Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Сообщества цианобактерий в биопленках и планктоне литоральной зоны озера Байкал

Диссертация: Сообщества цианобактерий в биопленках и планктоне литоральной зоны озера Байкал
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Максимальное видовое разнообразие было характерно для сообщества мрамора: выявлено 35 различных филотипов, при этом видовое богатство, оцененное с помощью непараметрических коэффициентов АСЕ и СЬао1, было максимальным. Высокое видовое разнообразие обусловлено химическими особенностями мрамора: высоким содержанием кальция в его составе и минимальными концентрациями соединений тяжелых металлов… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Общая характеристика цианобактерий
    • 1. 2. Различные подходы к систематике цианобактерий
    • 1. 3. Планктонные цианобактерии озера Байкал
    • 1. 4. Общая характеристика биопленок
    • 1. 5. Применение молекулярных методов для изучения биоразнообразия цианобактерий
    • 1. 6. Метагеномный анализ
    • 1. 7. Процессы азотфиксации в водоемах, применение молекулярных методов для выявления азотфиксирующих видов
    • 1. 8. Токсичные цианобактерии

Сообщества цианобактерий в биопленках и планктоне литоральной зоны озера Байкал (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Цианобактерии — фотоавтотрофные прокариоты, населяющие различные экологические ниши: от арктических озер до термальных источников. В водных экосистемах они создают первичную продукцию и являются существенным ресурсом в пищевых цепях, входя в состав как планктонных, так и бентосных сообществ. Важная экологическая роль цианобактерий обуславливается их уникальной способностью к фиксации молекулярного азота атмосферы. В результате биологической азотфиксации до 60% атмосферного азота может связываться и выделяться в воду в виде аммонийных солей [26, 189].

Озеро Байкал — древнейшее и самое глубокое пресноводное озеро в мире. Цианобактерии в Байкале играют значительную роль, их вклад в первичную продукцию в летний период достигает 60−90% [12, 4]. Изучение видового состава и динамики нанопланктонных цианобактерий с помощью световой микроскопии имеет многолетнюю историю [39, 5]. Недавно комплексом методов проведено исследование пикопланктонных цианобактерий [47, 35, 64]. Зона литорали занимает около 14% от общей площади Байкала, однако процессы, протекающие в прибрежье, играют важную роль и оказывают влияние на биоту всего озера [23, 48]. Цианобактерии оз. Байкал, входящие в состав мейои макрофитобентоса (колонии размером 0,5 мм и более), изучены в работах Л. Ижболдиной [20, 19]. Однако цианобактерии, формирующие микроскопические колонии, не были охвачены данными исследованиями.

В последнее десятилетие такое экологическое явление как «цветение» водоемов, обусловленное массовым развитием цианобактерий, стало объектом пристального изучения. Во время «цветения» не только снижается качество воды, но и нередко синтезируются цианотоксины, которые представляют угрозу для жизни и здоровья человека и животных [88]. В связи с усиливающейся антропогенной нагрузкой в туристскорекреационных зонах оз. Байкал возникла необходимость оценить потенциальную опасность развития токсичных «цветений» в регионе.

В настоящее время для изучения биоразнообразия и особенностей функционирования сообществ выработан новый перспективный подходметагеномный анализ на основании данных пиросеквенирования. Во многих странах мира активно проводятся широкомасштабные метагеномные исследования микроорганизмов различных биотопов [106, 116, 89, 171, 252], в России это направление только начинает развиваться.

Цель и задачи. Целью работы было изучить состав, генетическое разнообразие и структуру сообществ цианобактерий в планктоне и биопленках, формирующихся на различных субстратах в литоральной зоне оз. Байкал, а также определить их способность к азотфиксации и токсичность.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Определить таксономический состав и роль цианобактерий в сообществах биопленок, формирующихся на разных субстратах в литоральной зоне оз. Байкал, используя методы световой и электронной микроскопии.

2. Изучить генетическое разнообразие и провести сравнительный анализ сообществ цианобактерий из биопленок и планктона на основе последовательностей гена 16S рРНК, полученных различными методами: пиросеквенированием и секвенированием по Сэнгеру.

3. Выявить азотфиксирующие виды цианобактерий в сообществах биопленок и планктона на основе последовательностей гена нитрогеназы nifii.

4. Выявить токсиногенные виды цианобактерий в биопленках и планктоне с помощью набора праймеров к домену аминотрансферазы (AMT) тсуЕ-гена и определить методом иммуноферментного анализа (ИФА) содержание в воде микроцистинов — основных токсинов цианобактерий.

Научная новизна работы. Впервые дана комплексная характеристика сообществ цианобактерий из биопленок литоральной зоны оз. Байкал методами микроскопии, метагеномного анализа, клонирования и секвенирования. Показана структурообразующая роль цианобактерий в составе биопленок. Обнаружено, что видовой состав сообществ цианобактерий в биопленках зависит от типа субстрата. Дана оценка генетического разнообразия цианобактерий на основании анализа последовательностей гена 16S рРНК как в биопленках, так и в планктоне. Впервые определены генотипы азотфиксирующих цианобактерий. Описано 12 новых для Байкала видов цианобактерий, проведена ревизия таксономического состава планктонных и бентосных цианобактерий оз. Байкал на основании современного подхода в систематике и последовательностей гена 16S рРНК. Выявлены потенциально токсичные цианобактерии в оз. Байкал и водохранилищах Иркутской области с использованием генетических маркеров. Впервые методом ИФА установлено наличие микроцистинов в Усть-Илимском водохранилище.

Степень обоснованности и достоверности полученных научных результатов подтверждена использованием в качестве теоретической и методической базы трудов отечественных и зарубежных исследователей, а также воспроизводимостью полученных данных. В исследовании использованы современные методы и подходы с отработанными методиками: электронная микроскопия, выделение ДНК, амплификация со специфичными праймерами, лигирование, трансформация, секвенирование и метагеномный анализ. Полученные нуклеотидные последовательности (157 шт.) зарегистрированы в международной БД GenBank. Анализ последовательностей выполнен с помощью онлайн-серверов и стандартных пакетов программ для работы с последовательностями: BLAST, RDP, Mothur версия 1.23.1, Mega версия 5.05, MrBayes версия 3.1.2. Полученные в работе данные корректно соотносятся с результатами других авторов.

Теоретическая и практическая значимость полученных результатов. Результаты диссертационной работы расширяют представления о составе сообществ цианобактерий оз. Байкал. Методом пиросеквенирования получено более 30 тыс. нуклеотидных последовательностей. Созданная база данных имеет практическое значение для обнаружения и выделения организмов, обладающих потенциально новыми свойствами для использования в биотехнологии. Полученные и внесенные в мировую базу данных ОепВапк последовательности генов цианобактерий могут быть использованы при разработке группи видоспецифичных зондов для гибридизации. Разработан и апробирован метод детекции генов синтеза микроцистинов. С помощью выбранного генетического маркера можно определять потенциальную токсичность у широкого ряда цианобактерий. Апробирован метод выявления и определения концентрации микроцистинов в воде с помощью ИФА. Используемый комплекс методов может быть рекомендован для проведения мониторинга водоемов, водоохранных мероприятий и оценки качества питьевой воды. Основные положения, выносимые на защиту:

1. Сообщества цианобактерий в биопленках и планктоне оз. Байкал характеризуются высоким таксономическим и генетическим разнообразием. В составе биопленок цианобактерии отвечают за формирование их структуры.

2. В составе как бентосных, так и планктонных сообществ оз. Байкал развиваются цианобактерии, способные к азотфиксации.

3. Генетическая идентификация потенциально токсичных видов на основе анализа последовательностей маркерных генов синтеза микроцистинов оптимальна для экспресс-мониторинга олиготрофных водоемов. При наличии токсиногенных цианобактерий целесообразно использование иммуноферментного анализа для определения концентрации микроцистинов в пробах воды.

Реализация и внедрение результатов исследования. Теоретические положения и результаты исследования использованы при подготовке научных отчетов по базовому бюджетному проекту ЛИН СО РАН VI.51.L9. «Особенности формирования и жизненная стратегия микробного сообщества и вирусов в биопленках в оз. Байкал" — а также грантам РФФИ 05−04−97 222-рбайкала, 09−04−90 420 Укрфа, 10−04−1 613-а и 11−04−92 220 Монга.

Личный вклад автора. Диссертационная работа является результатом исследований автора, выполненных согласно планам научно-исследовательских работ в отделе микробиологии ЛИН СО РАН в рамках базовых проектов. Фактические данные получены автором при его непосредственном участии в экспедиционных и лабораторных работах, включая анализ и обобщение полученных результатов. Работа по определению содержания микроцистинов выполнена на базе Сахалинского НИИ рыбного хозяйства и океанографии (г. Южно-Сахалинск).

Апробация работы. Результаты диссертационной работы представлены и обсуждены на всероссийской научной конференции «Биоразнообразие экосистем внутренней Азии» (Улан-Удэ, 2006), международном научном семинаре «Новые технологии в интегративной биологии и медицине» (Таиланд, 2006), молодежной научно-методической конференции «Проблемы молекулярной и клеточной биологии» (Томск, 2007), международной молодежной конференции «Экология 2007» (Архангельск, 2007), международной научно-практической конференции «Современные проблемы водохранилищ и их водосборов» (Пермь, 2007), «Ежегодных научно-теоретических конференциях аспирантов и студентов» (Иркутск, 2006, 2007), международном симпозиуме «Экология» (Болгария, 2007), V конференции молодых ученых СО РАН (Новосибирск, 2007), II и III байкальских микробиологических симпозиумах (Иркутск, 2007, 2011), III и IV международных научных конференциях «Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды» (Белоруссия, 2007, 2011), III и IV международных конференциях молодых ученых (Украина, 2007, 2011), съезде микробиологического общества Великобритании (Великобритания, 2008), X съезде гидробиологического общества РАН (Владивосток, 2009), V международном симпозиуме по древним озерам (Македония, 2009), международной конференции.

