Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением солей полигексаметилен-гуанидина

Диссертация: Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением солей полигексаметилен-гуанидина
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Основные положения работы доложены на научно-практических конференциях Научно-исследовательского медико-стоматологического института (НИМСИ при ГОУ ВПО МГМСУ, 2005, 2006, 2007 гг), на совместном заседании кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии, кафедры факультетской терапевтической стоматологии, кафедры пародонтологии и гериатрической стоматологии ГОУ ВПО МГМСУ и кафедры стоматологии ГОУ… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Микрофлора полости рта как источник инфицирования. Современное состояние вопроса инфекционного контроля в ортопедической стоматологии

    1.2. Пути инфицирования материалов в практике ортопедической стоматологии 18 1.3 .Препараты для химической стерилизации и дезинфекции 19 1.4. Методы химической стерилизации и дезинфекции в практике ортопедической стоматологии

    1.4.1. Очистка и. дезинфекция рабочего места стоматолога и окружающих поверхностей.

    1.4.2. Дезинфекция и стерилизация в стоматологической (зуботех-нической) лаборатории

    1.4.3. Дезифекция турбинных наконечников и других стоматологических инструментов и устройств, соединенных со стационарными воздушными и водными системами. 29 Резюме

    ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

    2.1. Исследуемые инструменты и материалы

    2.2. Методы микробиологического контроля эффективности дезинфекции и предстерилизационной очистки

    2.2.1. Методика проведения исследования для контроля эффектив- 34 ности дезинфекции стоматологических объектов

    2.2.2.Бактериологический метод исследования бесспоровых аэробных и факультативно-анаэробных бактерий

    2.2.3. Бактериологический метод исследования бесспоровых обли- ^ гатно-анаробных и микроаэрофильных бактерий

    2.2.4.Бактериологический метод исследования спорообразующих 36 бактерий

    2.3.5. Микологический метод исследования дрожжеподобных и ми-целиальных грибов

    2.3.6. Вирусологический метод эффективности контроля эффективности стерилизации 3g

    2.3. Определение влияния дезинфицирующих растворов на геометрические параметры слепков зубного ряда

    2.4. Характеристика изучаемых дезинфектантов

    2.4.1. «АДС-521»

    2.4.2. «Люмакс-Дентал»

    2.4.3. «Анавидин»

    2.4.4. «Анавидин-Комплит»

    2.5. Методы статистической обработки результатов исследования

    ГЛАВА 3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ МЕТОДИКИ ОБРАБОТКИ СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ ДЕЗИНФЕКТАНТОМ АНАВИДИН

    3.1. Изучение воздействия анавидина на штаммы бесспоровых фа- 48 культативно- и облигатно-анаэробных бактерий

    3.2. Изучение воздействия анавидина на штаммы спорообразующих факультативно — и облигатно- анаэробных бактерий

    3.3. Особенности химической стерилизации в отношении спорооб-4 разующих бацилл и собственно спор

    3.4. Изучение фунгицидной активности анавидина на штаммы ^ дрожжеподобных и мицелиальных грибов

    3.5. Изучение вирулицидной активности анавидина ^

    3.6. Изучение влияния дезинфицирующих средств на структуру поверхности и геометрические размеры слепков

    ГЛАВА 4. КЛИНИЧЕСКАЯ АПРОБАЦИЯ МЕТОДА ДЕЗИН- 74 ФЕКЦИИ СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ И СЛЕПКОВ ДЕЗИНФЕКТАНТОМ АНАВИДИН

    4.1. Оценка эффективности обработки стоматологических инстру- 74 ментов методом погружения в раствор анавидина после практической работы врача стоматолога-ортопеда

    4.2. Оцешса эффективности химической дезинфекции слепков зубного ряда методом погружения в раствор анавидина

    Резюме

    ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ И

    ЗАКЛЮЧЕНИЕ

    ВЫВОДЫ

Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением солей полигексаметилен-гуанидина (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования.

Инфекционному контролю в стоматологии уделяется большое внимание. Это связано с тем, что в полости рта представлено большое количество аэробных, факультативнои облигатно-анаэробных бактерий, грибов, многие из которых обладают рядом факторов патогенности (Олейник И.И. с соавт., 1991; 2000; Царев В. Н., Ушаков Р. В., 1992;2008; Backisch, Frahm, 1989 и др.). Кроме этого со слюной, десневой жидкостью и кровью в полость рта проникают вирусы, в том числе, вирусы иммунодефицита человека и гепатита. В связи с этим на стоматологическом приеме имеется повышенный риск передачи инфекции, в частности через инструменты, слепки и другие стоматологические изделия, контактирующие с полостью рта.

Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов (согласно требованиям Госсанэпиднадзора) является обязательным мероприятием.

В настоящее время в стоматологической практике широко применяется метод химической стерилизации изделий с использованием поверхностно-активных соединений. В частности, хорошо зарекомендовали себя в стоматологии дезинфектанты «Катамин АБ» или «ПВК-1», (ОАО «Синтез», Россия), «Аламинол» и «Бионол» (ГНЦ «НИОПИК»), «Окадез» (Норд-Ост, Россия), содержащие бензалкония хлорид из группы четвертичных аммониевых производных высокоактивный в отношении бактерий, грибов и вирусов (Остро-ухова А.А. с соавт., 2002; Камилов Р., 2004; Арутюнов С. Д., Царёв В. Н., Ост-роухова А.А., 2003). Однако при высокой степени загрязнения объектов стерилизации органическими примесями требуется использовать высокие концентрации растворов — 10% и более, что может оказывать отрицательное воздействие на некоторые виды инструментов и, особенно, на слепки зубного ряда при протезировании (Остроухова А.А., 2002, 2005; Дзиццоева, 2005).

