Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Усовершенствование программы экстракорпорального оплодотворения человека с помощью применения метода витрификации

Диссертация: Усовершенствование программы экстракорпорального оплодотворения человека с помощью применения метода витрификации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

По одной из широко применяемых классификаций градации эмбрионы делятся на классы: «А» — «В» — «С» — «D», в зависимости от быстроты и качества их развития, соответственно. К классу «А» относят эмбрионы с достаточным количеством одинаковых по размеру бластомеров (2−4 бластомера на день 2, 6−12 бластомеров на день 3, компактизация бластомеров и гладкая структура морулы на день 4, формирование… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Основные аспекты программы экстракорпорального оплодотворения и переноса эмбрионов человека
      • 1. 1. 1. Причины женского бесплодия и экстракорпоральное оплодотворение человека
      • 1. 1. 2. Гормональная стимуляция овуляции пациенток
      • 1. 1. 3. Условия культивирования эмбрионов человека in vitro
      • 1. 1. 4. Подготовка сперматозоидов для экстракорпорального оплодотворения человека
      • 1. 1. 5. Этапы развития эмбрионов человека и перенос эмбрионов
      • 1. 1. 6. Этические и правовые аспекты репродуктивных технологий
    • 1. 2. Метод медленного замораживания
    • 1. 3. Метод витрификации
  • Глава II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Материалы исследования
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Программа экстракорпорального оплодотворения и перенос эмбрионов человека
      • 2. 2. 2. Метод медленной криоконсервации
      • 2. 2. 3. Метод витрификации
  • Глава III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Сравнение частоты наступления беременностей и частоты имплантации в результате переноса медленно криоконсервированных и витрифицированных бластоцист в крио циклах
    • 3. 2. Применение метода витрификации ооцитов человека
    • 3. 3. Разработка модификации метода витрификации

Усовершенствование программы экстракорпорального оплодотворения человека с помощью применения метода витрификации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В наши дни бесплодие среди супружеских пар достигает 15%, а экстракорпоральное оплодотворение преовуляторных ооцитов (ЭКО) и перенос эмбрионов (ПЭ) женщине приобретают все большее значение в лечении женского и мужского бесплодия. Бесплодие может развиваться вследствие генетических и инфекционных факторов, эндокринной недостаточности, а также анатомических особенностей пациента. Одними из наиболее серьезных причин бесплодия женщины являются синдром поликистозных яичников (СПКЯ), эндометриоз, функциональная недостаточность яичников. Мужское бесплодие может иметь место вследствие нарушения сперматогенеза, развивающегося в свою очередь из-за гормональных, инфекционных или иных воздействий. Генетические факторы играют существенную роль в развитии как мужского, так и женского бесплодия, и это направление исследований стало одним из ведущих в мире в последние несколько десятилетий [Курило Л.Ф., Шилейко JI.B. и др., 1997; Курило Л. Ф., Шилейко JI.B. и др., 2000]. В результате применения метода ЭКО и ПЭ большое количество детей (более 200 тысяч в год), зачатых in vitro, рождается во многих странах мира. Развитие и совершенствование ЭКО и ПЭ дали начало таким методам как ИКСИ (интрацитоплазматическая инъекция сперматозоида в яйцеклетку) [Van Steirteghem, А. et al., 1993; Van Steirteghem, A. et al., 1994], ПГД (преимплантационная генетическая диагностика), FISH (флуоресцентная in situ гибридизация) [Берлинский Ю., 1996], а также методам замораживания эмбрионов и ооцитов в жидком азоте для их использования в будущем [Whittingham D. et al., 1972; Wilmut I., 1972].

Появление метода криоконсервации эмбрионов человека и его успешное применение [Trounson А., Mohr L., 1983] позволило специалистам решить ряд важных проблем. В циклах стимуляции суперовуляции пациенток с СПКЯ часто используют криоконсервацию эмбрионов для их переноса в естественном цикле [Chian R. et al., 2001]. Такой же подход применяют при развитии синдрома гиперстимуляции яичников (СГЯ) [FerrarettiA. et al., 1999].

По одной из широко применяемых классификаций градации эмбрионы делятся на классы: «А» — «В» — «С» — «D», в зависимости от быстроты и качества их развития, соответственно. К классу «А» относят эмбрионы с достаточным количеством одинаковых по размеру бластомеров (2−4 бластомера на день 2, 6−12 бластомеров на день 3, компактизация бластомеров и гладкая структура морулы на день 4, формирование бластоцисты (эмбриобласта и трофобласта) на день 5- фрагментация составляет менее 5% от общего объема эмбриона. Эмбрионы класса «В» также имеют достаточное количество бластомеров на день 2 и день 3, бластомеры могут немного отличаться по размеру, либо фрагментация составляет 5−10% от общего объема эмбриона, компактную структуру морулы на день 4 с фрагментацией 5−10% от общего объема эмбриона, на день 5 эмбрион все еще находится на стадии морулы. Эмбрионы класса «С» характеризуются недостаточным количеством бластомеров в эмбрионе, неодинаковыми по размеру бластомерами, отсутствием структур морулы и бластоцисты на день 4 и на день 5, соответственно, и фрагментацией 15−25% от общего объема эмбриона. К классу «D» относят эмбрионы, которые сильно отстают в развитии и почти полностью фрагментированы (более 25% от общего объема эмбриона). [Alikani М. et al., 1999; Claman Р. et al., 1987; Desai N. et al., 2000; Hardarson T. et al., 2001; Lewin A. et al., 1994].

Выбор дня ПЭ зависит от количества эмбрионов, их градации, а также от статистических показателей успешных ЭКО и ПЭ в различных лабораториях. В некоторых лабораториях предпочтение отдается ранним дням ПЭ (второму или третьему). В этих случаях переносят лишь часть эмбрионов, а оставшиеся эмбрионы классов «А» и «В» замораживают для переноса их в следующих циклах (крио циклах). Во многих лабораториях выбор ПЭ ложится на пятый день. Эмбрионы, достигшие стадии бластоцисты на пятый день, в своем большинстве относятся к классу «А» [Эокгаз А. & а1., 1993]. Неиспользованные после ПЭ бластоцисты и эмбрионы, из которых сформировались бластоцисты на шестой день (такие эмбрионы относятся к классу «В») также подвергают криоконсервации.

В то время как метод медленного замораживания клеток и эмбрионов существует уже 20 лет и характеризуется медленным вытеснением воды криопротекторами с последующим медленным понижением температуры (от комнатной температуры до температуры жидкого азота, — 196°С) [Мепего У. е1 а1., 1992; Укап^Юип I. е1 а1., 2003], метод витрификации (метод быстрой криоконсервации) еще недостаточно разработан и изучен и представляет большой интерес как в плане снижения стоимости метода, так и в плане быстроты его выполнения, а также результатов хранения в криоконсервации и последствий размораживания [ЫеЬегтапп I. е1 а1., 2002ЬТгоипБоп А. е1 а1., 1987]. В нашей лаборатории был применен и модифицирован метод витрификации, разработанный д.б.н. М. Куваямой в клинике Като, специализирующейся по ЭКО (Токио, Япония) [Кишауата М., 2001]. Метод витрификации основан на быстром воздействии криопротекторов вследствии их повышенной концентрации и на быстром понижении температуры. При витрификации происходит быстрое вытеснение воды из эмбрионов для предотвращения ее кристаллизации в клетках с последующим моментальным переносом эмбрионов в жидкий азот. Многие исследования отмечали значительное возрастание частоты выживаемости эмбрионов при использовании техники витрификации [Е1-БапаБоип I. е1 а1., 2001].

