Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Характеристика половых клеток семенников кроликов как мишеней для генно-инженерных исследований

Диссертация: Характеристика половых клеток семенников кроликов как мишеней для генно-инженерных исследований
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Изучение процессов созревания и дифференцировки половых клеток семенников животных представляет огромный интерес для сравнительной эмбриологии, биологии развития, медицины и биотехнологии. Использование клеток гонад животных в биотехнологии рассматривается в качестве перспективного приема получения трансгенных сельскохозяйственных животных. Несмотря на наличие целого ряда методов доставки… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Процесс сперматогенеза у млекопитающих
    • 1. 2. Типы клеток сперматогенного эпителия
    • 1. 3. Перспективы использования стволовых клеток сперматогоний
    • 1. 4. Механизмы контроля пролиферации и дифференцировки сперматогоний
    • 1. 5. Культура клеток сперматогоний
    • 1. 6. Методы получения трансгенных животных с помощью половых клеток семенников
    • 1. 7. Трансформация клеток сперматогенного эпителия
      • 1. 7. 1. Использование спермиев в качестве вектора для переноса чДНК
      • 1. 7. 2. Трансплантация стволовых клеток сперматогоний
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Используемые векторные системы
    • 2. 2. Реактивы и оборудование
    • 2. 3. Приготовление гистологических препаратов 59 семенников
    • 2. 4. Определение числа клеток сперматогенного эпителия и относительного количества ДНК ядер клеток 59 семенников
    • 2. 5. Иммуногистохимический анализ экспрессии рекомбинантных белков в семенниках кроликов
    • 2. 6. Приготовление культуры клеток семенников
    • 2. 7. Окрашивание и идентификация клеток культуры тканей семенников
    • 2. 8. Генетическая трансформация клеток семенников in 63 vitro
      • 2. 8. 1. Трансфекция культуры клеток семенников культуральной жидкостью
      • 2. 8. 2. Трансфекция культуры клеток семенников клетками-упаковщицами
    • 2. 9. Введение рекомбинантных векторов в семенники кроликов in vivo
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Гистологические исследования семенников кроликов
      • 3. 1. 1. Изучение морфологии сперматогенеза кроликов и выявление возраста с максимальным числом сперматогоний
      • 3. 1. 2. Определение относительного количества ДНК ядер клеток сперматогенного эпителия
    • 3. 2. Трансформация клеток семенников in vitro
      • 3. 2. 1. Получение и характеристика культуры клеток тканей семенников кроликов
      • 3. 2. 2. Анализ эффективности генетической трансформации клеток семенников in vitro
    • 3. 3. Трансфекция клеток семенников кроликов ретровирусными векторными системами in vivo
      • 3. 3. 1. Изучение эффективности генетической трансформации клеток семенников кроликов in vivo генной конструкцией pX-RSVhGH
      • 3. 3. 2. Изучение эффективности генетической трансформации клеток семенников кроликов in vivo генной конструкцией pX-Ins
      • 3. 3. 3. Сравнительный анализ эффективности генетической трансформации клеток семенников кроликов in vivo при использовании генных конструкцийpX-RSVhGH и 101 pX-Ins
  • ОБСУЖДЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ
  • ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Характеристика половых клеток семенников кроликов как мишеней для генно-инженерных исследований (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

Изучение процессов созревания и дифференцировки половых клеток семенников животных представляет огромный интерес для сравнительной эмбриологии, биологии развития, медицины и биотехнологии [М.М. Иванова и др., 2000]. Использование клеток гонад животных в биотехнологии рассматривается в качестве перспективного приема получения трансгенных сельскохозяйственных животных. Несмотря на наличие целого ряда методов доставки генетической информации в эмбриональные линии животных [Л.К. Эрнст, Н. А. Зиновьева, 2002], интерес к использованию клеток семенников сохраняется, вследствие их природной способности поглощать чужеродную ДНК (чДНК) и переносить ее в яйцеклетку посредством оплодотворения /К Сапс1о1/1, 1998].

Эффективность переноса экзогенной чДНК таким способом у мышей составляет 30−60% /У. СгиепМаит а1, 1991], в то время как при использовании микроинъекции — 25% [V. Ригзе! ег а1, 1989; ВНтгег ег а1, 1994а]. Искусственное осеменение трансформированными спермиями в будущем может рассматриваться как элемент программ по массовому получению трансгенных сельскохозяйственных животных, для которых процедура микроинъекции малоэффективна.

Использование спермиев в качестве вектора имеет ряд преимуществ:

1. Интегрированная в геном организма чДНК может устойчиво передаваться в ряде поколений.

2. Возможно изменение генотипа и фенотипа животных.

3. Сокращаются сроки получения потомства.

4. Снижается стоимость работ по созданию трансгенных животных.

Среди большой популяции клеток сперматогенного эпителия интерес исследователей в настоящее время сфокусирован на использовании стволовых клеток сперматогоний (СКС). Именно уникальное свойство многократного самообновления СКС, открывает широкие возможности реализации потенциала этих клеток при получении трансгенных животных [R. Brinster et al, 1998].

Популяция диплоидных СКС постоянно обновляется, в результате инициируется комплексный процесс дифференцировки этих клеток. Все это приводит к появлению высоко специализированных половых клетокспермиев. Одна СКС способна сформировать 4096 сперматид [A. Morena et al, 1996; I. Dobrinski et al, 2000; C. Marret et al, 2000].

СКС наиболее устойчивы к различным повреждающим факторам и, часто только эти клетки выживают, в то время как остальные типы клеток сперматогенного эпителия погибают. До полового созревания и в течение остального периода жизни организма СКС претерпевают постоянную репликацию, сохраняя свое число* в течение процесса, называемого обновлением состава стволовых клеток.

Вместе с тем, использование половых клеток в качестве генетического вектора для получения трансгенных животных осложняется нарушениями физиологических функций «трансгенного» спермия (уменьшение подвижности, разрушение цитоплазматической мембраны, спонтанная акросомическая реакция, потеря t оплодотворяющей способности), а также детекцией и разделением «трансгенного» и нормального спермиев" [С. Spadafora, 1998]. Преодоление этих негативных явлений позволит получить простой и удобный способ создания трансгенных животных, т.к. искусственное осеменение давно успешно используется в сельскохозяйственной практике.

Понимание молекулярных механизмов, сопутствующих транспорту экзогенной ДНК спермиями в яйцеклетки, способствует прогрессу исследований в данной области и послужит основой для массового переноса генов у различных видов животных.

Методом использования СКС для получения трансгенных животных занимаются ученые многих университетов и лабораторий мира. Объектами их исследования являются как лабораторные [М. Capecchi, 1980; S. Dolci et al, 1993; J.-M. Ruysschaert et al, 1994; T. Ogawa et al, 1998, 1999b], так и сельскохозяйственные животные [I. Dobrinski et al, 1999aF. Izadyar et al., 2000; Dirk G. de Rooij, 2001J.

Стволовые клетки сперматогонии млекопитающих, представляющие большой интерес для таких наук, как биотехнология, клеточная и генная инженерияявляются на сегодняшний день удобной моделью при проведении различных геномных манипуляций у млекопитающих.

Таким образом, актуальность работы заключается в. том, что показана" возможность использования половых клеток семенников кроликов в качестве мишеней для генно-инженерных исследований.

Цель и задачи исследования

.

Целью диссертационной работы явилась характеристика половых клеток семенников кроликов как мишеней для генно-инженерных исследований.

Для достижения поставленной цели были решены следующие задачи:

1. Изучить гистологические особенности семенников у разновозрастных самцов кроликов.

2. Дать характеристику популяций клеток сперматогенного эпителия в зависимости от стадии развития.

3. Выявить наиболее оптимальные стадии, для выделения СКС и проведения с ними генно-инженерных исследований.

4. Определить эффективность генетической трансформации клеток семенников кролика in vitro с использованием ретровирусных векторов.

5. Изучить эффективность трансформации клеток семенников кроликов in vivo.

Научная новизна.