Последнее связано, прежде всего, с тем, что в некоторых клинических ситуациях трудно выбрать уровень дезинфекции или провести грань последней со стерилизацией после анализа категорий риска для пациента.

Эффективность дезинфекции зависит от типа препарата, длительности обработки. Вместе с тем, рекомендованные средства имеют ряд недостатков, в частности являются токсическими веществами (формальдегид, глутаровый альдегид, фенол), обладают низкой активностью, что требует длительного воздействия препарата на объект. Многие дезинфектанты отрицательно влияют на линейные и объемные параметры слепков, вызывают коррозию материалов, способны вызывать аллергизацию персонала. В связи с этим разработка новых многокомпонентных дезинфекционных средств остается актуальной задачей.

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

.

Цель работы:

Повышение эффективности дезинфекции стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением препаратов фосфатных солей полигексаметитленгуанидина («Анавидин», «Анавидин-Комплит»).

Задачи.

1. Изучить качественный и количественный состав микрофлоры на поверхности инструментов, материалов, слепков и его изменение под влиянием солей полигесаметиленгуанидина.

2. Изучить влияние химической дезинфекции с применением известных многокомпонентных средств содержащих бигуаниды на возможные виды микробного загрязнения: аэробные и анаэробные бактерии грибы, вирусы.

3. Исследовать влияние дезинфектантов «Анавидин», «Анавидин-Комплит» на геометрические размеры и структуру поверхности слепочных материалов, качество поверхности инструментов.

4. Разработать методику дезинфекции стоматологических слепков с применением препаратов «Анавидин», «Анавидин-Комплит» на основе биту анидов нового поколения.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА.

В результате проведенного исследования впервые изучено изменение качественного и количественного состава микрофлоры из различных участков стоматологических слепков, инструментов и материалов используемых для изготовления различных конструкций протезов под влиянием солей по-лигесаметиленгуанидина.

Впервые проведено сравнительное изучение активности дезинфекционных средств на основе биту анидов «Анавидина», «Анавидин-Комплит а» на резидентную и транзиторную микрофлору полости рта.

Впервые проведено изучение влияния солей полигесаметиленгуанидина на различные слепочные материалы, используемые в ортопедической стоматологии.

Впервые изучена антибактериальная, фунгуцидная и вирулоцидная активность новых дезинфекционного средств «Анавидин», «Анавидин-Комплит» в условиях ортопедической стоматологической клиники.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ.

Определены режимы дезинфекции стоматологических инструментов и материалов с использованием отечественных дезинфекционных средств на основе солей полигесаметилен-гуанидина — «Анавидина», «Анавидин-Комплита».

Разработана схема проведения дезинфекции стоматологических слепков препаратами «Анавидин», «Анавидин-Комплит».

Предложены методики микробиологического контроля эффективности химической дезинфекции с помощью производных полигесаметилен-гуанидина.

ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

1. Под влиянием растворов солей полигесаметиленгуанидина происходит изменение состава микрофлоры на поверхности инструментов и стоматологических слепков в зависимости от концентрации препарата и экспозиции.

2. В рабочих концентрациях препараты на основе полигесаметиленгуанидина «Анавидин», «Анавидин-Комплит» обладают выраженным антимикробным действием в отношении референтных и клинических штаммов микроорганизмов.

3. Концентрации рабочих растворов, режимы дезинфекции и предстери-лизационной обработки инструментов и стоматологических слепков препаратами на основе солей полигесаметиленгуанидина «Анавидин», «Анавидин-Комплит».

4. В рабочих концентрациях препараты на основе полигесаметиленгуанидина Анавидин и Анавидин-комплит обладают выраженным антибактериальным действием в отношении референтных и клинических штаммов бактерий, включая кислотоустойчивые и спорообразующие виды, что позволяет рекомендовать их для дезинфекции высокого уровня и химической стерилизации стоматологических инструментов.

5. Концентрации рабочих растворов, режимы дезинфекции и предстери-лизационной обработки стоматологических инструментов и слепков зубного ряда препаратами Анавидин и Анавидин-комплит.

ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Полученные результаты клинических и микробиологических методов исследования используются в учебном процессе на кафедре микробиологии, вирусологии, иммунологии ГОУ ВПО МГМСУ Росздрава, кафедре стоматологии ГОУ ДПО РМАПО Росздрава, в лечебном процессе в стоматологической поликлиники № 11 г. Москвы.

ЛИЧНОЕ УЧАСТИЕ АВТОРА.

Автор лично производила обработку инструментов, забор материала для микробиологических исследований, принимала участие в проведении микробиологических исследований, проводила изучение геометрических параметров слепков, проводила анализ и статистическую обработку материала, написание диссертационной работы.

ПУБЛИКАЦИИ.

По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, в том числе 1 — в журнале, рекомендованном ВАК Министерства образования и науки РФ.

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ.

Основные положения работы доложены на научно-практических конференциях Научно-исследовательского медико-стоматологического института (НИМСИ при ГОУ ВПО МГМСУ, 2005, 2006, 2007 гг), на совместном заседании кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии, кафедры факультетской терапевтической стоматологии, кафедры пародонтологии и гериатрической стоматологии ГОУ ВПО МГМСУ и кафедры стоматологии ГОУ ДПО РМАПО Росздрава.

ОБЪЕМ И СТРУКТУРА ДИССЕРТАЦИИ.

