Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Видоспецифические антигенные эритроцитарные диагностикумы для определения антител к Rickettsia prowazekii и Rickettsia typhi

Диссертация: Видоспецифические антигенные эритроцитарные диагностикумы для определения антител к Rickettsia prowazekii и Rickettsia typhi
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Раннее распознавание риккетсиозов должно проводиться с широким использованием простых, общедоступных и стандартных методов лабораторной диагностики. Из применяемых методов серологического анализа РИГА заслуженно занимает первое место. Однако, широкое внедрение этого теста в лабораторную практику для изучения иммунологической структуры населения ограничено по причине невозможности использования… Читать ещё >

Содержание

  • Список основных сокращений

Глава I. Основные принципы конструирования антигенных риккетсиальных эритроцитарных диагностикумов (обзор литературы)

1.1. Реакция непрямой гемагглютинации

1.2. Основные принципы приготовления АЭД

1.3. Особенности сенсибилизации эритроцитов антигенами полисахаридной и белковой природы

1.4. Место РИГА среди регламентированных серологических тестов и ее диагностические возможности

1.5. Антигенная структура риккетсий группы СТ

Глава II. Материалы и методы

2.1. Материалы

2.2. Методы

Глава III. Разработка методов конструирования АЭД на основе разных сенситинов, полученных из риккетсиальной клетки

3.1. Выбор основы для получения полноценных гемосенситинов

3.2. Приготовление поверхностных риккетсиальных антигенов и их характеристика

3.2.1. Изучение иммунохимических свойств поверхностных и мембранных антигенов

3.2.2. Оценка гемосенсибилизирующих свойств поверхностных и мембранных антигенов

3.2.3. Определение серологических свойств СЭ на основе поверхностных и мембранных антигенов

3.3. Разработка антигенного эритроцитарного диагностикума на основе группового сенситина

3.3.1. Получение диагностических сывороток и изучение динамики антителообразования с помощью группового АЭД.

3.4. Получение видоспецифического сенситина

3.4.1. Приготовление иммуносорбента для адсорбции групповых специфических антител

3.4.2. Выделение видоспецифических антигенных комплексов риккетсий (ВАКР) и их характеристика

3.5. Разработка видоспецифических АЭД на основе ВАКР Rprowazekii и R. typhi

3.6. Оценка диагностических возможностей полученных АЭД

3.7. Аспекты дальнейшего использования разработанной методики получения видоспецифических АЭД

Глава IV.

Заключение

Выводы

Видоспецифические антигенные эритроцитарные диагностикумы для определения антител к Rickettsia prowazekii и Rickettsia typhi (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Сегодня все чаще отмечается рост количества случаев новых (emerging) и возвращающихся (re-emerging) риккетсиозных заболеваний, в том числе и эпидемического сыпного тифа (СТ) [92,176].

В прошлом постоянный спутник войн, голода и социально-экономических потрясений — СТ и в настоящее время тесно связан с политическими и экономическими катаклизмами. Подтверждением этому являются эпидемия СТ среди беженцев в Бурунди (заболело 33 тыс. человек с летальностью 30%), очаги тюремного СТ, вспышка СТ в психиатрической больнице Липецкой области, охватившая 29 человек [87,113,165].

В России в 1998 году заболеваемость сыпным тифом, по сравнению с предыдущим годом, возросла в 4 раза (ЗНиСО, № 1, 1999). Наблюдаемое в наши дни ухудшение социально-экономического положения в стране, снижение материального благополучия населения, появление бездомных и рост педикулеза, локальные конфликты и поток беженцев значительно осложнили проведение контроля и слежение за этой инфекцией.

В создавшихся условиях проведение серологического мониторинга с целью активного выявления больных, переболевших СТ и болезнью Брилля-Цинссера, приобретает все большую значимость в эпиднадзоре за возвращающимися риккетсиозными инфекциями [176]. На примере локализации и ликвидации очага эпидемического СТ в Липецкой области наглядно продемонстрирована значимость различных серологических тестов (РНГА, РСК, РНИФ, ИФА) в распознавании этой инфекции [87]. Показано, что среди них высокой диагностической значимостью при определении специфических антител в сыворотках больных и переболевших из очага сыпного тифа по чувствительности и выявляемое&tradeобладала реакция непрямой гемагглютинации. РИГА проста в постановке и не требует применения специального оборудования, что позволяет использовать ее в практических лабораториях любого уровня оснащенности.

Однако, применяемые для постановки РИГА эритроцитарные ди-агностикумы (ЭД) не удовлетворяют требованиям, предъявляемым ВОЗ к современным диагностическим препаратам, в частности, они непригодны для изучения напряженности иммунитета у лиц привитых сыпнотифозными вакцинами, для оценке уровня антител в период реконва-лесценции и внутригрупповой дифференциации риккетсиозов группы СТ. Последнее требование приобретает особую актуальность в настоящее время, в связи с появлением риккетсиозов, вызываемых новыми возбудителями этой группы: R. canada и R. felis [75,144,145,156,179].

Анализ литературы по изучению антигенной структуры риккетсий позволяет предположить, что решение этой проблемы возможно при использовании видоспецифических антигенов риккетсий [130,133,183].

В литературе нет данных, касающихся приготовления ЭД на основе видоспецифических антигенов риккетсий.

Цель настоящих исследований — выделение группои видоспецифических антигенов R. prowazekii и R. typhi и создание на их основе антигенных ЭД, обеспечивающих раннюю диагностику эпидемического и крысиного СТ, их межвидовую дифференциацию, а также изучение иммунологической перестройки макроорганизма в период реконвалесцен-ции и вакцинации.

Основные задачи:

1.Разработать методику выделения поверхностных антигенов рик-кетсий группы СТ, изучить их иммунохимические и антигенные свойства.

2.Изучить гемосенеибилизирующие свойства поверхностных антигенов, сконструировать на их основе АЭД, провести оценку его специфических свойств.

3.Оптимизировать методику приготовления иммуносорбента для удаления группоспецифических антигенов риккетсий.

4.Изучить возможность получения видоспецифических антигенных комплексов риккетсий (ВАКР), определить их специфическую активность и гемосенеибилизирующие свойства.

5.Сконструировать видоспецифический антигенный эритроцитар-ный диагностикум (В АЭД) Кртоугагеки и В АЭД ЯЛурЫ, оценить их диагностические возможности.

Научная новизна работы.

Впервые разработана технология получения сенситинов из Я-ргоу/агеки, обладающих групповой и видоспецифической активностью. Использование аналитических методов сравнительного изучения периферических структур (поверхностных и «мембранных» антигенных комплексов) риккетсиальной клетки позволило выявить различия в содержании белков, фосфолипидов и гликолипидов. Установлено, что более высокой гемосенсибилизирующей активностью обладают поверхностные сенситины.

