Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Биотехнологические основы повышения эффективности воспроизводства исходного материала в оригинальном семеноводстве картофеля

Диссертация: Биотехнологические основы повышения эффективности воспроизводства исходного материала в оригинальном семеноводстве картофеля
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Основные положения диссертации представлены: на I Всероссийском съезде по защите растений (С.-Петербург, 1995), на Международном семинаре по использованию генетических ресурсов С1Р в селекции и семеноводстве картофеля (Коренево, 1999), на Международной научно-практической конференции, посвященной 90-летию И. И. Адамова (Минск, 2000), на НТС секции земледелия и растениеводства МСХ РФ (Москва… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Материал, методика и условия проведения исследований
  • Глава 2. Совершенствование технологического процесса воспроизводства оздоровленных исходных растений
    • 2. 1. Обоснование стратегии мероприятий по воспроизводству оздоровленного исходного материала
    • 2. 2. Формирование и поддерживание коллекции оздоровленных сортообразцов
    • 2. 3. Оптимизация схемы получения исходных микрорастений для ускоренного размножения новых перспективных сортов и гибридов картофеля
  • Глава 3. Разработка биотехнологических приемов размножения оздоровленного исходного материала
    • 3. 1. Использование регуляторов роста нового поколения при клональном микроразмножении, трансплантации и полевом культивировании исходного материала в различных регионах Российской Федерации
    • 3. 2. Нестерильное размножение исходных микрорастений с использованием гидропонных и ионитопонных биотехнических комплексов
    • 3. 3. Применение нанопродуктов с геропротекторными свойствами (ионов Скулачева) в оригинальном семеноводстве картофеля
      • 3. 3. 1. Обоснование применения ионов Скулачева на культуре картофеля
      • 3. 3. 2. Результаты испытаний в культуре in vitro
      • 3. 3. 3. Результаты испытаний при полевом размножении
  • Глава 4. Совершенствование схемы лабораторного контроля фитопатогенов в оригинальном семеноводстве картофеля
    • 4. 1. Сравнительная оценка норм лабораторного тестирования исходного материала
    • 4. 2. Отработка методики тестирования листовых и клубневых проб семенного картофеля
    • 4. 3. Мониторинг качества семенного материала, выращиваемого в различных регионах Российской Федерации
  • Глава 5. Разработка методов лабораторного контроля для рутинного и экспресс- тестирования семенного картофеля
    • 5. 1. Создание отечественных тест-систем для идентификации фитопатогенов картофеля методом твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА)
    • 5. 2. Создание отечественных тест-систем для экспресс-диагностики фитопатогенов картофеля методом иммунохроматографии на тест-полосках
  • ИХА)
  • Глава 6. Экономическая оценка результатов исследований
  • ВЫВОДЫ
  • Предложения для производства

Биотехнологические основы повышения эффективности воспроизводства исходного материала в оригинальном семеноводстве картофеля (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В настоящее время семеноводство картофеля является достаточно хорошо разработанной и самостоятельной отраслью, обеспечивающей сохранение соответствующих сортовых характеристик в процессе производства картофеля различного назначения (Банадысев, 1998; Struik, Wiersema, 1999).

В соответствии с Федеральными законами «О селекционных достижениях» (1993) и «О семеноводстве» (1997) система семеноводства в России формально структурирована. Национальным стандартом Российской Федерации ГОСТ Р 53 136−2008 «Картофель семенной. Технические условия», адаптированным по многим параметрам рекомендациям ЕЭК ООН для Европейского Союза (стандарт ЕЭК ООН S-1, 2005), предусмотрено производство оригинального, элитного и репродукционного семенного материала (Симаков и др., 2005).

Основой для регламентированной системы семеноводства картофеля служит производство оздоровленного исходного материала. Его качество в решающей степени определяет эффективность дальнейшей работы по размножению сортов. Ввиду преимущественно вегетативного способа размножения культуры картофеля производство оздоровленного исходного материала одновременно выполняет функцию его воспроизводства.

В процессе воспроизводства можно выделить два этапа:

— получение оздоровленных исходных растений (basic plants) и.

— их ускоренное размножение с использованием всего современного арсенала средств и способов.

Актуальность. Для успешного воспроизводства семенного картофеля необходимо определить стратегию мероприятий, соответствующую исходным требованиям и задачам и учитывающую биологические особенности культуры. Оздоровленный исходный материал должен быть:

— свободным от патогенов и обладать физиологическим статусом, обеспечивающим максимальную энергию роста и продуктивность растений.

Обеспечение статуса здоровья исходного материала, включая при необходимости освобождение его от патогенов, распространяющихся с семенными клубнями, является основополагающей составной частью семеноводческих мероприятий по воспроизводству (Pruski, 2007).

В то же время необходимо отметить, что в последнее время во многих программах по воспроизводству основное внимание уделяется освобождению материала от патогенов без учета его физиологического состояния, что значительно снижает эффективность воспроизводства исходного материала.

За последние годы в практике российского картофелеводства утвердилась система воспроизводства оздоровленного исходного материала, сочетающая проведение полевых отборов базовых клонов (например, в Банке здоровых сортов картофеля) с использованием высокоэффективных лабораторных методов элиминации патогенов и клонирования микрорастений (Анисимов, У сков, Юрлова, 2007). В результате практического освоения данной системы создан новый оригинальный фонд многих сортов селекции ВНИИКХ и других российских и зарубежных селекционных учреждений.

Вместе с тем в практической работе по воспроизводству ряда сортов отмечены случаи быстрого вырождения некоторых линий исходных растений при пассировании через культуру тканей. Используемая в настоящее время схема получения исходных микрорастений предполагает проведение не менее 10 черенкований в культуре in vitro в течение двух календарных лет. В этой связи, в целях оптимизации процесса воспроизводства исходного материала актуальны исследования по совершенствованию схемы получения исходных микрорастений, сокращающей продолжительность их культивирования в условиях in vitro, что позволит ускорить использование полученных оздоровленных растений в производственных программах по размножению новых перспективных сортов картофеля.

Наряду с семеноводческими и агротехническими мероприятиями, обеспечивающими воспроизводство оздоровленного исходного материала картофеля, большой интерес вызывает применение специальных приемов, замедляющих процессы физиологического вырождения культуры путем целенаправленного воздействия на механизмы регуляции внутриклеточного обмена веществ. К таким приемам относится использование биологически активных веществ направленного действия. В технологии воспроизводства исходного материала перспективно использование как регуляторов отдельных физиологических процессов, например, фотосинтеза, ризогенеза, так и веществ с геропротекторными свойствами, обладающих системным воздействием на обмен веществ растений картофеля.

В 2003;2004 гг. в России была освоена технология доставки высокоэффективных антиоксидантов в митохондрии клетки для регулирования баланса активных форм кислорода (АФК). Данная технология стала базовой технологией российского инновационного биопроекта «Ионы Скулачева», главной целью которого является эффективная борьба со старением клеток посредством направленного воздействия на митохондрии (Skulachev, 2003; Skulachev, Longo, 2005).

Синтезированные в НИИ ФХБ им. А. Н. Белозерского (МГУ) митохондриально специфические антиоксиданты SkQ (ионы Скулачева) обладают внутриклеточной геропротекторной активностью (Скулачев, 2007). При использовании в наноконцентрациях они препятствуют преждевременной реализации «программы старения» клеток и способны «продлить молодость» многоклеточных организмов, что делает весьма перспективным их применение на культуре картофеля в программах по воспроизводству исходного материала.

Важное место в системе воспроизводства занимает использование современных лабораторных методов диагностики в целях идентификации и контроля латентных форм патогенов. При этом наряду с разработкой новых высокочувствительных методов существенное значение имеет методическое совершенствование схемы и норм лабораторного тестирования в процессе производства оздоровленного исходного материала.

Нормативные требования, предъявляемые ГОСТ Р 53 136−2008 к исходному материалу, достаточно высоки. Допускается наличие минимального количества растений и клубней с внешними признаками болезней — до 0,4% и инфицированных в латентной форме — до 1,0%. Для достижения такого уровня качества необходимы эффективные методы контроля внутренней инфекции и защиты от повторного заражения от внешних источников.

В то же время, как свидетельствует опыт практической работы в данной области, нормы лабораторного тестирования, определяемые ГОСТ 29 267–91, не позволяют эффективно контролировать качество исходного материала. Тестирование 1% растений при выращивании мини-клубней, 50 шт./га растений при выращивании первого полевого поколения, отсутствие регламентирования лабораторного контроля при выращивании супер-суперэлиты не обеспечивают объективной оценки качества производимого исходного материала и не позволяют активно влиять на процесс воспроизводства (Анисимов и др., 2007). В этой связи актуальна разработка новой схемы и норм тестирования, соответствующих по основным параметрам аналогичным схемам, применяемым в мировой практике 1996).

В настоящее время в России лабораторная диагностика вирусных инфекций картофеля осуществляется в основном с помощью методов твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА). Эти методы позволяют количественно определять вирусы растений в экстрактах листового материала в концентрации 1−10 нг/мл. В последнее время большое внимание уделяется разработке новых простых лабораторных экспрессметодов, позволяющих проводить анализы в полевых условиях без оборудования и специальных навыков (Блинцов и др., 2008).

Разработка высокочувствительной и простой тест-системы для визуальной экспрессдиагностики вирусных и бактериальных инфекций картофеля на поликомпозитных мембранных тест-полосках позволит значительно расширить возможности достоверного контроля и первичного отбора базовых клонов для воспроизводства оздоровленного исходного материала.

Цель и задачи исследований. Основной целью исследований является разработка и усовершенствование биотехнологических методов воспроизводства исходных растений и диагностики фитопатогенов, обеспечивающих производство высококачественного исходного материала в процессе оригинального семеноводства картофеля.