В ходе выполнения диссертационной работы впервые подробно изучены гистологические особенности семенников самцов кроликов, находящихся на различных физиологических стадиях сперматогенеза. Дана характеристика популяций клеток сперматогенного эпителия семенных канальцев в динамике. Показана возможность генетической трансформации клеток сперматогенного эпителия кроликов in vivo с использованием ретровирусных векторных систем.

Практическая ценность работы.

Практическая значимость диссертации заключается в определении возраста самцов кроликов, при котором в семенниках наблюдается максимальное количество стволовых клеток сперматогоний — перспективных клеток-мишеней для генно-инженерных исследований. Изучена эффективность генетической трансформации сперматогоний кролика in vivo ретровирусными генными конструкциями, содержащими гены инсулина и гормона роста человека.

Основные положения, выносимые на защиту:

• Соотношение клеток разных типов в семенных канальцах самцов кроликов изменяется в зависимости от возраста животных;

• В сперматогенном эпителии семенных канальцев самцов кроликов постоянно присутствуют стволовые клетки сперматогонии, число которых изменяется в процессе онтогенеза;

• Сперматогонии семенных канальцев самцов кроликов могут быть трансформированы in vivo с использованием ретровирусных векторов;

• Эффективность генетической трансформации сперматогоний in vivo зависит от генной конструкции и типа ретровирусного препарата.

Апробация работы.

Материалы диссертации были представлены:

• на научно-методической конференции аспирантов и молодых ученых, ВГНИИЖ, п. Дубровицы, июнь 2003 г;

• на международной научно-практической конференции «Повышение конкурентоспособности животноводства и задачи кадрового обеспечения», РАМЖ, п. Быково, июль 2003 г;

• на 3-й международной конференции «Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных», ВГНИИЖ, п. Дубровицы, ноябрь 2003 г;

• в научном отчете ВГНИИЖ, 2003 г;

• на научной конференции отдела биотехнологии ВГНИИЖ, август 2004 г;

• на международной научной конференции, посвященной 75-летию ВГНИИЖ, сентябрь, 2004 г.

Публикация результатов исследований.

По материалам диссертации опубликовано 6 научных работ.

Структура и объем работы.

выводы.

1. Установлено, что в период с 14-и дневного до 12-и недельного возраста наблюдается относительно постоянное число семенных канальцев на единице площади ткани семенника (от 159,2±0,38 до 183,7±0,35 на 1 мм2) при постепенном увеличении среднего числа клеток на поперечном срезе канальца с 28,3±0,59 до 56,9+1,26. В возрасте от 3,5 до 6 мес. происходит уменьшение числа семенных канальцев с 142,9±0,38 до 30,610,17 на 1 мм². Эти изменения вызваны увеличением числа клеток сперматогенного эпителия в канальцах от 101,7±1,35 до 271,9±0,98. Доля сперматогенной ткани у исследуемых возрастных групп кроликов значительно не изменяется.

2. Показано, что в возрасте от 10 дней до 4-х недель в семенных канальцах кроликов наряду с клетками Сертоли присутствует единственный тип генеративных клеток — сперматогонии типа А. В зависимости от возраста их число варьирует и достигает максимального значения в возрасте 4-х недель (в среднем 13,1 ±0,55 клеток в 1 канальце). Наибольшее число сперматогоний промежуточного типа отмечается в возрасте 6-и недель (9,2±0,47), а типа В — в 11 недель (11,4±0,59). С 10-и недельного возраста в семенных канальцах визуализируются сперматоциты первого порядка, а с 3,5 месяцев — сперматоциты второго порядка и сперматиды. Максимальное число сперматоцитов первого порядка наблюдается в возрасте 5,5−6 месяцев (65,8±0,94). Число сперматоцитов второго порядка и сперматид достигает максимальных значений в 6-и месячном возрасте (соответственно, 19,2±0,44, 76,1±0,89). В возрасте 5,5 месяцев в семенных канальцах кроликов впервые выявляются спермии, число которых увеличивается к 6-и месячному возрасту (91,1 ±0,71) и остается практически неизменным в возрасте 12 месяцев (91,4±0,59).

3. Выявлено, что оптимальным периодом для проведения генно-инженерных исследований является возраст от 10 дней до 9 недель, когда сперматогонии являются единственным типом генеративных клеток в семенных канальцах самцов кроликов. Максимальное число сперматогоний отмечается в период 8−9 недель, когда на их долю приходится, соответственно, 65,7 и 71,3%. Установлено, что в период от 10 дней до 9 недель сперматогонии характеризуются наибольшей пролиферативной активностью, что является одним из определяющих факторов для успешного переноса генов посредством рекомбинантных ретровирусных векторов.

4. В результате исследований полученной и охарактеризованной нами первичной культуры клеток семенников кроликов в возрасте 8-и недель, установлено, что в процессе культивирования происходит потеря сперматогоний. Если на их долю в первом пассаже приходится 29,2%, то в третьем пассаже их число снижается в 6 раз и составляет 1,8%. Показано, что частота генетической трансформации первичной культуры клеток семенников in vitro при использовании клеток-упаковщиц была ниже.

3,0*10″ 4.

5. Выполнена трансформация сперматогоний кролика in vivo генными конструкциями pX-Ins и pX~RSVhGH, несущими, соответственно, гены инсулина и гормона роста человека. Клетки, трансформированные рХ-RSVhGH, выявлялись только на 7-ой день после инъекции клеток-упаковщиц в семенники кроликов с частотой 2,7*10'3. Частота генетической трансформации сперматогоний вектором pX-Ins на 7-ой день после введения клеток-упаковщиц или культуральной жидкости составляла, соответственно, 2,3*10 и 0,7*10″. Показано увеличение эффективности трансформации сперматогоний кролика на 14-ый день после инъекции в 1,8−2,1 раза,.

7 7 соответственно, до 4,1*10* и 1,5*10″. Полученные результаты свидетельствуют о возможности успешного внедрения генных конструкций в сперматогонии кролика in vivo посредством рекомбинантных ретровирусов.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Для получения оптимальных результатов по генетической трансформации сперматогоний кролика при генно-инженерных исследованиях рекомендуем использовать самцов в возрасте от 10-и дней до 9-и недель, когда в семенных канальцах семенников присутствует наибольшее число клеток этого типа и отмечается их наиболее высокая пролиферативная активность.

