.
  8. H.H., Бушманова Г. М., Блок A.A. Иммунологические аспекты первичного септического эндокардита при приобретенных пороках сердца. Подходы к лечению.// Кардиология. 1993.№ 33. С. 3−4, 22−24.
  9. Ю. П. Печень: адаптация, экология. Новосибирск: «Наука», 1993. 92−131С.
  10. Н.Д., Королева Е. Б. Иммунологические нарушения при различных клинических вариантах инфекционного эндокардита.// Септические эндокардиты в хирургии пороков сердца: тезисы Респ. конфер. Новосибирск, 1988. С. 20−22.
  11. А. А., Демин Ал. А. Бактериальные эндокардиты. М., 1978. С.22−35.
  12. A.B., Есауленко И. Э., Васильева JIB. Низкоинтенсивное лазерное излучение в практической медицине. Воронеж:" ВГУ", 2000.120−158С.
  13. В.И., Петухов Е. Б. Ультрафиолетовое облучение крови. М. «Медицина». 1997. 188−201, 210−212 С.
  14. A.M. Примение в кардиохирургии врожденных пороков сердца эндоваскулярного лазерного облучения. //Автореф. дисс. к.м.н. Новосибирск, 1989. С. 1−21.
  15. A.M., Щукин B.C. и соавт. Принципы взаимоотношения хирургических технологий при коррекции приобретенных пороков на фоне септического эндокардита. // Патол. кровообр. и кардиохирургия. 1999. № 1. С. 20−24.
  16. С.А., Калинина Н. М. Иммунология для врача. С.-Петербург. «Гиппократ». 1998. 3−39 С.
  17. Г. В., Бендет Я. А. Приобретенные пороки сердца. Киев, 1997. 91 128 С.
  18. Г. В., Воробьева А.М, Баланник З. Т., и соавт. Инфекционный эндокардит заболевание иммунной системы // Патол. Кровооб. и Кардиохирургия. 1999. № 1. С. 24−28.
  19. Кнышов Г. В, Воробьева A.M., Максименко В. Б., и соавт. Изменения иммунного статуса у пациентов с инфекционным эндокардитом при хурургическом лечении в условиях искусственного кровообращения. // Клин. Хирургия. 2001. № 12. С. 5−7.
  20. В.Г., Камышников B.C. Справочник по клинической химии. Минск. Беларусь. 1982. С.198−200.
  21. Кремер Л. Г, Кулешова Р. Г., Щукин B.C. и др. Клинико-хирургические критерии инфекционного эндокардита у кардиохирургических больных. //Патология кровообращения и кардиохирургия. 2003. № 2. С. 4−9.
  22. А.Н., Кушко О. В., Василенко Л. И. и соавт. УФО аутокрови в комплексном лечении бактериального эндокардита. //Применение ультрафиолетового облучения крови в медицине. Саранск, 1992. С. 121−123.
  23. C.B., Курамшин Д. Х., Силков С. А., Сенников C.B. и соавт. Использование электрохемилюминисцентного метода для количественного определения цитокинов в различных средах. //Клин. лаб. диагностика.2000. № 12. С. 39−43.
  24. М.В. Динамика некоторых иммунологических показателей и гормонов гипофизарно-надпочечниковой системы у больных с приобретенными пороками сердца. //Автореф. дисс. к.м.н. Новосибирск, 1999. С. 1−20.
  25. Е.Е., Леган М. В., Караськов A.M. и соавт. Фактор иммунологических нарушений в патогенезе развития хрониосептического процесса у больных сердечно-сосудистыми заболеваниями //Патология кровообращения и кардиохирургия.2000. № 1−2. С. 85−88.
  26. Е.Е. Системообразующая роль факторов риска при разработке и выборе кардиохирургических технологий //Патология кровообращения и кардиохирургия. 2000. № 1−2. С. 4−21.
  27. Е.Е., Яснова Л. Н. и соавт. Роль инфекции в развитии сердечнососудистой патологии // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2000. № 2. С. 76−84.
  28. P.A., Громова Г. В., Цыганова С. Т. и соавт. Характеристика иммунологического гомеостаза в позднем периоде после реконструктивных операций на клапанах сердца.// Вестник Акад. Мед. Наук СССР. 1990. № 10. С.26−28.
  29. A.B., Дуткевич И. Г. Новые методы фотогемотерапии. СПб. 1993. 42 С.
  30. A.B., Дуткевич И. Г., Жахов В. В. Универсальная аппаратура для фотомодификации крови // Материалы конфер. «Новая медицинская техника и медицинские технологии». Новосибирск, 1994. С.23−24.