В задачи исследований входило:

— построить аналитическую модель изменения физиологического возраста генотипов в процессе репродуцирования для обоснования стратегии мероприятий по воспроизводству оздоровленного исходного материала для оригинального семеноводства картофеля;

— усовершенствовать технологический процесс воспроизводства оздоровленного исходного материала картофеля на основе сочетания полевых и лабораторных методов освобождения от патогенов;

— разработать порядок формирования и поддерживания коллекции оздоровленных сортообразцовразработать схему получения исходных микрорастений, позволяющую сократить продолжительность культивирования в условиях in vitro и ускорить использование оздоровленного материала в программах по размножению новых перспективных сортов картофеля;

— изучить влияние направленного применения биологически активных веществ нового поколения на рост, развитие и продуктивность оздоровленных растений в процессе оригинального семеноводства картофеля;

— отработать элементы технологии размножения оздоровленного исходного материала с использованием биотехнических средств;

— изучить влияние и способы применения новых нанопродуктов с геропротекторными свойствами (ионов Скулачева) в оригинальном семеноводстве картофеля;

— провести обоснование новой схемы контроля фитопатогенов, предусматривающей значительное увеличение норм лабораторного тестирования в процессе размножения оздоровленного материала;

— разработать методы лабораторной идентификации фитопатогенов для проведения рутинного и экспресстестирования семенного материала на основе иммуноферментного анализа (ИФА) и иммунохроматографии на тест-полосках (ИХА).

Научная новизна. Впервые предложена аналитическая модель изменения физиологического возраста генотипов в процессе репродуцирования, позволяющая обосновать стратегию мероприятий по воспроизводству оздоровленного исходного материала для оригинального семеноводства картофеля.

Показана эффективность комплексного использования полевых и лабораторных методов для воспроизводства и размножения высококачественного исходного семенного материала. Проведено экспериментальное обоснование технологического процесса воспроизводства и размножения исходного материала на основе сочетания полевых и лабораторных методов освобождения от патогенов.

Сформулированы принципы и предложена модель формирования и поддерживания коллекции оздоровленных сортообразцов, обеспечивающая сохранение сортовых характеристик, статуса здоровья и высокой продуктивности поддерживаемых в коллекции перспективных сортов и гибридов картофеля.

Выявлено преимущество в росте, развитии и продуктивности исходного материала, полученного с использованием оптимизированной одногодичной схемы воспроизводства по сравнению с двухлетней базовой схемой.

Изучена эффективность направленного использования регуляторов роста нового поколения при размножении оздоровленного исходного материала в различных почвенно-климатических условиях Российской Федерации.

Отработаны элементы технологии размножения оздоровленного исходного материала с использованием современных биотехнических средств на гидропонной и ионитопонной культуре.

Впервые изучено влияние новых нанопродуктов с геропротекторными свойствами (ионов Скулачева) на приживаемость эксплантов, процессы морфои ризогенеза ростковых черенков, рост и развитие микрорастений в культуре in vitro. Проведены испытания препаратов на основе ионов Скулачева при выращивании оздоровленного исходного материала в условиях защищенного грунта и в полевой культуре в различных почвенно-климатических условиях Российской Федерации.

Проведена сравнительная оценка накопления вирусной инфекции при размножении исходного материала, полученного с использованием тотального (100%) и выборочного по ГОСТ 29 267 (1%) лабораторного тестирования. Экспериментально обоснована необходимость увеличения норм лабораторного тестирования в целях контроля качества и сертификации оригинального семенного картофеля.

Впервые разработаны отечественные тест-системы для рутинной (ИФА) и экспресс- (ИХГА) лабораторной идентификации вирусов картофеля в процессе воспроизводства и размножения семенного материала. Отработана методика тестирования листовых и клубневых проб и проведен мониторинг качества семенного картофеля, выращиваемого в различных регионах Российской Федерации.

Практическая значимость результатов исследований и их реализация. Проведено обоснование стратегии мероприятий по воспроизводству оздоровленного исходного материала для оригинального семеноводства картофеля на основе разработанной аналитической модели изменения физиологического возраста генотипов в процессе репродуцирования. Показана необходимость осуществления мероприятий по воспроизводству на ранних стадиях селекционного процесса.

Усовершенствован технологический процесс воспроизводства и размножения высококачественного исходного семенного материала на основе использования комплекса полевых и лабораторных методов. По материалам исследований в 2000 г. Минсельхозом России изданы рекомендации «Новые технологии производства оздоровленного исходного материала в элитном семеноводстве картофеля» (рассмотрены и одобрены Научно-техническим советом Министерства сельского хозяйства Российской Федерации — протокол № 18 от 14 июля 2000 г.).

Проведена практическая работа по формированию и поддерживанию двухуровневой коллекции оздоровленных сортообразцов, используемых в производственных программах по размножению новых перспективных сортов и гибридов картофеля (1996;2000). Проведено ежегодное обновление генобанка за счет выбраковки линий с признаками вырождения и введения в культуру in vitro новых здоровых линий и клонов.

Разработана одногодичная схема получения исходных микрорастений, позволяющая сократить продолжительность культивирования в условиях in vitro до 3−4 пассажей и обеспечивающая повышение урожайности и количественного выхода стандартной семенной фракции клубней в оригинальном семеноводстве картофеля. Данная схема позволяет ускорить использование оздоровленного материала в программах по размножению новых перспективных сортов картофеля.

Предложена схема комплексного использования регуляторов роста нового поколения, обеспечивающая производство высококачественного исходного материала в различных почвенно-климатических условиях Российской Федерации. Схема предусматривает применение фумара (ОД мг/л) для стимулирования развития корневой системы на заключительной стадии клонального микроразмножения (фаза адаптации), этамона (10 мг/л) и эпина (0,25 мг/л) для преодоления стрессов при трансплантации ex vitro и фумара (1 мг/л) и эпина (0,25 мг/л) для синхронизации клубнеобразования и антистессовой устойчивости при полевом размножении исходного материала.

В рамках Совместной Российско-Белорусской подпрограммы «Повышение эффективности производства картофеля и картофелепродуктов на 1998;2000 гг.» проведены испытания и даны рекомендации по использованию гидропонной установки «Минивит-2» (ДОКА — генные технологии, г. Зеленоград, Россия) и ионитопонной установки БТК-1 (ИЭБ РАН, г. Минск, Беларусь) при размножении оздоровленных микрорастений путем нестерильного черенкования.

Определена оптимальная концентрация препарата SkQl (ионов Скулачева), стимулирующая процессы морфогенеза эксплантов и ростковых черенков картофеля и сокращающая время регенерации исходных микрорастений в культуре in vitro. Выявлены оптимальные нормы и способы применения препаратов на основе ионов Скулачева при размножении исходного материала в защищенном грунте и в полевой культуре.

Экспериментально обоснована новая схема вирусологического контроля для сертификации различных классов и поколений семенного картофеля, предусматривающая значительное увеличение норм лабораторного тестирования исходного материала. Предложены нормы, методы и схема лабораторного тестирования различных категорий и классов семенного картофеля для нового национального стандарта Российской Федерации «Картофель семенной. Приемка и методы анализа» (2012 г.).

Освоено коммерческое производство иммуноферментных диагностических наборов 12 наименований, обеспечивающее в настоящее время проведение ежегодно порядка 300−500 тыс. определений в системе контроля качества и сертификации семенного картофеля. Создана и получила аккредитацию в Системе добровольной сертификации «Россельхозцентр» испытательная лаборатория, проводящая ежегодно оценку 20−25 тысяч образцов семенного картофеля из различных регионов Российской Федерации.

Проведены производственные испытания разработанных в рамках совместного проекта с МГУ, ИФХБ им. А. Н. Белозерского и ЗАО НЕЮ «Иммунотех» (2008;2010 гг.) отечественных иммунохроматографических тест-систем для экспрессдиагностики Х-, Ми У-вирусов картофеля. Чувствительность определения патогенов составила 2−8 нг/мл, а время детекции не превышало 10−20 минут.

Основные научные положения, выносимые на защиту:

1. Стратегия мероприятий по воспроизводству оздоровленного исходного материала для оригинального семеноводства картофеля.

2. Технологический процесс воспроизводства оздоровленных исходных растений новых перспективных сортов и гибридов картофеля.

3. Биотехнологические приемы размножения оздоровленных исходных растений с использованием современных биотехнических гидропонных и ионитопонных комплексов и биологически активных веществ нового поколения.

4. Применение новых нанопродуктов с геропротекторыми свойствами (ионов Скулачева) в оригинальном семеноводстве картофеля.

5. Новая схема лабораторного контроля для оценки качества и сертификации семенного картофеля.

6. Новые высокоэффективные методы лабораторной диагностики фитопатогенов для рутинного и экспресстестирования семенного картофеля.

7. Мониторинг качества семенного картофеля, выращиваемого в различных регионах Российской Федерации.

Апробация работы. Результаты проведенных исследований доложены и обсуждены на ежегодных заседаниях Ученого Совета Научно-исследовательского института картофельного хозяйства (1984;1992 гг.) и Всероссийского научно-исследовательского института картофельного хозяйства им. А. Г. Лорха (1993;2012 гг.).

Основные положения диссертации представлены: на I Всероссийском съезде по защите растений (С.-Петербург, 1995), на Международном семинаре по использованию генетических ресурсов С1Р в селекции и семеноводстве картофеля (Коренево, 1999), на Международной научно-практической конференции, посвященной 90-летию И. И. Адамова (Минск, 2000), на НТС секции земледелия и растениеводства МСХ РФ (Москва, 2000, на Совещании докладчиков ЕЭК ООН по стандартам и схемам сертификации семенного картофеля (Москва, 2000), на Международной научной конференции, посвященной 70-летию ВНИИКХ (Москва, 2001), на III Международной Российско-Иранской конференции по сельскому хозяйству и природным ресурсам (Москва, 2002), на XIII Международной специализированной выставке «АГРО-2003» (Уфа, 2003), на VII Всероссийской научно-практической конференции по селекции и семеноводству с/х культур (Пенза, 2003), на Международной научно-практической конференции, посвященной 75-летию БелНИИК (Минск, 2003), на 56-ой, 60-ой и 63-ей Международных научно-практических конференциях по актуальным проблемам науки в агропромышленном комплексе (Кострома, 2005, 2009, 2012), на Международной научно-практической конференции, посвященной 100-летию Н. А. Дорожкина (Минск, 2005), на Международном конгрессе «Картофель. Россия-2007» (Москва, 2007), на XVII Конференции ЕАРЯ (Брашов, Румыния, 2008), на выездном заседании рабочей группы ЕЭК ООН по стандартизации (Кисловодск, 2008), на Международной научно-методической конференции по методам изучения продукционного процесса растений и фитоценозов (Нальчик, 2009), на Научно-практической конференции, посвященной 120летию А. Г. Лорха (Москва, 2009), на Научно-практических конференциях по картофелеводству (Чебоксары, 2009, 2010, 2011, 2012), на I и II Научно-практическом совещании по генетическим и агротехнологическим ресурсам повышения качества продовольственного и технического картофеля (Москва, 2011, 2012), на научной конференции, посвященной 125-летию Н. И. Вавилова (Москва, 2012), на Международной научной конференции по достижениям и перспективам развития биотехнологии (Саранск, 2012).