Показать весь текст

Список литературы

  1. И.К. Характеристика линий клеток, упаковывающих рекомбинантные ретровирусные векторы в переносе экзогенной ДНК в клетки млекопитающих//Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Дубровицы. — 2001. — 21с.
  2. A.A. Экспериментальная хирургия. М.: НИЦ Инженер. -1998.-445с.
  3. B.C., Гапала И., Грияч П. и др. Включение макромолекул в половые клетки самцов мышей при помощи электропорации и диметилсульфоксида/ЯДитология и генетика. 1990. — Т.24. — № 3. — С.3−7.
  4. Ю.Ф. Ультраструктура хромосом в мейозе и синаптинемальный комплекс/Цитология и генетика мейоза. М.: Наука. -1975. — С.58−95.
  5. Ю.С. Эволюционная эмбриология позвоночных. М.: Изд-во МГУ. — 1988.-232с.
  6. В.В. Методы микроинъекции спермиев как инструмент вспомогательной репродукции и изучения биологии оплодотворения/Юнтогенез. 2000.- Т.31. — № 1. — С.5−13.
  7. Гистология/Под ред. Ю. И. Афанасьева, H.A. Юрина. М.: Медицина. — 2002. — С.673−695.
  8. O.K. Генетическая трансформация соматических клеток. -Л.: Наука. 1989.-350с.
  9. Д. Новое в клонировании ДНК. М.: Мир. — 1989. — 367с.
  10. Н.М. Гистологические и цитологические особенности молочной железы кроликов как объекта генно-инженерных манипуляций//Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Дубровицы. — 2004. — 21с.
  11. Л.В. Сперматогонии, сперматоциты, сперматиды//В кн.: Современные проблемы сперматогенеза. М: Наука. — 1982. — С.25−72.
  12. Л.В. Ультраструктурное исследование сперматогенеза. М: Наука. — 1978. — 142с.
  13. С.Т. Современные достижения в исследованиях проблемы сперматогенеза/ЯТроблемы репродуктивной биологии. М. — 1998. — С.233−259.
  14. М.М., Народицкий Б. С. Перспективы использования современных методов введения генетического материала в эмбрионы млекопитающих//С.-х биология. 2000. — № 2. — С.3−11.
  15. C.B. Выделение, характеристика и транплантация сперматогоний типа, А хряка//Автореф. дисс.. канд. биол. наук. -Дубровицы. 2002. — 19с.
  16. Н.В., Коржикова C.B., Савченкова И. П. Культура сперматогенных клеток свиней//Школа-практикум: «Методы исследований в биотехнологии сельскохозяйственных животных». ВИЖ. — п. Дубровицы. -2002. — В.1. — С.67−71.
  17. A.B., Пиркова A.B., Дворянчиков Г. А. и др. Исследования переноса чужеродных генов сперматозоидами в яйцеклетки мидии Mytilus Galloprovincialis Lam.//Онтогенез. 2001. — Т.32. — № 4. — С.309−318.
  18. Е.А. и др. Генетика//М.: Агропромиздат. 1991.247с.
  19. С.С. Регенерация семенников у млекопитающих//Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1956. — № 9. — С.51−55.
  20. С.С. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука. — 1985. — 207с.
  21. С.С. Травма семенника и аутоиммунитет. М.: Медицина. — 1970. — 182с.
  22. С.С. Цикл сперматогенного эпителия и кинетика сперматогенеза у млекопитающих//Успехи современной биологии. 1967. -Т.63. — С.135−153.
  23. . Микроскопическая техника/Пер. с нем. В. Я. Александрова, З. И. Кроковой. М.: Изд.-во иностр. лит.-ры. — 1953. — 718с.
  24. Рузен-Ранге Э. Сперматогенез у животных. М.: Мир. — 1980.255с.
  25. К.К. К вопросу о цитологических и гистохимических изменениях при сперматогенезе//Вестник ЛГУ. Т. 15. — 1957. — С.53−71.
  26. В.А. Молекулярно-генетические аспекты использования ретровирусных векторов для трансгенеза в животноводстве//Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Дубровицы. — 2001. — 19с.
  27. Р.Б. Непостоянство генома. М.: Наука. — 1984. — 471с.
  28. Хэм А., Кормак Д. Гистология: Пер. с англ. М.: Мир. — 1983. -Т.5. — 296с.
  29. Л.И. Развитие половых желез и происхождение половых клеток в эмбриогенезе человека//Архив анатомии, гистологии, эмбриологии. 1968.- Т.54. — № 2.- С.3−27.
  30. Ф.П., Тугизов Ш. М., Савченкова И. П. и др. Рекомбинантный поверхностный белок вируса гепатита В, экспонирующий иммунодоминанту мембранного белка вируса ВИЧ1//ДАН. 1992. — Т.327(1). -С. 172−175.
  31. И.Я., Хамицеева М. П., Лепнов A.C. и др. Методические рекомендации по количественному определению нуклеиновых кислот в клетках и тканях сельскохозяйственных животных. Дубровицы. — 1985. -28с.
  32. Л.К., Зиновьева H.A. Молекулярно-генетические аспекты в создании и использовании трансгенных сельскохозяйственных животных//Вестник РФФИ. 2002. — № 3(29). — С.56−65.
  33. Adams J.M., Cory S. The Bcl-2 family: arbiters of cellsurvival//Science. -1998. V.281. — P. 1322−1326.
  34. Allan D.J., Harmon B.V., Roberts S.A. Spermatogonial apoptosis has three morphologically recognizable phases and shows no circadian rhythm during normal spermatogenesis in the rat//Cell Prolif. 1992. — V.25. — P.241−250.
  35. Allard E.K., Blanchard K.T., Bockelheide K. Exogenous stem cell factor (SCF) compensates for altered endogenous SCF expression in 2,5-hexanedione-induced testicular atrophy in rats//Biol. of Reprod. 1996. — V.55. -P.185−193.
  36. Amann R.P. A critical review of methods for evaluation of spermatogenesis from seminal characteristics//! Androl. 1981. — V.2. — P.37−58.
  37. Amann R.P. Detection of alterations in testicular and epididymal function in laboratory animals//Environ. Health Perspect. 1986. — V.70. — P. 149 158.
  38. Amann R.P. Sperm production rates//In: Johnson A.D., Gomes W.R., VanDemark N.L. The Testis. Academic Press, New York. 1970. — V.l. — P.433−482.
  39. Archibald A.L. Molekular Biological Approaches and their Possible Aplications, in J.W. Owen and R.F.E. Axford (eds), Breeding for Disease Resistance in Farm Animals, C.A.B. International, UK. 1991. — P.100−122.
  40. Arezzo F. Sea urchin sperm as a vector of foreign genetic information//Cell Biol. Int. Rep. 1989. — V.13(4). — P.391−404.
  41. Arruda V.R., Fields P.A., Milner R., Wainwright L. et al. Lack of germline transmission of vector sequences following systemic administration of recombinant AAV-2 vector in males//Mol. Ther. 2001. — V.4. — P.586−592.
  42. Aslam I., Fishel S., Moore H., Dowell K., Thornton S. Fertility preservation of boys undergoing anti-cancer therapy: a review of the existing situation and prospect for the future//Human Reproduction. 2000. — V. l5. -P.2154−2159.
  43. Bachiller D., Schellander K., Peli J. et al. Liposome-mediated DNA uptake by sperm cells//Mol. Reprod. Dev. 1991. — V.30(3). — P. 194−200.
  44. Baumer M., Patzelt D. Protamine mRNA as molecular marker for spermatozoa in semen stains//Int. J. Legal. Med. 2003. — V. l 17(3). — P. 175−179.
  45. Behr J.P. Cene transfer with synthetic cationic amphiphiles: Prospects for gene therapy//Bioconjugate Chemistry. 1994. — V.5. — P.382−389.
  46. Bellve A.R., Cavicchia J.C., Millette O’Brien D.A., Bhatnager Y.M., Dym M. Spermatogenic cells of the prepubertal mouse: isolation and morphological characterization//.!, of Cell Biology. 1977. — V.74. — P.68−85.
  47. Berardino M., Hoffher M. Development and chromosomal constitution of nuclear transplants derived from male germ cells//J. of Exper. Zoology. 1976. — V.176(1). — P.61−72.
  48. Berndtson W.E., Desjardins C. The cycle of the seminiferous epithelium and spermatogenesis in the bovine testis//Am. J. Anat. 1974. — V.140. — P. 167−180.
