Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Разработка и эффективность полимеразной цепной реакции при диагностике инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота

Диссертация: Разработка и эффективность полимеразной цепной реакции при диагностике инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Применение метода ПЦР дает возможность выявлять ДНК вируса в пробах, не пригодных для вирусологической диагностики вследствие контаминации микрофлорой, токсичности для культур клеток (вагинальные выделения, абортплоды, сперма). При исследовании биоматериала от абортплодов ПЦР выявляет положительных проб на 16% больше, чем метод молекулярной гибридизации и на 20% больше, чем выделение вируса. ПЦР… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. Характеристика инфекционного ринотрахеита — пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота (ИРТ-ИПВ КРС)
  • 2. Особенности клинического проявления ИРТ КРС и значение латентно инфицированных быков-производителей в распространении заболевания
  • 3. Родственные связи вируса ИРТ КРС с вирусами семейства Bovinae
  • 4. Структура и функционирование генома вируса ИРТ КРС
  • 5. Разработка и применение метода полимеразной цепной реакции (ПЦР) для выявления вируса ИРТ КРС

Разработка и эффективность полимеразной цепной реакции при диагностике инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (ИРТ КРС) — контагиозное заболевание, вызываемое герпесвирусом КРС 1-го типа, проявляющееся в виде поражений респираторного тракта, вульвовагинитов, маститов и абортов у коров, баланопоститов у быков, конъюнктивитов, менингоэнцефалитов, а также, в отдельных случаях, артритов, диарей и генерализованной инфекции у телят.

Среди вирусных болезней крупного рогатого скота ИРТ КРС в последние годы занял ведущее место. Вирус ИРТ КРС является одним из этиологических агентов острых респираторных заболеваний молодняка КРС и гинекологической патологии у взрослых животных.

ИРТ КРС внесен в список секции В справочника, выпущенного Офисом МЭБ, который включает болезни, способные к передаче и рассматривающиеся как «имеющие социо-экономическую важность и/или важность в здравоохранении внутри стран, а также значение в международной торговле животными или животноводческими продуктами» [http://www.oie.intl.

Заболевание регистрируется во всем мире, в том числе России и странах СНГ (А.Г. Глотов, 1999; О. Г. Петрова и соавт., 1999; В. А. Мищенко и соавт., 2001; Н. Ю. Басова, 2002; Н. И. Закутский, 2002; К. П. Юров и соавт., 2003; L.A. Babiuk et al., 1991; L. Turin et al., 2003; M. Ackermann and M. Engels, 2006).

Большую опасность в распространении заболевания представляют латентно инфицированные быки-производители (Е.В. Андреев и соавт., 1975, 1984; Г. Э. Фарботко и соавт., 1989; J.T. van Oirschot et al., 1995).

Известно, что вирус ИРТ КРС способен размножаться в организме латентно инфицированных животных даже на фоне высоких титров вируснейтрали-зующих антител и контаминировать сперму быков-производителей (Р.-Р. Pastoret et al., 1985).

Учитывая масштабы искусственного осеменения, заболевание распространилось в товарных и племенных хозяйствах. Распространению болезни способствовала также слабая эффективность, а порой и отсутствие диагностических и профилактических мероприятий в этот период.

В настоящее время большое значение приобретает разработка методов, основанных на выявлении фрагментов генома возбудителя в биологическом материале. Такими методами являются молекулярная гибридизация и полимеразная цепная реакция, способные выявлять возбудителя на любой стадии заболевания, включая латентную, и позволяющие значительно сократить время на постановку диагноза.

В ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН разработана тест-система для диагностики ИРТ КРС методом молекулярной гибридизации, в основе которой лежит однони-тиевый биотинилированный ДНК-зонд.

Тест-система показала высокую эффективность в производственных условиях (А.Г. Глотов, 1999). НТД на нее утверждена Департаментом ветеринарии МСХ и П РФ 15.08.2001 г. № 13−7-2/1551.

При помощи тест-системы можно проводить массовые диагностические обследования животных в короткие сроки, что важно для планирования и проведения оздоровительных и профилактических мероприятий. Однако чувствительность ее в некоторых случаях недостаточна, т.к. составляет 104ТЦД50/мл.

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) становится одним из важных диагностических тестов в ветеринарной вирусологии (S.Belak et al., 1993). Метод имеет явные преимущества в скорости и чувствительности по сравнению с традиционными вирусологическими методиками, а при высокой специфичности его значение для ветеринарной практики возрастает.

В литературе имеются сообщения о выявлении ДНК вируса при помощи ПЦР в сперме (R.S. Kataria et al., 1997; J. Rola, 1997; J. Rola et al., 1999; J. Zhou et al., 1999; A. Candido et al., 2000; D. Deregt et al., 2000; C.B. Smits et al.- 2000), пробах цельной крови (M. Fuchs et al., 1999), культуральной жидкости (B.P. Sreeni-vasa et al., 1996), полевых изолятах (S. Moore, et al., 1995; S.A. Nadin-Davis et al., 1996; A. Salwa, 1997).

В качестве мишеней амплификации исследователи выбирали гены гликопротеинов (S. Vilcek, 1993; L.H. Wagter et al., 1996; M.A. Rocha et al., 1998; C. Ros et al., 1999), а также тимидинкиназы (F.S. Kibenge et al., 1994; J.Q. Xia et al., 1995a, вC.V. Yason et al., 1995) — использовали или стратегию гнездовой ПЦР, или ПЦР в комбинации с блот-гибридизацией в порядке достижения наивысшей чувствительности (S.A. Masri et al., 1996).

При помощи метода ПЦР можно в короткие сроки и с высокой точностью исследовать различные виды биоматериала от животных на наличие вируса ИРТ КРС. Большой интерес представляет исследование банков спермы на племпредприятиях с целью выявления эякулятов, инфицированных вирусом.

Цель и задачи исследований. Целью работы являлась разработка ПЦР для диагностики ИРТ КРС и сравнительное изучение ее диагностической эффективности.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Провести подбор праймеров и оптимальных параметров проведения диагностической ПЦР, определить ее чувствительность и специфичность. Тестировать референтные штаммы и изоляты вируса, выделенные от животных на территории РФ и типированные в реакции нейтрализации в культуре клеток;

2. Изучить сравнительную диагностическую эффективность ПЦР с методами выделения вируса в культуре клеток и молекулярной гибридизации, а также в производственных условиях на пробах биологического материала от животных;

3. Изучить степень контаминации вирусом банков спермы, полученной от латентно инфицированных быков-производителей, на головных племпредприятиях Сибири и провести генотипирование выделенных изолятов.

Научная новизна.

