Усовершенствования технологии клонального микроразмножения подвоев яблони на этапе введения в культуру in vitro

Этап введения эксплантов в культуру in vitro является важным этапом технологии клонального микроразмножения растений. С целью снижения доли погибших от инфекции эксплантов и повышения их регенерационной способности были выделены эффективные и безопасные для эксплантов подвоев яблони стерилизаторы и антибиотики, а также выделены благоприятные сроки введения в культуру in vitro. В результате проведённых исследований установили, что по влиянию на средовую и посадочную инфекцию и на рост и развитие растений, благоприятное влияние на микропобеги подвоев яблони оказывает антибиотик нистатин 200 мг/л: коэффициент размножения на среде с данным антибиотиком равен 4,3, в этой же концентрации нистатин обладает санирующим эффектом 60−75% для подвоев СК 2 и ММ 106. В ходе исследований стерилизаторов эксплантов подвоев яблони СК 2, СК 3, СК 4, СК 7, ММ 106 в качестве альтернативы широко применяемому высокотоксичному стерилизатору сулема (первый класс опасности) были подобраны эффективные и безопасные препараты для санации эксплантов от инфекции, такие как бытовой препарат «Белизна» (гипохлорит натрия) в разведении 1:2, малоопасное вещество четвёртого класса опасности (доля жизнеспособных эксплантов 75,5% от изначально высаженных), а также фосфопаг, препарат четвёртого класса опасности (доля жизнеспособных эксплантов 65% от изначально высаженных). Благоприятным сроком введения меристемы подвоев яблони в культуру in vitro являются фазы распускания почек (март) и интенсивного роста побегов (май — июнь) Ключевые слова: КЛОНАЛЬНОЕ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЕ, ПОДВОИ ЯБЛОНИ, СТЕРИЛИЗАТОРЫ, АНТИБИОТИКИ, СРОКИ ВВЕДЕНИЯ В КУЛЬТУРУ IN VITRO.

The stage of introduction of plantlets to in vitro culture is an important stage of technology of clonal micropropagation of plants. For the purpose of decrease in a share of the plantlets that were lost from an infection and increase of their regeneration ability, sterilizers and antibiotics, effective and safe for apple rootstocks' plantlets wee allocated, and also favorable terms of introduction to in vitro culture were allocated. As a result of the conducted researches, we have established that on influence on an nutrient medium and plantlets infection and on growth and development of plants, beneficial effect on apple rootstocks' plantlets has an antibiotic nystatin of 200 mg/l: the reproduction coefficient on the medium with this antibiotic is equal 4,3, in the same concentration nystatin has the sanifying effect of 60−75% for stocks of SK 2 and MM 106. During researches of sterilizers for apple rootstocks' plantlets SK 2, SK 3, SK 4, SK 7, MM 106 as an alternative to widely applied highly toxic sterilizer corrosive sublimate (the first class of danger) were picked up effective and safe preparations for sanitation of plantlets from an infection, such as the household preparation «Whiteness» (sodium hypochlorite) in cultivation 1:2, low-dangerous substance of the fourth class of danger (a share of viable plantlets of 75,5% from initially introduced), and also fosfopag, a preparation of the fourth class of danger (a share of viable plantlets of 65% from initially introduced). The favorable term for a meristem of apple rootstocks' plantlets' introduction to in vitro culture are phases of buds' burgeoning (March) and the intensive growth of shoots (May — June).

Keywords: CLONAL MICROPROPAGATION, APPLE ROOTSTOCKS, STERILIZERS, ANTIBIOTICS, TERMS FOR INTRODUCTION TO IN VITRO CULTURE.