Проблемы экологии" (Иркутск, 2010), международной конференции «Экология и геохимическая деятельность микроорганизмов экстремальных местообитаний» (Улан-Удэ — Улан-Батор, 2011), европейском конгрессе микробиологов «FEMS, 2011» (Швейцария, 2011).

Публикации. По результатам исследования опубликовано 28 научных работ, из них 6 — статьи в рецензируемых изданиях, рекомендованных действующим списком ВАК, 2 — статьи в сборниках, 1 — методическое пособие, 19 — тезисы конференций.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, 6 глав, заключения, выводов, списка литературы и приложений. Работа изложена на 155 страницах, содержит И таблиц и 28 рисунков.

Список литературы

включает 278 источников, из которых 50 на русском языке и 228 на иностранных языках.

117 ВЫВОДЫ.

1. В составе цианобактериальных сообществ биопленок литоральной зоны озера Байкал по данным микроскопии определено 16 видов цианобактерий, принадлежащих к 12 родам, 3 порядкам. На мраморе обнаружено 11 видов (9 родов, 3 порядка), на граните 6 видов (5 родов, 3 порядка), на амфиболите 5 видов (4 рода, 3 порядка), на нержавеющей стали 6 видов (5 родов, 3 порядка), на естественном субстрате (контроль) 12 видов (10 родов, 3 порядка). На основе анализа видового состава, морфологии, ультраструктуры клеток и строения биопленок показано, что сообщества цианобактерий в обрастаниях выполняют фототрофную, азотфиксирующую, структурообразующую, адгезивную и защитную функции.

2. В биопленках каменистых субстратов озера Байкал доминируют цианобактерии порядков КоБ1х>са1е8 и ОБсШаЬпакБ, которые образуют два комплекса видов: «ривулариевый», представленный колониями Шш1апа ги/еБсет с видами-спутниками ЬерЫущЪуа Нуи1агшгит и БсЫгоЛпх гШ1апагит и «толипотриксовый» — колонии То1уро1кпх НтЪШа с видом-спутником ЬегЫеМа ергркуНса. «Ривулариевый» комплекс развивается на мраморе, граните, амфиболите и плагиограните, «толипотриксовый» — на мраморе и плагиограните. В обрастаниях искусственного субстрата доминируют цианобактерии порядков СЬгоососса1ез и ОБсШаШпакв, представленные видами Скатае81ркоп /шсш, СИ. subglobosus и Heteroleibleinia ршШа.

3. Фила СуапоЬасЛепа, наряду с РгогеоЬасгепа и ВасгегснёйеБ доминирует в составе микробных сообществ биопленок озера Байкал по данным метагеномного анализа. Доля цианобактерий варьирует в зависимости от типа субстрата: цианобактерии преобладают на мраморе и нержавеющей стали (46% и 41%, соответственно) и являются третьей филой на контрольном субстрате (22%), граните (18%) и амфиболите (8%).

Наибольшее видовое разнообразие (по количеству филотипов) определено на мраморе и искусственном субстрате, наименьшее — на граните и контрольном субстрате. В придонной воде, где преобладают Bacteroidetes, Actinobacteria и Proteobacteria, Cyanobacteria является минорной филой.

3%).

4. Сообщества нанопланктонных цианобактерий в прибрежных биотопах озера Байкал в летний период характеризуются значительным генетическим разнообразием с доминированием представителей порядка Nostocales (рода Anabaena, Aphanizomenon, Dolichospermum, Nostoc, Trichormus).

5. Показано генетическое разнообразие азотфиксирующих цианобактерий в сообществах биопленок и планктона литорали озера Байкал. В биопленках азотфиксирующие цианобактерии представлены родами Anabaena, Calothrix, Nostoc, Rivularia и Tolypothrix, в планктоне — Anabaena, Aphanizomenon, Dolichospermum, Nostoc и Trichormus. Выявлен новый для Байкала азотфиксирующий род Trichormus, представленный видом Trichormus variabilis. Описана его морфология и определены последовательности фрагментов генов 16S рРНК и nifН девяти штаммов.

6. В Малом Море и Баргузинском заливе, Усть-Илимском и Братском водохранилищах выявлены цианобактерии родов Anabaena и Microcystis, содержащие гены, кодирующие синтез микроцистинов. В биопленках токсиногенные виды отсутствуют. Иммуноферментный анализ планктонных проб в исследуемый период не выявил микроцистины в озере Байкал, в Усть-Илимском водохранилище концентрация микроцистинов составила 0,25 ± 0,02 мкг/л, что ниже порога, установленного ВОЗ для питьевой воды.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В работе проведено исследование видового состава, структуры и генетического разнообразия сообществ цианобактерий в биопленках основных пород дна, придонной воде и планктоне литоральной зоны оз. Байкал. Состав микробных сообществ биопленок и придонной воды изучен с помощью метагеномного анализа, определена доля цианобактерий в каждом сообществе, идентифицированы основные филотипы. Проведен сравнительный анализ видового состава цианобактерий на различных субстратах и в придонной воде, установлены доминирующие комплексы видов цианобактерий в биопленках. Структура планктонных сообществ определена методом создания библиотеки клонов. Описано 12 новых для оз. Байкал видов цианобактерий. Показана необходимость использования комплексного подхода для изучения таксономического разнообразия цианобактерий. Генетическое разнообразие цианобактерий изучено с помощью маркерных генов 16S рРНК, nif Н и AMT домена гена тсуЕ.

В составе сообществ биопленок оз. Байкал в различных соотношениях доминировали три бактериальные филы: Cyanobacteria, Proteobacteria и Bacteroidetes. Фила Cyanobacteria являлась самой многочисленной на мраморе и нержавеющей стали, что может быть связано с физическими свойствами данных субстратов. Цианобактерии в обрастаниях каменистых субстратов были в основном представлены видами порядков Nostocales и Oscillatoriales. На мраморе доля Nostocales составляла 80,8%, Oscillatoriales -18,0%, на граните — 51,1% и 43,4%, на амфиболите 37,4% и 54,9%, на контрольном субстрате 32,6% и 66,4%, соответственно.

Данные микроскопии и метагеномного анализа хорошо согласуются и выявляют одни и те же виды-доминанты. В порядке Nostocales на всех каменистых субстратах доминировал вид Rivularia rufescens, на мраморе и контрольном субстрате кодоминантом являлся Tolypothrix limbata, в порядке Oscillatoriales на мраморе и контрольном субстрате доминировала.

РхеийапаЪаепа эр., на амфиболите и граните — представители неидентифицированных филотипов.

Максимальное видовое разнообразие было характерно для сообщества мрамора: выявлено 35 различных филотипов, при этом видовое богатство, оцененное с помощью непараметрических коэффициентов АСЕ и СЬао1, было максимальным. Высокое видовое разнообразие обусловлено химическими особенностями мрамора: высоким содержанием кальция в его составе и минимальными концентрациями соединений тяжелых металлов, способных ингибировать рост цианобактерий. Сообщества гранита и амфиболита были менее богаты (21 и 28 филотипов, соответственно). Ингибирование роста цианобактерий на этих породах обусловлено более высоким по сравнению с мрамором содержанием соединений тяжелых металлов и низкой пористостью. Для сообщества цианобактерий, развивавшегося на контрольном субстрате, характерно минимальное видовое разнообразие (20 филотипов), но большая равномерность распределения видов. Сообщество контрольного субстрата являлось зрелым и сбалансированным по видовому и функциональному составу.

В отличие от каменистых субстратов на искусственном субстрате доминировали порядки Ошюсоссакв (54,1%) и ОвсШаШп^ев (42,7%). Цианобактерий родов Скатаез’гркоп и НегегоЫЫеЫа имеют малые размеры клеток, слизистые чехлы и псевдовлагалища, что позволило им прикрепится к гладкому субстрату. На стальной пластине выявлено 30 филотипов цианобактерий.

Показано, что цианобактерии определяли архитектуру биопленок в оз. Байкал: формировали каркас, внутри которого развивались гетеротрофные бактерии и диатомовые водоросли. Слизь, вырабатываемая цианобактериями, составляла основу биопленочного матрикса и выполняла структурообразующую, адгезивную, защитную и коммуникативную функции. Наличие в составе биопленок азотфиксирующих цианобактерий могло быть источником азота для других групп бактерий в условиях недостатка этого биогенного элемента.

В придонной воде, в отличие от биопленок, цианобактерии не являлись доминирующей филой и были представлены в основном порядком.

Chroococcales (80,5%).

В летний период в планктоне прибрежных участков оз. Байкал выявлено доминирование порядка Nostocales, представленного родами Aphanizomenon, Dolichospermum и Trichormus. Впервые описан новый для оз. Байкал вид Trichormus variabilis, изучены его морфологические особенности и генетическое разнообразие культивируемых штаммов на основании анализа последовательностей генов 16S рРНК и nif Н.

Изучено разнообразие генотипов азотфиксирующих цианобактерий в биопленках и планктоне оз. Байкал. Показано, что в планктоне азотфиксирующие цианобактерии представлены родами Anabaena, Aphanizomenon, Nostoc и Trichormus. Эти виды содержат газовые вакуоли, прибрежные хорошо прогреваемые районы являются оптимальными для их развития, а способность к азотфиксации дает конкурентное преимущество в период недостатка азота. В биопленках комплексом методов выявлены следующие азотфиксирующие рода: Anabaena, Calothrix, Nostoc, Rivularia и Tolypothrix.