В наши дни криоконсервация эмбрионов является обычным методом программы ЭКО. Однако замораживание ооцитов для использования их затем в ЭКО до сих пор применяется редко и представляет скорее метод экспериментальный, чем клинический, в то время как проблема старения яйцеклетки и становления ее нефункциональности была и остается одной из наиболее серьезных проблем медицины. Поэтому, разработка модификаций метода криоконсервации яйцеклеток и эмбрионов и установление наиболее оптимальных условий его протекания является одним из самых важных направлений программы ЭКО.

Таким образом, целью нашего исследования явилось оценить эффективность метода витрификации эмбрионов и ооцитов человека с помощью сравнения методов медленного замораживания и витрификации, установить наиболее оптимальные условия для успешного проведения витрификации с целью повышения частоты наступления беременностей и имплантации в программе ЭКО и ПЭ.

Для решения поставленной цели были сформулированы следующие задачи исследования;

1. Применить метод витрификации и метод медленного замораживания на бластоцистах человека (дня 5 и дня 6 развития).

2. Сравнить частоту выживаемости бластоцист при витрификации и методе медленного замораживания.

3. Сравнить частоту наступления клинической беременности и частоту имплантации при ПЭ после витрификации бластоцист и после использования метода медленного замораживания бластоцист с частотой наступления клинической беременности и имплантации перенесенных бластоцист и морул на день 5 в циклах ЭКО.

4. Сравнить схемы подготовки пациенток к переносу размороженных после медленной криоконсервации эмбрионов и после витрификации.

5. Применить метод витрификации ооцитов и оценить его результаты.

6. Разработать оптимальные условия витрификации ооцитов и эмбрионов человека.

Научная новизна.

Применен модифицированный метод витрификации эмбрионов и ооцитов человека. Выявлена высокая частота выживаемости эмбрионовчастоты имплантации и наступления клинической беременности при витрификации по сравнению с методом медленного замораживания. Разработаны условия проведения витрификации, при которых возрастает количество жизнеспособных клеток в каждом эмбрионе.

Практическая значимость.

Метод витрификации ооцитов и эмбрионов человека занимает 10−15 минут, в то время как вся процедура медленного замораживания протекает в течение 3-х часов. Таким образом, витрификация позволяет экономить время, а также обходиться без использования дорогостоящего морозильного оборудования. Доля выживших эмбрионов человека при использовании метода витрификации составляет 100%. При витрификации частота наступления беременностей возрастает в 2.4 раза, а частота имплантации — в 4.3 раза по сравнению с методом медленного замораживания.

До настоящего времени пациенты, имеющие замороженные эмбрионы с помощью техники медленной криоконсервации и проходящие цикл стимуляции, всегда шли на риск потери эмбрионов из-за их возможной невыживаемости при их размораживании в день ПЭ. Теперь эта проблема может быть решена, так как при витрифицировании эмбрионов частота их выживаемости заметно возрастает.

Высокие показатели выживаемости яйцеклеток (92.4%) и доли их нормального оплодотворения (83.6%) после витрификации играют важную роль в дальнейшем совершенствовании программы ЭКО в будущем.

Положения, выносимые на защиту;

1. При оптимизации условий проведения витрификации, основанной на понижении токсичности высоких концентраций криопротекторов, возрастает количество таких эмбрионов, в которых большее число клеток сохраняет жизнеспособность.

2. Метод витрификации, как альтернативный метод криоконсервации эмбрионов, является более эффективным чем метод медленного замораживания, что установлено при сравнении результатов частоты выживаемости эмбрионов и ооцитов человека, частоты имплантации и наступления беременностей.

3. Частота имплантации и наступления беременностей не зависит от выбранных схем подготовки пациенток (таких как естественный цикл, а также циклы с применением препаратов фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) и препаратов Ьиргоп / Эстроген) к переносу размороженных после криоконсервации эмбрионов.

4. Витрификация ооцитов до сих пор является экспериментальным методом и требует статистически значимых цифр по результатам исследований для оценки его эффективности и использования в клинической практике. В настоящей работе получены обнадеживающие результаты частоты выживаемости витрифицированных ооцитов и частоты их оплодотворения.

ВЫВОДЫ.

1. Новый, модифицированный нами способ витрификации, основанный на устранении токсичности криопротекторов (через изменение их концентрации и длительности их воздействия), создает лучшие условия, с применением которых повышается частота выживаемости бластомеров эмбриона человека по сравнению с традиционно используемым методом витрификации.

2. Частота выживаемости эмбрионов человека при витрификации возрастает в 1.2 раза по сравнению с частотой их выживаемости при медленной криоконсервации.

3. Частота имплантации возрастает в 4.3 раза, а частота наступления клинической беременности в 2.4 раза при применении метода витрификации по сравнению с техникой медленной криоконсервации эмбрионов человека.

4. При сравнении методов подготовки пациенток к крио циклам не было выявлено зависимости частоты имплантации и частоты наступления беременности от методов подготовки (таких как естественный цикла также циклы с применением препаратов ФСГпрепаратов Ьиргоп / Эстроген), а средний возраст женщин сравниваемых групп не имел значительных отличий.

5. Применен метод витрификации ооцитов человека [Кишауаша., 2001], который позволяет получать высокие показатели их выживаемости (92.4%) с последующей частотой их нормального оплодотворения (83.6%).

6. Модифицированный нами метод витрификации финансово более экономичен, по сравнению с методом медленной криоконсервации, и может быть рекомендован для дальнейшего совершенствования не только в медицинской практике, но и ветеринарии и животноводстве.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Таким образом, при применении метода витрификации ооцитов и эмбрионов человека значительно возрастают такие показатели, как доля выживших эмбрионов, частота наступления беременности и частота имплантации, по сравнению с теми же результатами после проведения метода медленной криоконсервации. Как было выявлено в данной работе, эти результаты не зависели от причин бесплодия и метода подготовки пациенток к циклам овуляции, а средний возраст женщин сравниваемых групп не имел значительных отличий.

При применении метода витрификации ооцитов человека также были получены высокие показатели выживаемости ооцитов и количества ооцитов, нормально прошедших оплодотворение после их размораживания.

Разработанные нами условия проведения витрификации, основанные на понижении концентрации криопротекторов, позволяют повысить жизнеспособность эмбрионов человека.