1. Впервые в РФ разработана диагностическая ПЦР, использующая в качестве мишени последовательности гена тимидинкиназы вируса ИРТ КРС;

2. Изучена эффективность реакции в сравнении с методами молекулярной гибридизации и выделения вируса в культуре клеток, показана ее высокая диагностическая эффективность в производственных условиях;

3. Впервые методом ПЦР изучена степень контаминации банков спермы, полученной от инфицированных быков-производителей, на племпредприятиях, а также проведено генотипирование выделенных изолятов вируса при помощи ПЦР-ПДРФ анализа с использованием праймеров, комплементарных последовательностям гена гликопротеина В вируса.

Научная новизна подтверждена двумя патентами Российской Федерации.

Теоретическая и практическая значимость работы. Материалы диссертации использованы при составлении:

— Методических рекомендаций «Вирусные заболевания крупного рогатого скота в Сибири и на Урале (Особенности эпизоотологии, клинического проявления, диагностика, меры профилактики и борьбы)», утвержденных Ученым советом ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН (прот. № 1, 12.01.2001) и подсекцией секции инфекционной патологии отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии «Проблемы инфекционной патологии животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» (прот. № 1, 15.01.2001);

— Методических рекомендаций «Выявление вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции с последующей дифференциацией вакцинного штамма и эпизоотических изолятов», утвержденных Ученым советом ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН (прот. №.

6, 09.11.2004) и подсекцией секции инфекционной патологии отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии «Проблемы инфекционной патологии животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» (прот. № 11, 10.11.2004);

Результаты исследований представляют теоретическую и практическую ценность, создают перспективы использования ПЦР не только в диагностике ИРТ КРС, но и в молекулярной эпизоотологии болезни и могут быть использованы для оптимизации противоэпизоотических мероприятий. Разработанная ПЦР может найти широкое применение в практике для диагностики различных форм ИРТ КРС у животных разных половозрастных групп. Особое значение имеет данный метод при исследовании банков спермы быков-производителей.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены на Международной научно-практической конференции (Покров, 2002) — Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях» (Воронеж, 2002) — IV Всероссийской научно-практической конференции «Генодиагностика инфекционных заболеваний» (Москва, 2002) — 6-й Международной научно-практической конференции «Аграрная наука Сибири, Монголии, Казахстана и Башкорстана — сельскому хозяйству» (Новосибирск, 2003) — 2-й Международной научно-практической конференции Ставропольского ГАУ (Ставрополь, 2003).

Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликовано 9 печатных работ (журнал «Ветеринария», сборники научных трудов, патенты РФ).

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 110 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы,.

ВЫВОДЫ.

1. Разработанная диагностическая ПЦР с праймерами, комплементарными последовательностям гена тимидинкиназы (TK-gen) вируса ИРТ КРС, обладает высокой чувствительностью и специфичностью. Реакция достоверно выявляет ДНК всех исследованных референтных штаммов и изолятов вируса. В результате амплификации ДНК вируса синтезируется фрагмент 298 п.о.

2. Эффективность ПЦР с праймерами на TK-gen в среднем выше, чем метода молекулярной гибридизации на 11% и выделения вируса в культуре клеток на 12,3% при исследовании проб биоматериала от больных и инфицированных вирусом животных различных половозрастных групп. Время исследования 100 проб биоматериала составляет 48 часов, что по срокам постановки превосходит метод выделения вируса в 36 раз.

3. Применение метода ПЦР дает возможность выявлять ДНК вируса в пробах, не пригодных для вирусологической диагностики вследствие контаминации микрофлорой, токсичности для культур клеток (вагинальные выделения, абортплоды, сперма). При исследовании биоматериала от абортплодов ПЦР выявляет положительных проб на 16% больше, чем метод молекулярной гибридизации и на 20% больше, чем выделение вируса. ПЦР также эффективнее метода молекулярной гибридизации и выделения вируса на 5% и 2%, соответственно, при тестировании биоматериала от телят и на 10,6% и 20%, соответственно, при тестировании биоматериала от коров. В сперме быков-производителей ПЦР выявляет на 13,5% больше положительных проб, чем два других метода.

4. ПЦР с праймерами на TK-gen выявляет ДНК вируса во всех описанных в литературе органах-мишенях для его репликации: в пробах легких (32,3%), трахеи (39,1%), носовой перегородки и слизистой носа.

44%), носовых выделениях телят (39,7%), вагинальных выделениях (36,7%), молоке (28,6%), экссудате и слизистой оболочке матки (11,5%) коров и телок.

5. Контаминация банка спермы вирусом ИРТ КРС на двух племпредприятиях, изученная при помощи ПЦР с праймерами на TK-gen, составляет в среднем 22%. ПЦР позволяет давать оценку спермы на наличие в ней ДНК вируса ИРТ КРС и решать вопрос о ее пригодности к использованию.

6. Генотипирование 7 изолятов вируса ИРТ КРС, выделенных из спермы быков-производителей, с использованием ПЦР с праймерами на гликопротеин В с последующим ПДРФ анализом при помощи рестриктаз Hpal и SacII установило их различную природу. Один изолят отнесен к группе «вакцинных», четыре к группе эпизоотических (два «респираторные» и два «генитальные»), а остальные имели «смешанный» профиль, соответствующий ДНК вакцинного («ТК-А») и эпизоотического штаммов.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

На основании проведенных исследований рекомендовано:

1. Учитывая высокую чувствительность ПЦР с праймерами на ген тимидинкиназы, включить данный метод в схему диагностических исследований на инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота, в том числе использовать для скрининговых исследований банков спермы на наличие вируса и решения вопроса о ее пригодности к использованию;

