Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Эмбриоидогенез видов рода Triticum L. в каллусной культуре in vitro

Диссертация: Эмбриоидогенез видов рода Triticum L. в каллусной культуре in vitro
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В целом, эмбриоидогенез in vitro — сложный интегральный процесс, регуляция которого осуществляется на клеточном, тканевом и органном уровнях взаимозависимой системой физиологических (главным образом, фитогормональных) факторов, определяющих процессы формирования и развития эмбриоидов. В то же время использование полученных экспериментальных данных позволяет сделать сложный процесс эмбриоидогенеза… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ЭМБРИОИДОГЕНЕЗ И РЕГЕНЕРАЦИЯ РАСТЕНИЙ IN VITRO В КАЛЛУСНОЙ КУЛЬТУРЕ, ПОЛУЧЕННОЙ ИЗ НЕЗРЕЛЫХ ЗАРОДЫШЕЙ ЗЛАКОВ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
    • 1. 1. Фаза развития зародыша злаков, оптимальная для инокуляции на индукционную питательную среду
    • 1. 2. Эмбриоидогенный каллус, полученный в культуре in vitro незрелых зародышей злаков
      • 1. 2. 1. Общая характеристика каллуса
      • 1. 2. 2. Типы каллусов зародышевого происхождения
      • 1. 2. 3. Цито-гистологическая характеристика каллусов
      • 1. 2. 4. Биохимическая и цитогенетическая характеристика каллусов
    • 1. 3. Эмбриоид и эмбриоидогения in vivo и in vitro
      • 1. 3. 1. Общая характеристика эмбриоида
      • 1. 3. 2. Клеточные механизмы формирования эмбриоидов в каллусной культуре in vitro
    • 1. 4. Роль фитогормонов в морфогенезе растений in vitro
      • 1. 4. 1. Роль 2,4-Д в индукции эмбриоидогенного каллуса, эмбриоидогенезе и регенерации растений злаков in vitro
      • 1. 4. 2. Роль АБК в эмбриоидогенезе и регенерации злаков in vitro
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объект исследования
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Метод культуры in vitro незрелых зародышей яровой пшеницы
      • 2. 2. 2. Цитологические методы исследования
      • 2. 2. 3. Метод иммуноферментного анализа растительных тканей
      • 2. 2. 4. Метод фенологических наблюдений
      • 2. 2. 5. Статистическая обработка полученных результатов
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Цито-гистологическая характеристика незрелого зародыша пшеницы в фазу развития in vivo, оптимальную для получения ^ эмбриоидогенного каллуса in vitro
    • 3. 2. Роль фитогормонов в эмбриоидогенезе яровой пшеницы in vitro
      • 3. 2. 1. Содержание эндогенных фитогормонов в эксплантах — незрелых зародышах пшеницы оптимальной для индукции эмбриоидогенеза фазы развития
      • 3. 2. 2. Действие экзогенного ауксина 2,4-Д на индукцию формирования эмбриоидогенных каллусов в культивируемых in vitro незрелых зародышах пшеницы
      • 3. 2. 3. Влияние экзогенной АБК на формирование и развитие эмбриоидогенных клеточных комплексов
    • 3. 3. Цито-гистологический анализ формирования и развития эмбриоида in vitro
      • 3. 3. 1. Цито-гистологический анализ формирования и развития эмбриоида на индукционной питательной среде II
      • 3. 3. 2. Цито-гистологический анализ формирования и развития эмбриоида на регенерационной питательной среде
    • 3. 4. Развитие растений-регенерантов яровой пшеницы в условиях in vitro и ex vitro. ф 3.4.1. Развитие растений-регенерантов яровой пшеницы в условиях in vitro
      • 3. 4. 2. Развитие растений-регенерантов яровой пшеницы в условиях ех vitro

Эмбриоидогенез видов рода Triticum L. в каллусной культуре in vitro (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Методы культуры in vitro клеток растений в настоящее время широко используются для решения как теоретических, так и прикладных задач физиологии и эмбриологии растений [Бутенко, 1999; Носов, 1999; Razdan, 2003]. Культивируемые клетки представляют собой пластичные системы, обладающие способностью менять процессы дифференциации под воздействием определенных физических и химических факторов. Это свойство дает возможность подобрать условия для максимальной реализации морфогенетического потенциала культивируемого экспланта, заканчивающейся формированием растений-регенерантов при нетрадиционных системах размножения. Кроме того, регенерация фертильных растений в строго контролируемых экспериментальных условиях определяет и практическую значимость большинства методов культуры in vitro.

Одно из перспективных направлений в этой области исследованийметод культуры in vitro изолированных незрелых зародышей, связанный с образованием эмбриоидогенного каллуса, формированием в каллусе эмбриоидов, а затем прорастанием эмбриоидов до зрелых фертильных растений-регенерантов. В основе данного метода лежит феномен эмбриоидогенеза — асексуального формирования эмбриоидов [Батыгина, 1997].

Экспериментально установлено, что важнейшую роль в формировании эмбриоидов и их развитии до растений-регенерантов играют фитогормоны [Li, Qu, 2002; Langhansova et al., 2004; Wang, Bhalla, 2004], что хорошо согласуется с концепцией гормонального контроля экспрессии генома растений [Кулаева, 1978, 1982; Кулаева, Прокопцева, 2004] и теорией физиологической стратегии морфогенеза [Сайб, Карабаев, 1991]. Однако клеточные механизмы влияния фитогормонов на индукцию и процесс эмбриоидогенеза in vitro при культивировании незрелых зародышей изучены недостаточно. В то же время от полноты комплексных знаний о цито-физиологических особенностях этих процессов во многом зависит эффективность биотехнологий, связанных с массовым получением фертильных растений-регенерантов из каллусных тканей, полученных в культуре незрелых зародышей. В этом плане однодольные растения — хлебные злаки, в том числе пшеница, исследованы недостаточно полно. С другой стороны, изучение изолированных незрелых зародышей в строго контролируемых условиях in vitro способствует решению важнейшей фундаментальной проблемы биологии — морфогенеза, выявлению его основных закономерностей и особенностей. Более того, именно зародыш наиболее перспективен в качестве модели при изучении различных аспектов морфогенеза, поскольку обладает всеми морфогенетическими потенциями взрослого растения [Батыгина, 2000].

В связи с этим, цель исследований состояла в выявлении цито-физиологических особенностей эмбриоидогенеза яровой пшеницы в каллусной культуре in vitro. Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Выявить фазу развития in vivo незрелого зародыша, оптимальную для получения эмбриоидогенного каллуса, дать оценку цито-гистологического статуса такого зародыша и содержания в нем эндогенного ауксина ИУК.

2. Определить концентрацию экзогенного ауксина 2,4-Д, оптимальную для индукции эмбриоидогенного каллуса, в зависимости от содержания эндогенного ауксина ИУК в экспланте — незрелом зародыше.

3. Выявить цито-гистологические особенности эмбриоидогенного каллуса и дать цито-гистологическую характеристику эмбриоидогенных клеточных комплексов.

4. Выявить концентрацию экзогенной АБК и длительность культивирования, необходимые для получения максимального количества эмбриоидогенных клеточных комплексов.

5. Провести цито-гистологическое исследование формирования, развития и прорастания эмбриоидов in vitro. Дать сравнительный анализ цито-гистологического статуса сформированного эмбриоида и сформированного зиготического зародыша.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Формирование эмбриоидогенного каллуса in vitro определяется оптимальной фазой развития незрелого зародыша, которая характеризуется определенным цито-гистологическим статусом зародыша и определенным содержанием в нем эндогенного ауксина ИУК.

2. Повышения количества эмбриоидогенных клеточных комплексов можно добиться длительностью культивирования каллусов на питательной среде с определенной концентрацией экзогенной АБК.

3. Эмбриоиды, сформированные in vitro с участием эмбриоидогенного клеточного комплекса как единого целого, развиваются и прорастают типично для зиготических зародышей пшеницы.

Научная новизна работы состоит в проведенном впервые с привлечением данных цито-гистологического и иммуноферментного анализа исследовании эмбриоидогенеза в культуре in vitro незрелых зародышей сортов яровой мягкой и яровой твердой пшеницы через этап формирования эмбриоидогенного каллуса.

Установлено, что основным условием формирования эмбриоидогенных каллусов является инокуляция незрелых зародышей в фазе органогенеза, которая характеризуется определенным цито-гистологическим статусом зародыша.

Показана тенденция обратной зависимости между концентрацией экзогенного ауксина 2,4-Д, необходимой для формирования эмбриоидогенного каллуса, и содержанием эндогенного ауксина ИУК в исходных эксплантах — незрелых зародышах. Выявлена принципиальная цито-гистологическая особенность эмбриоидогенного каллуса — наличие морфогенетического очага, представленного меристематическими клетками. Показано преобразование морфогенетического очага в эмбриоидогенный клеточный комплекс, представленный несколькими зонами клеток и обособленный от остального каллуса.

Установлено, что повышения количества эмбриоидогенных клеточных комплексов можно добиться длительностью культивирования каллусов на питательной среде с определенной концентрацией экзогенной АБК.

По данным цито-гистологического анализа показано, что формирование эмбриоида состояло в реорганизации эмбриоидогенного клеточного комплекса как единого целого и проходило сходно у изученных сортов пшеницы. На основании сравнительного цито-гистологического исследования выявлено принципиальное сходство эмбриоида и зиготического зародыша в развитии и прорастании.

Предложены термины «эмбриоидогенный каллус» и «эмбриодогенный клеточный комплекс», которые отражают суть явления корректнее, чем широко применяемые в соответствующей литературе термины «эмбриогенный каллус» и «эмбриональный клеточный комплекс».

Практическая значимость работы состоит в использовании полученных данных для решения дискуссионных вопросов, связанных с увеличением выхода растений-регенерантов в культуре in vitro незрелых зародышей яровой пшеницы, что имеет несомненное значение как в клонировании растений-регенерантов, так и в ускорении генетико-селекционного процесса по созданию новых форм с использованием методов биотехнологии. Полученные данные представляют интерес для исследователей, изучающих различные аспекты проблемы морфогенеза и регенерации растений в условиях in vitro. Экспериментальные данные рекомендуются для использования при чтении лекций по курсу физиологии и биотехнологии растений в ВУЗах на факультетах биологического профиля.

