Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Ранний гаметогенез сиговых рыб р. Coregonus в условиях искусственного содержания

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Будучи ценными объектами рыболовства, природные популяции сиговых рыб подвергаются значительному перелову, нарушающему равновесие внутрии межпопуляционного генного разнообразия. Неверно выбранные подходы при разведении снижают рост, плодовитость, устойчивость рыб к болезням и стрессамснижение уровня гетерозиготности ведет к низкому темпу эмбриогенеза, а загрязнение окружающей среды подавляет… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Ранний онтогенез рыб: формирование линии половых клеток
      • 1. 1. 1. Дисскуссионные аспекты происхождения, морфологии и пролиферации ППК у рыб
      • 1. 1. 2. Маркеры, миграция и локализация ППК в"прегонадный период" развития у рыб
      • 1. 1. 3. Эмбриональное и личиночное развитие сиговых рыб в различных экологических у ело в иях
    • 1. 2. Влияние экстремальных факторов на гаметогенез в раннем онтогенезе рыб
    • 1. 3. Гамето- и гонадогенез рыб в постэмбриональный период
      • 1. 3. 1. Гаметогенез рыб в постэмбриональном 36 периоде
      • 1. 3. 2. Диф ф ер енцир о вк, а пола и формирование фонда половых клеток у рыб
  • Глава 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Материал для анализа
    • 2. 2. Методы анализа
  • Глава 3. МОРФОДИНАМИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ ПЕРВИЧНЫХ ПОЛОВЫХ КЛЕТОК В ЭМБРИОГЕНЕЗЕ СИГОВЫХ РЫБ
    • 3. 1. Цитоморфологические изменения первичных гоноцитов у зародышей сиговых рыб по вариантам разных
    • 3. 2. Оценка межвидовых отношений сиговых рыб по цитометрическим показателям ППК в эмбриональный период
  • Глава 4. МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ У ЭМБРИОНОВ СИГОВЫХ РЫБ В УСЛОВИЯХ ФЕНОЛБНОЙ ИНТОКСИКАЦИИ
    • 4. 1. Хроническое воздействие фенола на формирование линии половых клеток в эмбриогенезе сига и его гибрида с рипусом
      • 4. 1. 1. Патоморфологические изменения зародышей сига и гибридной формы в условиях фенольной интоксикации
      • 4. 1. 2. Первичные гоноциты у сига и гибридной формы при фенольной интоксикации
  • Глава 5. РАННИЙ ГАМЕТОГЕНЕЗ СИГОВЫХ РЫБ В
  • ИСКУССТВЕННЫХ УСЛОВИЯХ СОДЕРЖАНИЯ
    • 5. 1. Дифференцировка пола у муксуна в условиях содержания в
  • УЗВ. Индифферентный период развития гонад
    • 5. 2. Развитие репродуктивной системы у сига в условиях 96 УЗВ. Индифферентный период развития гонад
    • 5. 3. Формирование фонда половых клеток у сиговых рыб
  • Глава 6. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Ранний гаметогенез сиговых рыб р. Coregonus в условиях искусственного содержания (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Сиговые рыбы (Coregonidae, Salmoniformes) являются важными представителями ихтиофауны озерно-речных систем субарктической и бореальной природно-климатических зон Евразии и Северной Америки. Об их филогении, месте возникновения и путях расселения высказываются спорные и нередко противоположные мнения [Пирожников и др., 1975; Решетников, 1975, 1980, 2010; Шапошникова, 1976; Бодали и др., 1994; Сендек, 2000; Боровикова, Махров, 2009; Политов и др., 2010 и др.]. Вследствие высокой морфо-экологической пластичности, сложной внутривидовой структуры и повышенной межвидовой гибридизации таксономический статус этих рыб по-прежнему остается неясным.

Будучи ценными объектами рыболовства, природные популяции сиговых рыб подвергаются значительному перелову, нарушающему равновесие внутрии межпопуляционного генного разнообразия. Неверно выбранные подходы при разведении снижают рост, плодовитость, устойчивость рыб к болезням и стрессамснижение уровня гетерозиготности ведет к низкому темпу эмбриогенеза [Андрияшева, 2011 и др.], а загрязнение окружающей среды подавляет развитие. В эмбриональный и постэмбриональный периоды формируется линия половых клеток, закладываются основы репродукционного потенциала, регулируется дифференцировка пола, происходит становление потенциальной плодовитости [Персов, 1966, 1975; Чмилевский, 1971, 2000; Рязанцева, Сакун, 1980; Lebrun et al., 1982; Селюков, 1985; Федоров, Бурлаков, 1993; Бурлаков, 2002; Зеленников, 2003; Arezo et al., 2007; Gao et al., 2009 и др.].

В Обь-Иртышском бассейне основные нерестилища сиговых рыб расположены в пока еще чистых уральских притоках Нижней Обиоднако уже в ближайшие годы техногенное давление на них может многократно возрасти вследствие реализации мегапроекта «Урал промышленный — Урал Полярный» [http://www.strategy-center.ru/stock/pics/-Ur prom-Ur polar]. В их воды будут поступать взвеси дражных разработок, каменного угля, тяжелые металлы и другие загрязнители, в т. ч. нефтепродукты и высокотоксичный фенол, что приведет к уничтожению нерестилищ этих видов. Известно, что наиболее уязвимыми у рыб оказываются ранние стадии развития [Данильченко, Строганов, 1975; Данильченко, 1977; Моисеева, 1997; Чмилевский, 1997; Таликина и др., 1999; Nguyen et al., 1999; Руднева, Залевская, 2004; Bourrachot et al., 2008; Foekema et al., 2008], когда еще не сформировались механизмы токсикорезистентности. Среди представителей высшего трофического уровня пресноводных экосистем Обь-Иртышского бассейна сиговые рыбы являются наименее устойчивыми к интоксикации. Вследствие чего возникла настоятельная необходимость в установлении возможных рисков и последствий токсикологической нагрузки на ранние стадии развития и формирующуюся репродуктивную систему этих видов и перспективы их существования в условиях постоянной или кратковременной интоксикации.

Целью работы является цитоморфологическая оценка гаметогенеза сиговых рыб рода Coregonus в эмбриональный и постэмбриональный периоды в различных условиях содержания для определения возможных рисков при их развитии в естественных водоемах и в процессе формирования маточных стад при искусственном разведении.

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи:

1. Исследовать и проанализировать межвидовые различия сиговых рыб в эмбриональный период по морфологическим показателям первичных половых клеток (ППК), выявить взаимосвязь и значимость отдельных цитометрических параметров.

2. Установить особенности развития, цитоморфологию ППК и смертность зародышей сига Coregonus lavaretus maraenoides и его гибрида с рипусом Coregonus albula infrsp. ladogensis под воздействием разных концентраций экотоксиканта фенола.

3. Исследовать особенности дифференцировки пола у муксуна С. тикзип как длинноциклового вида в регулируемых условиях водной среды.

4. Изучить динамику формирования фонда половых клеток в яичниках сеголеток сиговых рыб с разной продолжительностью жизненного циклатугуна С. tugun, муксуна и сига — в условиях установки замкнутого водообеспечения (УЗВ).

Научная новизна. Впервые изучены особенности распределения и соотношение разных состояний первичных половых клеток в эмбриональном периоде у сиговых рыб и с использованием методов многомерной статистики установлено, что среди исследованных цитоморфологических параметров ППК ведущим показателем при оценке межвидовых различий является количество ядрышек. Показано, что в экстремальных условиях содержания, при фенольной интоксикации, наиболее чувствительным показателем при характеристике первичных гоноцитов сиговых рыб в эмбриональный период является состояние ядрышкового аппарата. У муксуна и сига, в отличие от тугуна, в контролируемых условиях УЗВ выявлены низкие темпы дифференцировки гонад и развития репродуктивной системы. Впервые установлены особенности формирования фонда половых клеток у тугуна, муксуна и сига в УЗВ, используемые в качестве модели при создании маточных стад сиговых рыб индустриального типа.

Практическая значимость. Представленные в работе результаты производственных экспериментов с эмбрионами и молодью сиговых рыб в зарегулированных условиях водной среды, направленные на изучение раннего гаметогенеза, характера и динамики пополнения ППК как основы формирования потенциальной плодовитости, могут послужить важным звеном в аналогичных исследованиях других объектов холодноводного рыбоводства в УЗВ. Полученные данные о сроках дифференцировки пола и состоянии фонда половых клеток у сиговых рыб с разной продолжительностью жизненного цикла можно использовать в рыбоводной практике при формировании маточных стад этих ценных видов. Оценка характера и степени влияния фенола — энзиматического яда с нейротоксическими свойствами — на зародышей сиговых рыб и состояние их первичных гоноцитов необходимы при разработке нормативов в водной токсикологии.

