Продуктивность фасоли обыкновенной (Phaseolus vulgaris L.) при обработке семян микробными препаратами
Практическая значимость результатов исследований состоит в том, что при возделывании фасоли обыкновенной сорта «Сакса без волокна 615» обосновано применение для инокуляции семян при посеве наиболее эффективного сочетания микробных препаратов (ризоторфин + микориза), позволяющее повысить урожайность семян по сравнению с контролем на 40% и содержание в них белка на 0,8% без применения минеральных… Читать ещё >
Содержание
- 1. РАСТИТЕЛЬНО-МИКРОБНЫЕ СИСТЕМЫ И ИХ ЗНАЧЕНИЕ В ЗЕМЛЕДЕЛИИ (обзор литературы)
- 1. 1. Фасоль обыкновенная
- 1. 1. 1. Ботаническая характеристика и биологические особенности фасоли обыкновенной
- 1. 1. 2. Значение фасоли в различных производственных отраслях
- 1. 1. 3. Районы возделывания и площади посева фасоли в мире
- 1. 2. Бобово-ризобиальный симбиоз
- 1. 2. 1. Механизмы взаимодействия в макро- и микро- симбионтов в бобово-ризобиальном симбиозе
- 1. 2. 2. Эффективность применения клубеньковых бактерий на различных бобовых культурах
- 1. 3. Ассоциативные ризобактерии
- 1. 3. 1. Механизм взаимодействия ассоциативных ризобактерий с растениями
- 1. 3. 2. Влияние ассоциативных ризобактерий на продуктивность растений
- 1. 4. Эндомикоризный симбиоз
- 1. 4. 1. Механизмы взаимодействия арбускулярной микоризы с растениями
- 1. 4. 2. Значение арбускулярной микоризы для бобовых культур
- 1. 1. Фасоль обыкновенная
- 2. 1. Место и схема проведения опытов
- 2. 2. Метеорологические условия в годы постановки опытов
- 2. 3. Агрохимическая характеристика почв
- 2. 4. Методы исследований
- 2. 5. Характеристика сорта фасоли и микробных препаратов, изучаемых в опытах
- 3. 1. Рост и развитие растений фасоли обыкновенной
- 3. 2. Фотосинтетическая продуктивность растений
- 3. 3. Клубенькообразование, нитрогенназная активность и накопление азота в различных частях растений
- 3. 4. Урожайность семян и выход белка с урожаем
- 4. 1. Агроэнергетическая эффективность возделывания фасоли обыкновенной
- 4. 2. Экономическая эффективность возделывания фасоли обыкновенной. П
Продуктивность фасоли обыкновенной (Phaseolus vulgaris L.) при обработке семян микробными препаратами (реферат, курсовая, диплом, контрольная)
В настоящее время проблема производства необходимого количества полноценного растительного белка в питании человека и кормлении сельскохозяйственных животных приобретает первостепенное значение. В рационе населения России дефицит пищевого белка составляет около 600 тысяч тонн и один из наиболее эффективных путей решения этой проблемы является увеличение производства пищевых белков из растительного сырья.
Решающая роль в сокращении дефицита растительного белка принадлежит бобовым культурам. Способность бобовых растений в симбиозе с клубеньковыми бактериями усваивать атмосферный азот обеспечивает им экологические преимущества в условиях дефицита азота и не требует внесения дорогостоящих и экологически не безопасных азотных удобрений. Применение при возделывании бобовых культурах препаратов на основе симбиотических азотфиксаторов повышает вклад бобовых культур, как накопителей азота не только в урожае, но и служит важнейшим фактором вовлечения в земледелие биологического азота, который после минерализации пожнивно-корневых остатков используется для урожая последующих культур севооборота (Завалин, Благовещенская, Кожемяков, 2007; Завалин, Алметов, 2009; Мишустин, Черепков, 1979).
Среди продовольственных зернобобовых культур фасоль обыкновенная {Phaseolus vulgaris) выделяется по питательности и многообразию использования на пищевые цели. В ее семенах содержится до 30% белка, до 3% жира, а в белке — все необходимые для человека аминокислоты, по питательности, приближающиеся к белкам животного происхождения (Акулов с соавт., 2010).
Актуальность темы
В последние годы ареал возделывания фасоли существенно расширился до центральной и северо-западной части России. Для ее выращивания в условиях Северо-Запада РФ необходима разработка адаптивной технологии возделывания. Одним из элементов технологии выращивания фасоли обыкновенной в новых агроклиматических условиях является обработка семян микробными биопрепаратами. Инокуляция семян фасоли ризоторфином, на основе селекционных штаммов клубеньковых бактерий, хорошо известна. Его применение позволяет существенно повысить симбиотическую азотфикса-цию, снизить дозы минеральных удобрений и удешевить производство семян фасоли высокого качества (Самцевич с оавт., 1980; Андреева с соавт., 1990,1991; Ва-сильчиков, 2005; Туаева, 2006; Осин с соавт., 2011). Работы, связанные с изучением использования на фасоли других микробных препаратов и их сочетаний с ри-зоторфином, незначительны, данная тема актуальна, так как направлена на поиск новых возможностей экологизации земледелия.
Целью настоящей работы являлся поиск наиболее эффективного сочетания различных микробных препаратов, на основе микроорганизмов образующих различные типы симбиозов и анализ их влияния на показатели продуктивности растений фасоли обыкновенной в условиях Северо-Запада РФ.
Для выполнения поставленной цели были решены следующие задачи:
• изучено влияние микробных препаратов в различных сочетаниях на динамику роста и развития растений, фотосинтетическую деятельность и продуктивность фасоли обыкновенной;
• установлено количество накопленного растениями азота, его содержание и доля в различных частях растений фасоли обыкновенной под влиянием изучаемых сочетаний микробных препаратов при инокуляции семян;
• проведен анализ структурных элементов роста продуктивности фасоли под воздействием микробных препаратов в использовании их при различных сочетаниях;
• рассчитана агроэнергетическая и экономическая эффективность при инокуляции семян микробными препаратами в различных сочетаниях.
Научная новизна. Впервые установлено, что в повышении семенной продуктивности и качества семян фасоли большое значение имеют микробные препараты. Наибольший эффект оказывала бинарная и тройная (смешенная) инокуляция семян фасоли микробными препаратами на основе: штаммов клубеньковых бактерий, ассоциативных ризобактерии и грибов арбускулярной микоризы.
Практическая значимость результатов исследований состоит в том, что при возделывании фасоли обыкновенной сорта «Сакса без волокна 615» обосновано применение для инокуляции семян при посеве наиболее эффективного сочетания микробных препаратов (ризоторфин + микориза), позволяющее повысить урожайность семян по сравнению с контролем на 40% и содержание в них белка на 0,8% без применения минеральных и органических удобрений.
Основные положения, выносимые на защиту.
• Пути повышения продуктивности растений фасоли за счет бинарной и тройной инокуляции семян при посеве на основе клубеньковых бактерий в сочетании с арбускулярной микоризой и мизорином;
• фотосинтетическая деятельность в зависимости от обработки семян фасоли при посеве микробными препаратами;
• пути увеличения клубенькообразующей активности и накопления азота в растениях фасоли за счет применения микробных препаратов;
• бинарная и тройная инокуляция семян с включением в ее состав микробного препарата арбускулярной микоризы обеспечивает наибольшую урожайность семян фасоли обыкновенной и накопление белка в растениях.
• агроэнергетическая и экономическая оценка эффективности инокуляции семян микробными препаратами при возделывании фасоли.
Апробация работы и публикации. Материалы диссертации были представлены на международной школе молодых учёных «Прикладные и фундаментальные аспекты сигнальных процессов, развития и эффективности симбиозов микроорганизмов с корнями» (Санкт-Петербург, 2007) — на конференции профессорско-преподавательского состава Санкт-Петербургского Государственного аграрного университета (Санкт-Петербург, 2007; 2011).
По результатам исследований опубликовано 6 работ, в том числе 3 — в журналах, рекомендованных ВАК.
Декларация личного участия автора. В основу диссертационной работы включены результаты вегетационных исследований за 4 года (2005.2006 и 2010.2011 гг.) и полевых за 2 года (2005.2006 гг.) исследований. Приведен6 ные в диссертации фактические данные, их анализ, статистическая обработка и обобщение выполнены лично автором.
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 163 страницах печатного текста, состоит из введения, 4 глав, выводов, предложения производству, приложений, содержит 34 таблицы, 24 рисунка. Список использованной литературы включает 344 наименования, в том числе 169 на иностранных языках.
выводы.
1. Установлено, что инокуляция семян фасоли перед посевом изученными микробными препаратами оказала положительное стимулирующее влияние на формирование продукционного процесса растений в целом.
