Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Технология генотипирования на основе микросателлитного анализа в селекции рапса

Диссертация: Технология генотипирования на основе микросателлитного анализа в селекции рапса
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Разработанная технология генотипирования на основе микросателлитного анализа позволяет надежно различать сорта рапса, выявлять генетическую однородность селекционного материала и осуществлять контроль передачи генетического материала от родительских форм в гибриды. Технология предназначена для решения таких селекционных задач, как определение однородности исходного материала для селекции, подбор… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. Рапс как важная сельскохозяйственная культура и современные подходы в селекции рапса (литературный обзор)
    • 1. 1. Народнохозяйственное значение и распространение рапса (Brassica napus L.)
    • 1. 2. Происхождение рапса
    • 1. 3. Морфобиологические особенности рапса
      • 1. 3. 1. Морфологические признаки рапса
      • 1. 3. 2. Биологические особенности рапса
      • 1. 3. 3. Биология цветения и оплодотворения рапса
    • 1. 4. Генетика рапса
    • 1. 5. Селекция рапса
      • 1. 5. 1. Направления селекции рапса
      • 1. 5. 2. Методы селекции
      • 1. 5. 3. Задачи селекции рапса
        • 1. 5. 3. 1. Подбор исходного селекционного материала
        • 1. 5. 3. 2. Оценка новых форм: однородность, гибридность
    • 1. 6. Идентификация и регистрация сортов
    • 1. 7. Применение молекулярно-генетических маркеров в селекции
      • 1. 7. 1. ПДРФ-маркеры
      • 1. 7. 2. RAPD-маркеры
      • 1. 7. 3. AFLP-маркеры
      • 1. 7. 4. ISSR-маркеры
      • 1. 7. 5. SSR-маркеры
  • ГЛАВА 2. Материалы и методы
    • 2. 1. Материалы и реактивы
    • 2. 2. Приборы и методы
    • 2. 3. Общие методики
      • 2. 3. 1. Выращивание растений
      • 2. 3. 2. Выделение геномной растительной ДНК
      • 2. 3. 3. Выделение плазмидной ДНК
      • 2. 3. 4. Полимеразная цепная реакция
      • 2. 3. 5. Электрофорез в агарозном геле
      • 2. 3. 6. Электрофорез в полиакриламидном геле
      • 2. 3. 7. Визуализация ДНК в полиакриламидном геле с помощью нитрата серебра
      • 2. 3. 8. Анализ флуоресцентно-меченых ПЦР-фрагментов
      • 2. 3. 9. Приготовление маркера длины pUC 18/MspI
      • 2. 3. 10. Проведение ферментативных реакций
      • 2. 3. 11. Клонирование амплифицированных фрагментов ДНК
      • 2. 3. 12. Трансформация и анализ клонов
      • 2. 3. 13. Анализ клонов с помощью ПЦР-амплификации
      • 2. 3. 14. Секвенирование ДНК-матриц по Сэнгеру
      • 2. 3. 15. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей микросателлитных фрагментов
  • ГЛАВА 3. Технология микросателлитного анализа в селекции рапса (В. napus
    • L. ) (обсуждение результатов)
      • 3. 1. Генотипирование сортов рапса методом микросателлитного анализа
        • 3. 1. 1. Разработка оптимального набора праймеров для генотипирования сортов рапса
        • 3. 1. 2. Исследование полиморфизма микросателлитных локусов сортов рапса
        • 3. 1. 3. Оценка генетической однородности сортов рапса
        • 3. 1. 4. Исследование гомозиготности самоопыленных линий
        • 3. 1. 5. Установление родства между сортами рапса
      • 3. 2. Паспортизация сортов рапса на основе микросателлитных маркеров
      • 3. 3. Оценка генетической однородности гибридов рапса, полученных на основе однородных и неоднородных сортов
      • 3. 4. Оценка генетической однородности реципрокных гибридов рапса
      • 3. 5. Исследование передачи генетического материала родительских форм в гибриды

Технология генотипирования на основе микросателлитного анализа в селекции рапса (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Рапс является одной из самых востребованных масличных культур, как на российском, так и на мировом рынке. Рапс имеет более дешевую себестоимость возделывания, растет при относительно низкой температуре и может возделываться в севообороте с короткой ротацией. Это ценная кормовая культура, которая используется как в виде зеленых кормов, так и в виде шрота в комбикормах. Рапс является замечательным предшественником для других сельскохозяйственный культур, который улучшает агрофизический и фитосанитарный состав почвы. Рапсовую солому широко используют для сельскохозяйственных нужд и в целлюлозно-бумажной промышленности.

Рапс (Brassica napus L., Brassica napus ssp. oleifera Metzg., 2n=38) — однолетнее озимое или яровое растение семейства крестоцветные (капустные) с геномом ААСС. Возник от естественного скрещивания примерно в 1680 г. капусты листовой (В. oleracea, 2п=18, геном СС) и сурепицы (В. campestris, 2п=20, геном АА) с последующим удвоением хромосом. В умеренных широтах по выходу технического масла с гектара не имеет себе равных (его можно использовать в пищу после рафинирования и удаления веществ, придающих неприятный привкус). В последние годы созданы формы и сорта ярового и озимого рапса с высоким качеством масла, не содержащие глюкозинолатов и эруковой кислоты.

Современные селекционные программы направлены на выведение высокоурожайных сортов рапса с улучшенным соотношением жирных кислот (увеличение содержания олеиновой и линолевой кислот при уменьшении линоленовой кислоты максимум до 3%), а также крупносеменных сортов с повышенной масличностью, устойчивых к болезням и полеганию [Карпачёв, 2005].

Основой любой селекционной программы является исходный материал. От степени разнообразия такого материала, его генетической изученности в решающей степени зависит успех селекционной работы. Естественное внутривидовое генетическое разнообразие рапса сравнительно невелико. Лучшие современные сорта рапса имеют очень узкую генетическую основу, так как в селекции на качество используют одни и те же источники низкого содержания эруковой кислоты и глюкозинолатов. В связи с этим необходимо вести тщательную оценку исходного материала по комплексу хозяйственно-ценных признаков.

Поэтому актуальной задачей в последнее время становится различение сортов рапса на генетическом уровне. Идентифицировать сорт (генотип, гибрид, линию, клон) — значит гарантированно узнать его с использованием данного метода в любой ситуации. Для этого надо иметь каталоги и базы данных, охватывающие генетическое разнообразие культуры или в целом вида. Надежный метод записи спектров ДНКпринципиальный элемент любой стандартной системы идентификации и регистрации сортов по молекулярным маркерам [Молекулярно-биологические аспекты прикладной ботаники, генетики и селекции. Теоретические основы селекции. Том 1. (под ред. В.Г.Конарева) 1993]. Только в этом случае возможен обмен данными между контролирующими лабораториями независимо от их принадлежности (генные банки, коммерческие и государственные контрольно-семенные лаборатории и т. п.) [International Rules for Seed Testing, 1996].