  49. Besmer P., Murphy J.E., George P.C. et al. A new acute transforming feline retrovirus and relationship of its oncogene v-kit with the protein kinase gene family//Nature. 1986. — V.320. — P.415−421.
  50. Besmer P., Snyder H.W., Murphy J.E. et al. The Perodi-Irgens feline sarcoma virus have homologous oncogenes, but in different contents of the viral genome//J. Virol. 1983. — V.46. — P.606−613.
  51. Beumer T.L., Roepers-Gajadien H.L., Gaderman I.S., Lock T.M.T.W., Kal H.B., Dirk de Rooij D.G. Apoptosis regulation in the testis: involvement of Bcl-2 family members//Mol. Reprod. and Devel. 2000. — V.56. -P.353−359.
  52. Beumer T.L., Roepers-Gajadien H.L., Gaderman I.S., van Buul P.P.W., Gil-Gomez G. et al. The role of the tumor suppressor p53 in spermatogenesis//Cell Death. Differ. 1998. — V.5. — P.669−677.
  53. Blanchard K.T., Boekelheide K. Adenovirus-mediated gene transfer to rat testis in vivo//Biol. Reprod. 1997. — V.56. — P.495−500.
  54. Boulo V., Cadoret J.P., Le Marrec F. et al. Transient expression of luciferarase reporter gene after lipofection of oyster (Crassostrea gigas) primary cell cultures//Mol. Marine Biol. Biotech. 1996. — V.5(3). — P. 167−174.
  55. Braskett B.G., Baranska W., Sawicki W. et al. Uptake of heterologous genome by mammalian spermatozoa and its transfer to ova through fertilization//Proc. Natl. Acad. Sci. 1971. — V.68. — P.353−357.
  56. Brinster R.L., Avarbock M.R. Germline transmission of donor haplotype following spermatogonial transplantation//Proc. Natl. Acad. Sci. -1994a.- V.91. P. l 1303−11 307.
  57. Brinster R.L., Nagano M. Spermatogonial stem cell transplantation, cryopreservation and culture//Semin. Cell. Dev. Biol. 1998. — V.9(4). — P.401−409.
  58. Brinster R.L., Sandgren E.P., Behringer R.R., Palmiter A.F. No simple solution for making transgenic mice. 1989. — V.59. — P.239−241.
  59. Brinster R.L., Zimmerman W. Spermatogenesis following male germ-cell transplantation//Developmental biology. 1994b. — V.91. — P. l 129 811 302.
  60. Brokelmann J. Fine structure of germ cells and Sertoli cells during the cycle of the seminiferous epithelium in the rat//Ztschr. Zellforsch. 1963. -Bd.59. — S.820−850.
  61. Bucci L.R., Brock W.A., Johnson T.S., Meistrich M.L. Isolation and biochemical studies of enriched populations of spermatogonia and early spermatocytes from rat testis//Biology of Reproduction. 1986. — V.34. — P. 195 206.
  62. Cadoret J.P., Gendreau S., Delecheneau J.M. et al. Microinjection of bivalve eggs: application in genetics//Mol. Marine Biol. Biotech. 1997b. — V.6(l). — P.72−77.
  63. Capecchi M.R. High efficiency transformation by direct microinjection of DNA into cultured mammalian cells//Cell. 1980. — V.22(27). -P.9139−9143.
  64. Capecchi R.L. Science. 1989. — V.244. — P. 1288−1292.
  65. Capel B. The battle of the sexes//Mechanisms of Development. -2000.-V.92.-P.89−103.
  66. Castrillon D.H., Quade B J., Wang T.Y., Quigley C., Crum C.P. The human VASA gene is specifically expressed in the germ cell lineage//Proceedings National Academy of Sciences. 2000. — V.97. — P.9585−9590.
  67. Castro F.O. et al. Introduction of foreign DNA into the spermatozoa of farm animals//Theriogenology. 1990. — V.34. — P. 1099−1110.
  68. Chen C., Okayama H. High-efficiency transformation of mammalian cells by plasmid DNA//Mol. and Cell. Biol. 1987. — V.8(8). — P.2745−2752.
  69. Clermont Y. Kinetics of spermatogenesis in mammals: Seminiferous epithelium cycle and spermatogonial renewal//Physiol. Rev. 1972. — V.52. -P. 198−236.
  70. Clermont Y. The cycle of the seminiferous epithelium in man//Am. J. Anat.- 1963. V.112. — P.35−51.
  71. Clermont Y. Two classes of spermatogonial stem cells in thr monkey (Cercopithecus aethiops)//Am. J. Anat. 1969. — V.126. — P.57−72.
  72. Clermont Y., Bustos-Obregon E. Re-examination of spermatogonial renewal in the rat by means of seminiferous tubules mounted «in toto"//American J. of Anatomy. 1968. — V.122. — P.237−247.
  73. Clermont Y., Heimo L. Spermatogonial stem cells and their behavior in the seminiferous epithelium of rats and monkeys//In: Stem cells of renewing cell populanions//Acad. Press. 1976a. — P.273−287.
  74. Clermont Y., Mauger A. Effect of a spermatogonial chalone on the growing rat testis//Cell and Tissue Kinetics. 1976b. — V.9. — P.99−104.
  75. Clouthier D.E., Avarbock M.R., Maika S.D., Hammer R.L. Rat spermatogenesis in mouse testis//Nature. 1996. — V.381. — P.418−421.
  76. De la Fuente J., Castro F.O., Hernandez O. et al. Sperm mediated foreign DNA transfer experiments in different species//Presented at Biotech. USA, Ramada Renaissance Tech. Wored. Washington, DC. — November 27−29. — 1990. — P.247−262.
  77. De Miguel M.P., Cheng L., Holland E.C., Federspiel M.J., Donovan P.J. Dissection of the c-kit signaling pathway in mouse primordial germ cells by retroviral-mediated gene transfer//PNAS. 2002. — V.99. — P. 10 458−10 463.
  78. De Miguel M.P., de Boer-Brouwer M., Paniagua R., et al. Leukemia inhibitory factor and ciliary neurotropic factor promote the survival of Sertoli cells and gonocytes in a coculture system//Endocrinology. 1996. — V.137. — P. 18 851 893.
  79. De Miguel M.P., Donovan P.J. Determinants of Retroviral-Mediated Gene Delivery to Mouse Spermatogonia//Biol. of Reprod. 2003. — V.68. — P.860−866.
  80. De Rooij D.G. Proliferation and differentiation of spermatogonial stem cells//Reproduction. 2001. — V.121. — P.347−354.
  81. De Rooji D.G., Grootegoed J.A. Spermatogonial stem cells//Curr. Opin. Cell Biol. 1998. — V.10. — P.694−701.
  82. De Rooij D.G., Russel L.D. All yor wanted to know about spermatogonia but were afraid to ask//J. of Andrology. 2000. — V.21. — P.776−798.
  83. De Rooij D.G., van Dissel-Emiliani F.M.P. regulation of proliferation and differentiation of stem cells in the male germ line//Stem Cells. 1997. — P.283−313.
  84. Dirami G., Ravindranath N., Jia M.C., Dym M. Isolation and culture of immature rat type A spermatogonial stem cells in signal transduction in testicular cells//In Basic and Clinical Aspects. 1996. — P. 141−165.
  85. Dirami G., Ravindranath N., Pursei V., Dym M. Effects of ctem cell factor and granulocyte macrophage-colony stimulating factor on survival of porcine type A spermatogonia cultured in KSOM//Biol. Reprod. 1999. — V.61. -P.225−230.
  86. Dobrinski I., Avarbock M.R., Brinster R.L. Germ cell transplantation from large domestic animals into mouse testes//Molecular Reproduction and Development. 2000. — V.57(3). — P.270−279.
  87. Dobrinski I., Avarbock M.R., Brinster R.L. Transplantation of germ cells from rabbits and dogs into mouse testes//Biol. Reprod. 1999a. — V.61. -P.1331−1339.
  88. Dolci S., Pesce M., Felici M. de. Combined action of stem cell factor, leukemia inhibitory factor and cAMP on in vitro proliferation of mouse primordial germ cells//Mol. Reprod. Dev. 1993. — V.35 — P. — 134−139.
  89. Dym M., Clermont Y. Effects of x-rays on type A spermatogonia in the rat//Anat. Rec. 1967. — V.157 — P.238.
  90. Dym M., Clermont Y. Role of the spermatogonia in the repair of the seminiferous epithelium following X-irradiation of the rat testis//Amer. J. Anat. -1970.-V. 128.-P.265−282.