Проведен поиск токсичных видов цианобактерий в оз. Байкал и водохранилищах Иркутской области, а так же тест на наличие токсинов в данных водоемах. В биопленках токсичные цианобактерии не обнаружены. В планктоне оз. Байкал, Братского и Усть-Илимского водохранилищ развиваются цианобактерии Anabaena sp. и Microcystis sp., содержащие гены синтеза микроцистинов. В оз. Байкал в исследуемый период микроцистины не обнаружены. В Усть-Илимском водохранилище летом 2010 г. концентрация микроцистинов в воде составила 0,25 ± 0,02 мкг/л, что не превышает ПДК, установленную ВОЗ. Показано, что токсиногенные цианобактерии развиваются в эвтрофированных участках исследуемых водоемов, испытывающих повышенную антропогенную нагрузку.

Таким образом, выявлено высокое видовое и генетическое разнообразие в сообществах цианобактерий в составе биопленок и планктона литоральной зоны оз. Байкал. В планктоне цианобактерии выполняют функции выработки первичной продукции и фиксации азота, в биопленках помимо этого — структурообразующую, адгезивную, защитную и коммуникативную функции.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Анализ цианобактерий озера Байкал и Усть-Илимского водохранилища наналичие гена синтеза микроцистина / И. В. Тихонова и др. // Доклады академии наук. 2006. — Т. 409. — № 3. — С. 1−3.
  2. Атлас-определитель пелагобионтов Байкала / O.A. Тимошкин и др. -Новосибирск: Наука, 1995. -693 с.
  3. О.И. Автотрофный пикопланктон озера Байкал / О. И. Белых, Е. И. Заика, Е. В. Березиков // Сибирский экологический журнал. 1999. -№ 6.-С. 631−637.
  4. H.A. Продукция фитопланктона Южного Байкала / H.A. Бондаренко, Н. Е. Гусельникова // Известия СО АН СССР. Серия биологические науки. 1989. — Т. 1. — С. 77−80.
  5. Видовое разнообразие глубоководных микроорганизмов озера Байкал, выявленное по последовательностям 16S рРНК / Н. Л. Белькова и др. // Доклады РАН. 1996. — Т. 348. — № 5. — С. 692−695.
  6. H.A. Биопленки терапевтическая мишень при хроническихинфекциях / H.A. Вознесенский // Атмосфера. 2008. — № 3. — С. 43−44
  7. С.С. Современное состояние и прогноз формирования ангарских водохранилищ / С. С. Воробьева // Прогнозирование экологических процессов. Новосибирск: Наука, 1986. — С. 159−164.
  8. С.С. Фитопланктон водоемов Ангары / С. С. Воробьева -Новосибирск: Наука, 1995. 126 с.
  9. К.К. Значение аллохтонного органического вещества в озере Байкал / К. К. Вотинцев, Г. И. Поповская // Природа Байкала. Л.: Изд-во Геогр. о-ва СССР, 1974.-С. 169−178.
  10. К.К. Круговорот органического вещества в озере Байкал / К. К. Вотинцев, А. И. Мещерякова, Г. И. Поповская Новосибирск: Наука, 1975.- 189 с.
  11. K.K. О значении ультрананопланктонных водорослей в создании первичной продукции Байкала в летний период / К. К. Вотинцев, А. И. Мещерякова, Г. И. Поповская // Гидробиологический журнал. 1972. — Т. 8. — № 3. — С. 21−27.
  12. Выявление потенциально токсичных цианобактерий в озере Байкал и водохранилищах Иркутской области с помощью полимеразной цепной реакции / И. В. Тихонова и др. // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2006. -№ 2.-С. 202−205.
  13. М.М. Определитель пресноводных водорослей СССР / М. М. Голлербах, Е. К. Косинская, В. И. Полянский // Определитель пресноводных водорослей СССР. Т. 2. — М.: Советская наука, 1953. -С. 652.
  14. .В. Ультраструктура сине-зеленых водорослей / Б.В. Громов- Ленинград: Наука, 1976. 89 с.
  15. А. А. Синезеленые водоросли СССР. Специальная часть II. Вып. 2 / A.A. Еленкин Т. 2. — М., 1949. — С. 985 -1908.
  16. Г. А. Развитие микробных сообществ в истории Земли / Г. А. Заварзин // Проблемы доантропогенной эволюции биосферы.- 1993.-С. 212−222.
  17. Г. А. Смена парадигмы в биологии / Г. А. Заварзин // Вестник РАН. 1995. — Т. 65. — С. 8−17.
  18. Л. А. Атлас и определитель водорослей бентоса и перифитонаозера Байкал (мейо- и микрофиты) с краткими очерками по их экологии / Л. А. Ижболдина Новосибирск: Наука-Центр, 2007. — 248 с.
  19. Л.А. Мейо- и макрофитобентос озера Байкал / Л. А. Ижболдина Иркутск: Издательство Иркутского университета, 1990.-176 с.
  20. Т.С. Биопленки как способ существования бактерий в окружающей среде и организме хоязина: феномен, генетический контроль и системы регуляции их развития / Т. С. Ильина,
  21. Ю.М. Романова, A. J1. Гинцбург // Генетика. 2004. — Т. 40. — С. 14 451 456.
  22. Кожова О. М. Исследования экологии планктонных водорослей водоемов
  23. Байкальского региона / О. М. Кожова, В. Н. Паутова // Водные ресурсы.- 1984. -№ 3. С. 114−124.
  24. Э.М. Морфометрические характеристики Байкала / Э. М. Колокольцева // Мезозойские и кайнозойские озера, под ред. Г. И. Галазия и др.-М.: Наука, 1968.-С. 183−188.
  25. Комплексный гидробиологический мониторинг. Оценка состояния и прогноз Иркутск: Лимнологический институт, 1998.
  26. Н.В. О недопустимости подчинения номенклатуры сине-зеленых водорослей (Cyanophyta) действию международного кода номенклатуры бактерий / Н. В. Кондратьева // Ботанический журнал. -1981. -Т. 66. -№ 2. С. 215−216.
  27. В .Я. Синезеленые водоросли и эволюция эукариотных организмов / В. Я. Костяев Л.: Наука, 2001. — 130 с.
  28. В. Л. Биохимия усвоения азота воздуха растениями / В. Л. Кретович М.: Наука, 1994. — 168 с.
  29. Г. Б. Материалы рабочего совещания по выполнению природоохранных мероприятий ОАО «ЦКК"-ОАО «БКХ» в 2000—2003 гг.. / Г. Б. Кудринская, O.A. Морева // Материалы рабочего совещания. 2004. С. 53−60.
  30. Н.В. География и мониторинг биоразнообразия / Н. В. Лебедева,
  31. Д.А. Криволуцкий // География и мониторинг биоразнообразия.- М.: НУМЦ, 2002. С. 13−142.
  32. В.В. Микробное сообщество биопленок на поверхности разделафаз «вода твердое тело» литоральной зоны озера Байкал / В. В. Мальник // Автореферат дис.. канд. биол. наук. Улан-Удэ: Бурятский государственный университет. 23.04. 2010.22 — С. 19 с.
  33. Ю.А. Биопленка «Город микробов» или аналог многоклеточного организма? / Ю. А. Николаев, В. К. Плакунов // Микробиология. — 2007. — Т. 76. — № 2. — С. 149−163.
  34. A.B. Биосоциальность одноклеточных (на материале исследований прокариот) / A.B. Олескин // Журнал общей биологии.- 2009. Т. 70. — № 3. — С. 225−238.
  35. Определение таксономического положения бактерий из озера Байкал методом анализа последовательностей фрагментов 16S рРНК / С. И. Беликов и др. // Микробиология. 1996. — Т. 65. — № 6. — С. 855 864.
  36. Пикопланктонные Cyanoprokaryota родов Synechococcus Nageli и Cyanobium Rippka Et Cohen-Baz. из озера Байкал / О. И. Белых и др. //Альгология. -2011. Т. 21. -№ 1. — С. 36−50.
  37. A.B. Микробиология. Биология прокариотов: учебник в 3 ч. / A.B. Пиневич СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та., 2007.
  38. A.B. Проблемы классификации цианей и других прокариотныхоксифотобионтов / A.B. Пиневич // Ботанический журнал. 1999. — № 5. -С. 1−19.
  39. Г. И. Массовые, эндемичные и индикаторные виды планктонных водорослей озера Байкал / Г. И. Поповская, О.И. Белых- Иркутск: Иркут. ун-т, 2002. 65 с.
  40. Г. И. Фитопланктон Байкала и его многолетние изменения (1958−1990гг.) автореф. дис.. док. биол. наук: 03.00.05 / Г. И. Поповская Новосибирск, 1991. — 32 с.
  41. Г. И. Морской и пресноводный планктон. Труды зоологического института АН СССР / Г. И. Поповская // Морской ипресноводный планктон. Труды зоологического института АН СССР. -Л.: Наука, 1987.-С. 107−115.
  42. Г. И. Фитопланктон озерно-соровой зоны / Г. И. Поповская // Лимнология прибрежно-соровой зоны Байкала. Новосибирск: Наука, 1977.-С. 156−175.
  43. Проблемы Байкала // Труды лимнологического института АН СССР СО-Т. 16.-Новосибирск: Наука, 1978.-С. 158−169.
  44. Сообщества гидробионтов, развивающиеся на поверхности раздела фазвода-горные породы оз. Байкал / В. В. Парфенова и др. // Экология. -2008. -№ 3. С. 211−216.
  45. Структурно функциональная характеристика бактериальных биопленок / Т. А. Смирнова и др. // Микробиология. 2010. — Т. 79. — № 4. -С. 435146.
  46. А.Л. Четыре царства органического мира / А. Л. Тахтаджан // Природа. 1973. — № 2. — С. 22−32.
  47. И.В. Морфологические и генетические особенности пикопланктонных цианобактерий озера Байкал автореф. дис.. канд. биол. наук: 03.00.16. / И. В. Тихонова Иркутск, 2006. — 19 с.
  48. В.А. Течения прибрежной зоны озера Байкал / В. А. Фиалков -Новосибирск, 1983. 192 с.