Метод клонального микроразмножения растений является на данный момент времени наиболее перспективным методом размножения растений. Этап введения эксплантов в культуру in vitro является важным этапом технологии клонального микроразмножения. Основными проблемами на данном этапе являются гибель эксплантов от инфекции, как занесённой в культуру in vitro с самими эксплантами, так и попавшей из внешней среды во время пассажа, а также низкий уровень регенерации микропобегов. Для санации эксплантов и питательных сред от инфекции применяют стерилизаторы и антибиотики. Проявление регенерационной способности эксплантов в значительной степени зависит от срока их изоляции с исходных маточных растений. in vitro эксплант антибиотик Новизна работы заключается в том, что на этапе введения экплантов в культуру in vitro нами протестирован ряд не применявшихся ранее в клональном микроразмножении препаратов для стерилизации эксплантов и антибиотиков наравне с уже известными в данной технологии препаратами, была испытана их эффективность для подвоев яблони серии СК и ММ 106, а также выделены оптимальные сроки изоляции эксплантов данных подвоев с исходных маточных растений.

Объекты и методы исследований. За основу для проведения эксперимента была взята методика Высоцкого В. А. и др. [2, 4, 6].

Объектами исследований явились различные химические соединения — антибиотики и стерилизаторы, а также приёмы культивирования, в частности, различные сроки введения в культуру in vitro подвоев яблони СК 2, СК 3, СК 4, СК 7, ММ 106.

Для стерилизации использованы ранее не применявшиеся в клональном микроразмножении подвоев яблони препараты фосфопаг, скор, эупарен, делан. Выбор в пользу данных веществ был сделан потому, что они являются умеренно опасными и малоопасными: скор, эупарен, делан относятся к третьему классу опасности, фосфопаг — к четвёртому. Экспериментальные препараты обладают различным спектром действия: скор — системный фунгицид [8], делан — контактный фунгицид [3], эупарен эффективен против грибных болезней и клещей [14], фосфопаг обладает противомикозной, антибактериальной, а также противовирусной активностью [10, 11]. Также были использованы уже известные в технологии клонального микроразмножения стерилизаторы, испытана их эффективность для подвоев яблони серии СК и ММ 106, такие как перекись водорода (Н₂O₂), бытовой препарат «Белизна» (гипохлорит натрия (NaCIO). В качестве стандарта нами было использовано широко применяемое в технологии клонального микроразмножения вещество — сулема, препарат относится к первому классу опасности — вещества чрезвычайно опасные [4].

Проведён анализ эффективности группы антибиотиков: цефотаксим, тетрациклин, нистатин. Цефотаксим — лекарственное средство, полусинтетический антибиотик группы цефалоспоринов III поколения, эффективен в отношении многих грамположительных аэробов и анаэробов и обладает высокой активностью к грамотрицательным бактериям. [12]. Тетрациклин — бактериостатический антибиотик из группы тетрациклинов. Активен в отношении грамположительных микроорганизмов, грамотрицательных микроорганизмов, большинства энтеробактерий [9]. Нистатин — антибиотик из группы полиенов, обладает фунгистатическим действием. Высокоактивный в отношении дрожжеподобных грибов препарат. [7].

Экспланты подвоев яблони СК 2, СК 3, СК 4, СК 7, ММ 106 вводили в культуру in vitro в разные месяцы с февраля по июль.

На этапе введения эксплантов в культуру in vitro использовали среду Мурасиге-Скуга с половинным содержанием минеральных солей, дополненную 6-БАП 0,4 мг/л. В состав сред отдельно вносили 400−500 мг/л антибиотиков. Культивирование микропобегов осуществляли в условиях стандартного фотопериода 16/8 (день — 16 часов, ночь — 8 часов), освещенности 2500−3000 люкс, температуре +23±3 є С и влажности 50−60%. Каждые 30−40 суток проводили субкультивирование новых побегов на свежую питательную среду.

Обсуждение результатов.

Эффективность антибиотиков различных групп для оздоровления эксплантов подвоев яблони от инфекций различной этиологии. Изучали влияние комплексных антибиотиков на средовую инфекцию, посадочную инфекцию, на рост растений, а также на эффективность лечения эксплантов, заражённых во время пассажей бактериальными или грибными болезнями. В процессе культивирования пробирочных растений осуществляли контроль за наличием бактериального и грибного заражения, за развитием растений.