  31. A.B., Дуткевич И. Г., Марченко И. А. Некоторые механизмы лечебного действия внутрисосудистой фотомодификации крови. // Материалы семин. «Лазеры для медицины и биологии». СПб. 1995. С.13−20.
  32. МаянскийА.Н., Маянский Д. Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. Новосибирск. «Наука». 1989. 190 -234 С.
  33. E.H., Сергиевский B.C. Альперин Л.И и соавт. Эффекты световой энергии на функциональную емкость легких, пересаженных от донора реципиенту.// Грудн. Хирургия. 1984. № 6. С. 62−65.
  34. В.В., Молчанова Л. В., Щербакова Л. В. и соавт. Показатели метаболизма липидов у больных в критическом состоянии //Анест. и реанимат. 2001. № 6. С. 4−6.
  35. Т.В. Кинетика иммуновоспалительного ответа после операций на открытом сердце. //Автореф. дисс. д.м.н. Новосибирск, 2002. С. 1−26.
  36. Л. Е. Биохимические механизмы стресса. Новосибирск: «Наука», 1983. 190−234 С.
  37. Л.В., Чеминава Р. В. Ультрафиолетовое облучение собственной крови. // Вестн. Хир.1989. № 12. С. 51−60.
  38. М.Ю., Тиунов Н. П., Шакалис Д. А. Простой колориметрический микрометод определения свободных жирных кислот. // Лабор. Дело. 1977. № 3. С. 535−536.
  39. B.C. Проблема ангиогенного сепсиса. //Грудная хирургия. 1988. № 1. С. 8−12.
  40. К.А. и соавт. Изменения поверхности и активация циркулирующих лейкоцитов при аутотрансфузиях УФ облученной крови. // Вестн. Хирур. 1990. № 6. С. 99−105.
  41. И.Д., Гаришвили Т. Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты. // Современные методы биохимии. М. Мед. 1977. С. 66 -68.
  42. Стентон Гланц Медико-биологическая статистика (пер.Ю.А. Данилова) //Москва, «Практика». 1999. 139−155, 354−364, 402−423 С.
  43. Е.А., Зайратьянц О. В., Ляпин Д. О. Первичный подострый инфекционный эндокардит как проявление хирургического сепсиса // Терапевтический архив. М.: «Медицина», 1990. Т.62. № 11. С.123−125.
  44. Г. А., Караськов A.M., Князькова Л. Г. Возможность прогнозирования критических состояний после коррекции врожденных пороков сердца: /Пособие для врачей. Новосибирск, 2000. 1- 22 С.
  45. В.Н., Морозова H.A. Самойлов В. А. и соавт. Прогнозирование хирургического риска у больных с пороками сердца с учетом их естественного развития: материал, сессии. Новосибирск. 1995. С. 121−122.
  46. Г. И., Дубровский B.C. и соавт. Возможности кардиохирургии в лечении клапанного активного эндокардита. // Кардиология. 1988. № 9. С.31−35.
  47. В.А., Гусев Е. Ю. Иммунология воспаления: роль цитокинов. //Мед. Иммунология. 2001.№ 3 (т.З). С. 361−368.
  48. Н.П. Вторичная иммунная недостаточность у кардиохирургических больных и возможности ее коррекции. Автореф.. к.м.н. Москва, 1996. С.1−15.
  49. Ю.Л., Шихвердиев H.H., Матвеев С. А. и соавт. Инфекционный эндокардит правых камер сердца // Клин. Мед. 1992. № 1. С.37−47.
  50. Ю.Л., Данильченко В. В., Жибурт Е. Б. и соавт. Иммуногенетический статус больных инфекционным эндокардитом // Вестник хирургии. 1995. № 1. С. 58−63.
  51. Alard P., Kurimoto I., Niizeki H. et al. Hapten-specific tolerance induced by acute, low-dose ultraviolet B radiation of skin requires mast cell degranulation. //Eur. J. Immunol. 2001. V.6. P.1736−1746.
  52. American College of Chest Phisicians /Society of Critical Care Medicine Consensus Conferens: definition for sepsis and organ failure and guidelines for use of innovative Therapies in sepsis. //Crit. Care Med. 1992.V. 20. P.864−874.
  53. Barr R., Walker S., Tsang W. et al. Suppressed alloantigen presentation, increased TNF-alpha, IL-1, IL-IRa, IL-10, and modulation of TNF-R in UV-irradiated human skin. //J. Invest. Dermatol. 1999. V. 112. P.692−698.
  54. Barry A., Mizock M. Metabolic derangements risk prediction in sepsis. //Crit. Care Med. 2000. V.16.P. 734−739.
  55. Bayer A., Theofilopoulos A. Immunopathogenetic aspects of infective endocarditis.// Chest 1990.V.97. P.204−212.
  56. Beal A., Cerra F. Multiple organ failure syndrome in the 1990s. Systemic inflammatory response and organ disfunction. // JAMA. V.19. P. 226−233.