  49. Филогенетическое разнообразие бактерий на различных глубинах Южного Байкала, выявленное по последовательностям 168 рРНК / Л. Я. Денисова и др. // Сибирский экологический журнал. 1999. — № 6. — С. 619−624.
  50. Характеристика летнего фитопланктона и автотрофного пикопланктонаозера Байкал в 2005 г. / О. И. Белых и др. // Альгология. 2007. — Т. 17. -№ 3. — С. 380−396.
  51. А natural view of microbial biodiversity within hot spring cyanobacterial matcommunities / D.M. Ward et al. // Microbiology and Molecular Biology Reviews. 1998. — Vol. 62. — No. 4. — P. 1353−1362.
  52. A partial budget of primary organic carbon flows in the littoral zone of a hardwater lake / M.O. Gessner et al. // Aquatic Botany. 1996. — Vol. 55. -No. 2.-P. 93−105.
  53. Amann R. I. Phylogenetic identification and in situ detection of individualmicrobial cells without cultivation / R.I. Amann, W. Ludwig, K.H. Schleifer // Microbiological Reviews. 1995. — Vol. 59. — No. 1. — P. 143−169.
  54. An archaeal iron-oxidizing extreme acidophile important in acid mine drainage
  55. K.J. Edwards et al. II Science. 2000. — Vol. 287. — No. 5459. -P. 1796−1799.
  56. An improved protocol for quantification of freshwater Actinobacteria by fluorescence in situ hybridization / R. Sekar et al. II Applied and Environmental Microbiology. 2003. — Vol. 69. — No. 5. — P. 2928−2935.
  57. Anagnostidis K. Modern approach to the classification system of cyanophytes.
  58. Introduction. / K. Anagnostidis, J. Komarek // Archiv fur Hydrobiogie Suppliment. 1985. — Vol. 71. — No. 1−2 (Algological studies 38−39). -P. 291−302.
  59. Anagnostidis K. Modern approach to the classification system of cyanophytes.
  60. Oscillatoriales / K. Anagnostidis, J. Komarek // Archiv fur Hydrobiogie Suppliment. 1988. — Vol. 80. — No. 1−4. — P. Ъ21-А12.
  61. Azeez P.A. Nickel uptake and toxicity in cyanobacteria / P.A. Azeez, D.K.
  62. Banerjee // Toxicological and Environmental Chemistry. 1991. — Vol. 30. -No. l.-P. 43−50.
  63. Azoarcus grass endophytes contribute fixed nitrogen to the plant in an unculturable state / T. Hurek et al. II Molecular Plant-Microbe Interactions.- 2002. Vol. 15. — No. 3. — P. 233−242.
  64. Bacterial biofilms in nature and disease / J.W. Costerton et al. II Annual
  65. Review of Microbiology. 1987. — Vol. 41. — P. 435−464.
  66. Bacterial community structure of acid-impacted lakes: what controls diversity?
  67. S.F. Percent et al. II Applied and Environmental Microbiology. 2008.- Vol. 74. No. 6. — P. 1856−1868.
  68. Bacterial diversity in Adirondack Mountain lakes as revealed by 16S rRNAgene sequences / W.D. Hiorns et al. II Applied and Environmental Microbiology. 1997. — Vol. 63. — No. 7. — P. 2957−2960.
  69. Belykh O.I. Autotrophic picoplankton in Lake Baikal: abundance, dynamics, and distribution / O.I. Belykh, E.G. Sorokovikova // Aquatic Ecosystem Health and Management 2003. — Vol. 6. — No. 3. — P. 251−261.
  70. Bergy’s manual of systematic bacteriology. Volume 2: The Proteobacteria. /
  71. Eds. G. M. Garrity. New York: Springer, 2001. — 304p.
  72. Billaud V.A. Aspects of nitrogen nutrition of some naturally occurring populations of blue-green algae / V.A. Billaud // Environmental Requierements of Blue-Green Algae. 1967. P. 35−53.
  73. Biodiversity of photosynthetic microorganisms dwelling on stone monuments
  74. L. Tomaselli et al. II International Biodeterioration and Biodegradation.- 2000. Vol. 46. — No. 3. — P. 251−258.
  75. Biodiversity of phototrophic biofilms dwelling on monumental fountains / O.A. Cuzman et al. II Microbial Ecology. 2010. — Vol. 60. — No. 1. -P. 81−95.
  76. Biofilm forming cyanobacteria, algae anf fungi on two historic momentus in
  77. Belgrade, Serbia / M.L. Grbic et al. II Archives of Biological Sciences. -2010. Vol. 62.-No. 3. — P. 625−631.
  78. Bonen L. Cyanobacterial evolution results of 16S ribosomal ribonucleicacidsequence analyses / L. Bonen, W.F. Doolittle, G.E. Fox // Canadian Journal of Biochemistry. 1979. — Vol. 57. — No. 6. — P. 879−888.
  79. Bonet M. Revision des Nostocaceas Heterocystes / M. Bonet // Annals of
  80. Botany. 1888. — Vol. 7. — No. 12. — P. 177−262.
  81. Boone D.R. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, second edition, vol. 1 (The Archaea and the deeply branching and phototrophic Bacteria) / D.R. Boone, R.W. Castenholz New York: Springer-Verlag, 2001.- 1388 p.
  82. Britschgi T. B. Phylogenetic analysis of a natural marine bacterioplankton population by ribosomal-RNA gene cloning and sequencing / T.B. Britschgi, S.J. Giovannoni // Applied and Environmental Microbiology. 1991. -Vol. 57.-No. 6.-P. 1707−1713.
  83. Capone D. G. Nitrogen-fixation in the marine environment / D.G. Capone, E.J. Carpenter // Science. 1982. — Vol. 217. — No. 4565. — P. 1140−1142.
  84. Capone D.G. Benthic nitrogen fixation / D.G. Capone // Nitrogen fixation inthe marine environment. 1983. — P. 105−138.
  85. Carmichael W.W. Using an enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) anda protein phosphatase inhibition assay (PPIA) for the detection of microcystins and nodularins / W.W. Carmichael, J.S. An // Natural Toxins. 1999. — Vol. 7. — No. 6. — P. 377−385.
  86. Carpenter E.J. Nitrogen fixation by marine Oscillatoria / E.J. Carpenter // Nitrogen fixation in the marine environment. 1983. — P. 65−103.
  87. Carpenter E.J. Nitrogen fixation in Trichodesmium blooms / E.J. Carpenter, D.G. Capone // Marine pelagic cyanobacteria: Trichodesmium and other diazotrophs. J. G. Rueter Dordrecht: Kluwer Academic, 1992. — P. 211−217.
  88. Castenholz R.W. Phylum BX. Cyanobacteria. Oxygenic photosynthetic bacteria / R.W. Castenholz // Bergey’s manual of systematic bacteriology. Vol. 1.2001.-P. 473−599.
  89. Channel structures in aerobic biofilms of fixed-film reactors treating contaminated groundwater / A.A. Massoldeya et al. // Applied and Environmental Microbiology. 1995. — Vol. 61. — No. 2. — P. 769−777.
  90. Characterization of a forest soil metagenome clone that confers indirubin andindigo production on Escherichia coli / H.K. Lim et al. II Applied and Environmental Microbiology.-2005.-Vol. 71.-No. 12.-P. 7768−7777.
  91. Characterization of functional bacterial groups in a hypersaline microbial matcommunity (Salins-de-Giraud, Camargue, France) / A. Fourans et al. 11FEMS Microbiology Ecology. 2004. — Vol. 51. — No. 1. — P. 55−70.
  92. Characterization of microcystin-LR, a potent inhibitor of type-1 and type-2aprotein phosphatases / Honkanen R. E. et al. II Journal of Biological Chemistry. 1990. — Vol. 265. — No. 32. — P. 19 401−19 404.
  93. Cheng S. M. Cultivation-independent and -dependent characterization of Bacteria resident beneath John Evans Glacier / S.M. Cheng, J.M. Foght //FEMS Microbiology Ecology. -2007. Vol. 59. — No. 2. — P. 318−330.
  94. Chorus I. Toxic cyanobacteria in water: a guide to public health significance, monitoring and management /1. Chorus, J. Bartram London: Chapman and Hall, 1999.-400 p.
  95. Community genomics among stratified microbial assemblages in the ocean’sinterior / E.F. DeLong et al. // Science. 2006. — Vol. 311. — No. 5760. -P. 496−503.
  96. Comparative approach to capture bacterial diversity of coastal waters / H. Na et al. II Journal of Microbiology. 2011. — Vol. 49. — No. 5. -P. 729−740.
  97. Comparison of the structure and composition of bacterial communities fromtemperate and tropical freshwater ecosystems / J.F. Humbert et al.
  98. I Environmental Microbiology. 2009. — Vol. 11. — No. 9. — P. 2339−2350.
  99. Composition, biomass, and photosynthetic activity of the benthic algal communities in a littoral zone of Lake Baikal in summer / K. Nozaki et al.
  100. Limnology. 2002. — Vol. 3. -No. 3. -P. 175−180.
  101. Consortial N2 fixation: a strategy for meeting nitrogen requirements of marineand terrestrial cyanobacterial mats / T.F. Steppe et al. II FEMS Microbiology Ecology. 1996.-Vol. 21.-No. 3.-P. 149−156.
  102. Counting the uncountable: statistical approaches to estimating microbial diversity / J.B. Hughes et al. II Applied and Environmental Microbiology. 2001. — Vol. 67. — No. 10. — P. 4399−4406.