2. Применение микробных препаратов для инокуляции семян фасоли оказало положительное влияние на основные показатели фотосинтетической продуктивности посева. Обработка семян арбускулярной микоризой (шт. 8) и ми-зорином (шт. 7) способствовало увеличению площади листьев на 15.23% по сравнению с контролем. Наибольший фотосинтетический потенциал посева 38 тыс. см2*дн./раст. был получен при бинарной инокуляции семян фасоли ризо-торфином (шт. 653) с микоризой (шт. 8), что на 17% больше по сравнению с контролем. Самый высокий показатель чистой продуктивности фотосинтеза -7,92 г/м *сут. был при бинарной инокуляции семян фасоли ризотрфином (шт. 653) и мизорином (шт. 7), что подтверждается долей влияния взаимодействия факторов АВ на ЧПФ, которая составляла 41%.
3. Существенное влияние на увеличение количества активных клубеньков на корнях фасоли оказала обработка семян ризоторфином (шт. 653), как раздельная, так и её применение в сочетании с микоризой (шт. 8) и мизорином (шт. 7) в течение вегетационного периода развития растений. В среднем за годы исследований в фазу образования бобов количество активных клубеньков было в 1,4. .2,1 раза больше по сравнению с контрольным вариантом без инокуляции.
4. Применение бинарной инокуляции семян фасоли (ризоторфин + мизо-рин) увеличивало накопление азота в общей биомассе на 12% по сравнению с контролем. Основная часть накопленного азота аккумулировалась в семенах (66.80% от общего азота в растениях) и была максимальной при бинарной (ризоторфин + микориза) и тройной инокуляции (ризоторфин + микориза + ми-зорин).
6. Урожайность фасоли в большей степени зависела от совместной инокуляции семян фасоли клубеньковыми бактериями (ризоторфин, шт. 653) и арбу-скулярной микоризы (шт. 8). Урожайность на этом варианте была наибольшей и составила 3,27 т/га, что в 1,4 раза больше по сравнению с контролем. Бинарная (ризоторфин + микориза) и тройная инокуляции (ризоторфин + микориза + мизорин) семян способствовали наибольшему выходу белка с урожаем, на 27.42% по сравнению с контролем.
7. Обоснована агроэнергетическая эффективность применение микробных препаратов для инокуляции семян при возделывании фасоли на семена. Самый высокий коэффицент энергетической эффективности — 2,25 получен на варианте с совместной обработкой семян ризоторфином (шт. 653) и арбускулярной микоризой (шт. 8).
8. Применение инокуляции семян микробными препаратами при возделывании фасоли на семена экономически эффективно. Наибольший условно чистый доход получен 48,9 тыс. руб./га при бинарной инокуляции семян ризоторфином (шт. 653) и микоризой (шт. 8). При этом уровень рентабельности повысился с 69 до 99%.
ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.
При возделывании фасоли обыкновенной в условиях Северо-запада Нечерноземной зоны Российской Федерации на дерново-подзолистых почвах целесообразно проведение предпосевной инокуляции семян ризоторфином (штамм № 653) совместно с мизорином (штамм № 7) или арбускулярной микоризой (штамм № 8), это обеспечивает:
• получение стабильной урожайности семян фасоли обыкновенной на уровне 2,5.3,3 т/га;
• выход растительного белка с урожаем 570. .722 кг/га;
• способствует накоплению биологического азота и сохранению положительного баланса органического вещества в почве.
Список литературы
- Абрамов A.A. Опыт выращивания семян козлятника восточного в условиях Киевской области // Кормовые растительные ресурсы — фактор научно-производственного прогресса в кормопроизводстве. Киев: Белая Церковь, 1989. С. 21−22.
- Агроклиматические ресурсы Ленинградской области. Л., 1971. 119 с.
- Агрохимические методы исследования почв. М.: Наука, 1975. С. 656.
- Азаров Б.Ф. Симбиотический азот в земледелии ЦентральноЧерноземной зоны Российской Федерации: Автореф. дис. док. с/х наук. М. 1995. 59 с.
- Алисова С.М., Чундерова С. М. Методические указания по использованию ацетиленового метода при селекции бобовых культур на повышение азот-фиксации. Л., 1982. 11 с.
- Андреева И.Н., Мандхан К., Редькина Т. В., Мишустин E.H., Измайлов С. Ф. Влияние Azospirillum brasilense на формирование и азотфиксирующую активность клубеньков фасоли и сои // Физиология растений. 1991. Том 38. Вып.5. С.897−903.
- Андреева И.Н., Редькина Т. В., Мандхан К., Козлова Г. И., Измайлов С.Ф. Стимулирующее действие Azospirillum brasilense на бобово-ризобиальный сим
- Анитипчук А. Ф. Канцелярук P.M., Рангелова В. Н., Скончинская H.H., Садовников Ю. С. Связь между симбиотической азотфиксацией и урожаем бобовых растений//Микробиология. 1989. Вып.4. С. 649−652.
- И. Барбер С. А. Биологическая доступность питательных веществ в почве //Агропромиздат, 1988. 376 с.
- Башков A.C. Влияние ризоагрина и других биопрепаратов на урожайность и качество продукции яровой пшеницы / Научное обеспечение развития АПК в современных условиях // Материалы Всерос. науч.-практ. конф. 15−18 февр., 2011. T.I. С. 3−9.
- Безгодов A.B. Азотфиксирующие бактерии в жизни бобовых культур и применение ризоторфина//Агро-Компас. Екатеринбург. 1999. С. 3−7.
- Белимов A.A., Кожемяков А. П. Смешанные культуры азотфиксирую-щих бактерий и перспективы их использования в земледелии (Обзор) // С.- х. биология. 1992. № 5. С. 77−87.
- Белимов A.A., Поставская С. М., Хамова О. Ф., Кожемяков А. П., Куна-кова А.М., Груздева Е. В. Приживаемость и эффективность корневых диазотро-фов при инокуляции ячменя в зависимости от температуры и влажности почвы //Микробиология. 1994. Т. 63. С. 900−908.
- Белимов A.A., Кунакова А. М., Сафронова В. И., Степанок В. В., Юдкин Л. Ю., Алексеев Ю. В., Кожемяков А. П. Использование ассоциативных бактерий для инокуляции ячменя в условиях загрязнения почвы свинцом и кадмием // Микробиология. 2004. Т. 73. С. 118−125.
- Биологическая фиксация азота / Под ред. В. К. Шумного, И. А. Сидоровой с соавт. // Новосибирск: Наука, 1991. 271с.
- Биологическое разнообразие клубеньковых бактерий в экосистемах и агроценозах // Под. ред. М. Л. Румянцевой, Б. В. Симарова. 2011. 104 с.
- Борисов A.A. Климат // Природа Ленинграда и окрестностей. Л., 1964. С. 251.
- Васильчиков А.Г., Орлов В. П. Повышение эффективности биологической фиксации азота у фасоли // Матер, междун. конференции, приурочен, к 35-летию ВНИИЗБК. Орел, 1997. С. 176−179.
- Васильчиков А.Г. Повышение продуктивности фасоли путем подбора эффективных штаммов ризобий // Материалы Всероссийской науч.-практ. конференции. Орел. 2005. С.311−317.
- Васюк Л.Ф., Корженевская H.H., Иванова И. Б., Баскакова Л. А. Испытание эффективности штаммов Rhizobium meliloti в полевых опытах с люцерной // Труды ВНИИСХМ, 1979. Т.48. С. 113−122.
- Васюк Л.Ф. Азотфиксирующие микроорганизмы на корнях небобовых растений и их практическое использование // Биологический азот в сельском хозяйстве СССР. -М.: Наука, 1989. С. 88.
- Васюк Л.Ф., Кожемяков А. П., Смирнова Т. В. Эффективность совместного применения препаратов клубеньковых и ассоциативных азотфиксирую-щих бактерий на бобовых культурах / Билютень ВИУА. М., № 110. 1997. С.6−7.
- Воробейков Г. А., Дубенская Г. И., Павлова Т. К. Минеральное питание и продуктивность котовника кошачьего при обработке семян бактериальными препаратами // Агрохимия. 1998. № 4. С. 48−51.
- Гагарина Э.И., Матинян H.H., Счастная Л. С., Касаткина Г. А. Почвы и123почвенный покров Северо-Запада России. СПб.: Изд-во СпбГУ, 1995.
- Газаль Н.С. Синтез гетероауксина клубеньковыми бактериями люцерны и люпина // Микроорганизмы, их роль в плодородии почвы и охране окружающей среды М., 1985. С. 66−71.
- Генетические основы селекции клубеньковых бактерий / Под ред. Б. В. Симарова. Л.: Агропромиздат, 1990. 192 с.
- Гончарова Л.Ю., Симонович Е. И., Казадаев A.A., Везденеева Л. С. Изменение биологической активности чернозема обыкновенного и продуктивности кормового лугового агроценоза под влиянием биоудобрений // Доклады РАСХН. 2009. № 2. С. 35−36.
- ГОСТ Р52 325−2005. Семена сельскохозяйственных растений. Сортовые и посевные качества. Общие технические условия. М.: Стандартинформ, 2005.24 с.
- Государственный реестр селекционных достижений допущенных к использованию. Москва. 2011. Т1. С. 24.
- Гусева, Е.Г. Подбор растений, отзывчивых на микоризацию, для получения инокуляционного материала // Бюл. ВНИИ с.-х. микробиол., 1986. № 43.