  57. Beissert S., Schwarz T. Mechanisms involved in ultraviolet light-induced immunosuppression. //J. Investig. Dermatol. Symp. Proc. 1999. V. 4. P.61−64.
  58. Bereiss P. Endocarditis infectius with etiologic physiopatologic diagnostic evolution et prognostic treiment//Rev. Prat. Paris. 1989. V.39. P. 2629−2636.
  59. Bone R.C., Newton I. Sepsis, SIRS, and CARS. //Critical Care Med. 1996. V.24. P. l 125−1128.
  60. Bone R.C. Immunologic dissonance: a continuing evolution in our understanding of the systemic inflammatory response syndrome (SIRS) and the multiple organ dysfunction syndrome. //Ann. Intern. Med. 1996. V.125. P.680−687.
  61. Boonstra A., van Oudenaren A., Barendregt B. et al. UVB irradiation modulates systemic immune responses by affecting cytokine production of antigen-presenting cells. //Int. Immunol. 2000. V.12. P.1531−1538.
  62. Braun S., Escalona A., Chamorro G. et al. Infective endocarditis: short and long-term results in 261 cases managed by a multidisciplinary approach //Rev. Med. Chir. 2000. V.128. P.708−720
  63. Bota P., Melot C., Ferreira L. et al. The Multiple Organ Dysfunction Score (MODS) versus the Sequential Organ Failure Assessment (SOFA) score in outcome prediction. //Intensive Care Med. 2002. V.28. P. 1619−1924.
  64. Brown E., Rivas J., Ullrich S. et al. Modulation of immunity to Borrelia burgdorferi by ultraviolet irradiation: differential effect on Thl and Th2 immune responses.//Eur. J. Immunol. 1995. V.25. P.3017−3022.
  65. Brown M., Griffin G. Immune responses in endocarditis. //Heart 1998. V.79. P. 1−2.
  66. Campen D., Horwitz D., Quismorio F. Jr, et al. Serum levels of interleukin-2 receptor and activity of rheumatic diseases characterized by immune system activation.//Arthritis .Rheum. 1988. V.ll. P. 1358−1364.
  67. Ceriani R., Mazzoni M., Bortone F. et al. Application of the sequential organ failure assessment score to cardiac surgical patients // Chest. 2003. V.123. P. 12 291 239.
  68. Cerra F., Siegel J. et al. Septic autocanibalism. //Ann. Surg. 1970. V. 192. P. 570−577.
  69. Cerra F.B. Multiple organ failure syndrome. 1989. P. 11−34.
  70. Cetinkaya Y., Akova M., Akalin H. et al. A retrospective review of 228 episodes of infective endocarditis where rheumatic valvular disease is still common. //Int. J. Antimicrob. Agents. 2001. V.18. P. 1−7.
  71. Chung K., Chang N., Park Y., Lee K. Effect of ultraviolet light on the expression of adhesion molecules and T lymphocyte adhesion to human dermal microvascular endothelial cells. //Yonsei Med. J. 2002. V.43. P. 165−174.
  72. Danforth J., Strieter R., Kunkel S. et al. Macrophage inflammatory protein-1 alpha expression in vivo and in vitro: the role of lipoteichoic acid. //Clin. Immunol. Immunopathol. 1995. V.74. P.77−83.
  73. Deliconstantinos G., Villiotou V., Stavrides J. Nitric oxide and peroxynitrite released by ultraviolet B-irradiated human endothelial cells are possibly involved in skin erythema and inflammation. //Exp. Physiol. 1996. V. 81. P.1021−1033.
  74. Dinarello C. The biological properties of interleikin-1. //Eur. Cytokin. Netw. 1994. V. 5. P. 517.
  75. Dinarello C. The role of the interleukin-1 -receptor antagonist in blocking inflammation mediated by interleukin-1.//N. Engl. J. Med. 2000. V.10. P.732−734.
  76. Djavaheri-Mergny M., Gras M., Mergny J., Dubertret L. UV-A-induced decrease in nuclear factor-kappaB activity in human keratinocytes. // Biochem. J. 1999. V.338 (Pt. 3). P.607−613.
  77. Dries D. Interferon-gamma in trauma related infection. // In: 8th Eur. Cong. Of Inten. Care Med. I. Main lectures. Ed. C. Roussos. Greece. 1995. P. 665−669.
  78. Dupont B. Choice and use of antifungal drugs. //Rev. Prat. 2001.V.51. P.752−757.
  79. Durack D., Lukes A., Bright D. New criteria for diagnosis of infective endocarditis: utilization of specific echocardiographic findings. Duke Endocarditis Service.// Am. J. Med. 1994. V. 96. P.200−209.
