Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Саркоцистоз и токсоплазмоз сельскохозяйственных животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации: Распространение, диагностика

Диссертация: Саркоцистоз и токсоплазмоз сельскохозяйственных животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации: Распространение, диагностика
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые изучено распространение, сезонная динамика саркоцистоза и токсоплазмоза животных в 11 районах Костромской области, а также подробно представлены данные по зависимости экстенсивности и интенсивности инвазии от возраста животных. Определены виды саркоцист и частота их встречаемости (Sarcocystis bovicanis — 75%, S. bovifelis — 18%, S. bovihomims — 13%, S. ovicanis -98,5%, S. ovifelis — 10… Читать ещё >

Содержание

  • I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. Л. Распространение саркоцистоза и токсоплазмоза среди животных
    • 1. 2. Паразитологические методы обнаружения Sarcocystis и Toxoplasma gondi
    • 1. 3. Морфологические особенности Sarcocystis и Toxoplasma gond
    • 1. 4. Иммунобиологические методы диагностики саркоцистоза и токсоплазмоза
    • 1. 5. Сопоставление серологической и микроскопической диагностики саркоцистоза и токсоплазмоза
    • 1. 6. Биохимические исследования при саркоцистозе
  • II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
      • 2. 1. 1. Компрессорное и микроскопическое исследование на сарко-цистоз
      • 2. 1. 2. Иммунодиагностические методы исследования и параметры приготовления саркоцистных и токсоплазменных иммунореагентов для реакции непрямой гемагглютинации
      • 2. 1. 3. Биохимическое исследование
    • 2. 2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
      • 2. 2. 1. Распространение саркоцистоза крупного рогатого скота, овец в хозяйствах Костромской области
      • 2. 2. 2. Морфологическая характеристика видов Sarcocystis крупного рогатого скота и овец
      • 2. 2. 3. Диагностика саркоцистоза и токсоплазмоза животных при помощи реакции непрямой гемагглютинации
        • 2. 2. 3. 1. Получение саркоцистных и токсоплазменных антигенов, иммунных сывороток, изучение их активности и специфичности
        • 2. 2. 3. 2. Диагностика саркоцистоза крупного рогатого скота, овец, свиней при помощи реакции непрямой гемагглютинации
        • 2. 2. 3. 3. Серологические исследования крупного рогатого скота, овец и свиней на спонтанную зараженность Toxoplasma gondii при помощи реакции непрямой гемагглютинации
        • 2. 2. 3. 4. Сопоставление результатов серологической диагностики саркоцистоза и токсоплазмоза крупного рогатого скота
      • 2. 2. 4. Биохимическое исследование мышц крупного рогатого скота

Саркоцистоз и токсоплазмоз сельскохозяйственных животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации: Распространение, диагностика (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Многие широко распространенные протозойные болезни, в том числе сар-коцистоз и токсоплазмоз, обусловливают существенный экономический ущерб, который складывается из падежа и вынужденного убоя животных, недополучения приплода, привесов, снижения качества и питательной ценности мяса. Ток-соплазмы поражают головной мозг, органы зрения, ретикуло-макрофагальную систему животных и человека, вызывая аборты, мертворождения, гибель молодняка в ранний постнатальный период.

В Российской Федерации саркоцистоз зарегистрирован у 85−100% крупного рогатого скота и овец, 5−30% свиней, 35−55% лошадей, токсоплазмоз — у 520% крупного рогатого скота, 30−70% овец, 20−50% свиней.

Я. Сенуайте, В. Юкнис (1981) установили, что в мясекрупного рогатого скота, пораженном саркоцистами, содержание глюкозы на 32%, гликогена на 38%, а белка — на 24% ниже по сравнению со здоровыми контрольными животными. Д. Н. Ерхан, И. З. Кастравец (1989) подтвердили значительные биохимические изменения в тканях экспериментально зараженных саркоцистами животных.

Кроме того, вышеназванные нозологические формы имеют эпидемиологическое значение. Человек является дефинитивным хозяином двух видов Sarco-cystis — S. bovihommis, S.suihominis. В мире известно около 100 случаев обнаружения саркоцист в мышцах людей (P.C. Beaver, 1979). Токсоплазменные антитела выявлены у 20−30% людей в Российской Федерации (Н.В. Градковская, Л. И. Грачева, H.A. Захарова, 1985; Л. И. Грачева, 1998). Широкое распространение токсоплазмоза среди людей объясняется многообразием путей передачи возбудителя, включая трансплацентарныйне исключен трансмиссивный путь циркуляции Toxoplasma gondii.

В условиях реструктуризации сельского хозяйства и неблагоприятных изменений в обеспечении ветеринарно-санитарного и санитарно-эпидемиологического надзора сложившаяся эпизоотическая и эпидемическая ситуация подтверждает необходимость сероэпизоотологического мониторинга, т. е. регулярного исследования животных на саркоцистоз и токсоплазмоз. В России интенсивные работы по применению современных иммуно-диагностических тестов при болезнях, вызываемых паразитическими простейшими, начаты сравнительно недавно. Серологические методы исследованияполимеразноцепная реакция (ПЦР), иммуноферментный анализ (ИФА), реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) являются надежными, чувствительными, информативными, позволяют проводить как ретроспективную диагностику латентного токсоплазмоза, так выявлять случаи острого заболевания, рецидивы. Достоинством последнего метода диагностики является простота, скорость постановки, высокая специфичность, возможность исследования без дорогостоящих иммунореагентов всех видов животных и человека.

Необходимо учитывать, что наличие в крови людей циркулирующих антигенов Sarcocystis и саркоцистных антител в результате иммунизации с коровьим молоком приводит к ложноположительным результатам иммунодиагностиче-ских тестов на токсоплазмоз. Данный факт связан с наличием у токсоплазм родственных с Sarcocystis антигенных детерминант. Вопросы дифференциальной диагностики различных нозологических форм, вызываемых цистообразую-щими кокцидиями, а также состояний естественной иммунизации растворимыми антигенами Sarcocystis и Toxoplasma изучены недостаточно.

Важным для ветеринарной практики является установление доброкачественности мяса животных, зараженных саркоцистами с различными показателями интенсивности инвазии. Выяснение вопроса о пригодности в пищу, питательной ценности мяса животных при саркоцистозе в перспективе послужит для разработки правил ветеринарно-санитарной оценки.

Цель и задачи исследования

Изучение распространения саркоцистоза и токсоплазмоза сельскохозяйственных животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации, получение саркоцистных, токсоплаз-менных иммунореагентов и применение реакции непрямой гемагглютинации для диагностики.

Для достижения цели необходимо:

1. Выяснить распространение саркоцистоза и токсоплазмоза у сельскохозяйственных животных, сезонную динамику заболеваемости и зависимость экстенсивности, интенсивности инвазии от возраста животных;

2. Изучить некоторые биохимические показатели мяса животных с различной интенсивностью инвазии Sarcocystis-.

3. Установить активность саркоцистного и токсоплазменного антигенов, полученных различными способами, чувствительность и специфичность реакции непрямой гемагглютинации при диагностике саркоцистоза и токсоплазмоза;

4. Провести сопоставление прижизненной (РНГА) и послеубойной (компрессорной) диагностики саркоцистоза крупного рогатого скота и овец;

5. Изучить проявление перекрестных реакций в РНГА между Sarcocystis и Toxoplasma gondii у спонтанно зараженных животных.

Научная новизна.