ВЫВОДЫ.

1. В результате использования стоматологических инструментов во время работы врача-стоматолога с пациентом происходит их контаминация микробной флорой полости рта в высокой степени (106 — 108 КОЕ/см2). Многие представители микроорганизмовEnterococcus faecalis, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus aureus, Streptococcus sanguis, Klebsiella, Bacillus, грибы Candida и Aspergillus, а также вирусы — длительное время (от 48 часов до 5 суток) сохраняют свою жизнеспособность.

2. Растворы препаратов на основе полигексаметилен-гуанидина (Анавидин и Анавидин-Комплит) оказывают выраженное бактерицидное, спороцидное, фунгицидное и вирулицидное действие на микробную флору в эксперименте in vitro, которое зависит от концентрации раствора и экспозиции.

3. Дезинфектанты Анавидин и Анавидин-Комплит не оказывают отрицательного влияния на геометрические параметры и структуру слепочных материалов, качество поверхности материалов и инструментов, обладает выраженным дезинфицирующим эффектом в отношении микрофлоры, контаминирующей слепки, в концентрациях безопасных для обрабатываемых изделий.

4. При модельных экспериментах по обработке искусственно контаминированных инструментов и контаминированных при работе стоматолога-ортопеда с пациентов обосновано выделение нескольких режимов обработки инструментов методом погружения в 1% и 0,5% растворы дезинфектанта.

5. Применение ультразвуковой обработки совместно с химической в растворе Анавидина методом погружения существенно повышает эффективность деконтаминации и позволяет сократить экспозицию стерилизуемых объектов до 20 минут.

Практические рекомендации.

1. Для дезинфекции стоматологических инструментов, перед проведением стерилизации, оптимальным режимом при использовании препаратов Анавндин и Анавидин-Комплит" является погружение изделия на 15 минут в 0,5% раствор (по дезинфектанту), а для холодной стерилизации в 0,5% раствор на 25−30 минут или 1% раствор — 20 минут. Представляется целесообразным комбинировать химическую обработку дезинфектантом Анавидин в течение с ультразвуковой, что сокращает время обработки на 5 минут.

2. Схема проведения дезинфекции стоматологических слепков препаратом Анавидин-Комплит 20 минут в 0,5% растворе или 15 минут — в 1% растворе, после чего ополаскивание проточной водой в течение 1−2 минут.

3. Предложенные в работе методики микробиологического контроля эффективности химической дезинфекции с помощью производных полигесаметилен-гуанидина могут быть рекомендованы для проведения испытаний других препаратов этой группы и текущего микробиологического контроля эффективности дезинфекции/стерилизации.