  80. Edmunds L., Richard E. Surgery for acquired heart disease guidelines for reporting morbidity and mortality after cardiac valvular operations. //J. Thorac. And Cardiovasc. Surg. 1996. V. 112. P. 708 -712.
  81. Eichler O., Sies H., Stahl W. Divergent optimum levels of lycopene, beta-carotene and lutein protecting against UVB irradiation in human fibroblastst. //Photochem. Photobiol. 2002. V.75. P.503−506.
  82. Ellis M., Al-Abdely H., Sandridge A., et al. Fungal endocarditis: evidence in the world literature, 1965−1995. //Clin. Infect. Dis. 2001. P.50−62.
  83. Engel J., Junger A., Zimmer M. et al. Correlation of a computerized SOFA score and derived measures with length of stay at an operative ICU //Anesthesiol. Intensivmed. Notfallmed. Schmerzther. 2003. V.38. P.397−402.
  84. Evora P., Brasil J., Elias M. et al. Surgical extension of the vegetation as treatment of tricuspidal valve endocarditis // Cardiology. 1988. V.198. P. 208−212.
  85. Ford I., Douglas C., Preston F., et al. Mechanisms of platelet aggregation by Streptococcus sanguis, a causative organism in infective endocarditis. //Br. J. Haematol. 1993. V.84. P. 95−100.
  86. Forte W., Mario A., da Costa A. et al. Immunologic evaluation in infective endocarditis. //Arq. Bras. Cardiol. 2001. V.76. P.43−52.
  87. Fraunberger P., Pilz G., Cremer P., et al. Association of serum tumor necrosis factor Levels with decrease of cholesterol during septic shock. //Shock. 1998. N. 10. P. 359−363.
  88. French L., Rook A. T cell clonality and the effect of photopheresis in systemic sclerosis and graft versus host disease. //Transfus. Apheresis Sci. 2002. V.26. P.191−196.
  89. Funk J., Holler E., Kohlhuber F. et al. Protein kinase C activation is involved in ultraviolet B irradiation-induced endothelial cell ICAM-1 up-regulation and lymphocyte-endothelium interaction in vitro. // Scand. J. Immunol. 1996. V.44.1. P.354−360.
  90. Gessler P., Pfenninger J., Pfammatter J. et al. Inflammatory response of neutrophil granulocytes and monocytes after cardiopulmonary bypass in pediatric cardiac surgery. //Intensive Care Med. 2002 .V.28. P. 1786−1791.
  91. Goris R. MODS/SIRS: Results of an Overwelming inflammatory Response.// World J. Surg. 1996. V20. P.418−421.
  92. Gu Y., van Oeveren W., Boonstra P. Leukocyte activation with increased expression of CR3 receptors during cardiopulmonary bypass. //Ann. Thorac. Surg. 1992. V.53. P.839−843.
  93. Hack C., Hart M., Strack van Schijndel R. et al. Interleukin-8 in sepsis: relation to shock and inflammatory mediators. // Infect. Immun. 1992. V.60. P. 2835−2842.
  94. Harada M., Nishi Y., Tamura S. et al. Infective endocarditis with a huge mitral vegetation related to atopic dermatitis and high serum level of infection-related antiphospholipid antibody: a case report //J. Cardiol. 2003. V.42. P. 135 140.
  95. Heckmann M., Pirthauer M., Plewig G. Adhesion of leukocytes to dermal endothelial cells is induced after single-dose, but reduced after repeated doses of UVA. //J. Invest. Dermatol. 1997. V.109. P.710−715.
  96. Hirao T., Aoki H., Ichikawa H., Sato Y. Characterization of an interleukin 1 receptor antagonist protein released from ultraviolet-irradiated epidermal sheet. //J. Dermatol. Sci.1997. V.14. P.189−198.
  97. Holmes J.4th, Connolly N., Paull D. et al. Magnitude of the inflammatory response to cardiopulmonary bypass and its relation to adverse clinical outcomes. //Inflamm. Res. 2002. V.51. P.579−586.
  98. Hubner J., Kropec A. Cross infections due to coagulase-negative staphylococci in high-risk patients. //Zentralbl. Bakteriol. 1995. V.283. P.169−174.
  99. Ibuki Y., Goto R. Antiapoptotic effects induced by different wavelengths of ultraviolet light. //Photochem. Photobiol. 2002. V. 75. P.495−502.
  100. Isoherranen K., Punnonen K., Jansen C., Uotila P. Ultraviolet irradiation induces cyclooxygenase-2 expression in keratinocytes. //Br. J. Dermatol. 1999. V. 140. P.1017−1022.