Разработка данной модификации метода витрификации ооцитов и эмбрионов имеет несомненный экономический народнохозяйственный эффект в животноводстве (при биотехнологической работе с сельскохозяйственными и лабораторными животными).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. А., Торганова И. Г., Сперанская Н. В. Гормональная регуляция менструального цикла. Методы оценки эндокринной функции репродуктивной системы // Сб. Научных трудов ВНИЦ ОЗМР СССР. М., 1986. С. 28−37.
  2. Ю. Преимплантационная генетическая диагностика // Проблемы репродукции, 1996. Т. 4. С. 68−70.
  3. В. И., Курило Л. Ф., Ижевская В. Л. Этические и правовые вопросы клонирования человека // В кн.: Биомедицинская этика. Ред. В. И. Покровский, Ю. М. Лопухин, Москва: Медицина, 2002. Вып. 3. С. 71−76.
  4. Л. Ф. Некоторые морально-этические проблемы репродукции человека // В кн.: Биомедицинская этика. Ред. В. И. Покровский, Москва: Медицина, 1997. С. 151−171.
  5. Л.Ф., Шилейко Л. В., Сорокина Т. М., Гришина Е. М. Структура наследственных нарушений половой системы. //Вестн. РАМН, 2000, № 5. С.32−36.
  6. Л. Ф., Шилейко Л. В. Этико-правовые аспекты репродуктивных технологий и технологии эмбриональных стволовых клеток человека // В кн.: Биомедицинская этика. Ред. В. И. Покровский, Ю. М. Лопухин, Москва: Медицина, 2002. Вып. 3. С. 98−114.
  7. Л. Ф. Этические и правовые проблемы некоторых биомедицинских технологий // В сб.: Молекулярно-биологические технологии в медицинской практике. Ред. А. Б. Масленников, Новосибирск: Альфа-Вита, 2003. Вып. 4. С. 69−84.
  8. . В., Яворовская К. А., Стыгар А. М. и др. Описание случая редукции пятиплодной беременности, наступившей после стимуляции овуляции // Пробл. Репрод. 1995. № 2. С. 49−51.
  9. Руководство по эндокринной гинекологии / Под редакцией Е. М. Вихляевой. М.: Мед. инф. Агенство, 1997. С. 9−33,206−214.
  10. Р. Д. Состояние антиспермального иммунитета у женщин с бесплодием и наружным генитальным эндометриозом: Дис. канд. мед. Наук. М., 1993. С. 109.
  11. Al-Azemi М., Bernal A., Steele J. et al. Ovarian response to repeated controlled stimulation in in-vitro fertilization cycles in patients with ovarian endometriosis // Hum. Reprod. 2000. Vol. 15. P. 72−75.
  12. Ali J., Shelton N. Design of vitrification solutions for the cryopreservation of embryos //J. Reprod. Fertil. 1993a. Vol. 99. P. 471−477.
  13. Ali J., Shelton N. Vitrification of preimplantation stages of mouse embryos // J. Reprod. Fertil. 1993b. Vol. 98. P. 459−465.
  14. Alikani M., Cohen J., Tomkin G. et al. Human embryo fragmentation in vitro and implications for pregnancy and implantation // Fertil. Steril. 1999. Vol. 71. P. 836−842.
  15. Aman R., Parks J. Effects of cooling and rewarming on the meiotic spindle and chromosomes of in vitro-matured bovine oocytes // Biol Reprod. 1994. Vol. 50. P. 103−110.
  16. Arav A., Zeron Y. Vitrification of bovine oocytes using modified minimum drop size technique (MDS) is effected by the composition and concentration of the vitrification solution and by the cooling conditions // Theriogenology 1997. Vol. 47. P. 341.
  17. Arav A., Zeron Y., Ocheretny A. A new device and method for vitrification increases the cooling rate and allows successful cryopreservation of bovine oocytes // Theriogenology. 2000. Vol. 53. P. 248.
  18. Asch R., Balmaceda J., Ellsworth L. et al. Gamete intrafallopian transfer (GIFT): A new treatment for infertility // Int. J. Fertil. 1985. Vol. 30. P. 4145.
  19. Ashwood-Smith M., Farrant J. Low temperature preservations in medicine and biology. Piman Press. Bath. 1980.
  20. Assisted reproductive technologies: analysis and recommendations for public policy // New York state task force on life and the law. New York. 1998. Chap. 12.
  21. Barnes F., Crombie A., Gardner D. et al. Blastocyst development and birth after in vitro maturation of human primary oocytes, intracytoplasmic sperm injection and assisted hatching // Hum. Reprod. 1995. Vol. 10. P. 32 433 245.
  22. Barnes F., Kausche A., Tiglias J. et al. Production of embryos from in vitro matured primary human oocytes // Fertil. Steril. 1996. Vol. 65. P. 11 511 153.
  23. Blake M., Garrisi J., Tomkin G. et al. Sperm deposition site during ICSI affects fertilization and development // Fertil. Steril. 2000. Vol. 73. No. 1. P. 31−37.
  24. Blankstein J., Quigley M. Induction of ovulation with gonadotropines // Clinical Reproductive Endocrinology and Infertility. 1991. P. 31−37.
  25. Bongso A. Handbook on blastocyst culture. 1999. P. 49−51.
  26. Bos-Mikich A., Wood M., Candy C. et al. Cytogenetic analysis and developmental potential of vitrified oocytes // Biol. Reprod. 1995. Vol. 53. P. 780−784.
  27. Carroll J., Wood M., Whittingham D. Normal fertilization and development of frozen thawed mouse oocytes: protective action of certain macromolecules // Biol. Reprod. 1993. Vol. 48. P.1993−1996.
  28. Cha K., Koo J., Choi D. et al. Pregnancy after in vitro fertilization of human follicular oocytes collected from non-stimulated cycles, their culture in vitro and their transfer in a donor oocyte programm // Fertil. Steril. 1991. Vol. 55. P. 109−113.
  29. Chen C. Pregnancies after human oocyte ciyopreservation // Ann. NY Acad. Sci. 541. 1988. P. 541−549.
  30. Chen S., Lien Y., Chao K. et al. Cryopreservation of mature human oocytes by vitrification with ethylene glycol in straws // Fertil. Steril. 2000a. Vol. 74. P. 804−808.
  31. Chen S., Lien Y., Chen H. et al. Open pulled straws for vitrification of mature mouse oocytes preserve patterns of meiotic spindles and chromosomes better than conventional straws // Hum. Reprod. 2000b. Vol. 15. P. 2598−2603.
  32. Chian R., Gulekli B., Buckett W. et al. Pregnancy and delivery after cryopreservation of zygotes produced by in-vitro matured oocytes retrieved from a woman with polycystic ovarian syndrome // Hum. Reprod. 2001. Vol. 16. P. 1700−1702.
  33. Chung H., Hong S., Lim J. et al. In vitro blastocyst formation of human oocytes obtained from unstimulated and stimulated cycles after vitrification at various maturational stages // Fertil. Steril. 2000. Vol. 73. P. 545−551.
  34. Claman P., Armant D., Seibe M. et al. The impact of embryo quality and quantity on implantation and the establishment of viable pregnancies // Jour. In Vitro Fert. Embryo Transf. 1987. Vol. 4. P. 218−222.
  35. Cobo A., Requena A., Neuspiller F. et al. Maturation in vitro of human oocytes from unstimulated cycles: selection of the optimal day for ovumretrieval based on follicular size // Hum. Reprod. 1999. Vol. 14. P. 18 641 868.
  36. Cohen J., Simons R., Edwards R. et al. Pregnancies following the storage of expanding human blastocysts // Jour. In Vitro Fert. Embryo Transfer 1985. Vol. 2. P. 59−64.