- Данилов В.П. Влияние азотных, бактериальных и биологических удобрений на продуктивность многолетних трав в лесостепной зоне Западной Сибири: Автореф. дис.. канд. е.- х. наук. Новосибирск, 1996. 18 с.
- Доросинский, Л.М., Афанасьева Л. М. Значение сорта люцерны эффективного симбиоза с клубеньковыми бактериями // Сборник науч. трудов ВНИ-ИСХМ. 1976. С. 27−32.
- Доросинский Л.М. Клубеньковые бактерии и нитрагин. Л., 1970. 187 с.
- Доросинский Л.М., Кожемяков А. П. Эффективность применения нитрагина в СССР // Бюл. ВНИИСХМ. Л., 1981. № 34. С. 3−6.
- Доросинский, Л.М. Повышение продуктивности бобовых культур и улучшение их качества // Минеральный и биологический азот в земледелии СССР. 1985. С. 142−149.
- Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М., 1985. 351 с.124
- Жученко A.A. Обеспечение продовольственной безопасности России в XXI веке на основе адаптивной стратегии устойчивого развития АПК. М.: Трибуна Академии наук, 2008. 97 с.
- Завалин А. А., Чистотин М. Ф., Кожемяков А. П. Эффективность инокуляции зерновых культур Agrobacterium radiobacter в зависимости от азотного удобрения, почвенных и метеорологических условий // Агрохимия. 2001а. № 2. С.31−35.
- Завалин A.A., Кожемяков А. П., Сологуб Д. Б., Зинковская Т. С. Действие биопрепарата ризоагрин на продуктивность и азотное питание яровой пшеницы // Доклады РАСХН, 20 016, № 2. С. 23−25.
- Завалин A.A. Биопрепараты, удобрения и урожай / М.: ВНИИА, 2005. С. 18−19.
- Завалин A.A., Благовещенская Г. Г., Кожемяков А. П. М. Вклад биологического азота бобовых культур в азотном балансе земледелия России // Методика определения. М.: Россельхозакадемия, 2007. С. 4−5.
- Завалин A.A., Алметов Н. С. Применение биопрепаратов и биологический азот в земледелии Нечерноземья / М.: ВНИИА. 2009. С. 9.
- Завалин A.A., Кожемяков А. П. Новые технологии производства и применения биопрепаратов комплексного действия / СПб: ХИМИЗДАТ. 2010. С. 27.
- Ефимов В.Н., Воробейков Г. А., Патил А. Б., Мирюгина Т. А. Азотное питание и продуктивность гороха и кормовых бобов при обработке семян комплексом бактериальных препаратов //Агрохимия, 1996. № 1. С. 10−15.
- Иванов, Н.Р. Фасоль. 2-е изд., испр. и доп. М.- Д.- 1961. 280 с.
- Иванова Н.С., Васюк Л. Ф., Кислин E.H. Эффективность инокуляции люпина желтого ассоциативными азотфиксаторами // С.-х. биология. 1992. № 5. С.97−103.
- Казанцева Е.В., Ашмарина Л. Ф. Эффективность предпосевной обработки семян сои бактериями рода Pseudomonas и Rhizobium / Вклад молодых ученых в развитие сиб. аграр. науки: Новосибирск, 1999. С. 95−96.
- Каладжян Н.Л. Образование физиологически активных веществ клубеньковыми бактериями и их влияние на высшие растения: Автореф. дис. канд. биол. наук. Ереван, 1970. 20 с.
- Кант Г. Биологическое растениеводство: Возможности биологических агросистем. М., 1988. 135 с.
- Карбанович А.И. Влияние клубеньковых бактерий и молибдена на заселенность корней люпина микроорганизмами // Микроорганизмы почвы и растение. Минск. 1972. С. 121−128.
- Карпунина Л.В. Роль агглютинирующих белков ризобий и азотфиксирующих бацилл при взаимодействии с растениями // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. М.: Наука, 2005. С. 98−117.
- Каталог районированных сортов сельскохозяйственных культур в Российской Федерации. М., 1992. 123 с.
- Каталог районированных сортов сельскохозяйственных культур в РСФСР. М.: Колос, 1967.
- Квасников Е.И., Писарчук Е. И. Артробактер в природе и производстве. Киев, 1980. 120 с.
- Киризий Д.А., Воробей H.A., Коць С. Я. Взаимосвязь азотфиксации и126фотосинтеза как основных составляющих продукционного процесса у люцерны // Физиология растений. 2007. Т.54. № 5. С.666−671.
- Кожевин П.А., Корчмару С. С. На пути к теории применения микробных удобрений // Вестник МГУ. Сер. Почвоведение. 1995 № 5. С. 52−62.
- Кожемяков А.П. Основные итоги работы географической сети опытов с нитрагином // Технология производства и эффективность применения бактериальных удобрений. М., 1982. С. 19−27.
- Кожемяков А.П., Афанасьева JIM. Влияние производственных штаммов клубеньковых бактерий на белковую продуктивность бобовых культур // Бюлл. ВНИИСХМ. 1986. Вып.43. С. 15−18.
- Кожемяков А.П., Доросинский Л. М. Роль нитрагинизации в повышении урожая и накопление белка бобовыми культурами // Тр. ВНИИ с.-х. микробиологии. Л., 1987. Т. 57. С. 7−16.
- Кожемяков А.П., Белимов A.A. Перспективы использования ассоциаций азотфиксирующих бактерий для инокуляции важнейших сельскохозяйственных культур // Труды ВНИИСХМ. 1991. Т.61. С. 7−18.
- Кожемяков А.П., Иванов Н. С., Курлович Б. С. Эффективность инокуляции кормового многолистного люпина (Lupinus Polyphyllus Lindl.) клубеньковыми бактериями и корневыми диазотрофами // Бюл. ВИР. 1992. Вып. 220. С.3−5.
- Кожемяков А.П., Белимов A.A. Эффективность препаратов корневых диазотрофов при бактеризации ярового рапса // Агрохимия. 1994. № 7−8. С. 6267.
- Кожемяков А.П. Продуктивность азотфиксации в агроценозах // Микробиологический журнал. Киев, 1997. Т.59. № 4. С. 22−28.
- Кожемяков А.П., Тихонович И. А. Использование инокулянтов бобовых и биопрепаратов комплексного действия в сельском хозяйстве // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. М., 1998. № 6. С. 7−10.
- Кожемяков А.П., Васюк Л. Ф. Применение ацетиленового метода дляизмерения азотфиксирующей активности у ассоциативных ризобактерий // Ме127то дика исследований эффективности препаратов ризосферных диазотрофов. М., 1998. С. 28−33.
- Кожемяков А.П., Доросинский JIM. Биологический азот -альтернатива применению минеральных азотных удобрений в земледелии // Труды ВНИИСХМ. 1990. Т.60. С. 18−26.
- Кожемяков А.П., Хоанг Хай Изучение эффективности и основных механизмов действия землеудобрительных биопрепаратов на растения в длительных опытах географической сети // Матер, междун. н.-практ. конференции. СП (б), 2000. С. 180−185.
- Кожемяков А.П. Приемы повышения продуктивности азотфиксации и урожая бобовых культур // Биологический азот в сельском хозяйстве СССР. М., 1989. С. 15−27.
- Кожемяков А.П., Проворов H.A., Завалин A.A., Шотт П. Р. Оценка взаимодействия сортов ячменя и пшеницы с ризосферными ростсти-мулирующими бактериями на различном азотном фоне // Агрохимия. 2004. № 3. С. 33−40.
- Кожемяков А.П., Чеботарь В. К. Биопрепараты для земледелия // Биопрепараты в сельском хозяйстве. М.: Тип. Россельхозакадемии., 2005. С. 1854.
- Кожемяков А.П. Эффективность и основные функции симбиотических и ассоциативных бактерий инокулянтов сельскохозяйственных культур // Докл.РАСХН. 2001. С.25−26.
- Кокорина А.Л., Кожемяков А. П. Бобово-ризобиальный симбиоз и применение микробиологических препаратов комплексного действия важный резерв повышения продуктивности пашни. СПб., 2010. 50 е.
- Коренев Г. В., Подгорный П. И., Щербак С.Н.- Растениеводство с основами селекции и семеноводства. М.- Агропромиздат, 1990. 575с.
- Кравченко Л. В., Кравченко И. К., Боровков A.B., Пшикрил. 3. Возможность биосинтеза ауксинов ассоциативными азотфиксаторами в ризосферепшеницы // Микробиология. 1991. Т. 60. № 5. С. 927.128
- Кравченко Л.В. Роль корневых экзометаболитов в интеграции микроорганизмов с растениями: Автореф. дис.. д-ра биол. наук. М.: МГУ. 2000. 45 с.
- Кретович В.Л. Содержание ß--индолилуксусной кислоты в корневых клубеньках и в корнях люпина // Физиология растений. 1972. Т. 19. Вып. 3. С. 504−509.
- Кретович В.Л., Евстигнеева З. Г., Карякина Т. И., Львов Н. П., Мелик-Саркисян С.С., Пушкин A.B., Романов В. И., Успенская Ж. В., Шатилов В. Р. Молекулярные механизмы усвоения азота растениями / Ред. E.H. Мишустина // М.: Наука, 1983. 263 с.