Для эффективного решения различных задач современной селекции, таких как идентификация, паспортизация и сертификация сортов, поддержание генетических коллекций, составление родословных, защита интеллектуальной собственности, подбор родительских пар при скрещивании, контроль передачи генетического материала наиболее перспективным методом генетического анализа является метод анализа полиморфизма микросателлитных последовательностей, позволяющий получить индивидуальную характеристику отдельного генотипа — ДНК-профиль. Микросателлиты отличаются широким и достаточно равномерным распределением по геному и очень высоким уровнем полиморфизма.

Целью данной диссертационной работы являлась разработка технологии генотипирования сортов рапса на основе анализа полиморфизма микросателлитов с последующим ее применением в селекции рапса.

выводы.

1. Разработана технология генотипирования сортов рапса (В. парив) на основе анализа полиморфизма микросателлитов. По результатам анализа 79 генотипов предложен оптимальный набор из 15 пар праймеров для генотипирования сортов рапса.

2. С помощью микросателлитного анализа проведена оценка генетической однородности коллекции сортов рапса отечественной и зарубежной селекции. Из 79 исследованных сортов в качестве родительских форм отобраны 18 однородных сортов для дальнейшей селекции.

3. Показано, что технология микросателлитного анализа позволяет осуществлять контроль генетической однородности гибридов рапса. С помощью микросателлитного анализа было отобрано 7 однородных гибридных комбинаций.

4. Установлено, что предлагаемая технология микросателлитного анализа позволяет осуществлять контроль передачи генетического материала родительских форм в гибриды при межсортовых скрещиваниях.

5. В результате анализа первичной структуры ряда микросателлитных локусов установлено, что их полиморфизм определяется количеством тандемных повторов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Разработанная технология генотипирования на основе микросателлитного анализа позволяет надежно различать сорта рапса, выявлять генетическую однородность селекционного материала и осуществлять контроль передачи генетического материала от родительских форм в гибриды. Технология предназначена для решения таких селекционных задач, как определение однородности исходного материала для селекции, подбор родительских пар для скрещивания, контроль гибридности, регистрация новых сортов, контроль генетической подлинности сортов и защита авторских прав селекционеров.

Предлагаемая технология микросателлитного анализа сортов рапса разработана на основе современных методологических подходов, позволяющих значительно ускорить скрининг большого числа растительных образцов и повысить воспроизводимость результатов. В результате проведенной работы нами был отобран ряд информативных микросателлитных локусов для надежного различения сортов рапса и оптимизированы условия их амплификации.

Разработанные микросателлитные маркеры, позволяющие отслеживать передачу генетического материала родительских форм в гибриды, рекомендуется использовать для селекции рапса.