2. ПЦР-ПДРФ анализ использовать в племенных хозяйствах и на племпредприятиях в случае необходимости проведения дифференциальных диагностических исследований, а также при изучении молекулярной эпизоотологии болезни.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Е.В. Вирусные инфекции слизистых оболочек крупного рогатого скота / Е. В. Андреев // Сб. Ветеринария. — 1974. — № 38. — С. 37 — 38.
  2. Е.В. Герпетическая инфекция быков-производителей / Е. В. Андреев, Н. П. Чечеткина, О. В. Дудник // Ветеринария. 1977. — № 9. — С. 56−57.
  3. Е.В. Ассоциированное воздействие на организм вируса и условно-патогенных бактерий / Е. В. Андреев // Ветеринария. 1984. — № 6. — С. 25−27.
  4. И.П. Быстрые методы статистической обработки и планирования экспериментов / И. П. Ашмарин, Н. Н. Васильев, В.А. Амбросов// Л.: Изд-во Ленингр. ун-та.- 1974.- 76 с.
  5. Н.Ю. Респираторные болезни молодняка крупного рогатого скота инфекционной этиологии в условиях Северного Кавказа: Автореф. дис. докт. ветеринар, наук / Н. Ю. Басова. Краснодар, 2002. — 42 с.
  6. .Г. Ветеринарный контроль за воспроизводством крупного рогатого скота / Б. Г. Галлер // Ветеринария. 2001.- № 10. — С. 13 -15.
  7. А.Г. Диагностика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации / А. Г. Глотов, С. Ф. Орешкова // Ветеринария. 1996. — № 6. — С. 24−27.
  8. А.Г. Периодичность выявления ДНК вируса ИРТ КРС в сперме клинически здоровых быков-производителей / А. Г. Глотов // Ветеринария.- 1998. № 1. — С.25 -26.
  9. А.Г. Диагностика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярной гибридизации и особенности эпизоотического процесса в современных условиях: Автореф. дис.. докт. ветеринар, наук /А.Г. Глотов.- Новосибирск, 1999.
  10. А.Г. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота / А. Г. Глотов, А. Ф. Шуляк, Т. И. Глотова и др. // РАСХН, Сиб. отд-ние, ГНУ ИЭВСиДВ. Новосибирск, 2006. — 196 с.
  11. В.В. Методика подсчёта клеток в однослойной культуре ткани / В. В. Горский // Вопросы вирусологии. 1967. -№ 1. — С. 107 — 110.
  12. Л.П. Культивирование клеток и тканей животных / Л. П. Дьяконов, В. Ф. Глухов, А. А. Поздняков и др. // Учебно-методическое пособие. -Ставрополь. -1986.- 96 с.
  13. Н.И. Инфекционный ринотрахеит (ИРТ) и парагрипп-3 (ПГ-3) крупного рогатого скота на комплексах / Н. И. Закутский, В. И. Жестерев, Л. Д. Конакова // Ветеринарная газета.- 2000. № 22 (191). — С.4.
  14. И. Экспресс-метод диагностики инфекционного ринотрахеита у крупного рогатого скота / И. Караджов // Ветер. Сб. 1979. -№ 77 (2).-С. 10−12.
  15. Н.М. Инфекционный ринотрахеит-баланопостит у откормочных бычков / Н. М. Коннов // Сб. науч. тр. КВИ. Киев, 1980. — № 133. -С.9−12.
  16. П.А. Активизация поствакцинального иммунитета у телят с помощью препарата альвеозан / П. А. Красочко, В. А. Матеро // Актуальные проблемы патологии сельскохозяйственных животных: Материалы междунар. конф.- Минск, 2000. С. 120 — 122.
  17. Н.Н. Герпесвирусы и их роль в инфекционной патологии / Н. Н. Крюков // Бюлл. ВИЭВ. -1971.- Вып. 11. С. 7 — 10.
  18. Н.Н. Инфекционный ринотрахеит (пустулёзный вульвовагинит) крупного рогатого скота / Н. Н. Крюков // Бюлл. ВИЭВ. 1972. -Вып.37.-С. 146−149.
  19. Н.Н. Инфекционный ринотрахеит пустулёзный вульвовагинит крупного рогатого скота / Н. Н. Крюков // Итоги науки и техники / Животноводство и ветеринария.- М. — 1980. — С. 32−113.
  20. Н.Н. Микробный пейзаж и иммунологическая реактивность у телят, выращиваемых в условиях промышленной технологии / Н. Н. Крюков, А. Т. Семенюта, Э. А. Шегидевич // Тр. ВИЭВ. М., 1984. — Т.60. — С. 15 -23.
  21. А.Д. Выделение вируса и клинико-морфологические особенности ИРТ у телят раннего возраста // А. Д. Майборода, К. А. Кашкинбаев // Ветеринария. 1977. — № 3. — С. 54 — 55.
  22. Мак Керчер Д. Г. Вирусы и проблема воспроизводства крупного рогатого скота / Д. Г. Мак Керчер // Сельское хозяйство за рубежом. 1970. -№ 7.-С. 31−32.
  23. Т. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. / Т. Маниатис, Э. Фрич, Дж. Сэмбрук. М.: Мир, -1984.-С. 402−408.
  24. И.А. Дифференциация штаммов вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота с помощью рестрикционного анализа / И. А. Морозов, А. Ф. Шуляк, С. К. Артюшин и др. // Мол. генет., микробиол. и вирус. 1991. — № 4. — С. 64 — 67.
  25. В.И. Вопросы этиологии и динамики эпизоотического процесса при вирусных пневмоэнтеритах телят / В. И. Науменков // Ветеринария. 1994. — № 2. — С. 23 — 24.
  26. А.В. Латенция вируса ИРТ у крупного рогатого скота: особенности течения и эффективность иммуномодуляторов: Автореф. дис.. канд. ветеринар, наук / А. В. Нефедченко. Новосибирск, 2002. — 22с.
  27. И.Л. Применение полимеразной цепной реакции в ветеринарии / И. Л. Обухов, А. Н. Панин // Аграрная Россия. 2002. — № 2. — С. 62−64.
  28. В. П. Возможность передачи инфекций со спермой быков / В. П. Радченков, В. К. Стоянов // Зоотехния. 1992. — № 5 — 6. — С. 35 — 37.
  29. Р. Полимеразная цепная реакция / Р. Саики, У. Гиленстен, Г. Эрлих // Анализ генома. Методы. / Под ред. К. Дейвиса. М.: Мир, 1990. — С. 176- 189.
  30. О.И. Диссеминация и персистирование вирусов ИРТ, ПГ-3, ВД-БС в организме телят при экспериментальном заражении / О. И. Сухарев, Н. Р. Гладченко // Биол. препараты против инфекц. бол. жив-х. М., 1981. — С. 87−92.
  31. Н.В. Структура области перекрывания генов 1СР18.5 и gB герпесвируса крупного рогатого скота 1-го типа, штамм ТК-А / Н. В. Тикунова, С. Ф. Орешкова, В. П. Мишин и др. // Вопросы вирусологии. 2001. — № 3 — С.42−46.