- Кунакова A.M. Взаимодействие ассоциативных ризобактерий с растениями при различных агроэкологических условиях: Автореф. дис. канд. биол. наук. СПб, 1998. 18 с.
- Курчак О. Н, Проворов H.A., Симаров Б. В. Эффективность симбиоза с клубеньковыми бактериями у различных видов рода Vicia L. // Раст. ресурсы-1995. Т.31, № 1. С.88−93.
- Лабутова Н. М, Левина Р. Л. Влияние способов инокуляции на формирование тройного симбиоза и продуктивность сои // Аграрный вестник Урала. 2011 № 2(81). С. 6−9.
- Лобков В. Т, Донская М. В, Васильчиков А. Г. Повышение эффективности симбиотических систем нута (Cicer Arietinum L.) // Научное обеспечениеразвития селекции: сб. науч. Материалов. Орел: Орел ГАУ, 2011. С. 39−43.129
- Маршунова Г. Н. Эффективность инокуляции вики эндомикоризными грибами и Rhizobium // Бюл. ВНИИ с.-х. микробиол. 1987. № 47. С. 8−11.
- Маршунова Г. Н., Якоби JIM. Принципы отбора эффективных культур эндомикоризных грибов // В кн. Микроорганизмы в сельском хозяйстве. Кишинев. 1988. С. 166−168.
- Медведев П.Ф., Сметанникова А. И. Кормовые растения европейской части СССР: Справочник. Л., 1981. 336 с.
- Методическое руководство по проектированию применения удобрений в технологиях адаптивно-ландшафтного земледелия / под ред.: А. Л. Иванова, Л. М. Державина. М.: МСХ РФ- РАСХН, 2008. — 392 с.
- Методические указания к лаб.-практ. занятиям и самостоятельным работам студентов агроэнргетической эффективности технологий возделывания полевых культур. СПб, 2009. 33 с.
- Методические указания по определению и расчету показателей фотосинтетической и корневой деятельности / Л. А. Синякова, Ф. Ф. Ганусевич, А. Л. Кокорина, З. М. Нечипорук. Л., 1990. 22 с.
- Мильто, Н.И. Клубеньковые бактерии и продуктивность бобовых растений. Минск: Наука и техника, 1982. С. 36.
- Мильто Н.И., Тевелева М. К., Харко В. К. Взаимоотношения между азотобактером и клубеньковыми бактериями в смешанной культуре // Микроорганизмы-продуценты биол. активных веществ. Минск, 1973. С. 149−153.
- Миронова E.H., Самсонова A.C. Изучение антибиотических свойств клубеньковых бактерий // Микроорганизмы в промышленности и сел. хоз-ве. Минск: Наука и техника, 1975. С. 106−109.
- Мишустин E.H. Биологический азот в сельском хозяйстве и использование бактериальных удобрений / науч.-метод. совещание по бактер. удоб. Л. 1962.31 с.
- Ю1.Мишустин Е. Н., Шильникова В. К. Биологическая фиксация атмосферного азота. М.: Наука, 1968. 530 с.
- Мишустин E.H. Микробиология // учебник для студ. по агрон. спец. / E.H. Мишустин, В. Т. Емцев. 3-е изд., перераб. и доп. М.: Агропромиздат, 1987. 368с.
- Мишустин E.H., Черепков Н. И. Биологический азот как источник белка и удобрений // Изв. АН СССР сер. Биологическая. 1979. № 5. С. 349−358.
- Москвичев А.Ю., Балашов A.B., Пятибратов В. В. Применение мизо-рина и бишофита при возделывании картофеля на фоне разуплотнения почвы // Плодородие. 2009. № 6 (51). С. 29−30.
- Муромцев Г. С. Методы исследования грибов, образующих с растениями микоризу арбускулярно-визикулярного типа. СПб.: ВНИИСХМ. 1992. 44 с.
- Муромцев Г. С, Маршунова Г. Н. Эндомикориза бобовых культур. // Биологический азот в сельском хозяйстве СССР. М.: Наука, 1989. С. 81—87.
- Муромцев Г. С., Гусева Е. Г., Вострякова В. И., Серебренникова Н. В., Зольникова Н. В. Роль почвенных микроорганизмов в фосфорном питании растений // Успехи микробиологии. 1985. № 20. С. 16−24.
- Натмен П.С. Клубеньковые бактерии в почве // Сборник почвенная микроб. М., 1979. С.141−167.
- Наумкина Т.С. Эндомикоризный симбиоз / Т. С. Наумкина, А. Ю. Борисов, О. Ю. Штарк // Научно-техн. бюллетень ВНИИ ЗБК. 2005. Вып. 43 С. 8590.
- Нзитабакузе Ж.Б. Цитокининовая активность клубеньковых бактерий фасоли и сои из разных почвенно-климатических зон // Изв. Моск. с.-х. акад. им. Тимирязева. 1977. Вып. 4. С. 224−227.
- Нестеренко В. П, Карягина JI. A, Редькина Т. В. Эффективность ассоциативных азотфиксаторов на зерновых и кормовых культурах в условиях Белоруссии // Труды ВНИИСХМ. Т.59. 1989. С.76−84.
- Никитина В. Е, Пономарева Е. Г, Аленькина С. А. Лектины клеточной поверхности азоспирилл и их роль в ассоциативных взаимоотношениях с астениями // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. М.: Наука, 2005. С. 70−97.
- Носаль, М. А, Носаль И. М. Лекарственные растения и способы их применения в народе. Киев, 1959. 256 с.
- Овцина А. О, Тихонович И. А. Структура, функции и возможности практического применения сигнальных молекул, инициирующих развитие бо-бово-ризобиального симбиоза // Экологическая генетика. 2004. Т.П. № 3. С. 1424.
- Орлов В. П, Князева Л. Д. Реакция на нитрагинизацию зернобобовых культур на выщелоченном черноземе // Труды ВНИИСХМ. 1979. Т.48. С. 106 112.
- Парахин Н.В. Основные приоритеты устойчивого развития растениеводства // Вестник ОрелГАУ. 2006. № 2−3. С. 7−11.
- Парахин Н.В. Проблемы современного растениеводства и пути их решения // Вестник ОрелГАУ. 2006. № 1. С. 10−13.
- Парахин Н. В, Кузмичева Ю. В, Петрова С. Н. Биологическая и хозяй132ственная эффективность применения эндомикоризы в сортовых посевах Pisum sativum L. в условиях Орловской области // Сельскохозяйственная биология. 2010. № 1. С. 75−80.
- Посыпанов Г. С. Методические аспекты изучения симбиотического аппарата бобовых культур в полевых условиях. // Известия ТСХА. М., 1983. Вып. 5. С. 17−26.
- Посыпанов Г. С. Основные направления исследований по симбиотиче-ской азотфиксации // Известия ТСХА. М., 1988, Вып. 5. С. 101−110.
- Посыпанов Г. С. Биологический азот. Проблемы экологии и растительного белка // М.: МСХА, 1993. 272 с.
- Пошон Ж., БаржакГ. Почвенная микробиология. М., 1960. 224с.
- Практикум по агрохимическому анализу почв / Учебное пособие под ред. к. б. н С. М. Аксенова. JL: Ленинградского университета, 1984. С. 91.
- Проворов H.A., Борисов А. Ю., Тихонович И. А. Сравнительная генетика и эволюционная морфология симбиозов растений с микробами-азотфиксаторами и эндомикоризными грибами // Журнал общей биологии. 2002. Т. 63. № 6. С. 451−472.
- Проворов H.A. Генетико-эволюционные основы учения о симбиозе. Журн. общей биол., 2001, 61(6). С. 472−495.
- Растениеводство / П. П. Вавилова, В. В. Гриценко, B.C. Кузнецов и др.- Под ред. П. П. Вавилова. 5-е изд., перераб. и доп. М.: Агропромиздат, 1986. С. 191.
- Рашевская И. В. Продуктивность козлятника восточного (Galegae orientalis L.) при инокуляции семян клубеньковыми и ассоциативными ризобак-териями // Вестник Адыгейского государственного университета. 2006. № 2. С. 213−214.
- Романов В.И. Взаимосвязь процессов азотфиксации и фотосинтеза в бобовом растении // Биологическая фиксация молекулярного азота. Киев, 1983. С. 147−159.
- Руководство по апробации овощных культур и кормовых корнеплодов /Под ред. Д. Д. Брежнева. М.: Колос, 1982. С. 396.
- Сабельникова В.И. Биологически активные вещества клубеньковых бактерий//Кишинев: Штиинца, 1979. 142 с.
- Садыков Б.Ф. Биологическая азотфиксация в агроценозах // БНЦ УрОАН СССР. Уфа, 1989. 109 с.
- Садыков Б. Ф, Пропадущая JI.A. Инокуляция пшеницы различными препаратами бактерий и другие возможности усиления ассоциативной азотфиксации в ризосфере пшеницы // Бюлл. ВНИИСХМ. № 54. 1991. С. 20−26.