Показать весь текст

Список литературы

  1. С.Н. Получение гибридов рапса и горчицы на основе гетеростильных форм. Бюл. науч.-техн. информации по масличным культурам. — 1972. Вып. 4. — С. 2226.
  2. A.B., Гаврилова В. А., Дубовская А. Г. Полнее использовать генофонд рапса и сурепицы // Масличные культуры. — 1984. — № 4. — С. 30−33.
  3. Ю.В. Технология генотипирования культурных и дикорастущих форм Brassica на основе анализа полиморфизма микросателлитов: Автореф. Дис. на соиск. уч. степ. канд. биол. наук. М.: ВНИИ с.-х. биотехнол. 2006. — С. 24.
  4. М., Никитина В. Изучение рапса. // ВНИИМК. 1991. — С. 14−18.
  5. И.В. Рапс. — М.: Агропромиздат. 1989. — С. 44.
  6. И.В., Киселев A.M. Пути увеличения производства кормов и растительного масла. // Кормопроизводство. 1997. — № 4.
  7. А. Рапсъ, Brassica napus oleifera II Культура масличных и волокнистых растений. — СПб. 1901. — № 19. — С. 3−57.
  8. А.Н., Дроздов В. Б., Иванов Е. С., Блохин В. Н., Самохвалов Т. П., Демидова Е. Е., Карпачёв В. В., Калягин Ю. С., Савенкова J1.M., Кукушкин В. А., Нарижный И. Ф. Опыление рапса ярового медоносными пчёлами. / Рыбное. 1991. — С. 23.
  9. Н.И. Теоретические основы селекции. — М.: Наука. 1987. — С. 511.
  10. И.И. Увеличение производства зернобобовых, фуражных, масличных культур и повышения их качества. — М. 1988. — С. 92.
  11. Н.С. Технология генотипирования картофеля и его дикорастущих сородичей на основе микросателлитного анализа: Автореф. дис. на соиск. уч. степ, канд. биол. наук. М.: ВНИИ с.-х. биотехнол. — 2006. — С. 22.
  12. Н.В. Селекция озимой пшеницы на устойчивость к ржавчине. В кн.: «Вопросы методики селекции пшеницы и кукурузы». Харьков. — 1957.
  13. В.Т. Рапс: все возможности в наличии. // Новое сельское хозяйство. -2008. № 2. — С. 64−77.
  14. A.A. и др. Рапс, сурепица. — М.: Колос. 1983. — С. 3−20.
  15. С. В. Наследование содержания эруковой кислоты в семенах ярового рапса: Автореф. дис. канд. биол. наук. — JI. 1989.
  16. H.H., Делоне JI.H. Курс генетики. Сельхозгиз. М. — 1938.
  17. Г. В., Дубинин А. П. Селекция и семеноводство полевых культур с основами генетики. -М., Колос. 1969. — С. 487.
  18. А. Местопроисхождение возделываемых растений. Пер. под ред. X. Гоби.-СПб. — 1885.-С. 490.
  19. Н.Ф. Методы хлопкового семеноводства в Средней Азии. // «Труды Всесоюзного совещания по генетике, селекции. Семеноводству и племенному животноводству». т. V. -JL — 1930.
  20. С.И. Введение в селекцию сельскохозяйственных растений. Госиздат. -М. Л. — 1930.
  21. E.H., Карпачев В. В. Получение ресинтезированных форм ярового рапса с целью селекции на желтосемянность и жирнокислотность масла. // С.-х. биология. Сер. биол. раст. 1996. — № 5.
  22. Закон РФ «О селекционных достижениях от 6 августа 1993 г., № 5606−1.
  23. С.И. Роль материнского растения в формировании наследственности у гибридов. // Агробиология. № 2. — 1946.
  24. B.B. Научное обеспечение отрасли рапсосеяния: итоги и задачи на 2006 2010 годы. / Рапс — культура XXI века: аспекты использования на продовольственные, кормовые и энергетические цели. — Липецк. — 2005. — С. 4 — 11.
  25. В.В. Рапс яровой. Основы селекции: монография. ГНУ ВНИПТИ рапса — Липецк. — 2008. — С. 236.
  26. Г. Д. Полиплоидные гибриды Raphanus sativus L. х Brassica oleracea L. // Классики советской генетики. — Л.: Наука. Ленингр. отд-ние. 1968. — С. 461 511.
  27. Ф.Г. Методы и результаты работ по селекции озимой пшеницы. В кн.: «Вопросы методики селекции пшеницы и кукурузы». Харьков — 1957.
  28. Н.Э., Сиволап Ю. М. Идентификация и регистрация генотипов кукурузы при помощи молекулярных маркеров. // Генетика. 2004. — Т. 40. — № 1. — С. 59−66.
  29. H.A. Рапс // Практикум по селекции и семеноводству полевых культур. — М.: Агропромиздат. 1987. — С. 284−289.
  30. H.A. Селекция рапса и сурепицы: Лекция / МСХА. — М. 1989. — С.20.
  31. B.C., Шпота В. И., Бек Т.В. Классификатор вида Brassica napus L. (рапс) / ВИР. — Л. 1983. — С. 20.
  32. Л.А., Моргун В. В. Анализ генотипической структуры сортов озимой мягкой пшеницы, возделываемых в Украине, по белковым и ДНК-маркерам. // Аграр. Россия. 2008. — № 3. — С. 6−13.
  33. П.И. Избранные сочинения. / Сельхозгиз. М. — т. 2. — 1953. Лукьяненко П. П. О влиянии материнской формы на зимостойкость межвидовых гибридов пшеницы. //Яровизация. — № 3 — (36) — 1941.
  34. Д.Р. Исходный материал для селекции рапса и сурепицы яровой в Северном Зауралье: Автореф. дис. канд. с.-х. наук. —Л. 1990. — С. 18.
  35. И.Л., Антоненко А. Ф. Действие химических мутагенов на хозяйственно ценные признаки у ярового рапса и устойчивость к главнейшим болезням // Защита растений в условиях интенсивного сельскохозяйственного производства. — Киев, 1987.1. С. 39−42.
  36. А.Ф. Проблема доноров в селекции пшеницы. // Бюл. ВНИИР. -1982. -Вып. 122. С. 3−7.
  37. А.Ф. Проблема доноров в селекции растений. Вавиловское наследие в современной биологии. М.: Наука. — 1989. — С. 368.
  38. А.Ф. Система генетического изучения исходного материала для селекции растений: Метод, указания. Л.: ВИР. 1984. — С. 70.
  39. Н.З., Абрамов В. Ф. Технология выращивания и использования рапса и сурепицы. М.: Агропромиздат. -1989. — С. 223.
  40. Молекулярно-биологические аспекты прикладной ботаники, генетики и селекции // Теоретич. основы селекции / Под ред. В. Г. Конарева. — М.: Колос. 1993.1. Т. I. — С. 447.
  41. A.A. Технологические особенности андрогенеза пыльников in vitro рапса ярового. // Науково-техшчний бюлетень 1нституту олшних культур УААН.-Запор1жжя. 2009. — С. 44−51.
  42. И.Ф. Экономика производства и использования рапса. — М: Росагропромиздат. 1991. — С. 190.
  43. В.Н. Современные направления селекции ярового рапса в Канаде // МС Агропроминформ. — М., 1991. — № 5. — С. 12−19.
  44. Ю.Ф. Коэффициенты биоконверсии. — М: Агропромиздат. 1989. —1. С. 189.
  45. Г. М. Новый сорт ярового рапса СибНИИК-198: Информ. листок / Новосиб. ЦНТИ. — 1994. — № 352−94. — С. 1−2.
  46. Г. М. Рапс в Сибири (Морфологические, генетические и селекционные аспекты). Новосибирск: СибНИИК. — 1998. — С. 168.