Личный вклад соискателя. Исследования выполнены в отделе биотехнологии и иммунодиагностики Всероссийского научно-исследовательского института картофельного хозяйства имени А. Г. Лорха в рамках планов НИОКР ВНИИКХ в период 1984;2012 гг., по решению отраслевых научно-технических программ по картофелю: 0.51.17 «Разработать и внедрить технологические процессы производства картофеля в свежем и переработанном виде на основе применения новых сортов, комплексов машин, оборудования и сооружений на 1986;1990 гг.» задание 02. Разработать и усовершенствовать методы получения свободного от вирусов исходного материала" на 1986;1990 гг. (№ гос. регистрации 0186.195 787) — «Разработать и освоить в производстве экологически безопасные технологии возделывания, уборки, хранения и переработки картофеля на основе создания новых высокопродуктивных сортов и оздоровленного семенного материала, средств механизации, системы защиты картофеля от вредителей и болезней, совершенствования форм организации труда на 1992;1995 гг.» задание 02. Усовершенствовать систему иммунодиагностики вирусов и бактерий картофеля для использования в селекционно-семеноводческой работе (№ гос. регистрации 01.9.30 005 938) — «Разработать экологически безопасные среднеи низкозатратные энергосберегающие зональные технологии возделывания, послеуборочной обработки, хранения и переработки картофеля на основе использования новых высокопродуктивных сортов, оздоровленного посадочного материала, эффективных средств механизации и прогрессивных форм организации труда на 1996;2000 гг.» задание 02. Разработать систему безвирусного семеноводства картофеля на основе высокоэффективных технологий оздоровления и современных методов диагностики патогенов, получения устойчивых к вирусам форм методами биотехнологии (№ гос. регистрации 01.990.0 5 200) — Программ фундаментальных и приоритетных прикладных исследований по научному обеспечению развития агропромышленного комплекса Российской Федерации на 2001;2005 гг. задание 77.6>2.Установить механизм управления продуктивностью и качеством семенного картофеля в системе оригинального семеноводства на основе использования новых высокоэффективных технологий оздоровления, методов диагностики, сертификации и технологий выращивания исходного и элитного материала (№ гос. регистрации 01.200 109 657), и на 2006;2010 гг. задание 04.15.02. Совершенствование семеноводства картофеля на основе современных технологий оздоровления сортов, эффективных методов сортового и семенного контроля, фитосанитарного монитогинга и комплексного применения агроприемов, ограничивающих распространение фитопатогенов в процессе производства оригинального, элитного и репродукционного семенного картофеля (№ гос. регистрации 01.200 601 990) — Плана фундаментальных и приоритетных прикладных исследований Россельхозакадемии по научному обеспечению развития АПК Российской Федерации на 2010;2015 годы задание 04.15.02. Усовершенствовать систему семеноводства высококачественного семенного картофеля на основе исходного материала, освобожденного от вирусных, вироидных и бактериальных фитопатогенов на основе методов биотехнологии и улучшающих клоновых отборов с применением современных высокоточных тест-систем иммунодиагностики и ПЦР-технологии (№ гос. регистрации 01.201 153 998), а также совместной Российско-Белорусской подпрограммы «Повышение эффективности производства картофеля и картофелепродуктов на 1998;2000 гг.» (№ гос. регистрации 01.980.0 9 029).

Автором лично проведено обобщение литературы по разделам диссертации, планирование научных исследований, разработка программ и методик, схем полевых и лабораторных опытов и участие в их выполнениивыполнена статистическая обработка полученных данных и анализ результатов исследований, подготовлены научные отчеты, доклады, статьи.

Публикации по результатам исследований. Основные положения диссертации опубликованы в 114 научных работах, в том числе 22 работыв научных журналах, рекомендованных Перечнем ВАК РФ и 4 авторских свидетельств на сорта.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, 6 глав, выводов, предложений для производства, списка использованной литературы, приложений.

ВЫВОДЫ.

1. На основе разработанной аналитической модели, описывающей изменение физиологического возраста генотипов картофеля в процессе репродуцирования, оптимальным временем для проведения мероприятий по воспроизводству исходного материала является период активного роста и максимальной продуктивности растений в течение отрезка 11 -12.

2. Для повышения эффективности процесса размножения новых перспективных сортов и гибридов картофеля мероприятия по воспроизводству исходного материала целесообразно максимально приблизить к схеме селекционного процесса, начиная работы по воспроизводству с конкурсного испытания гибридов.

3. Разработанная технология воспроизводства исходных растений для семеноводства картофеля на основе комплексного использования полевых и лабораторных методов освобождения от фитопатогенов обеспечивает воспроизводство высококачественного оздоровленного исходного материала за счет использования как природных факторов (естественный отбор), так и современных достижений в области биотехнологии, иммунологии, молекулярной биологии. При выполнении производственных программ ВНИИКХ в 1996;2000 гг. с применением новой технологии было произведено 279,2 тыс. оздоровленных микрорастений и 589,2 тыс. мини-клубней.

4. Непрерывная оценка и отбор клонов являются важнейшими элементами формирования и поддерживания коллекции оздоровленных сортообразцов, гарантирующими воспроизводство высококачественного исходного материала. В 1996;2002 гг. в рамках практической работы по формированию и поддерживанию двухуровневой коллекции оздоровленных сортообразцов ВНИИКХ было оценено 16 180 базовых полевых клонов по 65 сортам и гибридам отечественных и зарубежных селекционных учреждений. Производственная составляющая коллекции, используемая в ежегодных коммерческих программах по размножению оздоровленного исходного материала, в 2001;2002 годах насчитывала 56−58 сортообразцов по 15−16 наиболее востребованным и перспективным сортам.

5. Разработанная одногодичная схема воспроизводства исходных микрорастений позволяет сократить продолжительность культивирования в условиях in vitro до 3−4 пассажей, повысить урожайность и количественный выход мини-клубней стандартной фракции на 19−23% и ускорить использование оздоровленного материала в программах по размножению новых перспективных сортов картофеля на один календарный год.

6. Комплексное использование регуляторов роста нового поколения на различных этапах воспроизводства оздоровленного исходного материала обеспечивает увеличение в 1,5 -2,8 раза объема корневой системы микрорастений (фумар, 0,1 мг/л), сокращение на 7−10 дней времени подращивания и улучшение на 10−12% приживаемости рассады (этамон, 10 мг/мл), повышение на 25−41% урожайности и выхода семенной фракции супер-суперэлиты при полевом размножении в различных почвенно-климатических условиях Российской Федерации (фумар, 1,0 мг/лэпин, 0,25 мг/мл).

7. Сравнительная оценка биотехнических комплексов для нестерильного размножения исходного материала выявила увеличение на 1753% продуктивности рассады микрорастений, выращенной с использованием ионитопонной культуры на установке БТК-1 по сравнению с гидропонным модулем «Минивит-2».

8. Использование ионов Скулачева в культуре in vitro (препарат SkQl- 2,5нМ) повышало приживаемость эксплантов ранних и среднеранних сортов (Жуковский ранний, Удача, Невский) на 16−43%), с более длинным вегетационным периодом (Голубизна, Никулинский) — на 7−13% и сокращало время регенерации микрорастений на 24−30 дней. При культивировании ростковых черенков добавление в искусственную питательную среду Мурасиге-Скуга (МС) препарата SkQl в наноконцентрации — 2,5 нМ способствовало усилению процессов ризои морфогенеза и повышало выход стеблевых черенков после первого черенкования регенерантов в 1,9−2,7 раза.

9. Применение ионов Скулачева при полевом размножении оздоровленного исходного материала в различных почвенно-климатических условиях Российской Федерации оказывало стабилизирующее воздействие на процесс накопления урожая, наиболее заметное в неблагоприятных стрессовых условиях выращивания. При ежегодном в течение пяти лет применении в наложении ионов Скулачева отмечали прибавки урожая для сорта Жуковский ранний в пределах 7−36% и для сорта Крепыш — 16−26% относительно материала, репродуцируемого без обработок. Максимальные прибавки урожая были получены при использовании препарата SkQl для обработки клубней перед посадкой (25 нМ) и опрыскивания растений в период вегетации (2,5 нМ).

10. Применение препарата SkQl (25 нМ) совместно с химическими средствами защиты давало дополнительную прибавку урожая на уровне 613% относительно варианта с обработкой клубней раствором фунгицида максим и инсектицида круйзер, что свидетельствует о возможности применения ионов Скулачева в составе баковой смеси пестицидов.

11. 1%-ная выборка для лабораторного тестирования по ГОСТ 29 267–91 не позволяет контролировать распространение фитопатогенов в процессе воспроизводства исходного материала. Проведение браковок исходного материала по результатам тотального лабораторного тестирования в сочетании с ранними сроками удаления ботвы (не позднее 4 недель после цветения) способствовало сохранению качества оригинального семенного картофеля в процессе размножения и позволяло увеличить выход супер-суперэлиты на 11−13%.

12. Мониторинг качества семенного картофеля, выращиваемого в различных регионах Российской Федерации, выявил преобладание распространения на семенном материале вирусов PVM и PVY, вызывающих мозаичное закручивание листьев и различные формы тяжелых мозаик. На долю этих двух вирусов приходится более 80% заражений.

13. Разработанные отечественные тест-системы для «сэндвич-варианта» иммуноферментного анализа (ИФА) по чувствительности (3−10 нг/мл) и специфичности определения вирусов не уступают зарубежным аналогам и на 2−3 порядка по данным параметрам превосходят серологический метод капельной агглютинации.

14. В настоящее время коммерческое производство диагностических наборов на основе разработанных диагностических тест-систем для иммуноферментного определения фитопатогенов картофеля (12 наименований) обеспечивает проведение ежегодно порядка 300−500 тыс. анализов в системе контроля качества и сертификации семенного картофеля в различных регионах Российской Федерации.

15. В производственных испытаниях разработанных отечественных иммунохроматографических тест-систем для экспрессдиагностики Х-, Ми У-вирусов картофеля чувствительность определения патогенов составила 2−8 нг/мл, а время детекции не превышало 10−20 минут.