  91. Dym M., Jia M.-C., Dirami G., Price J.M. Expression of c-kit receptor and its autophosphorylation in immature rat type A spermatogonia//Biology of reproduction. 1995 — V.52. — P.8−19.
  92. Ewing L.L., Davis J.C., Zirkin B.R. Int. Rev. Physiol. 1980. — V.22.- P.41−115.
  93. Fechheimer M., Boylan J.F., Parker S. Transfection of mammalian cells with plasmid DNA by scrape loading and sonication loading//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. — V.84. — P.8463−8467.
  94. Feng L.X., Ravindranath N., Dym M. Stem cell factor/c-kit up-regulates cyclin D3 and promotes cell cycle progression via the phosphoinositide 3-kinase/p70 S6 kinase pathway in spermatogonia//!. Biol. Chem. 2000. — V.275.- P.25 572−25 576.
  95. Forster W., Neumann E. Gene transfer by electroporation//In: Electroporation and electrofusion in cell biology/Press. New York and London. -1989. P.299−318.
  96. Franca L.R., Ogawa T., Avarbock M.R., Brinster R.L., Russell L.D. Germ cell genotype controls cell cycle during spermatogenesis in the rat//Biol. Reprod. 1998. — V.59(6). — P. 1371−1377.
  97. Fransolini M. et al. Evidence for nuclear internalization of exogenous DNA into mammalian sperm cells//Mol. Reprod. and Dev. 1993. — V.34. — P. 133 139.
  98. Gahne M.B., Pothier F., Sirard M.A. Electroporation of bovine spermatozoa to carry foreign DNA in oocytes//Mol. Reprod. Dev. 1991. — V.29. -P.6−15.
  99. Gandolfi F. Spermatozoa, DNA binding and transgenic animals//Trasgenic Research. 1998. — V.7. — P. 147−155.
  100. Gendreau S., Lardans V., Cadoret J.P., Mialhe E. Transient expression of a luciferase reporter gene after ballistic introduction into Artemia franciscana (Crustacea) embrios//Aquaculture. 1995. — V.133. — P.199−205.
  101. Godin I., Deed R., Cooke J. et al. Effects of the steel gene product on mouse primordial germ cells in culture//Nature. 1991. — V.352. — P.807−809.
  102. Gruendbaum J., Revel E., Yarns S., Fainsod A. Sperm cells as vectors for generation of transgenic chickens//J. Cell Biochem. 1991. — Suppl.15. — P. 194.
  103. Hadley M.A., Byers S.W., Suarez-Quian C.A., Kleinman H.K., Dym M. Extracellular matrix regulates Sertoli cell differentiation, testicular cord formation, and germ cell development in vitro//J. of Cell Biology. 1985. — V.101. — P.1511−1522.
  104. Haneji T., Koide S.S., Nishimune Y., Oota Y. Dibutyryl adenosine cyclic monophosphate regulates differentiation of type A spermatogonia with vitamin A in adult mouse cryptorchid testis in vitro//Endocrinology. 1986. -V.l 19. — P.2490−2496.
  105. Haneji T., Koide S.S., Tajima Y., Nishimune Y. Differentia. effects of epidermal growth factor on the differentiation of type A spermatogonia in adult mouse cryptorchid testes in vitro//J. Endocrinol. 1991. — V.128. — P.383−388.
  106. Haneji T., Tibell A., Switzer W.M., Sandstrom P., Rosales G.V. et al. No evidence of infection with porcine endogenous retrovirus in recipients of porcine islet-cell xeno-grafts//Lancet. 1998. — V.352. — P.695−699.
  107. Hannah-Alava A. Premeiotice studies of spermatogenesis//Adv. Genet. 1965.-P.157−226.
  108. Hara T., Tamura K., de Miguel M.P., et al. Distinct roles of oncostatin M and leukemia inhibitory factor in the development of primordialgerm cells and Sertoli cells in mice//Dev. Biol. 1998. — V.l. — P.144- 153.
  109. Hasthorpe S., Barbie S., Farmer P.J., Hutson J.M. Growth factor and somatic cell regulation of mouse gonocyte-derived colony formation in vitro//J. of Reproduction and Fertility. 2000. — V. l 19. — P.85−91.
  110. Hasthorpe S., Barbie S., Farmer P.J., Hutson J.M. Neonatal mouse gonocyte proliferation assayed by an in vitro clonogenic method//J. of Reproduction and Fertility. 1999. — V. l 16. — P.335−344.
  111. Heckert L.L., Griswold M.D. Expression of follicle-stimulating hormone receptor mRNA in rat tesyes and Sertoli cells//Molecular Endocrinology. 1991. — V.5. — P.670−677.
  112. Heller C.G., Clermont Y. Kinetics of the germinal epithelium in man//Recent Progr. Hormone Res. 1964. — V.20. — P.545−571.
  113. Hericson B., Backstrom L. Translocation heterozygoty in a boar//Herditas. 1964. — V.52. — P. 166−170.
  114. Higashi T., Sasai H., Suzuki F. Hamster cell line suitable for transfection assay of transforming genes//Proc. Natl. Sei. 1990. — V.87. — P.2409−2413.
  115. Hochi S., Ninomiya T., Mizuno A., Honma M., Yuki A. Fate of exogenous DNA carried into mouse eggs spermatozoa//Anim. Biotech. 1990. -V.l. — P.21−31.
  116. Hochreau R. M.-T. de., Lincoln G.A. Seasonal variation in the red deer, Cervus elaphus//J. Reprod. Fertil. 1978. — V.54. — P.209−213.
  117. Holstein A.F. Organisation und Regulation der Gametenreifung//HVBG. 1999. — V.4. — P. 15−30.
  118. Honaramooz A., Megee S., Dobrinski I. Germ cells transplantation in pigs.-2001.-P. 1233−1247.
  119. Huckins C. Cell cycle properies of differentiating spermatogonia in adult Spraque-Dawley rats//Cell and Tissue Kinet. 1971a. — V.4. — P. 139−154.
  120. Huckins C. The morphology and kinetics of spermatogonial degeneration in normal adult rats: an analysis using a simplified classification ofthe germinal epithelium//Anat. Rec. 1978. — V.190. — P.905−926.
  121. Huckins C. The spermatogonial stem cell population in adult rats. I. Their morphology, proliferation and maturation//Anat. Rec. 1971b. — V.169. -P.533−558.
  122. Huckins C., Oakberg E.T. Morphological and quantitative analysis of spermatogonia in mouse testis using whole mounted seminiferous tubules//In the irradiated testis/Anat. Rec. 1978. — V.192. — P.529−542.
  123. Huguet E., Esponda P. Foreign DNA introduced into the vas deferens is gained by mammalian spermatozoa//Mol. Reprod. Dev. 1998. — V.51(l). -P.42−52.
  124. Hyttinen J.-M., Peura T., Tolvanen M., Aalto J., Alhonen L., Sinervirta R., Halmekyto M. Biotechnology. 1994. — V.12. — P.606−608.
  125. Izadyar F., K. den Ouden, Creemers L.B., Posthuma G., Parvinen M., Dirk G. de Rooij. Proliferation and Differentiation of Bovine Type A Spermatogonia During Long-Term Culture//Biol. of Reprod. 2003. — V.68. -P.272−281.
  126. Izadyar F., Spierenberg G.T., Creemers L.B., den Ouden K., Dirk de Rooij D.G. Isolation and purification of type A spermatogonia from the bovine testis//Reproduction. 2002. — V.124. — P.85−94.
  127. Izadyar F., van Dissel-Emiliani F., van Pelt A., de Rooij D.G. Spermatogonial stem cell transplantation/ZMolecular and Cellular Endocrinology. -2000.-V.169.-P.21−26.
  128. Jiang F.X. Behaviour of spermatogonia following recovery from busulfan treatment in the rat//Anat. Embryol. 1998. — V.198(l). — P.53−61.
  129. Johnson L. Review article: spermatogenesis and aging in the human//J. Androl. 1986. — V.7. — P.331−354.
  130. Johnson L. Spermatogenesis//Reproduction in Domestic Animals (4th edn. Academic Press, New York. 1991. — P. 173−219.
  131. Johnson L., Lebovitz R.M., Samson W.K. Germ cell degeneration in normal and microwave-irradiated rats: potential sperm production rates at different developmental steps in spermatogenesis//Anat. Rec. 1984a. — V.209. — P.501−507.