Впервые изучено распространение, сезонная динамика саркоцистоза и токсоплазмоза животных в 11 районах Костромской области, а также подробно представлены данные по зависимости экстенсивности и интенсивности инвазии от возраста животных. Определены виды саркоцист и частота их встречаемости (Sarcocystis bovicanis — 75%, S. bovifelis — 18%, S. bovihomims — 13%, S. ovicanis -98,5%, S. ovifelis — 10%, S. suicanis — 8,2%), локализация в различных органах и мышцах животных. Отработаны параметры приготовления мембранно-цитоплазменных антигенов Sarcocystis и Toxoplasma для РНГА. Установлена возможность применения РНГА с разработанными иммунореагентами для диагностики саркоцистоза и токсоплазмоза животных. Выявлено изменение биохимических показателей мяса при различной интенсивности инвазии (ИИ) сар-коцистами. Высокие показатели ИИ (400−800), по результатам биохимических исследований, свидетельствуют о недоброкачественности мяса. Последнее позволяет рекомендовать правила ветеринарно-санитарной оценки мясной продукции при саркоцистозе.

Практическая значимость работы.

Мониторинг, изучение уровня «паразитарного загрязнения» и эпизоотоло-гической географии при саркоцистозе и токсоплазмозе в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации позволяют своевременно осуществлять комплекс оздоровительных профилактических мер.

Разработаны оптимальные параметры получения иммунореагентов для РНГА при диагностике саркоцистоза и токсоплазмоза сельскохозяйственных животных. С целью дифференциальной диагностики токсоплазмоза и саркоцистоза, а также получения максимальной специфичности и достоверности результатов, установлен пороговый диагностический титр РНГА — 1:80. На основании полученных результатов биохимических исследований туш и органов животных рекомендуются правила ветеринарно-санитарной оценки мясной продукции с учетом интенсивности инвазии саркоцистами. Составлены и утверждены ученым советом КГСХА (протокол № 5 от 20 мая 1994 г.) технические условия и наставление на диагностикум эритроцитарный саркоцистный антигенный, предназначенный для выявления антител против БагсосузйБ в реакции непрямой гемагглютинации.

На защиту выносятся следующие положения:

1. Распространение, сезонная динамика, зависимость экстенсивности и интенсивности инвазии от возраста при саркоцистозе и токсоплазмозе жвачных животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации;

2. Особенности эпизоотологии токсоплазмоза свиней в свиноводческом комплексе промышленного типа (зависимость экстенсивности инвазии от сезона года, возраста и технологии выращивания животных);

3. Применение РНГА с мембранно-цитоплазменными фракциями антигенов для диагностики саркоцистоза и токсоплазмоза животных;

4. Сопоставление результатов серологического и компрессорного исследований на саркоцистоз.

1а.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены на научных и научно-практических конференциях Костромской ГСХА, Ивановской ГСХА, ВИГИС (г. Москва), Санкт-Петербургской академии ветеринарной медицины (1998,1999).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 9 научных и учебно-методических работ.

Объем и структура диссертационной работы. Диссертация изложена на 124 страницах машинописного текста, иллюстрирована 19 рисунками, 14 таблицами и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов и практических предложений, списка литературы, приложения.

ВЫВОДЫ.

1. Саркоцистоз у крупного рогатого скота зарегистрирован в 9 районах Костромской области: Костромском, Красносельском, Нерехтском, Суди-славском, Галичском, Антроповском, Павинском, Островском, Солигалич-ском. Средние показатели экстенсивности инвазии — 84,4% ± 0,36 (287 из 340).

2. С помощью метода гомогенизации мышц идентифицированы виды Sarcocystis крупного рогатого скота. Наиболее часто встречается S. bovicanis -75% ± 0,42 (212 из 283), значительно реже S. bovifelis — 18% ± 0,37 (51 из 283), S. bovihommis — 13% ± 0,46 (37 из 283), S. diaphragmatica sp.n. — 5% ± 0,42 (14 из 283).

3. Экстенсивность инвазии при саркоцистозе крупного рогатого скота зависит от возраста: молодняк 5−12 мес. — 26,9% ± 0,44 (7 из 26) — 13−24 мес. -98,1% (106 из 108), быки старше 2-х лет и коровы 3−10 лет — 80,3% ± 0,34 (159 из 198). Телята 2−4-х мес. не инвазированы.

4. При изучении сезонной динамики саркоцистоза молодняка крупного рогатого скота установлено, что наиболее высокая экстенсивность инвазии (ЭИ) Sarcocystis отмечена в конце лета — 90,1% ± 0,37 и осенью — 91% ± 0,36, наименьшие показатели ЭИ — в марте-апреле — 72,5% ± 0,32.

5. Интенсивность инвазии (ИИ) при саркоцистозе крупного рогатого скота зависит от возраста животных: молодняк до 5−6 мес. — 1−2- 7−12 мес. — 5870, 13−24 мес. — 3−400, нетели — 1−73, коровы 3−5 лет — 1−48, коровы старше 5 лет — 1−17 цист. Выявлена тенденция снижения ИИ с возрастом животных.

6. Установлена преимущественная локализация саркоцист в сердце, пищеводе и диафрагме, скелетная мускулатура инвазирована в невысокой степени. Показатели ЭИ S. bovicanis в различных мышцах крупного рогатого скота следующие: в сердце — 78,5% (267 из 340), в пищеводе — 73,5% (250 из 340), в ножках диафрагмы — 63,2% (215 из 340).

7. Качество мясной продукции снижается при увеличении интенсивности инвазии саркоцистами. Биохимические исследования мышц животных с различной интенсивностью инвазии (ИИ) Sarcocystis позволили получить следующие результаты: при ИИ — 1−17 основные показатели находятся в пределах нормативных параметров, с увеличением ИИ до 171−907 отмечается ухудшение качества мяса.

8. Для диагностики саркоцистоза и токсоплазмоза показана возможность применения РИГА с антигенами (AT) Sarcocystis и Toxoplasma gondii, полученными путем многократно замораживания-оттаивания и дезинтеграции детергентом тритон Х-100.

8.1. Активность саркоцистных и токсоплазменных АГ в РИГА различается в зависимости от способа приготовления: корпускулярные АГ не пригодны из-за неспецифической агглютинациирастворимый комплексный мембранно-цитоплазменный антиген является специфичным, но не высоко активным (1:1280 с иммунными сыворотками), мембранные фракции AT Sarcocystis и Toxoplasma gondii, выделенные путем высокоскоростного центрифугирования и полученные при обработке детергентом, максимально активны — 1:2560−1:5120.

8.2. Сопоставление результатов серологического (РИГА) и компрессорного исследования крупного рогатого скота и овец на саркоцистоз позволяет констатировать 100%-ную корреляцию и высокую информативность.

8.3. Перекрестные реакции в РИГА между Sarcocystis и Toxoplasma gondii при использовании сверхпороговых разведений сывороток крови — 1:80 не отмечены. Диагностический титр при исследовании на токсоплазмоз — 1:80. В обратном варианте (саркоцистный антиген + токсоплазменная сыворотка) положительные результаты не выявлены.

9. Серологический скрининг на токсоплазмоз при помощи РНГА позволил выявить антитела к Toxoplasma gondii у 79,2% ± 0,21 (99 из 125) овец,.

25,7% ± 0,35 (111 из 431) гол. крупного рогатого скота, 42% (171 из 407) свиней.

9.1. Зависимость экстенсивности инвазии от возраста при токсоплазмозе крупного рогатого скота подтверждается следующими данными: антитела к Т. gondii выявлены у 20,3% ± 0,40 (57 из 280) коров 3−8 лет и быков старше 2-х лет, 11,5% ± 0,31 (3 из 26) телят 2−12 мес., 40,8% ± 0,49 (51 из 125) бычков и телок 13−24 мес.

9.2. При токсоплазмозе крупного рогатого скота отмечено увеличение экстенсивности инвазии в весенний и летний сезоны года — 13−78%, 55−70% соответственно.

9.3. Наиболее высокая экстенсивность инвазии при токсоплазмозе зарегистрирована среди свиней на откорме в возрасте 9−10 мес. 61,5% ± 0,24 (66 из 108) и свиноматок 2−4 лет 38% ± 0,19 (62 из 162). Хряки 2−4 лет, поросята на доращивании 2−3,5 мес. и ремонтные свинки 6−12 мес. положительно реагировали в РИГА соответственно — 8% ± 0,43 (2 из 25), 34% ± 0,38 (5 из 16) и 37,5% ± 0,32 (36 из 96).