Результаты исследований используются при чтении лекций и проведении практических занятий по спецкурсам бакалавриата «Общая ихтиология» и «Экология рыб», магистратуры «Систематика и филогения рыб», «Антропогенное воздействие на биологические системы» отделения биологии Тюменского государственного университета.

Апробация работы. Материалы диссертации докладывались и обсуждались на научно-практической конференции «Пресноводная аквакультура: состояние, тенденции и перспективы развития» (Тюмень, 2008) — X Международном симпозиуме по биологии и биотехнике разведения сиговых рыб (Виннипег, Канада, 2008) — VI Международном форуме по проблемам науки, техники и образования (Москва, 2008) — на конференции молодых ученых «Биосфера Земли: прошлое, настоящее, будущее» (Екатеринбург, 2008) — II Всероссийской научно-практической конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Полевые и экспериментальные исследования биологических систем» (Ишим, 2009) — I конференции молодых ученых ЫАСЕЕ «Вопросы аквакультуры» (Тюмень, 2009) — 7 Международном научно-производственном совещании по биологии и биотехнике разведения сиговых рыб (Тюмень, 2010) — симпозиуме «Мегагранты окружающей среде России» (Санкт-Петербург, 2012) — I Всероссийской конференции «Физиологические, биохимические и молекулярно-генетические механизмы адаптации гидробионтов» (Борок, 2012), на научно-методологических семинарах кафедры зоологии и эволюционной экологии животных Тюменского университета (2009;2012) и лаборатории качества вод, устойчивости водных экосистем и экотоксикологии Тюменского университета (2011;2012).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 12 работ, в том числе 4 статьи в изданиях, рекомендованных ВАК.

Положения, выносимые на защиту:

1. При характеристике сиговых рыб по морфологическим показателям ППК в эмбриональный период наиболее значимым параметром является число ядрышекизменения в структуре ядрышек отражают степень интоксикации.

2. Молодь разных видов сиговых рыб с повышенной интенсивностью соматического роста в контролируемых условиях содержания обладает разным уровнем развития репродуктивной системы, что необходимо учитывать при формировании маточных стад индустриального типа.

Благодарности. Автор выражает глубокую благодарность своему научному руководителю Александру Германовичу Селюкову за ценные советы, понимание и всестороннюю помощь на всех этапах подготовки диссертации. Сердечно благодарит бывшего доцента кафедры зоологии и эволюционной экологии животных к.б.н. Г. Н. Бондаренко, в настоящее время научного сотрудника лаборатории популяционной генетики Института общей генетики имени Н. И. Вавилова РАН, а также аспиранта кафедры Л. А. Шумана — за помощь в сборе и обработке материала. За предоставленный материал автор весьма признателен зав. отделом воспроизводства рыбных запасов Госрыбцентра к.б.н. С. М. Семенченко и зав. сектором лососеводства Н. В. Смешливой.

ВЫВОДЫ.

1. Цитоморфологические и цитометрические различия первичных гоноцитов в период эмбрионального развития у разных видов сиговых рыб в идентичных условиях развития обусловлены видовыми особенностяминаибольший диапазон морфофункционального состояния ППК у тугуна, наименьший — у пеляди.

2. При оценке межвидовых различий эмбрионов сиговых рыб по цитометрическим параметрам ППК их значимость снижается в следующем порядке: число ядрышек, диаметр ядра, диаметр клетки, число синцитиальных образований, число ППКна этапе вылупления число ядрышек не всегда занимает лидирующее положение.

3. Среди предличинок сиговых рыб тугун и пелядь по совокупности цитометрических параметров ППК отчетливо дискриминируется от муксуна, сига-пыжьяна и чира, что на цитоморфологическом уровне может подтверждать таксономическую подразделенность сиговых рыб рода Coregonus.

4. У сиговых рыб как в эмбриональный период, так и на ранних стадиях постэмбрионального онтогенеза связи большинства цитометрических показателей ППК с числом синцитиальных образований не выявляется.

5. Влияние раствора фенола на эмбрионов сига и его гибрида с рипусом характеризуется пролонгированных эффектом даже после перевода их в чистую водунаибольшие патоморфологические изменения проявляются в дегенерации ППК, которая начинается с деструкции ядрышек, в наибольшей степени выявленной у гибрида.

6. Определение пола у муксуна в благоприятных условиях содержания УЗВ продолжается 4−9 месяцев: анатомическая дифференцировка гонад по типу яичников проходит в 70−96 суток, цитологическая — в 115−212 сутокдифференцировка семенников задерживается до 8−9 месяцев.