Изучено влияние антибиотиков на средовую инфекцию. Эксплантаты отбирали в фазу активного роста. Верхушечные и боковые почки поверхностно стерилизовали водным мыльным раствором в течение 10 минут при тщательном помешивании и промывали час проточной водой. Почки стерилизовали 0,1% раствором сулемы в течение 3 мин., при активном перемешивании стерилизующего раствора. Затем проводили двухкратную промывку дистиллированной водой в течение 6 мин.

Питательную среду готовили по прописи Мурасиге-Скуга с 0,5 мг/л.

6-БАП. Антибиотики растворяли в стерильной воде и добавляли в сосуды с питательной средой непосредственно перед автоклавированием. Концентрация препаратов 0,5; 10; 100; 200 мг/л. В качестве контроля использовали среду без антибиотиков. Ревизия состояния эксплантов проходила через 30−35 дней от посадки. Результаты изучения эффективности антибиотиков приведены в таблицах 1, 2, 3.

Таблица 1 — Результативность введения в культуру in vitro клонового подвоя СК 2 на среды с различными антибиотиками

Как видно из таблицы 1, максимальная доля прижившихся, нормально развитых (75%) микрорастений отмечена при использовании нистатина в концентрации 200 мг/л. Добавление в среду любого антибиотика из протестированных, кроме тетрациклина 100 мг/л и нистатина 100 мг/л, существенно повышает жизнеспособность эксплантов (НСР₀₅=12).

Таблица 2 — Результативность введения в культуру in vitro подвоя СК 3 на среды с различными антибиотиками.

Согласно таблице 2, для подвоя СК 3 наиболее эффективным оказались цефотаксим в концентрации 200 мг/л (60% здоровых эксплантов) и тетрациклин 100 мг/л (60% здоровых эксплантов). Существенно по сравнению с контролем повышают жизнеспособность эксплантов также препараты цефотаксим в конценрации 0,5 мг/л, 100 мг/л, 200 мг/л, тетрациклин 100 мг/л, 200 мг/л, нистатин 0,5 мг/л, 10 мг/л (НСР₀₅=13).

Таблица 3 — Результативность введения в культуру in vitro подвоя ММ 106 на среды с различными антибиотиками.

Для подвоя ММ 106 (таблица 3) эффективным оказался антибиотик нистатин 200 мг/л (60% здоровых эксплантов). Он единственный из протестированных препаратов существенно повышает жизнеспособность экслантов (относительно контроля, НСР₀₅=14).

Анализируя результаты (таблица 1−3) можно отметить, что морфогенетическая реакция эксплантов на антибиотики сортоспецифичная. Установлено, что значительное количество введенных эксплантов ММ 106 некротирует (25−100%). Количество нормально развитых апексов, дающих начало конгломерату микрорастений, для разных подвоев колеблется от 0 до 75 (таблица 1−3). Питательные среды с содержанием антибиотика нистатин в концентрации 200 мг/л оказались благоприятны для подвоев СК 2 (75% здоровых эксплантов) и ММ 106 (60% здоровых эксплантов), для подвоев СК 3 максимальный выход нормально развитых микропобегов наблюдается на средах с антибиотиками терациклин 100 мг/л и цефотаксим 200 мг/л (60% здоровых эксплантов в обоих вариантах).

Важным аспектом применения антибиотиков является определение порядка ввода их в среду: до или после автоклавирования. Использовали среду Мурасиге-Скуга с 0,5 мг/л 6-БАП. Антибиотики растворяли в стерильной воде и добавляли в питательные среды непосредственно до и после автоклавирования.

В таблице 4 приведены результаты воздействия на среду и экспланты антибиотиков при добавлении их в среду непосредственно перед автоклавированием и после автоклавирования в охлаждённую до 45 ° С среду. В качестве контроля использовали среду без антибиотиков. Инфекцию в среде регистрировали в течение месяца.