- Самсонова A.C. Динамика микрофлоры корней люпина под влиянием инокуляции и микроэлементов при заражении Fusarium avenaceum // Экология почв, микроорганизмов. Минск, 1974. С. 96−100.
- Самцевич С.А. Взаимодействие микроорганизмов почвы и высших растений // Микробный синтез биол. активных соединений. Минск, 1976. С. 915.
- Самцевич С.А. Значение клубеньковых бактерий как симбионта бобовых растений // Роль микроорганизмов в питании растений и повышении плодородия почв. Минск, 1969. 253с.
- Серёгин В. В, Янишевский Ф. В, Муравин Э. А. Использование ячменём меченого азота растительной массы бобовых культур с различным отношением C: N при применении ингибитора нитрификации // Агрохимия. 2000. № 6. С. 42−51.
- Синякова JI. A, Ганусевич Ф. Ф, Кокорина A. JI, Нечипорук З. М. Методические указания по определению и расчету показателей фотосинтетической и корневой деятельности растений. Л, 1990. 22 с.
- Спайнк Г., Кондороши А., Хукас П. Rhizobiaceae. Молекулярная биология бактерий, взаимодействующих с растениями. (Пер. с англ. под ред. И. А. Тихоновича и H.A. Проворова) СПб.: ВНИИСХМ. 2002. 568 с.
- Спектрова К.С. Химия и биохимия бобовых растений / Пер. с англ. К. С. Спектрова- Под ред. М. Н. Запрометова. М.: Агропромиздат. 1986. 336 с.
- Стаканов Ф.С. Фасоль. Кишинев: Штииннца, 1986. С.5−35.
- Старченков Е.П. О состоянии и перспективах исследований азотфик-сации бобово-ризобиальными системами // Физиология и биохимия культурных растений. Киев, 1987. Т. 29. № 1. С. 3−19.
- Стефанович Л.И. Синтез витаминов Rhizobium lupini и их влияние на растения люпина желтого // Автореф. канд. дис. Минск, 1974. 23 с.
- Тихонович И.А., Проворов H.A. Симбиозы растений и микроорганизмов: молекулярная генетика агросистем будущего // СПб.: С.-Петерб. Ун-та, 2009. С.3−36.
- Тихонович И.А., Кожемяков А. П. Оценка продуктивности симбиоти-ческой азотфиксации с использованием изотопного и ацетиленового методов // Экологические последствия применения агрохимикатов (удобрения). Пущино, 1982. С. 38−39.
- Тихонович И.А., Круглов Ю. В. Биопрепараты в сельском хозяйстве / Методология и практика примен. микроорг. в растениев. и кормопроизв. М.: 2005. С. 40−42.
- Тихончук П.В., Муратов A.A. Фотосинтетическая деятельность и урожайность фасоли обыкновенной в зависимости от предпосевной обработки семян // Аграрный вестник Урала. 2008. № 6(48). С.42−44.
- Толкачев Н. 3. Симбиотическая азотфиксация экологически безопасный путь повышения продуктивности земледелия // Вюник ОНУ. Сер1я
- Бюлопя. Одеса, 2001. Т. 6. Вип. 4. С. 309−312.135
- Трепачев, Е.П. Вопросы интенсификации накопления биологического азота // Биологический азот в земледелии Нечерноземной зоны СССР. Научные труды. М.: Колос, 1970. С. 200−231.
- Трепачев Э. П. Биологический и минеральный азот в земледелии: пропорции и проблемы // С.-х. биология. 1980. Т. 15. № 2. С. 178−189.
- Трепачев, Е.П. Агрохимические аспекты биологического азота в современном земледелии // М.: Колос, 1999. 532 с.
- Туркова Е.В. Морфофизиологические аспекты репродуктивной биологии галеги восточной // Эколого-популяционный анализ кормовых растений естественной флоры, интродукция и использование. Сыктывкар, 1999. С. 220 221.
- Умаров М.М. Ассоциативная азотфиксация в биогеоценозах // Почвенные организмы как компоненты биогеоценозов. М.: Наука, 1984. С. 185−199.
- Умаров М.М. Ассоциативная азотфиксация. М.: Изд-во МГУ, 1986. -133 с.
- Умаров М. М, Кураков A.B., Степанов A.JI. Микробиологическая трансформация азота в почве. М.: ГЕОС, 2007. 138 с.
- Федоров М.В. Почвенная микробиология // учеб. пособие для высш. с/хучебн. завед. М.: Советская наука, 1954. С. 275−276.
- Федулова Н. Г, Черменская И. Е. Связь обмена поли-Р-оксибутирата у Rhizobium с азотфиксацией и фотосинтезом // Биологическая фиксация молекулярного азота. Киев, 1983. С. 182−184.
- Цавкелова Е. А, Климова С. Ю, Чердынцева Т. А, Нетрусов А. И. Микробные продуценты стимуляторов роста растений и их практическое использование: обзор // Прикладная Биохимия и Микробиология. 2006. № 2. С. 133−143.
- Чеботарь В. К, Завалин A.A., Кипрушкина Е. И. Эффективность применения биопрепарата экстрасол. М.: ВНИИА, 2007. 216 С.
- Чеботарь B.K. Некоторые аспекты взаимодействий ассоциативных диазотрофов с небобовыми растениями // Тез. Докл. 9-го Баховского коллокв. по азотфиксации. 1995. С. 72.
- Черепков, Н.И. О доступности растениям азота корневых систем бобовых и злаковых трав // Агрохимия. 1965. № 2. С. 23 27.
- Черепков, Н.И. Об усвоении растениями азота из различных источников // Агрохимия. 1969. № 2. С. 11 17.
- Шабаев В.П., Смолин В. Ю. Симбиотическая азотфиксация при инокуляции сои клубеньковыми бактериями с ризосферными псевдомонадами в зависимости от уровня фосфорного питания // Агрохимия, 1993. № 6. С. 21−28.
- Шабаев В.П. Минеральное питание и продуктивность люцерны при инокуляции смешанными культурами бактерий // Агрохимия, 2006. № 9. С.24−34.
- Шабаев В.П., Смолин В. Ю. Урожай сои и содержание в растениях «биологического» азота при применении клубеньковых бактерий с ризосферными псевдомонадами и эндомикоризными грибами и локальном внесении азотного удобрения // Агрохимия. 1992. № 10. С. 9−17.
- Шевелуха B.C. Периодичность роста сельскохозяйственных растений и пути ее регулирования // 2-е изд. испр. и доп. М.: Колос, 1980. 485 с.
- Шенин Ю.Д., Кругликова Л. Ф., Васюк Л. Ф., Кожемяков А. П., Чеботарь В. К., Попова Т. А. Новый метаболит с фунгистатической и бактериостати-ческой активностью, продуцируемый штаммом ЛЗО Flavobecterium sp. II Анти-биот. Химиотер. 1996. № 5. С. 6−12.
- Abel G. H, Erdman L.W. (1964) Agron. J.V. 56. P. 423−424.
- Aguilar О. M, Riva O, Peltzer E. Analysis of Rhizobium etli and its symbiosis with Phaseolus vulgaris supports coevolution in centers of host diversification // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. Vol. 101. P. 13 548−13 553.
- Aikio S. and Ruotsalainen A.L. (2002) The modelled growth of mycorrhiz-al and non-mycorrhizal plants under constant vs. variable soil nutrient concentration. Mycorrhiza 12:257−261.
- Allen O. N, Allen E.K. (1980) The Leguminosae, a source book of characteristics, uses, and nodulation. The University of Wisconsin Press, Madison, WI.
- Amarger N, Bours M, Revoy F, Allard M R, Laguerre G. Rhizobium tropici nodulates field-grown Phaseolus vulgaris in France // Plant and Soil. 1994. № 161. C. 147−156.
- Ames Q. N, Porter L. K, StJohn T. V, Reid CPP. 1984. Nitrogen sources and «A» values for vesicular-arbuscular and non-mycorrhizal sorhum grown at three rates of 15N-ammonium sulphate. New Phytologist. 97. P. 269−276.
- Arkhipova T. N, Veselov S. U, Melentiev A.I. et al. Ability of bacterium Bacillus subtilis to procede cytokinins and to influence the growth and endogenous hormone content of lettuce plants // Plant and Soil. 2004. V. 272. P. 201−209.
- Azcon-Aguilar C, Alba C, Montilla M, Barea J.V. 1993. Isotopic (15N) evidence of the use of less available N forms by VA mycorrhizas. Symbiosis. 15: P. 39−48.
- Bago B, Becard G 2002 Bases of the obligate biotrophy of arbuscular mycorrhizal fungi. In: Eds. Gianinazzi S, Schuepp H, Barea J M, Haselwandter K.
- Bago B., Pfeffer P.E., Shachar-Hill Y. Carbon metabolism and transport in arbuscular mycorrhizas. // Plant Physiology. 2000. V. 124. P. 949−957.
- Bago B., Azcon-Aguilar C., Piche Y. Architecture and developmental dynamics of the external mycelium of the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices growth under monoxenic conditions // Mycologia. 1998. Vol. 90. P. 5262.
- Barton L.L., Abadia J. (Eds.). Iron Nutrition in Plants and Rhizospheric Microorganisms. Springer. Berlin, Heidelberg, N.Y. 2006. XVIII. 477 p.