Приготовлен оригинальный иммуносорбент на основе геля гидроокиси алюминия и групповых перекрестно-реагирующих иммуноглобулинов, иммобилизованных с помощью глутарового альдегида. Показана его эффективность для удаления группоспецифических антигенов из поверхностных риккетсиальных препаратов.

Впервые разработана методика получения видоспецифических антигенов R. prowazekii и R. typhi. Эти антигены, по данным РИГА с видос-пецифическими F (ab)2 иммуноглобулиновыми ЭД R. prowazekii и R. typhi, не содержат групповых антигенных структур. Методом электрофореза в ПААГ у видоспецифических антигенов R. prowazekii зафиксировано наличие белков с молекулярной массой 100, 120 кД.

Установлена высокая гемосенсибилизирующая активность видоспецифических антигенов, что определило возможность их использования в качестве сенситинов для конструирования ВАЭД.

С помощью разработанных оригинальных ВАЭД показана возможность проведения полной межвидовой дифференциации риккетсиозов группы СТ в РЫТА.

Положения, выносимые на защиту:

1. Поверхностные солюбилизаты содержат групповые и видоспе-цифические антигены, а сенсибилизация ими ФТЭБ позволяет получать АЭД, обладающие широкими диагностическими возможностями, пригодные для ранней диагностики эпидемического и крысиного СТ, межвидовой дифференциации этих риккетсиозов, изучения иммунологической перестройки макроорганизма при реконвалесценции и при вакцинации.

2.Видоспецифические антигены R. prowazekii и R. typhi, выделенные из поверхностных сенситинов методом истощающей иммуно-сорбции, обладают высокими дифференцирующими свойствами и строгой специфичностью.

3.Конструирование ВАЭД на основе В АКР R. prowazekii и R. typhi позволяет не только повысить эффективность диагностики эпидемического и крысиного СТ, но и проводить полную межвидовую дифференциацию этих риккетсиозов в простом диагностическом тесте — РИГА.

4.Целесообразность сочетанного использования групповых и ви-доспецифических АЭД для диагностики риккетсиозов группы СТ, обеспечивающей на первом этапе установление принадлежности инфекции к заболеваниям группы СТ, на втором этапеопределение вида сыпнотифозной инфекции с целью проведения соответствующих противоэпидемических мероприятий.

Теоретическая и практическая значимость работы.

В теоретическом плане проведенное исследование расширяет рамки существующих представлений о возможности создания препаратов нового типа, обеспечивающих внутригрупповую диагностику риккетсиозов в РНГА.

Полученный автором фактический материал может представлять интерес для конструирования высокочувствительных и специфичных АЭД для видоспецифической диагностики не только риккетсиозов группы СТ, но и риккетсиозов других таксономических групп.

Практическая значимость работы заключается в том, что разработана технология получения антигенных эритроцитарных диагностику-мов на основе группои видоспецифических антигенов R. prowazekii и R. typhi, позволяющих проводить в РНГА раннюю и внутригрупповую диагностику риккетсиозов группы СТ, определять уровень специфических антител на разных стадиях реконвалесценции и вакцинации.

На препарат составлена и оформлена нормативно-техническая документация в виде экспериментально-производственного регламента, Временной фармакопейной статьи и инструкции по применению на «Комплект эритроцитарных диагностикумов для выявления типои видоспецифических антител группы СТ в РНГА» .

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены на пленарном заседании Пермского общества микробиологов, эпидемиологов и инфекционистов 19 января 1999 г.

Диссертация прошла экспертизу и апробирована на заседании Научно-технического совета Пермского НПО «Биомед» и на расширенном заседании лаборатории экологической генетики микроорганизмов ИЭГМ УрО РАН и кафедры микробиологии Пермской медицинской академии.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 6 научных работ.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 110 страницах машинописного текста, иллюстрирована 21 рисунком и 12 таблицамисостоит из введения, обзора литературы, главы экспериментальной части, заключения и общих выводов.

Список литературы

включает 183 наименования работ отечественных и зарубежных авторов.

ВЫВОДЫ.

1.Впервые разработана экспериментально-производственная технология получения поверхностного растворимого антигена R. prowazekii, максимально очищенного от компонентов среды культивирования и обладающего групповой и видоспецифиче-ской активностью. По аналитическим данным полученные антигены содержат белки, фосфолипиды и нингидрин-положи-тельные соединения кислого характера.

2.Установлена возможность использования полученного антигена для конструирования группового антигенного эритроцитарного диагностикума, обеспечивающего выявление специфических антител в сыворотках больных на разных стадиях заболевания, а также в сыворотках экспериментальных животных.

3.Разработана методика получения иммуносорбента в котором в качестве матрицы использован гель гидроокиси алюминия, а ли-ганда — групповые перекрестно-реагирующие иммуноглобулины, «сшитые» глутаровым альдегидом. Показана эффективность его использования для удаления группоспецифических детерминант из поверхностных антигенов.

4.Впервые экспериментально доказана возможность получения ви-доспецифических антигенных комплексов из поверхностных антигенов риккетсий. На основе этих комплексов были приготовлены видоспецифические антигенные эритроцитарные диагности-кумы R. prowazekii и R. typhi, обеспечивающие проведение межвидовой дифференциации риккетсиозов группы сыпного тифа в РИГА.

5.Экспериментально показано, что для проведения диагностики риккетсиозов группы сыпного тифа целесообразно использование группового диагностикума, с последующим определением этиологии заболевания с помощью видоспецифических диагно-стикумов.

Глава IV.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В задачи практического здравоохранения входит контроль за рик-кетсиозными заболеваниями в России, уменьшение возможности их распространения и разработка эффективных мер профилактики. Вы-полнеие этих функций возможно на основе раннего выявления случаев СТ с последующим проведением всего комплекса противоэпидемических мероприятий в очаге инфекции.

Раннее распознавание риккетсиозов должно проводиться с широким использованием простых, общедоступных и стандартных методов лабораторной диагностики. Из применяемых методов серологического анализа РИГА заслуженно занимает первое место. Однако, широкое внедрение этого теста в лабораторную практику для изучения иммунологической структуры населения ограничено по причине невозможности использования выпускаемых АЭД для ретроспективной диагностики, а также непригодности их для межвидовой дифференциации риккетсиозов группы СТ. Это требовало усовершенствования сыпнотифозных АЭД.