  47. Основы селекции и семеноводства гибридной кукурузы. / Под ред. Б. П. Соколова. М.: «Колос». — 1968 — С. 495.
  48. К.И. Введение в сортоводство. Вып. 1. Госиздат. М. — 1921. Пустовойт B.C. Методы работы в области выведения высокомасличных сортов подсолнечника. // Тр. Всесоюзного методического совещания по масличным культурам. — Краснодар. — 1946.
  49. B.C. Подсолнечник. Краткий отчет о научно-исследовательской работе за 1950 г. Всесоюзн. н.-и. ин-т масличных культур. Краснодар -1951.
  50. В.Г. Возделывание рапса и сурепицы. Киев: Земледелие. — 1892.1. С. 61.
  51. E.H. Историческая география культурной флоры. — JL: Колос. Ленингр. отд-ние. 1969. — С. 480.
  52. E.H. Масличные и корнеплоды сем. Cruciferae. Тр. прикл. бот., т. XIX. -№ 3.- 1926.-С. 647.
  53. E.H. Масличные и корнеплоды семейства Cruciferae L. — Л.: Изд-во народов СССР. 1928. — С. 647.
  54. E.H. Проблема популяций у высших растений. Л. 1963. — С. 123.
  55. Л. Перспективы комплексного использования рапса (зарубежный и отечественный опыт) // Междунар. с.-х. журн. — 1996. —№ 1. — С. 50—52.
  56. А.Е., Саналатий A.B., Сиволап Ю. М. Идентификация генотипов подсолнечника с помощью микросателлитных маркеров. // Цитология и генетика. -2004. Т. 38. -№ 2. — С. 15−19.
  57. Л.С. и др. Использование рапса на корм: Метод, рекомендации.— М.: Агропромиздат. 1988. — С. 28.
  58. В.В. Государственное сортоиспытание и его выводы по отношению к стандартизации, селекции и семеноводству. // Тр. Всесоюзного съезда по генетике, селекции, семеноводству и племенному животноводству. Т. V. — Л. — 1930.
  59. К.А. Исторический метод в биологии. Избранные сочинения. Т. 3. Сельхозгиз, М. 1949.
  60. Н.В. О смешанной наследственности и соматическом расщеплении у гибридных растений. //Яровизация. № 2. -1941.
  61. Характеристики сортов растений, впервые включенных в 1994 году в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию / МСХиП РФ. Госкомиссия по испытанию и охране селекционных достижений. — М. -1994, —С. 67−68.
  62. В.Н., Лисицын П. И. Общая селекция и семеноводство полевых культур. Сельхозгиз. М. — Л. -1931.
  63. Н.В. Отдаленная гибридизация растений. Сельхозгиз. М. — 1954.
  64. Ю.В. ДНК-фингерпринтинг и анализ генетического разнообразия у растений.// Сельскохозяйственная биология. 2005. — № 1. — С. 20−40.
  65. B.C. Об итогах научной деятельности Отделения растениеводства и селекции РАСХН и задачах на 1997 год. // Селекция и семеноводство. — 1997. — № 1.1. С. 9.
  66. X. Селекция растений. Пер. с нем. и под ред. канд. биол. наук Ю. Л. Гужова. М., «Колос» 1973 — С. 295.
  67. В. И. Подколзина В.Е. Результаты селекции горчицы и рапса на качество масла // Селекция и семеноводство масличных культур: Сб. науч. работ. / ВНИИМК. — Краснодар 1980. —С. 114−121.
  68. В.И., Бочкарева Э. Б. Селекция желтосемянных сортов сурепицы и рапса // Докл. ВАСХНИЛ. — 1990. — № 10. — С. 25−28.
  69. А.Ф. К вопросу выбора материнского растения при гибридизации. // Селекция и семеноводство. 1939. — № 9.
  70. А.Ф., Манзюк В. Т. Влияние родительских сортов и условий воспитания на жизненность гибридного потомства яровой пшеницы. // Агробиология. -1955.-№ 4.
  71. В .Я., Кучумов П. В., Линник Г. Н., Вольф В. Г., Никулин Б. Т. Общая селекция и семеноводство полевых культур. / Сельхозгиз. М. — 1955.
  72. Adams Н., Vaughan JG., Fenwick GR. The use of glucosinolates for cultivar identification in swede, Brassica napus (L.) var napobrassica (L.). Peterm. // J. Sei Food Agr.- 1989.-V. 46.-P. 319−324.
  73. Ai Cheng-xiang, Xin Li, Zhang Li-si, Wei Hai-rong, Yuan Ke-jun, Sun Qing-rong, Jin Song-nan, Liu Qing-zhong. Phylogenetic relationships among cherry genotypes using microsatellite markers. // Guoshu xuebao=J. Fruit Sei. 2007. — 24. — № 4. — C. 460−465.
  74. Akagi H., Yokozeki Y., Inagaki A., Fujimura T. Microsatellite DNA markers for rice chromosomes. II Theor. Appl. Genet. 1996. — V. 93. — P. 1071−1077.
  75. Akkaya M.S., Shoemaker R.C., Specht J.E., Bhagwat A.A., Gregan P.B. Integration of simple sequence repeats (SSR) markers into a soybean linkage map. // Crop Sei. 1995. — V. 35. — P. 1439−1445.
  76. Aldrich P.R., Jagtap M., Michler C.H., Romero-Severson J. Amplification of North American red oak microsatellite markers in European white oaks and Chinese chestnut. // Silvae genet. 2003. — 52. — № 3−4. — P. 176−179.
  77. Amarasinglhe Vindhya, Carlos John E. The development of microsatellite DNA markers for genetic analysis in Douglas-fir. II Can. J. Forest Res. 2002. — 32. — № 11. — P. 1904−1915.
  78. Amos B., Schlotterer C., Tautz D. Social structure of pilot whales revealed by analytical DNA profiling. II Science. 1993. — V. 260. — P. 670−672.
  79. Andersson G., Olsson G. Cruciferen — Olpflanzen. I. Raps (B. napus L.ssp. oleifera) // Handbuch Pflanzenziichtg. V, 2 Auflag. — Berlin und Hamburg: Verlag Parey. 1961. — P. 5−49.
  80. Anthony F., Combes M.C., Astorga C., Bertrand B., Graziosi G., Lashermes P. Theorigin of cultivated Coffea arabica L. varieties revealed by AFLP and SSR markers. // Theor. and Appl. Genet. K3. 2002. — V. 104. — № 5. — C. 894−900.
  81. Appelqvist L.-A., Ohlson R. Rapeseed Cultivation, Composition, Processing and Utiluzation. / Amsterdam: Elsevier. 1972.
  82. Arber W. Promotion and limitation of genetic exchange // Science. 1979. — V. 205.1. P. 361 -365.
  83. Areshchenkova T., Ganal M.W. Long tomato microsatellites are predominantly associated with centromeric regions. // Genome. 1999. — V. 42. — P. 536−544.
  84. Ashkenazi V., Chani E., Lavi U. et al. Development of microsatellite markers in potato and their use in phylogenetic and fingerprinting analyses. // Genome. 2001. — V. 44. — P. 50−62.
  85. Bao Lu, Zhang Dong, Teng Yang-Wen, Chen Kun-Song. Mapping of simple sequence repeat loci in Pyrus. II Guoshu xuebao = J. Fruit Sci. 2006. — V. 23. — № 2. — P. 270−275.
  86. Bengtsson L. Improvement of rapeseed meal quality through breeding for high protein content.-Svalov: Sweden, 1985.—P. 122.
  87. Bjerg B. et al. Metabolism of glucosinolates // Proc. 7th Intern. Rapeseed Congr. — Poland, Poznan, 1987. —V. 2. — P. 496−506.