Таблица 4 — Результаты инфицированности эксплантов при использовании антибиотиков до и после автоклавирования

Данные таблицы 4 показывают очень высокий процент инфицированности среды при добавлении антибиотиков после автоклавирования. Значительно меньшая инфицированность проявляется при добавлении антибиотиков перед автоклавированием. Различие между вариантами «до» и «после» автоклавирования существенно по каждому виду антибиотиков. Проанализировав полученные данные при добавлении антибиотиков, можно сделать вывод о том, что метод «после автоклавирования» является нерациональным в использовании.

Для определения влияния антибиотиков на рост микропобегов экспланты СК 2 культивировали на средах с антибиотиками в течение 1-го месяца. Для культивирования использовали среду Мурасиге-Скуга с 0,5 мг/л 6-БАП. Применяли антибиотики: цефотаксим, тетрациклин и нистатин. Антибиотики растворяли в стерильной воде и добавляли в питательную среду непосредственно перед автоклавированием. Концентрация антибиотиков среде 0,5, 10, 100 и 200 мг/л. В качестве контроля использовали среду без антибиотиков (таблица 5).

Таблица 5 — Коэффициент размножения микропобегов СК 2 на средах с антибиотиками в различных концентрациях

Микропобеги подвоя СК 2 по-разному вели себя на опытных средах. На контрольной среде побеги развивались хорошо. Коэффициент размножения 2,2 (таблица 5).

На питательных средах с цефотаксимом во всех испытуемых концентрациях можно отметить, что микропобеги развивались положительно, однако, в концентрациях 20 мг/л и 50 мг/л мультипликации микропобегов не происходит (рисунок 1).

Рисунок 1 — Микропобеги подвоя СК 2 на средах слева направо: с антибиотиком тетрациклин 200 мг/л, цефотаксимом 50 мг/л, нистатином 200 мг/л.

Максимальный коэффициент размножения наблюдался в концентрации 10 мг/л и составляет 2,9 (таблица5).

На наличие тетрациклина в концентрации 50 мг/л побеги реагировали положительно, коэффициент на данной среде наивысший и составляет 3,2 (таблица 5). На среде с тетрациклином в концентрации 20 мг/л наблюдалась витрификация побегов. На средах с тетрациклином 100 и 200 мг/л микропобеги развивались слабые и умеренно-зеленого цвета (рисунок 1).

Максимальная стимуляция процессов роста побегов отмечена при концентрации 200 мг/л антибиотика нистатина, что доказывает коэффициент размножения, равный 4,3 (различие с контролем существенно). Нистатин в данной концентрации заметно ускорял развитие микропобегов (рисунок 1). Побеги на наличие в питательной среде нистатина в концентрациях 0,5 и 100 мг/л реагировали положительно, коэффициент размножения составил 3,6; 2,7 соответственно (различие с контролем существенно, таблица 5). Антибиотик нистатин в концентрации 10 мг/л стимулировал развитие каллуса, микропобеги развивались умеренно-зелёного цвета.

Таким образом, проанализировав полученные данные серии проведённых опытов с антибиотиками цефотаксим, тетрациклин, нистатин выявили, что по влиянию антибиотиков на средовую и посадочную инфекцию и на рост и развитие растений, наилучшее влияние на микропобеги оказывает нистатин 200 мг/л: коэффициент размножения на среде с данным антибиотиком равен 4,3, в этой же концентрации нистатин обладает санирующим эффектом 60−75% для подвоев СК 2 и ММ 106.

Подбор эффективных и безопасных стерилизаторов для санации эксплантов подвоев яблони. Для стерилизации использованы ранее не применявшиеся в клональном микроразмножении подвоев яблони препараты фосфопаг, скор, эупарен, делан. В качестве контроля высажены не стерилизованные меристемы, а в качестве стандарта взят йодид ртути, широко применяемый в клональном микроразмножении стерилизатор, который относится к первому классу опасности (таблица 6).

Таблица 6 — Анализ эффективности стерилизующих препаратов при обработке эксплантов перед посадкой

Установлено, что максимальный выход стерильных эксплантов обеспечивает препарат фосфопаг 0,5 г/100 мл (65%, различие среднего значения по двум повторностям со стандартом существенно, таблица 6). Другие экспериментальные препараты, как видно из таблицы 6, оказались неэффективными стерилизаторами эксплантов подвоев яблони.