  132. Johnson L., Petty C.S., Neaves W.B. A new approach to quantification of spermatogenesis and its application to germinal cell attrition during human spermiogenesis//Biol. Reprod. 1981. — V.25. — P.217−226.
  133. Johnson L., Petty C.S., Porter J.C., Neaves W.B. Germ cell degeneration during postprophase of meiosis and serum concentrations of gonadotropins in young adult and older adult men//Biol. Reprod. 1984b. — V.31. -P.779−784.
  134. Johnson L., Varner D.D., Roberts M.E., Smith T.L., Keillor G.E., Scrutchfield W.L. Efficiency of spermatogenesis: a comparative approach//Anim. Reprod. Sci. 2000. — V.60−61. — P.471−480.
  135. Johnson L., Wilker C.E., Cerelli J.S. Spermatogenesis in the bull//Tech. Conf. Artif. Insem. Reprod. 1994. — V.15. — P.9−27.
  136. Kangasniemi M., Kaipia A., Toppari J., Perheentupa A., Huhtaniemi I., Parvinen M. Cellular regulation of FSH binding in rat seminiferous tubules//J. of Andrology. 1990. — V. l 1. — P.336−343.
  137. Kennelly J. J., Foote R.H. Sampling boar testes to study spermatogenesis quantitatively and to predict sperm production//J.Anim. Sci. -1964.-V.23.-P.160−167.
  138. Keulen C.J.G., Rooij M.F. de. The recovery from various gradations of cell loss in the mouse seminiferous epithelium and its implications for the spermatogonial cell renewal theory//Cell and tissue kinet. 1974. — V.7. — P.549−558.
  139. Khoo H.-W., Patil J., Chen E. Sperm-mediated gene transfer: a review//SEAMEO Jasper Fellowship Monograph 1993 Seriesl. 1993. — P.75−92.
  140. Kietsvenbaum A. Mammalian spermatogenesis in vivo and somatic cell lineages//End. Rev. 1994. — V.15. — P. l 16−134.
  141. Kim J.H., Jung-Ha H.S., Lee H.T. et al. Development of a positive method for male stem cell-mediated gene transfer in mouse and pig//Mol. Reprod. Dev. 1997. — V.46. — P.515−526.
  142. Kimura T., van Keymeulen A., Golstein J. et al. Regulation of thyroid cell proliferation by TSH and other factors: a critical evaluation of in vitro models//Endocrine Reviews. 2001. — V.22. — P.631−656.
  143. Klein T.M., Wolf E.D., Wu R. High velocity microprojectiles for delivering nuclei acids into living cells//Nature. 1987. — V.327. — P.70−73.
  144. Lauria A., Gandolfi F. Recent advances in sperm cell mediated gene transfer//Mol. Reprod. Dev. 1993. — V.36. — P.255−257.
  145. Lavitrano M., Camaioni A., Fasio V.M. et al. Sperm cells as vectors for introducing foreign Dna into eggs: genetic transformation of mice//Cell. 1989. -V.57.-P.717−723.
  146. Lavitrano M., Maione B., Forte E., Francolini M., Sperandio S. et al. The interaction of sperm cells with exogenous DNA a role of CD4 and major histocompatibility complex class II molecules//Exp. Cell Res. — 1997. — V.233. -P.56−62.
  147. Leblond C.P., Clermont Y. Definition of the stages of the cycle of the seminiferous epithelium in the rat//Ann. Y. Acad. Sci. 1952a. — V.52. — P.548−573.
  148. Leblond C.P., Clermont Y. Spermatogenesis of rat, hamster and guinea pig as revealed by the «periodic acid-fuchsin sulfurous acid» technigue//Am. J. Anat. 1952b. — V.90. — P. 167−215.
  149. Maione B., Lavitrano M., Spadafora C. et al. Sperm-mediated gene transfer in mice//Mol. Reprod. Dev. 1998. — V.50(4). — P.406−409.
  150. Marret C., Durand P. Culture of porcine spermatogonia: effects of purification of the germ cells, extracellular matrix and fetal calf serum on their survival and multiplication//Reprod. Nutr. Dev. 2000. — V.40(3). — P.305−319.
  151. Meachem S.J., McLachlan R.I., Stanton P.G., Robertson D.M., Wreford N.G. FSH immunoneutralisation acutely impairs spermatogonial development in normal adult rats//J. of Andrology. 1999. — V.20. — P.756−762.
  152. Meachem S.J., Schonfeldt V., Schlatt S. Spermatogonia: stem cells with a great perspective//Reprod. 2001. — V. 121(6). — P.825−834.
  153. Meachem S.J., Wreford N.G., Stanton P.G., Robertson D.M., McLachlan R.I. FSH is important for the initial phase of spermatogenic restoration in adult rats following gonadotrophin suppression//!, of Andrology. 1998. — V.19. — P.725−735.
  154. Meng X., Hyvonen M.E., Parvinen M. et al. Regulation of cell fate decision of undifferentiated spermatogonia by GDNF//Science. 2000. — V.287. -P. 1489−1493.
  155. Miller D.G., Adam M.A., Miller A.D. Gene transfer by retrovirus vectors occurs only in cells that are actively replicating at the time of infection//Mol. Cell. Biol. 1990. — V.10. — P.4239−4242.
  156. Morena A.R., Boitani C., Pesce M., Felici M. de, Stefanini M. Isolation of highly purified type A spermatogonia from prepubertal rat testis//J. Androl. 1996. — V.17. — P.708−717.
  157. Moses M.J. Synaptinamal complex//Annu. Rev. Genet. 1968. — V.2. -P.363−412.
  158. Moudgal N.R., Sairam N.R., Krishnamurthy N.H. et al. Immunization of male bonnet monkeys (M. radiata) with a recombinant FSH receptor preparation affects testicular function and fertility//Endocrinology. 1997. — V.138. — P.3065−3068.
  159. Muller F., Ivies Z., Eedelyi F., Papp T., Varadi L., Horvath L., Macleans N. Introducing foreign genes into fish eggs with electroporated sperm as a carrier//Mol. Marine Biol. Biotech. 1992. — V.l. — P.276−281.
  160. Muramatsu T., Shibata O., Ryoki S., Ohmori Y., Okumura J. Foreign gene expression in the mouse testis by localized in vivo gene transfer//Biochem. Biophys. Res. Commun. 1997. — V.233. — P.45−49.
  161. Nagano M., Avarbock M.R., Leonida E.B., Brinster C J., Brinster R.L. Culture of mouse spermatogonial stem cells//Tissue and Cell. 1998a. — V.30. -P.389−397.
  162. Nagano M., Brinster R.L. Spermatogonial transplantation and reconstitution of donor cell spermatogenesis in recipient mice//APMIS. 1998. -V.l06. -P.47−55.
  163. Nagano M., Brinster R.L., Orwig K.E., Ryu B.Y., Avarbock M.R., Brinster R.L. From the cover: transgenic mice produced by retrovular transduction of male germ-line stem cells//Proc. Natl.Acad. Sci. 2001. — V.98. — P. 1 309 013 095.
  164. Nagano M., Shinohara T., Avarbock M.R., Brinster R.L. Retrovirus-mediated gene delivery into male germ line stem cells//FEBS Lett. 2000. -V.475(l). — P.7−10.
  165. Nakanishi A., Iritani A. Gene transfer in the chicken by sper-mediated methods//Mol. Reprod. Dev. 1993. — V.36. — P.258−261.
  166. Naysmith T.E., Blake D.A., Harvey V.J., Johnson N.P. Do men undergoing sterilizing cancer treatments have a fertile future?//Human Reproduction. 1998. — V.13. — P.3250−3255.
  167. Niemann H., Rath D., Wrenzycki C. Advances in biotechnology: new tools in future pig production for agriculture and biomedicine//Reprod. Domest. Anim. 2003. — V.38(2). — P.82−89.
  168. Nocka K., Majumder S., Chabot B. et al. Expression of c-kit gene products in known cellular targets of W mutations in normal and W mutant mice-evidence for an impaired c-kit kinase in mutant mice//Genes Dev. 1989. — V.3. -P.816−826.
  169. Norman B. Gene expression during spermiogenesis/In:Cellular and molecular events in spermiogenesis. 1987. — P. 11−13.
  170. Oakberg E.F. A description of spermatogenesis in the mouse and its use in analysis of the cycle of the seminiferous epithelium and germ cell renewal//Am. J. Anat. 1956. — V.99. — P.391−413.