Связь работы с научными программами. Исследования поддержаны РФФИ (грант № 02−04−48 701, 2002;2004 гг.), ФЦП «Интеграция науки и высшего образования России на 2002;2006 годы» (грант № ЯО 128/1644).

Реализация результатов. Полученные теоретические и практические результаты используются при чтении спецкурса по биотехнологии растений на кафедре биохимии и биотехнологии Башкирского госуниверситета и включены в учебное пособие «Биотехнология растений», изданное в Башкирском государственном университете в 2004 г.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы были доложены и обсуждены на ряде конференций, в том числе на II международной конференции по анатомии и морфологии растений (Санкт-Петербург, 2002), IV международной конференции «Геном растений» (Одесса, 2003), II международной конференции молодых ученых «Современные проблемы генетики, биотехнологии и селекции растений» (Харьков, 2003), VIII международной конференции по биотехнологии (Saratov, 2003), V съезде общества физиологов растений России и международной конференции «Физиология растений — основа фитобиотехнологии» (Пенза, 2003), II международной конференции «Регуляция роста, развития и продуктивности растений» (Минск, 2003), VIII международной пущинской школе-конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2004), XIV конгрессе FESPB (Cracow, 2004), международной научной конференции «Молекулярная генетика, геномика и биотехнология» (Минск, 2004).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 17 работ, в том числе 2 статьи в рецензируемых изданиях. 2 статьи находятся в печати.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 170 страницах, состоит из введения, обзора литературы, описания объекта и.

выводы.

1. Впервые проведено исследование эмбриоидогенеза с привлечением данных цито-гистологического и иммуноферментного анализа в культуре in vitro незрелых зародышей сортов яровой мягкой и яровой твердой пшеницы через этап формирования эмбриоидогенного каллуса.

2. Показано, что фаза развития in vivo незрелого зародыша, оптимальная для получения эмбриоидогенного каллуса, соответствует фазе органогенеза и сходна у изученных сортов яровой пшеницы в сроках наступления (15−17 сут после опыления) и в цито-гистологическом статусе зародыша (наличие всех органов, отсутствие плотной клеточной стенки у эпидермальных клеток щитка).

3. Показана тенденция обратной зависимости между концентрацией экзогенного ауксина 2,4-Д, необходимой для формирования эмбриоидогенного каллуса, и содержанием эндогенного ауксина ИУК в исходных эксплантах — незрелых зародышах.

4. Выявлено, что формирование эмбриоидогенного каллуса у изученных видов пшениц происходит за счет эпидермальных клеток щитка незрелого зародыша. Цито-гистологический статус как эмбриоидогенного каллуса (наличие морфогенетического очага, представленного меристематическими клетками), так и эмбриоидогенного клеточного комплекса (наличие нескольких зон клеток, обособленных от остального каллуса) у изученных видов пшениц характеризуются сходством.

5. Установлено, что цито-гистологической основой повышения регенерационной способности каллусов под действием экзогенной АБК является увеличение количества эмбриоидогенных клеточных комплексов.

6. На основании данных цито-гистологического анализа показано, что формирование эмбриоида состояло в реорганизации эмбриоидогенного клеточного комплекса как единого целого и проходило сходно у изученных сортов пшеницы.

7. На основании данных цито-гистологического анализа показано, что развитие эмбриоида in vitro у изученных сортов яровой пшеницы проходило одинаково и соответствовало развитию зиготического зародыша донорного растения.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Для ускорения селекционных исследований по созданию новых сортов яровой пшеницы рекомендуется использовать методические нюансы культивирования in vitro незрелых зародышей с учетом цито-физиологических данных:

1. Проводить фенотипический подбор донорных растений на 15−17 сут после опыления, что соответствует фазе развития, оптимальной для индукции формирования эмбриоидогенного каллуса.

2. При оптимизации питательной среды для получения эмбриоидогенного каллуса рекомендуется учитывать содержание эндогенного ауксина ИУК в исходных эксплантах — незрелых зародышах.

3. Проводить подбор концентрации экзогенной АБК в питательной среде для культивирования эмбриоидогенных каллусов для увеличения их эмбриоидогенной способности.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Морфогенез в культуре in vitro незрелых зародышей зависит от комплекса разнообразных факторов. Сочетание факторов определяет как пути морфогенеза, так и способы образования растений-регенерантов [Батыгина, 1999, 2000; Батыгина, Васильева, 2002].

Один из путей морфогенеза в условиях культуры in vitro незрелых зародышей — эмбриоидогенез (соматический эмбриогенез) в предварительно полученном эмбриоидогенном каллусе. Следует отметить, что предложенный нами термин «эмбриоидогенный каллус» отражает суть явления корректнее, чем широко применяемый в соответствующей литературе термин «эмбриогенный каллус».

Проведенное изучение эмбриоидогенеза различных сортов у двух видов яровой пшеницы с применением цито-гистологического и иммуноферментного методов показало, что это сложный процесс, в котором формирование, выживание и развитие эмбриоидов зависят от многих факторов.

Одним из важнейших факторов, определяющих эмбриоидогенную способность каллусов, является выбор экспланта — незрелого зародыша в оптимальной фазе развития, когда ткани обладают наибольшим морфогенным потенциалом. Как правило, исследователи [Przetakiewicz et al., 2003; Pellegrineschi et al., 2004; Zale et al., 2004] используют незрелые зародыши пшеницы на 10−22 сут после опыления при их определенной длине. Однако оставалось неясным, в какой фазе развития находится при этом зародыш, все ли клетки незрелых зародышей являются тотипотентными, существует ли разница в возникновении эмбриоидогенных каллусов у различных видов яровой пшеницы — мягкой и твердой.

Согласно полученным нами экспериментальным данным, эмбриоидогенный каллус у изученных сортов мягкой и твердой яровой пшеницы берет начало от эпидермальных клеток щитка незрелого зародыша оптимальной фазы развития (фаза органогенеза, по периодизации [Батыгина, 1997]), которая характеризуется определенным цито-гистологическим статусом и определенным содержанием эндогенного ауксина ИУК. Принципиально важно, что в данную фазу эпидермальные клетки щитка не покрыты плотной клеточной стенкой. Основную роль в индукции формирования эмбриоидогенного каллуса играет концентрация экзогенного ауксина 2,4-Д, которая зависит от содержания эндогенного ауксина ИУК в незрелых зародышах оптимальной фазы развития, при этом содержание этого фитогормона различно у каждого из изученных сортов. По-видимому, незрелый зародыш именно этой фазы развития обладает нужной степенью дифференцированности клеток, которая выражается в компетентности эпидермальных клеток щитка к внешним гормональным воздействиям. Вероятно, на процесс формирования эмбриоидогенного каллуса оказывают влияние градиенты гормональных и трофических факторов, присутствующие во всех тканях и органах незрелых зародышей, однако этот важный вопрос требует специальных исследований.

Принципиальное отличие эмбриоидогенного каллуса от неэмбриоидогенного, полученных из незрелых зародышей пшеницы обоих сортов, заключается в наличии морфогенетического очага, представленного меристематическими клетками.

Анализ полученных экспериментальных данных свидетельствует о том, что эмбриоидогенез в каллусной культуре изученных сортов двух видов яровой пшеницы (мягкой и твердой) протекает как трехэтапный процесс, при этом успех последующего этапа полностью зависит от предыдущего. Привлеченный нами цито-физиологический подход позволил дать общую для изученных сортов цито-гистологическую характеристику всех выявленных этапов эмбриоидогенеза in vitro, а также фитогормональную оценку индукции эмбриоидогенеза in vitro у каждого сорта.

Первый этап эмбриоидогенеза состоял в формировании в эмбриоидогенном каллусе эмбриоидогенного клеточного комплекса путем преобразования входящего в состав каллуса морфогенетического очага. При этом показана возможность повышения эмбриоидогенной способности каллусов определенной длительностью культивирования на среде с определенной концентрацией экзогенной АБК. Второй этап эмбриоидогенеза состоял в формировании эмбриоида путем реорганизации всего эмбриоидогенного клеточного комплекса как единого целого. Третий этап эмбриоидогенеза состоял в развитии эмбриоида до сформированной стадии. Сформированный эмбриоид представлен типичными для сформированного зиготического зародыша пшеницы органами.

Далее сформированный эмбриоид прорастает и дает начало зрелому фертильному растению-регенеранту с эмбриологическими показателями, типичными для пшеницы. Именно регенерация фертильных растений в строго контролируемых экспериментальных условиях определяет перспективность применения метода культуры in vitro незрелых зародышей пшеницы.