Показать весь текст

Список литературы

  1. B.C., Тарасенко С. В., Трухина Г. М., Лакшин A.M. Внутрибольничные инфекции в хирургической стоматологии. Москва. -Медицина. -2002.-255с.
  2. Л. П., Маневич Л. А., Федорова Л. С. Бактерицидная активность некоторых зарубежных препаратов/Юсновные направления дезинфекционного дела.— М., 1987.— С. 9−12.
  3. С.Д., Царёв В. Н., Остроухова А. А. Основы применения современных методов стерилизации и дезинфекции в стоматологической практике. Учебное пособие. — М., ВУМЦ. — 2003. — 74с.
  4. В.Н., Иорданишвили А. К., Ковалевский A.M. Практическая периодонтология.-СПб.: Питер-пресс, 1995.-272с.
  5. В. И, Арефьева Л. П., Лиманова В. Е. и др. Основные направления исследований в области создания дезинфицирующих препаратов//Актуальные вопросы совершенствования дезинфекционных и стерилизационных мероприятий. Ч. 2.— М. 1990,—С. 137−141.
  6. В. И., Волков Ю. П. Основные направления исследований в разработке дезинфицирующих средств//Научные основы дезинфекции и стерилизации.— М., 1991.— С. 13−18.
  7. Т.А. Вакцинопрофилактика гепатита В: успехи и проблемы //Вакцинация.-2001.-№ 3 (15) С.4−5.
  8. Большая Российская энциклопедия лекарственных средств т. П М.,"Ремедиум", 2001. С 126−148.
  9. Ю.Боровский Е. В., Леонтьев В. К. Биология полости рта.-М.: Медицинская книга: Н. Новгород: НГМД, 2001. С-304.
  10. П.Дмитриева JI.A., Романов А. Е., Царев В. Н. и др. Сравнительная характеристика антибактериальной активности новых антисептиков и перспективы их использования в стоматологической практике / Стоматология, 1997, Том 76, № 2, С. 26 28.
  11. JI.A., Романов А. Е., Царёв В. Н. Клинические и микробиологические аспекты применения реставрационных материалов и антисептиков в комплексном лечении заболеваний пародонта. Москва.-МЕДпресс. -2002.-94с.
  12. Р.Камилов. Химическая дезинфекция стоматологических оттисков с применением нового дезинфектанта «Окадез М»: автореферат дисс.. к.м.н.-М., 2004.-25с.
  13. М.С., Музыченко Н. И., Петраш Н.В Применение ингибиторов ферментов, антисептической полимерной пленки и антимикробных препаратов в профилактике одонтогенной инфекции // Профилактика и лечение одонтогенных инфекций (труды ЦНИИС), М., 1989.-180с
  14. А.И., Цепов JI.M. Практическая терапевтическая стоматология. -СПб. -2001. -388с.
  15. Л.Г., Федорова Л. С., Цвирова И. М., Белова А. С. Вирулицидная, туберкулоцидная и фунгицидная активность новых средств из группы поверхностно-активных веществ.-Дезинфекционное дело.-1998.-№ 3.-С. 1−4.
  16. Л.Г., Цвирова И. М., Рысина Т. З., Белова А. С. Методические указания по применению средства «Саноджин» производства фирмы «Пуросан АВ» (Швеция) для целей дезинфекции.-М.Д999.-12С.
  17. Санитарно-гигиенический режим, дезинфекция и стерилизация в стоматологических учреждениях. Издание 3-е. // под ред. А. А. Остроуховой. -М. 2006. — 51с.
  18. Санитарно-гигиенические требования к организации профилактики внутрибольничных инфекций в учреждениях стоматологического профиля /Под ред. проф. С. И. Абакарова. Пособие для врачей М. -2003.-44с.
  19. МС. Стерилизация слепков в ортопедической стоматологии с помощью четвертичных аммониевых производных. Автореф. дис. канд. мед.наук. ML -2001 -23 с.
  20. Слюна:ее значение для здоровья и роль при заболеваниях //l.Dental.J.-1992.-Vol.42.-P.291−304.
  21. Р.В., Царев В. Н. Этиология и этиотропная терапия неспецифических инфекций в стоматологии.-Иркутск, 1997.-116с.
  22. Р.В., Царёв В. Н., Абакарова Д. С. Духаджян Г. А. Применение адгезивных двухслойных стоматологических плёнок «Диплен-Дента» в стоматологии М.-2002.-25с
  23. Р.В., Царев В. Н., Завадский Р. В. Профилактика послеоперационных осложнений в хирургической стоматологии методом подслизистой .- Сборник научных трудов международной конференции «Копейкинский байкальские чтения» 28−29 июня.-2001с. 179−180
  24. Р.В., Царев В. Н., Лопырев В. А. и др. Антибактериальная активность антисептиков, применяемых в стоматологии// Журнал инфекционной патологии, 1996.-№ 2.-С.23−25.
  25. Р.В., Царев В. Н., Сердюк Е. Н., Ласточкин А. А. Профилактика инфекционно-воспалительных осложнений в хирургической стоматологии/Учебное пособие.-М.-2003.- 40 с.
  26. Р.В., Царев В.Н.Микрофлора полости рта и ее значение в развитии стоматологических заболеваний// Стоматология для всех, 1998.-№ 3.-С.22−24.
  27. Ушаков Р.В., Царев В. Н. Местное антимикробное лечение в стоматологии.-изд.Медиапресс,-2003 .-152с
  28. Т.В. Клинико-лабораторное обоснование применения нитазола в комплексном лечении хронического генерализованного пародонтита: Автор еф.дисс. к.м.н./ММСИ.-М., 1992.-20с.
  29. JI. С., Арефьева JI. И., Путинцева JI. С. и др. Современные средства дезинфекции и дезинсекции. Характеристика, назначение, перспективы.— М., 1991.— 51 с.
  30. Э., Климек Й., Аттин Т. Терапевтическая стоматология/пер.с нем.- Urban&Schwarzenberg.-l999.-409 с.
  31. В.Н., Ушаков Р. В., Давыдова М. М. Лекции по клинической микробиологии для студентов стоматологических факультетов. -Иркутск, 1996.-82с.
  32. В.Н., Ушаков Р. В., Ласточкин А. А. Принципы профилактики инфекционно-воспалительных осложнений в стоматологической практике. 5-я конференция «Современные проблемы антимикробной химиотерапии». Москва. 2003 г. С.54−55