  103. Culley A. I. Metagenomic analysis of coastal RNA virus communities / A.I. Culley, A.S. Lang, C.A. Suttle // Science. 2006. — Vol. 312. -No. 5781.-P. 1795−1798.
  104. Cyanobacterial microcystin-LR is a potent and specific inhibitor of protein phosphatase 1 and phosphatase 2a from both mammals and higher plants
  105. C. Mackintosh et al. II FEMS Letters. 1990. — Vol. 264. — No. 2. -P. 187- 192.
  106. Daubin V. Phylogenetics and the cohesion of bacterial genomes / V. Daubin,
  107. N.A. Moran, H. Ochman // Science. 2003. — Vol. 301. — No. 5634. -P. 829−832.
  108. Davey M. E. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics / M.E. Davey, G.A. O’Toole // Microbiology and Molecular Biology Reviews.- 2000. Vol. 64. — No. 4. — P. 847−858.
  109. De-Beer D. Microbial biofilms / D. De-Beer, P. Stoodley // Applied Microbiology. 2006. — Vol. 1. — P. 1−50.
  110. Deoxyribonucleic-acid base composition of cyanobacteria / M. Herdman et al. II Journal of General Microbiology. 1979. — Vol. 111. -P. 63−71.
  111. Detection of hepatotoxic Microcystis strains by PCR with intact cells from both culture and environmental samples / H. Pan et al. II Archives of Microbiology. 2002. — Vol. 178. — No. 6. — P. 421−427.
  112. Divergence and redundancy of 16S rRNA sequences in genomes with multiple rrn operons / S.G. Acinas et al. II Journal of Bacteriology. 2004. -Vol. 186. — No. 9. — P. 2629−2635.
  113. Diversity and population structure of a near shore marine sediment viral community / M. Breitbart et al. II Proceedings of the Royal Society of London, Series B: Biological Sciences. 2004. — Vol. 271. — No. 1539. -P. 565−574.
  114. Diversity of heterotrophic nitrogen-fixation genes in a marine cyanobacterial mat / J.P. Zehr et al. II Applied and Environmental Microbiology. 1995. -Vol. 61. — No. 7. — P. 2527−2532.
  115. Diversity of microcystin genes within a population of the toxic cyanobacterium Microcystis spp. in Lake Wannsee (Berlin, Germany) / R. Kurmayer et al. // Microbial Ecology. 2002. — Vol. 43. — No. 1. -P. 107−118.
  116. Diversity of nitrogen fixation genes in the symbiotic intestinal microflora of the termite reticulitermes speratus / M. Ohkuma et al. II Applied and Environmental Microbiology. 1996. — Vol. 62. — No. 8. — P. 2747−2752.
  117. Donachie S. P. Culture clash: challenging the dogma of microbial diversity / S.P. Donachie, J.S. Foster, M.V. Brown // ISME Journal. 2007. — Vol. 1. -No. 2.-P. 97−99.
  118. Drewes K. Uber die assimilation des luftstickstoffe durch blaualgen / K. Drewes // Zentralblatt fur Bakteriologie. 1928. — No. 76. — P. 89−101.
  119. Ecological development and genetic diversity of Microcystis aeruginosa from artificial reservoir in Russia / N.A. Gaevsky et al. II Journal of Microbiology. -2011. Vol. 49. — No. 5. — P. 714−720.
  120. Ecosystem-dependent adaptive radiations of picocyanobacteria inferred from 16S rRNA and ITS-1 sequence analysis / A. Ernst et al. II Microbiology-SGM.-2003.-Vol. 149.-P. 217−228.
  121. Enrichment culture and microscopy conceal diverse thermophilic Synechococcus populations in a single hot spring microbial mat habitat / M.J. Ferris et al. II Applied and Environmental Microbiology. 1996. -Vol. 62. — No. 3. — P. 1045−1050.
  122. Environmental genome shotgun sequencing of the Sargasso Sea / J.C. Venter et al. // Science. 2004. — Vol. 304. — No. 5667. — P. 66−74.
  123. Exploring microbial diversity and taxonomy using ssu rRNA hypervariable tag sequencing / S.M. Huse et al. II PloS Genetics. 2008.- Vol. 4. -No. 11.-P. 1−10.
  124. Expression of nifH genes in natural microbial assemblages in Lake George, New York, detected by reverse transcriptase PCR / S. Zani et al. // Applied and Environmental Microbiology. 2000. — Vol. 66. — No. 7. — P. 31 193 124.
  125. Form-genus XII. Pseudanabaena Lauterborn 1916 / R.W. Castenholz et al. // Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. Eds. Boone DR, Castenholz. RW. 2-nd edition Heidelberg: Springer Verlag, 2001. — P. 554 557.
  126. Franche C. Tests on nif probes and DNA hybridizations / C. Franche, T. Damerval // Methods in Enzymology. 1988. — Vol. 167. — P. 803−808.
  127. Francis G. Poisonous Australian lake / G. Francis // Nature. 1878. — Vol. 18. -P. 11−12.
  128. Frankia genus specific characterization by polymerase chain reaction. / P. Simonet et al. II Applied and Environmental Microbiology. 1991.- Vol. 57. No. 11. — P. 3278−3286.
  129. Fuhrman J. A. Phylogenetic diversity of subsurface marine microbial communities from the Atlantic and Pacific oceans / J.A. Fuhrman, K. McCallum, A.A. Davis // Applied and Environmental Microbiology.- 1993. Vol. 59. — No. 5. — P. 1294−1302.
  130. Genetic analysis of the peptide synthetase genes for a cyclic heptapeptide microcystin in Microcystis spp. / T. Nishizawa et al. II Journal of Biochemistry. 1999. — Vol. 126. — No. 3. — P. 520−529.
  131. Gorbushina A.A. Role of microorganisms in wear down of rocks and minerals / A.A. Gorbushina, W.E. Krumbein // Microorganisms in Soils: Roles in Genesis and Functions. 2005. — Vol. 3. — P. 59−84.
  132. Gugger M. F. Polyphyly of true branching cyanobacteria (Stigonematales) / M.F. Gugger, L. Hoffmann // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2004. — Vol. 54. — P. 349−357.
  133. Hall N. Advanced sequencing technologies and their wider impact in microbiology / N. Hall // Journal of Experimental Biology. 2007. -Vol.210. -No. 9.-P. 1518−1525.
  134. Handelsman J. Metagenomics: application of genomics to uncultured microorganisms / J. Handelsman // Microbiology and Molecular Biology Reviews. 2004. — Vol. 68. — No. 4. — P. 669−678.
  135. Head I. M. Microbial evolution, diversity, and ecology: a decade of ribosomal RNA analysis of uncultivated microorganisms / I.M. Head, J.R. Saunders, R.W. Pickup // Microbial Ecology. 1998. — Vol. 35. — No. 1. — P. 1−21.
  136. Hepatotoxic cyanobacteria: a review of the biological importance of microcystins in freshwater environments / R.W. Zurawell et al. // Journal of Toxicology and Environmental Health, Part B: Critical Reviews. 2005. -Vol. 8.-No. l.-P. 1−37.
  137. High molecular weight DNA recovery from soils prerequisite for biotechnological metagenomic library construction / H. Bertrand et al. // Journal of Microbiological Methods. 2005. — Vol. 62. — No. 1. — P. 1−11.
  138. High rates of N2 fixation by unicellular diazotrophs in the oligotrophic Pacific Ocean / J.P. Montoya et al. II Nature. 2004. — Vol. 430. — No. 7003. -P. 1027−1031.
  139. Hoffman B. M. Climbing nitrogenase: toward a mechanism of enzymatic nitrogen fixation / B.M. Hoffman, D.R. Dean, L.C. Seefeldt // Accounts of Chemical Research. 2009. — Vol. 42. — No. 5. — P. 609−619.
  140. Hoffmann L. System of cyanoprokaryotes (cyanobacteria) state in 2004 / L. Hoffmann, J. Komarek, J. Kastovsky // Archiv fur Hydrobiologie Supplement. — 2005. — Vol. 159. — P. 95−115.
  141. Hotto A. M. Molecular characterization of potential microcystin producing cyanobacteria in lake Ontario embayments and nearshore waters
  142. A.M. Hotto, M.F. Satchwell, G.L. Boyer // Applied and Environmental Microbiology. 2007. — Vol. 73. — No. 14. — P. 4570−4578.
  143. Hugenholtz P. Impact of culture independent studies on the emerging phylogenetic view of bacterial diversity / P. Hugenholtz, B.M. Goebel, N.R. Pace // Journal of Bacteriology. 1998. — Vol. 180. — No. 18. -P. 4765774.
  144. Inoue H. High efficiency transformation of Escherichia coli with plasmids / H. Inoue, H. Nojima, H. Okayama // Gene. 1990. — Vol. 96. — No. 1. -P. 23−28.
  145. Integrative analysis of environmental sequences using MEGAN 4 / D.H. Huson et al. II Genome Research. 2011. — Vol. 21. — No. 9. -P. 1552−1560.
  146. Introducing EzTaxon-e: a prokaryotic 16S rRNA gene sequence database with phylotypes that represent uncultured species / O.-S. Kim et al. II International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2012. -Vol. 62. — No. 3. — P. 716−21.
  147. Introducing mothur: open-source, platform-independent, community-supported software for describing and comparing microbial communities / P.D. Schloss et al. II Applied and Environmental Microbiology. 2009. — Vol. 75. — No. 23. — P. 7537−7541.