- Belimov A.A., Kozhemyakov A.P., Chuvarliyeva G.V. Interaction bet-weenbarley and mixed cultures of nitrogen fixing and phosphate solubilizing bacteria // Plant Soil. 1995, Vol. 173. P. 29−37.
- Berg R.K., Loynachan T.E., Zablotowicz R.M., Liebermann M.T. (1988) Agron. J, V. 80. P. 876−891.
- Bernal G., Graham P. H. Diversity on the rhizobia associated with Phaseo-lus vulraris L. in Ecuador, the comparison with Mexican bean rhizobia // Canad. J. Microbiol. 2001. Vol. 47. P. 526−534.
- Bethlenfalvay G.J. Mycorrhizae and crop productivity. // Mycorrhizae in sustainable agriculture. 1992. N 54. P. 1−28.
- Bloemberg G. V, Lugtenberg B J. J. Molecular basis of plant growth promotion and biocontrol by rhizobacteria // Current Opinion in Plant Biology. 2001. Vol. 4. P. 343−350.
- Bowen, G. D, Rovira, A.D. 1976. Microbial colonization of plant roots, Annual Review of Phytopathology, 14, P. 121−144
- Brom S, Girard L, Garcia-de los Santos A. et al. Conservation of plasmid-encoded traits among bean-nodulating Rhizobium species // Appl. Environ. Microbiol. 2002. Vol. 68. P. 2555−2561.
- Brockwell J, Gault R. R, Zorin M, Roberts M.J. (1982) Austral. J. Agric. Res. V. 33. P. 803−815.
- Brockwell J, Bottomley P.J. (1995) Soil Biol. Biochem. V. 27. P. 683−697.
- Brockwell J, Bottomley P. J, Thies J.E. // Plant and Soil. 1995. V. 174. P. 143−180.
- Brunei B, Cleyet-Marel J.-C, Normand P, Bardin R. (1988) Appl. Environ. Microbiol. V. 54. P. 2636−2242.
- Bottomley P.J. (1992) In: G. Stacey et al. (eds.) Chapman and Hall, NY. P. 293−348.
- Burton J. C. (1979). Rhizobium species. In: H. J. Peppier, D. Perlman (eds.). Microbial Technology 2nd ed. V. 1, Microbial Processes, Academic Press Inc., NY.
- Caron M. Potential use of mycorrhizae in control of soilborne diseases. // Can. J. Plant Pathol. 1989. V. 11. P. 177−179.
- Cho, P.F., Gamberi, C., Cho-Park, Y.A., Cho-Park, I.B., Lasko, P., Sonen-berg, N. (2006). Cap-dependent translational inhibition establishes two opposing morphogen gradients in Drosophila embryos. Curr. Biol. 16(20): 2035—2041.
- Celik, M., C. Tureli, M. Celik, Y. Yanar, U. Erdem and A. Kucukgulmez, 2004. Fatty acid composition of the blue crab (Callinectes sapidus Rathbun, 1896) in the North Eastern Mediterranean. Food Chem., 88: 271−273.
- Ciarfardini G., Lombardo G.M. (1991) Agron. J. V. 83. P. 622−625.
- Conn H.J. (1938) J. Bacteriol. V. 36. P. 320−321.
- Date R.A. (1991) Soil Biol. Biochem. V. 23. P. 533−541.
- De Faria S. M., Franco A.A., de Jesus R.M., de Menandro M., Baitello J.B., Mucci E.S.F., Dobereiner J., Sprent J.I. (1984) New Phitol. V. 98. P. 317−328.
- De Faria S. M., de Lima H.C., Franco A.A., Mucci E.S.F., Sprent J.I. (1987) Plant and Soil. V. 99. P. 347−356.
- De Faria S. M., Lewis G.P., Sprent J.I., Sutherland J.M. (1989) New Phy-tol. V. 111.-P. 607−619.
- Dehne H.W. Interactions between vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi and plant pathogens. // Phytopathology. 1982. V. 72. P. 1115−1119.
- Denarie J., Debelle F., Prome J.C. (1996) Annu. Rev. Biochim. V. 65. P. 503−535.
- Diatloff A. (1977) Soil Biol. Biochem. V. 9. P. 85−88.
- Dullaart J.A. The bioproduction of indole-3-acetic acid and related compo-sunds in root nodules and roots of Lupinus luteus L. and by its Rhizobial simbiont // ActaBot. Nearl, 1970. Vol. 19. № 5. P. 573−575.
- Eardly B. D, Wang F.-S, Whittam T. S, Selander R. K. Species limits in Rhizobium populations that nodulate the common bean (Phaseolus vulgaris) II Appl. Environ. Microbiol. 1995. Vol. 61. P. 507−512.
- Ellis W. R, Ham G. E, Schmidt E.L. (1984) Agron. J. V. 76. P. 129−137.
- Elmerich C, Newton W.E. (Eds.). Associative and Endophytic Nitrogen-fixing Bacteria and Cyanobacterial Associations. Ser. Nit. Fix, 2007. V. 5. 321 p.
- Esperanza M.R. Diversuty of Rhizobium-Phaseolus symbiosis: overview and perspectives / Plant and Soil. 252. 11−23, 2003. P. 11−23.
- Ezawa T, Hayatsu M, Saito M. A new hypothesis on the strategy for acquisition of phosphorus in arbuscular mycorrhiza: up-regulation of secreted acid phosphatase gene in the host plant. // Mol. Plant-Microbe Interact. 2005. V. 18. P. 1046−1053.
- FAO (Food and Agriculture Organization of the United Nations) (1991) Expert consultation on legume inoculants production and quality control, FAO, Rome. P. 145.
- Frank B. Uber die Pilzsymbiose der Leguminosen. Ber. Dtsch. Bot. Ges, 1889, 7. P. 332−346.
- Frankenberger W.T. Arshad M. Phytohormones in soils: production and function. Marcel Dekker, Inc. N.Y. 1995. 503 p.
- Franken P. and Requena N. (2001) Analysis of gene expression in arbuscular mycorrhizas: new approaches and challenges. Research Review // New Phytolo-gist, 2001. Vol. 150. P. 517−523.
- Fred E. B, Baldwin I. L, McCoy E. (1932) Root nodule bacteria and leguminous plants. Univ. Wisconsin Studies in Sciences, N 5. Univ. Wisconsin Press, Madison.
- Frey B, Schuepp H (1993). Acquisition of nitrogen by external hyphae of Arbuscular mycorrhizal fungi associated with Zea mays L. New Phytol. 124: 221 230.
- Gentili, F. and Jumpponen, A. 2006. Potential and possible uses of bacterial and fungal biofertilizers. In Handbook of Microbial Biofertilizers. Ed. Rai, M.K. and Basra, A. Haworth, New York. Pp. 1−28.
- Gibson A.H., Curnow B.C., Bergersen F.J., Brockwell J., Robinson A.C. (1975) Soil Biol. Biochem. V. 7. P. 95−102.
- Gibson A.H., Date R.A., Ireland J.A., Brockwell J. (1976) Soil Biol. Biochem. V. 8. P. 395−401.
- Gianinazzi S., Schiiepp H., Haselwandter K., Barea J.M. Mycorrhizal technology in agriculture: from genes to bioproducts. Basel: Birkhauser. 2002. 340 p.
- Giovannetti M., Sbrana C., Citernesi A.S., Avio L. Analysis of factors involved in fungal recognition responses to host-derived signals by arbuscular mycorrhizal fungi // New Phytologist. 1996. Vol. 133. P. 65−71.
- Giovannetti M., Sbrana C., Sitemesi A.S., Logi C. Differential hyphal morphogenesis in arbuscular mycorrhizal fungi during pre-infection stages // New Phytologist. 1993. Vol. 125. P. 587−593.
- Glenn A. R., Dilworth M. J. The life of root nodule bacteria in the acidic underground//FEMS Microbiol. Lett. 1994. Vol. 123. P. 1−10.
- Glick, B.R. 1995. The enhancement of plant growth by free-living bacteria. Can. J. Microbiol. 41: 109−117.
- Gnanamanickam S.S. (Ed.). Plant-Associated Bacteria. Springer, Berlin Heidelberg N.Y. 2006. IX. 724 p.
- Gonzalez-Chavez M.C., Carrillo-Gonzalez R., Wright S.F., Nichols K. 2004. The role of glomalin, protein produced by arbuscular mycorrhizal fungi in sequestering potentially toxic elements. Environmental Pollution 130: 317−323.
- Graham P.H. (1985) Proc. Ill World Soybean Conf. (Ames). R. Shibles (ed.). P. 951−959.
- Graham P.H. 1981. Some problems of nodulation in symbiotic nitrogen fixation in Phaseolus vulgaris L.: A review. Field Crops Res. № 4. C 93−112.
- Grimes H.D. Influence of Pseudomonas putida on nodulation of Phaseolus vulgaris / H.D. Grimes, M.S. Mount // Soil Biol. Biochem, 1984. Vol. 16. P. 27−30.
- Guar Y. D, Lowther W.L. (1980) J. Agric. Res. V. 23. P. 529−532.