  33. В.Н., Чувилкин В. И., Мегрелишвили Н. А., Романов А. Е. Особенности влияния хлоргексидин-содержащих препаратов на состояние микробиоценоза полости рта у больных пародонтитом. 2003. № 2 (27). -С.49−53.
  34. Царёв В.Н., Иванов С. Ю., Чувилкин В. И, Акылбеков Д. И. Результатыизучения влияния различных лекарственных форм хлоргексидина на клеточный фактор воспаления in vitro Тр. Российск. Нац. Контр. «Человек и лекарство» М. -2002. -С.718
  35. Энциклопедия лекарств. Регистр лекарственных средств России (РЛС), 2003.
  36. Т.Н., Пантелеева Л. Г. Содержание микроорганизмов на оттисках после дезинфекции их методом погружения в растворы гипохлорита натрия//Стоматология, 1998.-№ 1.-С.48−49
  37. Т.Н., Щербаков А. С. Обеззараживание оттисков с целью профилактики внутриболъничной инфекции. Гипохлорит натрия как дезинфицирующее средство //Стоматология. 1998.-№ 3.-С.41−43.
  38. Abello R, Buitragu С, Prate CM, et al. Effect of a mouthrinse containing triclosan and a copolymer on plaque formation in the absence of oral hygiene. Am J Dent 1990−3:S57.
  39. Abiko Y. Passive immunization against dental caries and periodontal disease: development of recombinant and human monoclonal antibodies. Crit Rev Oral Biol Med 2000−11(2):140−58
  40. Adapted from Marsh and Bradshaw. Physiological approaches to the control of oral biofilms. Adv Dent Res 1997−11: 176−185.
  41. AlmstahI A, Wikstrom M, Stenberg I, Jakobsson A, Fagerberg-Mohlin B. Oral microbiota associated with hyposalivation of different origins. Oral Microbiol Immunol. 2003 Feb- 18(1): 1−8.
  42. Almstahl A, Wikstrom M, Kroneld U. Microflora in oral ecosystems in primary Sjogren’s syndrome.Rheumatol. 2001 May-28(5):1007−13.
  43. A1-Mubarak S, Ciancio S, Aljada A, Mohanty P, Ross C, Dandona P. Comparative evaluation of adjunctive oral irrigation in diabetics. J Clin Periodontol. 2002 Apr-29(4):295−300.
  44. Anderson MH. A review of the efficacy of chlorhexidine on dental caries and the caries infection. J Calif Dent Assoc. 2003 Mar-31(3):211−4
  45. Ansai T, Yamamoto E, Awano S, Yu W, Turner AJ, Takehara T. Effects of periodontopathic bacteria on the expression of endothelin-1 in gingival epithelial cells in adult periodontitis. Clin Sci (Lond) 2002 Sep 1−103 Suppl 1:327S-31S
  46. Awano S, Gohara K, Kurihara E, Ansai T, Takehara T. The relationship between the presence of periodontopathogenic bacteria in saliva and halitosis.Int Dent J 2002 Jun-52 Suppl 3:212−6
  47. Baehni PC, Takeuchi Y. Anti-plaque agents in the prevention of biofilm-associated oral diseases. Oral Dis. 2003−9 Suppl 1:23−9.
  48. Bagga BSR, Murphy RA, Anderson AW, Punwani I. Contamination of dental unit cooling water with oral microorganisms and its prevention. J Am Dent Assoc 1984- 109:712
  49. Block SS, ed. Disinfection, sterilization, and preservation, 4th ed. Philadelphia: Lea & Febiger, 1991:676−95
  50. Boylan R., Goldstein R, Schulman A. Evaluation of an ultraviolet disinfection unit//J. prosthet. Dent. 1987. — Vol.58. — P. 650−654.
  51. Bearfield C, Davenport ES, Sivapathasundaram V, Allaker RP. Possible association between amniotic fluid micro-organism infection and microflora in the mouth. В JOG. 2002 May-109(5):527−33.
  52. Bosch JA, Turkenburg M, Nazmi K, Veerman EC, de Geus EJ, Nieuw Amerongen AV. Stress as a determinant of saliva-mediated adherence and coadherence of oral and nonoral microorganisms. Psychosom Med. 2003 Jul-Aug-65(4):604−12.
  53. Brading MG, Marsh PD. The oral environment: the challenge for antimicrobials in oral care products. Int Dent J. 2003 Dec-53(6 Suppl l):353−62.
  54. Bradshaw DJ, Marsh PD, Watson GK, Allison С Role of Fusobacterium nucleatum and coaggregation in anaerobe survival in planktonic and biofilm oral microbial communities during aeration. Infect Immun. 1998 Oct-66(l 0):4729−32.
  55. Brook I.J. Isolation of capsulate anaerobic bacteria from orofacial abscesses// Med Microbiol.-1986.-Vol.22.-P. 171 -174
  56. Brook, Frazier E.H. Aerobic and anaerobic bacteriology of wounds and cutaneus abscesses//Arch Surg.-1990.-Vol.125.-P. 1445−1451.
  57. Gjermo P. Chlorhexidine and related compounds. J Dent Res 1989−68(Spec. Issue): 1602.
  58. Marvniak J, Dark W, Walker CB, et al. The effect of three mouthrinses on plaque and gingivitis development. J Clin Periodontol 1992- 19:19.
  59. Gomes, Shakim ML, Ripa LW. Effect of rinsing with 1.5% hydrogen peroxide (Peroxyl) on gingivitis and plaque. Clin Prevent Dent 1984−6:21.
  60. Wennstrom J, Lindhe J. Effect of hydrogen peroxide on developing plaque and gingivitis in man. J Clin Periodontol 1979 -6: 115.
  61. Cash R. Trends in sterilisation and disinfection procedures in orthodontic offices // Amer. J. Orthodont. 1990. — Vol. 98, № 4.. p. 292−300.
  62. Council on Dental Therapeutics and Council on Dental aterials, Instruments, and Equipment. Monograph on Safety and Infection Control. 1st ed. Chicago: American Dental Association- 1990
  63. Crawford JJ, Broderius RK. Control of cross infection risks in the dental operatory: prevention oFwSer retraction by bur cooling spray systems. J Am Dent Assoc 1988- 116:685