16. Использование одногодичной схемы для воспроизводства исходных микрорастений новых перспективных сортов и гибридов картофеля приводит к увеличению себестоимости сертифицированных микрорастений, предназначенных для высадки в грунт, на 62,8%, производства мини-клубней — на 24,3%, первого полевого поколения из мини-клубней (ПП-1) — на 18,8%, супер-суперэлиты (ССЭ) — на 9,3% по сравнению с материалом, произведенным в соответствии с Технологическим регламентом (2010 г.). Вместе с тем получаемый в процессе производства супер-суперэлиты выигрыш по времени в один вегетационный период позволяет в значительной степени перекрыть все понесенные дополнительные затраты за счет увеличения в 3,0 раза валовой прибыли от реализации семенного материала.

Предложения для производства.

Селекционным учреждениям и оригинаторам сортов картофеля в целях повышения эффективности воспроизводства оздоровленного исходного материала для оригинального семеноводства рекомендуется: проводить мероприятия по воспроизводству оздоровленного исходного материала перспективных гибридов на более ранних стадиях селекционного процесса, начиная с конкурсного испытания гибридов, используя усовершенствованный комплекс полевых и лабораторных методов освобождения от патогенов в процессе получения и поддерживания оздоровленных сортообразцовприменять одногодичную схему воспроизводства исходных микрорастений при ускоренном размножении новых перспективных сортов и гибридов;

— использовать комплекс регуляторов роста нового поколения на различных этапах размножения исходного материала: фумар (0,1мг/л) при культивировании in vitro, этамон (10 мг/л) и эпин (0,25 мг/л) при пересадке ех vitro, фумар (1,0 мг/л) и эпин (0,25 мг/л) в полевой культуре;

— добавлять в искусственную питательную среду (МС) ионы Скулачева в концентрации 2,5 нМ при получении исходных регенерантов из меристематических эксплантов и ростковых черенков;

— проводить предпосадочную обработку клубней и опрыскивание растений в период вегетации препаратами на основе ионов Скулачева в концентрациях соответственно 25 нМ и 2,5 нМ в процессе полевого размножения оздоровленного исходного материала, применяя препараты в составе баковой смеси с химическими средствами защиты растений.

Испытательным лабораториям в системе добровольной сертификации «Россельхозцентр», оригнаторам сортов картофеля и сельскохозяйственным предприятиям — производителям семенного картофеля в целях повышения эффективности контроля качества и сертификации оригинального, элитного и репродукционного семенного материала рекомендуется:

— учитывать при обследованиях и планировании агротехнических мероприятий преобладающее распространение на семенном материале, выращиваемом в различных регионах Российской Федерации, вирусов Ми Укартофеля, распространяемых тлями-переносчиками и вызывающих мозаичное закручивание, морщинистую и полосчатую мозаики листьев картофеля;

— использовать при сертификации различных классов и поколений семенного картофеля новую схему лабораторного контроля фитопатогенов, разработанную для нового национального стандарта «Картофель семенной. Приемка и методы анализа»;

— использовать для проведения рутинных лабораторных тестов при сертификации семенного картофеля диагностические наборы для иммуноферментного анализа (ИФА) отечественного производства (ВНИИКХ), не уступающие по чувствительности и специфичности лучшим зарубежным аналогамиспользовать для проведения экспрессидентификации фитопатогенов картофеля иммунохроматографические тест-полоски отечественного производства с чувствительностью определения 2−8 нг/мл и временем детекции — 10−20 минут.