9.4. Для токсоплазмоза свиней характерна сезонная динамика. Результаты серологических исследований в зимний (19−25%), весенний (21−61%), летний (19−59%) и осенний (15−17%) сезоны года свидетельствуют о возрастании количества положительно реагирующих животных в весенне-летний период.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. Запрещается доступ собак и кошек на территории животноводческих комплексов, молочно-товарных ферм. Служебных собак, используемых для охраны и пастьбы животных, необходимо один раз в квартал исследовать на наличие спороцист Sarcocystis. Выявленных носителей подвергать противопротозой-ной обработке в условиях изолятора.

При подозрении на саркоцистоз животных на мясоперерабатывающих предприятиях требуется проводить компрессорное исследование мышц сердца, ножек диафрагмы, пищевода, поясничных, ягодичных. В случае обнаружения более 50 саркоцист в одном срезе из мышечной ткани внутренних органов или скелетной мускулатуры, субпродукты или части туши соответственно направлять на промышленную переработку. При этом необходимо учитывать основные биохимические показатели мяса животных, зараженных саркоцистами при ИИ более 50 цист.

2. Для установления прижизненного диагноза на саркоцистоз и токсоплаз-моз, а также дифференциального скрининга, следует использовать реакцию непрямой гем агглютинации с мембранно-цитоплазменными антигенами Sarcocystis, Toxoplasma gondii, полученными по предлагаемой методике. Составлены наставления и технические условия приготовления антигенных саркоцист-ных и токсоплазменных эритроцитарных диагностикумов для РИГА (см. приложение с. 112).