7. Уровень развития гонад и темп оогенеза у сеголеток сиговых рыб с разной продолжительностью жизненного цикла при содержании в регулируемых условиях УЗВ существенно возрастает в направлении длинноцикловый муксун —> среднецикловый сиг —> короткоцикловый тугун, отражая специфику гонадои гаметогенеза этих видов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.Б. Современные представления о детерминантах клеток зародышевого пути // Онтогенез. 1975. Т.6. С. 427−441.
  2. Т.Б. Цитология оогенеза. М.: Наука, 1984. 247 с.
  3. Н.В. Гаметогенез и половая цикличность сибирского осетра в естественных и экспериментальных условиях // В кн.: Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоемах разных широт. М.: Наука. 1985. С. 111−122.
  4. Н.В. Нарушения в развитии половых клеток у сибирского осетра при тепловодном выращивании // IV Всес.конфер. по раннему онтогенезу рыб. М., 1988. С.4−6.
  5. Н.В. Энергетический обмен и репродукция сибирского осетра // VIII научн. конфер. по экологич. физиол. и биохимии рыб. Петрозаводск. 1992. С.6−7.
  6. Н.В., Рубан Т. П. Систематизация нарушений воспроизводства осетровых (Acipenseridae) при антропогенном воздействии // Вопр. ихтиологии. 1996. Т. 36. № 1. С. 65−80.
  7. Н.В., Рубан Г. И. Аномалии в развитии и функционировании воспроизводительной системы сибирского осетра Acipenser baerii Brandt (Acipenseridae) реки Енисей // Изв. РАН. Сер. биологич. 2009. № 5. С. 627−631.
  8. Я.Н. Роль митохондрий в биогенезе зародышевых детерминантов: Автореф. дис.. канд. биол. наук. Владивосток, 2005. 23с.
  9. И.А., Брауде А. И., Аспиз М. Е. Основы функциональной морфологии клетки. М.: Медицина. 1969. 402 с.
  10. В.Л., Решетников Ю. С. Исследование внутривидовой и морфологической изменчивости сига Coregonus lavaretus (L.) методами многомерного статистического анализа // Вопр. ихтиологии. 1977. Т. 17. Вып. 5. С. 862−878.
  11. М.А. Генетические аспекты разведения сиговых рыб. С-Пб.: ГосНИОРХ, 2011. 639 с.
  12. В.И. Биология и разведение баунтовского сига // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. Л. 1967. Т.63. С. 74−124.
  13. В.В., Романенко В. Д., Макарова Т. А. Закономерности изменения ядрышкообразующей функции в онтогенезе карповых рыб // Успехи современной биологии. 1993. Т. 113. В.5. С. 626−636.
  14. A.B. Морфофункциональное исследование стволовых клеток беспозвоночных животных с репродуктивной стратегией, включающей бесполое размножение // Автореф.. канд. биол. наук. Владивосток: Институт биологии моря ДВО РАН. 2008. 23 с.
  15. М.М., Федоров К. Е. Ранний гамето- и гонадогенез осетровых рыб. I. О критериях сравнительной оценки развития половых желез молоди на примере русского осетра Acipenser gueldenstaedti II Вопросы ихтиологии. 1990. Т.ЗО. Вып. 6. С. 963−973.
  16. М.М., Касимов Р. Ю., Федоров К. Е., Ахундова Г. Г. Экологическая пластичность процессов закладки и сексуализации гонад у молоди осетровых рыб // VIII научн. конфер. по экологич. физиол. и биохимии рыб. Петрозаводск. 1992. С.14−15.
  17. С.Н. Внутривидовая генетическая дифференциация и филогеография сигов (р. Coregonus) Сибири // Автореф.. канд.биол.наук. М.: Институт Общей генетики им. Н. И. Вавилова РАН. 2010. 23 с.
  18. С.Н., Гордон Н. Ю., Политов Д. В. Генетическая дифференциация муксуна Coregonus muksun (Pallas) и родственных видов сиговых рыб (Coregonidae, Salmoniformes) Сибири по мтДНК // Генетика. 2008. Т. 44. № 7. С. 896−905.
  19. И.Ю. Оогенез и особенности созревания яйцеклеток чира Coregonus nasus (Pallas) в естественном ареале и в условиях аквакультуры за его пределами. Автореф. дисс.. канд.биол.наук. JI. 1991. 17 с.
  20. JI.B. Основы общей эмбриологии. М.: МГУ. 1993. 301с.
  21. В.А., Федоров К. Е., Сакун О. Ф. Оогенез и особенности функции половых желез у рыб эпинеретического комплекса течения Куросио. СПб.: СПбГУ. 2004. 124 с.
  22. JI.A., Пономарев М. Б., Микрюков A.A. и др. Молекулярные механизмы детерминации клеток зародышевого пути // Молекулярная биология. 2005. Т. 39. № 4. С. 664−677.
  23. Г. Н. Формирование систем органов у сиговых рыб (genus Coregonus) под влиянием природных и антропогенных факторов разной интенсивности. Дисс.. канд. биол. наук. Тюмень: ТюмГУ. 2007. 177 с.
  24. В.Д. Эмбриональное развитие обского чира в естественных условиях // В кн.: Морфология, структура популяций и проблемы рац. исп. лососевидных рыб. J1. 1983а. С. 16−17.
  25. В.Д. Изучение динамики численности и распределения личинок сиговых рыб реки Северной Сосьвы. Свердловск: ИЭРиЖ УрО АН СССР. 1987. 59 с.
  26. В.Д. Экология молоди и воспроизводство сиговых рыб нижней Оби. Автореф. дисс.. докт. биол. наук. М. 1997. 38 с.
  27. В.Д. Эмбриональное развитие сиговых рыб на естественных нерестилищах в уральских притоках нижней Оби // Научн. вестник. Экология растений и животных севера Западной Сибири. Салехард. 2006. Вып. 6(2)(43). С. 3−17.
  28. В.Д., Богданова E.H., Госькова O.A., и др. Рыбы бассейна Нижней Оби // В кн.: Экология рыб Обь-Иртышского бассейна. М.: Т-тво научных изданий КМК. 2006. С.252−325.
  29. В.Д. Выживание икры сиговых рыб на нерестилищах в уральских притоках нижней Оби // Научн. вестн. Ямало-Ненецк. авт. окр. 2007. Вып. 2 (46). С. 42−49.
  30. В.А. Гаметогенез у гиногенетических и гибридных форм сиговых рыб. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. СПб.:СПбГУ. 1991. 17 с.
  31. P.A., Вуоринен Д. А., Решетников Ю.С, Рист Д. Д. Генетические связи пяти видов сиговых рыб Сибири // Вопр. ихтиологии. 1994.Т. 34. №. 2. С. 195−203.
  32. В.П., Карпова Е. Г., Цыганкова Н. В. Происхождение первичных половых клеток у вьюна // Онтогенез. 1993. Т. 24. № 5. С. 405 408.
  33. О.М. Формирование генеративной системы и ее модификация экологическими факторами в раннем онтогенезе сиговых и осетровых рыб. Дисс.. канд. биол. наук. Тюмень: ТюмГУ. 2003. 189 с.
  34. Боровиков В.П. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере. СП-б.: Питер, 2003. 344 с.
  35. Е.А., Махров A.A. Систематическое положение и происхождение сигов (Coregonus, Coregonidae, Osteichthyes) Европы. Генетический подход // Успехи современной биологии. 2009. Т. 129. № 1. С. 58−66.
  36. В.Я. Трофика клетки. М.: Наука, 1966. 356 с.
  37. В .Я., Урываева И. В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и дифференцировка. М.: Наука, 1981. 260 с.
  38. А.Б., Федоров К. Е. Становление гипофизарно-гонадальных взаимосвязей у рыб на ранних этапах онтогенеза // Экологич. проблемы онтогенеза рыб: физиолого-биохимич. аспекты. М.: МГУ. 2001. С. 73−83.
  39. А.Б. Гормональная регуляция репродуктивной функции у икромечущих рыб. Автореф. дисс.. докт. биол. наук. М: МГУ им. М. В. Ломоносова. 2002. 48 с.
  40. JI. Линия половых клеток у бесхвостых амфибий // В кн.: Происхождение и развитие половых клеток в онтогенезе позвоночных и некоторых групп беспозвоночных. Л.: Медицина. 1968. С. 186−211.
  41. В.П. Эволюционная кариология рыб. М.:Наука, 1985. 300 с.
  42. Д.Л. Экологические черты адаптации сиговых к условиям существования в водоемах Субарктики // Экологофизиологические адаптации животных и человека к условиям Севера. Якутск: Якутск.фил. СО АН СССР. 1977. С. 96−121.
  43. . Происхождение половых клеток у рыб // В кн.: Происхождение и развитие половых клеток в онтогенезе позвоночных и некоторых групп беспозвоночных. Л.: Медицина. 1968. С. 255−273.
  44. Н.П. Муксун как объект искусственного разведения и акклиматизации // Тр. Обь-Тазовск. отд. ВНИОРХ. Нов.сер. 1963. Т. 3. С.115−137.