Показать весь текст

Список литературы

  1. ГОСТ 11 856–89. Картофель семенной. Приемка и методы анализа. М.: Издательство стандартов, 1989. — 12 с.
  2. ГОСТ 29 267–91. Картофель семенной. Оздоровленный исходный материал. Приемка и методы анализа. М.: Издательство стандартов, 1992. -12 с.
  3. ГОСТ Р 53 136−2008. Картофель семенной. Технические условия. М.: Стандартинформ, 2009. — 10 с.
  4. В.И. Взаимодействие вируса и клетки. Биосинтез вирусов. В кн.: Основы биологии вирусов. / под ред. В. И. Товарницкого. М.: Наука, 1966. -с. 177−290.
  5. .В., Усков А. И., Симаков Е. А., Старовойтов В. И. Сертификация (глава 8). В кн.: Картофель России. / под ред. чл.-корр. РАСХН А. В. Коршунова. ООО «Редакция журнала «Достижения науки и техники АПК». — М., 2003. — т.1. — с.252−288.
  6. .В., Усков А. И., Юрлова С. М. Развитие семеноводства картофеля. // «Агро-Рынок», 2007. № 8. — с.8−10.
  7. .В., Усков А. И., Юрлова С. М., Варицев Ю. А. Семеноводство картофеля в России: состояние, проблемы и перспективные направления. // Достижения науки и техники АПК, 2007. № 7, с. 15−19.
  8. В.Н. Молекулярные и физиологические механизмы старения. Санкт-Петербург: Наука, 2003. — 468 с.
  9. С.А. Организация семеноводства картофеля в республике Беларусь. / Материалы Белорусско-Нидерландского семинара по картофелеводству. Минск, 1998. — с.42−51.
  10. А.Н., Мусин С. М. Использование ингибитора роста в питательной среде на завершающем этапе микроразмножения картофеля in vitro. Актуальные проблемы картофелеводства. Научные труды ВНИИКХ -М., 1993. — с.56−62.
  11. Безвирусное семеноводство картофеля (рекомендации) / Л. Н. Трофимец, В. В. Бойко, Б. В. Анисимов и др. М.: ВО «Агропромиздат», 1990.-32 с.
  12. .В. Вирусы картофеля. Минск: Ураджай, 1989. — 72 с.
  13. А.О., Хрипач В. А., Использование брассинолидов в культуре in vitro (опыты с картофелем) / Стратегии и новые методы в селекции и семеноводстве с.-х. культур. Минск, 1994. — с.60.
  14. А. О. Эффективность производства семенного картофеля при использовании брассиностероидов. / Новое в семеноводстве картофеля. Материалы научно- практической конференции. Минск, 11−14 июля 2000. -с. 58−59.
  15. А.О. Эффективность применения биологически активных веществ в первичном семеноводстве картофеля. / Вопросы картофелеводства. М.: ВНИИКХ, 2001. — с. 289−292.
  16. С.М. Селекция картофеля. В кн.: Теоретические основы селекции растений. М. Д., 1937. — с.57.
  17. Т.П., Варицев Ю. А. А-вирус картофеля: выделение, получение антисыворотки, иммуноферментный анализ. В кн.: Биотехнологияв картофелеводстве. Научные труды. / Рос. с.-х. акад., НИИ картоф. хоз-ва. -М., 1991. вып.53. -с.57−62 .
  18. Всероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии (буклет). ВНИИФ, USDA/ARS, 2010. — 32 с.
  19. П.А., Усков А. И., Кравченко Д. В. Изменение роста и развития ростковых черенков картофеля в условиях in vitro при использовании препарата SkQl. // Достижения науки и техники АПК, 2011. № 4. — с.40−41.
  20. П.А. Сравнительная оценка способов получения исходных микрорастений при выращивании оздоровленного исходного материала. -Дис. на соиск. степени канд. с.-х. наук, М.: ВНИИКХ, 2011. 101 с.
  21. Гиббс А, Харрисон Б. Основы вирусологии растений. М.: Мир, 1978. — 429 с.
  22. М.И. Фитопатология. М.: Колос, 1970. — 464 с.
  23. Диагностика вирусов и бактериозов в процессе оздоровления и размножения семенного картофеля в оригинальном семеноводстве: Методические рекомендации. / Сост. В. И. Куликова и др., Сиб. отд-ние РАСХН, ГНУ «Кемеровский НИИСХ». Кемерово: 2008. — 36 с.
  24. В.М. Большие биологические часы. Изд. 2-е. М.'.Знание, 1986. -256 с.
  25. .А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е изд., доп. и перераб. — М.: Агропромиздат, 1985.-351 с.
  26. Л.И., Князева В. П., Варицев Ю. А., Усков А.И. Черноиванова
  27. Г. А. Диагностика андийского латентного вируса картофеля (APLV) методом иммуноферментного анализа. В кн.: Технология производства картофеля. Научные труды. / Рос. акад. с.-х. наук, Всерос. НИИ картоф. хоз-ва. М., 1991. — вып.54. -с. 12−16 .
  28. Н.М., Приходько Н. В., Овсянникова Т. В., Шаповалов A.A. Новый регулятор роста этамон стимулятор роста корневой системы. // Агрохимия, 1991.-№ 11.-с.98−105.
  29. А.И. Биоантиокислители в животном организме. В кн.: Биоантиокислители. -М., 1975. VII: с. 15−20.
  30. Л.Б. Эффективность применения метода иммуноферментногоанализа в диагностике вирусов картофеля. В кн.: Селекция картофеля на иммунитет и защита от болезней и вредителей. Научные труды. / Госагропром РСФСР, НИИ картоф. хоз-ва. М., 1986. — с.62−66.
  31. Л.Б. Сравнительная оценка и усовершенствование способов применения методов иммунодиагностики вирусов в семеноводстве картофеля. -Дис. на соиск. степени канд. с.-х. наук, М.: ВНИИКХ, 1988. -116с.
  32. В.И. Оценка комплекса приемов выращивания оздоровленного исходного материала в процессе элитного семеноводства картофеля в условиях Западной Сибири. Автореф. дисс. на соиск. ученой степени канд. с.-х. наук, М.: ВНИИКХ, 2000. — 20 с.
  33. М.Н., Князева В. П. Диагностика бактериальных заболеваний клубней картофеля с помощью иммуноферментного анализа. В кн.: Технология производства картофеля. Научные труды. / Рос. с.-х. акад., НИИ картоф. хоз-ва. М., 1991. — вып.54. -с.23−24.
  34. Картофель / под ред. Н. Я. Чморы и В. В. Арнаутова. М.:Главиздат, 1953.-567 с.
  35. В. И. Рост растений. М., Колос, 1984. — 185 с.
  36. В.А. Какой быть контрольно-сертификационной службе? // Картофель и овощи, 1991. № 1.- с.7−9.
  37. В.К. Свободнорадикальная теория старения: современное состояние и перспективы. // Успехи геронтологии, 1998. вып. 2. — с. 37−42.
  38. Контроль качества и сертификация семенного картофеля (практическое руководство). / Малько A.M., Анисимов Б. В., Трофимов Н. В. и др. М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2003 г. — 316 с.
  39. Д.В. Применение регуляторов роста растений в оригинальном семеноводстве картофеля для повышения продуктивности ивыхода оздоровленного исходного материала. Дис. на соиск. степени канд. с.-х. наук, М.: ВНИИКХ, 2006. — 144 с.
  40. Д.В., У сков А.И. Влияние регуляторов роста растений на биометрические показатели и потенциальную продуктивность сортов картофеля в условиях Московской области // Вестник «Брянская ГСХА». -Брянск, 2005. № 2. — с.3−12.
  41. Д.В., Усков А. И. Опыт применения регуляторов роста растений в схеме получения супер-суперэлиты картофеля. / Картофелеводство: Сборник научных трудов РУП НПЦ HAH Беларуси по картофелеводству и плодоовощеводству. Минск, 2007. — т.13. — с.47−55.
  42. И.Т. Индукция устойчивости растений к вирусам биологически активными веществами (иммунизация). // Сельскохозяйственная биология (серия биология растений), 1992. № 3. -с.13−21.
  43. В.И. Механизмы устойчивости растений к вирусам. -Владивосток: Дальнаука, 2010.-324 с.
  44. И. Система производства семенного картофеля в Голландии. / Материалы Белорусско-Нидерландского семинара по картофелеводству. Минск, 1998. — с.36−41.
  45. Л.В., Салькова Е. Г. Биохимическая природа старения растительных тканей (на примере сочных плодов). В кн.: Биохимия иммунитета, покоя, старения растений. / Л. В. Метлицкий, О. Л. Озерецковская, Н. П. Кораблева и др. -М.: Наука, 1984. с. 181−206.
  46. Методика исследований по защите картофеля от болезней, вредителей, сорняков и иммунитету. / А. С. Воловик, Л. Н. Трофимец, А. Б. Долягин, В. М. Глез. М.: ВНИИКХ, Россельхозакадемия, 1995.- 106 с.
  47. Методика исследований по культуре картофеля. / Н. А. Андрюшина, Н. С. Бацанов, Л. В. Будина и др. М.: НИИКХ, ВАСХНИЛД967. — 263 с.
  48. Методика проведения полевых обследований и послеуборочного контроля качества семенного картофеля. / Анисимов Б. В., Усков А. И., Симаков Е. А. и др. Госсеминспекция РФ, М.: Изд. «ЖАР», 2005. — 112 с.
  49. Методические рекомендации по применению иммуноферментного анализа для диагностики вирусов картофеля. М.: ВАСХНИЛ, 1985. — 20 с.
  50. Методические указания по проведению послеуборочного контроля семенного картофеля при его сертификации с использованием метода иммуноферментного анализа. / Анисимов Б. В., Семенова Л. Н., Усков А. И. и др. М.: ВНИИКХ, 2004. — 26 с.
  51. Методы оценки оздоровленных сортов и меристемных линий в элитном семеноводстве картофеля. / Писарев Б. А., Трофимец Л. Н., Анисимов Б. В. и др. М.: «Информагротех», 1991. — 39 с.
  52. К.А., Васильева Т. Я., Кастальева Т. Б. Вироиды опасные патогены культурных растений. // Картофель и овощи, 1999. — № 6. — с.28−29.
  53. О.В. Современные иммунологические методы в мвссовой диагностике вирусов растений. М.: ВНИИТЭИСХ, 1986. — 52 с. ^ Новые технологии производства оздоровленного исходного материалав элитном семеноводстве картофеля (рекомендации). / Е. А. Симаков,
  54. A.И.Усков, Ю. А. Варицев, В. П. Князева, С. М. Мусин, Г. И. Антонова,
  55. B.В.Бойко, Б. В. Анисимов. М.: ГУП «Агропргресс», 2000. — 80 с.
  56. A.M. Принцип маргинотомии в матричном синтезе полинуклеотидов. // Доклады АН СССР, 1971. т.201. — № 4. — с.1496−1499.
  57. JI.A. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот: электрофорех и ультрацентрифугирование (практическое пособие). М.: Наука, 1981.-288 с.
  58. .А., Трофимец J1.H. Семеноводство картофеля. М.: Россельхозиздат, 1976. — 183 с.
  59. .А., Трофимец JI.H. Семеноводство картофеля (изд.2-е, доп. и перераб.). М.: Россельхозиздат, 1982.- 238 с.
  60. Н.И. Вирусная теория вырождения картофеля, ее состоятельность и перспективы практического использования. // Достижения науки и техники АПК, 2008. № 4. — с.29−32.
  61. О.П. Урожайность и качество картофеля в зависимости от приемов предпосадочной обработки клубней. / Авореф. дис. канд. с.-х. наук. -М., 1995.-23с.
  62. М.П. Полиоксистероиды (экди- и брассиностероиды) -регуляторы роста и повышения продуктивности картофеля / Новое в семеноводстве картофеля. Минск, 2000. — с. 70.
  63. Практикум по общей вирусологии. / Под ред. И. Г. Атабекова. М.: МГУ, 1981.- 192 с.
  64. A.B., Москаленко A.C., Станко С. А., Костяновский Р. Г. Фумар незаменимое средство повышения урожайности и качества картофеля. // Вестник РАСХН, 1993. — № 2. — с. 15.
  65. A.B., Хохлова Т. В., Зеленская О. В. Регуляторы роста растений типа фумара. / Регуляторы роста и развития растений. Третья Международная конференция. М.: 1995. — с. 92−93.
  66. Т.И., Кириллова И. Г., Якушкина Н. И. Динамика индолилуксусной кислоты в органах картофеля на разных этапах онтогенеза //Изв. РАН, сер. биол., 2000. № 2. — с. 170−177.