В целом, эмбриоидогенез in vitro — сложный интегральный процесс, регуляция которого осуществляется на клеточном, тканевом и органном уровнях взаимозависимой системой физиологических (главным образом, фитогормональных) факторов, определяющих процессы формирования и развития эмбриоидов. В то же время использование полученных экспериментальных данных позволяет сделать сложный процесс эмбриоидогенеза in vitro в культуре незрелых зародышей пшеницы управляемым и получать полноценные фертильные растения-регенеранты. Кроме того, изучение путей и способов получения полноценных фертильных растений-регенерантов в культуре in vitro незрелых зародышей способствует решению актуальной фундаментальной научной проблемы сохранения генофонда и биоразнообразия.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.К., Бишимбаева Н. К. Идентификация типов каллусных тканей пшеницы и изучение путей их метаморфоза // Вестник КазНУ, серия биол. 2002а. — № 3 (18). — С. 15−19.
  2. А.К., Бишимбаева Н. К. Получение длительно культивируемых рыхлых эмбриогенных каллусов пшеницы под действием 2,4-Д и КН2РО4 // Биотехнология. Теория и практика. 20 026. — № 1. — С. 60 -65.
  3. В.П., Хведынич О. А., Кравец Е. А. и др. Основы эмбриогенеза злаков. Киев: Наук, думка, 1991. — 176 с.
  4. Е.А., Банникова В. П. Гистологическая характеристика культивируемых in vitro зародышей озимой пшеницы // Цитогенетика зерновых культур. Таллин, 1990. — С. 22.
  5. Т.Б. Хлебное зерно. Л.: Наука, 1987. — 103 с.
  6. Т.Б. Эмбриоидогения — новый тип вегетативного размножения // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 3: Системы репродукции / Ред. Т. Б. Батыгина. СПб.: Мир и семья, 2000. — С. 334 — 349.
  7. Т.Б. Эмбриоидогения // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 2: Семя / Ред. Т. Б. Батыгина. СПб.: Мир и семья, 1997. — С. 624 — 648.
  8. Т.Б., Васильева В. Е. Размножение растений. СПб.: Изд-во Санкт-Петербургского университета, 2002. — 232 с.
  9. Т.Б., Васильева В. Е., Маметьева Т. Б. Проблемы морфогенеза in vivo и in vitro (эмбриоидогенез у покрытосеменных) // Ботан. журн. — 1978. -Т. 63, № 1.-С. 87−111.
  10. Т.Б., Захарова А. А. Параллели в развитии полового и соматического зародышей // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 2: Семя / Ред. Т. Б. Батыгина. СПб.: Мир и семья, 1997.-С. 635−648.
  11. Т.Б. Эмбриогенез и морфогенез половых и соматических зародышей // Физиол. раст. 1999. — Т. 46, № 6. — С. 884 — 898.
  12. Н.В. Взаимовлияние гормонов питательной среды и гормонов экспланта в культуре пыльников яровой мягкой пшеницы // III съезд ВОФР: Тез. докл. СПб., 1993. — С. 66.
  13. Г., Бергер В., Домшке Г. Органикум. М.: Мир, 1979. — С. 228 250.
  14. М.А., Голденкова И. В., Сазонова И. А., Ралдугина Т. Н. Агробактериальная трансформация льна-долгунца (Linum usitatissimum L.) // Междунар. конф. «Физиология растений основа фитобиотехнологии». -Пенза, 2003.-С. 482.
  15. Н.К., Денебаева М. Г. Влияние 2,4-Д на структуру клеточных популяций рыхлого эмбриогенного каллуса ячменя // Вестник БГУ. 2001. -№ 2 (1). — С. 107 — 109.
  16. Н.К., Денебаева М. Г., Амирова А. К., Рахимова Е. В. Особенности гистологического строения рыхлых эмбриогенных каллусов ячменя (.Hordeum vulgare) // Известия ПАН РК, серия биологическая и медицинская.-2001.-№ 1−2.-С. 7- 14.
  17. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. — 272 с.
  18. Р.Г. Тотипотентность растительной клетки // Культура 0 изолированных органов, тканей и клеток растений. — М.: Наука, 1970. — С. 43−46.
  19. Р.Г. Дифференциация и морфогенез в культуре тканей, клеток и протопластов // Биология развития растений. — М.: Наука, 1975а. — С. 48 — 65.
  20. Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений // XXXV Тимирязевские чтения. М.: Наука, 19 756.-51 с.
  21. Р.Г. Клеточные технологии в сельскохозяйственной науке и практике // Основы сельскохозяйственной биотехнологии. — М.: Агропромиздат, 1990а.-С. 154−235.
  22. Р.Г. Состояние и перспективы изучения морфогенеза растений // Всесоюзное общество физиологов растений. М.: ИФР АН СССР, 19 906. -Вып. 8.-С. 5 -8.
  23. Р.Г. Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. -280 с.
  24. Р.П., Веселова Т. Д., Девятое А. Г., Джалилова Х. Х., Ильина Г. М., Чубатова Н. В. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: Изд-во МГУ, 2004. — 312 с.
  25. В.Ю. Генетические предпосылки спорофитного пути развития микроспор злаков в условиях in vitro. — Уфа: УНЦ РАН, 1993. 104 с.
  26. Е.А., Чуенкова С. А., Гатина Е. А., Румянцева Н. И. Соматический эмбриогенез и геммогенез в культуре гипокотилей Fagopirum esculentum Moench. // Физиол. раст. 2003. — Т. 50, № 5. — С. 716 — 721.
  27. Н.Г. Цитофизиологические особенности длительно культивируемых эмбриогенных каллусных тканей ячменя: Автореф. дис.. канд. биол. наук. Алматы, 2003. — 34 с.
  28. К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985.304 с.
  29. Ю.И., Пустовойтова Т. Н., Жданова Н. Е. Соотношение эндогенных фитогормонов в незрелых зародышах компетентных и некомпетентных к соматическому эмбриогенезу линий кукурузы // Физиология растений. 1999. — Т. 46, № 6. — С. 861 — 864.
  30. Ю.И., Пустовойтова Т. Н., Жданова Н. Е., Осипова Е. А. Содержание эндогенных гормонов в тканях кукурузы, способных и неспособных к морфогенезу in vitro II Междунар. конф. «Физиология растений основа фитобиотехнологии». — Пенза, 2003. — С. 389.
  31. В.П., Литовченко А. В., Сидоров В. А. Преодоление влияния генотипа на культуру протопластов огурца // VII междунар конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез. докл. Москва, 1997. — С. 85 — 86.
  32. Н.А. Культура каллюсных тканей лаванды // Физиология и биохимия культ, растений. — 2003. Т. 35, № 2. — С. 166 — 171.
  33. А.А., Байбурина Р. К. Содержание эндогенных гормонов Paeonia anomala L. перед введением в культуру in vitro II VIII Intern. Conf. • «The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology»: Abstr. Saratov, 2003.-P. 378−379.
  34. А.Б., Анцыгина Л. Л., Ярин А. Ю. Современные аспекты изучения фитогормонов. Цитокинины // Цитология. 2001. — Т. 43, № 6. — С. 537−543.
  35. Иммуноанализ регуляторов роста в решении проблем физиологии растений, растениеводства и биотехнологии / Под ред. Г. Р. Кудояровой. -Уфа: АН РБ, 2000. 223 с. т
  36. Иммуноферментный анализ регуляторов роста: применение в физиологии растений и экологии / Под ред. Г. Р. Кудояровой. Уфа: БНЦ УрО АН СССР, 1990. — 132 с.
  37. Н.А., Годовикова В. А., Бородько А. В. Эмбриогенез в каллусной ткани и суспензионной культуре Hordeum geniculatum // Известия АН СССР, сер. биол. 1991. — № 2. — С. 294 — 299.
  38. М.М. Клональное микроразмножение Rhodiola rosea L. и Rhodiola iremelica Boriss. in vitro // Растительные ресурсы. — 1998. Т. 34, вып. 1. — С. 12 — 23.
  39. Ф.Л., Кушнир Г. П., Сарнацкая В. В. Технология микроклонального размножения растений. — Киев: Наук. Думка, 1992. — 154 с.
  40. О.П., Проскурина О. Б., Жинкина Н. А. К методике окраски эмбриологических препаратов // Ботан. журн. 1992. — Т. 77, № 4. — С. 93 — 96.
  41. В.И. Природные ингибиторы роста // Физиология растений. -1997. Т. 44, № 3. — С. 471 — 480.
  42. Е.Н., Богданов В. А., Щелоков Р. А., Кефели В. И. Абсцизовая и индол ил-3-уксусная кислота в культуре корней гороха. Газохроматографический и хромато-масс-спектрометрический анализ // Физиол. раст. 1983.-Т. 30, вып. 1. — С. 187- 194.
  43. О.Н. Цитологический анализ клонов, полученных от незрелых зародышей ячменя сорта Bruce // Науч.-тех. Бюлл. ВНИИ растиниеводства. 1992. — Вып. 218. — С. 66 — 71.
  44. П.В., Овсюк Т. Н., Игнатова С. А. Морфогенез в каллусныхкультурах ярового ячменя // VII междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез. докл. М., 1997. -С. 111−112.
  45. Л.Г., Бутенко Р. Г. Нативные фитогормоны экспланта и морфогенез пшеницы in vitro II Физиол. раст. 1995. — Т. 42, № 4. — С. 555 -558.
  46. Л.Г. Особенности процесса регенерации в каллусной культуре зрелых зародышей пшеницы (Triticum aestivum L. J II С.-х. биол. Серия биол.- 1995. -№ 1.-С. 78−84.
  47. Н.Н. Морфогенез в культуре пыльников пшеницы: эмбриологический подход. Уфа: Гилем (отд-ние изд-ва «Наука»), 2001. -203 с.
  48. Н.Н., Сельдимирова О. А. Зиготический зародыш и андроклинный эмбриоид пшеницы: сходство и различие // IX Школа по теоретической морфологии растений «Типы сходства и принципы гомологизации в морфологии»: Труды. СПб., 2001. — С. 271 — 273.
  49. Г. Р., Веселов С. Ю., Еркеев М. И. Иммуноферментное определение содержания индолилуксусной кислоты в семенах кукурузы с использованием меченых антител // Физиол. раст. — 1986. — Т. 33, № 6. — С. 1221 1227.
