Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Совершенствование метода получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота при использовании в качестве доноров ядер соматических клеток

Диссертация: Совершенствование метода получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота при использовании в качестве доноров ядер соматических клеток
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Применение в качестве доноров ядер соматических клеток, криоконсервированных по достижении 80−100%-ного монослоя, без дополнительного культивирования после размораживания позволяет использовать однородную популяцию соматических клеток на протяжении серии экспериментов. Система WOW может быть использована для культивирования эмбрионов крупного рогатого скота без zona pellucida, совмещая в себе… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Современное состояние технологии трансплантации ядер
    • 1. 2. Клеточный цикл эукариот и его регуляция
    • 1. 3. Культивирование и криоконсервация соматических клеток
    • 1. 4. Развитие и созревание яйцеклетки
    • 1. 5. Дозревание ооцитов in vitro
    • 1. 6. Энуклеация ооцитов
    • 1. 7. Репрограммирование трансплантированного ядра соматической клетки
    • 1. 8. Влияние фазы клеточного цикла клетки-донора ядра на эффективность клонирования
    • 1. 9. Подготовка клеток-доноров ядер к трансплантации
    • 1. 10. Значение продолжительности пребывания ядра соматической клетки в неактивированной цитоплазме
    • 1. 11. Активирование реконструированных эмбрионов
    • 1. 12. Культивирование эмбрионов млекопитающих in vitro
  • 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
      • 2. 2. 1. Дозревание in vitro ооцитов крупного рогатого скота и свиней
      • 2. 2. 2. Эффективность «слепой» энуклеации ооцитов крупного рогатого скота и свиней без zona pellucida
      • 2. 2. 3. Получение и криоконсервация линий фетальных фибробластов и фибробластоподобных клеток кожи взрослого животного
      • 2. 2. 4. Получение фетальных фибробластов крупного рогатого скота в G1 фазе клеточного цикла
      • 2. 2. 5. Подготовка пар цитопласт-соматическая клетка к электрослиянию
      • 2. 2. 6. Воздействие электроимпульса на ооциты крупного рогатого скота в зависимости от наличия кальция в среде
      • 2. 2. 7. Изучение эффективности электрослияния пар цитопласт-соматическая клетка в среде без кальция
      • 2. 2. 8. Активирование реконструированных эмбрионов крупного рогатого скота без zona pellucida химическим методом
      • 2. 2. 9. Приготовление питательных сред и метод культивирования реконструированных эмбрионов крупного рогатого скота без zona pellucida
      • 2. 2. 10. Использование криоконсервированных соматических клеток в качестве доноров ядер сразу после оттаивания и после дополнительного культивирования
      • 2. 2. 11. Влияние длительности пребывания ядра соматической клетки в неактивированном цитопласте на эффективность развития реконструированных эмбрионов in vitro

Совершенствование метода получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота при использовании в качестве доноров ядер соматических клеток (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Научные разработки в области клонирования животных имеют как фундаментальное, так и прикладное значение. С помощью метода клонирования можно получить ответы на некоторые фундаментальные вопросы биологии развития, ядерно-цитоплазматического взаимодействия, репрограммирования ядра. Путем клонирования можно увеличить поголовье животных с высоким генетическим потенциалом, в частности, элитных быков-производителей (Wilmut et al, 2000), а так же решить проблему сохранения видов животных, находящихся под угрозой исчезновения, и даже восстановления уже исчезнувших (Lanza et al., 2000; Loi et al., 2001). Метод клонирования позволяет существенно увеличить эффективность получения трансгенных животных, что особенно важно в отношении крупного рогатого скота и свиней (Polejaeva, Campbell, 2000; McCreath et al., 2000; Melo et al, 2005). Идея клонирования воплощена в методе переноса ядра (nuclear transfer, NT) клетки-донора в энуклеированную неоплодотворенную яйцеклетку, находящуюся в метафазе второго деления мейоза (Wilmut et al., 1997). Изначально источниками ядер для подобных исследований служили бластомеры (Willadsen, 1986). В настоящее время достигнуты успехи при переносе ядер соматических клеток (somatic cell nuclear transfer, SCNT) при клонировании овец (Wilmut et al., 1997), крупного рогатого скота (Cibelli et al, 1998; Kato et al, 1998), мышей (Wakayama et al, 1998), коз (Baguisi et al., 1999), свиней (Betthauser et al., 2000; Polejaeva et al, 2000), кроликов (Chesne et al, 2002), лошадей (Galli et al, 2003), крыс (Zhou et al., 2003) и других видов. Сущность технологии SCNT заключается в том, что в предварительно энуклеированную яйцеклетку (цитопласт) вводится ядро соматической клетки. Классическая технология получения клонированных животных, предложенная 25 лет назад (Willadsen, 1986) и применяемая до настоящего времени, остается сложной. Альтернативой традиционному методу является zona-free метод, когда ооциты перед энуклеацией освобождаются от zona pellucida, что значительно упрощает большинство последующих этапов (Peura et al., 1998).

Одно из центральных мест в SCNT занимает получение культур клеток, их соответствующая подготовка, а так же культивирование реконструированных эмбрионов in vitro до стадии бластоцисты, что позволяет проводить трансплантацию эмбрионов крупного рогатого скота реципиентам нехирургическим способом. Большой интерес метод клонирования представляет для получения генетически модифицированных свиней для целей ксенотрансплантации. Поэтому часть этапов технологии клонирования мы провели с ооцитами свиней.

Цель и задачи исследований. Цель настоящих исследованийсовершенствование метода получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота путем реконструкции ооцитов без zona pellucida при использовании в качестве доноров ядер соматических клеток и последующего культивирования их in vitro до стадии бластоцисты.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Подготовить качественные цитопласты на основе ооцитов крупного рогатого скота, дозревших in vitro.

2. Получить линии фетальных фибробластов и линии фибробластоподобных клеток кожи от взрослых животных.

3. Разработать метод подготовки соматических клеток для использования их в качестве доноров ядер.

4. Изучить влияние сроков активирования на эффективность развития реконструированных эмбрионов крупного рогатого скота in vitro.

5. Усовершенствовать условия культивирования in vitro реконструированных эмбрионов крупного рогатого скота без zona pellucida.

6. Отработанные методы подготовки цитопластов апробировать на ооцитах свиней.

Научная новизна. Впервые было показано, что первое полярное тельце на поверхности ооцитов свиней без zona pellucida является точным указателем расположения материнских хромосом.

Показано, что при использовании среды электрослияния без солей кальция снижается вероятность преждевременного активирования ооцитов крупного рогатого скота под воздействием электроимпульса. При этом эффективность электрослияния конструкций цитопласт-соматическая клетка, подготовленных с применением фитогемагглютинина, составляет 95%.

Показано, что увеличение продолжительности пребывания трансплантированного ядра соматической клетки в неактивированной цитоплазме энуклеированного ооцита до 4−5 ч не снижает уровень развития реконструированных эмбрионов крупного рогатого скота in vitro до стадии бластоцисты.

Практическая значимость. Энуклеация ооцитов без zona pellucida путем апсирации PBI с небольшим участком прилегающей цитоплазмы позволяет получить качественные цитопласты без применения ядерных красителей и УФ лучей.

Применение в качестве доноров ядер соматических клеток, криоконсервированных по достижении 80−100%-ного монослоя, без дополнительного культивирования после размораживания позволяет использовать однородную популяцию соматических клеток на протяжении серии экспериментов. Система WOW может быть использована для культивирования эмбрионов крупного рогатого скота без zona pellucida, совмещая в себе достоинства как индивидуального, так и группового культивирования. Полученные результаты могут найти применение в экспериментальной эмбриологии, в изучении процессов раннего эмбриогенеза млекопитающих, при практической работе с эмбрионами крупного рогатого скота.

Результаты проведенных исследований вошли в состав 5 отчетов о научно исследовательской работе лаборатории клонирования животных отдела «Биотехцентр» по теме: «Разработать эффективные способы, направленные на создание новых типов животных, тканей и культур клеток на основе методов клеточной инженерии» и были утверждены на заседаниях ученого совета ГНУ НИИПЗК в период с 2006 по 2010 г., а также в состав готовящихся методических рекомендаций: «Методические положения по получению клонированных эмбрионов крупнго рогатого скота и их кульитивированию in vitro, обеспечивающие выход бластоцист на уровне 4045%», предназначенных для научных сотрудников, преподавателей, аспирантов и студентов научно-исследовательских институтов, ветеринарных и биологических факультетов ВУЗов.

Личный вклад соискателя. Автор принимал непосредственное участие во всех этапах работы, в т. ч. при приготовлении инструментов и микроинструментов для выделения ооцитов, для работы с ооцитами, цитопластами и реконструированными эмбрионами, при приготовлении питательных сред и рабочих растворов, эстральной сыворотки крови крупного рогатого скота (ЭСК). Автор обеспечивал получение и доставку яичников животных в лабораторию, проводил выделение ооцитов, их дозревание, освобождение от клеток кумулюса и zona pellucida, энуклеацию, приготовление пар цитопласт-соматическая клетка, электрослияние, активирование и культивирование реконструированных эмбрионов in vitro. Осуществлял выделение линий соматических клеток от взрослого животного и плода, их культивирование и криоконсервацию. Автор участвовал при проведении анализа и обобщении полученных результатов исследований, написании статей, отчетов и докладов.

В работе использованы материалы, полученные автором лично, а также в соавторстве с зав. отделом «Биотехцентр», д.б.н. Маленко Г. П., научным сотрудником отдела «Биотехцентр» Степановым О. И. и другими сотрудниками отдела, которым выражаю глубокую благодарность за помощь и поддержку.

Апробация результатов диссертации. Основные материалы диссертации вошли в состав 5 научных отчетов, которые доложены и обсуждены на ежегодных отчётных сессиях ГНУ НИИПЗК в период с 2006 по 2010 гг., а также на международных научных конференциях: IV Международная конференция «Актуальные проблемы биологии в животноводстве» (г. Боровск, 2006) — The 33rd Annual Conference of the International Embryo Transfer Society (Kyoto, Japan, 2007) — 7-я Международная научная конференция-школа «Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных: роль нанотехнологий в реализации приоритетных задач биотехнологии» (п. Дубровицы, 2008) — 2-й Международный конгресс-партнеринг и выставка по биотехнологии и биоэнергетике «ЕвразияБио-2010» (г. Москва, 2010) — V Международная научная конференция «Актуальные проблемы биологии в животноводстве» (г. Боровск, 2010).

Публикации. По результатам диссертации опубликовано 4 статьи, в т. ч. 3 — в журналах, входящих в перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий ВАК (Сельскохозяйственная биология, Доклады РАСХН, Известия РАН. Серия биологическая) и 1 статья в международном журнале (Cloning and Stem Cells).