  67. H.A., Геращенков Г. А. Элиситорное действие убихинона 50 на формирование антивирусной устойчивости у растений семейства Solanaceae Juss. // Доклады Академии Наук, 2002. т.382. — № 4. — с.547−549.
  68. А.Е., Писарев Б.А, Старцева Л. И. Семеноводство картофеля. -М.: Колос, 1984.- 160 с.
  69. Г. М. Наумова Г. В. Применение регуляторов роста в технологии возделывания картофеля. Защита растений на рубеже XXI века. -Минск, 2001. — с.243−246.
  70. Е.А., Склярова Н. П., Яшина И. М. Методические указания по технологии селекционного процесса картофеля. -М.: ООО «Редакция журнала «Достижения науки и техники АПК», 2006.-70 с.
  71. Е.А., Анисимов Б. В., Усков А. И., Митюшкин A.B., Журавлев A.A., Веселова Т. А. Размножение перспективных гибридов и новых сортов в системе оригинального семеноводства картофеля. // Достижения науки и техники АПК, 2009. № 7. — с.35−37.
  72. В.П. Энергетика биологических мембран. -М.: Наука, 1989.564 с.
  73. В.П. Снижение внутриклеточной концентрации 02 как особая функция дыхательных систем клетки. // Биохимия, 1994. т.59, вып. 12. -с.1910−1912.
  74. В.П. Феноптоз: запрограммированная смерть организма. // Биохимия, 1999.-t.64, вып. 12. с. 1679−1688.
  75. В.П. Старение как атавистическая программа, которую можно попытаться отменить. // Вестник РАН, 2005. т.75, № 9. — с.831−843.
  76. В.П. Попытка биохимиков атаковать проблему старения: «Мегапроект» по проникающим ионам. Первые итоги и перспективы. // Биохимия, 2007. том 72, вып. 12. — с. 1572−1586.
  77. Сортовые ресурсы и передовой опыт производства картофеля. / Е. А. Симаков, Б. В. Анисимов, А. В. Коршунов и др. М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2005. — 348 с.
  78. С.А., Костяновский Р. Г. Исследования действия биорегуляторов семейства фумар на различных растениях. / Регуляторы роста и развития растений. Материалы Второй Международной конференции. Москва, 1993. — с. 113.
  79. С.А., Костяновский Р. Г. Исследование действия биорегуляторов семейства фумар на различных растениях. / Регуляторы роста и развития растений. Третья Международная конференция. М.: 1995. -с.113.
  80. Технология проведения улучшающего отбора при производстве семян картофеля для индивидуальных и крестьянско-фермерских хозяйств: методические рекомендации. / Россельхозакадемия, Сиб. НИИ растениеводства и селекции- Н. И. Полухин. Новосибирск, 2011. — 24 с.
  81. Трофимец JI. H, Замотаев А. И., Варицев Ю. А., Князева В. П., Герасимова К. Ф., Усков А. И., Бабоша A.B., Егорова Л. И., Русинова Е. Я. Иммуноферментный метод диагностики. // Защита растений, 1985. № 11. -с.8−10.
  82. Л.Н. Биотехнология в картофелеводстве. М., 1989. — 45 с. Трофимов Н. В. (редактор). Сортовая сертификация семян, находящихся в международной торговле. — Саратов, 1996. — 207с.
  83. Э.В. О путях борьбы с вирусными болезнями растений. В кн.: Современные проблемы семеноводства картофеля на безвирусной основе. /Владивосток, 1985. -с.144−151.
  84. А.И., Шнейдер А. Ю., Гвардина O.A. Диагностика X-, S- и М-вирусов в клубнях картофеля методом иммуноферментного анализа. В кн.:
  85. Селекционно-генетические, физиолого-биохимические и технологические аспекты интенсификации производства картофеля. Уфа, 1989. — с.109−110.
  86. А.И. Изучение серологических особенностей нормального и некротического штаммов Х-вируса картофеля. В кн.: Биотехнология в картофелеводстве. Научные труды. / НИИКХ, Россельхозакадемия. М., 1991. — с.44−48.
  87. А.И., Бабоша A.B. Очистка вирусных антигенов М- и S-вирусов картофеля. В кн.: Биотехнология в картофелеводстве. Научные труды. / НИИКХ, Россельхозакадемия. М., 1991. — с.66−74.
  88. А.И., Бойко В. В. Особенности оздоровления исходного материала сортов картофеля. // Картофель и овощи, 1997. № 2, с. 29.
  89. А.И., Бойко Ю. П., Бойко В. В. Организация воспроизводства оздоровленного исходного материала. // Картофель и овощи, 2000. № 2. -с.42.
  90. Всерос. НИИ селекции и сем-ва овощ, культур- под ред. акад. В. Ф. Пивоварова. М., 2000. — Т.2. — с.293−294.
  91. А.И., Симаков Е. А. Система воспроизводства оздоровленного исходного материала. // Картофель и овощи, 2001. № 3. — с.15−16.
  92. А.И. Организация воспроизводства исходного материала в условиях формирования рынка сортового семенного картофеля в России. / Вопросы картофелеводства. Научные труды. М.: ВНИИКХ Россехозакадемии, 2003 г. — с.43−52.
  93. А.И., Горяников Ю. В. Применение брассиностероидов для получения оздоровленного семенного материала в предгорной зоне Карачаево-Черкесии. / Вопросы картофелеводства. Научные труды. М.: ВНИИКХ Россехозакадемии, 2003 г. — с.52−55.
  94. А.И., Анисимов Б. В., Варицев Ю. А., Мусин С. М. Методы контроля качества (глава 9). В кн.: Картофель России. / под ред. чл.-корр. РАСХН А. В. Коршунова. ООО «Редакция журнала «Достижения науки и техники АПК». — М., 2003. — т.1. — с.288−337.
  95. А.И., Горяников Ю. В. Влияние бассиностероидов на рост и развитие оздоровленных растений картофеля в предгорной зоне Карачаево-Черкесии. / Вопросы картофелеводства. Материалы школы молодых ученых.- М.: ВНИИКХ Россехозакадемии, 2004 г. с.129−134.
  96. А.И., Криворучкин Ю. Л., Блинова В. А. Сравнительная оценка оздоровленных исходных линий сортов картофеля из коллекции ВНИИКХ. / Картофелеводство в регионах России: Актуальные проблемы науки и практики. М.: ВНИИКХ РЦСК, 2006. — с.34−37.
  97. А.И. Воспроизводство оздоровленного исходного материала для семеноводства картофеля: обоснование стратегии. // Достижения науки и техники АПК, 2009. № 6. — с.30−33.
  98. А.И. Воспроизводство оздоровленного исходного материала для семеноводства картофеля: 2. Получение исходных растений. // Достижения науки и техники АПК, 2009. № 9. — с.20−22.
  99. А.И. Воспроизводство оздоровленного исходного материала для семеноводства картофеля: 3. Размножение исходных растений. // Достижения науки и техники АПК, 2009. № 12. — с. 17−20.
  100. А.И. Воспроизводство оздоровленного исходного материала для семеноводства картофеля: 4. Использование геропротекторов. // Достижения науки и техники АПК, 2010. № 3. — с.25−28.
  101. А.И. Воспроизводство оздоровленного исходного материала для семеноводства картофеля: 5. Схема лабораторного контроля. // Достижения науки и техники АПК, 2010. № 9. — с.24−26.
  102. А.И. Воспроизводство оздоровленного исходного материала для семеноводства картофеля: б. Методы лабораторного контроля. // Достижения науки и техники АПК, 2011. № 10. — с.23−25.
  103. Д.И., Харлампьева Н. И., Максакова В. М., Хилкова О. Г., Иванченко Е. А., Жуковский Д. И., Бордукова М. В. Семеноводство картофеля в РСФСР. М., Сельхозиздат, 1963, — 168 с.1
  104. Д.И., Максакова В. М., Иванченко Е. А., Карпуков В. М. Семеноводство картофеля в Центральной нечерноземной зоне. Приокское книжное издательство, Тула, 1968.- 120 с.
  105. М. X. Роль регуляторов роста в жизни растений и в практике сельского хозяйства. // Изв. АН СССР, сер. биол., 1982. с.5−25.
  106. А.А., Зубкова Н. Ф. Отечественные регуляторы роста растений. // Агрохимия, 2003. -№ 11.- с.33−47.
  107. А.Ю., Писарев В. Б., Князева В. П. Использование иммуноферментного анализа для диагностики кольцевой гнили картофеля. В кн.: Биотехнология в картофелеводстве. Научные труды. / Рос. с.-х. акад., НИИ картоф. хоз-ва. М., 1991. — вып.53. -с.79−84.
  108. , Т.Г. Ионитопонная технология ведения первичного семеноводство картофеля. // Картофель и овощи, 2002. № 3. — с.31−32.
  109. Т.Г. Перспективная технология оптимизации первичного семеноводства картофеля. // Наука и инновации, 2006. № 8. — с.37−42.
  110. Т.Г., Бобров В. А. Реализация продукционного потенциала картофеля на безвирусной основе при микроклонировании in vivo на ионообменных субстратах. // Физиология и биохимия культурных растений, 2010. т.42. — № 5. — с.434−442.
  111. A Guide to Seed Certification in England and Wales. / Ministry of Agriculture Fisheries and Food (MAFF): Cambridge, 1993.
  112. Adams M.J., Antoniw J.F. Description of plant viruses. 2008. — Available at http:// www. dp v web .net/
  113. Afek U, Kays S.J. Postharvest physiology and storage of widely used root and tuber crops. // Horticultural Reviews, 2004. v.30. — p.253−318 (in particular, section III-A. Potato, pp.259−271).
  114. Akita M., Takayama S. Stimulation of potato (Solarium tuberosum L.) tuberisation by semi continuous liquid medium surface level control. // Plant Cell Rep, 1994. v. l3.- p. 184−187.
  115. Allen J.R., Knutson K.W. The effect of cold storage on the growth and development of tissue culture propagated potato plantlets. 66-th Annual PAA meeting (abstracts), 1982. — Monterey. — p.459.
  116. Apelbaum A. Polyamines as possible indicators of physiological age. // Potato Res, 1984. v.27. — № 3. — p.309. In: Rapport de la Reunion de la Physiologie de IE APR a Helsinki Finlande, du 25−29 juillet 1983. / W.Reust. -p.307−320.
  117. Asiedu S.K., Astatkie T., Yiridoe E.K. The effect of seed-tuber physiological age and cultivar on early potato production. // J Agron Crop Sci, 2003. v.189. — p.176−184.
  118. Atamna H., Robinson C., Ingersoll R., Ames, B.N. N-t-Butyl Hydroxylamine is an Antioxidant that Reverses Age-related Changes in Mitochondria In Vivo and In Vitro. // FASEB J., 2001. v. l 5, — p. 2196−2204.
  119. Bauer U., Kluge S., Reichenbacher D. Extraction and purification of alfalfa virus. A comparison of method. //Arch. Phytopathol. Pflanzenschute, 1988. v.24. — № 6. — p.485−490.
  120. Bennett S.M., Tibbitts T.W., Cao W. Diurnal temperature fluctuation effects on potatoes growth with 12 h photoperiod. // Am Potato J, 1991. v.68. — p.81−86.
  121. Biotto C.M., Siegenthaler P.A. Study of physiological states of seed potato tubers during their storage. Correlations between morphological and biochemical parameters. Reunion Section Physiologie EAPR. — Le Conquet, France, 1991. -p.39−40.
  122. Bodlaender K.B.A. Influence of temperature, radiation and photoperiod on development and yield. In: Ivins J.D., Milthorpe F.L. (eds). The growth of potato. — Butterworth, London, 1963. — p. 199−210.
  123. Bodlaender K.B.A., Marinus J. Effect of physiological age on growth vigour of seed potatoes of two cultivars. 3. Effect on plant growth under controlled conditions. // Potato Res, 1987. v.30. — № 3. — p.423−440.
  124. Boersig M.R., Wagner S.A. Hydroponic systems for production of seed tubers. // American Potato Journal (abstracts), 1988. v.65. — № 8. — p.470−471.