  148. Investigating deep phylogenetic relationships among cyanobacteria and plastids by small submit rRNA sequence analysis / S. Turner et al. II Journal of Eukaryotic Microbiology. 1999. — Vol. 46. — No. 4. — P. 327 338.
  149. Jain R. Horizontal gene transfer among genomes: the complexity hypothesis / R. Jain, M.C. Rivera, J.A. Lake // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1999. — Vol. 96. — No. 7. -P. 3801−3806.
  150. Joachimiak M. P. JColorGrid: software for the visualization of biological measurement / M.P. Joachimiak, J.L. Weisman, B.C.H. May // BMC Bioinformatics. 2006. — Vol. 7. — P. 1−5.
  151. Katano T. Identification of cultured and uncultured picocyanobacteria from a mesotrophic freshwater lake based on the partial sequences of 16S rDNA / T. Katano, M. Fukui, Y. Watanabe // The Japanese Society of Limnology. -2001.-Vol. 2.-P. 213−218.
  152. Komarek J. Cyanoprokaryota 1. Teil: Chroococcales. Susswasserflora von Mitteleuropa 19/1 / Komarek J., Anagnostidis K. / Eds. Ettl H. et al. JenaStuttgart-Lubeck-Ulm: Gustav Fischer, 1999. — 548 p.
  153. Komarek J. Cyanoprokaryota 2. Teil 2nd Part: Oscillatoriales. Susswasserflora von Mitteleuropa 19/1 / J. Komarek, K. Anagnostidis / Eds. Budel B. et al. Heidelberg: Elsevier/Spektrum, 2005. — 759 p.
  154. Komarek J. Modern approach to the classification system of Cyanophytes 4 Nostocales / J. Komarek, K. Anagnostidis // Archiv Fur Hydrobiologie. 1989. — Vol. 82. — No. 3. — P. 247−345.
  155. Komarek J. The modern classification of Cyanoprokaryotes (Cyanobacteria) / J. Komarek // Oceanological and Hydrobiological Studies. 2005. -Vol. XXXIV. -No. 3. -P. 5−17.
  156. Komarek J. Planktic morphospecies of the cyanobacterial genus Anabaena = subg. Dolichospermum 1. part: coiled types / J. Komarek, E. Zapomelova // Fottea. — 2007. — Vol. 7. — No. 1. — P. 1−31.
  157. Komarek J. CyanoDB. cz On-line database of cyanobacterial genera / J. Komarek, T. Hauer — Word-wide electronic publication: Univ. of South Bohemia & Inst, of Botany AS CR, 2011.
  158. Lake Baikal: evolution and biodiversity / Kozhova O.M. et al. Eds. O. M. Kozhova, L. R. Izmest’eva. The Netherlands, Leiden: Backhuys1. Publishers, 1998.-447 p.
  159. Leigh J. A. Nitrogen fixation in methanogens: the archaeal perspective / J.A. Leigh // Current issues in molecular biology. 2000. — Vol. 2. — No. 4. -P. 125−31.
  160. Leppanen J. M. Nitrogen-fixation of cyanobacteria (blue-green-algae) and the nitrogen cycle of the Baltic sea / J.M. Leppanen, A. Niemi, I. Rinne //Symbiosis.- 1988.-Vol. 6.-No. 1−2.-P. 181−194.
  161. Light and the transcriptional response of the microcystin biosynthesis gene cluster / M. Kaebernick et al. 11 Applied and Environmental Microbiology.- 2000. Vol. 66. — No. 8. — P. 3387−3392.
  162. Liver failure and death after exposure to microcystins at a hemodialysis center in Brazil / E.M. Jochimsen et al. II New England Journal of Medicine.- 1998. Vol. 338. — No. 13. — P. 873−878.
  163. Marahiel M. A. Modular peptide synthetases involved in nonribosomal peptide synthesis / M.A. Marahiel, T. Stachelhaus, H.D. Mootz // Chemical Reviews. 1997. — Vol. 97. — No. 7. — P. 2651−2673.
  164. Marine cyanobacteria a prolific source of natural products / A.M. Burja et al. II Tetrahedron. — 2001. — Vol. 57. — No. 46. -P. 9347−9377.
  165. Marshall K.C. Planktonic versus sessile life of Prokaryotes / K.C. Marshall // The Prokaryotes. Vol. 2. Eds. M. Dworkin et al. New York: Springer, 2006.-P. 3−15.
  166. Martinez-Romero E. Dinitrogen-fixing Prokaryotes / E. Martinez-Romero //Prokaryotes. Vol. 1. 2006. -P. 793−817.
  167. MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods / K. Tamura et al. 11 Molecular Biology and Evolution. 2011. — Vol. 28. -No. 10.-P. 2731−2739.
  168. Metagenomic analyses of an uncultured viral community from human feces / M. Breitbart et al. 11 Journal of Bacteriology. 2003. — Vol. 185. — No. 20. -P. 6220−6223.
  169. Metagenomic analyses of the dominant bacterial community in the Fildes Peninsula, King George Island (South Shetland Islands) / C.P. Foong et al. IIPolar Science. -2010. Vol. 4. -No. 2. -P. 263−273.
  170. Metagenomic analysis of RNA viruses in a fresh water Lake / A. Djikeng et al. II PloS One. 2009. — Vol. 4. — No. 9. — P. 1−14.
  171. Metagenomic analysis of the human distal gut microbiome / S.R. Gill et al. II Science. -2006. Vol. 312. — No. 5778. — P. 1355−1359.
  172. Metagenomic approach studying the taxonomic and functional diversity of the bacterial community in a mesotrophic lake (Lac du Bourget France) / D. Debroas et al. 11 Environmental Microbiology. — 2009. — Vol. 11. -No. 9.-P. 2412−2424.
  173. Metagenomic insights into the evolution, function, and complexity of the planktonic microbial community of Lake Lanier, a temperate freshwater ecosystem / S. Oh et al. II Applied and Environmental Microbiology. -2011.-Vol. 77.-No. 17.-P. 6000−6011.
  174. Metal-induced inhibition of photosynthetic electron-transport chain of the cyanobacterium Nostoc muscorum / S.M. Prasad et al. // FEMS Microbiology Letters. 1991. — Vol. 82. — No. 1. — P. 95−100.
  175. Microbial community structure in methane hydrate-bearing sediments of freshwater Lake Baikal / V.V. Kadnikov et al. II FEMS Microbiology Ecology. 2012. — Vol. 79. — No. 2. — P. 348−358.
  176. Microbial diversity in the deep sea and the underexplored «rare biosphere» / M.L. Sogin et al. II Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2006. — Vol. 103. — No. 32. — P. 1 211 512 120.
  177. Microbiological, molecular biological and stable isotopic evidence for nitrogen fixation in the open waters of Lake Michigan
  178. B.J. MacGregor et al. II Environmental Microbiology. 2001. — Vol. 3. -No. 3. -P. 205−219.
  179. Microcystin biosynthesis in Planktothrix: genes, evolution, and manipulation / G. Christiansen et al. II Journal of Bacteriology. 2003. — Vol. 185. -No. 2.-P. 564−572.
  180. Microcystin concentrations and genetic diversity of Microcystis in the lower Great Lakes / J. Dyble et al. // Environmental Toxicology. 2008. -Vol.23. -No. 4.-P. 507−516.
  181. Molecular analysis of diazotroph diversity in the rhizosphere of the smooth cordgrass, Spartina alterniflora / C.R. Lovell et al. 11 Applied and Environmental Microbiology. 2000. — Vol. 66. — No. 9. — P. 3814−3822.
  182. Molecular characterization of cyanobacterial diversity in a shallow eutrophic lake / G. Zwart et al. II Environmental Microbiology. 2005. — Vol. 7. -No. 3. — P. 365−377.
  183. Molecular characterization of planktic Cyanobacteria of Anabaena, Aphanizomenon, Microcystis and Planktothrix genera / C. Lyra et al. 11 International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2001. -Vol. 51.-No. 2.-P. 513−526.
  184. Molecular diversity of cyanobacteria inhabiting coniform structures and surrounding mat in a yellowstone hot spring / E. Lau et al. II Astrobiology. -2005.-Vol. 5.-No. l.-P. 83−92.
  185. Molecular evidence for zooplankton-associated nitrogen-fixing anaerobes based on amplification of the nifil gene / S.T. Braun et al. II FEMS Microbiology Ecology. 1999. — Vol. 28. — No. 3. — P. 273−279.
  186. Molecular phylogenetic relationship between strains of cyanobacterial picoplankton in Lake Biwa, Japan / M. Kane et al. II Journal of Marine Biotechnology. 1997. — Vol. 5. — No. 1. — P. 41-^15.
  187. Molecular phylogeny of the heterocystous cyanobacteria (subsections IV and V) based on nifD / B.J. Henson et al. // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2004. — Vol. 54. — P. 493197.
  188. Morphological and molecular characterization of planktonic cyanobacteria from Belgium and Luxembourg / R. Willame et al. II Journal of Phycology. -2006.-Vol. 42.-No. 6.-P. 1312−1332.
  189. Multifunctional peptide synthetases / H. von Dohren et al. II Chemical Reviews. 1997. — Vol. 97. — No. 7. — P. 2675−2705.
  190. N2-fixing microbial consortia associated with the ice cover of Lake Bonney, Antarctica / J.B. Olson et al. II Microbial Ecology. 1998. — Vol. 36. -No. 3.-P. 231−238.
  191. N2 fixation by non-heterocystous cyanobacteria / B. Bergman et al. // FEMS Microbiology Reviews. 1997. — Vol. 19. — No. 3. — P. 139−185.