В качестве замены высокотоксичному, но наиболее известному препарату сулемы был также испытан малотоксичный для человека и эффективный стерилизатор гидропирит. Объектами для подбора эффективных стерилизаторов послужили экспланты подвоев яблони серии СК и ММ 106. Исследовали 15% водный раствор гидропирита (CO (NH₂)₂xH₂О₂) в различных экспозициях.

В опыте 3 варианта: обработка эксплантов водой (контроль); обработка эксплантов йодидом ртути (HgJ₂) 0,1% с экспозицией 3 минуты (стандарт); обработка эксплантов 15% раствором гидропирита (CO (NH₂)₂xH₂О₂) — время стерилизации 10, 20, 30 минут.

После поверхностной обработки эксплантов их поместили на санитарную питательную среду по Мурасиге и Скугу, состоящую из минеральных солей, витаминов, сахарозы, агара, без ростовых веществ.

В течение месяца проводились наблюдения за регенерацией микропобегов. Оценивалось проявление стерилизующей активности вещества, т. е. обеспечение максимального количества стерильных эксплантов, а также влияние препаратов на регенерацию эксплантов. Результаты исследования представлены в таблице 7.

Таблица 7 — Анализ эффективности стерилизующих веществ при предпосадочной поверхностной обработке эксплантов подвоев серии СК и ММ 106.

Анализ данных таблицы 7 показывает, что максимальный выход санированных здоровых эксплантов подвоев яблони (60%) обеспечивает стерилизация в водном растворе иодида ртути (HgJ2) 0,1%. Только 30%-ную степень оздоровления обеспечивает стерилизация в водном 15%-м растворе гидропирита с экспозицией в 30 минут (таблица 7). Дальнейшее уменьшение времени экспозиции ведёт к уменьшению выхода здоровых эксплантов до 10% при стерилизации в течение 20 минут, и полному отсутствию здоровых эксплантов при экспозиции 10 минут (таблица 7).

Важно отметить, что длительное нахождение эксплантов в стерилизующем растворе гидропирита (30 мин), необходимое для достижения максимального эффекта санации, неблагоприятно сказывается на жизнеспособности оздоровленных эксплантов при дальнейшем культивировании in vitro.

Таким образом, применение 15% раствора гидропирита для стерилизации эксплантов вегетативно-размножаемых подвоев нецелесообразно в силу низкого выхода санированного материала. По этой причине поиски эффективного стерилизатора продолжены.

Так в ходе исследований по подбору наиболее эффективного и безопасного стерилизующего средства для санации эксплантов подвоев яблони испытан бытовой препарат «Белизна» (действующее вещество — гипохлорит натрия), разбавленный водой в соотношении 1:1; 1:2 и 1:4. Время экспозиции 4 минуты. В качестве стандарта использовали 0,1% раствор йодида ртути (HgJ₂).

Результаты исследований изложены в таблице 8.

Анализ полученных данных показывает, что максимально сильнодействующим стерилизатором является бытовой препарат «Белизна» в разведении 1:1. Инфицированных эксплантов в этом варианте опыта не было. Однако, действие реагента на меристемы было довольно жестким. При этом, четко прослеживается реакция испытуемых образцов. Так наиболее толерантным к стерилизующему агенту был образец СК 4. В данном варианте отмечен самый высокий выход жизнеспособных эксплантов (80,7%) и наиболее низкий процент (19,3%) погибших. У образцов СК 2 и СК 3 выход живых меристем составил 64,2 и 57,2%, а погибших от токсичного действия стерилизатора 35,8 и 42,8%, соответственно (таблица 8).

Таблица 8 — Результативность стерилизации эксплантов при введении в культуру in vitro эксплантов подвоев яблони серии СК

Действие препарата «Белизна» в разведении 1:2 было более мягким. Выход живых эксплантов составил 77,6% у СК 2 (различие существенно) и 69,3% у СК 3. Значительно ниже было количество погибших эксплантов: СК 2 — 14,3 и СК 3 — 23,0%. У образца СК 4 эти показатели составили 79,6 и 13,6%. Однако, в варианте с разведением «Белизны» 1:2 отмечено наличие инфицированных эксплантов, составившее для образцов СК 2, СК 3, СК 4 — 8,4; 7,7 и 6,8%, соотвественно.