  171. Oakberg E.F. Spermatogonial stem cell reneval in the mouse//Anat. Rec. 1971. — V.169. — P.515−532.
  172. Oakberg E.F., Huckins C. Spermatogonial stem cell renewal in the mouse as revealed by H3-thymidine labeling and irradiation//In: Stem cells of renewing cell populations. 1976. — P.287−302.
  173. Ogawa T., Arechaga J.M., Avarbock M.R., Brinster R.L. Transplantation of testis germinal cells into mouse seminiferous tubules//International Journal of Developmental Biology. 1997. — V.41. — P. l 11 122.
  174. Ogawa T., Dobrinski I., Avarbock M.R., Brinster R.L. Leuorolide, a gonadotropin-releasing hormone agonist, enhances colonization after spermatogonial transplantation into mouse testes//Tissue Cell. 1998. — V.30(5). -P.583−588.
  175. Ogavva T., Dobrinski I., Avarbock M.R., Brinster R.L. Xenogeneic spermatogenesis following transplantation of hamster germ cells to mouse testes//Biol. Reprod. 1999a. — V.60. — P.515−521.
  176. Ogavva T., Dobrinski I., Avarbock M.R., Brinster R.L. Transplantation of male germ line stem cells restores fertility in infertile mice//Nature Medicine. -2000. V.6. — P.29−34.
  177. Ogawa T., Dobrinski I., Brinster R.L. Recipient preparation is critical for spermatogonial transplantation in the rat//Tissue Cell. 1999b. — V.31. — P.461−472.
  178. O' Hare M.J., Ormerod M.G., Imrie P.R. Electropremeabilization and electrosensitivity of different types of mammalien cells//In: Electroporation & electrofusion in cell biology. 1989. — P.319−330.
  179. Ohbo K.,, Yoshida S., Ohmura M. et al. Identification and characterization of stem cells in prepubertal spermatogenesis in mice small star filled//Dev. Biol. 2003. — V.258(l). — P.209−225.
  180. Ohta H., Yomogida K., Dohmae K., Nishimune Y. Regulation of proliferation and differentiation in spermatogonia stem cells: the role of c-kit and its ligand SCF//Development. 2000a. — V.127. — P.2125−2131.
  181. Ohta H., Yomogida K., Yamada S., Okabe M., Nishimune Y. Realtime observation of transplanted «green germ cells»: proliferation and differentiation of stem cells//Development Growth and Differentaition. 2000b. -V.42. — P. 105−112.
  182. Orsi A.M., Ferreira A.L. Definition of the stages of the cycle of the seminiferous epithelium of the opossum//Acta anat. 1978. — V.100. — P. 153−160.
  183. Ortavant R. Action de la duree d* eclairment sur les processus spermatogenetuques chez le Bolier//C. r. Soc. Boil. 1956. — V.150. — P.471−474.
  184. Ortavant R. Spermatogenesis and morphology of spermatozoon//In: Reproduction in domestic animals. 1959. — V.7. — P. 1−51.
  185. Parreira C.G., Ogawa T., Avarbock M.R., Franca L.R., Brinster L.R., Russel L.D. Development of germ cell transplants in mice//Biology of
  186. Reproduction. 1998. — V.59. — P.1360−1370.
  187. Passoni L., Mauri L., Luciano A., Pocar P., Ajmone-Marsan. et al. Sperm cells mediated gene transfer: presence of foreign DNAinto bovine blastocyst obtained from in vitro fertilization//A preliminary report. 1995. -P.427−428.
  188. Perry A.C., Wakayama T., Kishikawa H. et al. Mammalian transgenesis by intracytoplasmic sperm injection//Science. 1999. — V.284 (5417). -P.l 180−1183.
  189. Potten C.S., Loeffler M. Stem cells: attributes, cycles, spirals, pitfalls and uncertainties//Lessons for and from the crypt. 1990. — V. l 10. — P. 1001−1020.
  190. Potter H. Molecular genetic applications of electroporation//In: Electroporation & electrofusion in cell biology. 1989. — P.331−341.
  191. Pursel, V.G., Pinkert, C.A., Miller, K.F., Bolt, D.J., Campbell, R.G., Palmiter, R.D., Brinster, R.L., Hammer R.E. Science. 1989. — V.244. — P. 12 811 288.
  192. Radford J.A., Shalet S.M., Lieberman B.A. Fertility after treatment for cancer//British Medical Journal. 1999. — V.319. — P.935−936.
  193. Rassoulzadegan M., Binetruy B., Gusin F. High frequency of gene transfer after fusion between bacteria and eukaryotic cells//Nature. 1982. — V.295. — P.257−259.
  194. Regaud C. Etude sur la structure des tubes seminiferes et sur la spermatogenese chez les Mammiferes//Arch. anat. microsc. et morphol. exp. -1901.- V.4.-P.231−280.
  195. Reis M.M., Tsai M.C., Schlegel P.N., Feliciano M., Raffaelo R., Rosenwaks Z., Palermo D. Xenogeneic transplantation of human spermatogonia//Zygote. 2000. — V.8. — P.97−105.
  196. Rex A. Hess. Spermatogenesis//Biol. Reprod. 1999. — V.4. — P.539 545.
  197. Robertson E.J. Using embryonic stem cell to introduce mutations into the mouse germ line//Biol. Reprod. 1991. — V.44. — P.238−245.
  198. Rodriguez A., Castro F. O., Guillen J. et al. Exogenous cloned DNA can penetrate living sperm cells//Advances in Gene Technology: Feeding the World in the 21st Century. 1991. — P.53.
  199. Roosen-Runge E.C. The process of spermatogenesis in Animals//Cembridge Univ. Press. 1977. — P.326−335.
  200. Roosen-Runge E.C. The process of spermatogenesis in mammals//Biol. Rev. 1962. — V.37. — P.343.
  201. Roosen-Runge E. Untersuchungen uber die Degeneration samenbilden der Zellen in der normales Spermatogenese der Ratte//Zeit. Zellfarsch. 1955. -B.41. — S.221−235.
  202. Roosen-Runge E. C, Giesel L.O. Quantitave studies on spermatogenesis in the abbino rat//The Amer. J. Anat. 1950. — V.87(l). — P. l-30.
  203. Rose J.K., Buonocore L. and Whitt M.A. A new cationic liposome reagent mediating nearly quantitative transfection of animal cells//Biotechniques. -1991.- V.10.-P.520−525.
  204. Rossi P., Dolci S., Albanesi C., Ricca R., Geremia R. Follicle-stimulating hormone induction of steel factor (SLF) mRNA in mouse Sertoli cells and stimulation of DNA synthesis in spermatogonia by soluble SLF//Dev. Biol. -1993.-V.155.-P.68−74.
  205. Rossi P., Marziali G., Albanesi C. et al. A novel c-kit transcript, potentially encoding a truncated receptor, originates within a kit gene intron in mouse spermatids//Dev. Biol. 1992. — V.152. — P.203−207.
  206. Roth E., Smidt D. Untersuchungen zur Keimdrusenentwicklung bei mannlichen Veredelten Landschweinen//Zuchtungs kunde. 1970. — B.2. — S.144−160.
  207. Rottman O., Antes R., Hofer P., Maierhofer G. Liposomemediated gene transfer via spermatozoa into avian egg cells//J. Anim. Breed. Genet. 1991. -V.109. — P.64−70.
  208. Rottman O., Hoffer P. A method for transferring organic and inorganic substances to egg cells and somatic cells of animals and composition for use therein//World patent WO 87/5 325. 11.09.1987. P.227−236.
  209. Russel L.D., Ettlin R.A., Hikim A.P., Clegg E.D. Histological and Histopathological Evoluation of the Testis//Cache River Press. 1990. — P. 1−40.
  210. Russell L.D., Franca L.R., Brinster R.L. Ultrastructural observations of spermatogenesis in mice resulting from transplantation of mouse spermatogonia//.!. Androl. 1996. — V.17(6). — P.603−614.
  211. Ruysschaert J.-M., Ouahabi A., Willeaume V. A novel cationic amphiphile for transfection of mammalian cells//Biochem. and Bioph. Res. Comm. 1994. — V.203(3). — P. 1622−1628.
  212. Sato M., Iwase R., Kasai K., Tada N. Direct injection of foreign DNA into mouse testis as a possible alternative of sperm-mediated gene transfer//Animal Biotechnology. 1994. — V.5(l). — P. 19−31.