  45. М.Н. Экологическая пластичность морфо- и гаметогенеза рыб под влиянием антропогенных факторов различной природы. Дисс.. канд. биол. наук. Тюмень: ТюмГУ. 2003. 217 с.
  46. Н.Л. Возрастные и сезонные изменения в овоцитах зеркального карпа // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1939. Т.21. № 2. С. 241−276.
  47. Т.Е. Состояние половых желез у двухлеток рипуса, выращенных в садках // Тез. докл. 2 Всес. совещ. по биол. и биотехн. развед. сиговых рыб. Петрозаводск. 1981. С. 37−38.
  48. Т.Е. Период раннего гаметогенеза у рипуса при выращивании в садках // Сб.научн. тр. ГосНИОРХ. Л. 1983. № 195. С.134−140.
  49. Г. А. Эмбриональное развитие сига-пыжьяна Соге^опиБ 1аагеЫ8 р1с18сЫап (Сше1.) в условиях ЦЭС ГосНИОРХ «Ропша» // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. Л. 1986. Вып. № 247. С. 44−54.
  50. И.А. Эмбриональные стволовые клетки и проблема направленной дифференцировки // Успехи биол.химии.2008.Т.48.С.181−220.
  51. О.П. Чувствительность эмбрионов рыб к действию токсических веществ // Вопр. ихтиологии. 1977. Т. 17. Вып. 3. С. 518−527.
  52. О.П., Строганов Н. С. Оценка токсичности веществ, спускаемых в водоемы, для раннего онтогенеза рыб // Вопр. ихтиологии. 1975. Т. 15. Вып. 2. С. 346−355.
  53. A.C. Особенности гаметогенеза сигов в северных водоемах Якутии // В кн.: Зоол. исследования Сибири и Дальнего Востока. Владивосток. 1974. С. 169−173.
  54. Н.Г. Ультраструктура превителлогенных ооцитов форели Oncorhynchus mykiss II Вопр. ихтиологии. 1994. Т. 34. № 3. С. 420−423.
  55. Е.В., Селюков А. Г., Шуман JI.A. Особенности дифференцировки пола и формирование половых клеток в раннем онтогенезе муксуна Coregonus muksun (Pallas) II Вестник ТюмГУ. 2011а. № 6. Медико-биологические науки. С. 46−55.
  56. Е.В., Моисеенко Т. И., Селюков А. Г., Гоголева С. Ю. Морфофункциональные нарушения у эмбрионов сиговых рыб в условиях фенольной интоксикации // Вестник ТюмГУ. 20 116. Экология. № 12. С. 38−46.
  57. Н.И. Дифференцировка пола у радужной форели при выращивании в системе с рециркуляцией воды // В кн.: Морфология, структура популяций и проблемы рационального использования лососевидных рыб. JL: Наука. 1983а. С. 70−71.
  58. Н.И. Развитие половых желез радужной форели Salmo gairdneri Rich. (Salmonidae) в пострадиационный период. 1. Облучение личинок в возрасте 24 суток после вылупления // Вопр. ихтиологии. 19 836. Т.23. Вып.6. С. 951−959.
  59. Н.И. Морфофункциональные закономерности раннего гаметогенеза радужной форели (Salmo gairdneri Rich.) при различном температурном режиме и рентгеновском облучении. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Д., 1984. 17 с.
  60. Н.И. Дифференцировка пола байкальского омуля при различных температурных режимах выращивания // Тез. докл. IV Всес. совещ. по биол. и биотехн. развед. сиговых рыб. JI. 1990. С. 47−48.
  61. Н.И. Дифференцировка пола у байкальского омуля при различных температурных режимах выращивания // Труды Биол. НИИ СПбГУ. 1997. Вып. 44. С. 65−73.
  62. Н.И., Зайцева А. Н. Развитие половых желез в раннем онтогенезе белого байкальского хариуса // Известия ИрГУ. Сер. «Биология. Экология». 2009. Т.2. № 1. С. 66−69.
  63. Н.И., Чмилевский Д. А. Влияние пониженной температуры на развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri). Воздействие на рыб в возрасте 13 суток после вылупления // Изв. ГосНИОРХ. 1984. Вып. 203. С. 40−47.
  64. Н.И., Чмилевский Д. А. Влияние пониженной температуры на развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri). Воздействие на рыб в возрасте 5.5 месяца после вылупления // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. 1985. Вып. 229. С. 95−104.
  65. О.В. Современные представления о свойствах и функциях ядрышка: ядрышко как мишень стрессовых воздействий на клетки // Цитология. 2009. Т.49. № 9. С. 748−749.
  66. В.М. Развитие половых желез и становление индивидуальной плодовитости у беломорской сельди Clupea harengus marisalbi Berg и обыкновенного окуня Percafluviatilis L. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. М., 1982. 24 с.
  67. В.М. Ранний гаметогенез и дифференцировка пола у беломорской сельди Clupea pallasi marisalbi II Вопр. ихтиологии. 1990. Т. 30. № 6. С. 957−962.
  68. О.В. Сравнительный анализ состояния яичников у молоди тихоокеанских лососей в связи с проблемой становления моноциклии // Вопр. ихтиологии. 2003. Т. 43. № 4. С. 490−498.
  69. JI.B. Особенности оогенеза у экологически различных видов байкальских коттоидных рыб (Cottoidei) // Вопр. ихтиологии. 1996. Т. 36. № 5. С. 638−646.
  70. В.Ф. Дискуссионные аспекты проблемы амитоза // Арх. анат., гистол. и эмбриол. 1982. Т. LXXXIII. № 18. С. 81−87.
  71. В.Ф. Многоядерные клетки (образование, строение, биологическое значение) // Арх. анат., гистол. и эмбриол. 1984. Т. LXXXVII. № 12. С. 80−86.
  72. Э.В., Коросов A.B. Введение в количественную биологию: Учебное пособие. Петрозаводск: ПетрГУ, 2003. 304 с.
  73. Г. М. Ранний эмбриогенез рыб и амфибий. М.: Наука, 1979. 175 с.
  74. В.В., Шукалюк А. И., Ахмадиева A.B. Стволовые клетки беспозвоночных животных с репродуктивной стратегией, включающей бесполое размножение // Биология моря. 2007. Т. 33. № 1. С. 3−10.
  75. В.В. Исследования по биологии развития в Институте биологии моря ДВО РАН // Онтогенез. 2008. Т. 39, № 5. С. 390−398.
  76. В.В., Ахмадиева A.B., Александрова Я. Н., Шукалюк А. И. Морфофункциональная организация стволовых резервных клеток, обеспечивающих бесполое и половое размножение беспозвоночных животных // Онтогенез. 2009. Т. 40. № 2. С. 83−96.
  77. В.В., Реунов A.A. Половая плазма и детерминация линии половых клеток: роль митохондрий // Биология моря. 2001. Т. 27. № 4. С. 231 237.
  78. П.В., Селюков А. Г. Сиговые рыбы в экосистеме Обской губы. Тюмень: Изд-во ТюмГУ. 2010. 184 с.
  79. .Н. Овогенез и адаптации, связанные с размножением у рыб. Автореф. дисс.. докт. биол. наук. JL: ЛГУ, 1956. 36 с.
  80. Т.О. Изучение транскрипционной активности ядрышек ооцитов стерляди методами авторадиографии и серебрения. // Цитология. 1991. Т.ЗЗ. № 8. С. 3−9.
  81. Х.М. Амитотическое деление и его место в размножении клеток // Успехи соврем, биол. 1952. Т. XXXIII. Вып. 2(5). С. 287−304.
  82. З.С. Эмбриология рыб. М.: Наука, 1990. 271 с.
  83. З.С., Кнорре А. Г. Проблема амитоза и пути ее разработки // Бюллетень МОИП. 1962. Вып. 6. С. 143−144.
  84. Ф.Н. 1972. Рыбы Якутии. М.: Наука, 359 с.
  85. М.С., Столяренко А. Д., Рязанский С. С. и др. Роль коротких РНК в регуляции экспрессии генов и мобильных элементов в герминативных клетках // Онтогенез. 2007. Т.38. № 3. С. 213−227.
  86. Клишов A. J1. Гистогенез и регенерация тканей. JL: Медицина, 1984. 232 с.
  87. А.Г. Взаимоотношение митоза и амитоза в индивидуальном и историческом развитии организмов // Цитология. 1959. Т.5. Вып.1. С. 494 509.
  88. В.Ю., Абрамов С.А, Дупал Т. А., Ефимов В. М., Литвинов Ю. Н. Анализ соответствия и комбинирование молекулярно-генетических и морфологических данных в зоологической систематике // Изв. РАН. Сер.биологич. 2012. № 4. С. 404−414.
  89. В.Г. Первичные половые клетки млекопитающих и человека. Происхождение, идентификация, миграция // Цитология. 2011а. Т.53.№ 3. С. 211−220.
  90. В.Г. Судьба гоноцитов млекопитающих: оогенез или сперматогенез // Цитология. 20 116. Т.53. № 10. С. 778−787.
  91. А.К. Функциональная морфология ооцитов периода превителлогенеза у сибирской стерляди (Acipenser ruthenus marsiglii Brandt) вразные периоды ее годового цикла // Вопр. ихтиологии. 1977. Т. 17. Вып. 5. С. 912−921.