  64. Catuogno C, Jones MN. The antibacterial properties of solid supported liposomes on Streptococcus oralis biofilms. Int J Pharm. 2003 May 12−257(l-2):125−40
  65. Ciancio SG, Mather ML, Zambon J, Reynolds HS. Effect of a chemotherapeutic agent delivered by an oral irrigation device on plaque, gingivitis, and subgingival flora. JPeriodontol 1989:6:310−315.
  66. Cutler CW, Stanford TW, Abraham C, Cederberg RA, Boardman TJ, Ross C. Clinical benefits of oral irrigation for periodontitis are related to reduction of pro-inflammatory cytokine levels and plaque. J Clin Periodontol. 2000 Feb-27(2): 134−43.
  67. Cvitkovitch DG. Genetic competence and transformation in oral streptococci. Crit Rev Oral Biol Med. 2001- 12(3):217−43.81. da Silva RM, Lingaas PS, Geiran O, Tronstad L, Olsen I. Multiple bacteria in aortic aneurysms. J Vase Surg. 2003 Dec-38(6): 1384−9.
  68. Daneshmand N, Jorgensen MG, Nowzari H, Morrison JL, Slots J. Initial effect of controlled release chlorhexidine on subgingival microorganisms. J Periodontal Res 2002 Oct-37(5):375−9
  69. Darout IA, Albandar JM, Skaug N, Ali RW. Salivary microbiota levels in relation to periodontal status, experience of caries and miswalc use in Sudanese adults. J Clin Periodontol 2002 May-29(5):411−20
  70. Darout LA, Albandar JM, Skaug N, Ali RW. Salivary microbiota levels in relation to periodontal status, experience of caries and miswak use in Sudanese adults. J Clin Periodontol 2002 May-29(5):411−20
  71. Davies RM. The rational use of oral care products in the elderly. Clin Oral Investig. 2003 Oct 28 Epub ahead of print.
  72. Desvarieux M. Periodontal disease, race, and vascular disease. Compend Contin Educ Dent 2001 Jul-22(3):34−41
  73. Desvarieux M. Periodontal disease, race, and vascular disease. Compend Contin Educ Dent 2001 Jul-22(3):34−41
  74. Dogan S, Gunay H, Leyhausen G, Geurtsen W. Effects of low-concentrated chlorhexidine on growth of Streptococcus sobrinus and primary human gingival fibroblasts. Clin Oral Investig. 2003 Dec-7(4):212−6. Epub 2003 Aug22.
  75. DuPont GA. Understanding dental plaque- biofilm dynamics. J Vet Dent 1997−14: 91−94. Marsh PD, Bradshaw DJ. Dental plaque as a biofilm. J Industrial Microbiology 1995−15: 169−175.
  76. Favero MS, Bond WW. Chemical disinfection of medical and surgical materials. In: Block SS, ed. Disinfection, sterilization, and preservation, 4th ed. Philadelphia: Lea & Febiger, 1991:617−41. 38.
  77. Fine DH, Letizia J, Mandel Ш. The effect of rinsing with Listerine antiseptic on the properties of developing plaque. J Clin Periodontol 1985:12:660.
  78. Frascella JA, Fernandez P, Gilbert RD, Cugini M. A randomized, clinical evaluation of the safety and efficacy of a novel oral irrigator. Am J Dent. 2000 Apr-13(2):55−8
  79. Geerts SO, Nys M, De MP, Charpentier J, Albert A, Legrand V, Rompen EH. Systemic release of endotoxins induced by gentle mastication: association with periodontitis severity. J Periodontol 2002 Jan-73(l):73−8
  80. Geerts SO, Nys M, De MP, Charpentier J, Albert A, Legrand V, Rompen EH. Systemic release of endotoxins induced by gentle mastication: association with periodontitis severity. J Periodontal 2002 Jan-73(l):73−8
  81. Gerardu VA, Buijs MJ, ten Cate JM, van Loveren C. The effect of a single application of 40% chlorhexidine varnish on the numbers of salivary mutans streptococci and acidogenicity of dental plaque. Caries Res. 2003 Sep-Oct-37(5):369−73.
  82. Gilbert P, McBain AJ. Literature-based evaluation of the potential risks associated with impregnation of medical devices and implants with triclosan. Surg Infect (Larchmt). 2002−3 Suppl l: S55−63.
  83. Grossner-Schreiber B, Griepentrog M, Haustein I, Muller WD, Lange KP, Briedigkeit H, Gobel UB. Plaque formation on surface modified dental implants. An in vitro study. Clin Oral Implants Res. 2001 Dec-12(6):543−51.
  84. Guan YH, Lath DL, Graaf T, Lilley IH, Brook AH. Moderation of oral bacterial adhesion on saliva-coated hydroxyapatite by polyaspartate. J Appl Microbiol. 2003−94(3):456−61.
  85. Haffajee AD, Socransky SS. Evidence of bacterial etiology: a historical perspective. Periodontology 2000 1994−5: 7−25.
  86. Hagewald S, Bernimoulin JP, Kottgen E, Kage A. Salivary IgA subclasses and bacteria-reactive IgA in patients with aggressive periodontitis. J Periodontal Res 2002 Oct-37(5):333−9
  87. Han YW, Shi W, Huang GT, Kinder Haake S, Park NH, Kuramitsu H, Genco RJ. Interactions between periodontal bacteria and human oral epithelial cells: Fusobacterium nucleatum adheres to and invades epithelial cells. Infect Immun. 2000 Jun-68(6):3140−6.
  88. Harper DS, Gordon J, Fine J, Hoviiaras C. Effect of subgingival irrigation with an antiseptic mouthrinse on periodontal pocket microflora. J Dent Res 1991:70:474.
  89. Hoang TQ. The use of triclosan in supportive treatment of gingivitis and periodontitis. J West Soc Periodontol Periodontal Abstr. 2000−48(4): 101−8.
  90. Houle MA, Grenier D, Plamondon P, Nakayama K. The collagenase activity of Porphyromonas gingivalis is due to Arg-gingipain. FEMS Microbiol Lett. 2003 Apr 25−221(2): 181−5.