3. Результаты компрессорных, серологических и биохимических исследований при саркоцистозе рекомендуется использовать для диагностики в условиях хозяйств, ветеринарных лабораторий, мясоперерабатывающих предприятий, а также в научной и учебно-методической работе.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A., Гадаев А., Ходжаева Л. Ф. Саркоспоридии домашних животных Узбекистана// «Узб. биол. журнал», — 1982, — № 5.-С.50−52.
  2. Т.В. О саркоцистозе крупного рогатого скота в Литовской ССР // Теоретические и практические вопросы паразитологии. Тарту, — 1979. С. 14−15.
  3. Т.В. О зараженности диких кабанов саркоспоридиями в Литовской ССР// Материалы к III съезду ВОПР/ Современные проблемы протозоологии. Вильнюс, 1982, — С. 29.
  4. Л., Арнаудов Д. Редкий случай саркоцистозного энцефалита у овцы // Ветеринарно-мед. науки. 1987. Т.24. — № 3, — С. 33−37.
  5. Т.В. Цитологическое исследование кокцидий, облигатных внутриклеточных паразитов: Автореф. дис. докт. биол. наук. Л., 1979. — 34с.
  6. Т.В., Полянский Ю. И. О положении «токсоплазмид» в системе простейших// Токсоплазмиды. Наука. Л., 1979. С. 6−23.
  7. A.C. Паразитические простейшие диких и сельскохозяйственных животных юго-восточной Туркмении// Материалы к III съезду ВОПР «Современные проблемы протозоологии». Вильнюс, 1982. С. 45.
  8. A.C. Саркоцисты сельскохозяйственных животных// Тез. докл. Всесоюзной конференции «Протозойные болезни с/х животных, переносчики их возбудителей и современные методы борьбы с ними», — Самаркрнд. 1983, — С. 194.
  9. A.A. Оценка свинины при саркоцистозе // Ветеринария. 1976. -№ 3.-С. 108−110.
  10. Ю.Богуш A.A. Токсичность пораженного саркоцистами мяса и способы его обезвреживания // Труды Белорусского НИИЭВ, 1977. Вып.25. — С. 121−126.
  11. A.A., Урбанович Н. Обсеменение микрофлорой мяса, органов свиней и крупного рогатого скота при саркоцистозе // Труды Белорусского НИИЭВ. 1977.-Т. 25. — С. 117−121.
  12. А.П., Шахаров А. Г. Характер эпидемического процесса при ток-соплазмозе в зоне интенсивного животноводства // Актуал. пробл. мед. паразитол. Ташкент. — 1990. — С. 71−75.
  13. К.С. Инвазированность саркоцистами мышц животных // Ветеринария, 1976, № 12. С. 87−89.
  14. И.И., Леонтьева Ф. Ф. О заражении песцов и норок саркоцистами крупного рогатого скота//В сб.: Достижения химии в животноводстве. Тезисы докладов VI Свердловской конференции. Свердловск, 1974, — С. 9−10.
  15. И.И. Саркоспоридии и изоспоры животных и человека // Протозоол. Л., 1979. № 4. — С. 24−37.
  16. И.И. Биологические особенности саркоспоридий // Современные проблемы протозоологии: Материалы к III съезду ВОГТР. Вильнюс, 1982. С. 62.
  17. А. Саркоцисты домашних животных Узбекистана. Автореферат дисс. канд. биол. наук. Ташкент, 1978. С. 1−23.
  18. Г. Д., Суркова A.M. Выявление цист саркоспоридий у сельскохозяйственных животных в Азербайджане// 4 Нац. конф. по паразитологии. Варна, 1983, — С.85−86.
  19. Л.М. Результаты изучения заболеваемости токсоплазмо-зом людей// Актуал. пробл. паразитол. в Прибалтике: Тез. докл. к 11 науч,-координац. конф. по пробл. паразитол. в Прибалтике. Таллинн, 1989, — С. 64−65.
  20. И.Г., Коновалова С. И. Диагностика токсоплазмоза животных // Алма-Ата, 1971. С. 144.
  21. Ю.К. Методические указания по диагностике и профилактике саркоцистоза животных в хозяйтсвах Мордовской АССР, Саранск, 1976, — С. 6.
  22. Х.С., Литвинов В. Ф., Литвиненкова А. Е. Саркоцистоз диких млекопитающих Белоруссии// Известия АН БССР, Сер. биол. н. 1977, — № 3, — С. 118−121.
  23. Н.В., Грачева Л. И., Захарова Н А. Использование иммуно-ферментного анализа в диагностике токсоплазмоза // Журн. микробиол., эпиде-миол. и иммунобиол. 1985. № 4. — С. 69−72.
  24. Л.И. Проблема токсоплазмоза: Докл. Диагност., лечение и про-филакт. протозойных болезней животных//Междунар. науч.-произв. конф. по протозоол., Москва, 11−12 нояб., 1997 /Вестн. вет. 1998, — № 1, — С.63−68.
  25. Я.С. Светооптическое и электронномикроскопическое изучение морфологии цисты саркоспоридий Sarcocystis ovifelis Heydom et al., 1975// Acta parasitol. lituamva. 1983, — 20, — C. 47−57.
  26. H.C., Даньшина M.C. Саркоцистоз крупного рогатого скота// Обзор Молд. НИИНТИ, 1973, — С. 134.
  27. М.А. Кприродной очаговости саркоцистоза овец в степной зоне Северного Кавказа// Сб. науч. работ ЛВИ, — 1980, — Вып. 63, — С. 35−38.
  28. Н.В., Пак С.М. Методы обнаружения саркоспоридий в мышцах// В кн.: «Животный мир Казахстана и проблемы его охраны». Алма-Ата: «Наука», 1982,-С.76.
  29. ЗГЗасухин Д.Н., Вельяминов К. С., Дьяконов Л. П. Саркоцистоз животных// Ветеринария 1979, — № 1. — с. 49−55.
  30. Д.В., Авдеева О. Н., Попа А. В. Случай гемолитико-уремического синдрома у больной с приобретенным токсоплазмозом// Педиатрия, — 1998. № 1,-С. 96−97.
  31. Я.С., Сидоренко Н. В. Электронномикроскопическое изучение процесса эндодиогении в цистах Sarcocystis ovifelis. // Кишечные простейшие, — Вильнюс, — 1982, С. 66−69.
  32. Н.Ф., Довбенко H.H., Гуцуляк В. П. Изменение качества мяса овец при саркоцистозе // Профилакт. Паразитар. болезней животных. Кишинев, 1985. — С. 20−24.
  33. Ю.А., Каральник Б. В., Кирющенко Т. В. Серологическая диагностика токсоплазмоза на основе эритроцитарных реагентов // Труды НИИ эпиде-миол., микробиол. и инф-х болезней. 1989. — Вып.38. — С. 114−117.
  34. Г. Т. Саркоцистоз верблюдов // Ветеринария, 1981.- № 7. С. 41.
  35. A.B. Саркоцисты среднеазиатской черепахи // Институт зоологии АНКаз ССР, Алма-Ата, — 1982, — С. 197.
  36. Н.Г. Саркоспоридии овец юго-востока Казахстана // Автореф. дисс. канд. биол. наук, — Алма-Ата, — 1963, — С. 1−19.
  37. Н.Г., Поломошнов А. П., Новак М. Д., Галузо Е. Д. Саркоспоридии сельскохозяйственных животных в Казахстане // Материалы к III съезду ВОПР «Современные проблемы протозоологии».- Вильнюс, 1982. С. 198.
  38. Ч.Л. Опыт диагностики и лечения врожденного токсоплазмоза // Тез. докл. к 11 научн, — координац. конф. По пробл. паразитол. в Прибалтике. Актуальн. пробл. паразитол. в Прибалтике. — 1989. — С. 72.
  39. С.Н., Мискарян Н. Д. Саркоспоридиоз диких парнокопытных// труды Бурятского зоовет ин-та, 1958, вып. 13, — С.297−299.
  40. С.Н., Фомина М. И. Саркоцистоз овец в Бурятской АССР// Сб. науч. работ Сиб НИВИ, Омск, — 1979 Вып. 35, — С. 108−109.
  41. С.Н., Фомина М. И. Эпизоотология саркоцистоза свиней// Ветеринария, 1980, — № 5, — С. 46.
  42. С.Н., Фомина М.И О саркоцистозах диких парнокопытных в Бурятской АССР// Болезни с/х животных и меры борьбы с ними в Забайкалье и на Дальнем Востоке.-1981,-С. 16−17.
  43. С., Котоминдов С. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса овец, зараженных саркоспоридиями // Ветер, сб.- 1977, — Вып. 75, — № 1. С. 34−36.
  44. Л.Г., Жернакова Н. В. К изучению саркоцист с.-х. животных Грузии // 4 Нац. конф. по паразитологии. Варна, 1983. С. 85.
  45. И.В. Саркоцистоз крупного рогатого скота // Теорет. и практ. вопр. ветеринарии. 1988. Т. 2, — С. 44−45.
  46. М.А., Суркова A.M., Искендерова Н. Г. Зараженность бродячих собак саркоспоридиями на Апшеронском полуострове // Изв. АН Аз ССР. Сер. биол. н. 1989. -№ 1. — С. 32−38.
  47. С.Н., Позов С. А. Иммунологическая диагностика саркоцистоза животных // IX конференция Украинского паразитологического общества, Киев, 1980,-Ч. 3.-С. 110−111.