  125. Burt R.L. Influence of short periods of low temperature on tuber initiation in potato. // Eur Potato J, 1964. v.7. — p. 197−208.
  126. Burton W.G. The potato. 3rd edn. — Longman Scientific and Technical Publications, Harlow, UK, 1966. — 361 p.
  127. Bus C.B., Wustman R. Seed Tubers. Special Issue: The Canon of Potato Science. // Potato Research, 2007. v.50, №¾. — p.319−322.
  128. Caldiz D.O., Panelo D.M., Claver F.K., Montaldi E.R. The effect of two planting dates on the physiological age and yielding potential of seed potatoes grown in a warm temperate climate in Argentina. // Potato Res, 1985. v.28. -№ 4. — p.425−434.
  129. Caldiz D.O., Delia Croce C., Vera E., Marchan L.C. Efectos del almacenamiento y de la epoca de aplicacion del nitrogeno sobre la cobertura foliar y el rendimiento en papa (Solanum tuberosum L.). Rev Latinoam Papa, 1989. -v.2. -p.46−56.
  130. Caldiz D.O. Genetic improvement and associated physiological changes in the potato. In: Genetic improvements in field crops. / Slafer G. (ed.) Genetic Marcel Dekker, New York, 1994. — p. 361−411.
  131. Caldiz D.O., Caso O.H., Vater G., Fernandez L.V. The potential for production of high quality seed potatoes in Tierra del Fuego Island, Argentina. // Potato Res, 1999. v.42. — № 1. — p.9−23.
  132. Caldiz D.O. Analysis of seed and ware potato production systems and yield constraints in Argentina. Ph.D. thesis, 2000. — Wageningen University, Wageningen.
  133. Caldiz D.O. Physiological age research during the second half of the twentieth century. // Potato Res, 2009. v.52. — № 4. — p.295−304.
  134. Chapman H.W. Tuberisation in potato plant. // Plant Physiol, 1958. v. l1. -p.215−224.
  135. Clark M.F., Adams A.N. Characteristics of the microplate method of enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of plant viruses. // J. Gen. Virol., 1977. v.34. — p.475−483.
  136. Claver F.K. Influencia de luz, oscuridad y temperatura sobre la incubacion de la papa. // Phyton, 1951. № 1. — p.3−12.
  137. CSIDC. Northern vigor™ in seed potatoes. 1990.- Available at http ://www4. agr. gc. ca/A AFC-A AC. Accessed 7 March 2008.
  138. Dapkuniene S., Radaviciute A. The influence of kartoline-2 and kartoline-4 on the devirusated potato regeneration from stem segments // Biologija, 1999.-№ 4.- p.75−77.
  139. Darvin Ch. The Descent of Man, and Selection in Relation to Sex. 1-st ed., London: John Murray 1871. — v. l, 424 p. — v.2, 476 p.
  140. De Bokx J.A. Test plants. In: Viruses of potato and seed potato production. / De Bokx J.A. (Ed.) Centre for Agr. Pub. and Doc., Wageningen, The Netherlands, 1972.-p.102−110.
  141. De Bokx J.A., Van der Want J.P.H. Viruses of potatoes and seed potato production. 2nd edn. — Pudoc, Wageningen, The Netherlands, 1987. — 259 p.
  142. De Weerd J.W., Hiller L.K., Thornton R.E. Electrolyte leakage of aging potato tubers and its relationship with sprouting capacity. // Potato Res, 1995. -v.38. № 3. — p.257−270.
  143. Dermastia M., Ravnikar M., Vilhar B., Kovac M. Increased level of cytokinin ribosides in jasmonik acid-treated potato (Solanum tuberosum) stem node cultures // Physiol. Plantarum, 1994. v.92. — № 2. — p. 241−246.
  144. Dilman V.M. Age-associated elevation of hypothalamic threshold to feedback control and its role in development, aging and disease // Lancet., 1971. -v.l.- p.1211−1219.
  145. Dilman V.M. Development, Aging and Disease. A New Rationale for an Intervention Strategy.- Chur: Harwood Academic Publ., 1994.- 387 p.
  146. Dodds J.H., Silva-Rodriguez D., Tovar P. Micropropagation of potato. In: Bajaj P. S. (ed) Biotechnology in agriculture and forestry. — v. 19.- High-tech and micropropagation III.- Springer, Berlin, 1992. — p.92−106.
  147. Engvall E., Perlmann P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Quantitative assay of immunoglobulin G. // Immunochemistry, 1971. v.8. -p.871−874.
  148. Ewing E.E., Wareing P.F. Shoot, stolon and tuber formation on potato {Solanum tuberosum L.) cuttings in response to photoperiod. // Plant Physiol, 1978. v.61. — p.348−353.
  149. Ewing E.E. Heat stress and the tuberisation stimulus. // Am Potato J, 1981. -v.58. p.31−49.
  150. Ewing E.E. Cuttings as simplified models of the potato plant. In: Li P.H. (ed) Potato physiology. — Academic, Orlando, 1985. — p. 154−207.
  151. Ewing E.E., Struik P.C. Tuber formation in potato: induction, initiation and growth. // Hortic Rev, 1992. v. 14. — p.89−197.
  152. Goodwin P.B., Kim Y.C., Adisarwanto T. Propagation of potato by shoot-tip culture. 1. Shoot multiplication. // Potato Res, 1980. v.23. — № 1. — p.9−18.
  153. Gregory L.E. Some factors for tuberisation in potato. // Ann Bot, 1956. -v.41. -p.281−288.
  154. Gugerli P. Improvements of routine tests for potato virus identification. In: Proceedings CIP Decennial Anniversary Congress «Research for the potato in the year 2000». / Lima, Peru: International potato center (CIP), 1982. p.91−92.
  155. Hare P.D., Cress W.A., van Staden J. The involvement of cytokinins in plant responses to environmental stress. // Plant Growth Regul, 1997. v.23. -p.79−103.
  156. Harman D. Aging: A theory based on free radicals and radiation chemistry. // J.Gerontol., 1956. v. 11. — p. 298−300.
  157. Harman D. Free radical theory of aging: History. // Free Radicals and Aging (ed. I. Emerit and B. Chance). Basel: Birkhauser, 1992. — p. 1−10.
  158. Harman D. Aging: Minimizing free radical damage. // J. Anti-Aging Medicine, 1999. v. 2. — p. 15−36.
  159. Harris P.M. The potato crop: the scientific basis for improvement. 2nd edn.-Chapman and Hall, London, UK, 1992. — 909 p.
  160. Hartmans K.J., Van Loon C.D. Effect of physiological age on growth vigour of seed potatoes of two cultivars. 1. Influence of storage period and temperature on sprouting characteristics. // Potato Res, 1987. v.30. — № 3. — p.397−410.
  161. Hayflick L., Moorhead P. S. The serial cultivation of human diploid cell strains.//Exp. Cell Res., 1961. -v.25. -p.585−621.
  162. Hayflick L. How and why we age. // Exp. Gerontol., 1998. v.33. — № 7−8. -p.639−653.
  163. W.J. (Ed) Compendium of potato diseases. American Phytopathological Society, St. Paul, Minnesota, USA, 1981. — 125 p.
  164. Howes R. M. The Free Radical Fantasy: A Panoply of Paradoxes. // Annals of the New York Academy of Sciences, 2006. v. 1067. — p. 22−26.
  165. Hussey G., Stacey N.J. In vitro propagation of potato {Solanum tuberosum L.). // Ann Bot, 1981. v.48. — № 6. — p.787−796.
  166. Hussey G., Stacey N.J. Factors affecting the formation of in vitro tubers of potato {Solanum tuberosum L.). // Ann Bot, 1984. v.53. — p.565−578.
  167. Jackson D.J. Multiple signaling pathways control tuber induction in potato. // Plant Physiol, 1999. v. 119. — p. 1−8.
  168. Jansky S.H., Jin L.P., Xie K.Y., Xie C.H. and Spooner D.M. Potato production and breeding in China. // Potato Research, 2009. v.52, № 1. — p.57−65.
  169. Jones E.D. A current assessment of in vitro culture and other rapid multiplication methods in North America and Europe. // Am Potato J, 1988.- v.65. № 4. — p.209−220.
  170. Kahre L. The history of seed certification in Sweden. // Plant Varieties and Seeds, Stockholm, 1990. № 3. — p. 181−193.
  171. Kawakami K. Physiological aspects of potato seed. Hyogo Agricultural College, Sasayama, Japan, 1952. — 113 p.
  172. Kerr J.F., Wyllie A.H., Currie A.R. Apoptosis: a basic biological phenomenonwith wide-ranging implications in tissue kinetics. // Br. J. Cancer, 1972. v.26. -p.239−257.
  173. Kirkwood T.B.L. Evolution of ageing. // Nature, 1977.- v.270. № 24. — p.301 304.
  174. Kirkwood T.B.L., Boys R.J., Gillespie C.S., Proctor C.J., Shanley D.P., Wilkinson D.J. Towards an e-biology of ageing: integrating theory and data. // Nat Rev Mol Cell Biol., 2003. v.4. — № 3. — p.243−249.
  175. Knowles N.R., Knowles L.O. Manipulating stem number, tuber set and yield relationships for northern- and southern-grown potato seed lots. // Crop Sci, 2006. v.46. — p.284−296.
  176. Knutson K.W. Implication of new technologies for seed potato certification programs and seed growers. // Am Potato J, 1988. v.65. — p.229−235.
  177. Krijthe N.K. Changes in the germinating power of seed potatoes. // Eur Potato J, 1958. № 1. — p.69−71.
  178. Krijthe N.K. Observations on the sprouting of seed potatoes. // Eur Potato J, 1962. № 5.-p.316−333.
  179. Madec P., Perennec P. Les relations entre l’induction de la tuberisation et la croissance chez la plante de pomme de terre (Solarium tuberosum L.). Il Ann Physiol Veg, 1962. v.4. — p.5−84.
  180. Madec P., Perennec P. Les possibilites d’evolution des germes de la pomme de terre et leurs consequences. // Ann Amelior Plant, 1955. № 5. — p.555−574.
  181. Marinus J., Bodlaender K.B.A. Response of some potato varieties totemperature. // Potato Res, 1975. v. 18.- № 2. — p. 189−204.
  182. Marinus J. In vitro multiplication of potatoes: description of methods and experience in Netherlands. Centre for Agricultural Research (CABO), Wageningen, 1985. — p. 1−21.
  183. McCown B.H., Kass I. Effect of production temperature of seed potatoes on subsequent yielding potential. // Am Potato J, 1977. v.54. — p.277−287.
  184. Menzel C.M. Tuberisation in potato at high temperatures: interaction between temperature and irradiance. // Ann Bot, 1985. v.55. — p.35−39.
  185. Mikitzel L.J., Knowles N.R. Effect of potato seed-tuber age on plant establishment and amelioration of age-linked effects with auxin. // Plant Physiol, 1990. v.93.- p.967−975.
  186. Milinkovic M., Horstra C.B., Rodoni B.C., Nicolas M.E. Effects of age and pretreatment of tissue-cultured potato plants of subsequent minituber production // Potato Research, 2012. v.55, № 1. -p.15−25.
  187. Molina A., Gorlach J., Vorath S., Ryals J. Wheat genes encoding two types of PR-1 proteins are pathogen inducible, but do not respond to activators of systemic acquired resistance. // Mol. Plant Microbe Interaction, 1999. -V. 12, № 1. -p.53−58.
  188. Morard P. Les cultures vegetales hors-sol. / Ed. SARL Publications Agricoles,
  189. Agen, France, 1995. 304 p.
  190. Muro J., Diaz V., Goni J.L., Lamsfus C. Comparison of hydroponic culture and culture in a peat/sand mixture and the influence of nutrient solution and plant density on seed potato yields. // Potato Research, 1997. v.40. — № 4, p.431−438.
