Организация профилактических и дезинфекционных мероприятий в условиях лпу

Паровой метод стерилизации используется при обработке хирургического инструментария, белья, перевязочного и шовного материалов, шприцев с пометкой 200 °C, изделий из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т. д.), латекса, стекла, пластмасс, деталей приборов и аппаратов из металлов, устойчивых к коррозии.

Стерилизующим средством при воздушном методе стерилизации является сухой горячий воздух, температура которого составляет 160 и 180 °C. Данный способ стерилизации проводят в специальных воздушных стерилизаторах.

Воздушным методом осуществляют стерилизaцию хирургических, стоматологических, гинекологических инструментов, шприцев с пометкой 200 °C, инъекционных игл, изделий из резины, деталей приборов и аппаратов, из металлов, в т. ч. и не устойчивых к коррозии.

Все изделия после предстерилизационной очистки перед стерилизацией воздушным методом необходимо высушить в сушильном шкафу при температуре 85 °C.

В гласперленовых стерилизаторах, где в качестве стерилизующей среды используются стеклянные шарики, нагретые до 190−250°С, обрабатывают инструменты из металла простой конфигурации, которые широко применяются в стоматологии (зубные боры, алмазные головки, дрильборы и др.) [3].

Стерилизация инфракрасным светом используется для хирургических инструментов. Инфракрасный спектр не имеет специфического действия на микроорганизмы, последние погибают не от лучей, а от высокой температуры. Стерилизацию медицинских изделий инфракрасными лучами проводят в конвеерных печах или инфракрасных печах с глубоким вакуумом.

Метод радиационной стерилизации пригоден для обработки лекарственных препаратов, но в ограниченном объеме. Его можно отнести к наиболее изученным во всех аспектах методам стерилизации, не исключая и тепловой, особенно когда идет речь о безвредности облученной продукции. Радиационная стерилизация широко используется при изготовлении полимерных медицинских изделий и является одним из основных способов обеспечения их стерильности.

Радиационная стерилизация проводится в установках с кобальтом-60 и ускорителями электронов. В сравнении с массивными размерами установки с кобальтом-60 размеры ускорителя электронов небольшие. Пучок электронов направляется на ленту конвеера, на которой находятся предметы одинакового размера, например, упаковки с шовным материалом, шприцы и тому подобное. При стерилизации ионизирующим излучением используются радиоактивные источники на основе Co60 или Cs132.

Ультразвуковая стерилизационная обработка находит применение в стерилизации медицинских инструментов, но очень ограниченно — только для получения стерильных жидких систем: растворов, эмульсий, суспензий.

Среди эффективных методов стерилизации, основанных на новых физических принципах, главное место занимают плазменные методы стерилизации, где в роли стерилизующего агента выступают разные виды низкотемпературной плазмы. Она представляет собой частично ионизированный газ, температура ионного и нейтрального компонентов которого приближена к комнатным температурам. В качестве плазмообразующих используются газы О2, Н2, Аr, Не, Н202, СН2О, С2Н4О и их смеси [9].

2.

2.2 Стерилизация растворами химических средств

В связи с появлением изделий из термолабильных материалов, снабжённых оптическими и прочими устройствами, в медицинской практике начали широко применять стерилизацию с помощью растворов химических средств. Преимущества метода стерилизации растворами включают щадящие температурные режимы обработки термолабильных изделий и возможность их обеззараживания на местах [9].

Стерилизация изделий растворами химических средств является вспомогательным методом, поскольку изделия нельзя стерилизовать в упаковке, а по окончании стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (0,9% раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению простерилизованных изделий микроорганизмами. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими.

К наиболее широко используемым в медицинской практике химическим методам стерилизации относят газовый метод (газ состоит из окиси этилена и бромистого метила) и погружение в растворы химических стерилизующих агентов. После химической стерилизации в случае газовой обработки изделия необходимо дегазировать и тщательно отмыть.

Газовым методом стерилизуют изделия из различных материалов. Как стерилизующие агенты применяются озон, окись этилена, формальдегид, смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила). Перед стерилизацией газовым методом изделия после предстерилизационной очистки вытирают чистой салфеткой либо подсушивают при комнатной температуре до исчезновения видимой влаги. Стерилизацию проводят при температуре 18−80 °С (в зависимости от типа стерилизатора и вида стерилизуемого изделия) в соответствии с режимами, регламентированными соответствующими методическими документами [3].

ГЛАВА 3 КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА И ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОВЕДЕНИЯ ДЕЗИНФЕКЦИОННЫХ МЕРОПРИЯТИЙ В ЛПУ

Контроль за дезинфекционными и стерилизационными мероприятиями в ЛПУ проводят специалисты СЭС и дезинфекционных станций одновременно с контролем санитарно-противоэпидемического режима. Эффективность проведения дезинфекции и стерилизации осуществляют визуально, бактериологическим и химическим методами, а также с помощью специальных приборов и оборудования [9].