Качество диагностического препарата во многом определяется тем, насколько полно представлены в нем основные антигенные структуры, присущие исходному нативному возбудителю. Как свидетельствуют данные литературы, К. ргомгагеШ содержат групповые и видоспецифи-ческие антигены, ответственные за иммунитет, проявляющийся в выработке риккетсиальных антител в организме человека и животного и клеточную индукцию [39,62,73,123,130,132,160,161,167]. Установлено, что видоспецифический антиген является термолабильным антигеном, с молекулярной массой 120 кД, а групповой ангтиген — термостабилен, с молекулярной массой 30−31 кД [30,73,173,177].

До настоящего времени в качестве сенситина для приготовления АЭД использовался полисахаридный антиген (гаптен), полученный путем щелочного гидролиза при 100 °C [66,120]. Авторами было отмечено, что полученный полисахаридный АЭД пригоден только для ранней диагностики риккетсиозов группы СТ. Наличие в гаптене групповых антигенов не позволяет проводить межвидовую дифференциацию заболеваний группы СТ.

Вместе с тем, в последние годы все большее внимание уделяется изучению видоспецифических антигенов риккетсий, как возможных кандидатов в вакцины молекулярного типа.

Учитывая исключительный интерес к этим антигенам, нами были проведены исследования по получению видоспецифических антигенных комплексов R. prowazekii и R. typhi, оценена их специфическая и иммунохимическая активность и изучена возможность их использования для конструирования эритроцитарных диагностических препаратов. Предпринимая эти попытки, мы учитывали результаты наблюдений Н. М. Балаевой [8], R. Anacker [105], D. Silverman [171], которые на примере овокультур R. prowazekii наглядно показали, что при простых лабораторных манипуляциях происходит элиминация микрокапсулы — поверхностной структуры возбудителя. Позднее Dasch[132] установил, что в этом слое локализуются иммунодоминантные видоспецифические антигены R. prowazekii белковой природы. Поэтому, нами в качестве исходного сырья были взяты единые корпускулярные антигены, полученные по оригинальной технологии с использованием дифференциального центрифугирования в сочетании с мембранной фильтрацией, которые сохраняли эти основные антигенные структуры.

Исходя из современных представлений о локализации серотипи-руемых антигенов риккетсий, основным объектом изучения были избраны периферические антигены R. prowazekii и R. typhi, а основным методом их выделения — еолюбилизация с помощью неионного детергента тритона Х-100.

На основании детального изучения динамики выделения антигенов, экспонированных на поверхности наружной оболочки клеточной стенки Кргом^агекп, в зависимости от температуры, концентрации детергента, временного фактора, были выявлены такие закономерности. С повышением концентрации детергента происходил интенсивный переход в раствор серологически активной антигенной субстанции. Наибольший выход наблюдался при 2%-ной концентрации тритона Х-100 в растворе.

При изучении зависимости между количеством переходящего в раствор антигена и температурой было зафиксировано, что с понижением температуры выход антигена увеличивался, о чем свидетельствуют результаты серологического анализа в РИГА. Температура 0 °C была выбрана как оптимальная.

В ходе выяснения зависимости процесса солюбилизации от экспозиции было определено, что контакт детергента с корпускулами риккет-сий в течение одного часа обеспечивает максимальную экстракцию поверхностного антигена.

Выбранные оптимальные параметры солюбилизации позволили выделить поверхностные антигены из наружной оболочки риккетсиаль-ной клетки без нарушения целостности самой клетки, что подтверждается данными электронной микроскопии и иммунофлуоресцентного анализа.

Наличие специфической флуоресценции у микробной клетки после обработки детергентом указывало на сохранение антигенных структур, которые были связаны с мембраной клетки. С целью их изоляции полученные осадки ресуспендировали в физиологическом растворе и выдерживали при низкой температуре. В результате этой операции происходило разрушение клетки на мицеллы и переход в раствор активной фракции (условное название — «мембранные» антигены).

Оба солюбилизата обладали высокой антигенной активностью и выраженной видоспецифичностью. Нами было показано, что полученные АЭД на основе поверхностных и «мембранных» антигенов обеспечивают относительную межвидовую дифференциацию сывороток группы СТ с индексом отношений гомологичной сыворотки к гетерологич-ной 9,48 и 16, соответственно.

Для проведения полной внутригрупповой дифференциации в РИГА, необходимо было освободиться от перекрестно-реагирующих антигенов. Удаление групповых антигенных комплексов с помощью общепринятых методов очистки бактериальных препаратов (осаждение этиловым спиртом, ацетоном) сопровождалось значительными потерями специфического компонента. Поэтому наиболее эффективным методом их устранения была признана истощающая сорбция с помощью иммуносорбента.

Нами был разработан оригинальный способ приготовления стабильного иммуносорбента на основе геля гидроокиси алюминия и гете-рологичного группового иммуноглобулина, прочно иммобилизованного вокруг матрицы с помощью глутарового альдегида.

Удаление групповых антигенов с помощью приготовленного иммуносорбента позволило получить видоспецифические антигенные комплексы риккетсий — ВАКР.

Дальнейшие исследования были посвящены конструированию эритроцитарных антигенных диагностикумов. В этой связи было проведено определение гемосенсибилизирующей активности поверхностных, «мембранных» антигенных комплексов и ВАКР. Было установлено, что все антигенные комплексы обладают высокой сорбционной способностью по отношению к ФТЭБ. Судя по величине оптимальной дозы, наибольшей ГСА обладали поверхностные антигены и ВАКР. «Мембранные» антигены обладали меньшей ГСА, хотя приготовленные на их основе препараты обеспечивали выявление специфических антител в диагностических сыворотках в высоких титрах.

Для объективной характеристики видоспецифических свойств разных АЭД был разработан тест-набор сывороток, включающий иммунные и реиммунные сыворотки группы СТ и группы клещевой пятнистой лихорадки.

На основании детального изучения влияния ряда факторов, определяющих эффективность сенсибилизации, были установлены оптимальные условия приготовления АЭД. Основными из них являются: формалинизация эритроцитов по Пп^аЬат в модификации А. В. Мисенжникова [71], обработка танином по 8. Воуёеп [116] в разведении 1:20 000, сенсибилизация поверхностными риккетсиальными антигенами в дозе 1,25 мг/мл в течение 1 часа при температуре 50 °C и рН среды 6,4.

Факт повышения ГСА «тритоновых» сенситинов по сравнению с традиционными сенситинами допускает предположение, что детергенты, вступая в реакцию с липидным комплексом поверхностных структур риккетсиальной клетки и дезагрегируя его, тем самым открывают участки, комплементарные рецепторам эритроцитов [44,64].