  92. .Ц., Шеханова И. А. Влияние хлорида ртути и фосфора-32 на дыхание эмбрионов вьюна Misgurnus fossilis (L.) // Вопр. ихтиологии. 1981. Т.21, вып.З. С. 568−570.
  93. В.В., Мигаловский И. П. Развитие воспроизводительной и кроветворной систем у сига-пыжьяна на ранних стадиях онтогенеза // Тез. «IV Всес. конф. по раннему онтогенезу рыб». Мурманск, 1988. 4.1. С. 154 156.
  94. В.З. Биология и биотехника разведения муксуна Coregonus muksun (Pallas) в водоемах северо-запада. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Л.: ГосНИОРХ. 1975. 21 с.
  95. Ю.К. Исследование функции яичников в связи с явлением карликовости у рыб и круглоротых на примере представителей родов Osmerus Lacepede и Lampetra Gray. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Л: ЛГУ. 1986. 22 с.
  96. А.Н. Эмбриональное развитие пеляди // Тр. Обь-Тазовск. отд. ГосНИОРХ. Нов.сер. Тюмень, 1963. Т.З. С. 148−164.
  97. А.Н. Гаметогенез и сравнительный анализ развития воспроизводительной системы у пеляди, выращиваемой в разных климатических зонах // Изв. ГосНИОРХ. 1967. Т.63. С. 9−40.
  98. А.Н., Крупкин В. З. Развитие воспроизводительной системы у самок муксуна при выращивании их в водоемах Северо-Запада СССР // Вопр. ихтиологии. 1976. Т.16. Вып. 6. С. 1033−1042.
  99. И.И. Оогенез и годичный цикл яичников у сига-лудоги Coregonus lavaretus ludoga Pol. // Тр. лаб. основ рыбоводства. Л. 1949. Т.2. С. 37−64.
  100. O.A. Эколого-морфологические особенности развития сиговых рыб. Автореф. дис.. канд. биол. наук. М., 1974. 28 с.
  101. O.A. Сравнительная характеристика раннего онтогенеза сиговых рыб // Природа и хозяйственное использование озер Северо-Запада Русской равнины. Л.: ЛПТИ. 1976. С. 30−57.
  102. O.A. Экологическая толерантность сиговых рыб на ранних этапах развития // Тез. докл. II Всес. совещ. по биологии и биотехнике развед. сиговых рыб. Петрозаводск, 1981. С. 13−16.
  103. O.A. Развитие икры и личинок пеляди // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. 1985. Т.236. С. 74−85.
  104. O.A. Развитие икры и личинок // Пелядь. Систематика, морфология, экология, продуктивность. М.: Наука, 1989. С.211−228.
  105. O.A., Завьялова М. Н. Морфофизиологические изменения в эмбриогенезе сиговых рыб при заводском воспроизводстве // III Всес. совещ. по биол. и биотехн. развед. сиговых рыб. Тюмень. 1985. С. 8−11.
  106. H.A. Исследование диагностических признаков, биологии и гаметогенеза реципрокных гибридов рипуса Coregonus albula infrsp. ladogensis и сига-лудоги Coregonus lavaretus ludoga. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Л., 1965. 20 с.
  107. Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. М.: Мир. 645 с.
  108. Ю.Макеева А. П. Эмбриология рыб. М.: МГУ, 1992. 216с.
  109. Н.Макеева А. П., Емельянова Н. Г. Периодизация оогенеза у карповых рыб // Вопр. ихтиологии. 1989. Т.29. Вып. 6. С. 931−943.
  110. В.И. Эмбриональное развитие тугуна // Изв. ГосНИОРХ. 1974. Т.92. С. 98−101.
  111. ПЗ.Матишов Г. Г., Журавлева Н. Г., Оттесен О., Кириллова Е. Е. Локализация первичных половых клеток личинок трески Баренцева моря // Докл. РАН. 2010. Т. 430. № 6. С. 841−843.
  112. А.К. Основные закономерности динамики численности муксуна Coregonus muksun р. Обь и их использование для управления его запасом // Вопр. рыболовства. 2006а. Т.7. № 3(27). С. 505−521.
  113. Пб.Межнин Ф. И. Развитие половых желез в раннем онтогенезе обыкновенного окуня Perca fluviatilis L. // Вопр. ихтиологии. 1978. Т. 18. Вып.1 (108). С. 84−100.
  114. М.М., Лебедева O.A. Видовая специфика темпа индивидуального развития лососевидных рыб (Salmonoidei) // Эволюция темпов индивидуального развития животных. М.: Наука, 1977. С. 206−216.
  115. М.М., Лебедева O.A. Разнокачественность раннего онтогенеза лососевидных рыб // Лососевидные рыбы. Л.: Наука, 1980. С. 3040.
  116. И.П. Развитие икры в ранний период гаметогенеза у зародышей и личинок севрюги в условиях радиоактивного загрязнения воды // Тр. ПИНРО. 1971. Вып. 29. С. 32−44.
  117. Е.В., Седова М. А., Чмилевский Д. А. и др. Гистология для ихтиологов: Опыт и советы. М.:ВНИРО. 2009. 112 с.
  118. В.П. Амитоз, эндомитоз // В кн.: Введение в цитологию. Л., Медицина. 1968. С. 163−171.
  119. Е.В. Развитие половых желез бычка-кругляка Neogobius melanostomus (Pallas) (Gobiidae) в эмбриональный период // Вопр. ихтиологии. 1983. Т.23. Вып. 5. С. 787−795.
  120. Моисеева Е. В, Федоров С. И., Парфенова н.А. О нарушениях строения половых желез у самок осетровых (Acipenceridae) Азовского моря // Вопр. ихтиологии. 1997. Т.37. Вып. 5. С. 660−666.
  121. .К. Биологические основы эксплуатации и воспроизводства сиговых рыб Обского бассейна // Тр. Обь-Тазовск. отд. ВНИОРХ. Нов.серия. 1958. T.I. 251 с.
  122. В.А., Полякова JI.A. Первичные половые клетки у личинок пеляди гиногенетического происхождения // В кн.: Генетич. методы селекции / под ред. М. А. Андрияшевой. Л., 1986. С. 16−20.
  123. А.Г., Лебедев B.C. Лососевые рыбы (Salmonidae, Salmoniformes): положение в надотряде Protacanthopterygii, основные этапы эволюционной теории, молекулярные датировки // Вопр. ихтиологии. 2004. Т.44. № 6. С. 738−765.
  124. Г. М. Возраст и рост организма и состояние гонад у стерляди в период до дифференцировки пола // В кн.: Биол. основы рыбн. хоз-ва. Изд-во Томского ун-та, 1959. С. 56−63.
  125. Г. М. Процесс анатомической и цитологической дифференцировки пола у лососевых рыб рода Salmo II Учен. зап. Ленингр. ун-та. Сер. биол. наук. 1962. Вып. 48, № 311. С. 74−92.
  126. Г. М. Ранний период гаметогенеза у проходных лососей // Тр. ММБИ. 1966. Вып. 12(16). С. 7−44.
  127. Г. М. Дифференцировка пола и становление индивидуальной плодовитости у рыб. Автореф. дисс.. докт. биол. наук. Л.: ЛГУ, 1969. 49 с.
  128. Г. М. Дифференцировка пола у рыб. Л.: ЛГУ, 1975. 148 с.
  129. П.Л., Дрягин П. А., Покровский В. В. О таксономическом ранге и филогении сиговых (Coregonidae, Pisces) // Изв. ГосНИОРХ. 1975. Т.104. С. 5−17.
  130. С. А., Сторожук Н. Г. О токсическом действии ртути на личинок кеты Oncorhynchus keta (Walb.) и кижуча О. kisutch (Walb.) // Вопр. ихтиологии. 1980. Т.20. Вып. 6 (125). С. 927−930.
  131. Ю.Г. Математические методы в экологических и географических исследованиях. М.: ИЦ «Академия», 2004. 416 с.
  132. С.С. Происхождение и развитие половых клеток // В кн.: Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука. 1982. С.5−24.
  133. П.С. О чередовании амитотических и митотических процессов // Журн. общ. биол. 1952. Т.13. № 1. С. 28−49.
  134. A.A., Юрченко О. В., Александрова Я. Н., Исаева В. В. Аутолиз субстанции зародышевой плазмы в сперматогониях морского ежа при воздействии кадмия // Докл. РАН. 2005. Т. 401. № 2. С. 282 285.
  135. Ю.С. О систематическом положении сиговых рыб // Зоол. журн. 1975. Т. 54. Вып. И. С. 1656−1671.141 .Решетников Ю. С. Экология и систематика сиговых рыб. М.: Наука, 1980. 301 с.
  136. Ю.С., Богданов В. Д. Особенности воспроизводства сиговых рыб // Вопр. ихтиологии. 2011. Т. 51. № 4. С. 502−525.
  137. Г. И. Сибирский осетр Acipenser baerii Brandt (структура вида и экология). М.: ГЕОС, 1999. 236 с.
  138. И.И., Чесалина T.JI., Кузьминова Н. К. Ответные реакции черноморской кефали на загрязнение мазутом // Экология. 2000. № 4. С. 304−306.
  139. И.И., Залевская И. Н., Шайда В. Г. Действие полихлорированных бифенилов на личинок атерины Atherina hepsetus II Вопр. ихтиологии. 2003. Т. 43. № 2. С. 272−276.
  140. И.И., Залевская И. Н. Личинки атерины (Atherina hepsetus L.) как биоиндикаторы загрязнения прибрежных акваторий Черного моря // Экология. 2004. № 2. С. 107−112.