Самый низкий эффект стерилизации отмечен в варианте опыта с использованием препарата «Белизна» в разведении 1:4. Так, количество инфицированных эксплантов у образцов СК 2, СК 3, СК 4 составило 37,7; 36,2; 36,7; а выход жизнеспособных эксплантов 52,0; 51,3 и 54,0%, соответственно. В то же время действие препарата на растительную ткань здесь было наиболее мягким, так как количество погибших эксплантов было в пределах 9,3−12,4% (таблица 8).

В стандартном варианте с использованием 0,1% раствора йодида ртути также отмечен выпад эксплантов от токсичного действия препарата. Следует отметить, что в этом варианте опыта также прослеживается различная реакция сортообразцов на действие реагента. Так, у образца СК 3 отмечен наиболее высокий выход жизнеспособных меристем 84,3% и низкий процент (10,5) погибших. У образца СК 4 выход живых меристем несколько ниже 72,2%, а погибших 27,8%, наиболее чувствительным к стерилизатору был образец СК 2: количество погибших меристем здесь было самым высоким и составило 35,3% (таблица 8).

Таким образом, в ходе исследований в качестве альтернативы широко применяемому высокотоксичному стерилизатору сулема (первый класс опасности) были подобраны эффективные и безопасные препараты для санации эксплантов подвоев яблони от инфекции, такие как бытовой препарат «Белизна» (гипохлорит натрия) в разведении 1:2, малоопасное вещество четвёртого класса опасности (доля жизнеспособных эксплантов 75,5% от изначально высаженных), а также фосфопаг, препарат четвёртого класса опасности (доля жизнеспособных эксплантов 65% от изначально высаженных).

Оптимизация сроков введения в культуру in vitro подвоев яблони. Были проведены опыты, в ходе которых экспланты подвоев яблони СК 2, СК 3, СК 4, СК 7, ММ 106 вводили в культуру in vitro в разные месяцы с февраля по июль. Использовали среду МС с половинным содержанием минеральных солей, дополненную 6-БАП 0,4 мг/л. В течение месяца проводились наблюдения за регенерацией микропобегов. Оценивалась доля регенерировавших эксплантов к числу изначально высаженных. Результаты эксперимента приведены в таблице 9.

Таблица 9 — Доля регенерировавших эксплантов серии СК и ММ 106, введённых в культуру in vitro в разные месяцы к моменту первого пассажа, в %

Согласно данным таблицы 9, благоприятными сроками изоляции и культивирования меристем подвоев яблони оказались март-июнь с некоторым снижением в апреле. Доля регенерировавших эксплантов, высаженных in vitro в период март-июнь через месяц после введения в культуру составляет 47,7−67,6% (в среднем). По месяцам средний уровень регенерации эксплантов составил в марте — 59,7%, апреле — 47,7%, мае 67,6%, июне 61,4% (таблица 9). Отмечено, что сроки введения в культуру in vitro дифференцированы для генотипов подвоев. В частности, для СК 2 и СК 4 оптимальными являются фазы распускания почек (март), а для СК 2, СК 3, СК 7, ММ 106 — интенсивного роста побегов (май — июнь).

Снижение уровня регенерации эксплантов подвоев яблони в апреле объясняется тем, что на этот период приходится VIII-IX этап органогенеза. В этот период гинецей и андроцей цветка находятся на завершающей стадии формирования. Фенофаза розый бутон соответствует VIII этапу органогенеза. Согласно исследованиям Исаевой И. С., Бунцевича Л. Л., Чумакова С. С., на этом этапе интенсивность формирования всех органов цветка достигает максимума. Следовательно, формирование вегетативных органов побегов снижается, так как гормональный баланс сдвинут в сторону реализации генеративного потенциала [1, 5, 13]. Маточные растения подвоев яблони, с которых были изолированы экспланты, генетически предрасположены к реализации программ нормального органогенеза с соблюдением гормонального сдвига.