Объем и структура диссертации. Материалы диссертации изложены на 164 страницах машинописного текста и включают введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение полученных результатов, практическое использование полученных научных результатов, рекомендации по использованию научных выводов, список использованной литературы (333 источника, в т. ч. 326 — иностранных авторов). Работа содержит 13 таблиц, 8 рисунков и 9 страниц приложений.

4. ВЫВОДЫ.

1. Использование на начальном этапе культивирования эксплантатов небольшого количества питательной среды, содержащей 50% сыворотки крови, способствует их фиксации на субстрате и последующему выселению из них клеток. Для выделения линий фетальных фибробластов эффективным является «холодный» метод трипсинизации.

2. Фетальные фибробласты крупного рогатого скота, криоконсервированные по достижении 80−100%-ного монослоя, могут использоваться в качестве доноров ядер сразу после оттаивания без дополнительного культивирования.

3. Соматические клетки в G1 фазе клеточного цикла можно получить путем механического разделения на микроманипуляторе клеток, находящихся в цитокинезе М фазы.

4. Первые полярные тельца на поверхности ооцитов свиней располагаются в непосредственной близости от материнских хромосом. Метод «слепой» энуклеации ооцитов свиней без zona pellucida является эффективным методом подготовки цитопластов без использования ядерных красителей и применения УФ света.

5. Уровень активации ооцитов крупного рогатого скота под воздействием электроимпульса в среде с 0,05 мМ СаСЬ составляет 47,1% и резко снижается (до 26,7%) при отсутствии солей кальция.

6. Эффективность электрослияния пар цитопласт-соматическая клетка, подготовленных с использованием фитогемагглютинина, в растворе маннитола без включения солей кальция составляет 95%.

7. Для получения реконструированных эмбрионов крупного рогатого скота без zona pellucida на стадии бластоцисты эффективной является система WOW, которая позволяет совместить достоинства как группового, так и индивидуального культивирования эмбрионов in vitro.

8. При интервале между электрослиянием и активированием 4−5 ч уровень развития реконструированных эмбрионов до стадии бластоцисты составил 46% при использовании в качестве цитопластов энуклеированных ооцитов крупного рогатого скота, дозревших in vitro к 18 ч от начала дозревания.

5. ПРАКТИЧЕСКОЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ НАУЧНЫХ.

РЕЗУЛЬТАТОВ.

1. Результаты проведенных экспериментов вошли в состав 5 отчетов лаборатории клонирования животных отдела «Биотехцентр» ГНУ НИИПЗК: «Изучить возможность клонирования особей крупного рогатого скота путем пересадки ядер соматических клеток» (промежуточный, утв. в 2006 г), «Разработать методику получения первичной линии соматических клеток от взрослого животного для получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота» (промежуточный, утв. в 2007 г), «Изучить эффективность использования ооцитов реципиентов разного срока дозревания при получении клонированных эмбрионов крупного рогатого скота» (промежуточный, утв. в 2008 г), «Изучить влияние режима электрослиянияактивирования конструкций на развитие клонированных эмбрионов крупного рогатого скота in vitro» (промежуточный, утв. в 2009 г), «Разработать методические положения по получению клонированных эмбрионов крупного рогатого скота при использовании соматических клеток-доноров ядер и дозревших in vitro энуклеированных ооцитов-реципиентов» (заключительный, утв. в 2010 г).

2. Результаты экспериментов вошли в состав методических рекомендаций «Методические положения по получению клонированных эмбрионов крупного рогатого скота и их культивированию in vitro, обеспечивающие выход бластоцист на уровне 40−45%», предназначенных для научных сотрудников, преподавателей, аспирантов и студентов научно-исследовательских институтов, ветеринарных и биологических факультетов ВУЗов.

6. РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ.

1. Соматические клетки, криоконсервированные по достижении 80−100%-ного монослоя, могут быть использованы в качестве клеток-доноров ядер сразу после размораживания без дополнительного культивирования.

2. Для выделения линии фибробластоподобных клеток кожи взрослого животного рекомендуется метод эксплантатов. Для лучшей фиксации фрагментов ткани на культуральной поверхности в первые сутки рекомендуется использование питательной среды с 50% сыворотки крови.

3. Для электрослияния конструкций цитопласт-соматическая клетка крупного рогатого скота, подготовленных с применением фитогемагглютинина, рекомендуется использовать среду без включения солей кальция.