  141. М.В., Сакун О. Ф. Половые клетки и развитие гонад карпа Cyprinus carpio L. в раннем онтогенезе // Вопр. ихтиологии. 1980. Т.20. Вып.З. С. 524−533.
  142. О.Ф. Амитоз половых клеток у рыб и условия его возникновения // Проблемы соврем, эмбриол. М.: МГУ. 1964. С. 295 297.
  143. Г. Очерки об адаптационном синдроме. М. 1960. 181 с.
  144. А.Г. Ранний гаметогенез пеляди Coregomis peled (Gmelin) II Вестник Ленингр. унив. Биология. 1985. № 17. С. 26−32.
  145. А.Г. Оогенез и половые циклы самок пеляди Coregonus peled (Gmelin) озера Ендырь (бассейн Оби) // Вопр. ихтиологии. 1986. Т.26. Вып. 2. С. 294−302.
  146. А.Г. Гаметогенез и половые циклы // В кн.: Пелядь: Систематика, морфология, экология, продуктивность (под ред. Ю.С.Решетникова). М.: Наука. 1989. С. 167−188.
  147. А.Г. Морфофункциональный статус рыб Обь-Иртышского бассейна в современных условиях. Тюмень: ТюмГУ. 2007. 184 с.
  148. А.Г., Беспоместных Г. Н., Селюкова Г. П. Экологическая пластичность морфологических признаков в раннем онтогенезе сиговых рыб (Coregonidae) Обь-Иртышского бассейна // Вестник ТюмГУ. 2005. № 5. С.163−173.
  149. А.Г., Елькин В. П., Вторушин М. Н., Бондаренко О. М. Использование технологий нового поколения для повышения морфобиологического статуса пеляди за пределами естественного ареала // Вестник ТюмГУ. 2000. № 3. С. 183−193.
  150. А.Г., Ефремова Е. В., Беспоместных Г. Н. Проблема пролиферации первичных гоноцитов в эмбриогенезе (на примере сиговых рыб) // Труды Междунар. Форума по проблемам науки, техники и образования. М. 20 086. Т.З. С. 58−60.
  151. А.Г., Ефремова Е. В., Бондаренко Г. Н. Цитоморфологические преобразования первичных половых клеток в эмбриогенезе муксуна Coregonus muksun (Pallas) // Вестник ТюмГУ. Медико-биологические науки. Науки о земле. Химия. 20 106. № 3. С. 45−51.
  152. А.Г., Солодилов А. И., Елькин В. П. Слабые взаимодействия и регомеостаз живых систем (прикладной аспект). Монография. Тюмень: ТюмГУ. 2008а. 192 с.
  153. А.Г., Степанов A.M., Васильева Л. В. Состояние воспроизводительной системы сиговых рыб на этапе вылупления // IV Всесоюзн. конф. по раннему онтогенезу рыб. М. 1988. С. 88−89.
  154. А.Г., Чмилевский Д. А. Динамика распределения первичных половых клеток и особенности дифференцировки пола у пеляди // Тез. докл. VII Всесоюзн. совещ. эмбриологов. Л. 1986. С. 29.
  155. Д.С. Филогенетический анализ сиговых рыб сем. Coregonidae методом белкового электрофореза. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. С.-Пб: ГосНИОРХ. 2000. 22 с.
  156. А.Г. Рыбы Баунтовских озер Забайкалья. Новосибирск: Наука, 1977. 232 с.
  157. М.П., Томнатик E.H. Процесс анатомической и цитологической дифференцировки пола у пеляди // Изв. АН Молд.ССР. Сер. биологич. и химич. наук. 1970. № 1. С. 36−39.
  158. М.Г. О влиянии экстремальных температур на размерно-весовые показатели и ранний гаметогенез плотвы Rutilus rutilus II Вопр. ихтиологии. 1996. Т.36. № 4. С. 502−506.
  159. М.Г., Изюмов Ю. Г., Чеботарева Ю. В. Аберрантные митозы и гистопатология гонад у сеголеток плотвы Rutilus rutilus после токсических воздействий в эмбриональный и личиночный периоды развития // Вопр. ихтиологии. 2001а. Т. 41, № 2. С. 232−238.
  160. М.Г., Изюмов Ю. Г., Чеботарева Ю. В. Отдаленные генотоксические ответы у сеголеток плотвы Rutilus rutilus после воздействий органических ядов на спермии родителей // Вопр. ихтиологии. 2003. Т. 43, № 3. С. 411−417.
  161. М.Г., Комов В. Т. Реакция молоди карпа Cyprinus carpio и окуня Perca fluviatilis на длительное воздействие ртути // Вопр. ихтиологии. 2003. Т.43. № 1. С. 127−131.
  162. М.Г., Комов В. Т., Чеботарева Ю. В., Гремячих В. А. Комплексная оценка длительного воздействия ртути на молодь плотвы Rutilus rutilus в экспериментальных условиях // Вопр. ихтиологии. 2004. Т.44. № 6. С. 847−852.
  163. В.В., Васильев A.B., Воротеляк Е. А. Ниши стволовых клеток // Изв. РАН. Сер. биологич. 2007а. № 3. С. 261−272.
  164. В.В., Васильев A.B., Воротеляк Е. А. Поляризация и асимметричное деление стволовых клеток // Цитология. 20 076. Т. 49. № 11. С. 933−938.
  165. В.В., Васильев A.B., Воротеляк Е. А. Асимметричное деление клеток и неопластический рост // Изв. РАН. Сер. биологич. 2009. № 4. С. 389 394.
  166. А.Ф. Происхождение и миграция первичных половых клеток у рыб // Изв. АН Кирг. ССР. 1969. № 4. С. 61−67.
  167. А.Ф. Воспроизводительная система самцов рыб. Фрунзе, 1972.280 с.
  168. К.Е. 1989. Гонадо-гипофизарные связи и дифференцировка пола у рыб // Экол. и гистофизиол. размн. гидробионтов. Л.: ЛГУ. С. 25−42.
  169. К.Е., Зубова С. Э., Семенов В. В., Бурлаков А. Б. Секреторные клетки в гонадах молод стерляди, Acipenser ruthenus L., в период дифференцировки пола // Вопр. ихтиологии. 1990. Т. 30. Вып. 1. С. 65−75.
  170. Ю.А. Эколого-гистофизиологический анализ оогенеза пеляди // Труды Биол. НИИ СПбГУ. 1997. Вып. 44. С. 39−48.
  171. .А. Эмбриональное развитие байкальского омуля. М.: Наука, 1968. 91 с.
  172. .А. Особенности воздействия температурного и светового факторов на эмбриональное развитие сиговых рыб Байкала // Тез. докл. II Всес. совещ. по биол. и биотехнике развед. сиговых рыб. Петрозаводск. 1981. С. 22−25.
  173. .А. Воспроизводство байкальского омуля. М.: Легкая и пищ. пром., 1982. 127 с.
  174. .А. Эколого-физиологические особенности эмбриогенеза байкальского омуля и байкальского озерного сига // Морфология, структура популяций и проблемы рац. исп. лососевидных рыб. Л., 1983. С. 237−239.
  175. .А. Воздействие светового фактора на эмбриональное развитие сиговых рыб // Изв. РАН. Сер. биол. 1993. С. 64−73.
  176. .А. Факторы и возможные механизмы, вызывающие изменения темпов эмбрионального развития костистых рыб (на примере сиговых Coregonidae) // Вопр. ихтиологии. 2007. Т.47. № 4. С. 475−485.
  177. .А., Пичугин М. Ю. Особенности раннего онтогенеза весенненерестующего баунтовского сига Coregonus lavaretus baunti II Вопр. ихтиологии. 1999. Т.39. № 1. С. 78−88.
  178. Чесалина TJL, Руднева И. И., Кузьминова Н. К. Токсическое действие соляра на молодь черноморской кефали-остроноса Liza saliens II Вопр. ихтиологии. 2000. Т. 40. № 4. С. 304−306.
  179. Д.А. Синтез ДНК в раннем оогенезе ерша // Цитология. 1970. Т. 12. № 5. С. 676−678.
  180. Д.А. Синтез РНК и развитие ядрышкового аппарата в оогенезе ерша//Цитология. 1971. Т. 13. № 10. С. 1233−1242.
  181. Д.А. Влияние лучей Рентгена на оогенез тиляпии (Tilapia mossambica Peters). I. Облучение личинок в возрасте 6 суток // Радиация и проблемы размножения и роста рыб. Л.: ЛГУ. 1978. С. 21−37.
  182. Д.А. Влияние экстремальных воздействий на оогенез рыб (итоги и перспективы исследований) // Труды Биол. НИИ СПбГУ «Проблемы надежности функционирования воспроизводительной системы у рыб». 1997. Вып. 44. С. 49−64.
  183. Д.А. Влияние повышенной температуры на оогенез мозамбикской тиляпии при ее воздействии на его различные периоды и фазы // Вопр. ихтиологии. 1998. Т.38. № 5. С. 676−683.
  184. Д.А. Оогенез рыб в норме и при экстремальных воздействиях. Автореф. дисс.. докт. биол. наук. СПбГУ. 2000. 31 с.
  185. Д.А., Иосифова Т. Е. Морфология и динамика числа половых клеток в раннем онтогенезе мозамбикской тиляпии // Цитология. 1999. Т. 41. № 2. С. 135−139.
  186. Д. А., Каменева Т. О. Оогенез мозамбикской тиляпии. I. Оогонии и ооциты ранней профазы мейоза // Цитология. 2000. Т.42. № 9. С. 896−902.
  187. Д. А., Каменева Т. О. Оогенез мозамбикской тиляпии. II. Синтез РНК и развитие ядрышкового аппарата // Цитология. 2001а. Т. 43. № 2. С. 114−121.