  91. Houle MA, Grenier D, Plamondon P, Nakayama K. The collagenase activity of Porphyromonas gingivalis is due to Arg-gingipain. FEMS Microbiol Lett. 2003 Apr 25−221(2):181−5.
  92. Hunt Gerardo S, Yoder SC, Citron DM, Goldstein EJ, Haake SK. Sequence conservation and distribution of the fusobacterial immunosuppressive protein gene, fipA. Oral Microbiol Immunol 2002 0ct-17(5):315−20
  93. Jacobs, J. A. The «Streptococcus milleri» group: Streptococcus anginosus, Streptococcus constellatus, and Streptococcus intermedius. Rev. Med. Microbiol. 1997. 8: 73−80.
  94. Johansson A, Hanstrom L, Kalfas S. Inhibition of Actinobacillus actinomycetemcomitans leukotoxicity by bacteria from the subgingival flora. Oral Microbiol Immunol. 2000 Aug- 15(4):218−25
  95. Johnson KE, Sanders JJ, Gellin RG, Palesch YY. The effectiveness of a magnetized water oral irrigator (Hydro Floss) on plaque, calculus and gingival health. J Clin Periodontol. 1998 Apr-25(4):316−21.
  96. Kato Т., lijima !!., Ishihara K. etal. Antibacterial effects of Listerinc on oral bacteria. 1990, Nov. — P. 301−307.
  97. Kawashima M, Hanada N, Hamada T, Tagami J, Senpuku H Realtime interaction of oral streptococci with human salivary components.. Oral Microbiol Immunol. 2003 Aug- 18(4):220−5.
  98. Kawashima Y, Ishikawa I. Simple and rapid detection of serum antibody to periodontopathic bacteria by dot blotting. J Periodontal Res 2002 Jun-37(3):223−9
  99. Kim SS, Kim S, Kim E, Hyun B, Kim KK, Lee BJ. Synergistic inhibitory effect of cationic peptides and antimicrobial agents on the growth of oral streptococci. Caries Res. 2003 Nov-Dec-37(6):425−30.
  100. Konig J, Storcks V, Kocher T, Bossmann K, Plagmann HC. Anti-plaque effect of tempered 0.2% chlorhexidine rinse: an in vivo study. J Clin Periodontol. 2002 Mar-29(3):207−10
  101. Kononen E Development of oral bacterial flora in young children. Ann Med. 2000 Mar-32(2): 107−12.
  102. Leonhardt A, Olsson J, Dahlen G. Bacterial colonization on titanium, hydroxyapatite, and amalgam surfaces in vivo. Dent Res. 1995 Sep-74(9): 1607−12
  103. Lewis DL, Вое RK. Cross infection risks associated with current procedures for using highspeed dental handpieces. J Clin Microbiol 1992
  104. Lucas GQ, Lucas ON. Preventive action of short-term and long-term chlorhexidine rinses. Acta Odontol Latinoam. 1999−12(l):45−58
  105. Luppens SB, Rombouts FM, Abee T. The effect of the growth phase of Staphylococcus aureus on resistance to disinfectants in a suspension test. J Food Prot 2002 Jan-65(l): 124−9
  106. Mandel ID. Oral infections: impact on human health, well-being, and health-care costs Compend Contin Educ Dent 2002 May-23(5):403−6, 408.
  107. Mandel ID. Oral infections: impact on human health, well-being, and health-care costs Compend Contin Educ Dent 2002 May-23(5):403−6, 408, 410 passim- quiz 414
  108. Marchant S, Brailsford SR, Twomey AC, Roberts GJ, Beighton D. The predominant microflora of nursing caries lesions. Caries Res. 2001 Nov-Dec-35(6):397−406.
  109. Marsh PD Plaque as a biofilm: pharmacological principles of drug delivery and action in the sub- and supragingival environment. Oral Dis. 2003 -9 Suppl 1:16−22.
  110. Marsh PD. Are dental diseases examples of ecological catastrophes? Microbiology. 2003 Feb-149(Pt 2):279−94.
  111. McBain AJ, Bartolo RG, Catrenich CE, Charbonneau D, Ledder RG, Gilbert P. Effects of triclosan-containing rinse on the dynamics and antimicrobial susceptibility of in vitro plaque ecosystems. Antimicrob Agents Chemother. 2003 Nov-47(ll):3531−8.
  112. McBain AJ, Bartolo RG, Catrenich CE, Charbonneau D, Ledder RG, Gilbert P. Effects of triclosan-containing rinse on the dynamics and antimicrobial susceptibility of in vitro plaque ecosystems. Antimicrob Agents Chemother. 2003 Nov-47(ll):3531−8.
  113. Mikx FH, Renggli HH. How sensible are bacteriological tests in periodontology? Ned Tijdschr Tandheelkd 1994 Dec-101(12):484−8
  114. Mombelli A, Schmid B, Rutar A, Lang NP. Local antibiotic therapy guided by microbiological diagnosis. J Clin Periodontol 2002 Aug-29(8):743−9
  115. Myers L.L., Shoop O.S., Colline J.E. Rabbit model to evaluate enterovirulence of Bacteroides fragilis//J.Clin.Microbiol.-1990.-Vol.-28.-P. 1658−1660.
  116. Newman HN. Periodontal pocket irrigation as adjunctive treatment. Curr Opin Periodontol. 1997−4:41−50
  117. O’Reilly M. Oral care of the critically ill: a review of the literature and guidelines for practice. Aust Crit Care. 2003 Aug-16(3):101−10.
  118. Pavarina AC, Pizzolitto AC, Machado AL, Vergani CE, Giampaolo ET. An infection control protocol: effectiveness of immersion solutions to reduce the microbial growth on dental prostheses. J Oral Rehabil. 2003 May-30(5):532−6.
  119. Pavarina AC, Pizzolitto AC, Machado AL, Vergani CE, Giampaolo ET. An infection control protocol: effectiveness of immersion solutions to reduce the microbial growth on dental prostheses. J Oral Rehabil. 2003 May-30(5):532−6.
  120. Piscitelli, S. C., J. Shwed, P. Schreckenberger, and L. H. Danziger. Streptococcus milleri group: renewed interest in an elusive pathogen. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 199 211: 491−498