4. Для культивирования эмбрионов крупного рогатого скота без zona pellucida рекомендуется система WOW. Размещение эмбрионов в микроячейках позволяет избежать агрегации их друг с другом и обеспечивает создание микросреды в непосредственной близости к эмбриону, а достаточно большой общий объем среды в лунке планшета позволяет исключить необходимость ее замены во время культивирования эмбрионов in vitro до стадии бластоцисты.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , О.И. Покоящиеся клетки. Свойства и функции в организме / О. И. Епифанова, В. В. Терских, В. А. Полуновский. М.: Наука, 1983.- 180 с.
  2. Животная клетка в культуре: (Методы и применение в биотехнологии) / под общ. ред. Л. П. Дьяконова. М.: Спутник+, 2000. — 398 с.
  3. , Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин М.: Высшая школа, 1980. —293 с.
  4. , Г. П. Устройство для выделения комплексов «ооцит-кумулюс» из антральных фолликулов яичников крупного рогатого скота / Г. П. Маленко // Сельскохозяйственная биология. 2001. — № 4. — С. 117—119.
  5. , П. Методы микроманипуляции, пер. с франц. / П. Фонбрюн. М.: Изд-во иностр. лит., 1951. — 168 с.
  6. Фрей-Висслинг, А. Сравнительная органеллография цитоплазы / А. Фрей-Висслинг. -М.: Мир, 1976. 144 с.
  7. Arat, S. Production of transgenic bovine embryos by transfer of transfected granulosa cells into enucleated oocytes / S. Arat, S.J. Rzucidlo, J. Gibbons et al II Mol. Reprod. Dev. 2001. V. 60. — P. 20−26.
  8. Ashworth, P.J. Flow cytometric detection of bicarbonate-induced changes in lectin binding in boar and ram sperm populations / P.J. Ashworth, R.A. Harrison, N.G. Miller et al. II Mol. Reprod. Dev. 1995. V. 40. — P. 164−176.
  9. Aston, K.I. Effect of the time interval between fusion and activation on nuclear state and development in vitro and in vivo of bovine somatic cell nuclear transfer embryos / K.I. Aston, G.P. Li, B.A. Hicks et al. II Reproduction. 2006. -V. 131.-P. 1−8.
  10. Baguisi, A. Production of goats by somatic cell nuclear transfer / A. Baguisi, E. Behboodi, D.T. Melican et al. II Nat. Biotech. 1999. V. 17. — P. 456 461.
  11. Bavister, B.D. Development of preimplantation embryos of the golden hamster in a defined culture medium / B.D. Bavister, M.L. Leibfried, G. Lieberman // Biol. Reprod. 1983. V. 28. — P. 235−247.
  12. Bavister, B.D. Regulation of hamster embryo development in vitro by amino acids / B.D. Bavister, S.H. McKiernan // In: Bavister BD, editor. Preimplantation embryo development. New York: Springer Verlag, 1993. P. 5772.
  13. Bavister, B.D. The effects of sperm extracts and energy sources on the motility and acrosome reaction of hamster spermatozoa in vitro / B.D. Bavister, R. Yanagimachi I I Biol. Reprod. 1977. V. 16. — P. 228−237.
  14. Berridge, M.J. Phosphoinositides and signal transductions / M.J. Berridge // Rev. Clin. Basic. Pharm. 1985. V. 5. — P. 5−13.
  15. Betthauser, J. Production of cloned pigs from in vitro systems / J. Betthauser, E. Forsberg, M. Augenstein et al. II Nat. Biotechnol. 2000. V. 18. -P. 1055−1059.
  16. Blow, J.J. A role for the nuclear envelope in controlling DNA replication within the cell cycle / J.J. Blow, R.A. Laskey // Nature. 1988. V. 332. — P. 546−548.
  17. Boland, M.P. Use of the rabbit oviduct as a screening tool for the viability of mammalian eggs / M.P. Boland // Theriogenology. 1984. V. 21. — P. 126−137.
  18. Booth, P.J. Effect of two activation treatments and age of blastomere karyoplasts on in vitro development of bovine nuclear transfer embryos / P.J. Booth, P. Holm, G. Vajta et al. II Mol. Reprod. Dev. 2001. V. 60. — P. 377−383.
  19. Boquest, A.C. Flow cytometric cell cycle analysis of cultured porcine fetal fibroblast cells / A.C. Boquest, B.N. Day, R.S. Prather // Biol. Reprod. 1999. -V. 60.-P. 1013−1019.
  20. Boquest, A.C. Production of cloned pigs from cultured fetal fibroblast cells / A.C. Boquest, C.G. Grupen, S.J. Harrison et al II Biol. Reprod. 2002. V. 66.-P. 1283−1287.
  21. Bordignon, V. Telophase enucleation: an improved method to prepare recipient cytoplasts for use in bovine nuclear transfer / V. Bordignon, L.C. Smith // Mol. Reprod. Dev. 1998. V. 49. — P. 29−36.
  22. Bowan, R.A. In vitro development of bovine embryos in chemically defined media / R.A. Bowan, J.F. Hasler, G.E. Seidel // Proc. 88th Annu. Res. Conf.: abstr. Colorado State Univ. Fort Collins, 1975. — P. 171.
  23. Braude, P. Human gene expression first occurs between the four- and eight-cell stages of preimplantation development / P. Braude, V. Bolton, S. Moore //Nature. 1988.-V. 332-P. 459−461.
  24. Braude, P. Post-transcriptional control in the early mouse embryo / P.' Braude, H. Pelham, G. Flach et al. II Nature. 1979. V. 282. — P. 102−105.
  25. Brinster, R.L. Studies on the development of mouse embryos in vitro. III. The effect of energy source / R.L. Brinster II J. Exp. Zool. 1965. V. 158. — P. 59−68.
  26. Brock, H. The production of viable bovine ova / H. Brock, L.E. Rowson // J. Agr. Sci. (Camb.) 1952. V. 42. — P. 479.
  27. Brophy, B. Cloned transgenic cattle produce milk with higher levels of beta-casein and kappa-casein / B. Brophy, G. Smolenski, T. Wheeler et al. II Nat. Biotechnol. 2003.-V. 21.-P. 157−162.
  28. Byrne, J.A. Producing primate embryonic stem cells by somatic cell nuclear transfer / J.A. Byrne, D.A. Pedersen, L.L. Clepper et al. 11 Nature. 2007. — V. 450.-P. 497−502.
  29. Camous, S. Cleavage beyond the block stage and survival after transfer of early bovine embryos cultured with trophoblastic vesicles / S. Camous, Y. Heyman, W. Meziou et al. II J. Reprod. Fertil. 1984. V. 72. — P. 479185.
  30. Campbell, K.H. Cell cycle coordination in embryo cloning by nuclear transfer / K.H. Campbell, P. Loi, P. Cappai et al. II Rev. Reprod. 1996 a. V. 1. -P. 40−46.
  31. Campbell, K.H. Sheep cloned by nuclear transfer from a cultured cell line / K.H. Campbell, J. McWhir, W.A. Ritchie et al. II Nature. 1996 b. V. 380. -P. 64−66.
  32. Canseco, R.S. Embryo density and medium volume effects on early murine embryo development / R.S. Canseco, A.E. Sparks, R.E. Pearson et al. II J. Assist. Reprod. Genet. 1992. V. 9. — P. 454157.
  33. Carlson, D. Oviduct secretion in the cow / D. Carlson, D.L. Black, G.R. Howe // J. Reprod. Fertil. 1970. V. 22. — P. 549−552.
  34. Carolan, C. Effect of follicle size and quality on the ability of follicular fluid to support cytoplasmic maturation of bovine oocytes / C. Carolan, P. Lonergan, P. Monget et al. II Mol. Reprod. Dev. 1996. V. 43. — P. 477−483.
  35. Carolan, P. In vitro production of bovine embryos using individual oocytes / P. Carolan, C. Lonergan, H. Khatir et al. II Mol. Reprod. Dev. 1996. V. 45.-P. 145−150.
  36. Cell biology: a laboratory handbook: 4 vol. / ed. J.E. Celis. San Diego: Academic Press., 1998.
  37. Chambers, E.L. The activation of sea urchin eggs by the divalent ionophores A23187 and X-537A / E.L. Chambers, B.C.Pressman, B. Rose // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1974. -V. 60. P. 126−132.
  38. Cheong, H.T. Birth of mice after transplantation of early cell-cycle-stage embryonic nuclei into enucleated oocytes / H.T. Cheong, Y. Takahashi, H. Kanagawa // Biol. Reprod. 1993. V. 48. — P. 958−963.
  39. Cheong, H.T. Development of reconstituted pig embryos by nuclear transfer of cultured cumulus cells / H.T. Cheong, K. Ikeda, M.A. Diaz et al. II Reprod. Fertil. Dev. 2000. V. 12. — P. 15−20.
  40. Chesne, P. Cloned rabbits produced by nuclear transfer from adult somatic cells / P. Chesne, P.G. Adenot, C. Viglietta et al. II Nat. Biotechnol. 2002. -V. 20.-P. 366−369.
  41. Choi, J.Y. Effect of activation time on the nuclear remodeling and in vitro development of nuclear transfer embryos derived from bovine somatic cells / J.Y. Choi, C.I. Kim, C.K. Park et al. II Mol. Reprod. Dev. 2004. V. 69. — P. 289 295.
  42. Cibelli, J.B. Cloned transgenic calves produced from nonquiescent fetal fibroblasts / J.B. Cibelli, S.L. Stice, P.J. Golueke et al. II Science. 1998. V. 280. -P. 1256−1258.
  43. Collas, P. Barnes F.L. Nuclear transplantation by microinjection of inner cell mass and granulosa cell nuclei / P. Collas, F.L. Barnes l (Mol. Reprod. Dev. 1994. -V. 38. P. 264−267.
  44. Collas, P. Histone HI kinase activity in bovine oocytes following calcium stimulation / P. Collas, E.J. Sullivan, F.L. Barnes // Mol. Reprod. Dev. 1993.-V. 34.-P. 224−231.
  45. Collas, P. Influence of cell cycle stage of the donor nucleus on development of nuclear transplant rabbit embryos / P. Collas, J.J. Balise, J.M. Robl // Biol. Reprod. 1992. V. 46. — P. 492−500.
  46. Collas, P. Relationship between nuclear remodeling and development in nuclear transplant rabbit embryos / P. Collas, J.M. Robl // Biol. Reprod. 1991. V. 45.-P. 455—465.
  47. Comings, D.E. Mechanisms of chromosome banding. VIII. Hoechst 33 258-DNA interaction / D.E. Comings // Chromosoma. 1975. V. 52. — P. 229 243.
  48. Cooper, S. Mammalian cells are not synchronized in G1-phase by starvation or inhibition: considerations of the fundamental concept of G1-phase synchronization / S. Cooper // Cell. Prolif. 1998. V. 31. — P. 9−16.
  49. Critser, E.S. Use of a fluorescent stain for visualization of nuclear material in living oocytes and early embryos / E.S. Critser, N.L. First // Stain. Technol. 1986.-V. 61.-P. 1−5.
  50. Crosby, I.M. Control of protein synthesis during early cleavage of sheep embryos / I.M. Crosby, F. Gandolfi, R.M. Moor // J. Reprod. Fertil. 1988. -V. 82.-P. 769−775.
  51. Cyert, M.S. Regulation of MPF activity in vitro /M.S. Cyert, M.W. Kirschner//Cell. 1988.-V. 53.-P. 185−195.
  52. Czolowska, R. Behaviour of thymocyte nuclei in non-activated and activated mouse oocytes / R. Czolowska, J.A. Modlinski, A.K. Tarkowski // J. Cell. Sci. 1984.-V. 69.-P. 19−34.
  53. Diamond, L.E. A human CD46 transgenic pig model system for the study of discordant xenotransplantation / L.E. Diamond, C.M. Quinn, M.J. Martin et al. II Transplantation. 2001. V. 71. -P. 132−142.