В литературе нет данных о существовании АЭД для проведения межвидовой дифференциации риккетсиозных сывороток в РНГА. Коммерческий АЭД на основе полисахаридного гаптена Я. ргом^агекп для этого непригоден, так как сенситин содержит групповые антигены.

Использование препаратов, сконструированных на основе ВАКР, позволило проводить не относительную, а полную межвидовую дифференциацию сывороток к риккетсиям группы СТ.

Определяющим для характеристики свойств приготовленных диаг-ностикумов являются результаты оценки их диагностических возможностей.

Препараты на основе «тритоновых» сенситинов обладали высокой серологической активностью в отношении иммунных и реиммунных сывороток диагностических сывороток животных, сывороток сыпнотифозных больных на всех этапах развития инфекции и лиц, вакцинированных химической сыпнотифозной вакциной в отличие от коммерческого препарата (ЖЭСД), выявляющего специфические антитела в диагностических титрах только у больных в активной фазе сыпнотифозной инфекции и в иммунных диагностических сыворотках. Особо следует подчеркнуть, что в сыворотках морских свинок специфические ге-магглютинины с помощью полисахаридного АЭД не определяются, а применение АЭД на основе поверхностных сенситинов позволило выявлять эти антитела в РИГА.

Результаты этих наблюдений позволили расширить рамки применения АЭД и рекомендовать препараты не только для выявления рик-кетсиозов у больных, но и изучения иммунологической структуры населения в очагах инфекции, оценки напряженности иммунитета у вакцинированных.

Расширение диагностических возможностей разрабатываемых АЭД мы связываем с наличием в сенситинах белковых компонентов риккетсиальных клетки, обладающих серологическими и иммуноген-ными свойствами. Это подтвердили и результаты химического, имму-нохимического и аминокислотного анализов, показавших, что сенсити-ны являются сложным высокомолекулярным комплексом, включающим белки, фосфолипиды, гликолипиды и нингидрин-положительные соединения кислого характера.

По данной технологии было приготовлено 42 серии группового АЭД на основе поверхностных антигенов Rprowazekii, 8 серий ВАЭД на основе ВАКР Rprowazekii и 4 серии ВАЭД на основе ВАКР R. typhi.

Полученные и подтвержденные на протяжении последних лет положительные результаты по конструированию видоспецифических ди-агностикумов послужили основанием для разработки и оформления научно-технической документации на «Комплект эритроцитарных диагно-стикумов для выявления типои видоспецифических антител группы СТ в РИГА» .

Заключая проведенные исследования, хотим подчеркнуть, что они представляют интерес не только для создания эффективных АЭД по выявлению антител к Rprowazekii и R. typhi, но и для идентификации антител к риккетсиям других таксономических групп .