  48. С.Н., Позов С. А. К вопросу иммунологической диагностики саркоцистоза // Ветеринария. М., 1982. № 5. — С. 40−41.
  49. С.Н., Позов С. А. Восприимчивость овец к саркоцистозу // Ветеринария. М., 1985. № 5. — С. 50−52.
  50. С.А. Реакция агглютинации при диагностике саркоцистоза овец // Диагност., лечение, профилакт. инфекц. и паразитар. заболев, с.-х. животных. Ставрополь, 1983. С. 62−65.
  51. С.А. Определение продолжительности иммунитета у овец к саркоцистозу // Диагност., лечение, профилакт. инфекц. и паразитар. заболев, с,-х. животных. Ставрополь, 1986. С. 55−58.
  52. А.П. Саркоспоридии диких копытных в Казахстане // Институт зологии АН Каз ССР, Алма-Ата, 1982, — С. 1290.
  53. А.П. Саркоспоридии овец // «Животный мир Казахстана и проблемы его охраны». Алма-Ата: Наука, — 1984. С. 146.
  54. Ю.А. Устойчивость спороцист Sarcocystis во внешней среде// Казахский научно-исследовательский ветеринарный институт, Алма-Ата, 1992. С. 294.
  55. Ю.А., Хван М. В. Саркоцистоз животных на юге и юго-востоке Казахстана.// Сб. науч. трудов «Паразитозы с.-х. животных Казахстана и меры их предупреждения», Алма-Ата, 1983. С. 83.
  56. А.И. Развитие цитообразующей кокцидии Sarcocystis muris в организме промежуточного хозяина// Цитология. 1988.-30, № 10, — С.1194−1199.
  57. А.И., Бейер T.B., Семенов В. М. Один из возможных путей распространения одноклеточных паразитов Sarcocystis muris в мускулатуре промежуточного хозяина// Цитология, — 1998, — 40, № 1.- С. 100−105.
  58. П.Ф. Биологическая статистика. Минск: «Вышэйшая школа», 1973, — 320 с.
  59. В.М. Морфогенез альмацитов при саркоспоридиозе овец: Докл. Диагност., лечение и профилакт. протозойных болезней животных: Междунар. науч.-произв. конф. по протозоол., Москва, 11−12 нояб., 1997//Вестн. вет. 1998.-№ 1.-С.60−63.
  60. Я., Юкнис В. Исследование биологической ценности мяса крупного рогатого скота при поражении саркоцистами // Acta parasitol lituanica. -1981.-№ 19.-С. 67−71.
  61. Ю.А. О саркоспоридиозе крупного рогатого скота в Эстонской ССР // Достижения науки и практики в ветеринарии Тарту, 1973. С. 51−52.
  62. Ю.А., Миллер И. В., Парре Ю. Ю. Саркоцистоз крупного рогатого скота в Эстонской ССР // Теоретические и практические вопросы ветеринарии/ Т. 2. Материалы Респ. конф. «Вет. проблемы индустрии животноводства», Тарту, 1983. С. 90−100.
  63. В.Н. Распространение и сезонная динамика микросаркоцистоза крупного рогатого скота и свиней в Киевской области // Пути увеличения производства и улучшения качества продукции земледелия и животноводства. Белая церковь, — 1980, — С. 190−192.
  64. JI.B., Крайнева В. В., Рачкова О. Ф. Саркоцисты овец в Нечерноземной зоне РСФСР // Тез. докл. науч.-произв. конф. по актуал. вопр. вет. Горький, 1984. С. 86−87.
  65. А.С. Саркоспоридиоз среди убойного скота Ереванского мясокомбината// Труды Ереванского зоовет. ин-та, 1950, — Вып. 12.-С. 181−196.
  66. .А. Токсоплазмоз крупного рогатого скота: Автореф. дисс.. доктора вет. наук. Ставрополь, 1975, — 44 с.
  67. E.JI. Распространение саркоцистоза свиней в Ставропольском крае // Вестн. вет, — 1997, — № 4, — С.29−30.
  68. Хан Н.Г., Полубоярова Г. В., Ананьев О. П. Диагностическое значение РСК и РДСК при саркоцистозе овец// Сб. науч. трудов «Паразитозы с/х животных Казахстана и меры их предупреждения». Алма-Ата, 1983, — С. 109.
  69. Хан Н.Г. Клинико-патологические изменения и антителогенез при экспериментальном саркоспоридиозе овец // Меры борьбы с инфекц., паразитар. и незараз, болезнями с.-х. животных в Казахстане // Алма-Ата, 1985. С. 212−125.
  70. Хан Н. Г. Получение и испытание антигенов для диагностики саркоцистозов сельскохозяйственных животных // Вопр. вет. паразитол. в Казахстане. Алма-Ата, 1987. С. 134−139.
  71. Е.А., Мищенко Н. К., Засухин Д. Н. Некоторые данные по обследованию с/х животных на токсоплазмоз// Журнал микробиол., эпидемиол. и иммунобиол., М., 1961. № 6, — С. 125−128.
  72. И.В., Лаковникова Е. В. Распространение саркоцистоза среди овец и крупного рогатого скота // Инваз. болезни с.-х. животных и птиц. Л., 1987. С. 61−65.
  73. В.Л. Болезни домашних животных, вызываемые простейшими (Protozoa). М.-Л., 1931.-С.863.
  74. Ahmed В.А., Gaafar S.M., Weinch W.E., Kanitz C.L. Relationship of toxoplasma infections to other diseases in dogs// Vet. Parasitol. 1983. V.12. — N 2. — P. 199−203.
  75. Arthur M.J., Blewett D.A. IF AT detection of Ig G specific to toxoplasma in thoracic fluids from aborted lambs: Evalution on routine diagnostic submissions // Veter. Rec. 1988. V.122. — № 2. — P.29−31.
  76. Aryeetey Mary E., Piekarski G. Serologische Sarcocystis Studien an Menschen und Ratten // Zeitschr. Parasitenk.1976. — B.50. — № 2. — P. 109−124.
  77. Babudieri B. Sarcosporidi e le Sarcosporidiosi (Studio monografico)// «Arch. Protistenkunde», 1932.-V.7.-P.423−580.
  78. Barnett D. Practicable diagnosis of acute bovine sarcocystosis causally related to bovine abortion // Annual meeting proceedings of twentieth. 1977. V.20. — P. 131 138.
  79. Beaver P.C., Gadgil R.K., Morera P. Sarcocystis in man a rewiew and report of five cases // Amer. J. Trop. Med. and Hyg. 1979. V.28. — № 5. — P. 819−844.
  80. Berthet В., Bourdin P. Application d une technique ELISA au diagnostic serologique de la toxoplasmose ovine: son interet pour les petits ruminants saheliens // Rev. Elevage Med. veter. 1982. V.35. — № 1. — P. 27−33.
  81. Blasek K., Schramlova I., Kotrly A. Die Sarcosporidiose des Rehwildes (Capreolus capreolus) // Folia parasitol.- 1978, — 25, № 2, — P. 99−102.
  82. Bledsoe B. Sporogony of Sarcocystis idahoensis in the gopher snake, Pituophis melanoleucus (Daudm) // J. Parasitol. 1979. V.65. — P. 875−879.
  83. Boch J., Laupheimer K.E., Erber M. Drei Sarcosporidienarten bei Schlachtrindern in Suddeutschland // Berlin. Und munchen. tierarztl. Wochenschr. 1978. -B.91. -№ 21. P. 426−431.
  84. Bommer W., Hofling K.H., Heunert H.H. Multiplication of Toxoplasma gondii in cell cultures // Ger. Med. Monthly. 1969. № 14. — P. 399−405.
  85. Bowie William R., King Arlene S., Werker Denise H., Isaac-Renton Judith L., Bell Alison, End Steven B., Marion Stephen A. Outbreak of toxoplasmosis associated with municipal drinking water//Lancet.- 1997, — 350, № 9072, — P. 173−177.
  86. Bretagne S., Costa J.M., Kuentz M., Simon D., Vidaud M., Fortel I., Vernant J.P., Cordonnier C. Late toxoplasmosis evidenced by PCR in marrow transplant recipient/ Bone Marrow Transplant.- 1995.- 15, № 5, — P. 809−811.
  87. Buxton D., Innes E.A. A commercial vaccine for ovine toxoplasmosis // Para-sitilogy.- 1995. 110, Suppl. — P. 11−16.
  88. Cerva L., Cerna Z. Indirect haemagglutination reaction with Sarcocystis dispersa antigen // Folia parasitol. 1982. V.29. — № 3. — P. 219−225.
  89. Cerva L., Gut J. Indirect haemagglutination reaction with antigen of Sarcocystis gigantea (Railliet, l886) Ashford, 1977 // Folia parasitol. 1983. V.30. — № 3. — P. 223 228.
  90. Collins G.H., Charleston W.A.G. Feral cats as definitive hosts for sporozoa // N. Z. Vet. J. 1979. № 27. — P. 80−84.
  91. Conti С., Romani R., Magno S., Delia S. Diagnose von toxoplasma gondii-mfectionen bei AIDS-patienten mit der Gewebekulturtechnik//Clin. Lab.- 1996, — 42, № 3,-P. 204−205.