  88. Botstein D., White R.L., Skolnick M., Davis R.V. Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphisms. // Amer. J. Hum. Genet. 1980. — V.32.-P.314.
  89. Brookes A.J. The essence of SNPs. // Gene. 1999. — V.234. — N.2. — P. 177.
  90. Broun P., Tanksley S.D. Characterization and genetic mapping of simple repeat sequences in the tomato genome. // Mol. Gen. Genet. 1996. — V. 250. — P. 39−49.
  91. Buntjer, J. B., M. Otsen, I. J. Nijman, M. T. R. Kuiper, and J. A. Lenstra. Phylogeny of bovine species based on AFLP fingerprinting. // Heredity. 2002. — V.88. — P. 46−51.
  92. Caetano-Anolles G., Bassam B.J., Gressho P.M. DNA amplification fingerprinting using very short arbitrary oligonucleotide primers // Biotechnology.(N Y). 1991. — V. 9. — № 6. — P. 553−557.
  93. Charters Y.M., Robertson A., Wilkinson M. J., Ramsay G. PCR analysis of oilseed rape cultivars (Brassica napus L. ssp. oleifera) using 5'-anchored simple sequence repeat (SSR) primers. // Theor. Appl. Genet. 1996. — V. 92. — P. 442−447.
  94. Choudhary Shalu, Sethy Niroj K., Shokeen Bhumika, Bhatia Sabhyata. Development of sequence-tagged microsatellite site markers for chickpea (Cicer arietinum L.). // Mol. Ecol. Notes. 2006. — V. 6. — № 1. — P. 93−95.
  95. Chyi YS., Hoenecke ME., Sernyk JL. A genetic linkage map or restriction fragment length polymorphism loci for Brassica rapa (syn. campestris). II Genome 1992. — V. 35 — P. 746−757.
  96. Cloutier S., Cappadocia M., Landry BS. Analysis of RFLP mapping inaccuracy in
  97. Brassica napus L. // Theor. Appl. Genet. 1997. — V. 95. — P. 83−91.
  98. Cooke R. J. Modern methods for cultivar verification and the transgenic plant challenge // Abstrs. of 25th Int. Seed Testing Congr. (Pretoria, 1998. April 15 24), ISTA. — Zurich. — 1998. — P.9−10.
  99. Cooke R. J. The standartization of electrophoresis methods for variety identification // Biochemical Identification of varieties: Mater, of III Int Symp. ISTA. USSR, L., 1987. — USSR, L.: VIR, 1988. — P. 14−27.
  100. Cooke RJ. Modern methods for the cultivar identification and the transgenic plant challenge. // Seed. Sci. Technol. 1999. — V. 27. — P. 669−680.
  101. Culley Theresa M. Characterization of newly developed microsatellite loci in the stemmed yellow violet, Violapubescens (Violaceae). Il Mol. Ecol. Notes. 2005. — V. 5. — № 4. — P. 882−884.
  102. Diehl, S.R., Ziegie, J., Buck, G.A., Reynolds, T.R. & Weber, J.L. Automated genotyping of human DNA polymorphisms. // Am. J. hum. Genet. 1990. V.47. — P. 177.
  103. Diwan N., Cregan P.B. Automated sizing of fluorescent-labeled simple sequence repeats (SSRs) markers to assay genetic variation in soybean. II Theor. Appl. Genet. -1995.-V. 95. P. 723−733.
  104. Donini P., Elias L., Bougourd S., Koebner RMD. AFLP fingerprinting reveals pattern differences between templates DNA extracted from different plant organs. // Genome. 1997. — V. 40. — P. 521−526.
  105. Echt C.S., May-Marquardt P. Survey of microsatellite DNA in pine. II Genome. -1997. -V. 40. P. 9−17.
  106. Fan Z., Riminer S.R. and Stefansson B.R. Inheritance of resistance to Albugo Candida in rape (.Brassica napus L.) II Can. J. Genet. Cytol. — 1983. — V. 25. — P. 420−424.
  107. FAO Trade yearbook 1990. — Rome. -1991. — V. 44. № 102.
  108. Ferreira M.E., Williams P.H. and Osborn T.C. RFLP mapping of Brassica napus using doubled haploid lines // Theor. Appl. Genet. 1994. — V. 89. — P. 615−621.
  109. Frandsen K.J., The Experimental Formation of Brassica napus L. var. oleifera D.C. and Brassica carinata Braun, Dansk. // Botan. Arkiv, Bd. 1947. — V. 12. — N. 7. — P. 1−16.
  110. Gowers S. The transfer of characters from Brassica campestris L. to Brassica napus L.: Production of clubroot-resistant oil-seed rape (B. napus ssp. oleifera) II Euphytica. — 1982. — V. 31. № 3. — P.971−976.
  111. Graber J.H., Smith C.L., Cantor C. Differential sequencing with mass spectrometry. // Genet. Anal. Biomol. Eng. 1999. — V.14. -N.5−6. — P.215−219.
  112. Graham J. An assessment of gene flow in red raspberry measured by SSRs. // Annual Report. 2001−2002: Scott. Crop Res. Inst. Dundee. 2003. — P. 155−156.
  113. Grami B., Stefansson B.R. Gene action for protein and oil content in spring rape. // Canadian Journal of Plant Science. 1977. — V. 57. -N.3. — P. 625−631.
  114. Grodzicker T., Williams J., Sharp P., and Sambrook J. Physical mapping of temperature-sensitive mutations of adenoviruses. // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. -1974. V. 39. -N.l. — P. 439−446.
  115. Guilford P., Prakash S., Zhu J.M., Rikkerink E., Gardiner S., Bassett H., Forster R.
  116. Microsatellites in Malus y-domestica (apple)', abundance, polymorphism and cultivar identification. // Theor. Appl. Genet. 1997. — V. 94. — P. 249−254.
  117. Gupta M., Chyi Y.S., Romero-Severson J., Owen J.L. Amplification of DNA markers from evolutionarily diverse genomes using single primers of SSRs. // Theor. Apl. Genet. -1994. Y.89. — P.998−1006.
  118. Hacia J.G., Collins F.S. Mutation analysis using oligonucleotide microarrays. // J. Med. Genet. 1999. — V.36. — N.10. — P.730−736.
  119. Halasz G., Veres A., Kozna P., Kiss E., Balongh A., Galli Z., Szoke A., Hoffmann S., Heszky L. Microsatellite fingerprinting of grapevine {Vitis vinifera L.) varieties of the Carpathian Basin. // Vitis. 2005. — V. 44. — № 4. — P. 173−180.
  120. Hallden C., Nilsson NO., Rading IM., Sail T. Evalution of RFLP and RAPD markers in a comparison of Brassica napus breeding lines. // Theor. Appl. Genet. 1994. — V. 88. — P. 123−128.
  121. Hofman W., Peters R. Versuche zur Hergtellung synthetischer Raps-formen. // Der Zuchter. -1961.-P. 15−17.
  122. Howard H.W., The Effect of Polyploidy and Hybridity on Seed Size in Crosses between Brassica Chinensis, B. carinata, Amphidiploid Brassica Chinensis-carinata, and Autotetraploid B. Chinensis. //J. Genet. 1942. — V. 43. — P. 105−119.
  123. Jeffreys A.J., Wilson V., Thien S.L. Hypervariable minisatellite regions in Human DNA. //Nature (London). 1985. — V.314. — N.6006. — P.67−73.