  54. Dinnyes, A. High developmental rates of vitrified bovine oocytes following parthenogenetic activation, in vitro fertilization, and somatic cell nuclear transfer / A. Dinnyes, D. Yunping, Sh. Jiang et al. II Biol. Reprod. 2000. V. 63. -P. 513−518.
  55. Djojosubroto, M.W. Telomeres and telomerase in aging, regeneration and cancer / M.W. Djojosubroto, Y.S. Choi, H.W. Lee et al. Il Mol. Cells. 2003. -V. 15.-P. 164−175.
  56. Dominko, T. Optimization strategies for production of mammalian embryos by nuclear transfer / T. Dominko, J. Ramalho-Santos, A. Chan et al. Il Cloning. 1999.-Y. 1.-P. 143−152.
  57. Donahue, R.P. Maturation of the mouse oocyte in vitro. I. Sequence and timing of nuclear progression / Donahue R.P. // J. Exp. Zool. 1968. V. 169. — P. 237−249.
  58. Donnay, I. Effects of co-culture and embryo number on the in vitro development of bovine embryos / I. Donnay, A. Van Langendonckt, P. Auquier et al. Il Theriogenology. 1997. V. 47. — P. 1549−1561.
  59. Dou, Q.-P. Transcriptional activation of thymidine kinase, a marker for cell cycle control / Q.-P. Dou, A.B. Pardee // Progr. Nucleic. Acids. Res. Mol. Biol. 1996.-V. 53.-P. 197−217.
  60. Draghia-Akli, R. Myogenic expression of an injectable protease-resistant growth hormone- releasing hormone augments long-term growth in pigs / R. Draghia-Akli, M.L. Fiorotto, L.A. Hill et al. II Nat. Biotechnol. 1999. V. 17. -P.1179−1183.
  61. Du, F. Differential cytoplast requirement for embryonic and somatic cell nuclear transfer in cattle / F. Du, L.Y. Sung, X.C. Tian et al. II Mol. Reprod. Dev. 2002. V. 63.-P. 183−191.
  62. Ducibella, T. Cell shape and membrane changes in the eight-cell mouse embryos: Prerequisites for morphogenesis of the blastocyst / T. Ducibella, E. Anderson // Dev. Biol. 1975. V. 47. — P. 45−58.
  63. Ducibella, T. Quantitative studies of changes in cortical granule number and distribution in the mouse oocyte during meiotic maturation / T. Ducibella, E. Anderson, D.F. Albertini et al II Dev. Biol. 1988. V. 130. — P. 184−197.
  64. Dulic, V. Association of humane cyclin E with a periodic Gl-S phase protein kinase / V. Dulic, E. Lees, S.I. Reed // Science. 1992. V. 257. — P. 19 581 961.
  65. Eagle, H. A growth medium for human cell lines / H. Eagle // Proc. Soc. Biol. Med. 1955. V. 89. — P. 96−99.
  66. Eagle, H. The biosynthesis of cystine in human cell cultures / H. Eagle, K.A. Piez, V.I. Oyama // J. Biol. Chem. 1961.-V. 236.-P. 1425−1428.
  67. Eagle, H. The population-dependent requirement by cultured mammalian cells for metabolites which they can synthesize / H. Eagle, K. Piez // J. Exp. Med. 1962.-V. 116.-P. 29−43.
  68. Endo, M. Calcium release from the sarcoplasmic reticulum / M. Endo // Physiol. Rev. 1977. V. 57. — P. 71−108.
  69. Epel, D. The initiation of development at fertilization / D. Epel // Cell. Differ. Dev. 1990.-V. 29.-P. 1−12.
  70. Evans, M.J. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos / M.J. Evans, M.H. Kaufman // Nature. 1981. V. 292. — P. 154−156.
  71. Eyestone, W.H. Co-culture of early cattle embryos to the blastocyst stage with oviducal tissue or in conditioned medium / W.H. Eyestone, N.L. First // J. Reprod. Fertil. 1989. -V. 85. P. 715−720.
  72. Eyestone, W.H. Culture of one- and two-cell bovine embryos to the blastocyst stage in the ovine oviduct / W.H. Eyestone, M.L. Leibfried-Rutledge, D.L. Northey et al. II Theriogenology. 1987. V. 28. — P. 1−7.
  73. Fahning, M.L. The free amino acid content of uterine fluids and blood serum in the cow / M.L. Fahning, R.H. Schultz, E.F. Graham // J. Reprod. Fertil. 1967.-V. 13.-P. 229−236.
  74. Farnham, P.J. The role of E2 °F in the mammalian cell cycle/ P.J. Farnham, J.E. Slansky, R. Kollmar // Biochim. Biophys. Acta. 1993. V. 1155. -P. 125−131.
  75. Farnham, P.J. Transcriptional regulation of mouse dihydrofolate reductase in the cell cycle / P.J. Farnham, R.T. Schimke // J. Biol. Chem. 1985. -V. 260. P. 7675−7680.
  76. First, N.L. Systems for production of calves from cultured bovine embryonic cells / N.L. First, M.M. Sims, S.P. Park et al. II Reprod. Fertil. Dev. 1994.-V. 6.-P. 553−562.
  77. Fodor, W.L. Expression of a functional human complement inhibitor in a transgenic pig as a model for the prevention of xenogeneica hyperacute organ rejection / W.L. Fodor, B.L. Williams, L.A. Matis et al. II PNAS. 1994. V. 91. -P. 11 153−11 157.
  78. Ford, C.C. Maturation promoting factor and cell cycle regulation / C.C. Ford II J. Embryol. Exp. Morphol. 1985. V. 89. — P. 271−284.
  79. Forsberg, E.J. Production of cloned cattle from in vitro systems / E.J. Forsberg, N.S. Strelchenko, M.L. Augenstein et al. II Biol. Reprod. 2002. V. 67. -P. 327−333.
  80. Frei, R.E. Qualitative and quantitative changes in protein synthesis occur at the 8−16-cell stage of embryogenesis in the cow / R.E. Frei, G.A. Schultz, R.B. Church II J. Reprod. Fertil. 1989. -V. 86. P. 637−641.
  81. Freshney, R.I. Culture of animal cells: a manual of basic technique / R.I. Freshney. New York: Wiley-Liss Inc., 2005. — 696 p.
  82. Fukui, Y. Effect of medium renewal during culture in two different culture systems on development to blastocysts from in vitro produced early bovine embryos / Y. Fukui, E.S. Lee, N. Araki // J. Anim. Sci. 1996. V. 74. — P. 27 522 758.
  83. Fukui, Y. Effects of sera, hormones and granulosa cells added to culture medium for in vitro maturation, fertilization, cleavage and development of bovine oocytes / Y. Fukui, H. Ono // J. Reprod. Fertil. 1989. V. 86. — P. 501−506.
  84. Fulka, J. Effect of cycloheximide on nuclear maturation of pig and mouse oocytes / J. Fulka, J. Motlik, J. Fulka et al. II J. Reprod. Fertil. 1986. V. 77.-P. 281−285.
  85. Fulka, J.J. Chromosome condensation activity (CCA) in bisected C57BL/6JxCBA mouse oocytes / J.J. Fulka, N. Ouhibi, J. Fulka et al. II Reprod. Fertil. Dev. 1995. V. 7. — P. 1123−1127.
  86. Fulka, J.J. Culture of horse oocytes in vitro / J.J. Fulka, A. Okolski // J. Reprod. Fertil. 1981.-V. 61.-P. 213−215.
  87. Fulka, J.J. Nuclear transplantation in mammals: remodelling of transplanted nuclei under the influence of maturation promoting factor / J.J. Fulka, N.L. First, R.M. Moor // BioEssays. 1996. V. 18. — P. 835−840.
  88. Funahashi, H. Effects of different serum supplements in maturation medium on meiotic and cytoplasmic maturation of pig oocytes / H. Funahashi, B.N. Day // Theriogenology. 1993. V. 39. — P. 965−973.
  89. Gadbois, D.M. Multiple kinase arrest points in the Gi phase of nontransformed mammalian cells are absent in transformed cells / D.M. Gadbois, H.A. Crissman, R.A. Tobey et al. Il PNAS. 1992. V. 89. — P. 8626−8630.
  90. Galli, C. Comparison of microinjection (piezo-electric) and cell fusion for nuclear transfer success with different cell types in cattle / C. Galli, I. Lagutina, I. Vassiliev et al. II Cloning Stem Cells. 2002. V. 4. — P. 189−196.
  91. Galli, C. Introduction to cloning by nuclear transplantation / C. Galli, I. Lagutina, G. Lazzari II Cloning Stem Cells. 2003. V. 5. — P. 223−232.
  92. Gao, S. Somatic cell-like features of cloned mouse embryos prepared with cultured myoblast nuclei / S. Gao, Y.G. Chung, J.W. Williams et al. // Biol. Reprod. 2003. V. 69. — P. 48−56.
  93. Gardner, D.K. Amino acids and ammonium regulate mouse embryo development in culture / D.K. Gardner, M. Lane // Biol. Reprod. 1993. V. 48. -P. 377−385.
  94. Gardner, D.K. Concentrations of nutrients in mouse oviduct fluid and their effects on embryo development and metabolism in vitro / D.K. Gardner, H.J. Leese // J. Reprod. Fertil. 1990. V. 88. — P. 361−368.
  95. Gardner, D.K. Uptake and metabolism of pyruvate and glucose by individual sheep preattachment embryos developed in vivo / D.K. Gardner, M. Lane, P. Batt // Mol. Reprod. Dev. 1993. V. 36. — P. 313−319.
  96. Gibbons, J. Enhanced survivability of cloned calves derived from roscovitine-treated adult somatic cells / J. Gibbons, S. Arat, J. Rzucidlo et al. II Biol. Reprod. 2002. V. 66. — P. 895−900.
  97. Golbus, M.S. The effects of inhibitors of RNA synthesis (alpha-amanitin and actinomycin D) on preimplantation mouse embryogenesis /M.S. Golbus, P.G. Calarco, C.J. Epstein // J. Exp. Zool. 1973. -V. 186. P. 207−216.
  98. Golovan, S.P. Pigs expressing salivary phytase produce low-phosphorus manure / S.P. Golovan, R.G. Meidinger, A. Ajakaiye et al. II Nat. Biotechnol. 2001. V. 19. — P. 741−745.
  99. Gonda, K. Reversible disassembly of somatic nucleoli by the germ cell proteins FRGY 2a and FRGY 2b / K. Gonda, J. Fowler, N. Katoku-Kikyo et al. II Nat. Cell Biol. 2003. -V. 5. P. 205−210.
  100. Goto, S. Effects of spindle removal on MPF and MAP kinase activities in porcine matured oocytes / S. Goto, K. Naito, S. Ohashi et al. Il Mol. Reprod. Dev. 2002. V. 63. — P. 388−393.
  101. Greising, T. The influence of enucleation on the ultrastructure of in vitro matured and enucleated cattle oocytes / T. Greising, L. Jonas // Theriogenology. 1999. V. 52. — P. 303−312.
  102. Grupen, C.G. Asynchronous meiotic progression in porcine oocytes matured in vitro: a cause of polyspermic fertilization? / C.G. Grupen, H. Nagashima, M.B. Nottle II Reprod. Fertil. Dev. 1997. V. 9. — P. 187−191.
  103. Gwatkin, R.B. Effect of enzymes and acidity on the zona pellucida of the mouse egg before and after fertilization / R.B. Gwatkin // Reproduction. 1964. -V. 7.-P. 99−105.
  104. Hafez, E.S. Maturation division oocytes in bovine following gonadotropin injections / E.S. Hafez, I. Ishibashi // Cytogenetics. 1964. V. 48. -P.167−183.
  105. Hagemann, L.J. Development during single I VP of bovine oocytes from dissected follicles: interactive effects of estrous cycle stage, follicle size and atresia / L.J.Hagemann, S.E. Beaumont, M. Berg et al. Il Mol. Reprod. Dev. 1999. V. 53.-P. 451−458.