  92. Derouin F., Thulliez Ph., Garin Y.J.F. Interet et limites de la Serologie de toxoplasmose chez les sujets VIH+// Pathol. Biol. 1991, — V.39.- № 4, — P.255−259.
  93. Drost S. Sarcosporidienfunde ira Hackfleisch des Handels // Angew. Parasitol. 1982. B.23. -№ 4. -P. 185−189.
  94. Dubey J.P., Miller N.L., Frenkel J.K. Characterization of the new fecal form of Toxoplasma gondii // J. Parasitol. 1970a. V.56. — № 3. — P. 447−456.
  95. Dubey J.P., Miller N.L., Frenkel J.K. The Toxoplasma gondii oocyst from cat feces // J. Exper. Med. 1970b. V.132.- № 4. — P. 636−662.
  96. Dubey J.P. A review of Sarcocystis of domestic animals and of other coccidia of cats and dogs // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1976. V.169. — № 5. — P. 1061−1078.
  97. Dubey J.P. Frequency of Sarcocystis in pigs in Ohio and attempted transmission to cats and dogs // Am. J. Vet. Res. 1979. V.40. — № 5. — P. 867−868.
  98. Dubey J.P. Coyote as a final host for Sarcocystis species of goats, sheeps cattle, elk, bison and moose in Montana // Am. J. Vet. Res. 1980. V.41. — № 7. — P. 1227−1229.
  99. Dubey J.P. Epizootic toxoplasmosis associated with abortion in dairy goats in Montana // J. Amer. Vet. Med. Assoc.1981. V.178. — № 5−6. — P. 661−670.
  100. Dubey J.P., Perry A., Kennedy M.J. Encephalitis caused by a Sarcocystis-lik organism in a steer // J. Amer. Vet.Med. Assoc. 1987. V.191. -№ 2. — P. 231−232.
  101. Dubey J.P., Adams D.S. Prevalence of Toxoplasma gondii antibodies in dairy goats from 1982 to 1984 // J. Amer. Vet. Med. Assoc. 1990. V.196. — № 2. — P. 295 296.
  102. Entzeroth R. Untersuchungen an Sarcosporidien (Mieschersche Schlauche) des einheimischen Rehwildes (Capreolus capreolus)// Z. Jagdwiss.- 1981, — 27, № 4, — P. 247−257.
  103. Fayer R. Development of Sarcocystis fusiformis in the small intestine of dogs // J. Parasitol. 1974. V.60. — № 5. — P. 660−665.
  104. Fayer R. The first asexual generation in the life cycle of Sarcocystis bovicanis // Proc. Helm. Soc. Washington. 1977. V.44. — P. 206.
  105. Fenger Clara K., Granstrom David E., Langemeier John L., Stamper Shelby, Donahue J. Michael, Patterson Jon S., Gajadhar Alvin A., Marteniuk Judith V.,
  106. Xiaomm Zhou, Dubey J.P. Identification of opossums (Didelphis virgmiana) as the putative definitive host of Sarcocystis neurona// J. Parasitol.- 1995, — 81, № 6, — P. 916−919.
  107. Ferguson J.P., Birch-Andersen A., Siim I.Ch., Hutchison W.M. An ultrastmctural studi on the excystation of the sporozoites of Toxoplasma gondii /7 Acta pathol. microbiol. scand. Sect. B. Microbiology. 1979. V.87. — P. 277−289.
  108. Fortier B., Coignard-Chatain C., Ajana F. Toxoplasma et toxoplasmoses/ Feuill. biol.- 1996, — № 209, — P. 17−25.
  109. Frenkel J.K., Dubey J.P., Miller N.L. Toxoplasma gondii in cats: fecal stages identified as coccidian oocysts //Science. 1970. V.167. — P. 893−896.
  110. Frenkel J.K. Toxoplasmosis: parasite life cycle, pathology and immunology // In: Coccidia, Eimeria, Isospora, Toxoplasma and related genera. Univ. Park Press. Baltimore. 1973. P. 138.
  111. Frenkel J.K., Dubey J.P. Hammondia hammondi gen. nov., sp. nov. from domestic cats a new coccidian related to Toxoplasma and Sarcocystis // Zeitschr. Parasitenk. 1975. B.46.- № 1. — S. 3−12.
  112. Garcia L.W., Hemphi R.B., Maragco W.A., Ciano P. S. Acquired immunodeficiency syndrome with disseminated toxoplasmosis presenting as an acute pulmonary and gastrointestinal illness// Arch. Pathol, and Lab. Med. 1991. V. l 15. — № 5.-P. 459−463.
  113. Giles R., Tramontm R., Kadel W., Whitaker K., Miksch D., Bryant D.W., FayerR. Sarcocystis in cattle in Kentucky//J. Amer. Veter. Med. Assn. 1980. V. l76. — № 6. — P. 543−548.
  114. Greve E. Man as intermediate and final host // Sarcosporidiosis an overlooked zoonosis // Dan. Med. Bull. 1985. — V.33. — № 4. — P. 229−230.
  115. Gupta S.C., Iyer P.K.R. Spontaneous sarcocystosis in the brain of pigs // Indian Vet. J. 1984. V.61. — № 9. — P. 738−739.
  116. Gut J. Infection of mice immunized with formolized cystozoites of Sarcocystis dispersa Cema, Kolarova et Sulc, 1978 // Folia parasitol. 1982. V.29. -№ 3.-P. 285−288.
  117. Hafid J., Sung R.T.M., Pozzeto B., Jaubert J., Akono L.I.Raberm H., Jana M. Kinetic of circulating antigens by capture ELISA and immunoblotting in murine toxoplasmosis // Eur. J. Protistol. 1991. V.27. — № 1. — P. 40−45.
  118. Hagiwara T., Katsube Y. Detection of Toxoplasma infection in pork by Sabin-Feldman s dye test with meat extract // Japan. J. Veter. Sc. 1981. V.43. — № 5. — P. 763−765.
  119. Hellerbrand Claus. Untersuchunden uber die Bedeutimg der Serologie fur die Diagnose und Profilaxe der Toxoplasmoseenzephalitis bei HIV-infizierten Patienten// Diss. Dok. Med.// Fak. Med. Techn. Univ. Munchen. 1994, — 101 p.
  120. Heydorn A.O., Gestrich R., Mehlhorn H., Rommel M. Proposal for a new nomenclature of the Sarcosporidia // Zeitschr. Parasitenk. 1975. B.48. — № 1. — S. 7382.
  121. Hinaidy H.K., Ayse B., Supperer R., Kailab K. Sarcosporidienbefall des Rindes in Osterreich // Wich, tierarztl. Mschr. 1979. B.66. — № 5. — S. 181−184.
  122. Hinaidy H.K. Vereinfachte Homogenatmethode zum Nachweis von Sarco-sporidien (Mischerechen Schlauchen) bei Schlachtrindern// «Wien, tierarztl. Machr», 1980,-V. 67, 2.-P.54−55.
  123. Hirvela-Koski V. Evaluation of ELISA for the detection of toxoplasma antibodies in swine sera // Acta veter. scand.1990. V.31. — № 4. — P. 413−422.
  124. Hoare C.A. The developmental stages of Toxoplasma // J. Trop. Med. and Hyg. 1972. V.75. — № 3. — P. 56−58.
  125. Hunter C.A., Remington J.S. The role of IL12 in toxoplasmosis //Res. Immunol.- 1995, — 146, № 7−8,-P. 546−551.
  126. Johnson A.M., Hildebrandt P.K., Fayer R. Experimentally induced Sarcocystis infection in calves: Pathology // Amer. J. Vet. Res. 1975. V.36. — № 8. — P. 995−999.
  127. Jones S.R. Toxoplasmosis: A review // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1973. -V.163. № 9. — P. 1038−1042.
  128. Jungmann R., Hiepe T. Neuere Ercenntnisse uber die Sarcospondiose // «Mh. Veter. Med.», 1975, — 30, 3, — P. 102−108.
  129. Juyal P.D., Sahai B.N., Srivastava P. S., Sinha S.R.P.Heavy sarcocystosis in the ocular musculature of cattle and buffaloes // Vet. Res. Commun. 1982. V.5. — № 4. -P. 337−314.
  130. Kalyakin V.N., Zasukhm D.N. Distribution of Sarcocystis (Protozoa: Sporo-zoa) in Vertebrates// «Folia Parasitol.», 1975, — V. 22, — P. 289−307.
  131. Kasper L. H., Arrada J., Matsuura T., Khan I.A. IL-7 protect against acute toxoplasmosis/ Abstr. Keystone Symp. Contr. and Manipul. Immune Response, Taos, N.M., March 16−22, 1995// J. Cell. Biochem.- 1995, — Suppl. 21a.- P. 170.
  132. Kasper L.H., Matsuura T., Khan I.A. IL-7 stimulates protective immunity in mice against the intracellular pathogen, Toxoplasma gondii// J. Immunol.- 1995a.- 155, № 10,-P. 4798−4804.
  133. Katio-Radivojevic S., Gardianski-Omerovic G., Petrovic L., Savin L. Some diagnostic aspects of ovine Sarcocystosis// Bull. Soc. fr. parasitol. 1990. Sup.8. — № 2. -P. 1012.
  134. Kawaciukova J., Dvorakova K., Potuznik V. Soucasne moznosti serologickeno prukazu casne faze onemocnen vyvolenebo Toxoplasma gondii // Cs. epidemiol, mikrobiol., immunol. 1991. — V.40. — № 3. — P. 170−176.