  32. В.Н. Диагностика генитальной формы инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота / В. Н. Трефилов // Труды Свердловского и Кировского сельскохозяйственных институтов. Свердловск, 1979. — Т.56.-С.24−27.
  33. Н. Клиническая картина и патологоанатомические изменения при инфекционном ринотрахеите крупного рогатого скота / Н. Усова // Защита животных от инфекционных болезней в комплексах Молдавии. Кишинев, 1980.- С. 24−26.
  34. Г. Э. Разработка метода контроля спермы быков на контаминацию вирусом инфекционного ринотрахеита: Автореф. дис. канд. ветеринар, наук / Г. Э. Фарботко. М., 1989.
  35. Г. Э. Эпизоотическая обстановка по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота на племпредприятиях / Г. Э. Фарботко, К. Н. Кондрахина, Л. Д. Павлова // Ветеринария.-1994. № 8. — С. 27−30.
  36. Н.П. Влияние герпесвируса-1 крупного рогатого скота на сперму и оплодотворение / Н. П. Чечеткина // Актуальные вопросы ветеринарной и зоотехнической науки в интенсификации животноводства: Материалы конференции.- М.: MB А, 1990. С. 179−180.
  37. К.П. Распространение инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи-болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота в различных регионах России / К. П. Юров, А. Ф. Шуляк, О. Г. Петрова и др. // Труды ВИЭВ.-73.- 2003.- С. 15−22.
  38. Ackermann M. The DNA of an IPV strain of bovid herpesvirus 1 in sacral ganglia during latency after intravaginal infection / M. Ackermann, R. Wyler // Vet. Microbiol. 1984.- Feb. Vol.9, № 1.- P. 53 — 63.
  39. Ackermann M. Pro and contra IBR-eradication / M. Ackermann, M. Engels // Vet. Microbiol. 2006. — 113. — P. 293 — 302.
  40. Alegre M. Development of a multiplex polymerase chain reaction for the differentiation of bovine herpesvirus 1 and — 5 / M. Alegre, M. Nanni, N. Fondevila // J. Vet. Med. — 2001. — Oct. Vol. 48, № 8. — P. 613 — 621.
  41. Allan E. Scaning electron microscopy of the tracheal epithelium of calves inoculated with bovine herpesvirus 1 / E. Allan, P. Msolla // Research. Veter. Sc.-1980.-№ 29.- P. 325−327.
  42. Anderson E.C. The prevalence of antibody to the viruses of bovine herpes virus 1, rift valley fever and bluetongue and Leptospira sp. In freeranging wildlife in
  43. Zimbabwe / E.C. Anderson, L.W. Rowe // Epidemiol, and Infect. 1998.- Vol. 121, № 2.-P. 441 -449.
  44. Ashbaugh S.E. Specific detection of shedding and latency of bovine herpesvirus 1 and 5 using a nested polymerase chain reaction / S.E. Ashbaugh, K.E. Thompson, E.B. Belknap et al. // J. Vet. Diagn. Invest. — 1997. — Oct. Vol. 9, № 4. -P. 387−394.
  45. Babiuk L.A. Application of Interferons in the Control / L.A. Babiuk, L.M. Sordillo, M. Campos et al.// Journal of Dairy Science/ 1991. — Vol. 74.- N.12.-P.4385−4398.
  46. Bartha A. Respiratory disease of cattle /А. Bartha // Bull. Off. Internat. Epizoot. 1977.- Vol. 88.- P. 105 — 113.
  47. Beck B.E. Infectious bovine rhinotracheitis encephalomielitis in cattle and its differential diagnosis / B.E. Beck // Canad. Veter. J.-1975. Vol.16, № 9.- p. 269 -271.
  48. Belak S. Application of the polymerase chain reaction (PCR) in veterinary diagnostic virology / S. Belak, A. Ballagi-Pordany // Vet. Res. Commun.- 1993.-Vol. 17.-P. 55−72.
  49. Bitsch V. Infectious bovine rhinotracheitis virus infection in bulls, with special reference to preputial infection / V. Bitsch // Appl. Microbiol. -1973. Vol. 26. — P. 337 -343.
  50. Bitsch V. Persistence of infection with infectious bovine rhinotracheitis virus in Danish cattle herds / V. Bitsch // Nord. Veter. Med. 1978. — Vol. 30, № 4 -5.- P. 178- 185.
  51. Bryson D. Respiratory disease of cattle in England / D. Bryson // Veter. Rec.- 1978. Vol. 103, № 22. — P. 485 — 489.
  52. Candido A. Polymerase chain reaction amplification of genomic fragments of bovine herpesvirus 1 / A. Candido, E. Bontempo, M. Resende // Met. Inst. Oswaldo Crus. — 2000. — Mar.-Apr. Vol. 95, № 2. — P. 225 — 226.
  53. Castrucci G. A serological survey of bovine herpesvirus-1 infection in selekted dairy heards in northern and Central Italy / G. Castrucci, W.B. Martin, F. Frigeri // Compar. Immunol., Microbiol, and Infect. Diseases. 1997.- Vol. 20, № 4.-P. 315 — 317.
  54. Chow T.L., Davies R.W. The susceptibility of mule deer to IBR / T.L. Chow, R.W. Davies // Am. J. Vet. Res. 1964. — Vol. 25, № 10. — P. — 518 — 519.
  55. Dahme E. IBR IPV Infektionen des ZNS / E. Dahme // Tierarztl. Umsch. — 1984. — Vol. 39, № 5. — P. 375 — 376.
  56. Deregt D. Antigenic and molecular characterisation of a herpesvirus isolated from a North American elk / D. Degert, L.T. Jordan, S. Van-Drunen Littel-Van Den Hurk et al. // J. Vet. Res. 2000. — Dec. Vol. 61, № 12. — P. 1614 — 1618.
  57. Edwards S. A tempted reactivation of latent bovine herpes virus 1 infection in calves by infection with ruminant pestiviruses / S. Edwards, P.L. Roeder // Vet. Microbiol. 1983. — Vol. 8, № 6. — P. 563 — 569.
  58. Elashary M.A. Prevalence of antibodies to some bovine viruses in the caribow (Rangifer tarandus caribow) in Quebec, Canada / M.A. Elashary, A. Silima, J.L. Frechtette // Acta. Zool. Fenn. 1983. — Vol. 117, № 3. — P. 107 — 108.
  59. Engels M. Comparison of the genomes of infections bovine rhinotracheitis and infections pustular vulvovaginitis virus strains by restriction endonuclease analysis / M. Engels, F. Steck, R. Wyler // Arch. Virol. 1981. — Vol. 67, № 2. P. -169−174.