  188. Д. А., Каменева Т. О. Оогенез мозамбикской тиляпии. III. Морфология цитоплазмы ооцитов периода превителлогенеза // Цитология. 20 016. Т.43. № 10. С. 926−933.
  189. Д.А., Райкова Е. В. Включение Н3-тимидина в ооциты ранней профазы мейоза стерляди // Цитология. 1976. Т. 18. № 6. С. 689−692.
  190. Г. Х. История расселения сигов рода Coregonus II Зоогеография и систематика рыб. JL: ЗИН АН СССР, 1976. С. 54−67.
  191. Экологическое состояние, использование природных ресурсов, охрана окружающей среды Тюменской области. Тюм. обл. ком. охр. окр. среды и прир. ресурсов. Тюмень, 1995. 134 с.
  192. Экологическое состояние, использование природных ресурсов, охрана окружающей среды Тюменской области. Тюм. обл. ком. охр. окр. среды и прир. ресурсов. Тюмень, 1996. 165 с.
  193. B.C. Эмбриональное развитие муксуна // Тр. Обь-Тазовск. отдел. ВНИОРХ. Нов.сер. Тюмень. 1963. T.III. С. 138−147.
  194. B.C. Наблюдения за нерестом и развитием икры сиговых рыб на р. Сыня // Озерн. и пруд, х-во в Сибири и на Урале. Тюмень. 1967. С. 190 199.
  195. Aizawa К., Yori К., Kaminaga С. et al. Responses of embryonic germ cells of the radiation-sensitive medaka mutant to y-irradiation // J. Radiat. Res. 2007. Vol. 48. P. 121−128.
  196. Arezo M.J., Alessandro S.D., Papa N. et al. Sex differentiation pottern in the annual fish Austrolebias charrua (Cyprinodontiformes: Rivulidae) // Tissue and Cell. 2007. V. 39. P. 89−98.
  197. Au D.W.T., Reunov A.A., Wu R.S.S. Reproductive impairment of sea urchin upon chronic exposure to cadmium II. Effect on sperm development //Environ. Pollution. 2001. Vol. 111. P. 12−20.
  198. Au D.W.T., Yurchenko O.V., Reunov A.A. Sublethal effect of phenol on spermatogenesis in sea urchins (Anthocidaris crassipina) // Environ. Res. 2003. Vol. 93. P.92−98.
  199. Bourrashot S., Simon O., Gilbin R. The effect of waterborne uranium on the hatching success, development and survival of early life stage of Zebrafish (.Danio rerio) //Aquatic Toxicology. 2008. Vol. 90. P. 29−36.
  200. Braat A. K, Zandbergen T., van de Water S. et al. Characterization of zebrafish primordial germ cells: morphology and early distribution of vasa RNA // Devel. Dynamic. 1999. Vol. 216. P. 153−167.
  201. Daley G.Q. Gametes from embryonic stem cells: a cup half empty or half full? // Science. 2007. Vol. 316. P. 409−410.
  202. Ding D., Lipshitz H.D. Localized RNAs and their functions // BioEssays. 1993a. Vol. 15. P. 651−658.
  203. Doitsidou M., Reichman-Fried M., Stebler J., et al. Guidance of primordial germ cell migration by the chemokine SDF-1 // Cell. 2002. Vol. 111. P. 647−659.
  204. Donovan P.J. The germ cell the mother of all stem cells // Int. J. Devel. Biol. 1998.Vol. 42. P. 1043−1050.
  205. Draper B.W., McCallum C.M., Moens C. B. nanosl is required to maintain oocyte production in adult zebrafish // Dev. Biol. 2007. V. 305 (2). P. 589−598.
  206. E.M. «Germ plasm» and the differentiation of the germ cell line // Intern. Rev. Cytol. 1975. Vol. 43. P. 333−362.
  207. Epifano O., Dean J. Genetic control of early folliculogenesis in mice // Trends in Endocrinology and Metabolism. 2002. V.13. P. 169−173.
  208. Essenberg J.M. Sex differentiation in the viviparous Teleost Xiphophorus helleri Heckel //Biol. Bull. Marine Biol.Lab. 1923. Vol.45. P. 46−97.
  209. Extavour C.G.M. Evolution of the bilaterian germ line: lineage origin and modulation of specification mechanisms // Int. and Compar. Biol. 2007. P. 1−16.
  210. Extavour C.G.M., Akam M. Mechanisms of germ cell specification across the metazoans: epigenesis and preformation // Development. 2003. Vol. 130. P.5869−5884.
  211. Foekema E.M., Deerenberg C. M., Murk A, J. Prolonged ELS test with the marine flatfish sole (Solea soled) showns delayed toxic effects of previous exposure to PCD 126 // Aquatic Toxicology. 2008. Vol. 90. P. 197−203.
  212. Fujimoto T., Kataoka T., Sakao S. et al. Developmental stages and germ cell lineage of the loach (Misgurnus anguillicaudatus) II Zool. Sci. 2006. Vol. 23. P. 977−989.
  213. Gao Z., Wang H., Rapp D. et al. Gonadal sex differentiation in the bluegill sunfish Lepomis macrochirus and its relation to fish size and age // Aquaculture. 2009. Vol. 294. P. 138−146.
  214. Ginsburg V., Snow M. H., McLaren A. Primordial germ cells in the mouse embryo during gastrulation // Development. 1990. Vol. 110. P. 521−528.
  215. Gomperts M., Garsia-Castro M., Wylie C., Heasman J. Interactions between primordial germ cells play a role in their migration in mouse embryos // Development. 1994. Vol. 120. P. 135−141.
  216. Grandi G., Cicca M. Histological and ultrastructural investigation of early gonad development and sex differentiation in adriatic sturgeon (Acipenser naccarii, Acipenseriformes, Chondrostei) // J. of morphology. 2008. Vol. 269. P. 1238−1262.
  217. Hamaguchi S. A light and electron-microscopic study on the migration of primordial germ cells in the teleost, Oryzias latipes II Cell Tiss. Res. 1982. Vol. 227. P. 139−151.
  218. Hamaguchi S. The structure of the germinal dense bodies (nuages) during differentiation of the male germ line of the teleost, Oryzias latipes II Cell Tissue Res. 1987. Vol. 248. P. 375−380.
  219. Herpin A., Rohr S., Riedel D. et al. Specification of primordial germ cells in medaka (Oryzias latipes) II BMC Develop. Biol. 2007. 7:3. P. 1−10. (http://www.biomedcentral.eom/1471−213X/7/3).
  220. Hogan B. Primordial germ cells as stem cells // Stem cell biology / Eds. Marshak D.R. et al. N.Y.: Cold Spring Harbor Lab. Press, 2001. P. 189−204.
  221. Hong Y., Winkler C., Schartl M. Production of medakafish chimeras from a stable embryonic stem cell line // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. Vol. 95. P. 3679−3684.
  222. Houston D.W., King M.L. Germ plasm and molecular determinants of germ cell fate // Curr. Top. Devel. Biol. 2000. Vol. 50. P. 155−181.
  223. Ijiri K.I., Egami N. Mitotic activity of germ cells during normal development of Xenopus laevis tadpoles // J.Embryol. Exp. Morphol. 1975. Vol. 34, № 3. P. 687−694.
  224. Kerkis A. Fonseca S.A.S., Serafim R.C. et al. In vitro differentiation of male mouse embryonic stem cells into both presumptive stem cells and oocytes // Cloning Stem Cells. 2007. Vol. 9, № 4. P. 535−548.
  225. Kloc M., Bilinski S., Chan A.P., Etkin L.D. Mitochondrial ribosomal RNA in the germinal granules in Xenopus embryos revisited // Differentiation. 2000. Vol. 67. P. 80−83.
  226. Knaut H., Werz C, Geisler R. A zebrafish homologue of the chemokine receptor Cxcr4 is a germ-cell guidance receptor // Nature. 2003. Vol. 421. P. 279 282.
  227. Knaut H., Schier A.F. Clearing the path for germ cells // Cell. 2008 Vol. 132. P. 337−339.
  228. Koya Y., Fujita A., Niki F. et al. Sex differentiation and pubertal development of gonads in the viviparus mosquitofish, Gambusia affinis II Zool. Sci. 2003. Vol.20. P. 1231−1242.
  229. Kurokawa H., Aoki Y., Nakamura S. et al. Time-lapse analysis reveals different modes of primordial germ cell migration in the medaka Oryzias latipes II Develop. Growth. Differ. 2006. Vol. 48. P. 209−221.
  230. Kurokawa H., Saito D., Nakamura S. et al. Germ cells are essential forsexual dimorphism in the medaka gonad // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 2007. Vol. 104. № 43. P. 16 958−16 963.
  231. Leatherman J.L., Jongens T.A. Transcriptional silencing and translational control: key features of early germline development // BioEssays. 2003. Vol. 25. P. 326−335.