Таким образом, благоприятным сроком введения меристемы подвоев яблони в культуру in vitro являются фазы распускания почек (март) — для СК 2 и СК 4 и интенсивного роста побегов (май — июнь) — для СК 2, СК 3, СК 7, ММ 106.

Выводы. По влиянию на средовую и посадочную инфекцию и на рост и развитие растений, благоприятное влияние на микропобеги подвоев яблони оказывает антибиотик нистатин 200 мг/л: коэффициент размножения на среде с данным антибиотиком равен 4,3, в этой же концентрации нистатин обладает санирующим эффектом 60−75% для подвоев СК 2 и ММ 106. В ходе исследований стерилизаторов эксплантов подвоев яблони СК 2, СК 3, СК 4, СК 7, ММ 106 в качестве альтернативы широко применяемому высокотоксичному стерилизатору сулема (первый класс опасности) были подобраны эффективные и безопасные препараты для санации эксплантов от инфекции, такие как бытовой препарат «Белизна» (гипохлорит натрия) в разведении 1:2, малоопасное вещество четвёртого класса опасности (доля жизнеспособных эксплантов 75,5% от изначально высаженных), а также фосфопаг, препарат четвёртого класса опасности (доля жизнеспособных эксплантов 65% от изначально высаженных). Благоприятным сроком введения меристемы подвоев яблони в культуру in vitro являются фазы распускания почек (март) — для СК 2 и СК 4 и интенсивного роста побегов (май — июнь) — для СК 2, СК 3, СК 7, ММ 106. Использование приведённых усовершенствований на этапе введения эксплантов подвоев яблони в культуру in vitro позволит повысить выход оздоровленных микропобегов на 25%.

• 1. Бунцевич, Л. Л. Морфофизиологические особенности формирования урожайности яблони домашней (Malus domestica Borkh.) / Л. Л. Бунцевич. — Краснодар: ГНУ СКЗНИИСиВ Россельхозакадемии, 2012. -107 с.
• 2. Высоцкий, В. А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных растений: автореф. дис. … д-ра с.-х. наук: 06.01.07 / Высоцкий Валерий Александрович. — М., 1998. — 44 с.
• 3. Делан / Пестициды [Электронный ресурс]. — 2015. — Режим доступа: http://www.pesticidy.ru/pesticide/delan. html.
• 4. Джигадло, Е. Н. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами / под ред. Е. Н. Джигадло. — Орёл: ГНУ ВНИИСПК, 2005. — 50 с.
• 5. Исаева, И. С. Органогенез плодовых растений / И. С. Исаева. — М.: МГУ им. М. В. Ломоносова, 1977. — 33 с.
• 6. Кухарчик, Н. В. Научные и практические основы оздоровления от вирусов и размножения плодовых и ягодных культур in vitro: автореф. дис. … д-ра с.-х. наук: 06.01.05 / Кухарчик Наталья Валерьевна. — Жодино, 2006. — 40 с.
• 7. Нистатин / Справочник здоровья [Электронный ресурс]. — 2015. — Режим доступа: http://it-apharm.ru/nistatin.html.
• 8. Скор / Мир растений (энциклопедия ухода за растениями) [Электронный ресурс]. — 2015. — Режим доступа: http://www.floralworld.ru/fungicid/skor.html.
• 9. Терациклин / Википедия [Электронный ресурс]. — 2015. — Режим доступа: https://ru.wikipedia.org/wiki/Тетрациклин.html.
• 10. Фосфопаг / Дезреестр [Электронный ресурс]. — 2012. — Режим доступа: http://www.dezreestr.ru/pages/dezpgs/Phsphd.html.
• 11. Фосфопаг / Экосмарт [Электронный ресурс]. — 2012. — Режим доступа: http://www.biopag.ru/index.php?option=com_content&view=article&id=67&Itemid=176?.html
• 12. Цефотаксим / Википедия [Электронный ресурс]. — 2015. — Режим доступа: https://ru.wikipedia.org/wiki/Цефотаксим.html
• 13. Чумаков, С. С. Особенности органогенеза яблони и возможности его оптимизации [Электронный ресурс] / С. С. Чумаков, В. К. Бугаевский // Научный журнал КубГАУ. — 2012. — 83 (09). — Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2012/09/pdf/56.pdf Эупарен / Виноград [Электронный ресурс]. — 2015. — Режим доступа: http://vinograd.info/spravka/himikaty-i-ydobreniya/eyparen.html