- Gulden R. H, Vessey K. Low concentration of ammonium inhibit specific nodulation (nodule number g"1 root DW) in soybean (Glycine max L. Merr.). //Plant and Soil, 1998, No 198. P. 127−136.
- Gunn C. R, Wiersema J.H., Ritchie C.A., Kirkbride J.H. (1992) US Department of Agriculture, Technical Bulletin No. 1796.
- Ham G.E. (1978) In: ADV. Legume Sci. R.J. Summerfield, A.H. Bunting (eds.) Royal Botanic Gardens, Kew. P. 289−296.
- Hardarson G, Danso SKA and Zapata F. 1987. Biological nitrogen fixation in field crops. In Handbook of Plant Science in Agriculture ED. B R Christie P. 165 — 192. CRC Press Inc., Boca Raton, FL.
- Hardy R. W, Holsten R. D, Jeckson E. K, Burns R.C. The acetylene reduction assay for N2 fixation. //Plant Physiology, 1968, V. 43. P. 1185−1207.
- Harrison M. Development of the arbuscular mycorrhizal symbiosis // Curr. Opin. Plant Biol. 1998. Vol. 1. P. 360−365.
- Harrison M. Molecular and cellular aspects of the arbuscular mycorrhizal symbiosis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Biol. 1999. Vol. 50. P. 361−389.
- Hirsch AM (1992) Developmental biology of legume nodulation // New Phytol 122: P. 211−237.
- Iruthayathas E.E. Effect of combined inoculation of Azospirillum and Rhi-zobium on nodulation and N2-fixation of winged bean and soybean / E.E. Iruthayathas, S. Gunnasekaran, K. Vlassak// Scientia Horticulture. Vol. 20. 1983. P. 231−240.
- Jacobi L., Yurkov A., Provorov A. et al. Influence of arbuscular-mycorrhizal fungi on the perennial legume grasses at the high phosphorus level in soil // Xl-th Int. Cong. On Molecular Plant-Microbe Interaction / St.-P. Russia. 2003. P. 338.
- Jacobi L.M., Petrova O.S., Tsyganov V.E., Borisov A.Y., Tikhonovich I.A. 2003a. Effect of mutations in the pea genes Sym33 and Sym40.1. Arbuscular my-corrhiza formation and function. // Mycorrhiza. 2003. V. 13. P. 3−7.
- Jarvis B.D.W., van Berkum P., Chen W.X., Nour S.M., Fernandez M.P., Cleyet-Mavel J.C., Gilies M. (1997) Intern. J. Syst. Bacteriol. V. 47. P. 895−898.
- Jeffries, P. Use of mycorrhizae in agriculture / P. Jeffries // CRC Crit. Rev. Bio-technol, 1987. Vol. 5. № 4. P. 124−132.
- Johansen A., Jakobsen I., Jensen. 1992. Hyphal transport of 15N-labelled nitrogen by a vesicular-arbuscular mycorrhizal fungus and its effect on depletion of inorganic soil N. New Phytologist 122: 281−288.
- Johansen A., Jakobsen I., Jensen. 1993. External hyphae of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi associated with Trifolium subterraneum L. 3. Hyphal transport of 32P and 15N. New Phytologist 124: 61−68.
- Johansen A., Jensen E.S. 1996. Transfer of N and P to barley interconnected by an arbuscular mycorrhizal fungus. Soil Biology and Biochemistry 28: 7381.
- Jose, M. Propagation of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi on moong (Vigna radiate L.) through nutrient film technique (NFT) / M. Jose, B.N. Johari // Curr. Sci. (India), 1988. Vol. 57. № 3. P. 217−223.
- Kawai, Y, Yamamoto Y. Increase in the Formation and Nitrogen Fixation of Soybean Nodules by Vesicurar-Arbuscular Mycorrhiza // Plant Cell Physiol, 1986, vol. 27(3). P. 399−405.
- Kersters K, De Ley J. (1984) Genus III, Agrobacterium. In: N.R. Krieg, J.G. Hoi (eds.), Bergey’s Manual of Sytematic Bacteriology, Williams & Wilkins, Baltimore. P. 244−254.
- Kjoller R, Rosendahl S. The presence of the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices influences enzymatic activities of the root pathogen Aphano-myces euteiches in pea roots. // Mycorrhiza. 1996. V. 6. P. 487−491.
- Koske R.E. Gigaspora gigantean: observation of spore germination of VA-mycorrhizal fungus // Mycologia. 1981. Vol. 73. P. 288−300.
- Laguerre G, Nour S. M, Macheret V. et al. Classification of rhizobia based on nodC and nifH gene analysis reveals a close phylogenetic relationship among Phaseolus vulgaris symbionts // Microbiology, 2001. Vol. 147. P. 981−993.
- Lamber B, Joos H. 1989. Fundamental aspects of rhizobacterial plant growth promotion research. Trends in Biotech, 7: 215−219.
- Linderman R.G. Part I. Role of VAM Fungi in Biocontrol. // Mycorrhizae and Plant Health. St. Paul: APS Press. 1994. P. 310−345.
- Lindstrom K, Lipsanen P, Kaijalanen S. (1990) Appl. Environ. Microbiol. V. 56. P. 444−450.
- Lugtenberg B.J.J, Bloemberg G. V, Bolwerk A. et al. Microbial control oftomato foot and root rot // Biology of Plant-Microbe Interactions. Vol. 4 (Proc. 11-th146
- Lugtenberg B.J.J., Dekkers L., Bloemberg G. Molecular determinants of rhizosphere colonization by Pseudomonas // Annu. Rev. Phytopathol. 2001. Vol. 39. P. 461−490.
- Lugtenberg B.J.J., Dekkers L.C. What makes Pseudomonas bacteria rhizosphere competent? // Environ. Microbiol. 1999. Vol. 1. P. 9−13.
- Lum, M. R, and Hirsch, A.M. 2003. Roots and their symbiotic microbes: strategies to obtain nitrogen and phosphorous in a nutrient-limiting environment. J. Plant Growth Regul. 21:368−382.
- Madsen E. A receptor kinase gene of the LysM type is involved in legume perception of rhizo-bial signals / E. Madsen et al. // Nature. 2003. Vol. 425. P. 637 640.
- Maltseva N.N., Nadkernichnaya E.V., Kanivets N.A. Association of nitrogen-fixing bacteria with winter rye // In Abstract Vol. of 10th Int. Congr. on Nitrogen Fixation. St.-Petersburg. May 28-June 3. 1995. P. 614.
- Marsh JF, Schultze M. 2001. Analysis of arbuscular mycorrhizas using symbiosis-defective plant mutants. New Phytologist 150: 525−532.
- McDermott T.R., Graham P.H., Brandwein D.H. (1987) Arch. Microbiol. V. 148. P. 100−106.
- Metzler M.C., Laine M.J., Boer S.H., de, 1997. The status of molecular biological research on the plant pathogenic genus Clavibacter II FEMS Microbiol. Lett. V. 150. № l.P. 1−8.
- Meyer, J.R. Response of subterranean clover to dual inoculation with vesi-cular-arbuscular mycorrhizal fungi and a plant growth-promoting bacterium, Pseudomonas putida / J.R. Meyer, R.G. Linderman 11 Soil Biol. Biochem. 1986. V. 18. № 2. P. 185−190.
- Michiels J, Dombrecht B, Vermeiren N, Xi G, Luyte E, Vanderleyden J. (1998) Phaseolus vulgaris is a non-selective host for nodulation. FEMS Microbiol. Ecology 26. P. 193−205.
- Miyazaki H, Kato H, Nakazawa T, Tsuda M. A positive regulatory gene, pvdS, for expression of pyoverdin biosynthetic genes in Pseudomonas aeruginosa PAO // Mol. Gen. Genet. 1995. Vol. 248. N 1. P. 17−24.
- Newsham K. K, Fitter A. H, Watkinson A.R. Arbuscular mycorrhiza protect an annual grass from root pathogenic fungi in the field. // J. Ecol. 1995. V. 83. P. 991−1000.
- Nielsen, F. A, Hansen, L. K, and Balslev, D. (2004). Mining for associations between text and brain activation in a functional neuroimaging database. Neu-roinformatics 2, P. 369−380
- Olubayi O, Ford T. M, Nevra-estens S.A. Growth response of several grass species to inoculation with A. brasilense strain Cd // In: 9th Int. Congr. on Nitrogen Fixation. 6−11 Dec, 1992. Mexico. 1992. P.727.
- O’Toole G. A, Kolter R. Initiation of biofilm formation by Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signaling pathways: a genetic analysis // Mol. Microbiol. 1998. Vol. 28. P. 449−461.
- Paradi I, Bratek Z, Lang F. Influence of arbuscular mycorrhiza and phosphorus supply on polyamine content, growth and photosynthesis of Plantago lanceo-lata. // Biologia Plantarum. 2003. V. 46, N 4. P. 563−569.
- Parniske M (2008) — Arbuscular mycorrhiza: the mother of plant root endo-symbioses. Nat Rev Microbiol, 2008 Oct- 6(10):763−75.