  106. Hagemann, L.J. Development of bovine embryos in single in vitro production (sIVP) systems / L.J. Hagemann, L.L. Weilert, S.E. Beaumont et al. Il Mol. Reprod. Dev. 1998.-V. 51.-P. 143−147.
  107. Hartwell, L.H. Cell cycle control and cancer / L.H. Hartwell, M.B. Kastan // Science. 1994. -V. 266. P. 1821−1828.
  108. Hayes, O. Effect of cryopreservation on fusion efficiency and in vitro development into blastocysts of bovine cell lines used in somatic cell cloning / O. Hayes, L.L. Rodriguez, A. Gonzalez et al. II Zygote. 2005. V. 13. — P. 277−282.
  109. Heintz, N. The regulation of histone gene expression during the cell cycle / N. Heintz // Biochim. Biophys. Acta. 1991. V. 1088. — P. 327−339.
  110. Heyman, Y. Frequency and occurrence of late-gestation losses from cattle cloned embryos / Y. Heyman, P. Chavatte-Palmer, D. LeBourhis et al. II Biol. Reprod. 2002. V. 66. — P. 6−13.
  111. Heyman, Y. Preliminary results on variability in oocyte recovery and developmental competence in cattle derived from embryonic cloning: work in progress / Y. Heyman, M. Tamassia, C. Richard et al. II Theriogenology. 2003. -V. 60.-P. 891−900.
  112. Hill, J.R. Abnormal in utero development of cloned animals: implications for human cloning / J.R. Hill // Differentiation. 2002. V. 69. — P. 174—178.
  113. Ikeda, K. Effects of maturational age of porcine oocytes on the induction of activation and development in vitro following somatic cell nuclear transfer / K. Ikeda, Y. Takahashi // J. Vet. Med. Sci. 2001. V. 63. — P. 10 031 008.
  114. Ilyin, V. Effects of alcohols on responses evoked by inositol trisphosphate in Xenopus oocytes / V. Ilyin, I. Parker // J. Physiol. 1992. V. 448. -P. 339−354.
  115. Inoue, K. Effects of donor cell type and genotype on the efficiency of mouse somatic cell cloning / K. Inoue, N. Ogonuki, K. Mochida et al. II Biol. Reprod. 2003. V. 69. — P. 1394−1400.
  116. Ireland, J.J. Development of nonovulatory antral follicles in heifers: changes in steroids in follicular fluid and receptors for gonadotropins / J.J. Ireland, J.F. Roche//Endocrinology. 1983.-V. 112.-P. 150−156.
  117. Jaffe, L.F. Sources of calcium in egg activation: a review and hypothesis / L.F. Jaffe II Dev. Biol. 1983. V. 99. — P. 265−276.
  118. Javed, M.H. Determination of pentose phosphate and Embden-Meyerhof pathway activities in bovine embryos / M.H. Javed, R.W. Wright // Theriogenology. 1991. -V. 35. P. 1029−1037.
  119. Ji, W. Development of zona-free hamster ova to blastocysts in vitro / W. Ji, B.D. Bavister I I Theriogenology. 2000. V. 54. — P. 827−834.
  120. Johnson, L.V. Wheat germ agglutinin induces compaction- and cavitation-like events in two-cell mouse embryos / L.V. Johnson // Dev. Biol. 1986.-V. 113.-P. 1−9.
  121. Johnson, M.H. Radical solutions and cultural problems: could free oxygen radicals be responsible for the impaired development of preimplantation mammalian embryos in vitrol / M.H. Johnson, M.H. Nasr-Esfahani // Bioessays. 1994.-V. 16.-P. 31−38.
  122. Jones, G.M. Evolution of a culture protocol for successful blastocyst development and pregnancy / G.M. Jones, A.O. Trounson, D.K. Gardner et al. II Hum. Reprod. 1998.-V. 13.-P. 169−177.
  123. Jung, T. Kinetics of MPF and histone HI kinase activity differ during the G2- to M-phase transition in mouse oocytes / T. Jung, R.M. Moor, J. Fulka // Int. J. Dev. Biol. 1993. V. 37. — P. 595−600.
  124. Kane, M.T. Fractionated serum dialysate and synthetic media for culturing 2- and 4-cell rabbit embryos / M.T. Kane, R.H. Foote // Biol. Reprod. 1970.-V. 2.-P. 356−362.
  125. Kane, M.T. The effects of pH on culture of one cell rabbit ova to blastocysts in bicarbonatebuffered medium / M.T. Kane // J. Reprod. Fertil. 1974. -V. 38.-P. 477−480.
  126. Kane, M.T. The role of nutrients, peptide growth factors and co-culture cells in development of preimplantation embryos in vitro / M.T. Kane, E.W. Carney, J.E. Ellington // Theriogenology. 1992. V. 38. — P. 297−313.
  127. Kang, Y. Casein genes and genetic engineering of the caseins / Y. Kang, R. Jimenez-Flores, T. Richardson II Basic Life Sci. 1986. V. 37. — P. 95 111.
  128. Kasinathan, P. Effect of fibroblast donor cell age and cell cycle on development of bovine nuclear transfer embryos in vitro / P. Kasinathan, J.G. Knott, P.N. Moreira et al. II Biol. Repod. 2001a. V. 64. — P. 1487−1493.
  129. Kasinathan, P. Production of calves from G1 fibroblasts / P. Kasinathan, J.G. Knott, Z. Wang et al. II Nat. Biotechnol. 2001b. V. 19. — P. 1176−1178.
  130. Kato, Y. Cloning of calves from various somatic cell types of male and female adult, newborn and fetal cows / Y. Kato, T. Tani, Y. Tsunoda // J. Reprod. Fertil. 2000. V. 120. — P. 231−237.
  131. Kato, Y. Eight calves cloned from somatic cells of a single adult / Y. Kato, T. Tani, Y. Sotomaru et al. II Science. 1998. V. 282. — P. 2095−2098.
  132. Kinosita, K. Voltage-induced pore formation and hemolysis of human erythrocytes / K. Kinosita, T.Y. Tsong // Biochim. Biophys. Acta. 1977. V. 471. — P. 227−242.
  133. Kirschner, M. The timing of early developmental events in Xenopus / M. Kirschner, J. Newport, J. Gerhart // Trends. Genet. 1985. V. 1. — P. 41−47.
  134. Kishi, M. Nuclear transfer in cattle using colostrum-derived mammary gland epithelial cells and ear-derived fibroblast cells / M. Kishi, Y. Itagaki, R. Takakura et al II Theriogenology. 2000. V. 54. — P. 675−684.
  135. Kline D., Kline J.T. Repetitive calcium transients and the role of calcium in exocytosis and cell cycle activation in the mouse egg / Kline D., Kline J.T. // Dev. Biol. 1992. V. 149. — P. 80−89.
  136. Koff, A. Cyclin E, a new class of human cyclin that can activate the cdc2/CDC28 kinase / A. Koff, F. Cross, A. Fisher et al. II Cell. 1991. V. 66. — P. 1217−1228.
  137. Kono, T. Nuclear transfer and reprogramming / T. Kono // Rev. Reprod. 1997. V. 2. — P. 74−80.
  138. Krek, W. Cell synchronization / W. Krek, J.A. DeCaprio // Methods Enzymol. 1995. V. 254. — P. 114−124.
  139. Krischek, C. Roscovitine, a specific inhibitor of cyclin-dependent protein kinases, reversibly inhibits chromatin condensation during in vitro maturation of porcine oocytes / C. Krischek, B. Meinecke // Zygote. 2001. V. 9. -P. 309−316.
  140. Kubelka, M. Time sequence of germinal vesicle breakdown in pig oocytes after cycloheximide and P-aminobenzamidine block / M. Kubelka, J. Motik, J. Fulka et al. II Gamete. Res. 1988. V. 19. — P. 423−431.
  141. Kubiak, J.Z. The metaphase II arrest in mouse oocytes is controlled through microtubule-dependent destruction of cyclin B in the presence of CSF / J.Z. Kubiak, M. Weber, H. de Pennart et al. II EMBO J. 1993. V. 12. — P. 37 733 778.
  142. Kubota, C. In vitro and in vivo survival of frozen-thawed bovine oocytes after IVF, nuclear transfer, and parthenogenetic activation / C. Kubota, X. Yang, A. Dinnyes et al. Il Mol. Reprod. Dev. 1998. V. 51. — P. 281−286.
  143. Kubota, C. Six cloned calves produced from adult fibroblast cells after long-term culture / C. Kubota, H. Yamakuchi, J. Todoroki et al. Il PNAS. 2000. -V. 97.-P. 990−995.
  144. Kues, W.A. Cell cycle synchronization of porcine fetal fibroblasts: effects of serum deprivation and reversible cell cycle inhibitors / W.A. Kues, M. Anger, J.W. Carnwath et al. II Biol. Reprod. 2000. V. 62. — P. 412−419.
  145. Kues, W.A. Cell cycle synchronization of porcine fetal fibroblasts by serum deprivation initiates a nonconventional form of apoptosis / W.A. Kues, J.W. Carnwath, D. Paul et al. II Cloning Stem Cells. 2002. V. 4. — P. 231−243.
  146. Kues, W.A. The contribution of farm animals to human health / W.A. Kues, H. Niemann // Trends. Biotechnol. 2004. V. 22. — P. 286−294.
  147. Lai, L. Production of a-l, 3-galactosyltransferase knockout pigs by nuclear transfer cloning / L. Lai, D. Kolber-Simonds, K.-W. Park et al. II Science. 2002.-V. 295.-P. 1089−1092.
  148. Lane, M. Effect of incubation volume and embryo density on the development and viability of mouse embryos in vitro / M. Lane, D.K. Gardner // Hum. Reprod. 1992. V. 7. — P. 558−562.
  149. Lanza, R.P. Cloning of an endangered species (.Bos gaurus) using interspecies nuclear transfer / R.P. Lanza, J.B. Cibelli, F. Diaz et al. II Cloning. 2000.-V. 2.-P. 79−90.
  150. Lasserre, A. The kinetics of oocyte activation and dynamics of polar body formation in Calomys musculinus and Calomys laucha (Rodentia-Sigmodontinae) / A. Lasserre, E. Cebral, A.D. Vitullo // Zygote. 1999. V. 7. — P. 347−356.
  151. Latham, K.E. Cloning: questions answered and unsolved / K.E. Latham // Differentiation. 2004. V. 72. — P. 11−22.
  152. Latham, K.E. Early and delayed aspects of nuclear reprogramming during cloning / K.E. Latham // Biol. Cell. 2005. V. 97. — P. 119−132.
  153. Lee, H.H. Regulation of cyclin Dl, DNA topoisomerase I, and proliferating cell nuclear antigen promoters during the cell cycle / H.H. Lee, W.H. Chiang, S.H. Chiang et al. II Gene Expr. 1995. V. 4. — P. 95−109.
  154. Leese, H.J. The formation and function of oviduct fluid / H.J. Leese // Reproduction. 1988. V. 82. — P. 843−856.
  155. Leibfried, L. Characterization of bovine follicular oocytes and their ability to mature in vitro / L. Leibfried, N.L. First II J. Anim. Sei. 1979. V. 48. -P. 76−86.
  156. Lewin, B. Driving the cell cycle: M phase kinase, its partners, and substrates / B. Lewin // Cell. 1990. V. 61. — P. 743−752.
  157. Li, G.P. Review of enucleation methods and procedures used in animal cloning: state of the art / G.P. Li, K.L. White, T.D. Bunch // Cloning Stem Cells. 2004.-V. 6.-P. 5−13.
  158. Liu, H. In vitro development of mouse zygotes following reconstruction by sequential transfer of germinal vesicles and haploid pronuclei / H. Liu, J. Zhang, L.C. Krey et al. II Hum. Reprod. 2000. V. 15. — P. 1997−2002.
  159. Liu, L. Parthenogenetic development and protein patterns of newly matured bovine oocytes after chemical activation / L. Liu, J.C. Ju, X. Yang // Mol. Reprod. Dev. 1998. V. 49. — P. 298−307.