  50. Н.А., Внукова В. В. Влияние концентрации 2,4-Д на морфогенез твердой пшеницы in vitro II VI междунар. конф. «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях»: Тез. докл. М.: Изд-во МСХА, 2001.-С. 171−172.
  51. О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка // XXXXI Тимирязевские чтения. — М.: Наука, 1982. -82 с.
  52. О.Н. О регуляции экспрессии генов в растительных клетках // Физиол. раст. 1978. — Т. 25, вып.5. — С. 990−1008.
  53. О.Н., Прокопцева О. С. Новейшие достижения в изучении механизма действия фитогормонов // Биохимия. 2004. — Т. 69, вып. 3. — С. 293−310.
  54. В. А. Изменчивость растительного генома в процессе дифференцировки и каллусообразования // Физиол. раст. 1999. — Т. 46, № 6. -С. 919−929.
  55. Ф.М. Морфофизиология растений. М.: Изд-во Московск. ун-та, 1977. — 256 с.
  56. JI.A. Морфологическая разнокачественность каллюсных тканей риса и ее связь с регенерационной способностью // Физиол. раст. — 1993. Т. 40, № 5. — С. 797 — 801.
  57. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. — 352 с.
  58. Е.С., Плетюшкина О. Ю., Бутенко Р. Г. Морфология распределения актина в клетках морфогенного каллуса пшеницы // Докл РАН. 1997. — Т. 352, № 2. — С. 284 — 286.
  59. А.Л. Оптимизация среды культивирования in vitro юкки слоновой // VI междунар. конф. «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях»: Тез. докл. -М.: Изд-во МСХА, 2001. С. 175.
  60. А.С., Хомутова И. Н. Влияние параметров выращивания каллусной культуры Stevia rebaudiana Bertoni на рост и содержание гликозидов // Вестник БГУ. 2001. -№ 2 (И). — С. 92 — 94.
  61. Ю.А., Румянцева Н. И. Каллусогенез и морфогенез в культуре незрелых зародышей различных видов гречихи // Ботан. журн. 1999. — Т. 84, № 3.- С. 74−80.
  62. А.Ю. Эмбриоидогенез как модель коррелятивного взаимодействия фитогормонов // II съезд ВОФР: Тез. докл. М., 1990. — С.58.
  63. А.О. Реализация морфогенетического потенциала растительных организмов // Успехи соврем, биологии. — 1996. Т. 116, вып. З.-С. 34−47.
  64. А.О. Реализация морфогенетического потенциала растительных организмов: калибровочный подход // Журн. общ. биол. 1999. -Т. 60, № 6.-С. 654−667.
  65. С.С. Физиология растений. — СПб.: Изд-во Санкт-Петербургского ун-та, 2004. 234 с.
  66. А.А., Комиссарчик Я. Ю., Миронов В. А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине. СПб.: Наука, 1994. — 400 с.
  67. Г. С., Бутенко Р. Г., Тихоненко Т. И., Прокофьев М. И. Основы сельскохозяственной биологии. М.: Агропромиздат, 1990. — 384 с.
  68. A.M. Культура клеток высших растений уникальная система, модель, инструмент // Физиол. раст. — 1999. — Т.46, № 6. — С.837 — 844.
  69. С.Б., Богуспаев К. К. Влияние 2,4-Д на регенерационную способность кукурузы с признаками ЦМС в культуре in vitro II VI междунар. конф. «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях»: Тез. докл. -М.: Изд-во МСХА, 2001.-С. 184- 185.
  70. З.П. Практикум по цитологии растений. — М.: Колос, 1988.170 с.
  71. Г. Р. Каллусогенез в культуре незрелых регенерантов кукурузы // Цитол. и генет. 1995. — Т. 29, № 6. — С. 22 — 26.
  72. В.В. Фитогормоны. JL: Изд-во Ленингр. ун-та, 1982. — 248 с.
  73. Г. Н., Соболькова Г. И. Генотипические различия при действии абсцизовой кислоты на каллусные культуры Brassica napus L. // Физиол. раст. 1994. — Т. 41, № 5. — С. 702 — 706.
  74. Г. Н., Соболькова Г. И. Факторы, влияющие на органогенез у семядольных эксплантов рапса // Физиол. раст. 1995. — Т. 42, № 6. — С. 916 -922.
  75. В.А. Влияние концентрации 2,4-Д на каллусогенез сортов овса // VI междунар. конф. «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях»: Тез. докл. М.: Изд-во МСХА, 2001. — С. 188 — 189.
  76. Н.И., Валиева А. И., Федосеева Н. В., Самохвалова Н. А., Яблонова Е. В. Биохимические и цитоморфологические особенности культивируемых каллусов растений с разной способностью к морфогенезу // Цитология. 1996. — Т. 38, № 2. — С. 244 — 245.
  77. JI.P., Карабаев М. К. Фитогормональная регуляция регенерации растений: качественная модель // Изв. АН КазССР. Серия биол. 1991. -№ 3. — С. 15−22.
  78. JT.Р., Карабаев М. К. Эмбриогенный каллус кукурузы: условия ф формирования и характеристика пептидного состава // II съезд ВОФР: Тез.докл. -Ч. 2.-М., 1992.-С. 185.
  79. Л.Р., Карабаев М. К., Айтхожин М. А. Влияние некоторых факторов на формирование морфогенных каллусов кукурузы и табака // Биол. науки. 1990. — № 4. — С. 100 — 103.
  80. Сельскохозяйственная биотехнология / Под ред. В. С. Шевелухи. М.: Высшая школа, 2003. — 469 с.
  81. A.M., Азаркович М. И., Кулаева О. Н. Влияние АБК на накопление запасных белков в созревающих ш vitro эндоспермах клещевины // Докл. АН СССР. 1983. — Т. 271, № 4. — С. 766 — 768.
  82. А.Г., Соболев В. В., Заякин В. В., Нам И.Я. Регенерация и трансформация ремонтантной малины // Междунар. конф. «Физиология растений основа фитобиотехнологии». — Пенза, 2003. — С. 524.
  83. Н.В. Оптимизация состава питательных сред для регенерации адвентивных побегов из листовых сегментов земляники // VI междунар. конф. «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях»: Тез. докл. М.: Изд-во МСХА, 2001.-С. 193.
  84. Е. И. Зобова Н.В. Оптимизация состава сред для введения в • культуру тканей зерновых // VI междунар. конф. «Регуляторы роста иразвития растений в биотехнологиях»: Тез. докл. М.: Изд-во МСХА, 2001. -С. 193−194.
  85. Н.В. Некоторые особенности органогенеза в культуре тканей злаковых //17 науч. конф. мол. ученых биол. фак. МГУ: Тез. докл. -М., 1986.-С. 244−246.
  86. В.М., Папазян Н. Д. Условия получения каллуса и регенерантов в культуре незрелых зародышей пшеницы // Апомиксис и цитоэмбриология растений. 1983. — вып.5. — С. 124 — 128.
  87. В.М. Использование фитогормонов при клональном микроразмножении хризантем // VI междунар. конф. «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях»: Тез. докл. М.: Изд-во МСХА, 2001. -С. 195- 196.
  88. И.Д., Кляченко O.J1. Органогенез и получение растений регенерантов рапса методом культуры тканей // IV междунар. конф.: Тез. докл. Одесса, 2003. — С. 76.
  89. .П. Общая эмбриология. М.: Высшая школа, 1987. — 480 с.
  90. В.М., Соловых Н. В. Сомаклональная изменчивость земляники // Биотехнология. 1999. — № 2. — С. 34 — 40.
  91. Характеристика сортов сельскохозяйственных культур, включенных в Госреестр по Республике Башкортостан. Пособие для агрономов / Под ред. Д. Б. Гареева. Уфа, 1997. — 96 с.
  92. В.Р. Система размножения пшеницы Triticum L. Кишинев: Штиинца, 1991.-320 с.
  93. В.Г., Долгих Ю. И., Шамина З. Б. Влияние генетических характеристик исходных растений на морфогенный потенциал каллусных клеток кукурузы // Доклады АН СССР. 1988. — Т. 300, № 1. — С. 227 — 229.
  94. И.Ф. Культура клеток и тканей пшеницы in vitro и соматический эмбриогенез: Автореф. дисс.. д-ра биол. наук. СПб., 2001. — 45 с.
  95. И.Ф. Соматический эмбриогенез и селекция злаковых культур. Уфа: Изд-во Башкирск. ун-та, 1999. — 165 с.
  96. И.Ф., Безрукова М. Ф., Ахметов P.P. Взаимосвязь накопления лектина и абсцизовой кислоты в каллусной ткани пшеницы //
  97. Иммуноанализ регуляторов роста в решении проблем физиологии растений, растениеводства и биотехнологии / Под ред. Г. Р. Кудояровой. Уфа: АН РБ, 2000.-С. 207−210.
  98. И.Ф., Шакирова Ф. М., Хайруллин P.M. Исследование содержания лектина в связи с формированием морфогенного каллуса пшеницы // Физиол. и биохимия культ, раст. 1994. — Т. 26, № 1. — С. 68 -71.
  99. JI.A., Тырнов B.C. Гистологическое исследование каллусных культур Sorghum caffrorum (Poaceae) со стабильной регенерационной способностью // Ботан. журн. 1990. — Т. 75, № 1. — С. 44 — 48.
  100. Эльконин J1.A., Тырнов B.C., Папазян Н. Д., Ишин А. Г. Морфогенез и стабильная регенерация растений в каллусных культурах, полученных от зрелых зародышей видов Sorghum (Poaceae) // Ботан. журн. 1989. — Т. 74, № 12.-С. 1740- 1746.
  101. Abdchali Ch., Benoft P., Nathalie D. Influence of abscisic acid on nitrogen partitioning, sucrose metabolism and nitrate reductase activity of chicory suspension cells //J. Exp. Bot. 1995. -V. 46, № 291. — P. 1525 — 1533.
  102. Ackerson R.C. Regulation of soybean embryogenesis by abscisic acid // J. Exp. Bot. 1984,-V. 35, № 152.-P. 403−413.
  103. Ahmed R., Gupta S.D., De Deepesh N. Somatic embryogenesis and plant regeneration from derived callus of winged bean {Psophocarpus tetragonolobus (L.) DC.) // Plant Cell Repts. 1996. — V. 15, № 7. — P. 531 — 535.
  104. Ainsley P.J., Aryan A.P. Efficient plant regeneration system for immature embryos of triticale (x Triticosecale Wittmack) // Plant Growth Regulation. -1998. V. 24, № 1. — P. 23 — 30.