  37. Cohen J., Edwards R. Responses to nine questions concerning research of human embryos // Hum. Reprod. 1986. Vol. 1. P. 263−269.
  38. Cole H., Hart G. The potency of blood serum of mares in progressive stages of pregnancy in effecting the sexualmaturity of the immune rate // Am. J. Physiol. 1930. Vol. 93. P. 57.
  39. Critser J., Agca Y., Gunasena K. The cryobiology of mammalian oocytes. In: Karow A.M., Critser J.K. (eds.) // Reproductive Tissue Banking. San Diego. Academic Press. 1997. P. 329−357.
  40. Dawson K. Human embryo experimentation: a background paper and select bibliography // National Bioethics Consultative Committee. Adelaide. 1990. Chap. 23.
  41. Dawson K., Trounson A. Ethics of sex selection for family balancing: why balance families? // Hum. Reprod. 1996. Vol. 11. P. 2577−2580.
  42. De Kretzer D., Dennis P., Hudson B. et al. Transfer of a human zygote // Lancet. 1973. Vol. 2. P. 728.
  43. Delhanty J., Griffin D., Handyside A. et al. Detection of anaploidy and mosaicism in human embryos during preimplantation sex determination by FISH // Hum. Mol. Genet. 1993. Vol. 2. P. 1183−1185.
  44. Desai N., Goldstein J., Rowland D. et al. Morphological evaluation of human embryos and derivation of an embryo quality scoring system specific for day 3 embryos: a preliminary study // Hum. Reprod. 2000. Vol. 15. P. 2190 2196.
  45. Devroey P., Liu J., Nagy Z. et al. Pregnancies after testicular sperm extraction and intracytoplasmic sperm injection in non-obstructive azoospermia//Hum. Reprod. 1995. Vol. 10. P. 1457−1460
  46. Devroey P., Nagy Z., Tournaye H. et al. Outcome of intracytoplasmic sperm injection with testicular spermatozoa in obstructive and nonobstructive azoospermia//Hum. Reprod. 1996. Vol. 11. P. 1015−1018.
  47. Devroey P., Staessen C., Camus M. Zygote intrafallopian transfer as successful treatment for unexplained infertility // Fertil. Steril. 1989. Vol. 52 P. 875−876.
  48. Diez C., Le Bourhis D., Heyman Y. et al. Effect of partial lipid removal from in vitro produced bovine zygotes on further development in vitro and on the freezing tolerance of blastocysts // Theriogenology. 1996. Vol. 45. P. 166.
  49. Dokras A., Sargent I., Barlow D. Human blastocyst grading: an indicator of developmental potential? // Hum. Reprod. 1993. Vol. 8. P. 2119−2127.
  50. Dolian G., Alexaniaats S., Tatevosian M. Some hormonal indeces at women with induced ovulation pregnancy // J. Perinat. Medicine. 1991. Vol. 19(2). P. 115.
  51. Dumoulin J., Bergers-Janssen J., Pieters M. et al. The protective effects of polymers in the cryopreservation of human and mouse zonae pellucidae and embryos // Fertil. Steril. 1994. Vol. 62. P. 793−798.
  52. Dvorak M. Ultrastructure and quantitative analysis of mouse and human oocytes. In: Liss AR (ed.), Developments in Ultrastructure of Reproduction // New York: Academic Press. 1989. P. 273−280.
  53. Edgar D., Bourne H., Speirs A. et al. A quantitative analysis of the impact of cryopreservation on the implantation potential of human early cleavage stage embryos // Hum. Reprod. 2000. Vol. P. 175 179.
  54. Edwards R. Maturation in vitro of mouse, sheep, cow, pig, rhesus monkey and human ovarian oocytes //Nature. 1965. Vol. 208. P. 349−351.
  55. Edwards R., Brody S. Principles and Practice of Assisted Human Reproduction// Saunders. 1995. Philadelphia.
  56. El-Danasouri I., Selman H. Successful pregnancies and deliveries after a simple vitrification protocol for day 3 human embryos // Fertil Steril. 2001. Vol. 76. P. 400−4002.
  57. Elliot K., Whelan J. The freezing of mammalian embryos. CIBA foundation symposium 52. Elsevier / North Holland, Amsterdam. 1977.
  58. Emiliani S., Van den Bergh M., Vannin A.S. et al. Comparison of ethylene glycol, 1,2-propanediol, and glycerol for cryopreservation of slow-cooled mouse zygotes, 4-cell embryos, and blastocysts // Hum. Reprod. 2000. Vol. 15. P. 905−910.
  59. Endocrinology (Basic and Clinical Principles) / Ed. P. Michael Conn and Shlomo Melmed. Humana Press, Totowa, New Jersey, 1997. P. 183−223.
  60. Englert J. et al. The protection of the human embryo in vitro. Report by the Working Party on the Protection of the Human Embryo and Fetus (CDBI-CO-GT3). Steering Committee on bioethics of Council of Europe (CDBI) // Strasbourg, 19 June 2003.
  61. Eppig J. Oocyte maturation // In Vitro Fert. and Assist. Reprod. 1997. Monduzzi Editore. Bologna. P. 133−138.
  62. Fahy G. Vitrification: a new approach to organ cryopreservation. In: Meryman H.T. (ed.) // Transplantation: Approaches to Graft Rejection. New York, AlanRLiss. 1986. P. 305−335.
  63. Fahy G., MacFarlane D., Angell C. et al. Vitrification as an approach to cryopreservation//Cryobiology. 1984. Vol. 21. P. 407−426.
  64. Fehilly C., Cohen J., Simmons R. et al. Cryopreservation of cleaving embryos and expanded blastocysts in the human: a comparative study // Fertil. Steril. 1985. Vol. 44. P. 638−644.
  65. Ferraretti A., Gianaroli L., Magli C. et al. Elective cryopreservation of all pronucleate embiyos in women at risk of ovarian hyperstimulation syndrome: efficiency and safety // Hum. Reprod. 1999. Vol. 14. P. 14 571 460.
  66. Fleming R., Howies C. New trends in superovulation // Science and Medicine. 1991. P. 3−25.
  67. Fleming R., Jamieson M., McQueen D. et al. Follicular phase initiation of GnRH-a theory for ovarian stimulation // GnRH analogues in Obstretics and Gynecology. 1990. Vol. 3. P. 71−78.
  68. Franks S., Mason H., Willis D. Disoders of folliculogenesis in polycystic ovary syndrom // Ovulation induction. 1998. P. 37−40.
  69. Freedman M., Farber M., Farmer L. et al. Pregnancy resulting from cryopreserved human embryos using a one-step in situ dilution procedure // Obstet. Gynecol. 1988. Vol. 72. P. 502−505.
  70. Fridstrom M., Carlstrom K., Sjoblom P. et al. Effect of prednisolone on serum and follicular fluid androgen concentrations in women with polycystic ovary syndrome undergoing in-vitro fertilization // Hum. Reprod. 1999. Vol. 14 P. 1440−1444.
  71. Friedler S., Mashiach S., Laufer N. Births in Israel 1982−1989: National Registry of the Israeli Association resulting from in-vitro fertilization/embryo transfer, for Fertility Research // Hum. Reprod. 1992. Vol. 7. P. 1159−1163.
  72. Fritz M., Speroff L. Current conceptions of the endocrine characteristics of normal menstrual function: the key to diagnosis and management of menstrual disorders // Clin. Obstetr. And Gynecol. 1983. Vol. 26. P. 647 689.
  73. Gardner D., Lane M., Stevens J. et al. Changing the start temperature and cooling rate in a slow freezing protocol increases human blastocyst viability // Fertil. Steril. 2003. Vol. 79. P. 407−410.
  74. Gissler M., Malin Silverio M., Hemminki E. In vitro fertilization pregnancies and perinatal health in Finlandin 1991 to 1993 // Hum. Reprod. 1995. Vol. 10. P. 1856−1861.