Контроль качества и эффективности дезинфекции и стерилизации в стационарах (диспансерах) инфекционного и хирургического профиля, стоматологических, детских, родовспомогательных учреждениях и подразделениях, станциях скорой медицинской помощи, станциях переливания крови проводится не реже 1 раза в квартал; в поликлиниках, клинических лабораториях, стационарах терапевтического профиля — не реже 2 раз в год; за дезинфекционными камерными блоками, дезинфекционными камерами, централизованными стерилизационными, складами и помещениями для централизованного приготовления растворов — не реже 1 раза в квартал [5].

Особое внимание уделяется правильности выбора средств и методов обеззараживания, эффективности работы моющей, дезинфекционной и стерилизационной аппаратуры, своевременности и объёму проведённых мероприятий, правильности условий хранения средств дезинфекции и стерилизации, их приготовления и использования, оснащения аппаратурой, изделиями медицинского назначения и т. д.

К главным объектам исследований при проведении бактериологического контроля санитарного состояния помещений централизованных стерилизационных относится воздух и поверхности различных предметов (рабочих столов, оборудования, инвентаря, аппаратуры) [6].

Основными показатели качества проведенной дезинфекции являются: высев непатогенной микрофлоры с объектов контроля не более чем в 2% отобранных бактериологических смывов; определение заниженных концентраций дезинфицирующих растворов не более чем в 5% отобранных проб; выявление неудовлетворительных экспресс-проб на остаточное количество дезинфицирующих веществ не более чем в 2% поставленных проб каждого вида; соответствие тестового бактериологического контроля режиму камерной дезинфекции [4].

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают по отсутствию следующих положительных проб: на наличие крови — постановкой азопирамовой или амидопириновой пробы; на наличие остаточного количества щелочных компонентов моющих средств — постановкой фенолфталеиновой пробы.

Срок хранения простерилизованных медицинских изделий составляет: в пакетах из полиэтиленовой плёнки — 5 лет; в биксах без фильтров — 3 сут; в двойной бязи — 3 сут; в биксах с бактериальными фильтрами — 20 сут; в крафт-пакетах и пакетах из пергамента — 20 дней; в комбинированных (ламинат + бумага) прозрачных пакетах, закрытых термосшиванием, — 1 год; в защитном пакете-футляре из плёнки, заполненном изделиями, простерилизованными в упаковке «Стерикинг», закрытом липкой лентой, — 5 лет [5].

Эффективность обеззараживания, а, следовательно, и эпидемиологическая безопасность медицинских инструментов и устройств, при их последующем использовании находится в зависимости от целого ряда факторов. К их числу относятся: наличие и степень органического (белкового) загрязнения изделий; количество микроорганизмов на изделии; виды загрязняющих изделие микробов и уровни их устойчивости к дезинфектантам; виды микробоцидных (дезинфицирующих) агентов; концентрации таких агентов; длительность дезинфекционной экспозиции; температурные условия обработки изделия; рН микробоцидной жидкости.

Повышение эффективности дезинфекционных и стерилизационных мероприятий предусматривает совершенствование средств и методов дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации, разработку и внедрение новых, более эффективных и безопасных технологий, организационных форм осуществления дезинфекционных и стерилизационных мероприятий с учетом особенностей функционирования организаций здравоохранения различного профиля и специфических свойств возбудителей [14].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Дезинфекционные мероприятия в ЛПУ (больницах, поликлиниках, диспансерах и т. д.) проводятся для предупреждения распространения ВБИ среди персонала и пациентов.

В ЛПУ ответственность за организацию и проведение дезинфекционных мероприятий возлагается на администрацию учреждения, которая руководствуется действующими инструктивно-методическими документами и приказами. С целью снижения рисков заражения ВБИ пациентов и персонала в ЛПУ необходимо проводить целенаправленную профилактическую и очаговую текущую и заключительную дезинфекцию.

При организации и проведении дезинфекционных мероприятий в ЛПУ необходимо учитывать специфику стационара и знать объекты, наиболее часто и массивно колонизируемые возбудителями ВБИ, их устойчивость к лечебным и дезинфицирующим средствам. Для определения сроков и кратности обработки различных объектов целесообразно использовать данные бактериологического контроля за микробной обсеменённостью объектов внешней среды санитарно-показательными микроорганизмами, определить интенсивность их колонизации микроорганизмами после проведённой дезинфекции, учитывая функциональное назначение помещений в отделении, больнице и др. Наиболее часто и массивно контаминироваными условно-патогенной и патогенной микрофлорой являются поверхности санитарно-технического оборудования, холодильников, мебели, постельное и нательное бельё, детские весы, перевязочный материал, медицинский инструментарий и изделия медицинского назначения (зонды, катетеры, дренажные трубки, иглы, системы переливания крови и т. д.), а также предметы ухода за больными, кожа рук медицинского персонала и больных. Все эти медицинские объекты подлежат обеззараживанию с применением физических и химических методов дезинфекции. Часто проведение дезинфекционных мероприятий в ЛПУ осложняется необходимостью их выполнения в присутствии больных и персонала. Поэтому для этих целей стараются применять дезинфицирующие средства без сильного, неприятного запаха в активных концентрациях, не вызывающих неприятных побочных действий.