  160. Liu, L. Regenerated bovine fetal fibroblasts support high blastocyst development following nuclear transfer / L. Liu, T. Shin, J.H. Pryor et al. II Cloning. 2001. V. 3. — P. 51−58.
  161. Lockart, R.Z. Requirements for growth of single human cells: «nonessential» amino acids, notably serine, are necessary and sufficient nutritional supplements / R.Z. Lockart, H. Eagle // Science. 1959. V. 129. — P. 252−254.
  162. Lohka, M.J. Purification of maturation-promoting factor, an intracellular regulator of early mitotic events / M.J. Lohka, M.K. Hayes, J.L. Mailer //PNAS. 1988.-V. 85.-P. 3009−3013.
  163. Loi, P. Development of parthenogenetic and cloned ovine embryos: effect of activation protocols / P. Loi, S. Ledda, J.J. Fulka et al. II Biol. Reprod. 1998a.-V. 58.-P. 1177−1187.
  164. Loi, P. Embryo transfer and related technologies in sheep reproduction / P. Loi, G. Ptak, M. Dattena et al. II Reprod. Nutr. Dev. 1998b. V. 38. — P. 615 628.
  165. Loi, P. Genetic rescue of an endangered mammal by cross-species nuclear transfer using post-mortem somatic cells / P. Loi, G. Ptak, B. Barboni et al. II Nat. Biotechnol. 2001. V. 19. — P. 962−964.
  166. Lopes, A. Microsensor oxygen measurement around in vitro developing cattle embryos: preliminary observations / A. Lopes, L.D.M. Ottosen, T. Greve et al. II Therigenology. 2003. V. 59. — P. 345.
  167. Machaty, Z. Strategies for activating nuclear transfer oocytes / Z. Machaty, R.S. Prather // Reprod. Fertil. Dev. 1998. V. 10. — P. 599−613.
  168. Mailer, J.L. Regulation of amphibian oocyte maturation / J.L. Mailer // Cell. Differ. 1985.-V. 16. P. 211−221.
  169. Manes, C. The participation of the embryonic genome during early cleavage in the rabbit / C. Manes // Dev. Biol. 1973. V. 32. — P. 453159.
  170. Marcus, G.J. Activation of cumulus-free mouse oocytes / GJ. Marcus // Mol. Reprod. Dev. 1990. V. 26. — P. 159−162.
  171. Marx, J. Medicine. Building better mouse models for studying cancer / J. Marx // Science. 2003. V. 299. — P. 1972−1975.
  172. Masui, Y. Oocyte maturation / Y. Masui, H.J. Clarke // Int. Rev. Cytol. 1979.-V. 57.-P. 185−282.
  173. Matsushime, H. Colonystimulating factor 1 regulates novel cyclins during the G1 phase of the cell cycle / H. Matsushime, M.F. Roussel, R.A. Ashmun et al. II Cell. 1991. V. 65. — P. 701−713.
  174. Matsushime, H. Identification and properties of an atypical catalytic subunit (p34psk-J3/cdk4) for mammalian d type G1 cycline / H. Matsushime, M.E. Ewen, D.K. Strom et al. II Cell. 1992. V. 71. — P. 323−334.
  175. McCreath, K.J. Production of gene-targeted sheep by nuclear transfer from cultured somatic cells / K.J. McCreath, J. Howcroft, K.H. Campbell et al. II Nature. 2000. -V. 405. P. 1066−1069.
  176. McGaughey, R.W. Cytogenetic analysis of pig oocytes matured in vitro / R.W. McGaughey, C. Polge // J. Exp. Zool. 1971. -V. 176. P. 383−395.
  177. McGrath, J. Nuclear transplantation in mouse embryos / J. McGrath, D. Solter // J. Exp. Zool. 1983. -V. 228. P. 355−362.
  178. Melo, E.O. Isolation of transfected fibroblast clones for use in nuclear transfer and transgene detection in cattle embryos / E.O. Melo, R.V. Sousa, L.T. Iguma et al. II Genet. Mol. Res. 2005. V. 4. — P. 812−821.
  179. Miltenberger, R.J. An E-box-mediated increase in cad transcription at the Gl/S-phase boundary is suppressed by inhibitory c-Myc mutants / R.J. Miltenberger, K.A. Sukow, P.J. Farnham // Mol. Cell. Biol. 1995. V. 15. — P. 2527−2535.
  180. Mintz, B. Experimental study of the developing mammalian egg: removal of the zona pellucida / B. Mintz // Science. 1962. V. 138. — P. 594−595.
  181. Mitalipov, S.M. Development of nuclear transfer and parthenogenetic rabbit embryos activated with inositol 1,4,5-trisphosphate / S.M. Mitalipov, K.L. White, V.R. Farrar et al. II Biol. Reprod. 1999. V. 60. — P. 821−827.
  182. Miyoshi, K. Establishment of a porcine cell line from in vzTro-produced blastocysts and transfer of the cells into enucleated oocytes / K. Miyoshi, Y. Taguchi, Y. Sendai et al. II Biol. Reprod. 2000. V. 62. — P. 1640−1646.
  183. Miyoshi, K. Utility of rapidly matured oocytes as recipients for production of cloned embryos from somatic cells in the pig / K. Miyoshi, S.J. Rzucidlo, S.L. Pratt et al. II Biol. Reprod. 2002. V. 67. — P. 540−545.
  184. Moens, A. Differential ability of male and female rabbit fetal germ cell nuclei to be reprogrammed by nuclear transfer / A. Moens, S. Chastant, P. Chesne et al. II Differentiation. 1996. V. 60. — P. 339−345.
  185. Moessner, J. The quality of human embryo growth is improved when embryos are cultured in groups rather than separately / J. Moessner, W.C. Dodson //Fertil. Steril. 1995.-V. 64.-P. 1034−1035.
  186. Moor, R.M. Hormonal and follicular factors affecting maturation of sheep oocytes in vitro and their subsequent developmental capacity / R.M. Moor, A.O. Trounson // J. Reprod. Fertil. 1977. V. 49. — P. 101−109.
  187. Morgan, A.J. Jacob R. Ionomycin enhances Ca2+ influx by stimulating store-regulated cation entry and not by a direct action at the plasma membrane / A.J. Morgan, R. Jacob // Biochem. J. 1994. V. 300. — P. 665−672.
  188. Motlik, J. Breakdown of the germinal vesicle in bovine oocytes cultivated in vitro / J. Motlik, H.H. Koefoed-Johnsen, J. Fulka // J. Exp. Zool. 1978.-V. 205.-P. 377−383.
  189. Motlik, J. Breakdown of the germinal vesicle in pig oocytes in vivo and in vitro / J. Motlik, J. Fulka // J. Exp. Zool. 1976. V. 198. — P. 155−162.
  190. Motlik, J. Cultivation of pig oocytes in vitro (protein concentration, nuclear maturation, timing of meiosis) / J. Motlik // Folia. Biol. 1972. V. 18. — P. 345−349.
  191. Muller, W. Interactions of heteroaromatic compounds with nucleic acids: A- T-specific non-intercalating DNA ligands / W. Muller, F. Gautier // Eur. J. Biochem. 1975. V. 54. — P. 385−394.
  192. Naglee, D.L. Effect of osmolality on in vitro development of rabbit embryos in a chemically defined medium / D.L. Naglee, R.A. Maurer, R.H. Foote // Exp. Cell. Res. 1969. V. 58. — P. 331−333.
  193. Nakao, H. Effects of co-culture, medium components and gas phase on in vitro culture of in vitro matured and in vitro fertilized bovine embryos / H. Nakao, N. Nakatsuji // Theriogenology. 1990. V. 33. — P. 591−600.
  194. Navara, C.S. Microtubule organization in the cow during fertilization, polyspermy, parthenogenesis, and nuclear transfer: The role of the sperm aster / C.S. Navara, N.L. First, G. Schatten // Dev. Biol. 1994. V. 162. — P. 29−40.
  195. Newcomb, R. Birth of calves after in vivo fertilisation of oocytes removed from follicles and matured in vitro / R. Newcomb, W.B. Christie, L.E. Rowson // Vet. Ree. 1978. V. 102. — P. 461−462.
  196. Nguyen, V.T. Stage-specific effects of the osmolarity of a culture medium on the development of parthenogenetic diploids in the pig / V.T. Nguyen, S. Kure-bayashi, H. Harayama et al. II Theriogenology. 2003. V. 59. — P. 719 734.
  197. Niemann, H. Transgenic farm animals: present and future / H. Niemann, W. Kues, J.W. Carnwath // Rev. Sci. Tech. 2005. V. 24. — P. 285−298.
  198. Nour, M.S. Preparation of young preactivated oocytes with high enucleation efficiency for bovine nuclear transfer /M.S. Nour, Y. Takahashi // Theriogenology. 1999. -V. 51. P. 661−666.
  199. Nurse, P. Universal control mechanism regulating onset of M-phase / P. Nurse // Nature. 1990. V. 344. — P. 503−508.
  200. Oback, B. Cloned cattle derived from a novel zona-free embryo reconstruction system / B. Oback, A.T. Wiersema, P. Gaynor et al. 11 Cloning Stem Cells. 2003.-V. 5.-P. 3−12.
  201. Oback, B. Practical aspects of donor cell selection for nuclear cloning / B. Oback, D. Wells // Cloning Stem Cells. 2002. V. 4. — P. 169−174.
  202. Oback, O. Cloning cattle / O. Oback, D.N. Wells // Cloning Stem Cells. 2003.-V. 5.-P. 243−257.
  203. Ohtsubo, M. Cyclin-dependend regulation G1 in mammalian fibroblasts / M. Ohtsubo, J.M. Roberts // Science. 1993. V. 259. — P. 1908−1912.
  204. Onishi, A. Pig cloning by microinjection of fetal fibroblast nuclei / A. Onishi, M. Iwamoto, T. Akita et al. II Science. 2000. V. 289. — P. 1188−1190.
  205. Ozil, J.P. The parthenogenetic development of rabbit oocytes after repetitive pulsatile electrical stimulation / J.P. Ozil // Development. 1990. V. 109.-P. 117−127.
  206. Palmiter, R.D. Dramatic growth of mice that develop from eggs microinjected with metallothionein-growth hormone fusion genes / R.D. Palmiter, R.L. Brinster, R.E. Hammer et al. II Nature. 1982. V. 300. — P. 611−615.
  207. Park, K.W. Mosaic gene expression in nuclear transferderived embryos and the production of cloned transgenic pigs from ear-derived fibroblasts / K.W. Park, L. Lai, H.T. Cheong et al. II Biol. Reprod. 2002. V. 66. — P. 1001−1005.
  208. Parrish, J.J. Capacitation of bovine spermatozoa by oviduct fluid / J.J. Parrish, J.L. Susko-Parrish, R.R. Handrow et al II Biol. Reprod. 1989. V. 40. -P. 1020−1025.
  209. Parrish, J.J. Effect of heparin and chondroitin sulfate on the acrosome reaction and fertility of bovine sperm in vitro / J.J. Parrish, J.L. Susko-Parrish, N.L. First // Theriogenology. 1985. V. 24. — P. 537−549.
  210. Petters, R.M. Genetically engineered large animal model for studying cone photoreceptor survival and degeneration in retinitis pigmentosa / R.M. Petters, C.A. Alexander, K.D. Wells et al. II Nat. Biotechnol. 1997. V. 15. — P. 965−970.
  211. Peura, T.T. A comparison of established and new approaches in ovine and bovine nuclear transfer / T.T. Peura, G. Vajta // Cloning Stem Cells. 2003. — V. 5.-P. 257−277.
  212. Peura, T.T. The effect of recipient oocyte volume on nuclear transfer in cattle / T.T. Peura, I.M. Lewis, A.O. Trounson // Mol. Reprod. Dev. 1998. V. 50. -P. 185−191.