  75. Glenister P., Wood M., Kirby C. et al. The incidence of chromosome anomalies in first cleavage mouse embryos obtained from frozen-thawed oocytes fertilized in vitro // Gamete Res. 1987. Vol. 16. P. 205−206.
  76. Gougeon A. Dynamics of follicular growth in the human: a model from preliminary results // Hum. Reprod. 1986. Vol. 1. P. 81−87.
  77. Gook D., Osborn S., Bourne H. et al. Fertilization of human oocytes following cryopreservation- normal karyotypes and absence of stray chromosomes //Hum. Reprod. 1994. Vol. 9. P. 684−686.
  78. Gook D., Osborn S., Johnston W. Cryopreservation of mouse and human oocytes using 1,2-propanediol and the configuration of the meiotic spindle // Hum. Reprod. 1993. Vol. 8. P. 1101−1102.
  79. Gorus F., Pipeleers D. A rapid method for the fractionation of human spermatozoa according to their progressive motility // Fertil. Steril. 1981. Vol. 35. P. 662−665.
  80. Gutierrez A., Garde J., Artiga C. et al. In vitro survival of murine morulae after quick freezing in the presence of chemically defined macromolecules and different cryoprotectants // Theriogenology. 1993. Vol. 39. P. 11 111 115.
  81. Hardarson T., Hanson C., Sjogren A. et al. Human embryos with unevenly sized blastomeres have lower pregnancy and implantation rates: indications for aneuploidy and multinucleation // Hum. Reprod. 2001. Vol. 16. P. 313−318.
  82. Hardy K. Development of human blastocysts in vitro. Serono Symposium on Preimplantation Embryo Development. 1993. Chapter 14. P. 184−199.
  83. Hirsh A. Vitrification in plants as a natural form of ciyoprotection // Cryobiology. 1987. Vol. 24. P. 214−228.
  84. Homburg R., Levy T., Berkovitz D., Farchi J. et al. Gonadotropin-releasing hormone agonist reduses the miscarriage rate for pregnancies achieved in women with polycystic ovarian syndrome // Fertil. Steril. 1993. Vol. 59. P. 527−531.
  85. Hong S., Chung H., Lim J. et al. Improved human oocyte development after vitrification: a comparison of thawing methods // Fertil. Steril. 1999. Vol. 72. P. 142−146.
  86. Howies C., Macnamee B. The endocrinology of superovulation: lessons from assisted conception therapy // Experta Medica. 1989. P. 3−18.
  87. Hunter J., Fuller B., Bernard A. et al. Fertilization and development of the human oocyte following exposure to cryoprotectants, low temperatures and cryopreservation: a comparison of two techniques // Hum. Reprod. 1991. Vol. 6. P. 1460−1462.
  88. Hurtt A., Landim-Alvarenga F., Seidel G. et al. Vitrification of immature and mature equine and bovine oocytes in an ethylene glycol, Ficoll, and sucrose solution using open-pulled straws // Theriogenology. 2000. Vol. 54. P. 119−128.
  89. Imoedemhe D., Sigue A. Survival of human oocytes cryopreserved with or without the cumulus in 1,2-propanediol // Jour. Assist. Reprod. Genet. 1992. Vol. 9. P. 323−324.
  90. Isachenko V., Alabart J., Nawroth F. et al. The open pulled straw vitrification of ovine GV oocytes: positive effect of rapid cooling or rapid thawing or both? // Ciyo Lett. 2001. Vol. 22. P. 157−162.
  91. Jackowski S., Leibo S., Mazur P. Glycerol permeabilities of fertilized and unfertilized mouse ova //Exp. Zool. 1980. Vol. 212. P. 329−333.
  92. Jacobs H. Polycystic ovaries and polycystic ovary syndrome // Gynecol. Endocrinol. 1987. № 1. P. 113−131.
  93. Janny L., Menezo Y. Evidence for a strong paternal effect on human preimplantation embryo development and blastocyst formation // Mol. Reprod. Dev. 1994 Vol. 38. P. 36−42.
  94. Janny L., Menezo Y. Maternal age effect on early human embryonic development and blastocyst formation // Mol. Reprod. Dev. 1996. Vol. 45. P. 31−37.
  95. Jaroudi K., Hollanders J., Sieck U. et al. Pregnancy after transfer of embryos which were generated from in vitro matured oocytes // Hum. Reprod. 1997. Vol. 12. P. 857−859.
  96. Jelinkova L., Selman H., Arav A. et al. Twin pregnancy after vitrification of 2-pronuclei human embryos // Fertil. Steril. 2002. Vol. 77. P. 412−414.
  97. Jeulin C., Feneux D., Serres C. et al. Sperm factors related to failure of human in vitro fertilization // J. Reprod. Fertil. 1986. Vol. 76. P. 1−4.
  98. Kanno H., Speedy R., Angell C. Supercooling of water to -96°C under pressure // Science. 1975. Vol. 189. P. 880−881.
  99. Karow A., Liu W., Humphries A. Survival of dog kidneys subjected to high pressures: necrosis of kidneys after freezing // Cryobiology. 1970. Vol. 7.P.122−128.
  100. Kasai M., Hamguchi Y., Zhu S. et al. High survival of rabbit morulae after vitrification in an ethylene glycol based solution by a simple method // Biol. Reprod. 1992. Vol. 46. P. 1042−1048.
  101. Kasai M., Komi J., Takakamo A. et al. A simple method for mouse embryo cryopreservation in a low toxicity vitrification solution, without appreciable loss of viability // J Reprod Fertil. 1990. Vol. 89. P. 91−97.
  102. Keel B., May J., DeLonge C. Handbook of the assisted reproduction laboratory. 2000. P. 264−266.
  103. Khan I., Staessen C., Van den Abbeel E. et al. Time of insemination and its effect on in-vitro fertilization, cleavage and pregnancy rates in GnRH agonist/HMG-stimulated cycles // Hum. Reprod. 1989. Vol. 4. P. 921 926.
  104. Klotzko A. The debate about Dolly // Bioethics. 1997. Vol. 11. P. 427−429
  105. Knobil E. The neuroendocrine control of the menstrual cycle // Recent. Prog. Horm. Res. 1980. Vol. 36. P. 53−88.
  106. Kodama H., Fukuda J., Karube H. et al. High incidence of embryo transfer cancellations in patients with polycystic ovarian syndrome // Hum. Reprod. 1995. Vol. 10. P. 1962−1967.
  107. Kola I., Kirby C., Shaw J. et al. Vitrification of mouse oocytes results in aneuploid zygotes and malformed fetuses // Teratology. 1988. Vol. 38. P. 267−269.
  108. Krueger T., Acosta A., Simmons K. et al. Predictive value of abnormal sperm morphology in vitro fertilization // Fertil. Steril. 1988. Vol. 49. P. 112−115.
  109. Kuleshova L., Gianaroli L., Magli C. et al. Birth following vitrification of a small number of human oocytes: case report // Hum. Reprod. 1999a. Vol. 14. P. 3077−3079.
  110. Kuleshova L., MacFarlane D., Trounson A. et al. Sugars exert a major influence on the vitrification properties of ethylene glycol-based solutions and have a low toxicity to embryos and oocytes // Cryobiology. 1999b. Vol.38. P. 119−130.
  111. Kuleshova L., Shaw J., Trounson A. Studies on replacing most of the penetrating cryoprotectant by polymers for embryo cryopreservation // Cryobiology. 2001. Vol. 43. P. 21−31.
  112. Kuwayama M. Vitrification of human oocytes and embryos. In Suzuki S (ed.) IVF Updatein Japanese. // Medical View Co. Tokyo, Japan. 2001. P. 230−234.
  113. Kuwayama M., Kato O. All round vitrification of human oocytes and embryos J. Assist. Reprod. Genet. 2000a. Vol. 17. P. 477.