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A. Природа и место риккетсий в системе микроорганизмов // Известия АН СССР, Сер. Биол.-1971.-№ 5.-С.743−748.
  2. А.К., Агафонов В. И. Суспензионные антигены, антитела и иммуносорбенты.-М.: Медицина, 1969.-175с.
  3. Л.В. Усовершенствование технологии приготовления корпускулярного антигена риккетсий Провачека // Автореф. дисс. канд. биол. наук.-Пермь, 1997.
  4. Л.Н., Матвеева М. В. Реакция гемагглютинации как ценный метод лабораторной диагностики сыпного тифа // Лаб. дело -1960.-№ 4.-С.34−36.
  5. И.П., Воробьев A.A. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз, 1962.-180 с.
  6. Н.М. Единый корпускулярный антиген для реакции агглютинации и реакции связывания комплемента // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1960.-X29.-C.88−92.
  7. Н.М., Никольская В. Н. Иммунологическая характеристика растворимого антигена риккетсий Провачека // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1966.-№ 6.-С.98−102.
  8. Ю.Барбан П. С., Мирский В. Я. Иммунофлуоресцентная реакция микроагглютинации риккетсий. Сообщение 1. Микроагглютинация риккетсий Провачека и Музера // Лаб.дело.-1973.-№ 1.-С.28−30.
  9. П.Барбан П. С., Мисенжников A.B. Некоторые технологические принципы конструирования стабильных иммуноглобулиновых эритро-цитарных диагностикумов // Вопр. риккетсиологии: Сб.научн.тр. -Пермь, 1974.-Т.124.-Вып. 1 .-С.66−70.
  10. П.С., Пантюхина А. Н., Мисенжников A.B., Мирский В. Я. Производство антириккетсиозных сывороток на лошадях. Сообщение I. Получение и апробация иммунной сыворотки к R. prowazekii // Журн. микробиол., иммунобиол. и эпидемиол. -1974.-№ 8.-С.16−19.
  11. П.С., Пшеничнов P.A., Пантюхина А. Н., Ившина И. Б. Иммунофлуоресцентный анализ// Свердловск, 1988.-С.46−75.
  12. К.В., Гольдин Р. Б., Нгуен В. Н., Прусакова З. М. Опыт применения непрямого метода флуоресцирующих антител для изученияи серодиагностики эндемических риккетсиозов // Вопр. риккетсиологии: Сб.научн.тр. -М.Д979.-Вып.2(1).-С.51−52.
  13. И.Ш., Барбан П. С., Сазонова JI.A., Мисенжников A.B., Мирский В. Я. Изучение реакции непрямой гемагглютинации на уровне ультраструктур // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1978.-№ 7.-С. 136−140.
  14. Е.М. Характеристика иммуногенной активности про-тективного антигена риккетсий Провачека (химической сыпнотифозной вакцины) в опытах на лабораторных животных // Вопросы инфекционной патологии и иммунологии. -М.: Медицина, 1976.-С.140−171.
  15. Е.М. Реакция непрямой гемагглютинации с протек-тивным антигеном риккетсий Провачека // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1981.-№ 8.-С.58−62.
  16. Е.М., Яблонская В. А. Живая сыпнотифозная вакцина из штамма Е риккетсий Провачека // Журн. гиг. эпидемиол. микробиол. и иммунол. (Прага).- 1962.-7(3).-С. 220.
  17. Е.М., Воронова З. А. Поверхностный протективный антиген риккетсий Провачека // Журн. гиг. эпидемиол. микробиол. и иммунобиол. -1968.-Т.12.-С.23−30.
  18. Е.М., Воронова З. А., Гудима О. С. Химическая сыпнотифозная вакцина. Сообщение I. Иммуногенная субстанция риккетсий Провачека, ее получение и характеристика // Вестник АМН СССР. -1969.-Ш0.-С.63−77.
  19. Е.М., Воронова З. А., Дутова Г. М. и др. Химическая сыпно-тифозная вакцина. Сообщение II. Иммуногенные свойства // Вестник АМН СССР. -1969.-№ 10.-С.77−94.
  20. Р.Б., Амосенкова Н. И. Изучение и диагностика риккетсиозов при помощи метода флуоресцирующих антител // Методическое пособие. -Л., 1961.-С.50.
  21. Р.Б., Волкова JI.A. Унификация и повышение эффективности серологической диагностики риккетсиозов и орнитоза при помощи непрямого метода люминесцирующих антител // Военномед. журн. -1967.-№ 9.-С.74−79.
  22. О.С. Особенности структурной организации риккетсий //Вестн. Акад. Мед. Наук -1969.-№ 10.-С.35−40.
  23. О.С., Алимов Ж. А., Авакян А. А. Ультраструктура риккетсий Музера // Журн. микробиол., иммунобиол. и эпидемиол.-1973.-№ 10.-С.88−91.
  24. В.В., Рыдкина Е. Б. Быстрый метод очистки риккетсий от тканей желточного мешка куриных эмбрионов для целей изучения хромосомной ДНК возбудителя методом ДНК-зондирования // Вопр. риккетсиологии: Сб. научн. тр. -М.Д994.-С.57−61.
  25. М.В., Алексеева В. Н., Головачева С. Н., Савицкая О. В., Анфиногенова А. Н. Изучение причин неспецифических реакций с антигенными эритроцитарными диагностикумами // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1983.-№ 4.-С.67−71.
  26. В.В. Селективная солюбилизация и биохимический анализ белков внешней мембраны Rickettsia prowazekii // Биохимия.-1992.-№ 8.-С.1196−1205.
  27. М.Е. Инактивация концентрированных суспензий Rickettsia prowazekii // Сб.: Вопр.риккетсиологии.-М., 1988.-С.25−29.
  28. В.Ф., Белоусова JI.C., Никольская В. Н., Кекчеева Н. Г. Применение РНГА с «протеиновым» антигеном риккетсий Прова-чека для определения иммунологической перестройки у привитых ХСВ // Вопр.риккетсиологии.-М., 1985.-С.22−24.
  29. .В. Эритроцитарные диагностикумы. -М.: Медицина, 1976.
  30. .В., Канатов Ю. В., Трошина Г. И. Сравнение методов формалинизации бараньих эритроцитов по Фили и Чизмесу для приготовления стабильных эритроцитарных диагностикумов // Лаб.дело. -1968.-№ 11.-С.694.
  31. O.A. Конструирование и испытание жидкого эритро-цитарного сыпнотифозного диагностикума для реакции непрямой ге-магглютинации // Автореф. дисс. канд. мед. наук. -Пермь, 1968.-15 с
  32. М. Техника липидологии: Пер. с англ. -М.: Мир, 1975.715 с.
  33. И.Н., Мискарова Э. Д., Абросимова Т. Е., Пушкарева В. И., Кекчеева Н. Г., Белоусова Л. С. Реакция непрямой гемагглютина-ции с очищенным протеиновым антигеном риккетсий Провачека // Вопр.риккетсиологии.-М., 1985.-С.28−29.
  34. В.М. Разработка технологических принципов получения сухих диагностических препаратов для РТА, РНГА и их вариантов на основе фиксированных акролеином эритроцитов // Вопр. риккетсио-логии: Сб.научн.тр. -Пермь, 1974.-Т.124.-Вып.1.-С.77−82.
  35. В.М. Сравнительная оценка акролеинового и формалинового методов фиксации эритроцитов клеточной основы диагностических препаратов для РГА, РТГА и их вариантов // Вопр. риккетсио-логии: Сб.научн.тр. -Пермь, 1974.-Т.124.-Вып.1.-С.82−87.
  36. P.E., Баяр Г. А. К усовершенствованию методики консервирования эритроцитов для реакции непрямой гемагглютинации // Лаб. дело,-1967.-№ 4.-С.242−243.