  60. Engels M. The genome of caprine herpesvirus 1: genome structure and relatedness to bovine herpesvirus 1 / M. Engels, E. Loepfe, P. Wild et al. // J. Gen. Virol. 1987. — Jul. Vol.68, № 7. — P. 2019 — 2023.
  61. Engels M. Pathogenesis of ruminant herpesvirus infections / M. Engels, M. Ackermann // Vet. Microbiol. 1996. — Nov- Vol. 53, № 1−2. — P. 3−15.
  62. Espinasse J. Reflexions et commentaires sur le role des virus dans les maladies respiratoires des bovins, a travers un sondage serologique effectue dans le cheptel marocain / J. Espinasse // Rec. Med. Veter. 1978. — Vol.154, № 12. — P. 1009−1013.
  63. Euguster A. Isolation of IBR virus from stillborn and neonatal piglets / A. Euguster // Am.Ass. Vet. Labor. Diagn. Ann. Proceed. 1978. — Vol. 21, № 1. — P. 1 -4.
  64. Farley J.E. Inverted repeat sequences in infectious bovine rhinotracheitis virus DNA / J.E. Farley, I.B. Skare, J. Skare // Internat. Conference on Human Herpesviruses. Atlanta, USA. 1980. — P.340−342.
  65. Foulton T. Herpesviridae: Classification et structure en 1991 / T. Foulton // Compar. Immunol, Microbiol and Infect Diseases. 1992. — Vol.15, № 1.-P. 13−29.
  66. Friend M. Serological survey of two deer herds in New-York State / M. Friend, L.G. Halterman // Bull. Wildlife Dis. Assoc. 1967. — Vol. 3, № 1. — P. 32 -38.
  67. Gimeno E.J. Immunohistokemikst pavisande av bovint herpesvirus typ 1 i snitt fran nervvavnad / E.J. Gimeno, G. Ibargoyen, K. Belak et al. // Sven. Veterinartidn. 1990. — Vol. 42, № 15. — P. 653 — 655.
  68. Gupta P.K. Cloning and expression of bovine herpesvirus 1 glycoprotein С / P.K. Gupta, M. Saini, L.K. Gupta et al. // Biochem. Mol. Biol. Int. — 1999. -Vol.47 (№ 2).-P. 275−282.
  69. Hage J.J. Population dynamics of bovine herpesvirus 1 infection in a dairy herd / J.J. Hage, Y.H. Schukken, H.W. Barkema et al. // Vet. Microbiol. 1996.- Vol. 53, № 1−2.- P. 1690- 1800.
  70. Hammerschmidt W. Short repeats cause heterogeniti at genomic terminus of bovine herpesvirus 1 / W. Hammerschmidt, H. Ludwig, H.J. Buhk // J. Virol.-1986.-Vol.58.-P. 43−49.
  71. Hammerschmidt W. Specifity of cleavage in replicative-form DNA of bovine herpesvirus 1 / W. Hammerschmidt, H. Ludwig, H.J. Buhk // Journal of Virology.- 1988.-P. 1355−1363.
  72. Hammerschmidt W. Recombination of genomic terminus of bovine herpesvirus type 1 with cellular DNA / W. Hammerschmidt, H. Ludwig, H.J. Buhk // J. Gen. Virol. 1990. — Vol. 71, № 9. — P. 2043 — 2051.
  73. Honda E. A comparison of polypeptides and restriction endonuclease sites of BHV-1 isolates and identification of IPV virus in Japan / E. Honda, Y. Katsu, K. Okasaki et al. // Nippon Juigaku Zasshi. 1989. — Vol.34, № 1. — P. 45 — 51.
  74. Hossain A. Identification of gene products encoded by the latency-related gene of bovine herpesvirus 1 / A. Hossain, L.M. Schang, C. Jones // J. Virol. 1995. -Vol. 69, № 9.-P. 5345- 5352.
  75. Huigelen C. Allerton virus, a cytopathogenic agent associated with lumpy skin disease. 11. Inoculation of animals with tissue culture passages virus / C. Huigelen, D. Thienport, P.J. Dekeyser // Zbl. Vet. Med. 1960a. — Vol.7. — P. 754.
  76. Huigelen C. Isolation of a cytopathogenic agent from skin lesions of cattle / C. Huigelen, D. Thienport, M. Vandervelden // Nature. 1960b. — Vol.186. — P. 979.
  77. Ibrahim A. Isolation of IBR virus from buffalo in Malasia / A. Ibrahim, S.P. Saw, I. Fatimah et al. // Vet. Rec. 1983. — Vol. 112, № 13. — P. 303 — 304.
  78. Johnston L.A.V. A viral meningoencephalitis in calves / L.A.V. Johnston, G.C. Simmons, M.D. Gavin // Austral. Vet. J. 1962. — № 38. — P. 207 — 215.
  79. Kahrs R.F. Infectious bovine rhinotracheitis. A review and update / R.F. Kahrs //J. Am. Vet. Med. Assoc. 1977. — Vol. 171. — P. 1055 — 1064.
  80. Kataria R.S. Detection of bovine herpesvirus 1 (BHV-1) genomic sequences in bovine semen inoculated with BHV — 1 by polymerase chain reaction / R.S. Kataria, A.K. Tiwari, P.K. Gupta et al. // Acta Virol. — 1997. — Dec. Vol. 41, № 6. -P.311−315.
  81. Kendrick J.W. Infectious pustular vulvovaginitis of cattle / J.W. Kendrick // Cornell. Vet. 1958. — Vol. 48, № 3. — P. 458 — 495.
  82. Kenichi U. Tanpakushitsu kakusan koso / U. Kenichi // Protein. Nucl. Acid and Enzime.- 1992.-Vol.37, № 4.-P. 2374−2378.
  83. Kibenge F.S. Amplification of strains of bovine herpesvirus 1 by use of polymerase chain reaction with primers in the thymidine kinase region / F.S.
  84. Kibenge, L.M. Harris, P.K. McKenna et al. I I J. Vet. Res. 1994. — Sep. Vol. 55, № 9.-P. 1206- 1212.
  85. Kit S. Thymidine kinase-negative bovine herpesvirus type 1 mutant is stable and highly attenuated in calves / S. Kit, H. Qavi, J.D. Gaines et al. // Archives Virology. 1985. — Vol. 86. — P. 63−83.
  86. Kutish G. Characterization of the latency-related transcriptionally active region of the bovine herpesvirus 1 genome / G. Kutish, T. Mainprize, D. Rock // J. Virol. 1990. — Dec. Vol. 64, № 12. — P. 5730 — 5037.
  87. Ludwig H. Bovine herpes mammilitis (BHM) virus and its relationship to other herpesviruses / H. Ludwig // Proc. XX Wld. Congr. (Thessaloniki.1976, July 6−12).- 1976.-P. 1318−1319.
  88. Ludwig H. Bovine herpesviruses. In the Herpesviruses (Edited by B. Roizman) / H. Ludwig // Plenum Press, New York. 1983. — P. 135 — 214.