  135. Khan I.A., Matsuura T., Kasper L.H. IL-10 mediates immunosuppression following primary infection with Toxoplasma gondii in mice// Parasite Immunol.- 1995.17, № 4,-P 185−196.
  136. Khan I.A., Kasper L.H. IL-15 augments CD8+ T cellmediated immunity against Toxoplasma gondii infection in mice// J. Immunol.- 1996, — 157, № 5, — P. 21 032 108.
  137. Kepka O., Osterreicher H. Zur Heufigkeit von Sarcospondien in Rindern der Steiermark // Wien, tierarztl. Mschr. 1979. B.66. — № 5. — S. 184−185.
  138. Р., Духовникова Т., Бешков Д., Диков И., Цветкова Н., Рачев П. Остра и латентна токсоплазмоза при HIV инфектирани лица // Инфектология. -1996, — 33, № 1.- Р.25−27.
  139. Laarman J.J., Tadros W., Eijk A. Seroepidemiological observations involving human coccidiosis // Third int. Congr. Parasitol. Munchen. 1974. P. 138.
  140. Laarman J.J., Tadros W. Some observations on the epidemiology, serology and experimental transmission // J. Parasitol. 1978. V.77. — № 3. — P. 19−20.
  141. Landsverk T. An outbreak of sarcocystosis in a cattle herd // Acta veter. scand. 1979. V.20. — № 2. — P. 238−244.
  142. Lappm M.R., Green G.E., Prestwood A.K., Dawe D.L., Tarleton R.L. Enzyme-lynked immunosorbent assay for the detection of circulating antigens of cats // Amer. J. Vet. Res.1989. V.50. — № 9. — P. 1586−1590.
  143. Leek R.G. Progress report on Sarcocystis m sheep // National wool Grower. 1982. V.72. — № 5. — P. 10−11.
  144. Lewm F.P., Duong Т.Н., Karagirwa A., Combescot Ch. Facteur anti-nucleare et anticorps antitoxoplasmigues detectes por Jekit Toxo-M Abbot // Pathol, biol. 1990. V.38. — № 2. — P. 130−133.
  145. Lund M.N., Jacobs L. Antigenic differences between endozoites and cystozoites of Toxoplasma gondii // J. Parasitol. 1983. V.69. — № 5. — P. 806−808.
  146. Marenzi C., Avezza F., Finazzi ML, Rothauer D., Turn F. Toxoplasmosi in ovini e caprim allevati in provincia di Varese: indagini siero-immunologiche e isolamento di toxoplasma gondii da organi e tessuti // Arch. vet. ital. 1985. V.36. -№ 3,-P. 53−60.
  147. Mackie J.T., Dubey J.P. Congenital sarcocystosis in a Saanen goat// J. Parasitol.- 1996, — 82, № 2, — C. 350−351.
  148. Mahrt J.L., Colwell D.D. Sarcocystis in wild ingulates in Alberta// J. Wildlife Diseases.- 1980, — 16, 4,-P. 571−576.
  149. Mehlhorn H., Heydorn A.O., Gestrich R. Licht- und elektronemnikroskopische Untersuchungen an Cysten von Sarcocystis ovicams Heydorn et al. (1975) in der Muskulatur von Schafen// Zeitschr. Parasitenk. 1975. B.48. — № 2. -S. 83−93.
  150. Melo Fabio G., Rossi Claudio L. Dot-ensyme-linked immunosorbent assay (Dot-ELISA) for evaluating IgG antibody avidity in toxoplasmosis// Rev. Inst. med. trop. Sao Paulo.- 1997, — 39, № 4, — P. 235−236.
  151. Merino N., Rodriguez E., Garcia G. Metodo de immunoperoxidasa mdirecta para el diagnostico de la toxoplasmosis cronica de los conejos // Rev. salud. anim. 1989. -V.ll. -№ 3−4. -P. 259−262.
  152. Miescher F. Uber eigenthumliche Schlauche in den Muskeln einer Hausmaus // «Berichte der Verhandlunden der Naturforschenden Gesellschsft in Basel», 1843, — 5,-S. 198−202.
  153. Miller R.F., Lucas S.B., Bateman M.T. Disseminated Toxoplasma gondii infection presenting with a fulminant pneumonia// Genitourin. Med.- 1996, — 72, № 2, — P. 139−143.
  154. Mitchell Ch.D., Erlich S.S., Mastrucei M.T., Hutto S.C., Parks W.P., Scott G.B. Congenital toxoplasmosis occurring in infants perinatally infected with human immunodefeciency virus I // Pediat Infect. Disease J. 1990. V.9. — № 7. — P. 512−518.
  155. Morgan G., Terlecki S., Bradley R. A suspected case of sarcocystis encephalitis in sheep // Brit. Vet. J. 1984. V.140. — № 1. — P. 64−69.
  156. Pereira A., Bermejo M. Prevalence of Sarcocystis cysts in pigs and sheep in Spam// J. Vet. Parasitol. 1988. V.27. — № 3−4. — P.353−355.
  157. Petersen R.S. Sarcosporidiose. En overset arbejdsopgave for slagtendyrl eger// Dan. vetermaertidsskr. 1985. V.68. — № 4. — P. 145−150.
  158. Pond D.B., Speer C.A. Sarcocystis in free-ranging herbivores on the National Bison Range//J. Wildlife Diseases. 1979, — 15, l.-P. 51−53.
  159. Rahbari S., Bazargani T.T., Rak H. Sarcocystosis in the camel in Iran// J. Vet. Fac. Univ. Tehran.- 1981, — 37, 1, — S. 1−10.
  160. Rajamanickam C., Cheah T.S., Paramasvaran S. Antibodies to Toxoplasma gondii from domestic animals 'in Malaysia // Trop. Anim. Health and Prod. 1990. -V.22. № l.-P. 61−62.
  161. Renold C., Wmtsch J., Filthuth I., Wunderli W., Lew D., Hirchel B. Pneumonia and respiratory distress syndrome during primary infection with Toxoplasma gondii// Clin. Infec. Diseases.- 1995, — 21, № 3, — P. 690−691.
  162. Rodriguez J.C., Alcantara M.J., Royo G. Toxoplasmosis en el embarazo: Nuevas tecmcas diagnosticas/ Enferm. infecc. y microbiol. elm.- 1996. 14, № 3 — P. 145−149.
  163. Sanger V., Chamderlain D., Cole K., Farrel C. Toxoplasmosis. V. Isolation of Toxoplasma from cattle// J. Am. Vet. Med. Ass. 1953, — V.23.-№ 1, — P.87−91.
  164. Scholtyseck E. Taxonomy of Coccidia // In: Abstr. III. Intern. Congr. Parasitol. Munch. 1974.-P. 9.
  165. Schulze K., Zimmerman Th. Sarkosporidienzysten im Hackfleisch // Fleischwirtchaft. 1981. -B.61. № 4. — S.617−624.
  166. Sheffield H.G. Schizogony in Toxoplasma gondii. An electron microscope study // Proc. Helminth. Soc. Wash. 1970. V.37. — № 2. — P. 237−242.
  167. Shekhar K. Chandra. Food-borne parasitoses in Malaysia: Epidemiological as-sessmewnt and research needs// J. Roy. Soc. Health.- 1995, — 115, № 3, — P. 178−185.
  168. Shi L.Z., Zhao H.Y. Evaluation of an enzyme immunoassay for the detection of antibodies against Sarcocystis spp. m naturally infected cattle in China // J. Vet. Parasitol. 1987. V.24. -№ 3−4. — P. 185−194.
  169. Skinner L.J., Timperley A.C., Wightman D., Chatterton J.M.W., Ho-yem Darrel O. Simultaneous diagnosis of toxoplasmosis in goats and goatowners family // Scand. J. Infec. Dis.1990. V.22. — № 3. — P. 359−361.
  170. Sposito F.E., Amaral V., do Macruz R., Reboucas M.M., Barci L.A.G. Toxoplasma gondii em equinos: Estudo serologico e tentativa de isolamento // Biologico (Bras). 1987. V.52. — № 7−9. — P. 73−74.
  171. Stolte M., Bockhardt I., Odemng K. A comparative scanning electron microscopic study of the cyst wall in 11 Sarcocystis species of mammals// J. Zool.- 1996 -239, № 4, — P. 821−832.
  172. Stubbings D.P., Jeffrey M. Presumptive protozoan (sarcocystis) encephalomyelitis with paresis in lambs // Vet. Ree.1985. V. 116. — № 14. — P. 373 374.
  173. Szarek J. Pattern of Sarcocystis sp. invasion of the myocardium and skeletal muscules of cows with lymphatic leukaemia compared with mealthy cows// Rev. Iber, parasitol.- 1982, — 42, 3. S. 315−323.
  174. Suzuki Y., Thulliez Ph., Remington J.S. Use of acute stagespecific antigens of Toxoplasma gondii for serodiagnosis of acute toxoplasmosis // J. Clin. Microbiol. 1990. V.28. — № 8. — P. 1734−1738.
  175. Tamturier D. Toxoplasmose et pathologie de la reproduction chez les ruminants et la truie // Rev. Med. Veter. 1980. V.131. — № 3. — P. 223−235.
  176. Takla M. Ein Fall einer klinischen naturlichen Meningoenzephalitis durch Sarcocystis cruzi beim Bullen // Tierarztl. Prax. 1984. B. 12. — № 2. — S. 167−172.