  101. Jalal S., Khan K., Alai M. et al. Clinical spectrum of infective endocarditis: 15 years experience. //Indian Heart J. 1998. V. 50. P. 516−519.
  102. Jault F., Gandjbakhch I., Rama A. et al. Active native valve endocarditis: determinants of operative death and late mortality. //Ann. Thorac. Surg. 1997. V.63. P.1737−1741.
  103. Kanariou M., Petridou E., Vrachnou E., Trichopoulos D. Lymphocyte alterations after prolonged sunlight exposure. //J. Epidemiol. Biostat. 2001.V.6. P.463−465.
  104. Kao K., Huang E., Donahue S. Characterization of immunologic tolerance induced by transfusion of UV-B~irradiated allogeneic mononuclear leukocytes. //Blood. 2001. V.98. P.1239−1245.
  105. Karthaus M., Comely O. Ceftriaxone in febrile neutropenia. //J. Chemother. 2003. V.15.P.211−219.
  106. Kern P., Keilholz L., Kalden J., Herrmann M. Apoptotic UV-irradiated lymphocytes undergo protease mediated shedding of L-selectin in vitro. //Transfus. Apheresis Sci. 2001. V. 24. P.99−101.
  107. Khanal B., Harish B., Sethuraman K. et al. Infective endocarditis: report of a prospective study in an Indian hospital.// Trop. Doct. 2002. V. 32. P. 83−85.
  108. Kim N., Lazar J., Cunha B. et al. Multi-valvular endocarditis. //Clin. Microbiol. Infect. 2000. V.6. P.207−212.
  109. Kimura H., Minakami H., Shoji A. Ultraviolet B irradiation modulates susceptibility to tumour necrosis factor-alpha-induced apoptosis via induction of death receptors in murine fibroblasts. //Cell. Biol. Int. 200l.V. 25. P. 1221−1228.
  110. Kirali K., Guler M., Tuncer A. et al. Experience With the Biocorporcine Bioprostheses in the Mitral Position. //Ann. Thorac. Surg. V.71. P.807−810.
  111. Kitajima T., Takashima A. Langerhans cell responses to ultraviolet B radiation. //J. Dermatol. Sci. 1999. V.19. P.153−160.
  112. Koch C., Higgins T., Capdevill M. et al. The risk of coronary artery in women: a matched comparison using preoperative severity of illness scoring. // J. Cardivasc. Anesth. 1996. V.10. P. 839 843.
  113. Kollef M., Sharpless L. et al. The impact of nosocomial infections on patients outcomes following cardiac surgery.// Chest. 1997.V. 112. P.666−675.
  114. Korkmaz S., Ileri M., Hisar I. et al. Increased levels of soluble adhesion molecules, E-selectin and P-selectin, in patients with infective endocarditis and embolic events. // Eur. Heart J. 2001. V. 22. P. 874−878.
  115. Krutmann J. Therapeutic photoimmunology: photoimmunological mechanisms in photo (chemo)therapy. //J. Photochem. Photobiol. B. 1998. V. 44. P.159−164.
  116. Kucharz E. The collagens: biochemistry and pathophysiology. «SpringerVerlag». Berlin. Heidilberg. 1992. P.430.
  117. Kupferwasser L., Darius H., Muller A. et al. Diagnosis of culture-negative endocarditis: the role of the Duke criteria and the impact of transesophageal echocardiography. //Am Heart J. 2001. V.142. P. 146−152.
  118. Lee S., Lee J., Jung J. et al. Protective role of nitric oxide-mediated inflammatory response against lipid peroxidation in ultraviolet B-irradiated skin. // Br. J. Dermatol. 2000. V.142. P.653−659.
  119. Legrand-Poels S., Schoonbroodt S., Matroule J. et al. Nf-kappa B: an important transcription factor in photobiology. //J. Photochem. Photobiol. B. 1998. V. 45. P. 1−8.
  120. Li G., Ho V. p53-dependent DNA repair and apoptosis respond differently to high- and low-dose ultraviolet radiation. //Br. J. Dermatol. 1998. V.139. P.3−10.
  121. Li J., Sexton D., Mick N. et al. Proposed modifications to the Duke criteria for the diagnosis of infective endocarditis. // Clin. Infect. Dis. 2000. V.30. P.633−638.
  122. Lu Q., Lan H., Cai J., Sun Z. Effect of cardiopulmonary bypass on the specific immunity of the host. //J. Tong. J. Med. Univ. 1993. V.13. P.231−233.