  114. Kuwayama M., Kato O. Successful vitrification of human oocytes // Fertil. Steril. 2000b. Vol. 74. P. 349.
  115. Lane M., Bavister B., Lyons E. et al. Container-less vitrification of mammalian oocytes and embryos // Nat. Biotechnol. 1999a. Vol. 17. P. 1234−1236.
  116. Lane M., Schoolcraft W., Gardner D. Vitrification of mouse and human blastocysts using a novel cryoloop container-less technique // Fertil. Steril. 1999b. Vol.72. P. 1073−1078.
  117. Lehninger A. Biochemistry: The Molecular Basis of Cell Structure and Function // New York: Worth Publishers. 1972.
  118. Leibo S. Water permiability and it’s activation energy of fertilized and unfertilized mouse ova //Membr. Biol. 1980. Vol. 53. P. 179−182.
  119. Leibo S., McGrath J., Cravalho E. Microscopic observation of intracellular ice formation in unfertilized mouse ova as a function of cooling rate // Cryobiology. 1978. Vol. 15. P 257−259.
  120. Lewin A., Schenker J., Safran A. et al. Embryo growth rate in vitro as an indicator of embryo quality in IVF cycles // Jour. Assist. Reprod. Genet. 1994. Vol. 11. P. 500−503.
  121. Liebermann J., Tucker M. Effect of carrier system on the yield of human oocytes and embryos as assessed by survival and developmental potential after vitrification // Reproduction. 2002a. Vol. 124. P. 483−489.
  122. Liebermann J., Nawroth F., Isachenko V. et al. Potential importance of vitrification in reproductive medicine // Biol. Reprod. 2002b. Vol. 67. P. 1671−1680.
  123. Liebermann J., Tucker M., Graham J. et al. Mathiopoulou H., Stillman R., Levy M. The importance of cooling rate for successful vitrification of human oocytes: comparison of the cryoloop with the flexipet // Biol. Reprod. 2002c. Vol. 66. P. 1195.
  124. Liebermann J., Tucker M., Graham J. et al. Blastocyst development after vitrification of multipronucleate zygotes using the flexipet denuding pipette (FDP) // RBMOnline. 2002d. Vol. 4. P. 148−52.
  125. Liu D., Baker H. A new test for the assessment of sperm-zona pellucida penetration: relationship with results of other sperm tests and fertilization in vitro // Hum. Reprod. 1994. Vol. 9. P. 489−491.
  126. Liu D., Baker H. Tests of human sperm function and fertilization in vitro // Fertil. Steril. 1992. Vol. 58. P. 465−467.
  127. Liu J., Katz E., Garcia J. et al. Successful in vitro maturation of human oocytes not exposed to human chorionic gonadotropin during ovulation induction, resulting in pregnancy // Fertil. Steril. 1997. Vol. 67. P. 566 568.
  128. Liu J., Nagy Z., Joris H. et al. Analysis of 76 total fertilization failure cycles out of 2732 intracytoplasmic sperm injection cycles // Hum. Reprod. 1995. Vol. 10. P. 2630−2634.
  129. London S., Haney A., Weinberg J. Macrophages and Infertility: Enhancement of Human Macrophage-mediated Sperm Killing by Antisperm Antibodies //Fertil. Steril. 1985. Vol. 43. P. 274−282.
  130. Luyet B. The vitrification of organic colloids and of protoplasm // Biodynamica. 1937. Vol. 1. P. 1−14.
  131. MacDougall M., Tan S., Balen A. et al. A controlled study comparing patients with and without polycystic ovaries undergoing in in vitro fertilization//Hum. Reprod. 1993. Vol. 8. P. 233−237.
  132. MacFarlane D. Physical aspects of vitrification in aqueous solutions // Cryobiology. 1987. Vol. 24. P. 181−195.
  133. MacFarlane D., Scheirer J., Smedley S. Pressure coefficient of conductance and of glass transition temperatures in concentrated aqueous LiCl, Lil, and A1C13 solutions // J. Phys. Chem. 1986. Vol. 90 P. 21 682 173.
  134. Macnamee M., Howies C., Edwards A. Short term luteinizing hormone releasing hormone agonist: prospective trial of a novel ovarian stimulation regiment for in vitro fertilization // Fertil. Steril. 1989. Vol. 52. P. 264−269.
  135. Magistrini M., Szollosi D. Effects of cold and isopropyl-N-phenylcarbamate on the second meiotic spindle of mouse oocytes // Eur. J. Cell Biol. 1980. Vol. 22. P. 699−707.
  136. Marek D., Langley M., Gardner D. et al. Introduction of blastocyst culture and transfer for all patients in an in vitro fertilization program // Fertil. Steril. 1999. Vol. 72. P. 1035−1040.
  137. Maro B., Howlett S., Webb M. Nonspindle microtubule organization centers in metaphase II-arrested mouse oocytes // Cell Biol. 1985. Vol. 101. P. 1665−1672.
  138. Martino A., Songsasen N., Leibo S. Development into blastocysts of bovine oocytes cryopreserved by ultrarapid cooling // Biol. Reprod. 1996. Vol. 54. P. 1059−1069.
  139. Matsumoto H., Jiang J., Tanaka T. et al. Vitrification of large quantities of immature bovine oocytes using nylon mesh // Cryobiology. 2001. Vol. 42. P. 139−144.
  140. Mazur P. Equilibrium, quasi-equilibrium, and nonequilibrium freezing of mammalian embryos // Cell Biophys. 1990. Vol. 17. P. 53−56.
  141. Menezo Y., Nicollet B., Herbaut N. et al. Freezing cocultured human blastocysts //Fertil. Steril. 1992. Vol. 58. P. 977−980.
  142. Mills M., Eddowers H., Cahill D. et al. A prospective controlled study of in-vitro fertilization, gamete intra-fallopian transfer and intrauterine insemination combined with superovulation // Hum. Reprod. 1993. Vol. 7. p. 490−494.
  143. Minguez Y., Rubio C., Bernal A. et al. The impact of endometriosis in couples undergoing intracytoplasmic sperm injection because of male infertility // Hum. Reprod. 1997. Vol. 12. P. 2282 2285.
  144. Mordel N., Zajicek G., Simon A. et al. Evidence for better follicular synchronization in combined gonadotropin releasing hormone agonist -human menopausal gonadotropin treatment for in vitro fertilization: The
  145. Proceedings of the 2nd Intern. Symp. On GnRH Analogues in Cancer and
  146. Human Reproduction. Geneva, November, 1990. P. 15−20.
  147. MRC Working Party. Births in Great Britain resulting from assisted conception 1978−87 // British Medical Journal. 1990. Vol. 300. P. 12 291 233.
  148. Mukaida T., Nakamura S., Tomiyama T. et al. Successful birth after transfer of vitrified human blastocysts with use of a cryoloop container-less technique // Fertil. Steril. 2001. Vol. 76. P. 618−623.
  149. Nagashima H., Kashiwasaki N., Ashman R. et al. Recent advances in cryopreservation of porcine embryos // Theriogenology. 1994. Vol. 41. P. 113−118.
  150. Nagashima H., Kashiwazaki N., Asman R. et al. Cryopreservation of porcine embryos //Nature. 1995. Vol. 374. P. 416−417.
  151. Nagashima H., Kuwayama M., Grupen C. et al. Vitrification of porcineearly cleavage stage embryos and oocytes after removal of cytoplasmic lipid droplets // Theriogenology. 1996. Vol. 45. P. 180.
  152. Nagy Z., Verhyen G., Tournaye H. et al. Special applications on intracytoplasmic sperm injection: the influence of sperm count, motility, morphology, source and sperm antibody on the outcome of ICSI // Hum. Reprod. 1998. Vol. 13. P. 143−154.