  177. Tenter A.M., Johnson A.M. An ELISA for toxoplasmosis using recombinant nucleoside triphosphate hydrolase // Bull. Soc. fir. Parasitol. 1990. V.8. — № 2. — P. 936.
  178. Tixier A., Reynier Ph., Brion J.P., Leclercq P., Bru J.P., Blanc J., Goullier-Fleuret A. Confrontation clinique, radiologique et biologique. A propos de 11 cas // Bull. Soc. fr. Parasitol. 1989. V.7. — № 2. — P. 181−184.
  179. Wikerhauser T., Dzakula N., Rapic D., Majurdzic D. Istrazivanje sarko-cystoze goveda i svmja// «Vet. arch.», 1981, — V.51, 6, — P.275−285.
  180. Wmdeck T., Bohne W., Heesemann J., Grob U. Specific interaction between Toxoplasma gondii and an embryotic host celle protein// 6th Eur. Multicolloq. Parasi-tol., The Hague, Sept. 7−11, 1992: Programme and Abstr.- The Hague, 1992, — P. 90.
  181. Yamaguchi N., Macdonald D.W., Passanisi W.C., Harbour D.A., Hopper C.D. Parasite prevalence in free-ranging farm cats, Felis silvestris catus// Epidemiol, and Infec.- 1996, — 116, № 2, — P. 217−223.
  182. H., Nishicava F., Yarali C., Dundar B., Nislnkava H. // Etlik vet. Mik-robioyol. Degri 1995, — 8, № 1−2, — P. 80−86.
  183. НАСТАВЛЕНИЕ по применению диагностикума эритроцитарного саркоцистного антигенного жидкого в реакции непрямой гемагглютинации для серологической диагностики саркоцистоза
  184. МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ1. РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
  185. УТВЕРЖДАЮ" Начальник Государственного Департамента ветеринарии при Министерстве сельского хозяйства и продовольствия РФ/" 2000 г.
  186. ДИАГНОСТИКУМ ЭРИТРОЦИТАРНЫЙ САРКОЦИСТНЫЙ АНТИГЕННЫЙ ЖИДКИЙ ДЛЯ РЕАКЦИИ НЕПРЯМОЙ ГЕМАГГЛЮТИНАЦИИ ТЕХНИЧЕСКИЕ УСЛОВИЯ1. ТУ .1. Срок введения на срок до
  187. Согласованы с Ученым Советом Государственного научно-контрольного института1. Директор ВГНКИ
  188. Костромская государственная сельскохозяйственная академия Ректор КГСХА Мин. ВУЗ МСХиП РФ/ А. Л. Соколов /
  189. Одобрены Ученым Советом Костромской Государственной сельскохозяйственной академии Протокол № 5 от 20 мая 1994 г. Председатель Ученого Совета / А. Л. Соколов /1. Авторы:
  190. М.Д. Новак / / А. И. Новак /1. ВВОДНАЯ ЧАСТЬ
  191. Настоящие технические условия распространяются на диагностикум эритроцитарный саркоцистный антигенный, жидкий, предназначенный для выявления саркоцистных антител в реакции непрямой гемагглютинации.
  192. Препарат представляет собой 2,5% взвесь формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизированных саркоцистным антигеном.1. Раздел 1.
  193. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ПРЕПАРАТА
  194. Диагностикум эритроцитарный саркоцистный антигенный, жидкий, во флаконах по 2 мл.
  195. Препарат представляет собой жидкость темно-коричневого цвета, непрозрачную, без запаха. При хранении препарата более 5 часов эритроциты оседают, а надосадочная жидкость становится прозрачной.
  196. Действующим началом препарата является белково-полисахаридный комплекс цитоплазматического и мембранного антигенов саркоцист, конъюгиро-ванный с формалинизированными эритроцитами барана при помощи танина.
  197. Препарат предназначен для определения уровня саркоцистных антител в сыворотках крови животных, в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).1. Раздел 2.
  198. ТЕХНИЧЕСКИЕ И ВЕТЕРИНАРНО-БИОЛОГИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ
  199. Контроль готового препарата в отделе биологического контроля (ОБК): а) контроль физических свойств-б) контроль на спонтанную агглютинацию, в) контроль специфичности-г) контроль активности.3 .3 Контроль в ВГНКИ проводится по тестам ОБК.
  200. Описание методов контроля.34.1. Контроль штамма Загсосуэиза) Контроль на стерильность.
  201. Контроль физических свойств саркоцистного антигена проводят визуально. Препарат должен быть прозрачным, опалесцирующим. б) Контроль содержания белка.
  202. Белок в антигене определяют спектрофотометрически или по методу Лоури.34.3. Контроль пробных образцов жидкого диагностикума. а) Контроль физических свойств.
  203. Физические свойства определяют визуально. Препарат должен быть в виде гомогенной суспензии темно-коричневого цвета. б) Контроль на спонтанную агглютинацию.
  204. Контроль на спонтанную агглютинацию осуществляется в панели микро-титратора Такачи с «У"-образными лунками. Диагностикум разводят добавлением 1,5 мл физиологического раствора к 1 мл диагностикума (концентрация эритроцитов составляет 1%).
  205. В один ряд лунок вносят по 0,025 мл разводящей жидкости (1%-ный раствор нормальной кроличьей сыворотки на физиологическом растворе).
  206. Во все лунки ряда с разводящей жидкостью добавляют по 0,025 мл диагностикума. Пластины осторожно встряхивают и помещают на горизонтальную поверхность.
  207. При отсутствии спонтанной агглютинации через 2 часа эритроциты оседают на дно лунки в виде компактного диска или маленького колечка с гладким краем. При наличии спонтанной агглютинации препарат бракуют. в) Контроль специфичности.
  208. Специфичность эритроцитарного диагностикума проверяют в реакции торможения непрямой гемагглютинации в панели микротитратора Такачи с «V"-образными лунками с гипериммунной кроличьей сывороткой, прилагаемой к ди-агностикуму.
  209. Диагностикум считается специфичным, если саркоцистный антиген тормозит РИГА не менее, чем на 4−5 разведений. г) Контроль активности.
  210. Активность диагностикума проверяют с гипериммунной сывороткой кролика (тест-сыворотка), прилагаемой к диагностикуму.
  211. Реакцию ставят в панелях микротитратора Такачи с «У"-образными лунками. Из тест-сыворотки с помощью микродилютора готовят ряд последовательных разведений в объеме 0,025 мл.
  212. Во все лунки приготовленных разведений сыворотки вносят по 0,025 мл ди-агностикума. Содержимое лунок тщательно перемешивают путем легкого встряхивания панели. Реакцию учитывают через 2 часа.
  213. Препарат должен обеспечивать положительную реакцию непрямой гемагг-лютинации с гипериммунной сывороткой кролика в разведении не менее, чем 1:512, о чем свидетельствует образование осадка в виде «зонтика».1. Раздел 4.
  214. НАСТАВЛЕНИЕ по применению диагностикума эритроцитарного саркоцистного антигенного жидкого в реакции непрямой гемагглютинации для серологической диагностики саркоцистоза
  215. Диагностикум представляет собой 2,5% взвесь формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизированных саркоцистным антигеном.
  216. МЕТОДИКА ПОСТАНОВКИ РЕАКЦИИ НЕПРЯМОЙ ГЕМАГГЛЮТИНАЦИИ (РИГА) ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ САРКОЦИСТОЗА (МИКРОМЕТОД)
  217. Для постановки реакции используют панели микротитратора Такачи с «V"-образными лунками, микропипетки и микродилюторы на 0,025 мл.
  218. Панели осторожно встряхивают и помещают на ровную поверхность при комнатной температуре на 2 часа.
  219. Диагностика острой формы саркоцистоза с помощью РИГА.
  220. Достоверным считается уменьшение титра на 4 и больше ступеней.
  221. Срок годности препарата 1 год.
  222. Препарат следует хранить при температуре от +4° до 8 °C.
  223. Примечание: материалы рассмотрены и утверждены Ученым Советом Костромской государственной сельскохозяйственной академии.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!