  105. Alien G.J., Kuchitsu К., Chu S.P. Arabidopsis abil-1 and abi2-l phosphatasemutations reduce ABA-induced cytoplasmic calcium rises in guard cells // Plant Cell. 1999. — V. 11, № 9. — P. 1785 — 1798.
  106. Armstrong C.L., Green C.E. Establishment and maintenance of friable, embryogenic maize callus and involvement of L-proline // Planta. 1985. -V. 164. — P. 207−214.
  107. Arzani A., Mirodjagh S.-S. Response of durum wheat cultivars to immature embryo culture, callus induction and in vitro salt stress // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1999. — V. 58, № 1. — P. 67 — 72.
  108. Astle M., Rubery P. Uptake of abscisic acid by suspension-cultured Phaseolis coccineus cells: evidence for carrier participation // J. Exp. Bot. — 1985. -V. 36-P. 469−484.
  109. Augustine A.N., D’Souza L. Somatic embryogenesis in Gnetum ula Brongn. 0Gnetum edule) (Wilid) Blume // Plant Cell Repts. 1997. — V. 16, № 5. — P. 354 -357.
  110. Bahieldin A., Dyer W.E., Qu R. Concentration effects of dicamba on shoot regeneration in wheat // Plant Breed. 2000. — V. l 19. — P. 437 — 439.
  111. Bai Y., Qu R. Factors influencing tissue culture responses of mature seeds and immature embryos in turf-type tall fescue // Plant Breed. 2001. — V. 120, №• 3.-P. 239−242.
  112. Bajaj S., Rajam M.V. Efficient plant regeneration from long-term callus cultures of rice by spermidine // Plant Cell Repts. 1995. — V. 14, № 11. — P. 717 -720.
  113. Bajaj S., Rajam M.V. Polyamine accumulation and loss of morphogenesis in long-term callus cultures of rice. Restoration of plant regeneration by manipulation of cellular polyamine levels // Plant Physiol. 1996. — V. 112, № 3. — P. 1343 -1348.
  114. Barkla B.J., Vera-Estrella R., Maldonado-Gama M., Pantoja O. Abscisic. acid induction of vacuolar FT-ATPase activity in Mesembryanthemum crystallinumis developmentally regulated // Plant Physiol. 1999. — V. 120, № 3. — P. 811 -819.
  115. Barratt D.H.P. Modulation by abscisic acid of storage protein accumulation in Vicia faba L. cotyledons cultured in vitro // Plant Sci. 1986. — V. 46. — P. 159 — 167.
  116. Batygina T.B. A new approach to the system of reproduction in flowering plants // Phytomorphology. 1989. — V. 39, № 4. — P. 311 — 325.
  117. Batygina T.B. A new approach to the system of reproduction in flowering plants // Apomixis Newsletter. 1991a. — № 1. — P. 52 — 55.
  118. Batygina T.B. Embryoidogenic types of reproduction in flowering plants // Apomixis Newsletter. 1991b. — № 2. — P. 58 — 66.
  119. Batygina T.B. Nucellar embryoiodogeny in Poa pratensis (POACEAE) II Pol. Bot. Stud. 1991c. — № 2. — P. 121 — 125.
  120. Batygina T.B., Zakharova A.A. Polymorphism of sexual and somatic embryos as a evidence of their resemblance // Bull. Pol. Acad. Sci. Biol. Sci. — 1997. V. 45, № 2−4. — P. 235 — 255.
  121. Bebeli P.J. Cytoplasmic effects on tissue culture response in wheat // J. Genet. Breed. 1995. — V. 49, № 3. — P. 201 — 208.
  122. Bespalhok J.C., Hattori F.K. Friable embryogenic callus and somatic embryo formation from cotyledon explants of African marigold (Tagetes erecta L.) // Plant Cell Repts. 1998. — V. 17, № 11 — P. 870 — 875.
  123. Bewley J.D. Seed germination and dormancy // Plant Cell. 1997. — V. 9. — P. 1055−1066.
  124. Bhaskaran S., Smith R.H. Regeneration in cereal tissue culture: a review // Crop Sci. 1990. — V. 30, № 6. — P. 1328 — 1337.
  125. Bianco-Colomas J., Barthe P., Orlandini M., Le Page-Degivry M. Carrier-# mediated uptake of abscisic acid by suspension-cultured Amaranthus tricolor cells
  126. Plant Physiol. 1991. — V. 95. — P. 990 — 996.
  127. Black M. Involvement of ABA in the physiology of developing and mature seeds // Abscisic acid: physiology and biochemistry / Ed. W.J.Davies, H.G.Jones -Oxford: Bios, 1991.-P. 99- 124.
  128. Bohorova N.E., Luna В., Briton R.M., Huerta L.D., Hoistington D.A. Regeneration potential of tropical, and subtropical, midaltitude, and highland maize inbreds // Maydica. 1995. — V. 40. — P. 275 — 281.
  129. Bonfill M., Cusido R.M., Palazon J., Pinol M.T., Morales C. Influence of Ф auxins on organogenesis and ginsenoside production in Panax ginseng calluses //
  130. Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 2002. — V. 68, № 1. — P. 73 — 78.
  131. Borkird C., Choi H., Sung Z.R. Effect of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid on the expression of embryogenic program in carrot // Plant Physiol. 1996. — V. 81, № 4.-P. 1143−1146.
  132. Bornman C.H. Morphological, anatomical, and ultra-structural responses to abscisic acid//Abscisic acid. -N.Y.: Praeger, 1983.-P. 523.
  133. Bostock R., Quatrano R. Regulation of Em gene expression in rice // Plant Physiol. 1992. — V. 98 — P. 1356 — 1363.
  134. Bozhkov P.V., Lebedenko L.A., Shiryaeva G.A. A pronounced synergistic effect of abscisic acid and 6-benzyl-adenine on Norway spruce (Picea abies L. Karst): somatic embryo maturation // Plant Cell Repts. 1992. — V. 11. — P. 386 -394.
  135. Bray E.A., Beachy R.N. Regulation by ABA of (3-conglycinin expression in cultured developing soybean cotyledons // Plant Physiol. 1985. — V. 79, № 3. -P. 746 — 750.
  136. Bregitzer P., Campbell R.D., Wu Y. Plant regeneration from barley callus: effects of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and phenyl acetic acid // Plant Cell, t Tissue, Organ Cult. 1995. — V. 43, № 3. — P. 229 — 235.
  137. Bregitzer P., Dahleen L. S, Campbell R.D. Enhancement of plant• regeneration from embryogenic callus of commercial barley cultivars // Plant Cell Repts. 1998. -V. 17.-P. 941 -945.
  138. Bronsema F., Redig P., van Oostveen W., van Onckelen H., van Lammeren A. Uptake and biochemical analysis of 2,4-D in cultured zygotic embryos of Zea mays L. // J. Plant Physiol. 1996. — V. 149, № 3−4. — P. 363 — 371.
  139. Busk P.K., Pages M. Regulation of abscisic acid-induced transcription // Plant Mol. Biol. 1998. — V. 37. — P. 425 — 435.
  140. Carman J.G. Somatic embryogenesis in wheat // Biotechnology in agriculture and forestry: somatic embryogenesis and synthetic seed II / Ed. Y.S.P. Bajaj. Berlin: Springer-Verlag, 1995. — V. 31. — P. 3 — 13.
  141. Carnes M.G., Wright M.S. Endogenous hormone levels of immature corn kernels of A188, Missouri-17, and Dekalb XL-12 // Plant Sci.- 1988. -V. 57. -P. 195−203.
  142. Carvalho C.H.S., Bohorova N., Bordallo P.N., Abreu L.L., Valicentle F.H., Bressan W., Paiva E. Type II callus production and plant regeneration in tropical maize genotypes // Plant Cell Repts. 1997. — V. 17. — P. 73 — 76.
  143. Castillo A.M., Egana В., Sanz J.M., Cistue L. Somatic embryogenesis and plant regeneration from barley cultivars grown in Spain // Plant Cell Repts. 1998.• -V. 17, № 11.-P. 902−906.
  144. Centeno M.L., Rodriguez R., Berros В., Rodriguez A. Endogenous hormonal content and somatic embryogenic capacity of Corylus avellana L. cotyledons // Plant Cell Repts.-1997.-V. 17.-P. 139- 144.
  145. Chang Y., von Zitzewitz J., Hayes P.M., Chen T.H.H. High frequency plant regeneration from immature embryos of an elite barley cultivar {Hordeum vulgare L. cv. Morex) U Plant Cell Repts. 2003. -V. 21, № 8. — P. 733 — 738.
  146. Chengalrayan K., Hazra S., Gallo-Meagher M. Histological analysis ofsomatic embryogenesis and organogenesis induced from mature zygotic embryoderived leaflets of peanut (Arachis hypogaea L.) // Plant Sci. 2001. — V. 161. — P. 415−421.
  147. Cui K.R., Pei X.W., Qin L., Wang J.J., Wang Y.F. Effects of modulation of abscisic acid during somatic embryogenesis in Lycium barbarum L. // Shi Yan Sheng Wu Xue Bao. 1998. — V. 31, № 2. — P. 195 — 201.
  148. Cunha A.C.G., Ferreira M.F. Somatic embryogenesis, organogenesis and callus growth kinetics of flax // // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1996. — V. 47, № 1 — P. 1 -8.
  149. Datta S.K. Androgenesis in cereals // Current trends in the embryology of Angiosperms / Eds S.S.Bhojwani, W.Y.Soh. Dordrecht, Boston, London: Kluwer Acad. Publ.-2001.-P. 471 -488.
  150. DeLisle A.J., Crouch M.L. Seed storage protein transcription and mRNA levels in Brassica napus during development and in response to exogenous ABA // Plant Physiol. 1989. — V. 91. — P. 617 — 623.
  151. Dodds J.H., Roberts L.W. Experiments in plant tissue culture. — Cambridge: Cambridge Univ. press, 1985. 354 p.
  152. Dudits D., Gyorgyey J., Bogre L., Bako L. Molecular biology of somatic embryogenesis // In vitro embryogenesis in plants / Ed. T.A.Thorpe. Dordrecht, Boston, London: Kluwer Acad. Publ. — 1995. — P. 267 — 308.