  232. Lebrun C., Billard R., Jalabert B. Changes in the number of germ cells in the gonade of the rainbow trout (Salmo gairdneri) during the first 10 post-hatching weeks // Reprod. Nutr. Devel. 1982. Vol. 22. № 2. P. 405−412.
  233. Lewis Z.R., McClellan M.C., Postlethwait J.H. et al. Female-specific increase in primordial germ cells marks sex differentiation in threespine stickleback (Gasterosteus aculeatus)//J. Morphol. 2008. Vol.269. № 8. P. 909−921.
  234. Li W., Deng F., Wang H. et al. Germ cell-less expression in zebrafish embryos // Develop., Growth and Differ. 2006. Vol. 48. № 2 5. P. 333−338.
  235. Lin H. Cell biology of stem cells: an enigma of asymmetry and self-renewal // J. Cell Biol. 2008. Vol. 180, № 2. P. 257−260.
  236. Matova N., Cooley L. Comparative aspects of animal oogenesis // Devel. Biol. 2001. Vol. 16. P. 1−30.
  237. Mclntosch S., King T., Wu D., Honson P.V. Toxicity of dispersed weathered crude oil to early life stages of Atlantic herring (Clupea harengus) II Environ. Toxicol, and Chem. 2010. Vol. 29, № 5. P. 1160−1167.
  238. Meijide F.J., Lo Nosro F.L., Guerrero G.A. Gonadal development and sex differentiation in the cichlid fish Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes): A light- and electron- microscopic study // J. Morphol. 2005. Vol. 264. P. 191−210.
  239. Miyake A., Saito T., Kashiwagi T. et al. Cloning and pattern of expression of the shiro-uo vasa gene during embryogenesis and its roles in PGC development // Int. J. Devel. Biol. 2006. Vol. 50. № 7. P. 619−625.
  240. Mochizuki K., Nishimiya-Fujisawa C., Fujisawa T. Universal occurrence of the vasa-related genes among metazoans and their germline expression in Hydra II Devel. Genes Evol. 2001. Vol. 211. P. 299−308.
  241. Moore G.A. The germ cells of the trout (Salmo irideus Gibbons) // Tr. Amer. Micr.Soc. 1937. Vol. 56. № l.P. 105−112.
  242. Nagai T., Yamaha E., Arai K. Histological differentiation of primordial germ cells in zebrafish //Zool. Sci. 2001. Vol. 18. P. 215−223.
  243. Nguyen L.T.H., Janssen C.R., Volckaert F.A.M. Susceptibility of embryonic and larval African catfish (Clarias gariepinus) to toxicant. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1999. Vol. 62. P. 230−237.
  244. Pain B., Clark M.E., Shen M. et al. Long-term in vitro culture and characterization of avian embryonic stem cells with multiple morhogenetic potentialities // Development. 1996. Vol. 122. P. 2339−2348.
  245. Raz E. The function and regulation of vasa-like genes in germ cell development // Genome Biol. 2000. Vol. 3. P. 1017.1−1017.6.
  246. Reunov A.A., Isaeva V.V., Au D.W.T., Wu R.S.S. Nuage constituents arising from mitochondria: is it possible? // Devel., Growth and Differ. 2000. Vol. 42. P. 139−143.
  247. Saffman E, Lasko P. Germline development in vertebrates and invertebrates // Cell Mol. Life Sci. 1999.Vol. 55. P. 1141−1163.
  248. Saito D., Morinaga C., Aoki Y. et al. Proliferation of germ cells during gonadal sex differentiation in medaka: insights from germ cell-depleted mutant zenzai//Develop. Biol. 2007. Vol. 310. P. 280−290.
  249. Saito T., Goto-Kazeto R., Kawakami Y., et al., The mechanism for primordial germ-cell migration if concerved between Japanese eal and zebrafish // PLoS ONE. 2011. Vol. 6 (9). 8 p.
  250. Satoh N, Egami N. Sex differentiation of germ cells in the teleost, Oryzias latipes, during normal embryonic development // J. Embryol.Exp.Morphol. 1972. Vol. 28, № 2. P.385−395.
  251. Selyukov A.G., Efremova E.V., Bespomestnykh G.N. Primordial germ cells proliferation in coregonid embryos // X Intern. Symposium on Biology and Manager of Coregonid Fishes. Canada, Winnipeg. 2008. P. 58.
  252. Seydoux G., Braun R.E. Pathway to totipotency: lessons from germ cells // Cell. 2006. Vol. 127. P. 891−904.
  253. Shi X., Zhou B. The role of Nrf2 and MAPK pathways in PFOS-induced oxidative stress in zebrafish embryos // Toxicol. Sci. 2010. Vol. 115, № 2. P. 391−400.
  254. Shukalyuk A., Isaeva V., Kizilova E., Baiborodin S. Stem cells in reproductive strategy of colonial rhizocephalan crustaceans (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala) // Invertebrate Reprod. Devel. 2005. Vol. 48. P. 41−53.
  255. Smith A. A glossary for stem-cell biology // Insight Nature. 2006. Vol. 441. P. 1060.
  256. Stoner D.S., Rinkevich B., Weissman I.L. Heritable germ and somatic cell lineage competitions in chimeric colonial protochordates // Ibid. 1999. Vol. 96. P. 9148−9153.
  257. Striissmann C., Nakamura M. Morphology, endocrinology and environmental modulation of sex differentiation in teleost fish // Fish physiol. and biochemist. 2002. Vol.26. P. 13−29.
  258. Sunanaga T, Saito Y, Kawamura K. Postembryonic epigenesis of Vasa-positive germ cells from aggregated hemoblasts in the colonial ascidian, Botryllus primigenus II Devel., Growth and Differ. 2006. Vol. 48. P. 87−100.
  259. Takashima F., Patino R., Nomura H. Histological studies on the sex differentiation in rainbow trout // Bull.Jap.Soc.Sci.Fish. 1980. Vol.46. № 1. P. 1317−1322.
  260. Theusch E.V., Brown K.J., Pelegri F. Separate pathways of RNA recruitment lead to the compartmentalization of the zebrafish germ plasm // Devel. Biol. 2006. Vol. 292. P. 129−141.
  261. Timmermans LPM, Taverne N. Segregation of primordial germ cells: their numbers and fate during early development of Barbus conchonius (Cyprinidae, Teleostei) as indicated by 3H-thymidine incorporation // J. Morphol. 1989. Vol. 202. P. 225−237.
  262. Tran V., Lim C., Xie J., Chen X. Asymmetric division of drosophila male germline stem cell shows asymmetric histone distribution // Science. 2012. V. 338. P. 679−682.
  263. Tsunekawa N., Naito M., Sakai Y. et al. Isolation of chicken vasa homolog gene and tracing the origin of primordial germ cells // Development. 2000. Vol. 127. P. 2741−2750.
  264. Villegas J., Araya P., Bustos-Obregon E., Bursio L.O. Localization of the 16S mitochondrial rRNA in the nucleus of mammalian spermatogenic cells // Mol. Hum. Reprod. 2002. Vol. 8. P. 977−983.
  265. Vizziano D., Randuineau G., Baron D. et al. Characterization of early molecular sex differentiation in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss II Devel. Dyn. 2007. Vol. 236, № 8. P. 2198−2206.
  266. Watanabe M., Itoh K., Abe K. et al. Immuno-localization of DEAD family proteins in germ cell line cells of Xenopus embryos // Devel., Growth and Differ. 1992. Vol. 34. P. 223−231.
  267. Weissman I.L. Stem cells: units of development, units of regeneraton and units in evolution // Cell. 2000. Vol. 100. P. 157−168.
  268. Wylie C.C. Germ cells // Cell. 1999. Vol. 96. P. 195−174.
  269. Yaron L., Cocos N., Salzer H. Effect of temperature and fotoperiod on ovarian recrudescence in the cyprinid fish Mirogrex terra-sanctae II J. Fish Biol. 1980. № 4. P. 371−382.
  270. Yoon C., Kawakami K., Hopkins N. Zebrafish vasa homologue RNA is localized to the cleavage planes of 2- and 4-cell-stage embryos and is expressed in the primordial germ cells //Development. 1997. Vol. 124. P. 3157−3165.
  271. Yoshikawa H., Oguri M. Sex differentiation in a cichlid, Tilapia zillii II Bull. Jap.Soc.Sci.Fish. 1978. Vol.44. № 4. P. 313−318.
  272. Zwaka T.P., Thomson J.A. A germ cell origin of embryonic stem cells? // Development. 2005. Vol. 132. P. 227−233.295. http://www.strategy-center.ru/stock/pics/-Ur prom-Ur polar.
Заполнить форму текущей работой