  213. Schlatt S., Rosiepen G., Weinbauer G.F., Rolf C., Brook P.F., Nieschlag E. Germ cell transfer into rat, bovine, monkey and human testes//Human Reproduction. 1999a. — V.14. — P. 144−150.
  214. Schlatt S., von Schonfeldt V., Schepers A.G. Male germ cell transplantation: an experimental approach with a clinical perspective//British Medical Bulletin. 2000. — V.56. — P.824−836.
  215. Schlatt S., Zhengwei Y., Meehan T., de Kretser D.M., Loveland K.L. Application of morphometric techniques to postnatal rat testes in organ culture: insights into testis growth//Cell and Tissue Research. 1999b. -V.298. — P.335−343.
  216. Schrans-Stassen B.H., van de Kant H.J., de Rooij D.G., van Pelt A.M. Differential expression of c-kit in mouse undifferentiated and differentiating type A spermatogonia//Endocrinology. 1999. — V. l40. — P.5894−5900.
  217. Seidel G. Embryo transfer: the next 100 years//Theriogenology. -1991. V.35(l). — P.171−180.
  218. Seidel G. Production of genetically identical sets of Mammals: Cloning//! Exp. Zool. 1983. — V.2. — P.228.
  219. Shamblott M.J., Axelman J., Wang S. et al. Derivation of pluripotent stem cells from cultured human primordial germ cells//Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1998. V.95. — P. 13 726−13 731.
  220. Shennawy E.I., Gates R.J., Russel L.D. Hormonal regulation of spermatogenesis in the hypophysectomized rat: cell viability after hormonal replacement in adults after intermediate periods of hypophysectomy//J. of Andrology. 1998. — V.19. — P.320−334.
  221. Shinohara T., Brinster R.L. Enrichment and transplantation of spermatogonial stem cells//Int. J. Androl. 2000. — V.23. — P.89−91.
  222. Singwi M.S., Lall S.B. Spermatogenesis in the non-scrotal bat Rhinopoma kinneari Wrongton//Acta anat. 1983. — V. l 16. — P. 136−145.
  223. Spadafora C. Sperm cells and foreign DNA: a controversial relation. Bioassays. 1998. — P.302−324.
  224. Sperandio S., Lulli V., Bacci M., Forni M., Maioni B. et al. Spermmediated DNA transfer in bovine and swine species//Anim. Biotech. 1996. — V.7.- P.59−77.
  225. Stewart C.L. Stem cells from primordial germ cells can reenter the germ line//Dev. Biol. 1994. — V.161. — P.626−628.
  226. Sugiyama N., Obinata M., Matsui Y. BCL-2 inhibits apoptosis of spermatogonia and growth of spermatogenic stem cells in a cell-intrinsic manner//Mol. Reprod. And Development. 2001. — V.58. — P.30−38.
  227. Swierstra E.E., Foote R.H. Cytology and kinetics of spermatogenesis in the rabbit//J. Reprod. Fertil. 1963. — V.5. — P.309−322.
  228. Swierstra E.E., Gebauer M.R., Pickett B.W. Reproductive physiology of the stallion: I. Spermatogenesis and testis composition//J. Reprod. Fertil. 1974.- V.40.-P.113−123.
  229. Takai T., Ohmori H. DNA transfection of mouse lymphoid cells by the combination of DEAE-dextran-mediated DNA uptake and osmotic shock procedure//Bioch. and Biophs. Acta. 1990. — V.1048. — P. 105−109.
  230. Tan J.C., Nocka K., Ray P., Traktman P., Besmer P. The dominant W42 spoting phenotype results from a missence mutation in the c-kit receptor kinase//Science. 1990. — V.247. — P.209−212.
  231. Tegelenbosch R.A., de Rooij D.G. A quantitative study of spermatogonial multiplication and stem cell renewal in the C3H/101F1 hybrid mouse//Mutation Research. 1993. — V.290. — P. 193−200.
  232. Totzke F., Marme D., Hug H. Inducible expression of human phospholipase C-V2 and its activation by platelet-derived growth factor A-chain homodimer in transfected NIH3T3 fibroblasts//Eur. J. Biochem. 1992. — V.203. -P.633−639.
  233. Tsai H.J., Lai C.H., Yang H.S. Sperm as a carrier to introduce an exogenous DNA fragment into the oocyte of Japanese abalone (Haliotis divorsicolor suportexta)//Transgenic Res. 1997. — V.6(l). — P.85−95.
  234. Uckert W., Walther W. Retro virus-mediated gene transfer in cancer therapy//Pharmac. Ther. 1994. — V.63. — P.323−247.
  235. Van der Kooy D., Weiss S. Why stem cells?//Science. 2000. — V.287.- P.1439−1441.
  236. Van der Wee K., Johnson E.W., Dirami G., Dym M., Hofmann M.C. Immunomagnetic isolation and long term culture of mouse type A spermatogonia//J. of Andrology. 2001. — V.22. — P.697−704.
  237. Van Pelt A.M.M., Morena A.R., Van Dissel-Emiliani F.M.F., Boitani C., Gaemers I.C., de Rooij D.G., Stefanini M. Isolation of the synchronized A spermatogonia from adult vitamin A-deficient rat testes//Biology of Reproduction.- 1996. V.55. — P.439−444.
  238. Vergouwen R.P., Jacobs S.G., Huiskamp R., Davids J.A., de Rooij D.G. Proliferative activity of gonocytes, Sertoli cells and interstitial cells during testicular development in mice//J. Reprod. Fertil. 1991. — V.93. — P.233−243.
  239. Von Schonfeldt V., Krishnamurthy H., Foppiani L., Schlatt S. Magnetic cell sorting as a fast and afficient method of enriching viable spermatogonia from rodent and primate testes//Biology of Reproduction. 1999. -V.61. — P.582−589.
  240. Watt F.M., Hogan B.L. Out of Eden: stem cells and their niches//Science. 2000. — V.287. — P. 1427−1430.
  241. Wheeler M.B. Development and validation of swine embryonic stem cells: a review//Reprod. Fertil. Dev. 1994. — V.6. — P.563−568.
  242. Wreford N.G. Theory and practice of stereological techniques applied to the estimation of cell number and nuclear volume in the testis//Microscopy Research and Technique. 1995. — V.32. — P.423−436.
  243. Wrobel K.H. Prespermatogenesis and spermatogoniogenesis in the bovine testis//Anatomy and Embryology. 2000. — V.202. — P.209−222.
  244. Xie T., A.C. Spradling. A niche maintaining germ line stem cells in the Drosophila ovary//Science. 2000. — V.290. — P.328−330.
  245. Yamazaki Y., Fujimoto H., Ando H. et al. In vivo gene transfer to mouse spermatogenic cells by deoxyribonucleic acid injection into seminerous tubules and subsequent electroporation//Biol. Reprod. 1998. — V.59. — P. 14 391 444.
  246. Yamazaki Y., Yagi T., Ozaki T., Imoto K. In vivo gene transfer to mouse spermatogenic cells using green fluorescent protein as a marker//J. Exp. Zool. 2000. — V.286(2). — P.212−218.
  247. Yarden Y., Kuang W.-J., Yang-Feng N. et al. Human proto-oncogene c-kit: a new cell surfase receptor tyrosine kinase for an unidentified ligand//EMBO J. 1987. — V.6. — P.3341−3351.
  248. Yin Y., Stahl B.C., DeWolf W.C., Morgentaler A. p53-mediated germ cell quality control in spermatogenesis//Dev. Biol. 1998. — V.204. — P.165−171.
  249. Yoshinada K., Nishikawa S., Ogawa M. et al. Role of c-kit in mouse spermatogenesis: identification of spermatogonia is a specific site of c-kit expression and fimction//Development. 1991. — V.113. — P.689−699.
  250. Yu Z., Guo R., Ge Y. et al. Gene expression profiles in different stages of mouse spermatogenic cells during spermatogenesis//Biol. Reprod. 2003. — V.69(l).-P.37−47.
  251. Zandrum B., Shettles M.D. Diploid nuclear replacement in mature human ova with cleavage//Am. J. Obstet. Gynecol. 1979. — V. 133. — P.222−224.
  252. Zelenin A.V., Titomirov A.V., Kolesnikov V.A. Genetic transformation of mouse cultured cells with help of high velocity mechanical DNA-injection//FEBS Letters. 1989. — V.244. — P.65−67.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!