  153. Dunstan D.I., Dong J.Z., Carrier D.J., Abrams S.R. Review events following ABA treatment of spruce somatic embryos // In Vitro Cell Dev. Biol. 1998. -V.34.-P. 159- 168.
  154. Eapen S., Rao P. S. Callus induction and plant regeneration from immature embryos of rye and triticale // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1982. — V. 1. -P. 221 -227.
  155. Elkonin L.A., Lopushanskaya R.F., Pakhomova N.V. Initiation and maintance of friable embryogenic callus of sorhum (Sorghum bicolour (L.) Moench) by amino acids // Maydica. 1995. — V. 40, № 2. — P. 153 — 157.
  156. Feirer R.P., Conkey J.H., Verhagen S.A. Triglycerides in embryogenic conifer calli: a comparison with zygotic embryos // Plant Cell Repts. — 1989. -V. 8, № 4.-P. 207−209.
  157. Felfoldi K., Purnhauser L. Induction of regenerating callus cultures from immature embryos of 44 wheat and 3 Triticale cultivars // Cereal Res. Comm. — 1992.-V. 20.-P. 273−277.
  158. Fermin P., Lilian V., Milton A. Regulation of acyltransferase activity in immature maize embryos by ABA and the osmotic environment // Plant Physiol. — 1997.-V. 114, № 3. P. 1095- 1101.
  159. Fernandez S., Michaux-Ferriere N. Coumans M. The embryogenic response of immature embryo cultures of durum wheat (Triticum durum Desf.): histology and improvement by AgNC>3 // Plant Growth Regulation. 1999. — V. 28, № 3. — P. 147- 155.
  160. Fernando S.C., Gamage C.K.A. Abscisic acid induced somatic embryogenesis in immature embryo explants of coconut (Cocos nucifera L.) //• Plant Sci. 2000. — V. 151, № 2.-P. 193- 198.
  161. Ferrie A.M.R., Palmer C.E., Keller W.A. In vitro embryogenesis in plants // Plant embryogenesis / Ed. T.A.Thorpe. Dordrecht: Kluwer Acad. Publ., 1995. -P. 309−344.
  162. Finkelstain R.R., Tenbarge K.M., Shumway J.E., Grouch M.L. Role of ABA in maturation of rapeseed embryos // Plant Physiol. 1985. — V. 78, № 3. — P. 630 -636.
  163. Fluminhan A., Aguiar-Perecin M.L.R de, Dos Santos J.A. Evidence for heterochromatin involvement in chromosome breakage in maize callus culture // Ann. Bot. (USA). -1996. -V. 78, № 1. P. 73 — 81.
  164. Fowke L., Attree S. Applications of embryogenic spruce cultures for applied and fundamental research // Biotechnol. Eq. 1993. — V. 7, № 3. — P. 15−19.
  165. Fransz P.F., Schel J.H.N. Cytodifferentiation during the development of friable embryogenic callus of maize (Zea mays) // Canad. J. Bot. 1991. — V. 69, № l.-P. 26−33.
  166. Fujii J.A., Slade D., Olsen R., Ruzin S.E., Redenbaugh K. Alfalfa somatic embryo maturation and conversion to plants // Plant Sci. -1990. V. 72. — P. 93 -100.
  167. Galau G.A., Bijaisoradat N., Hughes D.W. Accumulation kinetics of cotton late embryogenesis abundant mRNA and storage protein mRNA: coordinate regulation during embryogenesis and the role of ABA // Dev. Biol. 1987. -V. 123.-P. 198−212.
  168. Galiba Y., Yamada Y. A novel method for increasing the frequency ofsomatic embryogenesis in wheat tissue culture by NaCI and КС 1 supplementation // Plant Cell Repts. 1988. — V. 7. — P. 55 — 58.
  169. Girija S., Ganapathi A., Ananthakrishnan G. Somatic embryogenesis in Vigna radiata (L.) Wilczek // Indian J. Exp. Biol. 2000. — V. 38, № 12. — P. 1241 — 1244.
  170. Goebel K. Organographie der Pflanzen, insbesondere der Archegoniaten und samenpflanzen. — Jena: G. Fisher, 1923. 581 S.
  171. Goebel K. Uber regeneration im Pflanzenreich // Biol. Zentralbl. 1902. -Bd. 22.-H. 13.-S. 385−505.
  172. Gonzales A.I., Pelaez M.I., Ruiz M.L. Cytogenetic variation in somatic tissue cultures and regenerated plants of barley (.Hordeum vulgare L.) // Euphytica. -1996. V. 91, № 1. — P. 37 — 43.
  173. Goupil P., Hatzopoulos P., Franz G., Hempel F.D., You R., Sung Z.R. Transcriptional regulation of a seed-specific carrot gene, DC8 // Plant Mol. Biol. -1992.-V. 18, № 6.-P. 1049- 1063.
  174. Grotkass C., Lieberei R., Preil W. Polyphenoxidaser-activity and activation in embryogenic and non-embryogenic suspension cultures of Euphorbia pulcherrima II Plant Cell Repts. 1995. — V. 14, № 7. p. 428 — 431.
  175. Grzelak A., Janiszowska W. Initiation and growth characteristics of suspension cultures of Calendula officinalis cells // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 2002. — V. 71, № l.-p. 29−40.
  176. Gutmann M., Charpentier J.P., Doumas P., Jay-Allemand C. Histological investigation of walnut cotyledon fragments for a better understanding of in vitro adventitious root initiation // Plant Cell Repts. 1996a. — V. 15, № 5. — P. 345 -349.
  177. Gutmann M., von Aderkas P., Label P., Lelu M. Effects of abscisic acid on somatic embryo maturation of hybrid larch // J. Exp. Bot. 1996b. — V. 47. -P. 1905−1917.
  178. Haberlandt G. Physiologishe Pflanzenanatomie. Leipzig: Engelmann, 1909.-650 S.
  179. Haccius B. Untersuchungen uber Somatogenese aus den Syspensorenzellen von Eranthis hiemalis Embryonen // Planta. 1965. — V. 64, № 1. — P. 219 — 224.
  180. Haccius B. Zur derzeitigen Situation der Angiospermen Embryologie // Bot. Jahrb. Syst. 1971. — V. 91, № 2−3. — S. 309 — 329.
  181. Haccius В., Bhandari N.N. Delayed histogen differentiation as a common primitive character in all types of nonzygotic embryos // Phytomorphology. -1975.-V. 25, № l.-P. 91 -94.
  182. Haccius В., Lakshmanan K.K. Adventiv Embryonen, Embryoide, Adventiv-Knospen. Ein Beitrag zur Klarung der Begriffe // Osterr. Bot. Zeitung. 1969. -№ 11.-P. 145−158.
  183. Halperin W. Alternative morphogenetic events in cell suspensions // Amer.
  184. J. Bot. 1966. — V. 53, № 5. — P. 443 — 453.
  185. Halperin W. Embryos from somatic plant cell // Sympos. Intern. Soc. Cell Biol. «Control Mechanism in the Expression of Cellular Phenotipes»: Proceed. -New York- London: Acad. Press, 1970. P. 169−191.
  186. Halperin W., Jensen W.A. Ultrastuctural changes during growth and embryogenesis in carrot cell cultures // J. Ultrasrt. Res. 1967. — V. 18, № 1. — P. 428−443.
  187. Hatzopoulos P., Fong F., Sung Z.R. Abscisic acid regulation of DC8, a carrot embryogenic gene // Plant Physiol. 1990. — V. 94. — P. 690 — 695.
  188. Hess J.R., Carman J.G. Embryogenic competence of immature wheat embryos: genotype, donor plant, environment, and endogenous hormone levels // Crop Sci. 1998. — V. 38. — P. 249 — 253.
  189. Hetherington A., Quatrano R. Mechanisms of action of abscisic acid at the cellular level//NewPhytol. 1991.-V. 119.-P. 9−32.
  190. Holappa L.D., Walker-Simmons M.K. The wheat abscisic acid-responsive proteinkinase mRNA, PKABA1 is up regulated by dehydration, cold temperature, and osmotic stress // Plant Physiol. 1995. — V. 108. — P. 1203 — 1210.
  191. Holdsworth M., Kurup S., McKibbin R. Molecular and genetic mechanisms• regulating the transition from embryo development to germination // Trends Plant Sci. 1999. — V. 4. — P. 275 — 280.
  192. Homes J.L.A., Guillaume M. Phenomenes d’organogenese dans les cultures in vitro de tissues de carrotte (Daucus carota L.) // Bull. Soc. Roy. Bot. Belgique. 1967.-V. 100, № 2.-P. 45−49.
  193. Jimenez V.M., Bangerth F. Endogenous hormone concentrations and embryogenic callus development in wheat // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. — 2001a.-V. 67, № 1.-P. 37−46.
  194. Jimenez V.M., Bangerth F. Endogenous hormone levels in explants and in embryogenic and non-embryogenic cultures of carrot // Physiol Plant. 2001b. — V. Ill, № 3.-P. 389−395.
  195. Jimernez V.M., Bangerth F. Hormonal status of maize initial explants and of the embryogenic and non-embryogenic callus cultures derived from them as related to morphogenesis in vitro // Plant Sci. 2001c. — V. 160, № 2. — P. 247 -257.
  196. Kim J.W., Soh W.Y. Plant regeneration through somatic embryogenesis from suspension cultures of Allium jistulosum L. // Plant Sci. 1996. — V. 114, № 2.-P. 215−220.
  197. Kintzios S.E., Taravira N. Effect of genotype and light intensity on somatic embryogenesis and plant regeneration in melon (Cucumis melo L.) // Plant Breed. 1997. — V. 116, № 4. — P. 359 — 362.
  198. C.Y., Chandler S.F., Vasil I.K. Somatic embryogenesis and plant regeneration from cultured immature embryos of rye (Secale cereale L.) // J. Plant Physiol. 1984. — V. 115. — P. 237 — 244.
  199. D.-Y., Davey M.R., Pental D., Cocking E.C. Forage legume protoplasts: somatic embryogenesis from protoplasts of seedling cotyledons and roots of Medicago sativa L. // V Intern. Congr. on Plant Tissue and Cell Culture: Proceed. -Tokyo, 1982.-P. 597−598.