  124. Jin L., Macaubas C., Hallmayer J., Kimura A., Mignot E. Mutation rate varies among alleles at a microsatellite locus: Phylogenetic evidence. // Proc. Natl. Acad. Sci USA. 1996. -V. 93.-N. 26.-P. 15 285.
  125. Jin Meng-yang, Li Jia-na, Fu Fu-you, Zhang Zheng-sheng, Zhang Xue-kun, Liu Lie-zhao. QTL analysis of the oil content and the hull content in Brassica napus L. // Agr. Sci. China. 2007. — V.6. -№ 4. — P. 414−421.
  126. Jonsson R. Breeding for improved oil and meal quality in rape (Brassica napus L.) and turnip rape (Brassica campestris L.) // Hereditas. — 1977. — Vol. 87. — P. 205−218.
  127. Jonsson R., Uppstrom B. Quality breeding in rapeseed // Research and results in plant breeding. Svalof 1886 -1986.- Stockholm-Svalov AB, Sweden: LTs forlag, 1986. — P. 173 183.
  128. Kapila R.K., Yadav R.S., Plaha P., Rai K.N., Yadav O.P., Hash C.T., Howarth C.J. Genetic diversity among pearl millet maintainers using microsatellite markers. // Plant Breed. 2008. — V. 127. — № 1. — P. 33−37.
  129. Karp A., Edwards KJ., Bruford M., Funk S., Vosman B., Morgante M., Seberg O. et al. Molecular technologies for biodiversity evaluation: opportunities and challenges. // Nature Biotech. 1997. — V. 15. — P. 625−628.
  130. Kawchuk L.M., Lynch D.R., Thomas J., Penner B., Sillito D., Kulcsar F. Characterization of Solarium tuberosum simple sequence repeats and application to potato cultivar identification. //Am. Potato J. 1996. — V. 73. — P. 325−335.
  131. Khattak J.Z.K., Christiansen J.L., Torp A.M., Andersen S.B. Genie microsatellite markers for discrimination of spinach cultivars. // Plant Breed. 2007. — V.126. — № 4. — P. 454−456.
  132. Kidwell, K.K., Osborn T.C. Plant Genomes: Methods for Genetic and Physical Mapping. Kluever Academic Publishers Group. A.H. Dordrecht, The Netherlands. 2001. — P. 1−13.
  133. Kijas J.M.H., Thomas M.R., Fowler J.C.S., Roose M.L. Integration of trinucleotide microsatellites into a linkage map of Citrus. II Theor. Appl. Genet. 1997. — V. 94. — P. 701−706.
  134. Kilger C., Paabo S. Direct DNA sequence determination from total genomic DNA. // Nucleic Acids Res. 1997. — V.25. — N.10. — P.2032−2034.
  135. Kimura T., Nishitani C., Iketani H., Ban Y., Yamamoto T. Development of microsatellite markers in rose. // Mol. Ecol. Notes. 2006. — V.6. — № 3. — P. 810−812.
  136. Koh HJ., Heu MH., McCouch SR. Molecular mapping of the ge (S) gene controlling the super-giant embryo character in rice (Oryza sativa L.). // Theor. Appl. Genet. 1996. — V. 93.-P. 257−261.
  137. Kondra Z. P., Downey R.K. Glucosinolate content of rapeseed (Brassica napus L. and B. campestris L.) meal as influenced by pod position on the plant. // Crop. Sci. 1970. — V. 10.-N.1.-P. 54−56.
  138. Kondra Z. P., Stefansson Inheritance of the major glucosinolates of rapeseed {Brassica napus) meal. // Canadian Journal of Plant Science. 1970. -V. 50. -N.4. — P. 643−647.
  139. Kreivi Marjut, Huttunen Susanna, Aspi Jouni. Isolation and characterization of polymorphic microsatellite markers from Primula nutans (Primulaceae). II Mol. Ecol. Notes. -2006. V.6. — № 2. — P. 334−336.
  140. Ma Chao-zhi, Fu Ting-dong, Tuevesson Stine, Gertsson Bo. Genetic diversity of Chinese and Swedish rapeseed (Brassica napus L.) analyzed by inter-simple sequence repears (ISSRs). II Agr. Sei. China. 2003. — V.2. — № 2 — P. 137−143.
  141. Ma Z.Q., Roder M., Sorrells M.E. Frequencies and sequence characteristics of di-, tri-, and tetra-nucleotide microsatellites in wheat. // Genome. 1996. — V. 39. — P. 123−130.
  142. Mailer RJ., Scarth R., Fristensky B. Discrimination among cultivars of rapeseed (Brassica napus L.) using DNA polymorphisms amplified from arbitrary primers. // Theor. Appl. Genet. 1994. — V. 87. — P. 697−704.
  143. Marchese A., Boskovic R.I., Martinez-Garcia P.J., Tobutt K.R. The origin of the self-compatible almond' Supernova'. // Plant Breed. 2008. — V.127. — № 1. — P. 105−107.
  144. McGregor C.E., Lambert C.A., Greyling M.M. et al. A comparative assessment of DNA fingerprinting techniques (RAPD, ISSR, AFLP and SSR) in tetraploid potato {Solanum tuberosum L.) germplasm. // Euphytica. 2000. — V. 113. — P. 135−144.
  145. Meng Jinling, Zhao Jianwei. Genetic analysis of loci associated with partial resistance to Sclerotinia sclerotiorum in rapeseed (.Brassica napus L.). // Theor. and Appl. Genet. K3. 2003. — V.106. — № 4. — P. 759−764.
  146. Menz, M.A., R.R. Klein, J.E. Mullet, J.A. Obert, N.C. Unruh and P.E. Klein (2002) A High-density Genetic Map of Sorghum bicolor (L.) Moench based on 2926 AFLP, RFLP and SSR Markers. // Plant Mol Biol. 2002. — V. 48. — N.5−6. — P.483.
  147. Milbourne D., Meyer R.C., Collins A.J. et al. Isolation, characterization and mapping of simple sequence repeat loci in potato. // Mol. Gen. Genet. 1998. — V. 259. — P. 233−245.
  148. Mishima Kentaro, Watanabe Atsushi, Isoda Keiya, Ubukata Masatoshi, Takata Katsuhiko. Isolation and characterization of microsatellite loci from Quercus mongolica var. crispula. II Mol. Ecol. Notes. 2006. — V.6. — № 3. — P. 695−697.
  149. Monforte A.J., Garcia-Mas J., Arus P. Genetic variability in melon based on microsatellite variation. // Plant Breed. 2003. — V.122. — № 2. — P. 153−157.
  150. Morinaga T. Interspesific hybridization in Brassica. VI. The cytology of Fl — hybrids of B. junceaand B. nigra II Cytologia. — 1934. — V. 6. — P. 62−67.
  151. Mundges H., Diederichsen E., Kohler W. Comparisons of isozyme patterns in resynthesized amphihaploid rapeseed (Brassica napus) and their parental species Brassica campestris and Brassica oleracea. II Plant Breed. 1989. — V. 103. — P. 258−261.
  152. Nei M. Molecular evolutionary genetics. // N.Y.: Columbia Univ. Press, 1987. — P.512.
  153. Nunome T., Suwabe K., Iketani H., Hirai M. Identification and characterization of microsatellites in eggplant. // Plant Breed. 2003. — V.122. — № 3. — P. 256−262.
  154. Odeny D.A., Jayashree B., Ferguson M., Hoisington D., Crouch J., Gebhardt C. Development, characterization and utilization of microsatellite markers in pigeon pea. // Plant Breed. 2007. — V.126. — № 2. — P. 130−136.