  89. Luttig J. Erfahrungen beim Auftreten einer Infektion mit dem Virus des Blaschenausschlages des Rindes (IBR-IPV Virus) bei Bullen einer Bessamungsstation / J. Luttig, J. Dedek, E. Ludwig et al. // Mh. Vet.-Med. — 1976. -Vol. 312.-P. 201 -205.
  90. Madin S.H. Isolation of IBR virus / S.H. Madin, C.J. York, D.G. Mc Kercher // Science. 1956. — Vol. 126, № 6. — P. 721 — 722.
  91. Masri S.A. Rapid detection of bovine herpesvirus 1 in the semen of infected bulls by a nested polymerase chain reaction assay / S.A. Masri, W. Olson, P.T. Nguyer et al. // Can. J. Vet. Res. — 1996. — Apr. Vol.60, № 2. P. 100 — 107.
  92. Mayfield J.E. Cloning and cleavage site mapping of DNA from bovine herpesvirus 1 (Cooper strain) / J.E. Mayfield, P.J. Good, H.J. Vanoort et al.// J. Virol., 1983. Vol.- 10.-P. 259−264.
  93. Metzler A.E. Praevalenz des Bovinen Herpesvirus 4 in der schweizerischen Rinderpopulation und moeglische Kreuzreaktion mit dem Bovinen Herpesvirus 1 / A.E. Metzler, R. Wyler // Schweiz. Arch. Tierheilk. 1986. -Vol. 128.-P. 459−467.
  94. Mishra P.K. Infectious bovine rhinotracheitis virus infection and infertily in cows, heifers and buls / P.K. Mishra, A. Mishra // Indian. J. Anim. Sc.- 1987. -Vol. 5, № 4. P.267−271.
  95. Moore S. The detection of bovine herpesvirus 1 in routine diagnostic submissions using PCR / S. Moore, M. Gunn, D. Walls // Biochem. Soc. Trans. -1995. — Mai. Vol. 23, № 2. — P. — 335S.
  96. Moore S. A rapid and sensitive PCR-based diagnostic assay to detect bovine herpesvirus 1 in routine diagnostic submission / S. Moore, M. Gunn, D. Walls // Vet. Microbiol. — 2000. — Jul. 31, Vol. 75, № 2. — P. 145 — 153.
  97. Msolla P.H. Reactivation and shedding of bovine herpesvirus 1 following Dictiocaulus viviparus infection / P.H. Msolla, E.M. Allan, A.E. Selmon et al. // J. Сотр. Pathol. 1983. — Vol.93. — P. 271 — 274.
  98. Mweene A.S. Detection of viral genome in non neutral tissues of cattle experimentally infected with bovine herpesvirus — 1 / A.S. Mweene, K. Okazaki, H. Kida // Japan. J. Vet. Res. — 1996 a. — Vol. 44, № 3. — P. 165 — 174.
  99. Mweene A.S. Development of immuno PCR for diagnosis of bovine herpesvirus — 1 infection / A.S. Mweene, K. Okazaki, E. Ono et al. // J. Clin. Microbiol. — 1996 в. — Mar. Vol. 34, № 3. — P. 748 — 750.
  100. Nadin Davis S.A. Bovine herpesvirus — 1 isolates contain variable copy numbers of GC — rich tandem repeats in the gl non — coding regions of their genomes
  101. S.A. Nadin Davis, C. Lutze — Wallace, X. Zhong // Vims Genes. — 1996. — Vol. 13,№ 3.-P. 263 -268.
  102. Narita M. Neural changes in reccurent infection of infectious bovine rhinotracheitis virus in calves treated with dexamethasone / M. Narita, S. Inui, Y. Mukarami // Am. J. Vet. Res. 1978. — Vol. 39, № 9. — P. 1399 — 1403.
  103. Narita M. Pathological changes in young and adult cattle after intranasal inoculation with infectious bovine rhinotracheitis virus / M. Narita, S. Inui, Y. Mukarami M. // J. Сотр. Pathol. 1982. — Vol.9, № 1. — P. 41 — 49.
  104. Nicolas J.C. PCR et herpes virus / J.C. Nicolas // Lett, infec. microbiol. clin. 1993. — Vol. 8, № 7. — P. 251−252.
  105. Niewohner C. Darstellung und Ergebnisse eines freiwilligen BHV 1 -Sanierungsprogrammes bei Osnabriicker Zuchtgebiet / C. Niewohner. Hannover, 1990.- 64 c.
  106. Nylin B. Reintroduction of bovine herpes virus type 1 into Danish cattle herds during the period 1991−1995: A review of the investigation in the infected herds / B. Nilin, G.K. Madin, L. Rosholt // Acta vet. Scand.-1998. Vol. 39, № 4. -P.401 -413.
  107. OIE Manual, Manual of Standarts// Chapter 2.3.5. 2000.
  108. Onstad O. Vaginitis and balanitis with IRR infection in swine / O. Onstad, F. Saxegaard // Nord. Vet. Med. 1967. — Vol. 19,№ l.-P. 43−57.
  109. Osorio F.A. Comparison of the herpesviruses of cattle by DNA restriction endonuclease analysis and serologic analysis / F.A. Osorio, D.E. Reed, M.J. Van der Maaten et al. // J. Vet. Res. 1985. — Oct. Vol. 46, № 10. — P. 2104 — 2109.
  110. Parsonson I.M. The effect of natural and artificial breeding using bulls infected with, or semen contaminated with, infectious bovine rhinotracheitis virus / I.M. Parsonson, W.A. Snowdon // Aust. Vet. J. 1975. — Vol. 5, № 18. — P. 365 -369.
  111. Pastoret P.- P. Effect de la dexamethasone sur le titre et la taille des plagues du virus de la rhinotracheite infectiuse bovine / P.-P. Pastoret, A. Jetteur, A. Aguilar-Setien et al. // Ann. Med. Vet. 1979b. — Vol. l23. — P. 397 — 402.
  112. Pastoret P.- P. Bovid herpesvirus 1 infection in cattle: pathogenesis, consequences of latency / P.-P. Pastoret, E. Thiry, B. Brochier et al. // Ann. Rech. Vet. -1982. — Vol.13, № 3. — P. 221- 236.
  113. Pastoret P.-P. Diagnosis and prophilaxis of infectious bovine rhinotracheitis: The role of virus latency / P.-P. Pastoret, E. Thiry // Сотр. Immunol. Micribiol. Infect. Dis. 1985. — Vol.8, № 1. — P. 35−42.
  114. Pauli U. Veterinarmedizin und molecularbiologie: Moglichkeiten und Grenzen der Virusdetektion / U. Pauli, R. Zanoni, C. Hertig et al. // Schweiz. Arch. Tierheilk. 1991. — Vol.133, № 1. — P. 35 — 42.
  115. Quirke P. PCR: a bacteriologists dream or nightmare? / P. Quirke // J. Pathol.- 1992.-P. 169.
  116. Raggo C. Expression of bovine interleukin-1 beta in a bovine herpesvirus -1 vector: in vitro analysis /С. Raggo, D.R. Fitzpatrick, L.A. Babiuk et al. // Virology. -1996. Vol. l (№ 22). — P. 78−86.