  123. Maisch B. Autoreactive mechanisms in infective endocarditis.//Springer Semin Immunopathol. 1989. V. l 1. P.439−456.
  124. Markewitz A., Lante W., Franke A. et al. Alterations of cell-mediated immunity following cardiac operations: clinical implications and open questions. //Shock. 2001. V.16. Suppl. 1. P.10−15.
  125. Meddens M., Thompson J., Bauer W., et al. Role of granulocytes and monocytes in experimental Escherischia coli endocarditis. //Infect. Immun. 1984. V.43. P.491−496.
  126. Meine T., Nettles R., Anderson D. et al. Cardiac conduction abnormalities in endocarditis defined by the Duke criteria. //Am. Heart J. 2001. V.142. P.280−285.
  127. Mercier R., Rybak M., Bayer A., Yeaman M. Influence of platelets and platelet microbicidal protein susceptibility on the fate of Staphylococcus aureus in an in vitro model of infective endocarditis. //Infect. Immun. 2000. V. 68. P. 46 994 705.
  128. Messias-Reason I., Hayashi S., Nisihara R., Kirschfink M. Complement activation in infective endocarditis: correlation with extracardiac manifestations and prognosis. //Clin. Exp. Immunol. 2002. V.127. P.310−315.
  129. Millar B., Moore J., Mallon P. et al. Molecular diagnosis of infective endocarditis-a new Duke’s criterion. // Scand. J. Infect. Dis. 2001. V.33. P.673−680.
  130. Moat N., Shore D., Ewans T. Organ disfunction and cardiopulmanory bypass: the role of complement. //Cardiothorac. Surg. 1993. V. 7. P. 563−573.
  131. Moore M., Stolfi R., Martin D. Hematologic effect of IL-lbeta, granulocyte colony-stimulating factor, and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor in tumot-bearing mice treated with 5-fluouracil. //J. Nat. Cancer. Inst. 1990. V.82. P.1031.
  132. Mylonakis E., Calderwood S. Infective Endocarditis in Adults. // The New Eng. J. of Med. 2001. V.345. P.1318−1330.
  133. Miyakawa Y., Matsushime H. Rapid downregulation of cyclin D1 mRNA and protein levels by ultraviolet irradiation in murine macrophage cells. //Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. V. 284. P.71−76.
  134. Naber C., Bartel Т., Eggebrecht H., Erbel R. Diagnosis of endocarditis today: Duke criteria or clinical judgment? //Herz, (нем.) 2001. V. 26. P.379−390.
  135. Nicolau D., Freeman C., Nightingale C. et al. Reduction of bacterial titres by low-dose aspirin in experimental aortic valve endocarditis. //Infect. Immun. 1993. V.61. P.1593−1595.
  136. Norval M. What’s new in photoimmunology? //Photodermatol. Photoimmunol. Photomed. 2002. V.18. P.50−51.
  137. Olaison L., Hogevik H., Alestig K. Fever, C-reactive protein, and other acute-phase reactants during treatment of infective endocarditis. // Arch. Intern. Med. 1997. V.157. P.885−892.
  138. Pentland A. Active oxygen mechanisms of UV inflammation. //Adv. Exp. Med. Biol. 1994. V. 366 P.87−97.
  139. Perez-Vazquez A., Farinas M., Garcia-Palomo J. et al. Evaluation of the Duke criteria in 93 episodes of prosthetic valve endocarditis: could sensitivity be improved? //Arch. Intern. Med. 2000. V.160. P. l 185−1191.
  140. Planas M., Garsia A. et al. Lipid peroxidation in critical patients. //Nutric. Hosp. 1997. V.12. P.233−236.
  141. Plitnick L., Jordan R., Banas J. et al. Lipoteichoic acid inhibits interleukin-2 (IL-2) function by direct binding to IL-2.//Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2001. V.8. P.972−979.
  142. Podhaisky H., Klapperstuck Т., Riemschneider S., Wohlrab W. Evidence for a role of nitric oxide in the mediation of antiproliferative UVA effects in keratinocytes. //Pharmacol. Res. 2002. V. 45. P.229−233.
  143. Presterl E., Rokita E., Graninger W. et al. Dysregulation of monocyte oxidative burst in streptococcal endocarditis. //Eur. J. Clin. Invest. 2001. V.31. P.902−906.
  144. Provenchere S., Plantefeve G., Hufnagel G. et al. Renal dysfunction after cardiac surgery with normothermic cardiopulmonary bypass: incidence, riskfactors, and effect on clinical outcome. //Anesth. Analg. 2003 .V. 96. P. 12 581 264.
  145. Radziszewska E., Piwocka K., Skierski J., Sikora E. UVC-induced cell death of IL-2-dependent human lymphocytes. //Cell. Biol. Int. 1999.V. 23. P.97−103.