При проведении текущей дезинфекции в ЛПУ в присутствии больных запрещено обеззараживание поверхностей орошением растворами дезинфицирующих средств, а также применение средств, проявляющих раздражающее или сенсибилизирующее действие при протирании.

Заключительную дезинфекцию следует проводить в отсутствие больных; при этом персонал, выполняющий обработку, должен использовать средства личной защиты (респиратор, перчатки, фартук). Приготовление растворов дезинфицирующих средств, их хранение, обеззараживание объектов способом погружения следует проводить в специально выделенном и оборудованном помещении.

Для дезинфекции в ЛПУ применяют средства, содержащие в качестве действующих веществ активный кислород, хлорсодержащие соединения, поверхностно-активные вещества, реже спирты, а также многокомпонентные дезинфицирующие средства, содержащие разные дезинфицирующие вещества и функциональные добавки (антикоррозионные, дезодорирующие, моющие и др.).

Стерилизацию в ЛПУ осуществляют после проведения дезинфекционных мероприятий и предстерилизационной очистки с помощью физических или с помощью химических методов. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий: материала, необходимости длительного сохранения стерильности, оперативности использования и др. Обязательным после проведения всех дезинфекционных мероприятий является контроль за их эффективностью, который осуществляют визуально, бактериологическим и химическим методами.

Агкацева С. А. Инфекционный контроль и безопасность в ЛПУ., Ч.1 / C. А. Агкацева. — М.: «АНМИ», 2001. — 533 с.

Акимкин В. Г. Основные направления дезинфекционных мероприятий в лечебно-профилактических учреждениях / В. Г. Акимкин // Дезинфекционное дело. -

2003. — № 4. — С.

39−43.

Инфекционные болезни и эпидемиология: Учебник / В. И. Покровский, С. Г. Пак, Н.

И. Брико, Б. К. Данилкин. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. — 816 с.

Кулешова Л. И. Инфекционная безопасность в лечебно-профилактических учреждениях / Л. И. Кулешова, Е. В. Пустоветова. -

Ростов н/Д: «Феникс», 2006. — 317 с.

Лаптева Е. С. Инфекционный контроль в ЛПО / Е. С.

Лаптева, М. Р. Цуцунава, Н. В. Алешева. — СПб.: Издательство СЗГМУ им. И.

И. Мечникова, 2013 — 52 с.

Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации предметов медицинского назначения, утвержденные МЗ России 30 декабря 1998 г. № МУ — 287−113.

Особенности проведения дезинфекционных мероприятий в лечебно-профилактических организациях (обзор) // А. А. Адарченко, Е. И. Гудкова, Г. А. Скороход, И. Н.

Слабко // Военная медицина. — 2008. — № 4. — С. 31−36.

ОСТ 42−21−2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы» (утв. 7.

06.1985).

Сан

ПиН 2.

1.3. 2630−10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность» (утв. постановлением Главного государственного санитарного врача РФот 8 мая 2010 г. № 58).

Сёмина Н. А. Значение дезинфекции и стерилизации в профилактике внутрибольничных инфекций / Н. А.

Семина, Е. П. Ковалёва, В. В. Галкин // Дезинфекционное дело. -

2002. — № 3. -

С. 29−31.

Современный подход к выбору дезинфицирующих средств в системе профилактики внутрибольничных инфекций / И. Ф. Веткина, Л. В.

Комаринская, И. Ю. Ильин и др. //

ФАРМиндекс-Практик. — 2005. — вып.

7. — С. 13−20.

Султанова Р. С. Инфекционный контроль. Инфекционная безопасность / Р. С. Султанова. — Дербент: Дербентское медицинское училище, 2011.- 80 с.

Тайц Б. М. Инфекционный контроль в лечебно-профилактических учреждениях / Б. М. Тайц, Л.

П. Зуева. — СПб.: СПбГМА им. Мечникова, 1998.- 295 с.

Фёдорова Л. С. Современные направления совершенствования дезинфицирующих средств / Л. С. Федорова // Дезинфекционное дело. — 2003. — №

4. — С. 41−43.

Шандала М. Г. Перспективы и проблемы современной дезинфектологии / М. Г. Шандала // Дезинфекционное дело. -

2002. — № 3. -

С. 19−26.

Шкарин В. В. Дезинфектология. Руководство для студентов медицинских вузов и врачей / В. В. Шкарин, М.

Ш. Шафеев // Нижний Новгород: Нижегородская гос. мед. акад., 2003. — 368 с.

Эффективность и безопасность химических средств для дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации / В. М. Бахир, В. И.

Вторенко, Б. И. Леонов и др. // Дезинфекционное дело.

— 2003. — № 1.

— С. 4−12.