References.

• 1. Buncevich, L.L. Morfofiziologicheskie osobennosti formirovanija urozhajnosti jabloni domashnej (Malus domestica Borkh.) / L.L. Buncevich. — Krasnodar: GNU SKZNIISiV Rossel’hozakademii, 2012. -107 s.
• 2. Vysockij, V.A. Biotehnologicheskie metody v sisteme proizvodstva ozdorovlennogo posadochnogo materiala i selekcii plodovyh i jagodnyh rastenij: avtoref. dis. … d-ra s.-h. nauk: 06.01.07 / Vysockij Valerij Aleksandrovich. — M., 1998. — 44 s.
• 3. Delan / Pesticidy [Jelektronnyj resurs]. — 2015. — Rezhim dostupa: http://www.pesticidy.ru/pesticide/delan. html.
• 4. Dzhigadlo, E.N. Metodicheskie rekomendacii po ispol’zovaniju biotehnologicheskih metodov v rabote s plodovymi, jagodnymi i dekorativnymi kul’turami / pod red. E.N. Dzhigadlo. — Orjol: GNU VNIISPK, 2005. — 50 s.
• 5. Isaeva, I.S. Organogenez plodovyh rastenij / I.S. Isaeva. — M.: MGU im. M.V. Lomonosova, 1977. — 33 s.
• 6. Kuharchik, N.V. Nauchnye i prakticheskie osnovy ozdorovlenija ot virusov i razmnozhenija plodovyh i jagodnyh kul’tur in vitro: avtoref. dis. … d-ra s.-h. nauk: 06.01.05 / Kuharchik Natal’ja Valer’evna. — Zhodino, 2006. — 40 s.
• 7. Nistatin / Spravochnik zdorov’ja [Jelektronnyj resurs]. — 2015. — Rezhim dostupa: http://it-apharm.ru/nistatin.html.
• 8. Skor / Mir rastenij (jenciklopedija uhoda za rastenijami) [Jelektronnyj resurs]. — 2015. — Rezhim dostupa: http://www.floralworld.ru/fungicid/skor.html.
• 9. Teraciklin / Vikipedija [Jelektronnyj resurs]. — 2015. — Rezhim dostupa: https://ru.wikipedia.org/wiki/Tetraciklin.html.
• 10. Fosfopag / Dezreestr [Jelektronnyj resurs]. — 2012. — Rezhim dostupa: http://www.dezreestr.ru/pages/dezpgs/Phsphd.html.
• 11. Fosfopag / Jekosmart [Jelektronnyj resurs]. — 2012. — Rezhim dostupa: http://www.biopag.ru/index.php?option=com_content&view=article&id=67&Itemid=176?.html
• 12. Cefotaksim / Vikipedija [Jelektronnyj resurs]. — 2015. — Rezhim dostupa: https://ru.wikipedia.org/wiki/Cefotaksim.html
• 13. Chumakov, S.S. Osobennosti organogeneza jabloni i vozmozhnosti ego optimizacii [Jelektronnyj resurs] / S.S. Chumakov, V.K. Bugaevskij // Nauchnyj zhurnal KubGAU. — 2012. — 83 (09). — Rezhim dostupa: http://ej.kubagro.ru/2012/09/pdf/56.pdf
• 14. Jeuparen / Vinograd [Jelektronnyj resurs]. — 2015. — Rezhim dostupa: http://vinograd.info/spravka/himikaty-i-ydobreniya/eyparen.html