  155. Olsson G. Josefsson A., Hagberg A., Ellerstrom S., Synthesis of the ssp. Rapifera of Brassica napus. //Hereditas. 1955. — V. 41. — P.241−249.
  156. Olufowote J.O., Xu Y., Chen X, Park W.D., Beachell H. M, Dilday R.H., Goto M, McCouch S. Comparative evaluation of within-cultivar variation of rice (Oryza sativa L.) using microsatellite and
  157. RFLP markers. // Genome. 1997. — V. 40. — P. 370−378.
  158. Orita M., Suzuki Y., Sekiya T., Hayashi K. Rapid and sensitive detection of point mutations and DNA polymorphisms using the polymerase chain reaction. // Genomics. -1989. V.5. — N.4. — P.874.
  159. Palombi M.A., Damiano C. Comparison between RAPD and SSR molecular markers in detecting genetic variation in kiwifruit (Actinidia deliciosa A. Chevj. // Plant Cell Repts K3. 2002. — V. 20. — № 11. — P. 1061−1066.
  160. Parkin I., Magrath R., Keith D., Sharpe A., Mithen R. and Lydiate D. Genetics of aliphatic glucosinolates. II. Hydroxylation of alkenyl glucosinolates in Brassica napus. II Heredity. 1994. — V. 72. — P. 594−598.
  161. Pelletier G. et al. Intergeneric cytoplasmic hybridization in cruciferae by protoplast fusion // Molec. Gen. Genet. — 1983. —V. 191. № 191 — P. 244−250.
  162. Plaschke J., Ganal M.W., Roder M.S. Detection of genetic diversity in closely-related bread wheat using microsatellite markers. // Theor. Appl. Genet. 1995. — V. 91. — P. 1001−1007.
  163. Plieske J., Struss D. Microsatellite markers for genome analysis in Brassica. I. Development in Brassica napus and abundance in Brassicaceae species // Theor. Appl. Genet. 2001. — V. 102. — P. 689−694.
  164. Poulsen G.B., Kahl G., Welsing K. Abundance and polymorphism of simple repetitive sequences in Brassica napus L. // Theor. Appl. Genet. 1993. — V. 85. — P. 994−1000.
  165. Powell W., Morgante M., Doyle JJ., McNicol JW., Tingey SV., Rafalski AJ. Genepool variation in genus glycine subgenus soja revealed by polymorphic nuclear and chloroplastmicrosatellites. // Genetics. 1996. — V. 144. — P. 793−803.136
  166. Provan J., Corbett G., McNicol J.W., Powell W. Chloroplast DNA variability in wild and cultivated rice (Oryza ssp.) revealed by polymorphic chloroplast simple sequence repeats. // Genome. 1997. — V. 40. — P. 104−110.
  167. Provan J., Powell W., Waugh R. Microsatellite analysis of relationships within cultivated potato {{Solanum tuberosum). II Theor. Appl. Genet. 1996. — V. 92. — P. 10 781 084.
  168. Rakow G., Downey R.K. Profit summer rape // Can. J. Plant Sei. — 1993. — V. 73. -№ 1. —P.189−191.
  169. Rayner C. J., Sang J.P., Buzza C.G. Screening rapeseed {B. napus) for low glucosinolate levels. //Austral. J. Experimental Agricul. Animal Husbandry. 1975. — V. 15. -N. 8.-P. 561−565.
  170. Renard M. et al. Colza // INRA. Rennes. — 1988. — P. 57.
  171. Renard M., Brun H. Colza: amelioration de la resistance aux maladies // Phytoma. — 1982. —№ 343. —P. 23−25.
  172. Robbelen G. Qualitatsentwicklungen fur den Kornerraps der Zukunft. // Qualitats. -Raps. 1980/1981.-P. 46−51.
  173. Robbelen G. Transgene rapssorten. Die Zukunft hat schon begonnen // Raps. — 1995. — Bd 13. -№ 1. —S.4−6.
  174. Robbelen J. Erucic-acid heredity in rapeseed (Brassica napus L. and Brassica campestris L.) II Hereditas. — 1977. — № 86. — P. 159- 170.
  175. Roder M.S., Plaschke J., Konig S.U., Borner A., Sorrells M.E., Tanksley S.D., Ganal
  176. M.W. Abundance, variability and chromosomal location of microsatellites in wheat. II
  177. Mol. Gen. Genet. 1995. — V. 246. — P. 327−333.
  178. Roose-Amsaleg G, Canon- Pham E., Vautrin D., Tavemier R., Solignac M. Polymorphie microsatellite loci in Linum ustitatissimum. // Mol. Ecol. Notes. 2006. — V.6. — № 3. — P. 796−799.
  179. Rudorf W. Die Bedeutung der Polyploidie fur die Evolution und die. // Pflanzenzuchtung, Angew. Botan. 1943. — V. 25. — P.92−114.
  180. Rudorf W. Uber die Erzeugung und die Eigenschaften Synthetischer Rapsformen. // Z. Pflanzenzucht. 1950. — V. 29. — P.35−54.
  181. Rutkowski A. Polandxs share in the development of world rapeseed production // Proc. 7th Intern. Rapeseed Congr. — Poland, Poznah. 1987 — Y. 1. — P. 14−23.
  182. Saftic-Pankovic Dejana, Maijanovic-Jeromela Ana, Sakac Zvonimir, Marinkovic Radovan. Molekularni marker i kvalitet ulja kod razlicitih populacija iz roda Brassicaceae. II Uljarstvo. 2006. — V. 37. — № 3.4. — p. 55.59.
  183. Saghai Maroof MA., Biyashev RM., Yang GP., Zhang Q., Allard RW. Extraordinarily polymorphic microsatellite DNA in barley: species diversity, chromosomal locations, and population dynamics. // Proc Natl Acad Sei USA. 1994. — V. 91. — P. 5466−5470.
  184. Saiki R.K., Gelfand D.H., Stoffel S., Higuchi R. Primer-Directed Enzymatic Amplification of DNA with a Thermostable DNA Polymerase. // Science. 1988. — V.239. -N.2. — P.487−491.
  185. Saiki R.K., Scharf S., Fallona F., Mullis K., Horn G. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. // Science. 1985. — V.230. -N.6. — P.1350−1354.
  186. Samhez-Escribano E.M., Martin J.P., Carrino J., Gemis J.L. Use of sequence-tagged microsatellite site markers for characterizing table grape cultivars. // Genome. 1999. — V. 42. -№ 1.-P. 87−93.
  187. Schlotterrer C. The evolution of molecular markers — just a matter of fashion. // Nature Rev. Genet. 2004. — V.5. — N.l. — P.65.
  188. Schulz H. Wenn Rapsol im Tank ist // Neue Landwirtschaft. — 1997. — № 10. — P.79.80.
  189. Schwetka A. Inheritance of seed colour in turnip rape {Brassica campestris L.) // Theor. Appl. Genet. — 1982. — V. 62. — P. 161−169.
  190. Scotti I., Paglia G.P., Magni F., Morgante M. Efficient development of dinucleotide microsatellite markers in Norway spruce {Picea abies Karst.) through dot-blot selection. // Theor. and Appl. Genet. K3. -2002. V. 104. — № 6−7. — P. 1035−1041.
  191. Senior M.L., Chin E.C.L., Lee M., Smith J.S.C., Stuber C.W. Simple sequence repeat markers developed from maize sequences found in the GenBank database: map construction. II Crop Sei. 1996. — V. 36. — P. 1676−1683.