- Piha M. J, Munns D.N. 1987. Nitrogen Fixation Capacity of Field-Grown Bean Compared to other Grain Legumes. Agronomy Journal. Vol. 79. № 4. P. 690 696.
- Polhill R.M., Raven P.H., Stirton C.H. (1981) In: Polhill R.M., Raven P.H. (eds.). ADV. Legume Syst. Royal Botanic Gardens, Kew, England, P. 1−26.
- Polonenko D.R. Effects of root colonizing bacteria on nodulation of soybean roots by Bradyrhizobium japonicum / D.R. Polonenko, F.M. Scher, J.W. Klopper et al. // Can. J. Microbiol, 1987. Vol. 33. P. 498−503.
- Porcel R, Barea JM, Ruiz-Lozano JM. 2003. Antioxidant activities in my-corrhizal soybean plants under drought stress and their possible relationship to the process of nodule senescence. New Phytologist 157, 135−143.
- Powell C.V. Development of mycorrhiza infection from Endogone spores and infected root fragments // Trans Brit. Mycol. Soc. 1976. Vol. 66. P. 439−445.
- Raupach, M. R., J. J. Finnigan, and Y. Brunet. 1996: Coherent eddies and turbulence in vegetation canopies: The mixing-layer analogy, Boundary-Layer Mete-orol, 78, 351−382.
- Read D.J. An ecological point of view on arbuscular mycorrhiza research. / In: Mycorrhizal Technology in Agriculture. From Genes to Bioproducts. Eds. S. Gia-ninazzi, H. Schuepp, J.M. Barea, K. Haselwandter. Basel: Birkhauser Verlag. 2002. P. 129−137.
- Rodriguez H., Fraga R. Phosphate solubilizing bacteria and their role in plant growth promotion // Biotechnology Advances. 1999. V. 17. P. 319−39.
- Rose S., Parker M., Punja Z.K. Efficacy of biological and chemical treatments for control of Fusarium root and stem rot on greenhouse cucumber // Plant Disease. 2003. 87 (12). P. 1462−1470.
- Rosendahl S. 2008. Communities, populations and individuals of arbuscular mycorrhizal fungi. New Phytologist 178: 253−266.
- Roughley R.J., Gemell L.G., Thompson J.A., Brockwell J. (1993) Soil Biol. Biochem. V. 25. P. 1453−1458.
- Ruiz-Lozano J. M, Azcon R. Mycorrhizal colonization and drought stress as factors affecting nitrate reductase activity in lettuce plants. // Agric. Ecosyst. Environ. 1996. V. 60. P. 175−181.
- Ryu C.-M, Farag M. A, Hu C.-H, Reddy M.S. et al. Bacterial volatiles promote growth in Arabidopsis // The Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 2003. V. 100. P. 4927−4932.
- Sanders I. R, Clapp J. P, Wiemken A. The genetic diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in natural ecosystems a key for understanding the ecology and functioning of the mycorrhizal symbiosis // New Phytologist. 1996. Vol. 133. P. 123 134.
- Sannazzaro A, Ruiz O. A, Alberto E and Menendeza A. 2006. Lotus gla-ber salt stress alleviation by Glomus intraradices. Plant and Soil, 285, 279−287.
- Sarig S. Effect of Azospirillum inoculation on nitrogen fixation and growth of several winter legumes / S. Sarig, Y. Kapulnik, Y. Okon // Plant and Soil. 1986. Vol. 90. P. 335−342.
- Schardl C. L, Leuchtmann A, Spiering M. J, 2004. Symbioses of grasses with seedborne fungal endophytes // Annu. Rev. Plant Biol. V. 55. P. 315−340.
- Schmidt W. Influence of Azospirillum brasilense on nodulation of legumes / W. Schmidt, P. Martin, S.H. Omay, F. Bangerth // Azospirillum IV. Genetics, Physiology, Ecology (Ed. W. Klingmiiller). Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 1988. P. 92−99.
- Schortemeyer M, Hartwig U. A, Hendrey G. R, Sadowsky M.J. (1996) Soil Biol. Biochem. V. 28. P. 1717−1724.
- Schuyler A, Schwarzott D, Walker C A new fungal phylum, the Glomero-mycota: phylogeny and evolution // Mycol Res. 2001. Vol. 105. P. 1413−1421.
- Sheng M, Tang M, Chen H, Yang B, Zhang F, Huang Y. Influence of arbuscular mycorrhizae on photosynthesis and water status of maize plants under salt stress. // Mycorrhiza. 2008. V. 18. P. 287−296.
- Siddiqui Z.A. (Ed.). PGPR: Biocontrol and Biofertilization. Springer, Berlin Heidelberg N.Y. 2005. XIII. 318 p.
- Singh C.S. Associative effect of Azospirillum brasilense with Rh. japoni-cum on nodulation and yield of soybean (Glycine max.) / C.S. Singh, N.S. Subba Rao //Plant and Soil. 1979. Vol. 53, № 3. P. 387−392.
- Singleton P. W, Tavares J.W. (1986) Appl. Environ. Microbiol. V. 51. P. 1013−1018.
- Skerman V.B.D, McGowan V, Sneath P.H.A. (1980) Int. J. Syst. Bacte-riol. V. 30. P. 225−420.
- Smith R.S. (1992) Can. J. Microbiol. V. 38. P. 485−492.
- Smith R. S, del Rio Escurra G.A. (1982) J. Agric. Univ. P.R. V. 66. P. 241 249.
- Smith R. S, Ellis M. A, Smith R.E. (1981) Agron. J. V. 73. P. 505−508.
- Smith S. E, Read D.J. Mycorrhizal Symbiosis (second edition). San Diego, London, New York, Boston, Sydney, Tokyo, Toronto: Academic Press, 1997. 590 p.
- Somasegaran P, Hoben H.J. (1994) Handbook for Rhizobia. Springer, NY. P. 450.
- Spaepen S, Vanderleyden J, Remans R. Indole-3-acetic acid in microbial and microorganism-plant signaling // FEMS Microbiology Reviews, 2007. V. 31. P. 425−448.
- Sprent J.I. Nodulation in Legumes. Kew, Royal Botanical Gardens: Cromwell Press Ltd. 2001.
- Sutton W.D. (1983) In: W.J. Broughton (ed.) Nitrogen Fixation. V. 3. Legumes. Oxford Univ. Press, NY. P. 144−212.
- Tian, S, K. Nakamura and H. Kayahara, 2004. Analysis of phenolic compounds in white rice brown rice and germinated brown rice. J. Agric. Food Chem, 52: 4808−4813.
- Torrey J.G. Kinetin as a trigger for mitosis in mature endomitotic plant cells // Expl. Cell Res. 1961. Vol. 23. P. 281−299.
- Tsimilli-Michael M., Strasser R.J. Mycorrhization as a stress adaptation procedure. / In: Mycorrhizal Technology in Agriculture. From Genes to Bioproducts. Basel: Birkhauser Verlag. 2002. P. 199−210.
- Turnau K., Henriques, F. S., Anielska T., Renker C., Buscot F. (2007) Metal uptake and detoxification in Erica andevalensis growing in a pyrite mine tailing. Environm. Exp. Botany 61:117−123.
- Umali-Garcia M. Association of Azospirillum with grass roots / M. Umali-Garcia, D. H. Hubbell, M.H. Gaskins, F.B. Dazzo // Appl. Environ. Microbiol. 1980. Vol. 39. P. 219−226.
- Vance, C.P. Symbiotic nitrogen fixation and phosphorus acquisition. Plant nutrition in a world of declining renewable resources /C.P. Vance // Plant Physiology. 2001. V. 127. P. 390−397.
- Vassyuk L.F., Popova T.A., Kozhemyakov A.P., Tchebotar V.K. Fungistatic action of bacterial preparation Flavobacterin after application of the cereal, potato and veneylands // Eroupen J of Plant Pathology. 1995. P. 1310
- Vejsadova, H. Effect of the VAM fungus Glomus sp. On the growth and yield of soybean inoculated with Bradyrhizobium japonicum / H. Vejsadova, D. Sib-likova, H. Hrselova, V. Vancura // Plant Soil. 1992. Vol. 140. P. 121−125.
- Vessey J.K. Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers // Plant and Soil, 2003. V. 255. P. 571−586.
- Vincent J.M. (1970) A manual for the practical study of root-nodule bacteria. IBP Handbook No 15, Blackwell Scientific Publ. Oxford. P. 164.
- Whipps J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // J. Exper. Botany. 2001. Vol. 1. P. 9−13.
- Wilson J.K. (1944) Soil Sci. V. 58. P. 61−69.
- Yahalom E. Azospirillum effects on susceptibility to Rhizobium nodulation and nitrogen fixation of several forage legumes / E. Yahalom, Y. Okon, A. Dovrat // Can. J. Microbiol. 1987. Vol. 33. P. 510−514.
- Young J.P.W, Haukka K.E. (1996) New Phytol. V. 133. P. 87−94.
- FAOSTAT, 2010 Электронный ресурс. /http://faostat.fao.org/DesktopDefault.aspx?PageID=567#ancor.501. Контроль1. РизоторфиннО