  37. P.E., Носков Ф. С., Баяр Г. А. Разработка эритроцитар-ных препаратов для выявления антигенов и антител в РНГА. В кн.: Реакция непрямой гемагглютинации // Тр. инст. им. Пастера.-Л., 1981.-56.-С.13−31.
  38. O.A., Тарасевич И. В., Помазанов В. В., Храмов E.H., Минаев В. А. Новый метод очистки риккетсий // Вопр. риккетсиологии: Сб.научн.тр. -М.Д994.-С.56−59.
  39. Е.Е. Сравнительное изучение серологической активности корпускулярных и растворимых риккетсиозных антигенов // Вопр. риккетсиологии: Сб.научн.тр. -Пермь, 1974.-Т. 124.-Вып. 1 .-С.43−46.
  40. А.Т. Быстрый и ранний метод диагностики возбудителей инфекционных заболеваний в выделениях больного и окружающей среде // Журн. эпидемиол., микробиол. и иммунобиол. -1947.-№ 2.-С.25.
  41. Крю Ж. Биохимия. Медицинские и биологические аспекты.- М.: Медицина, 1979.
  42. М.И. Общие закономерности серологических реакций // В кн.: Практическая иммунология.-М., 1969.-С.20−45.
  43. М.И., Басова H.H., Сучков Ю. Г., Орлова Г. М., Герасюк Л. Г., Момот А. Г. Реакция пассивной гемагглютинации и реакция нейтрализации антител при некоторых инфекциях // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1962.-№ 10.-С.40−45.
  44. М.И., Поверенный A.M. Применение реакции пассивной гемагглютинации для обнаружения антител к ДНК // Журн. гиг., эпиде-миол., микробиол. и иммунол.(Прага). -1965.-№ 9.-С.418.
  45. Н.Р., Кетти Д. Гемагглютинация и реакция антителозави-симого гемолиза. В кн.: Антитела. Методы: Пер. с англ./ Под ред. Д.Кетти. -М.: Мир, 1991.-С.238−270.
  46. K.M. Важнейшие риккетсиозы человека. -Л.Д980.-С.31 218.
  47. B.C., Зезеров Е. Г., Ереськин A.B. Изучение полипептидного состава и протективных антигенов риккетсий Провачека // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1982.-№ 12.-С.78−83.
  48. В.В. Анализ санитарно-эпидемиологических ситуаций в России в 1998 г. // ЗНиСО. -1999.-№ 1(70).-С.1−4
  49. .Л., Поляков И. И. Получение и использование холерного антигенного эритроцитарного диагностикума // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1976.-№ 1.-С.26−30.
  50. Л.А. Серологическая диагностика риккетсиозов группы сыпного тифа и клещевой пятнистой лихорадки методом гемагглютинации. Сообщение II. Специфичность реакции // Вопр.вирусологии. -1959.-№ 3.-С.268−272.
  51. П.Н., Шмутер М. Ф. Формалинизадия эритроцитов с помощью мешалки // Проблемы особо опасных инфекций.-. 969.-№ 5,-С.202.
  52. В.М. Применение сухого комплемента и консерванта бараньей крови в реакции Вассермана /./ Автореф. Дисс.канд.мед.наук,-Л., 1953.
  53. А.В., Лазаревич С. Н. К вопросу о приготовлении гемосенсибилизирующего антигена из риккегсий сибирика II Актуальные вопросы теоретической и прикладной иммунологии. -Пермь, 1994,-С.26−27.
  54. В.Н., Балаева Н. М. Серологический анализ антигенной структуры риккетсий Канада // Вопросы инфекционной патологии и иммунологии. -М.: Медицина, 1976.-С.200−208.
  55. Ф.С. Реакция непрямой гемагглютинации. В кн.: Иммунологическая диагностика вирусных инфекций / Под ред. Перадзе Т.В.-М.: Медицина, 1985.-С.98−120.
  56. А.Н., Александрова Л. В., Петров В. Ф. Изучение диагностической ценности межвидового эритроцитарного сыпнотифозного диагностикума // Актуальные проблемы теоретической и прикладной иммунологии.-Пермь, 1994.-С .3 5−3 8
  57. В.И., Кокорин И. Н. Антигенная структура риккетсий // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол.-1985.-№ 12.-С.73−78.
  58. В.И., Кекчеева Н. Г., Кокорин И. Н. Иммуногенность ХСВ и корпускулярного радиоантигена, полученного из риккетсий Провачека // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол.-1986.-№ 1.-С.73−76.
  59. P.A., Райхер Б. И., Файдыш А. И. Реакция цветной микроагглютинации с риккетсиозным антигеном, как метод специфической диагностики сыпного тифа // Журн. микробиол., эпидемиол. и им-мунобиол.-1954.-№ 7.-С.13−14.
  60. P.A., Колотов В. М., Касатова O.A. Жидкий эритро-цитариый сыпнотифозный диагностикум для реакции непрямой гемагг-лютинации // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол.-1967.-№ 9.-С.62−64.
  61. Л.И. К изучению риккетсиозных антигенов. Сообщение 2. Авидность растворимого и корпускулярного антигена риккетсий Провачека // Вакцины и сыворотки. Материалы по производству. -М., 1965.-Вып.3.-С. 103−106.
  62. Е.Б., Артемьев М. И., Балаева Н. М., Игнатович В. Ф., Демкин В. В. Изучение генома риккетсий методом рестрикционного анализа ДНК // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1990.-№ 3.-С.85−89.
  63. С.И., Щукина И. А., Мищук В. И., Тарасевич И. В. и др. Вспышка эпидемического сыпного тифа в Липецкой области // ЗНиСО. -1998.-№ 1.-С.7−11.
  64. Дж. Сыпнотифозные лихорадки. В кн.: Вирусные и риккетсиозные инфекции человека.- М.:Иностр.лит-ра.-1955.-С.645−682.
  65. М.И. О способности эритроцитов адсорбировать полный антиген бактерий // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол.-1946.-№ 10.- С. 81.
  66. Г. П., Виноградов В. Я. Методика приготовления сухого эритроцитарного диагностикума для непрямой реакции гемагглютина-ции // Тезисы докл. юбил. конф. Владивост. ИЭМ. -1966.- С. 72.
  67. И.В. Развитие учения о риккетсиозах // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1979.-№ 3.-С.3−8.
  68. И.В. Введение // ЗНиСО. -1998.-№ 1.-С.З.
  69. И.В., Фетисова Н. Ф. Сыпной тиф // ЗНиСО. -1995.-№ 2.-С.9−15.
  70. O.A. Фосфолипидные антигены риккетсий группы сыпного тифа (экспериментальные материалы по выделению, характеристике и аспектам практического использования) // Автореф. дисс. док. мед. наук.-Челябинск, 1997.-37с.
  71. O.A., Горовиц Э. С., Тупицын A.B. Химический состав и иммунохимическая характеристика фосфолипидных антигенных комплексов риккетсий группы сыпного тифа // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол.-1990.-№ 2.-С. 109−110.
  72. A.B. Выделение и характеристика фосфолипидных антигенных комплексов риккетсий группы сыпного тифа. -Дисс. канд. мед. наук. -Пермь, 1986.
  73. Дж.Б. Выделение и модификация мембранных белков и пептидов: Биологические мембраны. Методы: Пер. с англ./ Под ред. Дж.Б.Финдлея, У. Г. Эванза. -М.: Мир, 1990.-С.251−308.
  74. Ю.П., Каральник Б. В. Молекулярные аспекты взаимодействия альбумина и танизированных эритроцитов в процессе гемо-сенсибилизации. Сообщение Т // Журн.микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1975.-№ 4.-С.98−102.