  200. P., Zhou Ch., Yang H-Y. Pollen protoplasts in vitro // Bull. Bot. Res. -" 1996.-V. 16, № 1.-P. 96−99.
  201. Machii H., Mizuno H., Hirabayashi Т., Li H., Hagio T. Screening wheat genotypes for high callus induction and regeneration capability from anther and immature embryo cultures // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. — 1998. V. 53, № 1.- P. 67 74.
  202. Maeda E. Calluses, freely suspended cells and protoplasts // Sci. Rice Plant.- 1993.-№ l.-P. 465−477.
  203. Maeda E., Chen M., Inoue V. Rice: regeneration of plants from callus cultures // Biotechnology in agriculture and forestry. N. Y.- Heidelberg- Berlin: Springer-Verlag, 1986. — P. 105 — 122.
  204. Maggon R., Singh B.D. Promotion of adventitious bud regeneration by ABA in combination with BAP in epicotyl and hypocotyl explants of sweet orange (iCitrus sinensis L. Osbeck) // Sci. Hort. 1995. — V. 63, № 1−2. — P. 123 — 128.
  205. Marcotte W.R., Bayley C.C., Quatrano R.S. Regulation of a wheat promoter by abscisic acid in rice protoplasts // Nature. 1988. — V. 335, № 6189. — P. 454 -457.
  206. Marion-Poll A. ABA and seed development // Trends Plant Sci. 1997. -V. 2.-P. 447−448.• Masuda H., Oohashi Sh.-I., Tokuji U., Misui U. Direct embryo formationfrom epidermal cells of carrot hypocotils // Plant Physiol. 1995. — V. 145, № 4. -P. 531 -534.
  207. McCarty D.R. Genetic control and integration of maturation and germination pathways in seed development // Annu Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. — 1995. -V. 46.-P. 71−93.
  208. Merkle S.A., Parrott W.A., Williams E.G. Applications of somatic embryogenesis and embryo cloning // Plant tissue culture: applications and limitations / Ed. S.S.Bhojwani N. Y.: Elsevier, 1990. — P. 67 — 101.
  209. Milkova V., Ivanov P., Atanassov Z., Todorov I., Panayotov I. Callus culture and gamma-ray treatment used for inducing new breeding material in wheat (7>. Aestivum L.) // Biotechnol. and biotechnol. equipment. 1995. — № 2. — P. 31 -36.
  210. Misra S., Attree S.M., Leal I., Fowke L.C. Effect of abscisic acid, osmoticum and dessication on synthesis of storage proteins during the development of white spruce somatic embryos // Ann. Bot. 1993. — V. 71. — P. 11- 22.
  211. Mordhorst A.P., Toonen M.A.J., de Vries S.C. Plant embryogenesis // Crit. Rev. Plant Sci. 1997.-V. 16.-P. 535−576.
  212. Moris P.C., Maddock S.E., Jones M.G.K. Lectin levels in tissues of cultured immature wheat embryos // Plant Cell Repts. 1986. — V. 5, № 6. — P. 460 — 463.
  213. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures // Physiol. Plant. 1962. — V. 15, № 3. — P. 473 — 497.
  214. Nakagawa H., Saijyo Т., Yamauchi N., Shigyo M., Kako S., Ito A. Effects of sugars and abscisic acid on somatic embryogenesis from melon (Cucumis melo L.) expanded cotyledon // Sci. Hort. 2001. — V. 90, № 1−2. — P. 85 — 92.
  215. Ozgen M., Taret M., Altinok S., Sancak C. Efficient callus induction and plant regeneration from mature embryo culture of winter wheat (Triticum aestivum L.) genotypes // Plant Cell Repts. 1998. — V. 18. — P. 331 — 335.
  216. Palmer C.E., Keller W.A. Pollen embryos // Pollen biothechnology for crop
  217. В production and improvement / Eds K.R.Shivanna, V.K.Sawhney. Cambridge:
  218. Cambridge Univ. press, 1997. P. 392 — 422.
  219. Patnaik J., Debata B.K. Regeneration of plantlets from NaCl tolerant callus lines of Cymbopogon martinii (Roxb.) Wats. // Plant Sci. 1997. — V. 128, № 1. -P. 67−74.
  220. Pechan P.M., Smykal P. Androgenesis: affecting the fate of the male gametophyte // Physiol. Plant. 2001. — V. 111, № 1. — P. 1 — 8.
  221. Pellegrineschi A., Brito R.M., McLean S., Hoisington D. Effect of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and NaCl on the establishment of callus and plant regeneration in durum and bread wheat // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 2004. —1. V. 77, № 3. P. 245−250.
  222. Perl A., Saad S., Sahar N., Holland D. Establishment of long term embryogenic cultures of seedless Vitis vinifera cultivars — a synergistic effect of auxins and the role of abscisic acid // Plant Sci. — 1995. — V. 104, № 2. — P. 193 -200.
  223. Petrosyan M.T., Aghajanyan J.A., Popov Yu.G. Organogenesis in isolated culture of topinambur // VIII Intern. Conf. «The biology of plant cells in vitro and biotechnology»: Abstr. Saratov, 2003. — P. 248 — 249.
  224. Philip V.J., Schraudolf H. Origin and development of embryos in suspension cultures of rose apple {Eugenia jambos L.) II Beitr. Biol. Pflanzen. 1987. -Bd. 62.-H. 1. -S. 9−21.
  225. Pierik R. In vitro culture of higher plants. Dordrecht: Nijhoff Publ., 1987.344 p.
  226. Przetakiewicz A., Orczyk W., Nadolska-Orczyk A. The effect of auxin on plant regeneration of wheat, barley and triticale // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. -2003. V. 73, № 3 — P. 245 — 256.
  227. Qi L.W., Han Y.F., Li L., Ewald D, Han S.Y. Study on effect of ABA, PEG4000 and AgN03 on number of somatic embryos of Larix Principis-Rupprechtii by 311-A regression design // Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao. — 2001.-V. 17, № 1.-P. 84−89.
  228. Quatrano R.S., Marcotte W.R., Litts J.S. Control of cereal embryogenesis and the regulation of the gene expression by abscisic acid (ABA) // Biol. Bull. — 1989.-V. 176, № l.-P. 65.
  229. Quiroz-Figueroa F.R., Fuentes-Cerda C.F.J., Rojas-Herrera R., Loyola
  230. Vargas V.M. Histological studies on the developmental stages and differentiationof two different somatic embryogenesis systems of Coffea arabica II Plant Cell
  231. Repts. 2002. — V. 20. — P. 1141 — 1149.
  232. Raghavan V. Molecular embryology of flowering plants. Cambridge: Cambridge Univer. press, 1997. — 565 p.
  233. Rakoczy-Trojanowska M., Malepsky S. Genetic factors influencing the regeneration ability of rye (Secale cereale L.). II. Immature embryos // Euphytica. 1995. — V. 83, № 3. — P. 233 — 239.
  234. Razdan M.K. Introduction to plant tissue culture. Enfield: Science Publishers Inc, 2003. — 375 p.
  235. Reddy V.D., Reddy G.M. Effect of abscisic acid and gibberellic acid 3 on6 morphogenesis in callus cultures of hexaploid triticale // J. Plant Physiol. 1987 —1. V. 128, № 3-P. 303−306.
  236. Redway F.A., Vasil V., Lu D., Vasil I.K. Characterization and regeneration of wheat (Triticum aestivum L.) embryogenic cell suspension cultures // Plant Cell Repts. 1990. — V. 8,№ 12.-P. 714−717.
  237. Reinert J. Untersuchungen uber die Morphogenese an Gewebekulturen // Berl. Deutsch. Bot. Ges. 1958. — V. 71, № 1. — S. 218 — 226.
  238. Reynolds Th. Plant embryogenesis // Plant Mol. Biol. 1997. — V. 33, № 1. -P. 1−10.
  239. Rivin C.J., Grudt T. Abscisic acid and the developmental regulation ofmembryo storage proteins in maize // Plant Physiol. 1991. — V. 95, № 2. — P. 358 — 365.
  240. Roberts D.R., Flinn B.S., Webb D.T., Webster F.B., Sutton B.C.S. Abscisic acid and indole-3-butyric acid regulation of maturation and accumulation of storage proteins in somatic embryos of interior spruce // Physiol. Plant. 1990. — V. 78.-P. 355−360.
  241. Roberts D.R., Webster F.B., Flinn B.S., Lazaroff W.R., Cyr D.R. Somatic embryogenesis of spruce // Applications of synthetic seeds to crop improvement /
  242. Ed. Redenbaugh К. 1993. — P. 427 — 450.
  243. Roberts E., Kolattukudy P.E. Molecular cloning, nucleotide sequence, and abscisic acid induction of a suberization-associated highly anionic peroxidase // Mol. Gen. Genet. 1989. — V. 217, № 2−3. — P. 223 — 232.
  244. Roberts S.K. Regulation of K+ channels in maize roots by water stress and abscisic acid // Plant Physiol. 1998. — V. 116, № 1. — P. 145 — 153.
  245. Rock C., Quatrano R.S. Insensitivity is in the genes // Curr. Biol. 1994 -V. 4. — P. 1013−1015.
  246. Rock C.D., Quatrano R.S. The role of hormone during seed development // Plant hormones. Physiology, biochemistry and molecular biology / Ed. P.J.Davies Dordrecht: Kluwer, 1995. — P. 671 — 697.
  247. Sahoo Y., Pattnaik S.K., Chand P.K. Plant regeneration from callus cultures of Morns indica L. derived from seedlings and mature plants // Sci. Hort. — 1997. — V. 69, № 1−2.-P. 85−98.
  248. Saito A., Suzuki M. Plant regeneration from meristem-derived callus protoplasts of apple (Malus domestica cv. Fuji) // Plant Cell Repts. 1999. -V. 18, № 7−8.-P. 549−553.
  249. Samaj J., Bobak M., Erdelsky K. Histological-anatomical studies of the structure of the organogenic callus in Papaver somniferum L. II Biologia plantarum. 1990. — V. 32, № l.-P. 14−18.
  250. Sasaki K., Shimomura H., Kamada H., Harada H. IAA metabolism in embryogenic and non-embryogenic carrot cells // Plant Cell Physiol. 1994. — V. 35.-P. 1159- 1164.