  146. H., Shlag G. «Mediators of injury and inflammation» World J. Surg. 1996. V.20. P.406−410.
  147. Reeve V., Bosnic M., Nishimura N. Interferon-gamma is involved in photoimmunoprotection by UVA (320−400 nm) radiation in mice. //J. Invest. Dermatol. 1999. V. 112. P. 945−950.
  148. Ridker P., Cushman M., Stampfer M. et al. Inflammation, aspirin, and risk of cardiovascular disease in apparently healthy men.//N. Engl. J. Med. 1997. V.336. P.973−979.
  149. Ridker P., Hennekens C. Buring J. C-reactive protein and Other Markers of Inflammation in the Prediction of Cardiovascular Disease in Women. //N. Engl. J. Med. 2000. V. 342. P.836−843.
  150. Robbins M., Frater R., Soeiro R. et al. Influence of vegetation size on clinical outcome of right-sided infective endocarditis. // Am. J. Med. 1986. V.80. P. 165 171.
  151. Roelandts R. The history of phototherapy: something new under the sun? //J. Am. Acad. Dermatol. 2002. V. 46. P.926−930.
  152. Rothenburger M., Soeparwata R., Deng M. et al. The impact of anti-endotoxin core antibodies on endotoxin and cytokine release and ventilation time after cardiac surgery. //J. Am. Coll. Cardiol. 2001. V.38. P. 124−130.
  153. Rothenburger M., Trosch F., Markewitz A. et al. Leukocyte activation and phagocytotic activity in cardiac surgery and infection. //Cardiovasc. Surg. 2002. V.10. P.470−475.
  154. Rothenburger M., Tjan T., Schneider M. et al. The impact of the pro- and anti-inflammatory immune response on ventilation time after cardiac surgery. // Cytometry. 2003. 53. Bull. (1) P.70−74.
  155. Roth-Isigkeit A., Hasselbach L., Ocklitz E. et al. Inter-individual differences in cytokine release in patients undergoing cardiac surgery with cardiopulmonary bypass. //Clin. Exp. Immunol. 2001. V.125. P. 80−88.
  156. Sands K. Epidemiology of Sepsis Syndrom in 8 Academic Medical Centers. //JAMA. 1997. V.278. P.261−268.
  157. Satch M., Tamura G. et al. Expression of cytokines genes and presence of enteroviral genomic RNA in endomyocardial biopsy tissues of miocarditis and dilated cardiomiopathy. //Virchov Arch. 1996. V. 427. P.503−539.
  158. Schell H. The immunocompromised host and risk for cardiovascular infection.//J. Cardiovasc. Nurs. 1999. V.13. P.31−48.
  159. Sheikh M., Antinore M., Huang Y., Fornace A. Ultraviolet-irradiation-induced apoptosis is mediated via ligand independent activation of tumor necrosis factor receptor 1. //Oncogene. 1998. V. 17. P. 2555−2563.
  160. Shiraishi M., Nakaji S., Sugawara K. The effects of UVA irradiation on human neutrophil function. //Nippon Eiseigaku Zasshi. 1996. V. 50. P. 1093−1102.
  161. Shlag G., Redl H. Mediators of injury and inflammation. //World J. Surg. 1996. V. 20. P. 406−410.
  162. Shreedhar V., Pride M., Sun Y. et al. Origin and characteristics of ultraviolet-B radiation-induced suppressor T lymphocytes. //J. Immunol. 1998. V. 161.1. P.1327−1335.
  163. Simon-Vermont I., Altwegg M., Zimmerli W., Fluckiger U. Duke criteria-negative endocarditis caused by Bartonella quintana.// Infection 1999. V.27. P. 283−285.
  164. Slungaard A., Vercellotti G., Walker G. et al. Tumor necrosis factor alpha/cachectin stimulates eosinophil oxidant production and toxicity towards human endothelium. //J. Exp. Med. 1990. V. 171. P. 2025−2041.
  165. Soter N. Acute effects of ultraviolet radiation on the skin. //Semin. Dermatol. 1990. V. 9. P. 11 -15.
  166. Stachon A., Boning A., Weisser H. et al. Prognostic significance of low serum cholesterol after cardiothoracic surgery. //Clin. Chem. 2000. V. 46. P. l 114 -1120.
  167. Standiford T., Arenberg D., Danforth J. et al. Lipoteichoic acid induces secretion of interleukin-8 from human blood monocytes: a cellular and molecular analysis.// Infect. Immun. 1994. V. 62. P. l 19−125.
  168. Suschek C., Bruch-Gerharz D., Kleinert H. et al. Ultraviolet Al radiation induces nitric oxide synthase-2 expression in human skin endothelial cells in the absence of proinflammatory cytokines. //Invest. Dermatol. 2001. V. 117. P. 12 001 205.