  117. Renukaradya G.J. Prevalence of infectious bovine rhinotracheitis in Southern India / G.J. Renukaradya // Rev. Sci. Tech. 1996. — Vol. 15, № 3. — P. 1021 — 1028.
  118. Rocha M.A. A. nigh sensitivity nested PCR assay for BHV-1 detection in semen of naturally infected bulls / M.A. Rocha, E.F. Barbosa, S.E. Guimaraes et al. // Vet. Microbiol. — 1998. — Aug. 28, Vol. 63, № 1. — P. 1 — 11.
  119. Rocha M.A. Detection of BHV-1 in naturally infected bovine fetus by a nested PCR assay / M.A. Rocha, E.F. Barbosa, R.M. Guedes et al. // Vet. Res. Commun. 1999. — Mar. Vol. 23, № 2. — P. 133 — 141.
  120. Roizman B. Herpesviruses and Their Replication / B. Roizman, W. Batterson // Virology.- 1985.- Vol.4.- P. 497−525.
  121. Rola J. Amplification of DNA from bovine herpesvirus type 1 / J. Rola // Bull. Veter. Inst, in Pulawy. 1997. — Vol. 41, № 1. — P. 5−10.
  122. Rola J. Detection of bovine herpesvirus 1 in bull semen by PCR / J. Rola, J.F. Zmudzinski // Bull. Veter. Inst. In Pulawy. — 1999. — Vol. 43, № 2. — P. 119−123.
  123. Ross H.M. Fatal infection of neonatal calves by infectious bovine rhinotracheitis virus / H.M. Ross, A.R. Hunter, A.G. Masson et al. // Vet. Rec. -1983.-Vol. 113,№ 10.-P. 217−218.
  124. Rossi C.R. Association between route inoculation with infectious bovine rhinotracheitis virus and site of recrudescence after dexamethasone treatment / C.R. Rossi, G.K. Kiesel, P.F. Rumph // Am. J. Vet. Res. 1982 — Vol. 43, № 8. — P. 1440- 1442.
  125. Rowe R. Causes of abortion in dairy cattle: A diagnosis survey / R. Rowe // American Association of Bovine Practitioner. Annual conference 1 llh (Proceeding).- 1978.-Vol.11.-P. 102- 103.
  126. Santurde G. Rapid and high sensitivity test for direct detection of bovine herpesvirus 1 genome in clinical samples / G. Santurde, N. Da Silva, R. Villares et al. // Vet. Microbiol. — 1996. — Mar. Vol. 49, № 1−2. — P. 81 — 92.
  127. Schang L.M. Analysis of bovine herpesvirus 1 transcripts during a primary infection of trigeminal ganglia of cattle / L.M. Schang, C. Jones // J. Virol. -1997. Vol. 71, № 9. — P. 6786 — 6795.
  128. Schlafer D.H. Experimental transmission of bovine viral diseases by insemination with contaminated semen or during embruo transfer / D.H. Schlafer, J.H. Gillespie, R.H. Foote // Dt. tierarztl. Wschr. 1990. — Vol. 97, N 2 .- P. 68−72 .
  129. Schmitt J. Characterization of the bovine herpesvirus 1 UL8 gene and gene products / J. Schmitt, G.M. Keil // J. Gen. Virol. 1998. — 79 (1). — P. 133−141.
  130. Schroeder R.J. An acute respiratory infection of dairy cattle / R.J. Schroeder, D.M. Moys // Am. J. Vet. Med. Assoc. 1954. — Vol. 125, № 3. — P. 471 -472.
  131. Schwyzer M. Gene contens in a 31-kb segment at the left genome end of bovine herpesvirus-1 / M. Schwyzer, D. Styger, B. Vogt et al. // Vet. Microbiol. -1996. Nov. Vol. 53 (№ 1−2). — P. 67 — 77.
  132. Schynts F. Use of PCR and immunofluorescence to detect bovine herpesvirus 1 recombinants / F. Schynts, A. Vanderplasschen, E. Hanon et al. // J. Virol. Methods. -2001.- Mar. Vol. 92, № 1. — P. 99 — 104.
  133. Seal B.S. Restriction endonuclease analysis of bovine herpesvirus DNA and nucleic acid homology between isolates / B.S. Seal, S.C. Jeor, R.E. Taylor // J. Gen. Virol. 1985. — Vol.66, № 12. — P. 2787 — 2782.
  134. Simard С. Gene mapping of infectious bovine rhinotracheitis viral DNA genome / C. Simard, F. Nadon, C. Seguin et al. // Arch. Virol. 1990. — Vol.110 (№ 1−2).-P. 63−75.
  135. Six A. Latency and reactivation of bovine herpesvirus 1 (BHV-1) in goats and of caprine herpesvirus — 1 (CapHV-1) in calves / A. Six, M. Banks, M. Engels et al. // Arch. Virol.-2000.-Jul. Vol. 146, № 7.-P. 1325- 1335.
  136. Smith G.A. The location and nucleotide sequence of the thymidine kinase gene of bovine herpesvirus type 1.2 / G.A. Smith, P.L. Young, J.S. Mattick // J. Gen. Virol. 1990. — Vol. 71, № 10. — P. 2417 — 2424.
  137. Smith P.C. Necrotic oophoritis in heifers vaccinated intravenously with infectius bovine rhinotracheitis virus vaccine during estrus / P.C. Smith, K. Nusbaum // Amer. J. Vet. Res.- 1990.- Vol. 51, № 7. P. 969 — 972.
  138. Smits C.B. Comparison of three polymerase chain reaction methods for routine detection of bovine herpesvirus 1 DNA in fresh bull semen / C.B. Smits, C. Van Maanen, R.D. Glas et al. // J. Virol. Methods. — 2000. — Mar. Vol. 85, № 1−2. — P. 65 -73.
  139. Sreenivasa B.R. Direct detection of bovine herpesvirus 1 DNA from cell culture fluids using polymerase chain reaction / B.R. Sreenivasa, T.J. Rasool, C. Natarajan // Indian J. Exp. Biol. — 1996. — Nov. Vol.34, № 11. — P. 1169 — 1171.
  140. Stroub O.C. Infectious bovine rhinotracheitis virus. History and recent development / O.C. Stroub // Dev. Biol. Stand. 1975. — Vol.28. — P. 530 — 533.
  141. Stroub O.C. Vorkommen der duren IBR-IPV-viren hervorgerufenen Krankheiten und Moglishe Differential Diagnostische Probleme in den Verschiedenen Kontinenten und Deren Laudern / O.C. Stroub // Dt. Tierarztl. Wschr. — 1978. — Vol. 85, № 3. — P. 84 — 90.
  142. Stroub O.C. Coital exantema (IBR-IPV) / O.C. Stroub, G. Wittmann //th
  143. Conference of the O.I.E. Regional commission for Europe «Aujeszky's disease, genital diseases of cattle. London recommendations, zoo-sanitary situation», Viena, 25−28 September 1984 (Proceeding) Paris. 1984. — P. 205 — 210.