  192. Naive Bayesian classifier for rapid assignment of rRNA sequences into the new bacterial taxonomy / Q. Wang et al. II Applied and Environmental Microbiology. 2007. — Vol. 73. — No. 16. — P. 5261−5267.
  193. Neilan A. Detection and identification of cyanobacteria associated with toxic blooms: DNA amplification protocols / A. Neilan // Phycologia. 1996.- Vol. 35. No. 6s. — P. 147−155.
  194. Nitrogen-fixation in fresh-water, estuarine, and marine ecosystems .1. Rates and importance / R.W. Howarth et al. II Limnology and Oceanography.- 1988. Vol. 33. — No. 4. — P. 669−687.
  195. Nitrogen fixation by unicellular blue-green algae / R. Rippka et al. II Archiv fur Mikrobiologie. 1971. — Vol. 76. — No. 4. — P. 341−349.
  196. Nitrogen fixation in lakes / R. Dugdale et al. II Science. 1959. — Vol. 130. -No. 3379.-P. 859−860.
  197. Nitrogen fixation in microbial mat and stromatolite communities from Cuatro Cienegas, Mexico / L.I. Falcon et al. II Microbial Ecology. 2007.- Vol. 54. No. 2. — P. 363−373.
  198. Nitrogenase gene diversity and microbial community structure: a cross-system comparison / J.P. Zehr et al. // Environmental Microbiology. -2003.-Vol. 5.-No. 7.-P. 539−554.
  199. Nonribosomal peptide synthetase genes occur in most cyanobacterial genera as evidenced by their distribution in axenic strains of the PCC / G. Christiansen et al. II Archives of Microbiology. 2001. — Vol. 176. -No. 6.-P. 452158.
  200. Norwood D.E. The growth and resistance to sodium hypochlorite of Listeria monocytogenes in a steady-state multispecies biofilm / D.E. Norwood, A. Gilmour // Journal of Applied Microbiology. 2000. — Vol. 88. — No. 3. -P. 512−520.
  201. Nubel U. PCR primers to amplify 16S rRNA genes from cyanobacteria / U. Nubel, P. Garcia, F.,, G. Muyzer // Applied and Environmental Microbiology. 1997. — Vol. 63. — No. 8. — P. 3327−3332.
  202. Nyren P. The history of Pyrosequencing / P. Nyren // Methods Molecular. Biology.-2007.-No. 373.-P. 1−14.
  203. O’Toole G. Biofilm formation as microbial development / G. O’Toole, H.B. Kaplan, R. Kolter // Annual Review of Microbiology. 2000. — Vol. 54. — P. 49−79.
  204. Olson J. B. Ubiquity of heterotrophic diazotrophs in marine microbial mats / J.B. Olson, R.W. Litaker, H.W. Paerl // Aquatic Microbial Ecology. 1999. -Vol. 19.-No. l.-P. 29−36.
  205. Organization of the nif genes of the nonheterocystous cyanobacterium Trichodesmium sp. / B. Dominic et al. II Journal of Phycology. 2000. -Vol. 36.-No. 4.-P. 693−701.
  206. Ouellette A. J. A. Toxic cyanobacteria: the evolving molecular toolbox / A.J.A. Ouellette, S.W. Wilhelm // Frontiers in Ecology and the Environment. 2003. — Vol. 1. — No. 7. — P. 359−366.
  207. Paerl H.W. Microbial phototrophic, heterotrophic, and diazotrophic activities associated with aggregates in the permanent ice cover of Lake Bonney,
  208. Antarctica / H.W. Paerl, J.C. Priscu // Microbial Ecology. 1998. — Vol. 36. -No. 3.-P. 221−230.
  209. Paerl H.W. Seasonal nitrogen fixation dynamics in a marine microbial mat: potential roles of Cyanobacteria and Microheterotrophs / H.W. Paerl, M. Fitzpatrick, B.M. Bebout // Limnology and Oceanography. 1996. -Vol. 41. -No. 3.-P. 419−427.
  210. Partial structural determination of hepatotoxic peptides from Microcystis aeruginosa (Cyanobacterium) collected in ponds of central China / W.W. Carmichael et al. II Toxicon. 1988. — Vol. 26. — No. 12. -P. 1213−1217.
  211. Phenotypic and genetic diversification of Pseudanabaena spp. (cyanobacteria) / S.G. Acinas et al. // ISME Journal. 2009. — Vol. 3. -No. 1. — P. 31—46.
  212. Phylogenetic and morphological evaluation of the genera Anabaena, Aphanizomenon, Trichormus and Nostoc (Nostocales, Cyanobacteria) / P. Rajaniemi et al. II International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2005. — Vol. 55. — P. 11−26.
  213. Phylogenetic comparison of the cyanobacterial genera Anabaena and Aphanizomenon / M. Gugger et al. II International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2002. — Vol. 52. — P. 1867−1880.
  214. Phylogenetic evidence for the early evolution of microcystin synthesis / A. Rantala et al. 11 Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. -2004. Vol. 101. — No. 2. — P. 568−573.
  215. Phylogenetic relationships of nonaxenic filamentous cyanobacterial strains based on 16S rRNA sequence analysis / B. Nelissen et al. II Journal of Molecular Evolution. 1996. — Vol. 42. — No. 2. — P. 194−200.
  216. Poly F. Improvement in the RFLP procedure for studying the diversity oinifiA genes in communities of nitrogen fixers in soil / F. Poly, L.J. Monrozier, R. Bally // Research in Microbiology. 2001. — Vol. 152. — No. 1. — P. 95−103.
  217. Polyketide synthase gene coupled to the peptide synthetase module involved in the biosynthesis of the cyclic heptapeptide microcystin
  218. T. Nishizawa et al. // Journal of Biochemistry. 2000. — Vol. 127. -No. 5.-P. 779−789.
  219. Polyphasic characterization of eight planktonic Anabaena strains (Cyanobacteria) with reference to the variability of 61 Anabaena populations observed in the field / E. Zapomelova et al. II Hydrobiologia. 2010. -Vol. 639.-No. l.-P. 99−113.
  220. Pope P. B. Metagenomic analysis of a freshwater toxic cyanobacteria bloom / P.B. Pope, B.K.C. Patel // FEMS Microbiology Ecology. 2008. — Vol. 64. -No. l.-P. 9−27.
  221. Postius C. Mechanisms of dominance: coexistence of picocyanobacterial genotypes in a freshwater ecosystem / C. Postius, A. Ernst // Archives of Microbiology. 1999. — Vol. 172. — No. 2. — P. 69−75.
  222. Presence and genetic diversity of microcystin-producing cyanobacteria {Anabaena and Microcystis) in Lake Kotokel (Russia, Lake Baikal region) / O.I. Belykh et al. II Hydrobiologia. 2011. — Vol. 671. — No. 1. — P. 241 252.
  223. Protective role of catalase in Pseudomonas aeruginosa biofilm resistance to hydrogen peroxide / J.G. Elkins et al. II Applied and Environmental Microbiology. 1999. — Vol. 65. — No. 10. — P. 4594−4600.
  224. Quantitative real-time PCR for determination of microcystin synthetase E copy numbers for Microcystis and Anabaena in lakes / J. Vaitomaa et al. II Applied and Environmental Microbiology. 2003. — Vol. 69. — No. 12. — P. 7289−7297.
  225. Reduced diversity of faecal microbiota in Crohn’s disease revealed by a metagenomic approach / C. Manichanh et al. II Gut. 2006. — Vol. 55. -No. 2.-P. 205−211.
  226. Remarkable N2-fixing bacterial diversity detected in rice roots by molecular evolutionary analysis of nifh gene-sequences / T. Ueda et al. II Journal of Bacteriology. 1995. — Vol. 177. — No. 5. — P. 1414−1417.
  227. RNA viral community in human feces: prevalence of plant pathogenic viruses / T. Zhang et al. II PloS Biology. 2006. — Vol. 4. — No. 1. -P. 108−118.
  228. Ronquist F. MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models / F. Ronquist, J.P. Huelsenbeck // Bioinformatics. 2003. — Vol. 19. -No. 12.-P. 1572−1574.
  229. Saley J.T. Classification of Procaryotic organisms: an overview / J.T. Saley, N.R. Krieg // Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. Eds. J.G. Holt -Baltimore: The Williams and Wilkins Co., 1984. P. 1−4.
  230. Schopf J.W. Origin and early evolution of Cyanobacteria: the geological evidence / J.W. Schopf, M.R. Walter // The Biology of Cyanobacteria. Oxford: Blackwell Scientific Publications, 1982. — P. 543−564.
  231. SILVA: a comprehensive online resource for quality checked and aligned ribosomal RNA sequence data compatible with ARB / E. Pruesse et al. II Nucleic Acids Research. 2007. — Vol. 35. — No. 21. — P. 7188−7196.
  232. Sivonen K. Cyanobacterial toxins / K. Sivonen, G. Jones // Toxic cyanobacteria in water. A guide to their public health consequences, monitoring and management. Eds. I. Chorus and J. Bartram: E and FN Spon, London, 1999.-P. 41−111.
  233. Sivonen K. Toxic cyanobacteria in water: a guide to their public health consequences, monitoring and management / K. Sivonen, Eds. G. Jones, K. Sivonen. 1999. — P. 41−112.
  234. Spatial distribution and temporal variation of Microcystis species composition and microcystin concentration in lake Biwa / K. Ozawa et al. II Environmental Toxicology. 2005. — Vol. 20. — No. 3. — P. 270−276.