  213. Phelps, C.J. Production of ccl, 3-galactosyltransferase-deficient pigs / C.J. Phelps, C. Koike, T.D. Vaught et al II Science. 2003. V. 299. — P. 411−414.
  214. Pincus, G. Observations on the development of cow ova in vivo and in vitro / G. Pincus // Proc. of 1st National Egg Transfer Breeding Conf.: San Antonio, 1951.-P. 18.
  215. Pincus, G. The comparative behavior of mammalian eggs in vivo and in vitro: I. The activation of ovarian eggs / G. Pincus, E.V. Enzmann // J. Exp. Med. 1935.-V. 62.-P. 665−675.
  216. Pinkerton, J.H. Development of the human ovary a study using histochemical technics / J.H. Pinkerton, D.G. McKay, E.C. Adams et al. II Obstet. Gynecol. 1961.-V. 18.-P. 152−181.
  217. Pinto-Correia, C. Chromatin and microtubule organization in the first cell cycle in rabbit parthenotes and nuclear transplant embryos / C. Pinto-Correia, P. Collas, F.A. Ponce de Leon et al. II Mol. Reprod. Dev. 1993. V. 34. — P. 3342.
  218. Polejaeva, I.A. Cloned pigs produced by nuclear transfer from adult somatic cells / I.A. Polejaeva, S.H. Chen, T.D. Vaught et al. II Nature. 2000. V. 407. — P. 86−90.
  219. Polejaeva, I.A. New advances in somatic cell nuclear transfer: application in transgenesis / I.A. Polejaeva, K.H. Campbell // Theriogenology. 2000.-V. 53.-P. 117−126.
  220. Prather, R.S. Nuclear transplantation in early pig embryos / R.S. Prather, M.M. Sims, N.L. First//Biol. Reprod. 1989. -V. 41. P. 414−418.
  221. Presicce, G.A. Parthenogenetic development of bovine oocytes matured in vitro for 24 hr and activated by ethanol and cycloheximide / G.A. Presicce, X. Yang // Mol. Reprod. Dev. 1994. V. 38. — P. 380−385.
  222. Qi, Z. Nuclear transplantation by microinjection in rabbit / Z. Qi, L. Ziyi, L. Zhong-hua et al. II Theriogenology. 1997. V. 47. — P. 239.
  223. Quelle, D.E. Overexpression of mouse D-type cyclins accelerates Gl phase in rodent fibroblasts / D.E. Quelle, R.A. Ashman, S.A. Shurtlef et al. II Genes. Dev. 1993.-V. 7.-P. 1559−1571.
  224. Reeve, W.J. Effect of concanavalin A on the formation of the mouse blastocyst / W.J. Reeve // J. Reprod. Immunol. 1982. V. 4. — P. 53−64.
  225. Restall, B.J. The fallopian tube of the sheep. III. The chemical composition of the fluid from the fallopian tube / B.J. Restall, R.G. Wales // Aust. J. Biol. Sei. 1966. 19. P. 687−698.
  226. Rieger, D. Measurement of the metabolism of energy substrates in individual bovine blastocysts / D. Rieger, P. Guay // J. Reprod. Fertil. 1988. V. 83.-P. 585−591.
  227. Robinson, T.J. The control of fetility in sheep. II. The augmentation of fertility by gonadotropin treatment of the ewe in the normal breeding season / T.J. Robinson // J. Agr. Sei. (Camb.) 1950. V. 41. — P. 6.
  228. Robl, G.M. The effects of protein supplements on the in vitro development of IVM/IVF bovine oocytes / G.M. Robl, J.R. Dobrinsky, R.T. Duby // Theriogenology. 1991. V. 35. — P. 263.
  229. Rois, M.P. Ionic-strength modulation of electrically induced permeabilization and associated fusion of mammalian cells / M.P. Rois, J. Teissie //Eur. J. Biochem. 1989.-V. 179.-P. 109−115.
  230. Rose, T.A. Effect of oocyte maturation medium on in vitro development of in vitro fertilized bovine embryos / T.A. Rose, B.D. Bavister // Mol. Reprod. Dev. 1992. V. 31. — P. 72−77.
  231. Rosenkrans, C.F. In vitro synthesis of prostaglandin E and F2 alpha by pig endometrium in the presence of estradiol, catechol estrogen and ascorbic acid / C.F. Rosenkrans, B.C. Paria, D.L. Davis et al. II J. Anim. Sci. 1990. V. 68. — P. 435−443.
  232. Rosenkrans, C.F. Pig blastocyst development in vitro is affected by amino acids / C.F. Rosenkrans, D.L. Davis, G. Milliken // J. Anim. Sci. 1989. V. 67.-P. 1503−1508.
  233. Rowlands, W. Capacity of hyaluronidase to increase the fertilizing power of sperm / W. Rowlands // Nature. 1944. V. 154. — P. 332−333.
  234. Rozinek, J. Microtubule rearrangement during in vitro maturation of pig oocytes. Effect of cycloheximide / J. Rozinek, J. Petr,. R. Grocholova et al. Il Reprod. Nutr. Dev. 1995. -V. 35. P. 685−694.
  235. Sadler, S.E. Inhibition of Xenopus oocyte adenylate cyclase by progesterone: a novel mechanism of action / S.E. Sadler, J.L. Mailer // Adv. Cyc. Nuc. Prot. Phospor. Res. 1985. V. 19. — P. 179−194.
  236. Sato, E. Arresting substance and arresting mechanism of meiosis in mammalian oocyte / E. Sato, T. Ishibashi // Horumon. To. Rinsho. 1982. V. 30. -P. 69−74.
  237. Schini, S.A. Two-cell block to development of cultured hamster embryos is caused by phosphate and glucose / S.A. Schini, B.D. Bavister // Biol. Reprod. 1988.-V. 39.-P. 1183−1192.
  238. Schmidt, K.D. No effect of in vitro production of embryos on size and organ weight in premature newborn calves / K.D. Schmidt, P.T.Sangild, H.
  239. Jacobsen, et al. II Proc. 14th Sei. Meet. Eur. Embryo. Trans. Assoc.: Venice, Italy, 1988.-P. 244
  240. Schnieke, A.E. Human factor IX transgenic sheep produced by transfer of nuclei from transfected fetal fibroblasts / A.E. Schnieke, A.J. Kind, W.A. Ritchie etal. II Science. 1997. -V. 278. P. 2130−2133.
  241. Schultz, G.A. Estimation of the diversity of transcription in early rabbit embryos / G.A. Schultz, C. Manes, W.E. Hahn II Biochem. Genet. 1973. V. 9. -P. 247−259.
  242. Schurmann, A. Early zygotes are suitable recipients for bovine somatic nuclear transfer and result in cloned offspring / A. Schurmann, D.N. Wells, B. Oback // Reproduction. 2006. V. 132. — P. 839−848.
  243. Seshagiri, P.B. Glucose inhibits development of hamster 8-cell embryos in vitro / P.B. Seshagiri, B.D. Bavister // Biol. Reprod. 1989 a. V. 40. — P. 599 606.
  244. Seshagiri, P.B. Phosphate is required for inhibition by glucose of development of hamster 8-cell embryos in vitro / P.B. Seshagiri, B.D. Bavister // Biol. Reprod. 1989 b. V. 40. — P. 607−614.
  245. Shen, L. Cell death by bortezomib-induced mitotic catastrophe in natural killer lymphoma cells / L. Shen, W. Au, K. Wong et al. II Mol. Cancer. Ther. 2008. V. 7. — P. 3807−3815.
  246. Shiina, Y. Role of the extracellular Ca on the intracellular Ca changes in fertilized and activated mouse oocytes / Y. Shiina, M. Kaneda, K. Matsuyama et al. II J. Reprod. Fertil. 1993. V. 97. — P. 143−150.
  247. Shin, M.R. Nuclear and microtubule reorganization in nuclear-transferred bovine embryos / M.R. Shin, S.W. Park, H. Shim et al. II Mol. Reprod. Dev. 2002 a. V. 62. — P. 74−82.
  248. Shin, T. A cat cloned by nuclear transplantation / T. Shin, D. Kraemer, J.H. Pryor et al. II Nature. 2002 b. V. 415. — P. 859.
  249. Simerly, C. Molecular correlates of primate nuclear transfer failures / C. Simerly, C. Simerly, T. Dominko et al. II Science. 2003. V. 300. — P. 297
  250. Sims, M. Production of calves by transfer of nuclei from cultured inner cell mass cells / M. Sims, N.L. First // PNAS. 1994. V. 91. — P. 6143−6147.
  251. Smith, J.R. Inhibitors of DNA synthesis from senescent and quiescent human diploid fibroblasts / J.R. Smith, O.M. Pereira-Smith, C.K. Lumpkin et al. II J. Cell. Biol. 1985.-V. 101.-P. 141.
  252. Smith, L.C. Membrane and intracellular effects of ultraviolet irradiation with Hoechst 33 342 on bovine secondary oocytes matured in vitro / L.C. Smith // J. Reprod. Fertil. 1993. V. 99. — P. 3914.
  253. Soloy, E. Time course of pronuclear deoxyribonucleic acid synthesis in parthenogenetically activated bovine oocytes / E. Soloy, J. Kanka, D. Viuff et al. ll Biol. Reprod. 1997. V. 57. — P. 27−35.
  254. Spiering, A.L. A potent DNA synthesis inhibitor expressed by the immortal cell line SUSM-1 / A.L. Spiering, J.R. Smith, O.M. Pereira-Smith // Exp. Cell Res. 1988.-V. 179.-P. 159−167.
  255. Sreenan, J. Culture of fertilized cow eggs / J. Sreenan, P. Scanion, I. Gordon II J. Agr. Sei. (Camb.) 1968. V. 70. — P. 183.
  256. Stanke, D.F. Proteins and amino acids in bovine oviducal fluid / D.F. Stanke, J.D. Sikes, D.W. De Young et al. II J. Reprod. Fertil. 1974. V. 38. — P. 493−496.
  257. Stein, G.H. Nuclear accumulation of p21Cipl at the onset of mitosis: a role at the G2/M-phase transition / G.H. Stein, D.F. Far, S.I. Reed // Mol. Cell. Biol. 1998.-V. 18.-P. 546−557.
  258. Steinhardt, R.A. Is calcium ionophore a universal activator for unfertilised eggs? / R.A. Steinhardt, D. Epel, E.J. Carroll et al. II Nature. 1974. -V. 252. P. 41-^13.
  259. Sun, F.Z. A comparison of intracellular changes in porcine eggs after fertilization and electroactivation / F.Z. Sun, J. Hoyland, X. Huang et al. II Development. 1992.-V. 115.-P. 947−956.
  260. Sung, L. Premature chromosome condensation is not essential for nuclear reprogramming in bovine somatic cell nuclear transfer / L. Sung, P. Shen, B. Jeong et al. II Biol. Reprod. 2007. V. 76. — P. 232−240.
  261. Swann, K. The part played by inositol trisphosphate and calcium in the propagation of the fertilization wave in sea urchin eggs / K. Swann, M. Whitaker // J. Cell Biol. 1986. -V. 103. P. 2333−2342.
  262. Szollosi, M.S. Inhibition of protein kinases by 6-dimethylaminopurine accelerates the transition to interphase in activated mouse oocytes /M.S. Szollosi, J.Z. Kubiak, P. Debey et al. II J. Cell. Sci. 1993. V. 104. — P. 861−872.
  263. Takahashi, Y. In vitro development of bovine one-cell embryos: Influence of glucose, lactate, pyruvate, amino acids and vitamins / Y. Takahashi, N.L. First // Theriogenology. 1992. V. 37. — P. 963−978.
  264. Tari, T. Direct exposure of chromosomes to nonactivated ovum cytoplasm is effective for bovine somatic cell nucleus reprogramming / T. Tani, Y. Kato, Y. Tsunoda // Biol. Reprod. 2001. V. 64. — P. 324−330.
  265. Tani, T. Reprogramming of bovine somatic cell nuclei is not directly regulated by maturation promoting factor or mitogen-activated protein kinase activity / T. Tani, Y. Kato, Y. Tsunoda // Biol. Reprod. 2003. V. 69. — P. 18 901 894.
  266. Tarkowski, A.K. Development of blastomeres of mouse eggs isolated at the 4- and 8-cell stage / A.K. Tarkowski, J. Wroblewska // J. Embryol. Exp. Morphol. 1967.-V. 18.-P. 155−180.