  153. Nakayma T., Goto Y., Kanzaki H. et al. Developmental potential of frozen thawed human blastocysts // Jour. Assist. Reprod. Genet. 1995. Vol. 12. P. 239−243.
  154. Navot D. Practical guidelines to prevention and management of ovarian hyperstimiluation syndrome// Serono fertility series. 1997. Vol. 1 P. 59−68.
  155. Ng S., Liow S., Sathananthan H. et al. Review: Microinjection of human sperm directly into human oocytes // J. Assist. Reprod. Genet. 1993. Vol. 10. P. 337−339.s
  156. Ng, S., Liow S., Ahmad A. et al. Sperm microinjection, in Visual Atlas Human Sperm Structure and Function for Assisted Reproductive Technology// Serono, Singapore. 1996. P. 175−178.
  157. Niemann H., Lucas-Hahn A., Stoffregen C. Cryopreservation of bovine oocytes and embryos following microsurgical operation // Mol. Reprod. Dev. 1993. Vol. 36. P. 232−235.
  158. Nygren K., Nyboe Andersen A. Assisted reproductive technology in Europe 1997. Results generated fromEuropean registers by ESHRE // Hum. Reprod. 2001. Vol. 16. P. 284−291.
  159. Oberstein N., O’Donovan M., Bruemmer J. et al. Cryopreservation of equine embryos by open pulled straws, cryoloop, or conventional cooling methods // Theriogenology. 2001. Vol. 15. P. 607−613.
  160. O’Neill L., Paynter S., Fuller B. Vitrification of mature mouse oocytes: Improved results following addition of polyethylene glycol to a dimethyl sulfoxide solution // Cryobiology. 1997. Vol. 34. P. 295−301.162. Organon, IVF News. 1997.
  161. Page D., Siber S., Brown L. Men with infertility caused by AZFc deletion can produce sons by introcytiplasmic sperm injection, but are likely to transmit the deletion and infertility // Hum. Reprod. 1999. Vol. 14. P. 1722−1726.
  162. Palermo G., Joris H., Devroey P. et al. Pregnancies after intracytoplasmic injection of single spermatozoon into an oocyte // Lancet. 1992. Vol. 340. No. 8810. P. 17−18.
  163. Park S., Kim E., Kim D. et al. Simple, efficient and successful vitrification of bovine blastocysts using electron microscopic grid // Hum. Reprod. 1999. Vol. 14. P. 2838−2843.
  164. Park S., Kim E., Oh J. et al. Ultrarapid freezing of human multipronuclear zygotes using electron microscope grids // Hum. Reprod. 2000. Vol. 15. P. 1787−1790.
  165. Parks J., Graham J. Effects of cryopreservation procedures on sperm membranes //Theriogenology. 1992. Vol. 38. P. 209−211.
  166. Parks J., Ruffin N. Factors affecting low temperature survival of mammalian oocytes // Theriogenology. 1992. Vol. 37. P. 59−73.
  167. Pedro P., Zhu S., Makino N. et al. Effects of hypotonic stress on the survival of mouse oocytes and embryos at various stages // Cryobiology. 1997. Vol. 35. P. 150−158.
  168. Pickering S., Braude P., Johnson M. et al. Transient cooling to room temperature can cause irreversible disruption of the meiotic sprindle in the human oocyte//Fertil. Steril. 1990. Vol. 54. P. 102−108.
  169. Pickering S., Johnson M. The influence of cooling on the organization of the meiotic spindle of the mouse oocytes // Hum Reprod. 1987. Vol. 2. P. 207−216.
  170. Pollard J., Leibo S. Chilling sensitivity of mammalian embryos // Theriogenology. 1994. Vol. 41. P. 101−104.
  171. Porcu E., Fabbri R., Seracchioli R. Birth of a healthy female after intracytoplasmic sperm injection of cryopreserved human oocytes // Fertil. Steril. 1997. Vol. 68. P. 724−726.
  172. Pregnancies and births resulting from in vitro fertilization // Fertil. Steril., 1995. Vol. 64. P. 746−756. FIVNAT (French In vitro National).
  173. Quinn P. Principles of membrane stability and phase behavior under extreme conditions // J. Bioenerg Biomembr. 1989. Vol. 21. P. 3−19.
  174. Rail W., Fahy G. Ice-free cryopreservation of mouse embryos at -196°C by vitrification//Nature. 1985. Vol. 313. P. 573−575.
  175. Richard D., Bufalos M., Terence Lee C. Polycystic ovary syndrome: pathophysiology and results of in vitro fertilization // Fertil. Steril. 1996. Vol. 65. P. 5−11.
  176. Roest J., Mous H., Zeimaker G. et al. The incidence of major clinical complications in a Dutch transport IVF program // Hum. Reprod. 1996. Vol. 2. P. 345−353.
  177. Ruffing N., Steponkus P., Pitt R. et al. Osmometric behavior, hydraulic conductivity, and incidence of intracellular ice formation in bovine oocytes at different developmental stages // Cryobiology. 1993. Vol. 30. P. 562 580.
  178. Russel J., Knezevich K., Fabian K. et al. Unstimulated immature oocyte retrieval: early vs. mid follicular endometrial priming // Fertil. Steril. 1997. Vol. 67. P. 616−620.
  179. Sampalo M., Serra V., Miro F. et al. Development of ovarian cysts during GnRH analogues administration // Hum. Reprod. Abstracts of the 2nd ESCO-ESHRE Meeting. Milan. 1990. P. 115.
  180. Sathananthan A. Ultrastructural changes during meiotic maturation in mammalian oocytes: unique aspects of the human oocyte // Microsc Res Tech. 1994. Vol. 27. P. 145−164.
  181. Sathananthan A., Kirby C., Peura A. et al. Mouse oocyte cooling // J. Assist Reprod Genet. 1992. Vol. 9. P. 139−148.
  182. Scott L., Alvero R., Leondires M. et al. Pronuclear morphology // Hum. Reprod. 2000. Vol. 15. P. 1- 10.
  183. Selman H., El-Danasouri I. Pregnancies derived from vitrified human zygotes// Fertil. Steril. 2002. Vol. 77. P. 422−423.
  184. Senor S., Glekli B., Turhan N. et al. Does the suppression criteria in GnRHa cycles predict in vitro fertilization outcome // Hum. Reprod. 1993. Vol. 8. P. 154.
  185. Shaw J., Diotavellevi L., Trounson A. A simple rapid dimethyl sulphoxide freezing technique for the cryopreservation of one-cell to blastocyst stage preimplantation mouse embryos // Reprod. Fertil. 1991. Vol. 3. P. 621−623.
  186. Shaw J., Kuleshova L., MacFarlane D. et al. Vitrification properties of solutions of ethylene glycol in saline containing PVP, Ficoll, or dextran // Cryobiology. 1997. Vol. 35. P. 219−229.
  187. Shea B., Baker R., Latuor J. Human follicular oocytes and their matiration in vitro // Fertil. Steril. 1975. Vol. 26. P. 1075−1082.
  188. Shulman A., Gen-nun I., Ghetler Y. et al. Relationship between embryo morphology and implantation rate after in vitro fertilization treatment in conception cycles // Fertil. Steril. 1993. Vol. 60. P. 123−126.
  189. Simon C., Guiterrez A., Vidal A. et al. Outcome with patients with endometriosis in assisted reproduction: results from in-vitro fertilization and oocyte donation // Hum. Reprod. 1994. Vol. 9. P. 725−729.
  190. Somerville C. Direct test of the role of membrane lipid composition in low temperature induced photoinhibition and chilling sensitivity in plants and cyanobacteria // Proc. Natl. Acad. Sci. 1995. Vol. 92. P. 6215−6218.
  191. Sperling K. Frequency and origin of chromosome abnormalities in man // Mutation in map. 1984. Springer Berlin, Heidelberg, N-Y.