  169. Swank G., Deicth E. Role of the gut in multiple organ failure: bacterial translocation and permeability changes. // World of Surgery. 1996. V.20. P.411−417.
  170. Sweeney J., Nguyen P., Omann G. et al. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor rescues human polymorphonuclear leukocytes from ultraviolet irradiation-accelerated apoptosis. //J. Surg. Res. 1999. V. 81. P. 108 112.
  171. Taniuchi S., Masuda M., Yamamoto A. et al. Two cases of autoimmune neutropenia possibly induced by beta-lactam antibiotics in infants //J. Pediatr.Hematol. Oncol. 2000. V.22. P.533−538.
  172. Tarnok A., Schneider P. Pediatric cardiac surgery with cardiopulmonary bypass: pathways contributing to transient systemic immune suppression. //Shock. 2001.V.16. Supp. 1. P.24−32.
  173. Terui T., Tagami H. Mediators of inflammation involved in UVB erythema. //J. Dermatol. Sci. 2000. Suppl. l.P. 1−5.
  174. Terui T., Takahashi K., Funayama M. et al. Occurrence of neutrophils and activated Thl cells in UVB-induced erythema. //Acta Derm. Venereol. 2001. V. 81. V. 8−13.
  175. Tomimori Y., Ikawa Y., Oyaizu N. Ultraviolet-irradiated apoptotic lymphocytes produce interleukin-10 by themselves. //Immunol. Lett. 2000. V. 71. P. 5448−5449.
  176. Tripp C., Beckerman K., Unanue E. Immune complexes inhibit antimicrobial responses through interleukin-10 production. // J. Clin. Invest. 1995. V. 95.1. P. 1628−1634.
  177. Valer G. Khoschsorur G., Almdahl S. et al. Lipid peroxidation in open-heart surgery.// Perfusion. 1994. V.9. P.277−283.
  178. Veltrop M., Beekhuizen H., Thompson J. et al. Bacterial species- and strain-dependent induction of tissue factor in human vascular endothelial cells. //Infect. Immun. 1999. V. 67. P.6130−6138.
  179. Veltrop M., Thompson J., Beekhuizen H. et al. Monocytes augment bacterial species- and strain-dependent induction of tissue factor activity in bacterium-infected human vascular endothelial cells. //Infect. Immun. 2001. V.69. P.2797−2807.
  180. Volk H., Docke W. et al. Pathomechanism of monocit disfunction: the conception of immunoparalisis. // 8 Europ. Congress of Intens. Care Med. Greece. 1995. abstracts.
  181. Von Reyn C., Levy B., Arbeit R. et al. Infective endocarditis: an analysis based on strict case definitions. //Ann. Intern. Med. 1981. V.94. P.505−518.
  182. Walsh L. Ultraviolet B irradiation of skin induces mast cell degranulation and release of tumour necrosis factor-alpha. //Immunol. Cell. Biol. 1995. V.73. P.226−233.
  183. Wu Ch.-Y., Wang K. Prostoglandin E2 and Dexametasone Inhibit IL-12 Receptor Expression and IL-12 Responsiveness. //J. Of Immunol. 1998. V. 161. P. 2723−2730.
  184. Yee E.S., Khonsari S. Right-sided infective endocarditis: Valvuloplasty, valvectomy or replasment // J. Cardiovascular. Surg. l989.V.30. № 5. P.744−748.
  185. Yaron I., Yaron R., Oluwole STet al. UVB irradiation of human-derived peripheral blood lymphocytes induces apoptosis but not T-cell anergy: additive effects with various immunosuppressive agents. // Cell. Immunol. 1996. V. 168. P. 258−266.
  186. Yoshida Y., Kang K., Chen G. et al. Cellular fibronectin is induced in ultraviolet-exposed human skin and induces IL-10 production by monocytes/macrophages. //J. Invest. Dermatol. 1999. V.113. P. 49−55.
  187. Yu H. Comparative studies of magnetic particle-based solid phase fluorogenic and electrochemiluminescent immunoassay. //J. Immunol. Methods. 1998. V.218. P. 1−8.
  188. Yuen K., Nearn M., Halliday G. Nitric Oxide-Mediated Depletion of Langerhans Cells from the Epidermis May Be Involved in UVA Radiation-Induced Immunosuppression. //Nitric Oxide. 2002. V.6. P. 313−318.
  189. Zacharowski K., Olbrich A. Membrane-permeable radical scavenger, tempol reduces multiple organ injury in a rodent model of Gramm-positive shock. //Crit. Care Med. 2000. V.28. P. 1953−1961.
Заполнить форму текущей работой