  191. O’Brien P.J., Allen E.J. (1981) The concept and measurement of physiological age. In: Proceedings of the 8th Triennial Conference of the EAPR. -Miinchen, Germany, 1981. p. 64−66.
  192. O’Brien P.J., Allen E.J., Bean J.N., Griffith R.J., Jones S.A., Jones J.L. Accumulated day-degrees as a measure of physiological age and the relationships with growth and yield in early potato varieties. // J Agric Sci, 1983. v. 101. -p.613−631.
  193. Olovnikov A.M. The molecular mechanism of morphogenesis: a theory of location DNA. // Biochemistry (Moscow), 1996. v.61. — p. 1383−1401.
  194. Otazu V. Manual on quality seed potato production using aeroponics. / Lima, Peru: International potato center (CIP), 2010. 44 p.
  195. Perennec P. Induction de la tuberisation et inhibition des bourgeons chez la pomme de terre (, Solanum tuberosum L.). Bull Soc Franc Physiol Veg, 1966. -v.12.- p.175−192.
  196. Perennec P., Madec P. Age physiologique du plant de pomme de terre. Incidence sur la germination et repercussions sur le comportement des plantes. // Potato Res, 1980.-v.23. № 2. — p. 183−199.
  197. Potato Explorer. 2011. — Available at http://www.potato.nl/.
  198. Quattrini MM, Saluzzo JA, Fontan HM (2001) Efecto del almacenamiento de la semilla de papa previo a
  199. Pruski K.W. Micropropagation technology in early phases of commercial seed potato production. PhD Thesis, Wageningen University, Wageningen, Netherlands, 2001. — p. 166.
  200. Pruski K.W., Astatkie T., Duplessis P., Nowak J., Struik P.C. Manipulation of microtubers for direct field utilization in seed production. // Am J Potato Res, 2003. v.80. — p. 173−181.
  201. Pruski K. In Vitro Multiplication through Nodal Cuttings. Special Issue: The Canon of Potato Science. // Potato Research, 2007. v.50, №¾. — p.293−296.
  202. Radtke W., Reichmann W. Krankheiten und Schaedlinge der Kartoffel. / Verlag Th. Mann, Gelsenkirchen-Buer, Germany, 1990. 168 p.
  203. Ranalli P. Innovative propagation methods in seed tuber multiplication programmes. // Potato Res, 1997. v.40. — № 4. — p.439−453.
  204. Reust W., Aerny J. Determination of physiological age of potato tubers with using sucrose, citric and malic acid as indicators. // Potato Res, 1985. v.28. — № 2. — p.251−261.
  205. Rokitskaya T.I., Klishin S.S., Severina I.I., Skulachev V.P., Antonenko Yu.N. Kinetic analysis of permeation of mitochondria-targeted antioxidants across bilayer lipid membranes. //J. Membr. Biol., 2008.- v. 224. p. 9−19.
  206. Rolot J.L., Seutin H. Soilless production of potato minitubers using hydroponic technique. // Potato Research, 1999. v.42. — № 3−4, p.457−469.
  207. Sacher R.F., Iritani W.M. Tetrazolium tests as indicators of tuber physiological age and yield potential. // Am Potato J, 1982. v. 59. — № 12. -p.613−625.
  208. Salazar L. F. Potato viruses and their control. / Lima, Peru: International potato center (CIP), 1996. 214 p.
  209. Sato K., Ichiyama S., Linuma Y., Nada T., Shimokata K., Nakashima N. Evaluation of immunochromatographic assay systems for rapid detection of hepatite B surface antigen and antibody. // J. Clin. Microbiol., 1996. v.34. -p. 1420−1422.
  210. Scholte K. Relation between storage T sum and vigour of seed potatoes. In: th .
  211. Abstracts of the 10 Triennial Conference of the EAPR. Aalborg, Denmark, 1987. -p.28−29.
  212. Schulz-Aellen M.-F. Aging and human longevity. Boston: Birkhauser, 1997.-283 p.
  213. Seabrook J.E.A., Coleman S., Levy D. Effect of photoperiod on in vitro tuberisation of potato (Solarium tuberosum L.). // Plant Cell Tiss Organ Cult, 1993. -v.34. -p.43−51.
  214. Seabrook J.E.A., Percy J.E., Douglass L.K., Tai G.C.C. Photoperiod in vitro affects subsequent yield of greenhouse-grown potato tubers. // Am Potato J, 1995. v.72. — p.365−372.
  215. Simakov E.A., Anisimov B.V., Yashina I.M., Uskov A.I., Yurlova S.M., Oves E.V. Potato breeding and seed production system development in Russia. // Potato Research, 2008. v.51, № 3−4. — p.313−326.
  216. Sivori E.M. La degeneracion de la papa. // Ciene Investig, 1951. № 8. -p.289−336.
  217. Skulachev V.P. Phenoptosis: programmed death of an organism. // Biochemistry (Moscow), 1999. v.64.- № 12. — p.1418−1426.
  218. Skulachev V.P. Mitochondrial physiology and pathology- concepts of programmed death of organelles, cells and organisms. // Mol Aspects Med, 1999. -v.20. № 3. — p.139−184.
  219. Skulachev V.P. The programmed death phenomena, aging and the Samurai low of biology. // Exp. Gerontol, 2001, — v.36, № 7. -p.995−1024.
  220. Skulachev V.P. Model Systems in Ageing. // Topics in Current Genetics, 2003. -v.3 (Nystrom, T., and Osiewacz, H.D., eds). Berlin Heidelberg: SpringerVerlag. -p. 191−238.
  221. Skulachev V.P., Longo V.D. Aging as a mitochondria-mediated atavistic program: can aging be switched off? // Ann. N. Y. Acad. Sci., 2005. v. 1057. -p.145−164.
  222. Steward F.C., Moreno U., Roca W.M. Growth, form and composition of potato plants as affected by environment. // Ann Bot, 1981. v.48. — p.1−45.
  223. Struik P.C., Haverkort A.J., Vreugdenhil D., Bus C.B., Dankert R. Manipulation of tuber-size distribution of a potato crop. // Potato Research, 1990. -v.3. № 4. — p.417−432.
  224. Struik P.C. Plant tissue culture. In: Biotechnological innovations in crop improvement. / Open Universiteit, Heerlen, The Netherlands and Thames Polytechnic, London, UK. Butterworth/Heinemann, 1991. — p.66−97.
  225. Struik P.C., Wiersema S.G. Seed potato technology. / Wageningen: Wageningen Pers, The Netherlands, 1999. 382 p.
  226. Struik P.C., Vreugdenhil D., van Eck H.J., Bachem C.W., Visser R.G.F. Physiological and genetic control of tuber formation. // Potato Res, 1999. v.42. -№ 2. — p.313−331.
  227. Struik P.C. Physiological age of seed potatoes. // Nordic Assoc Agric Sci, 2006.- № 2. p.3−5.
  228. Struik P.C., Van der Putten P.E.L., Caldiz D.O., Scholte K. Response of stored potato seed tubers from contrasting cultivars to accumulated day-degrees. // Crop Sci, 2006. v. 46. — p. 1156−1168.
  229. Struik P.C. Minitubers. Special Issue: The Canon of Potato Science. // Potato Research, 2007. v.50. — №¾. — p.305−308.
  230. Struik P.C. Physiological age of seed tubers. Special Issue: The Canon of potato Science. // Potato Research, 2007. v.50. — №¾. — p.375−377.
  231. Tadesse Mehari, Lommen W.J.M., Struik P.C. Effect of in vitro treatments on leaf area growth of potato transplants during acclimatization. // Plant, Cell, Tissue, Organ Culture, 2000.- v.61. -p.59−67.
  232. Tadesse Mehari, Lommen W.J.M., Struik P.C. Effects of temperature pre-treatment of transplants from in vitro produced potato plantlets on transplant growth and yield in the field. // Potato Research, 2001. v.44. — № 2. — p. 173−185.
  233. Tadesse Mehari. Transplants. Special Issue: The Canon of Potato Science. // Potato Research, 2007. v.50. — №¾. — p.297−299.
  234. Tibbitts T.W., Bennett S.M., Cao W. Control of continuous irradiation injury on potatoes with daily cycling. // Plant Physiol, 1990. v.93. — p.409−411.
  235. Tibbitts T.W., Cao W., Wheeler R.M. Growth of potatoes for CELSS. / NASA Contractor Report 177 646. Department of Horticulture, University of
  236. Wisconsin, Madison, WI 53 706, USA, prepared for National Aeronautics and Space Administration, Ames Research Center, Contract NCC2−301, 1994. 189 p.
  237. Tizio R.M. Efecto de las altas temperaturas como factor de degeneracion de la papa. // Phyton, 1951. № 1. — p.69−89.
  238. Toosey R.D. The pre-sprouting of seed potatoes: factors affecting sprout growth and subsequent yield. Part I. Field Crop Abstr, 1964. — v. 17. — p. 161−244.
  239. Torrance L., Jones R.A.C. Recent developments in serological methods suited for use in routine testing for plant viruses. // Plant Pathology, 1981. v.30. -p. 1−24.
  240. Tovar P., Estrada R., Schilde-Rentschler L., Dodds J.H. Induction and use of in-vitro potato tubers. CIP Circular, 1985. — v.13. — № 4. — p.1−5.
  241. Valkonen J.P.T. Viruses and Viroids. Special Issue: The Canon of Potato Science. // Potato Research, 2007. v.50. — №¾. — p.251−254.
  242. Van Dam J., Kooman P.L., Struik P.C. Effects of temperature and photoperiod on early growth and final number of potato tubers in potato (Solarium tuberosum L.). // Potato Res, 1996. v.39. — № 1. — p.51−62.
  243. Van der Zaag D.E. Growing seed potatoes. In: Viruses of potatoes and seed-potato production. / De Bokx J.A., Oosterveld P., Quak F., van der Want J.P.H. (Eds.) Pudoc, Wageningen, 1987. — p. 176−203.
  244. Van der Zaag D.E., Van Loon C.D. Effect of physiological age on growth vigour of seed potatoes of two cultivars. 5. Literature review and integration of some experimental results. // Potato Research, 1987. v.30. — № 3.- p.451−472.
  245. Van Es A., Hartmans K.J. Some aspects of changes in chemical composition of tubers and sprouts during physiological ageing. In: Proceedings of the 9th Triennial Conference of the EAPR. Interlaken, Switzerland, 1984. — p. 231−232.
  246. Van Es A., Hartmans K.J. Effect of physiological age on growth vigour of seed potatoes of two cultivars. 2. Influence of storage and storage temperature on dry matter content and peroxidase activity of sprouts. // Potato Res, 1987. v.30. -№ 3.-p.411−421.
  247. Van Ittersum M.K. Dormancy and growth vigour of seed potatoes. -Ph.D. thesis, 1992. Wageningen Agricultural University, Wageningen.
  248. Van Loon C.D. Effect of physiological age on growth vigour of seed potatoes of two cultivars. 4. Influence of storage period and storage temperature on growth and yield in the field. // Potato Research, 1987. v.30. — № 3.- p.441−450.
  249. Wan P., Hu C. In vitro mass tuberisation and virus-free seed-potato production in Taiwan. // Am PotatoJ, 1982. v.59. — p.33−37.
  250. Weismann A. Essays upon heredity and kindred biological problems. -Oxford: Claderon Press, 1889. v. l, 455 p. — v.2, 227 p.
  251. Went F.W. Effects of environment of parent and grandparent generations on tuber production by potatoes. // Am J Bot, 1959. v.46. — p.277−282.
  252. Wheeler R.M., Mackowiak C.L., Sager J.C., Knott W.M., Hinkle C.R. Potato growth and yield using Nutrient Film Technique (NFT). // American Potato Journal, 1990.-v.67. -№ 3.-p. 177−187.
  253. Working group. Effect of physiological age on growth vigour of seed potatoes of two cultivars. 1987. — Report obtainable from IBVL, P.O.Box 18, 6700 AA Wageningen, Netherlands.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!