  192. Speroff L., Glass R., Kase N. Clinical Gynecologic Endocrinology and infertility // Fifth Edition. Baltimore, Maryland, USA, 1994.
  193. Stadtmauer L., Wong B., Oehninger S. Should patients with polycystic ovary syndrome be treated with metformin?: Benefits of insulin sensitizing drugs in polycystic ovary syndrome—beyond ovulation induction // Hum. Reprod. 2002. Vol. 17. P. 3016−3026.
  194. Staessen C., Devroey P., Camus M. et al. The relationship between embryo quality and the occurrence of multiple pregnancies // Fertil. Steril. 1992. Vol. 57. P. 626−630.
  195. Steptoe P., Edwards R., Walters D. Observations on 767 clinical pregnancies and 500 birth after human in vitro fertilization // Hum. Reprod. 1986. Vol. 1. P. 89−98.
  196. Steptoe P., Edwards R. Preimplantation of a human embryo with subsequent tubal pregnancy // Lancet. 1976. Vol. 1. P. 880.
  197. Steptoe P., Edwards R. Birth after the preimplantation of a human embryo //Lancet. 1978. Vol. 2. P. 366.
  198. Steward J., Hamilton P., Murdoch A. Thromboembolic disease associated with ovarian stimulation and assisted conception techniques // Hum. Reprod. 1997. Vol. 12. P. 2167−2173.
  199. Sutton R. Organ cryopreservation // Chem Br. 1991. Vol. 27. P. 432−434.
  200. Tarin J., Trounson A. Effects of stimulation or inhibition of lipid peroxidation on freezing thawing of mouse embryos // Biol. Reprod. 1993. Vol. 49. P. 1362−1364.
  201. Todorow S., Siebzehnrubi E., Spitzer M. et al. Comparative results on survival of human and animal eggs using different cryoprotectants and freeze-thawing regimens. II human // Hum. Reprod. 1989. Vol. 4/ P/ 812 815.
  202. Toth T., Baka S., Veeck L. et al. Fertilization and in vitro development of cryopreserved human prophase I oocytes // Fertil. Steril. 1994a. Vol. 61. P. 891−893.
  203. Toth T., Lanzendorf S., Sandow B. et al. Cryopreservation of human prophase I oocytes collected from unstimulated follicles // Fertil. Steril. 1994b. Vol. 61. P. 1077−1079.
  204. Trounson A., Mohr L. Human pregnancy following cryopreservation, thawing, and transfer of an eight-cell embryo// Nature. 1983. Vol. 305. P. 707−709.
  205. Trounson A., Peura A., Freemann L. et al. Ultrarapid freezing of early cleavage stage human embryos and eight cell mouse embryos // Fertil. Steril. 1988. Vol. 49. P. 822−826.
  206. Trounson A., Peura A., Kirby C. Ultrarapid freezing: a new low cost and effective method of embryo cryopreservation // Fertil. Steril. 1987. Vol. 48. P. 843−850.
  207. Trounson A., Wood C., Kausche A. In vitro maturation and the fertilization and developmental competence of oocytes recovered from untreated polycystic ovarian petients // Fertil. Steril. 1994. Vol. 62. P. 353 362.
  208. Tucker M., Morton P., Wright G. et al. Clinical application of human egg cryopreservation//Hum. Reprod. 1998.Vol. 13. No. 11. P. 3156−3159.
  209. Tucker M., Wright G., Morton P. et al. Preliminary experience with human oocyte cryopreservation using 1,2-propanediol and sucrose // Hum. Reprod. 1996. Vol. 11. P. 1513−1515.
  210. Vajta G., Booth P., Holm P. et al. Successful vitrification of early stage bovine in vitro produced embryos with the open pulled straw (OPS) method // Ciyo Lett. 1997. Vol. 18. P. 191−195.
  211. Vajta G., Holm P., Kuwayama M. et al. Open pulled straws (OPS) vitrification: a new way to reduce cryoinjuries of bovine ova and embryos // Mol. Reprod. Dev. 1998. Vol. 51. P. 53−58.
  212. Van der Elst J., Camus M., Van den Abbeel E. et al. Prospective randomised study on the cryopreservation of human embryos with dimethylsulfoxide or 1,2-propanediol protocols // Fertil. Steril. 1995. Vol. 63. P. 92−94.
  213. Van Kooij R. Fertilization practice // Laboratory aspects of in vitro fertilization / Eds.: Bras M., Lens J., Piederiet M. et al. The Niderlands: N. V. Organon, 1996. P. 147−164.
  214. Van Steirteghem, A., Nagy, Z., Joris, H. et al. High fertilization and implantation rates after intracytoplasmic sperm injection // Hum. Reprod. 1993. Vol. 8. P. 1061−1064.
  215. Van Steirteghem, A., Nagy, Z., Liu, J. et al. Intracytoplasmic sperm injection ICSI // Reprod. Med. Rev. 1994. Vol. 3. P. 199−201.
  216. Van Uem., Siebzehuruble E., Schuh B. et al. Birth after cryopreservation of unfertilized oocytes // Lancet. 1987. Vol. 1. P. 752−753.
  217. Vandervorst M., Vanderzwalmen P., Standaart V. et al. Blastocyst transfer after vitrification in a hemistraw (HS) system // Hum. Reprod. 2001. Vol. 16. P. 1153−154.
  218. Vanderzwalmen P., Bertin G., Debauche Ch. et al. Births after vitrification at morula and blastocyst stages: effect of artificial reduction of the blastocoelic cavity before vitrification // Hum. Reprod. 2002. Vol. 17. P. 744−751.
  219. Virant-Klun I., Tomazevic T., Bacer-Kermavner L. et al. Successful freezing and thawing of blastocysts cultured in sequential media using a modified method // Fertil. Steril. 2003. Vol. 79. P. 1428−1433.
  220. Von During V. Pregnancies, births and infants after in-vitro fertilization in Norway (Norwegian) // Tidsskrift for den Norske Laegeforening. 1995. Vol. 115. P. 2054−2060.
  221. Whittemore A., Harris R., Itnyre J. and Collaborative Cancer Group Characteristics relating to ovarian cancer risk: collaborative analysis of 12 US case control studies // Am. J. Epidemiol. 1992. Vol. 136. P. 11 841 203.
  222. Whittingham D., Leibo S., Mazur P. Survival of mouse embryos frozen to -196°C and-269°C//Science. 1972. Vol. 178. P. 411−413.
  223. Wilmut I. The effect of cooling rate, warming rate, cryoprotective agent, and stage of development on survival of mouse embryos during freezing and thawing//Life Sei. 1972. Vol. IIP. 1071−1074.
  224. World Health Organization (WHO). Laboratory manual for the examination of human semen and semen-cervical mucus interaction. UK: Cambridge University Press, 1999. 129 P.
  225. Yeoman R., Gerami-Naini B., Mitalipov S. et al. Cryoloop vitrification yields superior survival of rhesus monkey blastocysts // Hum. Reprod. 2001. Vol. 16. P. 1965−1969.
  226. Yokota Y., Sato S., Yokota M. et al. Successful pregnancy following blastocyst vitrification // Hum Reprod. 2000. Vol. 15. P. 1802−1803.
  227. Yoon T., Chung H., Lim J. et al. Pregnancy and delivery of healthy infants developed from vitrified oocytes in a stimulated in vitro fertilization-embryo transfer program // Fertil. Steril. 2000. Vol. 74. P. 180−181.
  228. Young E., Kenny A., Puigdomenech E. et al. Triplet pregnancy after intracytoplasmic sperm injection of cryopreservad embryos: case report // Fertil. Steril. 1998. Vol. 70. P. 360−361.
  229. Zhu S., Kasai M., Otoge H. et al. Ciyopreservation of expanded mouse blastocysts by vitrification in ethylene glycol-based solutions // J. Reprod. Fertil. 1993. Vol. 98. P. 139−145.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!