  251. Satoh Sh., Kamada H., Harada H., Fujii T. Auxin-controlled glycoprotein release into the medium of embryogenic carrot cells // Plant Physiol. 1996. — V. 81, № 3.-P. 931 -933.
  252. Schultz T.F., Quatrano R.S. Evidence for surface perception of abscisic acid by rice suspension cells as assayed by Em gene expression // Plant Sci. 1997. — V. 130,№ l.-P. 63−71.
  253. Schumann G., Hoffman В., Kriiger H.-U. Histological observations on morphogenesis from androgenetic tissues of Triticum aestivum L. II. Embryoids and embryo cell complexes // Arch. Zucht. 1991. — Bd. 21. — H. 3. — S. 161 — 168.
  254. Senaratna Т., McKersie B.D., Bowley S.R. Desiccation-tolerance of alfalfa (Medicago sativa L.) somatic embryos: influence of abscisic acid, stress pretreatments and drying rates 11 Plant Sci. 1989. — V. 65. — P. 253 — 259.
  255. Senger S., Mock H. P., Conrad U., Manteuffel R. Immunomodulation of Я ABA function affects early events in somatic embryo development // Plant Cell
  256. Repts. 2001. — V. 20, № 2. — P. 112 — 120.
  257. Shavemaker C.M., Jacobsen E. Development of a cyclic somatic embryogenesis regeneration system for leek {Allium ampeloprasum L.) using zygotic embryos // Plant Cell Repts. 1995. — V. 14, № 4. — P. 227 — 231.
  258. Sirkka A., Immonen T. Comparison of callus culture with embryo culture at different times of embryo rescue for primary triticale production // Euphytica. -1993.-V. 70.-P. 185- 190.
  259. Skoog F. Aspects of growth factor interaction in morphogenesis of tobacco tissue cultures // Les cultures de tissus de plantes. — Paris, 1971. — P. 115.
  260. Skoog F., Miller C.O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro II Sympos. Soc. Exp. Biol.: Proceed. 1957. — V. 11, № 2.-P. 118.
  261. Skriver K., Mundy J. Gene expression in response to abscisic acid and • osmotic stress // Plant Cell. 1990. — V. 2, № 6. — P. 503 — 512.
  262. Smiskova A., Kleins M., Havel L., Vlasinova H. Improvement of japanise maple somatic embryo conversion by abscisic acid treatment // XVII Intern. Conf. on Plant Growth Substances: Abstr. Brno, 2001. — P. 119.
  263. Songstad D.D., Petersen W.L., Armstrong C.L. Establishment of friable embryogenic (type II) callus from immature tassels of Zea mays (Poaceae) // Am. J. Bot. 1992. — V. 79. — P. 761 — 764.
  264. Sreedhar L., Bewley J.D. Nitrogen- and sulfur-containing compounds enhance the synthesis of storage reserves in developing somatic embryos of alfalfa (Medicago sativa L.) // Plant Sci. 1998. — V. 134, № 1. — P. 31 — 44.
  265. Steward F.G. Growth and organized development of cultured cells. III.41.terpretation of the growth from free cells to carrot plants // Amer. J. Bot. 1958.- V. 45, № 10. P. 467 — 473.
  266. Subhadra J., Chowdhury В., Singh R. Somatic embryogenesis and plant regeneration from suspension cultures of wheat Triticum aestivum L. I I Indian J. Exp. Biol. 1995. — V. 33, № 2. — P. 147 — 149.
  267. Suprasanna P., Ganapathi T.R., Rao P. S. Embryogenic ability in long term callus cultures of rice (Oryza sativa L.) // Cereal Res. Commun. 1997. — V. 25, № l.-P. 27−33.
  268. Swedlung В., Locy R.D. Embryogenic and nonembryogenic corn callus from immature embryo // J. Plant Physiol. 1993. — V. 103, № 4. — P. 13 391 343.
  269. Takayama S., Azuma Y. Scanning electron microscopy of the centromeric region // CIS: Chromosomes Inf. Serv. 1995. -№ 59. — P. 15 — 17.
  270. Tchorbadjieva M., Somleva M., Odjakova M. Characterization of embryogenic and nonembryogenic callus of Dactylis glomerata L. // Докл. Болг. АН. 1992. — Т. 45, № 7. — P. 103 — 111.
  271. Torres A.C., Ze N.M., Cantliffe D.J. Abscisic acid and somatic induction of synchronous somatic embryo development of sweet potato // In Vitro Cell Dev. Biol. Plant. 2001. — V. 37. — P. 262 — 267.
  272. Cult. 1991.-V. 27.-P. 275−280.
  273. Varshney A., Kant Т., SharmaV.K., Rao A., Kothari S.L. High frequency plant regeneration from immature embryo cultures of Triticum aestivum and T. durum. II Cereal Res. Comm. 1996. — V. 24. — P. 409 — 416.
  274. Vasil I., Hildebrandt A.C. Variations of morphogenetic behavior in plant tissue cultures. I. Cichorium endivia II Amer. J. Bot. 1966. — V. 53, № 9. -P. 869 — 874.
  275. Vasil V., Vasil I.K. The ontogeny of somatic embryos of Pennisetum americanum (L.). K. Schum. I. In cultured immature embryos // Bot. Gaz. 1982. -V. 143.-P. 454−465.
  276. Veisseire P., Linossier L., Coudret A. Effect of abscisic acid and cytokinins on the development of somatic embryos in Hevea brasiliensis II Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1994. — V. 39. — P. 219 — 223.
  277. Veselov S.U., Kudoyarova G.R., Egutkin N.L., Gyuli-Zade V.Z., Mustafina A.R., Kof E.M. Modified solvent partitioning scheme providing increased specificity and rapidity of immunoassay for IAA // Physiol. Plantarum. — 1992. — V. 86. P. 93 — 96.
  278. Vikrant, Rashid A. Comparative study of somatic embryogenesis fromimmature and mature embryos and organogenesis from leaf-base of Triticale II Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 2001. — V. 64, № 1. — P. 33 — 38.
  279. Walther P., Hermann R., Wehrli E., Muller M. CryoSEM an alternative to freeze fracture tem replicas? // Biol. Cell. — 1995. — V. 84, № 3. — P. 223 — 229.
  280. Wan Y., Lemaux P.G. Generation of large number of independently transformed fertile barley plants // Plant Physiol. 1994. — V. 104. — P. 37 — 48.
  281. Wang Y-H., Bhalla P.L. Somatic embryogenesis from leaf explants of Australian fan flower, Scaevola aemula R. Br. // Plant Cell Repts. 2004. — V.22, № 6.-P. 408−414.
  282. W. -Ch., Nguyen H.T. A simple approach to isolate shoot competent ц cells from sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench.) callus culture // Cereal Res.
  283. Commun. 1995. — V. 23, № 1−2. — P. 87 — 93.
  284. Welter M.E., Clayton D.S., Miller M.A., Petolino J.F. Morphotypes of friable embryogenic maize callus // Plant Cell Repts. 1995. — V. 14, № 11. -P. 725 — 729.
  285. Wenck A.R., Conger B.V., Trigiano R.N., Sams C.E. Inhibition of somatic embryogenesis in orchardgrass by endogenous cytokinins // Plant Physiol. 1988. -V. 88.-P. 990−992.
  286. Wilen R.W., Mendel R.M., Pharis R.P., Holbrook L.A., Moloney M.M. Effect of abscisic acid and high osmoticum on storage protein gene expression inmicrospore embryos of Brassica napus И Plant Physiol. 1990. — V. 94. — P. 875 -881.
  287. Williams E.G., Maheshwaran G. Somatic embryogenesis: factors influencing coordinated behaviour of cells as an embryogenic group // Ann. Bot. (USA). 1986. — V. 57, № 4. — P. 443 — 462.
  288. Windsor M., Milborrow В., McFarlane I. The uptake of (+)-S- and (-)-R-abscisic acid by suspension culture cells of hopbrush (.Dodonaea viscosa) II Plant Physiol. 1992. — V. 100. — P. 54 — 62.
  289. Xu N., Bewley J.D. The role of ABA in germination, storage protein synthesis and desiccation-tolerance in alfalfa (Medicago sativa L.) seeds as shown by inhibition of its synthesis by fluridone during development // J. Exp. Bot-1995.-V. 46.-P. 687−695.
  290. Yamaguchi Т., Street H.E. Stimulation of the growth of excised cultured roots of soybean by abscisic acid // Ann. Bot. 1977. — V. 41, № 11. — P. 1129 — 1134.
  291. Yeoman M.M. Early development in callus cultures // International review of cytology. New York- London: Acad, press, 1970. — V. 29. — P. 383 — 409.
  292. Yoshida Т. Relationship between callus size and plant regeneration in rice ц (Oryza sativa L.) anther culture // Jap. Agr. Res. Quart. 1995. — V. 29, № 3.1. P. 143 147.
  293. Zale J.M., Borchardt-Wier H., Kidwell K.K., Steber C.M. Callus induction and plant regeneration from mature embryos of a diverse set of wheat genotypes // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 2004. — V. 76, № 3. — P. 277 — 281.
  294. Zhang X.-Y., Huang Y.-B., Yin G.-Ch. Histological study of somatic embryogenesis in culture in vitro II Acta Bot. Sin. 1992. — V. 34, № 3. — P. 214 — 218.
  295. Zhao J.-P., Bi K.-H., Bai X.-H., Liang J.-G. Multiplication in vitro of Cucurbita moschata II Plant Physiol. Commun. 1995. — V. 31, № 4. — P. 285 -286.
  296. Zheng Z., Huang B. Rapid and repetitive plant regeneration in sweetpotato via somatic embryogenesis // Acta Bot. Sin. 1994. — V. 36, N° 3. — P. 175 — 179.
  297. Zimmerman J.L. Somatic embryogenesis: a model for early development in higher plants//Plant Cell. 1993.-V. 5, № 10.-P. 1411 — 1423.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!