  144. Stroub O.C. Advancesin BHV1 (IBR) research / O.C. Stroub // Dtsch Tierarztl Wochenschr., 2001.- Oct- 108(10). P. 419−22.
  145. Taylor R.E.L. Isolation of infectious bovine rhinotracheitis virus from the sost-shelled tick (Ornithodoros Corioceus) / RE.L. Taylor, B.N. Seal, S.S. Jeor // Science.- 1982. -№ 216.-P. 300−301.
  146. Thein P. Herpesvirusinfektion bei Mensch und Tier. Jhre Problematik und Bekampfung / P. Thein // Berlin und Munchen Tierarztl. Wochenschr. 1980. -Vol.93, № 11.-P. 201 -205.
  147. Tikoo S.K. Bovine herpesvirus 1 (BHV-1): biology, pathogenesis, and control / S.K. Tikoo, M. Campos, L.A. Babiuk // Adv. Virus. Res. 1995. — Vol.45. -P. 191 -223.
  148. Tolari F. Isolation and reactivation of bovid herpesvirus 1 in goats / F. Tolari, H. White, P. Nixon //Adv. Virus.Res. -1990.-Vol. 13,№ 1.-P. 67−71.
  149. Turin L. BHV-1 infection in cattle: an update / L. Turin, S. Russo // Veterinary Bulletin. 2003. — Vol. 73. — 8. — P. 15 — 21.
  150. Ulbrich F. Nachweis von Antikorper gegen IBR/IPV-, VD/MD- und PI3-virus bei vietnamensischen Wasserbiiffeln (Bubalus bubalis) / F. Ulbrich // Monatsh Veterinarmed. 1991. — Vol. 46, № 10. — P.374 — 375.
  151. Van Der Maaten M.J. Ovarion lessions induced in heifers by intravenous inoculation with modified-live IBR virus on the day after breeding / M.J. Van Der Maaten, J.M. Miller// Am. J. Vet. Res. 1985. — Vol. 46, № 9. — P. 1996 — 1999.
  152. Van Engelenburg F.A. Excretion of bovine herpesvirus 1 in semen is detected much longer by PCR than by virus isolation / F.A. Van Engelenburg, F.W. Van Schie, F.A. Rijsewijk // J. Clin. Microbiol. 1995. — Feb. Vol. 33, № 2. — P. 308 -312.
  153. Van Malderen G.E. Bovine herpes virus 1 en 4: een seroepidemiologisch onderzoek van de belgische rundveestapel / G.E. Van Malderen, G. Vanopdenbosch, G. Wellemans // VI Dierg. Tijschr. 1987. — Vol.56. — P. 364 — 371.
  154. Van Oirschot J.T. Bovine herpesvirus in semen of bulls and the risk of transmission: a brief review / J.T. Van Oirschot // Vet. Q. 1995a. — Vol. 17, № 1. -P.29 -33.
  155. Van Oirschot J.T. Virulence and genotype of a bovine herpesvirus 1 isolate from semen of a subclinically infected bulls / J.T. Van Oirschot, F.A. Rijsewijk, P.J. Straver et al. // Vet. Rec. -1995 в. Vol. 137, № 10. — P. 235 — 239.
  156. Vergeron P. Les virus herpetiques / P. Vergeron// Tempo. Med. 1983.-Vol. 143,№ 13−14.-P. 21−23.
  157. Vilcek S. Detection of the bovine herpesvirus-1 (BHV-1) genome by PCR / S. Vilcek // J. Virol. Methods. 1993. — Feb. Vol. 41, № 2. — P. 245 — 247.
  158. Vilcek S. Development of PCR tests for the detection of bovine herpesvirus 1, bovine respiratory syncytial viruses and pestiviruses / S. Vilcek // J. Vet. Med. — 1994 a. — Vol. 39, № 11. — P. 687 — 700.
  159. Vilcek S. Rapid detection of bovine herpesvirus 1 (BHV-1) using the polymerase chain reaction / S. Vilcek, P.F. Nettleton, J.A. Herring et al. // J. Vet. Microbiol. — 1994 в. — Sep. Vol. 42, № 1. — P. 53 — 64.
  160. Vilcek S. Detection of bovine herpesvirus 1 in clinical samples by the polymerase chain reaction / S. Vilcek, P.F. Nettleton, A.J. Herring // Dtsch. Tierartztl Wochenschr. — 1995. — Jun. Vol.102, № 6. — P. 249 — 250.
  161. Weiblen R. Bovine meningoencephalitis from IBR virus / R. Weiblen, C.S. De Barros, T.F. Cannabaro // Vet. Rec. 1990. — Vol. 126, № 1. — P. 21−22.
  162. Wellemans G. Isolement d’un virus herpes chez des bovins attients de metrite poct-partum / G. Wellemans, H. Antoine, A. Broes et al. // Ann. Med. Vet. -1983.-Vol.127.-P. 481 -482.
  163. Wiedmann M. Detection of bovine herpesvirus-1 in bovine semen by a nested PCR assay / M. Wiedmann, R. Brandon, P. Wagner et al. // J. Virol. Methods. 1993.- Sep. Vol. 44,№ 1.-P. 129−139.
  164. Winkler M.T. Persistence and reactivation of bovine herpesvirus 1 in the tonsils of latently infected calves / M.T. Winkler, A. Doster, C. Jones // J. Virol. -2000 a. — Jun. Vol. 74, № 11. — P. 5337 — 5346.
  165. Winkler M.T. Analysis of cyclins in trigeminal ganglia of calves infected with bovine herpesvirus 1 / M.T. Winkler, L.S. Schang, A. Doster et al. // J. Gen. Virol. — 2000 в. — Dec. Vol. 81, № 12. — P. 2993 — 2998.
  166. Winkler M.T. Analysis of bovine trigeminal ganglia following infection with bovine herpesvirus 1 / M. T. Winkler, A. Doster, J.H. Sur et al. // Vet. Microbiol. — 2002. — Apr. 22, Vol. 86, № 1−2. — P. 139 — 155.
  167. Wiseman A. The financial burden of infection rhinotracheitis / A. Wiseman // Vet. Rec. 1979. — Vol. 105, № 20. — P. 469.
  168. Wiseman A. A study of the respiratory diseases of adult cattle in Britain. 4. Infectious bovine rhinotracheitis / A. Wiseman, E.M. Allan, I.E. Selman // Irish. Veter. 1984. — Vol. 38, № 9. — P. 145 — 151.
  169. Woods G.T. Experemental exposure of pigs to infectious bovine rhinotracheitis (IBR) virus / G.T. Woods, R.S. Mayer, J. Simon // Canad. J. Сотр. Med. 1968. — Vol. 32. -P. 480−482.
  170. Wyler R. Infectious bovine rhinotracheitis / vulvovaginitis (BHV-1) / R. Wyler, M. Engels, M. Schwyzer // Herpesvirus Diseases Cattle, Hosses and Pigs. Boston etc. -1989.-P. 1−72.
  171. Zhou J. Improved detection of bovine herpesvirus -1 in artificially infected bovine semen by protein amplification / J. Zhou, J. Lyaku, R.A. Fredrickson // J. Virol. Methods. 1999. — May. Vol. 79, № 2. — P. 181 -189.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!