  192. Sernyk J.Z., Stefansson B.R. Heterosis in summer rape {Brassica napus L.) // Can. J. Plant Sei. — 1983. — V. 63. № 2. — P. 407−413.
  193. Siebel Jutta, Pauls K.P. Alkenyl glucosinolate levels in androgenic populations of Brassica napus II Plant Breed. — 1989. — V. 103. № 2. — P. 124−132.
  194. Sneath P.H.A., Sokal R.P. Numerical taxonomy. The principles and practice of numerical classification. // San Francisco: W.H. Freedman and Co. — 1973.
  195. Snyder M.P., Kimbrell D., Hunkapiller M., Hill R., Fristrom J., Davidson N. A transposable element that splits the promoter inactivates a Drosophila cuticle protein gene. // Proc. Natl. Acad. Sci. 1982. — V. 79. — P. 7430−7434.
  196. Sobotka R., Dolanska L., Curn V., Ovesna J. Fluorescence-based AFLPs occur as the most suitable marker system for oilseed rape cultivar identification // J. Appl.Genet. 2004. -V. 45.-№ 2.-P. 161−173.
  197. Song K.M., Suzuki J.Y., Slocum M.K., Williams P.H., Osborn T.C. A linkage map of Brassica rapa (syn. campestris) based on restriction fragment length polymorphism loci // Theor.Appl.Genet. -1991. V. 82. — P. 296−304.
  198. Suwabe K., Iketani H., Nunome T., Kage T., Hirai M. Isolation and characterization of microsatellites in Brassica rapa L. // Theor. Appl. Genet. 2002. — V. 104. — P. 1092−1098.
  199. Tang S., Kishore V.K., Knapp S J. PCR-multiplexes for a genome-wide framework of simple sequence repeat marker loci in cultivated sunflower.// Theor. Appl. Genet. 2003. — V. 107.-P. 6−19.
  200. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers // Nucleic Acids Research. 1989. — V. 17. — № 16. — P. 6463−6471.
  201. Tautz D., Trick M., Dover G.A. Cryptic simplicity in DNA is a major source of genetic variation. //Nature. 1986. — V.322. — N.6080. — P.652−656.
  202. U.N., Genome-analysis in Brassica with Special Reference to the Experimental Formation of B. napus and Peculiar Mode of Fertilization. // Japan. J. Botany. 1935. — V. 7. -P. 389−452.
  203. UPOV (Union for the Protection of New Varieties of Plants). Guidelines for the conduct of tests for distinctness, uniformity and stability. Rape seed {Brassica napus L. oleiferd). / UPOV, Geneva, Switzerland TG/36/6. 1996.
  204. UPOV (Union for the Protection of New Varieties of Plants). International convention for the protection of new varieties of plants test guide-lines. / UPOV, Geneva, Switzerland. -1978.
  205. UPOV (Union for the Protection of New Varieties of Plants). International convention for the protection of new varieties of plants test guide-lines. / UPOV, Geneva, Switzerland C/28/10.- 1994.
  206. Uzunova M., Ecke W., Weissleder K., Robbelen G. Mapping the genome of rapeseed (Brassica napus L.).I. Construction of an RFLP linkage map and localization of QTLs for seed glucosinolate content. II Theor. Appl. Genet. 1995. — V. 90. — P. 194−204.
  207. Uzunova M.I., Ecke W. Abundance, polymorphism and genetic mapping of microsatellites in oilseed rape (Brassica napus L.) // Plant Breeding. 1999. — V. 118. — P. 323−326.
  208. Van de Peer Y., de Wachter R. TREECON for Windows: a software package for the construction and drawing of evolutionary trees for the microsoft windows environment // Comp. Appl. BioSci. 1994. — V. 10. — P. 569−570.
  209. Van de Will C., Arens P., Vosman B. Microsatellite retrieval in lettuce {Lactuca sativa L.). // Genome. 1999. — V. 42. — № 1. — P. 139−149.
  210. Van Eijk M.J.T., Stewart-Haynes J.A., Lewin H.A. Extensive polymorphism of the BoLA-DRB3 gene distinguished by PCR-RFLP.// Animal Genetics. 1992. — V. 23. — N.6. — P. 483.
  211. Vos P., Hogers R., Bleeker M., Reijans M., Van de Lee T., Homes M., Frijters A., Pot J., Peleman J., Kuiper M., Zabeau M. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting // Nucleic Acids Res. 1995. — V. 23. — P. 4407−4414.
  212. Vyvadilova M., Zelenkova S., Tomaskova D. Anther cultures of Brassica napus L. // Scientica agriculturae bohemoslovaca 1987. — № 4. — P. 267−273.
  213. Wallace Lisa E., Helenurm Kaius. Characterization of microsatellite loci in polyploid Lavatera assurgentijlora ssp. assurgentijlora and ssp. glabra (.Malvaceae). II Mol. Ecol.
  214. Notes. 2006. — V. 6. — № 2. — P. 331−333.
  215. Wallace R. B. DNA recombinant technology. Boca Raton (Fla.): CRC press. 1983.1. P. 212.
  216. Watcharawongpaiboon N., Chunwonfse J. Development and characterization of icrosatellite markers from an enriched genomic library of cucumber (Cucumis sativus). H Plant Breed. 2008. — V. 127. — № 1. — P. 74−81.
  217. Waugh R., Powell W. Using RAPD markers for crop improvement. // Trends Biotechnol. 1992. — V. 10. — P. 186−191.
  218. Weber J.L., May P.E. Abundant class of human DNA polymorhisms which can be typed using the polymerase chain reaction. // Am. J. Hum. Genet. 1989. — V.44. — N.3. -P.388.
  219. Weising K., Nybom H., Wolff K., Meyer W. DNA fingerprinting in plants and fungi. — CRC Press. 1995. — P. 322.
  220. Welsh J., McClelland M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers.// Nucleic Acids Res. 1990. — V.18. -N.24. — P.7213−7218.
  221. White J., Law JR. Differentiation between varieties of oilseed rape Brassica napus (L.) on the basis of the fatty acid composition of the oil. // Plant Var Seeds. 1991. — V. 3. — P. 125−132.
  222. Williams I.G.K., Kubelik A.R., Livak K.I., Rafalski I.A., Tongey S.N. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers is useful as genetic markers. // Nucleic Acids Res. 1990. — V.18. -N.22. — P.6531−6535.
  223. Xu X.-x., Liang H.-Y., Zhen Z., Yang M. -S. Framework of simple sequence repeat marker loci in cultivated apple. II Guoshu xuebao = J. Fruit Sei. — 2006. V. 23. — № 2. — P. 161−164.
  224. Yan X.F., Lian C.L., Hogetsu T. Development of microsatellite markers in ginkgo
  225. Ginkgo biloba L.). // Mol. Ecol. Notes. 2006. — V. 6. — № 2. — P. 301−302.143
  226. Ziegle J.S., Su Y., Corcoran KP., Nie L., Mayrand PE., Hoff LB., McBride LJ., Kronick MN., Diehl SR. Application of automated DNA sizing technology for genotyping microsatellite loci. // Genomics. 1992. — V.14. — P.1026−1031.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!