  235. Sroga G. E. Regulation of nitrogen fixation by different nitrogen sources in the filamentous nonheterocystous cyanobacterium Microcoleus sp. / G.E. Sroga I I FEMS Microbiology Letters. 1997. — Vol. 153. — No. 1. -P. 11−15.
  236. Stal L. J. Cyanobacterial mats and stromatolites / L.J. Stal // The ecology of cyanobacteria. Eds. W. Potts and M. Potts Dordrecht, The Netherlands: Academic Publishers, 2000. — P. 61−120.
  237. Stal L. J. Structure and development of a benthic marine microbial mat / L.J. Stal, H. Vangemerden, W.E. Krumbein // FEMS Microbiology Ecology. 1985. — Vol. 31. — No. 2. — P. 111−125.
  238. Steppe T. F. Potential N2 fixation by sulfate reducing bacteria in a marine intertidal microbial mat / T.F. Steppe, H.W. Paerl // Aquatic Microbial Ecology. 2002. — Vol. 28. — No. 1. — P. 1−12.
  239. Stewart W.D.P. Nitrogen fixation by blue-green algae in Yellowstone thermal areas / W.D.P. Stewart // Phycologia. 1970. — Vol. 9. — No. 3. — P. 261−268.
  240. Stewart W.D.P. Nitrogen input into aquatic ecosystems / W.D.P. Stewart // Algae, Man and Environment. N.Y.: University Press, Syracuse, 1968.- P. 53−72.
  241. Structural organization of microcystin biosynthesis in Microcystis aeruginosa PCC7806: an integrated peptide-polyketide synthetase system / D. Tillett et al. II Chemistry & Biology. 2000. — Vol. 7. — No. 10.- P. 753−764.
  242. Stulp B.K. Taxonomy of the genus Anabaena (Cyanophyceae) based on morphological and genotypic criteria / B.K. Stulp // Archiv fur Hydrobiologie. 1985. — Vol. V.71 (Algological studies 38/39). — P. 257 268.
  243. Surosz W. Effects of heavy-metal stress on cyanobacterium Anabaena flos-aquae / W. Surosz, K.A. Palinska // Archives of Environmental Contamination and Toxicology. 2004. — Vol. 48. — No. 1. — P. 40−48.
  244. Tamas I. Determinative value of a portion of the nifil sequence for the genera Nostoc and Anabaena (Cyanobacteria) / I. Tamas, Z. Svircev, S.G.E. Andersson // Current Microbiology. 2000. — Vol. 41. — No. 3. -P. 197−200.
  245. Taxonomic consequences from the combined molecular and phenotype evaluation of selected Anabaena and Aphanizomenon strains / P. Rajaniemi et al. II Archiv fur Hydrobiologie Supplement. 2005. -Vol. 159.-P. 371−391.
  246. The analysis of oral microbial communities of wild-type and toll-like receptor 2-deficient mice using a 454 GS FLX Titanium pyrosequencer / J. Chun et al. II BMC Microbiology. 2010. — Vol. 10. DOI: 10.1186/1471−2180−10−101.
  247. The blue-green algae / G.E. Fogg et al. London and New York: Academic Press, 1973.-460p.
  248. The metagenomics RAST server a public resource for the automatic phylogenetic and functional analysis of metagenomes / F. Meyer et al. II BMC Bioinformatics. — 2008. — Vol. 9. DOI: 10.1186/1471−2105−9-386
  249. The natural history of nitrogen fixation / J. Raymond et al. // Molecular Biology and Evolution. 2004. — Vol. 21. — No. 3. — P. 541−554.
  250. The ribonucleoprotein substrate for a ribosomal RNA-processing nuclease / D.A. Stahl et al. II Journal of Biological Chemistry. 1984. — Vol. 259. -No. 18.-P. 1448−1453.
  251. The Ribosomal Database Project: improved alignments and new tools for rRNA analysis / J.R. Cole et al. II Nucleic Acids Research. 2009. -Vol. 37.-P. 141−145.
  252. The role of N2 fixation in alleviating N limitation in wetland metaphyton: enzymatic, isotopic, and elemental evidence / J.T. Scott et al. II Biogeochemistry. 2007. — Vol. 84. — No. 2. — P. 207−218.
  253. The Sorcerer II global ocean sampling expedition: Northwest Atlantic through Eastern Tropical Pacific / D.B. Rusch et al. II PloS Biology. 2007. -Vol. 5. — No. 3. — P. 398−431.
  254. Tilman D. Phytoplankton community ecology the role of limiting nutrients / D. Tilman, S.S. Kilham, P. Kilham // Annual Review of Ecology and Systematics. — 1982. — Vol. 13. — P. 349−372.
  255. Toxins contained in microcystis species of cyanobacteria (blue-green-algae) / M.F. Watanabe et al. II Toxicon. 1988. — Vol. 26. — No. 11. — P. 10 171 025.
  256. Turner S. Molecular systematics of oxygenic photosynthetic bacteria / S. Turner // Plant Systematics and Evolution. 1997. — P. 13−52.
  257. Typical freshwater bacteria: an analysis of available 16S rRNA gene sequences from plankton of lakes and rivers / G. Zwart et al. II Aquatic Microbial Ecology. -2002. Vol. 28. — No. 2. — P. 141−155.
  258. Unicellular cyanobacteria fix N2 in the subtropical North Pacific Ocean / J.P. Zehr etal.1 //Nature. -2001. Vol. 412. — No. 6847. — P. 635−638.
  259. Vadeboncoeur Y. Whole-lake fertilization effects on distribution of primary production between benthic and pelagic habitats / Y. Vadeboncoeur, D.M. Lodge, S.R. Carpenter // Ecology. 2001. — Vol. 82. — No. 4. -P. 1065−1077.
  260. Variations in the toxicity of Microcystis species to Moina macrocopa / M. Yasuno et al. II Phycological Research. 1998. — Vol. 46. — P. 31−36.
  261. Villbrandt M. The effect of sulfide on nitrogen fixation in heterocystous and non-heterocystous cyanobacterial mat communities / M. Villbrandt, L J. Stal // Archiv fur Hydrobiologie Supplement. 1996. — No. 83. — P. 549−563.
  262. Warnecke F. Actinobacterial 16S rRNA genes from freshwater habitats cluster in four distinct lineages / F. Warnecke, R. Amann, J. Pernthaler // Environmental Microbiology. 2004. — Vol. 6. — No. 3. — P. 242−253.
  263. Watnick P. Biofilm, city of microbes / P. Watnick, R. Kolter // Journal of Bacteriology. -2000. Vol. 182. — No. 10. — P. 2675−2679.
  264. Welker M. Cyanobacterial peptides Nature’s own combinatorial biosynthesis / M. Welker, H. Von Dohren // FEMS Microbiology Reviews. — 2006. — Vol. 30. — No. 4. — P. 530−563.
  265. Wetzel Robert G. A comparative study of the primary productivity of higher aquatic plants, periphyton, and phytoplankton in a large, shallow lake / R.G. Wetzel // Internationale Revue der Gesamten Hydrobiologie. 1964. -Vol. 49. — No. l.-P. 1−61.
  266. WHO. Guidelines for drinking-water quality Vol. 1 Third edition World Health Organization, Geneva, Switzerland, 2004. 45p.
  267. Wilmotte A. Molecular evolution and taxonomy of the cyanobacteria / A. Wilmotte // The Molecular Biology of Cyanobacteria. Dordrecht, Netherlands: Kluwer, 1994. — P. 1−25.
  268. Wilmotte A. Phylogenetic relationships among the cyanobacteria based on 16S rRNA sequences / A. Wilmotte, M. Herdman // Bergey’s Manual of
  269. Systematic Bacteriology. Vol. 1. Eds. D. R. Boone, R. W. Castenholz. 2-nd edition. New York: Springer, 2001. — P. 487193.
  270. Wolk C.P. Heterocyst formation / C.P. Wolk // Annual Review of Genetics. -1996.-Vol. 30.-P. 59−78.
  271. Wyatt J.T. Nitrogen fixation by Gloeocapsa / J.T. Wyatt, J.K.G. Silvey // Science. 1969. — Vol. 165. — No. 3896. — P. 908−913.
  272. Ybarra G.R. Effects of divalent metal cations and resistance mechanisms of the cyanobacterium Synechococcus sp. strain PCC 794 / G.R. Ybarra, R. Webb // Journal of Hazardous Substance Research. 1999. — Vol. 2. -P. 1−9.
  273. Young J.P.W. Phylogenetic classification of nitrogen-fixing organisms / J.P.W. Young // Biological Nitrogen Fixation. Eds. G. Stacey, H. J. Evans, R. H. Burris New York: Chapman and Hall, 1992. — P. 43−86.
  274. Zehr J. P. New nitrogen-fixing microorganisms detected in oligotrophic oceans by amplification of nitrogenase (nifil) genes / J.P. Zehr, M.T. Mellon, S. Zani // Applied and Environmental Microbiology. 1998. — Vol. 64. -No. 9.-P. 3444−3450.
  275. Zehr J. P. Phylogeny of cyanobacterial nifil genes: evolutionary implications and potential applications to natural assemblages / J.P. Zehr, M.T. Mellon, W.D. Hiorns//Microbiology UK.- 1997.-Vol. 143.-P. 1443−1450.
  276. Zehr J. P. Use of degenerate oligonucleotides for amplification of the nifil gene from the marine cyanobacterium Trichodesmium thiebautii / J.P. Zehr, L.A. McReynolds // Applied and Environmental Microbiology. 1989. -Vol. 55.-No. 10.-P. 2522−2526.
  277. Zobell C.E. The effect of solid surfaces upon bacterial activity / C.E. Zobell // Journal of Bacteriology. 1943. — Vol. 46. — No. 1. — P. 39−56.
  278. Zobell C.E. The influence of colid surfaces upon the physiological activities of bacteria in sea water / C.E. Zobell // Journal of Bacteriology. 1937. -Vol. 33.-P. 86.149
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!