  267. Tecirlioglu, R.T. Birth of a cloned calf derived from a vitrified handmade cloned embryo / R.T. Tecirlioglu, A.J. French, I.M. Lewis et al. II Reprod. Fertil. Dev. 2003. V. 15. — P. 361−366.
  268. Tervit, H.R. Birth of lambs after culture of sheep ova in vitro for up to 6 days / H.R. Tervit, L.E.A. Rowson II J. Reprod. Fertil. 1974. V. 38. — P. 177 179.
  269. Tervit, H.R. Successful culture in vitro of sheep and cattle ova / H.R. Tervit, D.G. Whittingham, L.E.A. Rowson // J. Reprod. Fert. 1972. V. 30. — P. 493197.
  270. Thibault, C. Some pathological aspects of ovum maturation and gamete transport in mammals and man / C. Thibault // Acta. Endocrinol. 1972. V. 71. — P. 59−66.
  271. Trounson, A.O. Attempts to produce identical offspring in the sheep by mechanical division of the ovum / A.O. Trounson, N.W. Moore // Aust. J. Biol. Sci. 1974. V. 27. — P. 505−510.
  272. Urakawa, M. Examination of a modified cell cycle synchronization method and bovine nuclear transfer using synchronized early G1 phase fibroblast cells / M. Urakawa, A. Ideta, T. Sawada et al. II Theriogenology. 2004. V. 62. -P. 714−728.
  273. Urakawa, M. Examination of a modified cell cycle synchronization method and bovine nuclear transfer using synchronized early G1 phase fibroblast cells / M. Urakawa, A. Ideta, T. Sawada et al. II Theriogenology. 2004. V. 62. -P. 714−728.
  274. Vajta, G. Hand-made cloning approach: potentials and limitations / G. Vajta, P.M. Kragh, N.R. Mtango et al II Reprod. Fertil. Dev. 2005. V. 17. — P. 97−112.
  275. Vajta, G. Handmade somatic cell cloning in cattle / G. Vajta, I.M. Lewis, R.T. Tecirlioglu // Methods. Mol. Biol. 2006. V. 348. — P. 183−196.
  276. Vajta, G. Handmade somatic cell cloning in cattle: analysis of factors contributing to high efficiency in vitro / G. Vajta, I.M. Lewis, A.O. Trounson et al. II Biol. Reprod. 2003. V. 68. — P. 571−578.
  277. Vajta, G. New method for culture of zona-included or zona-free embryos: the well of the well (WOW) system / G. Vajta, T.T. Peura, P. Holm et al. II Mol. Reprod. Dev. 2000. V. 55. — P. 256−264.
  278. Vajta, G. Somatic cell cloning without micromanipulators / G. Vajta, I.M. Lewis, P. Hyttel et al. II Cloning. 2001. V. 3. — P. 89−95.
  279. Van Soom, A. Sucrose-induced shrinkage of in vitro produced bovine morulae: effect on viability, morphology and ease of evaluation / A. Van Soom, M.T. Ysebaert, A.V. Medts et al. II Theriogenology. 1996. V. 46. — P. 1131— 1147.
  280. Verlhac, M.H. Microtubule and chromatin behavior follow MAP kinase activity but not MPF activity during meiosis in mouse oocytes / M.H. Verlhac, J.Z. Kubiak, H.J. Clarke et al. II Development. 1994. V. 120. — P. 1017−1025.
  281. Wakayama, T. Cloning of male mice from adult tail-tip cells / T. Wakayama, R. Yanagimachi II Nat. Genet. 1999 b. V. 22. — P. 127−128.
  282. Wakayama, T. Effect of cytokinesis inhibitors, DMSO and the timing of oocyte activation on mouse cloning using cumulus cell nuclei / T. Wakayama, R. Yanagimachi // Reproduction. 2001 a. V. 122. — P. 49−60.
  283. Wakayama, T. Full-term development of mice from enucleated oocytes injected with cumulus cell nuclei / T. Wakayama, A.C. Perry, M. Zuccotti et al. II Nature. 1998. V. 394. — P. 369−374.
  284. Wakayama, T. Mice cloned from embryonic stem cells / T. Wakayama, I. Rodriguez, A.C. Perry et al. IIPNAS. 1999 a. V. 96. — P. 14 984−14 989.
  285. Wakayama, T. Mouse cloning with nucleus donor cells of different age and type / T. Wakayama, R. Yanagimachi // Mol. Reprod. Dev. 2001 b. V. 58. -P. 376−383.
  286. Wales, R.G. Effects of ions on the development of the pre-implantation mouse embryo in vitro / R.G. Wales // Aust. J. Biol. Sci. 1970. V. 23. — P. 421.
  287. Wang, W.H. Activation of porcine oocytes with calcium ionophore: effects of extracellular calcium / W.H. Wang, Z. Machaty, N. Ruddock et al. II Mol. Reprod. Dev. 1999. V. 53. — P. 99−107.
  288. Wang, W.L. Effect of condition medium and glucose concentration on the in vitro development of early bovine embryos / W.L. Wang, H.S. Jiang, K.H. Lu et al II Theriogenology. 1990. V. 33. — P. 343.
  289. Watson, A.J. Expression of growth factor ligand and receptor genes in the preimplantation bovine embryo / A.J. Watson, A. Hogan, A. Hahnel et al. II Mol. Reprod. Dev. 1992. -V. 31(2). P. 87−95.
  290. Wells, D.N. Cloning sheep from cultured embryonic cells / D.N. Wells, P.M. Misica, A.M. Day et al. II Reprod. Fertil. Dev. 1998. V. 10. — P. 615−626.
  291. Wells, D.N. Coordination between donor cell type and cell cycle stage improves nuclear cloning efficiency in cattle / D.N. Wells, G. Laible, F.C. Tucker et al. II Theriogenology. 2003. V. 59. — P. 45−59.
  292. Wells, D.N. Production of cloned calves following nuclear transfer with cultured adult mural granulosa / D.N. Wells, P.M. Misica, H.R. Tervit // Cells Biol. Reprod. 1999. V. 60. — P. 996−1005.
  293. Wells, J. Protein-DNA interactions at the major and minor promoters of the divergently transcribed dhfr and rep3 genes during the Chinese hamster ovary cell cycle / J. Wells, P. Held, S. Illenye et al II Mol. Cell. Biol. 1996. V. 16. — P. 634−647.
  294. Westhusin, M.E. Viable embryos and. normal calves after nuclear transfer into Hoechst stained enucleated demi-oocytes of cows / M.E. Westhusin,
  295. M J. Levanduski, R. Scarborough et al. H J. Reprod. Fertil. 1992. V. 95. — P. 475480.
  296. Whittingham, D.G. The involvement of calcium in the activation of mammalian oocytes / D.G. Whittingham, G. Siracusa // Exp. Cell. Res. 1978. V. 113.-P. 311−317.
  297. Wiley, L.M. Effect of potassium concentration, type of protein supplement, and embryo density on mouse preimplantation development in vitro / L.M. Wiley, S. Yamami, D. Van Muyden // Fertil. Steril. 1986. V. 45. — P. 111 119.
  298. Willadsen, S.M. Nuclear transplantation in sheep embryos / S.M. Willadsen // Nature. 1986. V. 320. — P. 63−65.
  299. Wilmut, I. Viable offspring derived from fetal and adult mammalian cells /1. Wilmut, A.E. Schnieke, J. McWhir et al. II Nature. 1997. V. 385. — P. 810−813.
  300. Wintenberger, S. Development in vitro of the ovum of the sheep and of the goat / S. Wintenberger, L. Dauzier, C. Thibault // Soc. Biol. Fil. 1953. V. 147.-P. 1971−1974.
  301. Won, K.A. Growth-regulatde expression of D-type cyclin genes in human diploid fibroblasts / K.A. Won, Y. Xiong, D. Beach et al. Il PNAS. 1992. -V. 89.-P. 9910−9914.
  302. Woods, G.L. A mule cloned from fetal cells by nuclear transfer / G.L. Woods, K.L. White, D.K. Vanderwall et al. II Science. 2003. -V. 301. P. 1063.
  303. Wright, R.W. Aspects of in vitro fertilization and embryo culture in domestic animals / R.W. Wright, K.R. Bondioli // J. Anim. Sci. 1981. V. 53. — P. 702−729.
  304. Wright, R.W. In vitro culture of embryos from adult and prepuberal ewes / R.W. Wright, G.B. Anderson, P.T. Cupps et al. II J. Anim. Sci. 1976. V. 42.-P. 912−917.
  305. Wright, R.W. Successful culture in vitro of swine embryos to the blastocyst stage / R.W. Wright // J. Anim. Sci. 1977. V. 44. — P. 854−858.
  306. Ye, J. Synchronization of porcine oocyte meiosis using cycloheximide and its application to the study of regulation by cumulus cells / J. Ye, A.P. Flint, K.H. Campbell et al. II Reprod. Fertl. Dev. 2002. V. 14. — P. 433−442.
  307. Yin, XJ. Nuclear remodelling and the developmental potential of nuclear transferred porcine oocytes under delayed-activated conditions / X.J. Yin, S.K. Cho, M.R. Park et al. II Zygote. 2003. V. 11. — P. 167−174
  308. Yoshida, M. Effects of gonadotropins and estradiol-17b on the timing of nuclear maturation and cumulus mass expansion in pig oocytes cultured in vitro / M. Yoshida, K. Bamba, Y. Kojima II Jpn. J. Anim. Reprod. 1989. V. 35. — P. 86−91.
  309. Younis, A.I. Influence of serum and hormones on bovine oocyte maturation and fertilization in vitro / A.I. Younis, B.G. Brackett, R.A. Fayrer-Hosken // Gamete Res. 1989. V. 23. — P. 189−201.
  310. Yu, Y.S. Studies of the cell cycle of in vitro cultured skin fibroblasts in goats: work in progress / Y.S. Yu, X.S. Sun, H.N. Jiang et al. Il Theriogenology. 2003. V. 59. — P. 1277−1289.
  311. Zaidi, A. Life-supporting pig-to-primate renal xenotransplantation using genetically modified donors / A. Zaidi, M. Schmoeckel, F. Bhatti et al. Il Transplantation. 1998.-V. 65.-P. 1584−1590.
  312. Zakhartchenko, V. Adult cloning in cattle: potential of nuclei from a permanent cell line and from primary cultures / V. Zakhartchenko, R. Alberio, M. Stojkovic et al. Il Mol. Reprod. Dev. 1999. V. 54. — P. 264−272.
  313. Zakhartchenko, V. Karyoplast-cytoplast volume ratio in bovine nuclear transfer embryos: effect on developmental potential / V. Zakhartchenko, M. Stojkovic, G. Brem et al. II Mol. Reprod. Dev. 1997. V. 48. — P. 332−338.
  314. Zakhartchenko, V. Nuclear transfer in cattle using in v/vo-derived vs. in vitro-produced donor embryos: effect of developmental stage / V. Zakhartchenko, H.D. Reichenbach, J. Riedl et al. II Mol. Reprod. Dev. 1996. V. 44. — P. 493 498.
  315. Zawada, W.M. Somatic cell cloned transgenic bovine neurons for transplantation in parkinsonian rats / W.M. Zawada, J.B. Cibelli, P.K. Choi et al. II Nat. Med. 1998. V. 4. — P. 569−574.
  316. Zhang, X. Presence of amino acids and insulin in a chemically defined medium improves development of 8-cell rat embryos in vitro and subsequent implantation in vivo / X. Zhang, D.T. Armstrong // Biol. Reprod. 1990. V. 42. -P. 662−668.
  317. Zhou, Q. Generation of fertile cloned rats by regulating oocyte activation / Q. Zhou, J.P. Renard, G. Le Friec et al. II Science. 2003. V. 302. — P. 1179.
  318. Zimmermann, U. Electric field-induced cell-to-cell fusion / U. Zimmermann, J. Vienken // J. Membr. Biol. 1982. V. 67. — P. 165−182.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!