  75. А.Д. Сухой эритроцитарный сыпнотифозный диагнос-тикум для РИГА // Автореф. дисс. канд. мед. наук -Пермь, 1973.
  76. ЮО.Эпштейн-Литвак Е.Ф., Васильева Л. К. Реакция гемагглютина-ции при сыпном тифе // Сб.: Риккетсиозы. -1958.-С.152−160.
  77. В.А. Диагностическая ценность реакции гемагглю-тинации при сыпном тифе // Журн.микробиол., эпидемиол. и иммунобиол.-1959.-№ 5.-С.111−115.
  78. В.А., Тарасевич И. В., Дюйсалиева Р. Г., Барбан П. С. Риккетсиозные антигены для нМФА // Вопр. риккетсиологии: Сб.научн. тр. -М, 1984.-Вып.З.-С.87−89.
  79. Alsever J. A new method for the preparation of dilute blood plasma and the operation of a compete transfusion service // N.-J.State J.Med.-1945.-41(1).-P.126−131.
  80. Anacker R.L., Pickens E.G., Lackman D.B. Details of the ultrastructure of Rickettsia prowazekii grown in the chick yolk sac // J. Bact. -1967.-№ 94.-P.260−262.
  81. Anacker R.L., Philip R.N., Thomas L.A., Casper E.A. Indirect hemmagglutination test for detection of antibody to Rickettsia rickettsii in sera from humans and common laboratory animals // J. Clin. Microbiol. -1979.-10(5).-P.677−684.
  82. Anacker R.L., List R.N., Mann R.E., Weidbrauk D.L. Antigenic heterogeneity in high- and low-virulence strains of Rickettsia rickettsii revealed by monoclonal antibodies // Infect. Immun. -1986.-51.-P.653−660/
  83. Anderson B.E., Tzianabos T. Comparative sequence analysis of a genus-common rickettsial antigen gene // J. Bacteriol. -1989.-171(9).-P.5199−5201.
  84. Artemev M.I., Ignatovich V.F., Rydkina E.B., Lichoded L.J., Balayeva N.M., Demkin V.V. Restriction fragment length polymorphism of the DNA of typhus group Rickettsiae //Acta Virol. -1991.- 35(6).-P.526−530.
  85. Bing D.H., Weyand J.G.M., Stavitsky A.B. Hemagglutination with aldegyde-fixed erythrocytes for assay of antigens and antibodies // Proc. Soc. exp. Biol. -1967.-124.-P.1166.
  86. Bise G., Coninx R. Epidemic typhus in a prison in Burundi // Trans, of the R. Soc. ofTrop. Med. andHyg. -1997.-91(2).-P.133−134.
  87. В1аск C.M., Tzianabos Т., Roumillat L.F., et al. Detection and characterization of mouse monoclonal antibodies to epidemic typhus rickett-siae//J. Clin. Microbiol. -1983.-18(3).-P.561−568.
  88. BlighE.G., Dyer W.J. //Can. J. Biochem. Phisiol. -1959.-37.-P.911. Цитируется по кн. Кейтса M. Техника липидологии -М.: Мир, 1975.
  89. Boyden S.V. The adsorption of protein on erythrocytes treated with tannic acid and subsequent hemagglutination by antiprotein sera // J. Exp. Med. -1951 .-V.93.-№ 1 .-P. 107−120.
  90. Carl M., Vaidya S., Robbins F.M., Ching W.-M., Hartzman R.J., Dasch G.A. Heterogeneity of CD4-pozitive human T-cell clones which recognize the surface protein antigen of Rickettsia typhi // Infect. Immun. -1989.-57(4).-P. 1276−1280.
  91. Carl M., Tibbs C.W., Dobson M.E., Paparello S., Dasch G.A. Diagnosis of acute typhus infection using the polymerase chain reaction //J. Infect. Dis. -1990.-I61(4).-P.791−793.
  92. Chang S.M. A serologically active erythrocytes-sensitizing substance from typhus rickettsiae. 1. Isolation and titration// J. Immunol. -1953.-V.70.-P.212−214.
  93. Chang S.M., Snyder J.C., Murray E.S. A serologically active eryth-rocyte-sensitizing substance from typhus rickettsiae. 2. Serological properties //J. Immunol. -1953.-V.70.-P.215−221.
  94. Ching W.-M., Carl M., Dasch G.A. Mapping of monoclonal antibody binding sites on CNBr fragments of the S-layer protein antigens of Rickettsia typhi and Rickettsia prowazekii // Mol. Immunol. -1992.-29(1).-P.95−105.
  95. Ching W.-M., Wang H., Jan B., Dasch G.A. Identification and characterization of epitopes on the 120-kilodalton surface protein antigen of Rickettsia prowazekii with synthetic peptides // Infect. Immun. -1996.- 64(4).-P. 1413−1419.
  96. Coombs R.R.A. A new test for the detection of weak and «incomplete» RH agglutinins //Brit. J. Exp. Path. -1945.-V.26.-№ 4.-P.255−266.
  97. Cox H.R. Use of yolk sac of developing chick embryo as medium for growing rickettsiae of Rocky Mountain fever and typhus groups // Pub. Health Rep.-193 8.-53 .-P.2241 -2247.
  98. Craigie J. Application and control of ethylether-water interface effect to the separation of rickettsiae from yolk sac suspensions // Canad .J.Res.-1945.-23.-P. 104−114.
  99. Craigie J., Watson D.W., Clark E.M., Malcomson M.E. The serological relationships of the rickettsiae of epidemic and murine typhus // Canad. J. Res. -1946.-24.-P.84−103.
  100. Csizmas L. Preparation of formalinized erythrocytes // Proc. soc. exp. Biol.-1960.-V. 103 .-P. 157.
  101. Mc Dade M.C., Black C.M., Redus M.A., Reimer C.B. Epitope mapping of typhus rickettsiae I I In: Kazar J. Rickettsia and rickettsial dis-eases.-Bratislava:Veda.-1985.-P.46−53.
  102. Dasch G.A. Isolation of species-specific protein antigens of Rickettsia typhi and Rickettsia prowazekii for immunodiagnosis and immunopro-phylaxis // J. Clin. Microbiol. -1981.-14(3).-P.333−341.
  103. Dasch G.A., Weiss E. Characterization of the Madrid E strain of Rickettsia prowazekii purified by renografin density gradient centrifugation // Infect. Immun. -1977.-15(l).-P.280−286.
  104. Dasch G.A., Samms J.R., Williams J.C. Partial purification and characterization of the major species-specific protein antigens of Rickettsia prowazekii identified by rocket Immunoelectrophoresis // Infect. Immun. -1981.-31(l).-P.276−288.
  105. Deutsch H., Morton I. Human serum macroglobulins and dissociation unita // J. Biol. Chem. -1958.-231.-P. 1107.
  106. Eisemann C.S., Osterman J.V. Proteins of typhus and spotted fever group // Infect, and Immun. -1976.-14(1).-P.155−162.
  107. Eremeeva E.M., Roux V., Raoult D. Determination of genome size and restriction pattern polymorphism of Rickettsia prowazekii and Rickettsia typhi by pulsed field gel electrophoresis // FEMS Microbiology Letters.-1993.-V. 112.-Nol .-P. 105−112.
  108. Eremeeva E.M., Ignatovieh V.F., Raoult D., Dasch G.A., Balayeva N.M. Genetic, biological and serological differentiation of Rickettsia prowazekii and Rickettsia typhi // Rickettsia and Rickettial diseases.-Bratislava: Veda.-1996.-P.43−51.
  109. Fauconnier B. Utilisation des hematies hyperformolees en virologie I I Ann.Inst.Pasteur.-1958.-95(6).-P.777−783.