  121. Pistorius A, Willershausen B, Steinmeier EM, Kreislert M. Efficacy of subgingival irrigation using herbal extracts on gingival inflammation. J Periodontol. 2003 May-74(5):616−22.
  122. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M. In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003−53(3): 182−7.
  123. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M. In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003−53(3): 182−7
  124. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M. In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003−53(3): 182−7.
  125. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M. In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003−53(3): 182−7.
  126. Reuter G. The Lactobacillus and Bifidobacterium microflora of the human intestine: composition and succession. Curr Issues Intest Microbiol. 2001 Sep-2(2):43−53.
  127. Roldan S, Herrera D, Sanz M. Biofilms and the tongue: therapeutical approaches for the control of halitosis. Clin Oral Investig. 2003 Dec-7(4): 189−97
  128. Sbordone L, Bortolaia C. Oral microbial biofilms and plaque-related diseases: microbial communities and their role in the shift from oral health to disease. Clin Oral Investig. 2003 Dec-7(4):181−8. Epub 2003 Nov 04.
  129. Scannapieco FA, Bush RB, Paju S. Associations between periodontal disease and risk for nosocomial bacterial pneumonia and chronic obstructive pulmonary disease. A systematic review. Ann Periodontol. 2003 Dec-8(l):54−69
  130. Scannapieco, F. A. Saliva-bacterium interactions in oral microbial ecology. Crit. Rev. Oral Biol. Med. 1994.-5:203−248
  131. Sciotti, M. A., I. Yamodo, J. P. Klein, and J. A. Ogier. The N-terminal half part of the oral streptococcal antigen I/IIf contains two distinct binding domains. FEMS Microbiol. Lett. 1997.153: 439−445
  132. Shay К Infectious complications of dental and periodontal diseases in the elderly population. Clin Infect Dis 2002 May 1−34(9): 1215−23
  133. Shay K. Infectious complications of dental and periodontal diseases in the elderly population. Clin Infect Dis 2002 May l-34(9):1215−23
  134. Sheen S, Eisenburger M, Addy M. Effect of toothpaste on the plaque inhibitory properties of a cetylpyridinium chloride mouth rinse. Surg Infect (Larchmt). 2001 Spring-2(l):5−18.
  135. Shiltitoe E.J. Caffesse R.G. The amj viral spectrum of Listerme antiseptic//Oral Suig. Oral Med. OralPathol, OralRadiol. Endod. -1995, Apr. p. 442−448.
  136. Sjostrom S, Kalfas S. Tissue necrosis after subgingival irrigation with fluoride solution. J Clin Periodontal. 1999 Apr-26(4):257−60.
  137. Slavkin HC. Biofilms, microbial ecology and Antoni Van Leeuwenhoek. J Am Dent Assoc 1997−128: 492−495.
  138. Slomiany B, Slomiany A Porphyromonas gingivalis lipopolysaccharide interferes with salivary mucin synthesis through inducible nitric oxide synthase activation by ERK and p38 kinase. Biochem Biophys Res Commun 2002 Oct 11−297(5): 1149
  139. Socransky SS, Smith C, Haffajee AD. Subgingival microbial profiles in refractory periodontal disease. J Clin Periodontol 2002 Mar-29(3):260−8
  140. Sorsblom B, Sarkiala-Kessel E, Kanervo A, Vaisanen ML, Helander M, Jousimies-Somer H. Characterisation of aerobic gram-negative bacteria from subgingival sites of dogs—potential bite wound pathogens. J Med Microbiol 2002 Mar-51(3):207−20
  141. Sreenivasan P, Gaffar A. Antiplaque biocides and bacterial resistance: a review. J Clin Periodontol. 2002 Nov-29(ll):965−74.
  142. Sreenivasan P. The effects of a triclosan/copolymer dentifrice on oral bacteria including those producing hydrogen sulfide. Eur J Oral Sci. 2003 Jun-lll (3):223−7.
  143. Stephen KW, Saxton CA, Jones CL, et al. Control of gingivitis and calculus by a dentifrice containing a zinc salt and triclosan. J Periodontol 1990−61:674.
  144. Suci PA, Tyler В J. A method for discrimination of subpopulations of Candida albicans biofilm cells that exhibit relative levels of phenotypic resistance to chlorhexidine. J Microbiol Methods. 2003 Jun-53(3):313−25.
  145. Sullivan A, Wretlind B, Nord CE Will triclosan in toothpaste select for resistant oral streptococci? Clin Microbiol Infect. 2003 Apr-9(4):306−9
  146. Sumi Y, Miura H, Sunakawa M, Michiwaki Y, Sakagami N. Colonization of denture plaque by respiratory pathogens in dependent elderly. Gerodontology. 2002 Jul-19(l):25−9.
  147. Svatun B, Saxton CA, Rolla G. Six-month study of the effect of a dentifrice containing zinc citrate and triclosan on plaque, gingival health, and calculus. Scand J Dent Res 1990−98:301.
  148. Vitkov L, Hannig M, Krautgartner WD, Fuchs K. Bacterial adhesion to sulcular epithelium in periodontitis. FEMS Microbiol Lett 2002 Jun 4−211(2):239−46
  149. Walsh TF, Unsal E, Davis LG, Yilmaz O. The effect of irrigation with chlorhexidine or saline on plaque vitality. J Clin Periodontol. 1995 Mar-22(3):262−4.
  150. Willcox, M. D., C. Y. Loo, D. W. Harty, and K. W. Knox. Fibronectin binding by Streptococcus milleri group strains and partial characterisation of the fibronectin receptor of Streptococcus anginosus F4. Microb. Pathog. 1995 19: 129−137.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!