  110. Feeley J.C., Sword C.P., Mac Clarck C.R. et al. The use of formalin-preserved erythrocytes in the enterobacterial hemagglutination test // Amer. J. Clin. Path. -1958.-30(1).-P.77.
  111. Fulton F., Begg A.M. Chemotherapeutic and studies V. The antigenic structure of typhus rickettsia // Medical Research council. -London. -1946.-Special report-Series 355.-P.163−191.
  112. Hahn M-J., Chang W-H. Expression and purification of the crystalline surface layer protein of Rickettsia typhi //Microbiol.and Immunol. -1996.-40(3).-P.233−236.
  113. Halle S., Dasch G.A., Weiss E. Sensitive enzyme-linked immunosorbent assay for detection of antibodies against typhus rickettsiae, Rickettsia prowazekii and Rickettsia typhi // J. Clin. Microbiol. -1977.-6(2).-P. 101−110.
  114. Halle S., Dasch G.A. Use of a sensitive microplate enzyme-linked immunosorbent assay in a retrospective serological analysis of a laboratory population at risk to infection with typhus group rickettsia // J. Clin. Microbiol. -1980.-12(3).-P.343−350.
  115. Higgins J.A., Radulovic S., Schriefer M.E., Azad A.F. Rickettsia felis: A new species of pathogenic rickettsia isolated from cat fleas // J. of Clin. Microbiol. -1996.-34(3).-P.671−674.
  116. Jandl J., Simmons R. The agglutination and sensitization of red cells by metallic cations: interactions between multivalent metals and the red-cells membrane // Brit.J.Heamat.-1957.-3(l).-P.19−38.
  117. Jensen K., Francis T. The antigenic composition of influenca virus measured by antibody-absorption // J.exp.Med.-1953 .-98(3).-P.619−624.
  118. Keogh E., North E., Warburton M. Haemagglutinins of the Haemo-phylus group //Nature.-1947.-160(422l).-P.63−64.
  119. Kokorin I.N., Pushkareva V.I., Miskarova E.D. Immunogenicity of Rickettsia prowazekii antigens // Rickettsia and Rickettsial diseases.-Bratislava: Veda.-1985.-P.254−258.
  120. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage Tu // Nature.-1970.-227.-P.680−685.
  121. Levlis J. Serological detection of desoxiribonucleic acid (DNA) adsorbed to formalinized // Proc.soc.exp.Biol.Med.-1959.-98(2).-P.303−305.
  122. Ling N.R. The attachment of proteins to aldehyde- tanned cells. // Brit. J. Hematol. -1961.-V.7.-P.259.
  123. Ling N.R. The coupling of protein antigens to erythrocytes with difluorodinitrobenzene // Immunology.-1961.-4(l).-P.49−55.
  124. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Raudall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J.Biol.Chem.-1951.-V. 193.-№l.-P.265−275.
  125. Mc Kiel J.A., Bell E.J., Lackman D.B. Rickettsia Canada: a new member of the typhus group of Rickettsia isolated from Haemaphysalis lepo rispalustris ticks in Canada // Canad. J. Microb. -1967.-15(5).-P.503−510.
  126. Middlebrook G., Dubos R. Specific serum agglutination of erythrocytes sensitized with extracts of tubercle bucilli // J. Exp. Med. -1948.-V.88.-P.521−528.
  127. Pressman D., Campbell D.H., Pauling L. The agglutination of intact azo-erythrocytes by antisera homologous to the attached groups // J. Immunol. -1942.-44.-P. 101.
  128. Raoult D., Arzouni J.P., Jambon M.C., Beytont J., Ramousse O. Western blot as a seroepidemiologic tool for detecting foci of Mediterranean spotted fever (MSF) // Eur. J. Epidemiol. -1994.-10.-P.37−40.
  129. Raoult D. et al. Epidemic typhus in Burundi // Abst. the Sesqui-Annual meeting of the ASR. -1997.
  130. Regnery R.L., Tzianabos Т., Espozito J J., Mc Dade J.E. Strain difFerentiationof epidemic typhus riekettsiae (R.prowazekii) by DNA restriction endonuclease analysis // Current Microbiol.-1983.-8.-P.355−358.
  131. Rodionov A.V., Eremeeva M.E., Balayeva N.M. Isolation and partial characterization of the Mr 100 kD protein from Rickettsia prowazekii strains of different virulence // Acta virol. -1991.-35.-P.557−565.
  132. Russo P.K., Mendelson D.C., Etkind P.H., et al. Epidemic typhus (Rickettsia prowazekii) in Massachusetts: evidence of infection // N. Engl. J. Med.-I981.-304(19).-P.l 166−1168.
  133. Ryan W., Severens J. The stabilization and staining of erythrocytes for heterophil testing // AmerJ.clin.Path. -1960.-34.-P.569−574.
  134. Rycaj T. Specific agglutination of red cells covered with absorbed antibodies // Bull.Acad.pol.Sci.-1956.-2(4).-P.335−339.
  135. Silverman D.J., Wisseman C.L. Comparative ultrastructural studies on the cell envelopes of Rickettsia prowazekii, R. rickettsii and R. tsutsugamushi //Infect.and Immun. -1978.-21.-P.1020−1023.
  136. Smith D.K., Winkler H.H. Radiodination of an outer membrane protein in intact Rickettsia prowazekii // Infect. Immun. -1980.-29.-P.381−834.
  137. Shepard C.C., Wickoff R.W.G. The nature of the soluble antigen from typhus rickettsiae // Public. Health. Rept. U. S. -1946.-61(22).-P.761−767.
  138. Stavitsky A.B. Micromethods for the study of proteins and antibodies //J. Immunol. -1954.-72(5).-P.360−367.
  139. Stavitsky A.B. Hemagglutination and hemagglutination-inhibition reactions with tannic acid- and bis-diazotized benzidine-protein-conjugated erythrocytes // Immunol.methods.-Ed. Ackroyd J. F. Oxford, 1964.
  140. Tarasevich I.V. Louse-borne typhus fever in Russia: yesterday, today and tomorrow // Asilomar. Conf. Center, USA. Pacific Grove, CA, 1996.
  141. ToppingN.H., Bengtson I.A., Henderson R.G., Shepard C.C., Shear MJ. Studies of typhus fever//National Inst. Of Health Bull. -1945.-183.
  142. Urvolgyi J., Brezina R., Valkova E. New Erithrocite-sensiti sub-stanse from Rickettsia Canada // Acta virol.-1975.-19(3).-P.255−257.
  143. Walker D.H. Advances in understanding of typhus group rickettsial infections // Rickettsia and Rickettial diseases.-Bratislava: Veda. -1996.-P. 1627.
  144. Weinbach R. Die Verwendbarkeit formolbehandelter Erythrocyten als Antigentrager in der indirecten Haemagglutination. 2. // Schweiz. Z.allg. Path. -1958.-21.-P.1043.
  145. Weiss E., Coolbaugh J.C., Williams J.C. Separation of viable Rickettsia typhi from yolk sac and L cell host component by renografin density gradient centrifiigation // Apple Microbiol. -1975.-30.-P.456−463.
  146. Weiss E., Dobson M.E., Dasch G.A. Biochemistry of rickettsia recent advances // Acta virol. -1987.-31.-P.271−286.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!