Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Гаметофитный апомиксис: анализ причин и последствий реализации у цветковых: На примере популяций некоторых видов Asteraceae

Диссертация: Гаметофитный апомиксис: анализ причин и последствий реализации у цветковых: На примере популяций некоторых видов Asteraceae
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Но увлечение активным поиском генов, инициированное возросшими возможностями и достижениями молекулярной генетики и генной инженерии, невольно ведёт к упрощению самой проблемы гаметофитного апомиксиса, как системного явления, полного динамизма процессов определения пути семенной репродукции. А между тем нет ясности в вопросах о причинах перехода растений на этот способ семенного воспроизводства… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ПРИЧИНЫ И СЛЕДСТВИЯ ГАМЕТОФИТНОГО АПОМИКСИСА У
  • ЦВЕТКОВЫХ
    • 1. 1. Апомиксис и амфимиксис: сходство и различие
    • 1. 2. Причины гаметофитного аиомиксиса
      • 1. 2. 1. Генетика гаметофитного апомиксиса
      • 1. 2. 2. Трудности на пути признания простой генетической детерминации гаметофитного апомиксиса
      • 1. 2. 3. Полиплоидия, гибридогенез и гамстофитный апомиксис
    • 1. 3. Последствия реализации гаметофитного аиомиксиса у цветковых
      • 1. 3. 1. Гаметофитный апомиксис, полиплоидия, гибридогенез и проблема таксономии
      • 1. 3. 2. Полиморфизм и гегерозиготность при гаметофитном аиомиксисе
      • 1. 3. 3. Эволюционная роль гаметофитного апомиксиса у цветковых
      • 1. 3. 4. Сальтационное формообразование и способы семенного воспроизведепия у покрытосеменных
      • 1. 3. 5. Синтезогенетическое формообразование при агамоспермии и половом воспроизводстве
      • 1. 3. 6. Проблема видообразования у цветковых: основные термины и понятия, используемые в работе
  • 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Изучение структуры популяций агамоспермных видов
      • 2. 1. 1. Изучение параметров системы семенного размножения в популяциях
      • 2. 1. 2. Цитотаксономические и биосистематические методы изучения структуры популяций
      • 2. 1. 3. Цитоэмбриологическое исследование микроспорогенеза у растений из популяций/', officinarum
      • 2. 1. 4. Изучение аллозимной изменчивости в апомиктичных и половых популяциях методом гельэлектрофореза
    • 2. 2. Метод отдалённой гибридизации
    • 2. 3. Методы культуры in vitro
      • 2. 3. 1. «Спасение» гибридных зародышей (embryo rescue)
      • 2. 3. 2. Культивирование in vitro неоплодотворённых завязей проса посевного
      • 2. 3. 3. Культивирование in vitro неоплодотворённых завязей половых и апомиктичных форм Asteraceae
    • 2. 4. Метод индукции партеногенеза in vivo
  • 3. ЧАСТОТА АПОМИКСИСА В ПОПУЛЯЦИЯХ НЕКОТОРЫХ ВИДОВ TARAXACUM, HIERACIUM, PILOSELLA И CONDRILLA
    • 3. 1. Частота апомиксиса в популяциях некоторых видов Taraxacum, Hieracium, Pilosella
    • 3. 2. Частота апомиксиса в популяциях некоторых видов Chondrilla
    • 3. 3. Характер нарушений в мужской генеративной сфере в популяциях агамного комплекса Pilosella
  • 4. ОСОБЕННОСТИ СИНТЕЗОГЕНЕЗА ПРИ ГАМЕТОФИТНОМ АПОМИКСИСЕ (НА ПРИМЕРЕ ФРАГМЕНТА АГАМНОГО КОМПЛЕКСА PILOSELLA)
    • 4. 1. Виды, формирующие фрагмент агамного комплекса Pilosella
    • 4. 2. Естественная межвидовая гибридизация
    • 4. 3. Возможности гибридогенеза у половых форм
    • 4. 4. Изменение уровня плоидности в популяциях и в потомстве отдельных особей
    • 4. 5. Другие примеры интенсивности сиптезогенетического формообразования в агамных комплексах
    • 4. 6. Переходы по уровням плоидности и гибридогенез как непременные атрибуты гаметофитного апомиксиса
  • 5. ДИНАМИКА КАРИОТИГШЧЕСКОЙ ИЗМЕНЧИВОСТИ И СЕМЕННОЙ ПРОДУКТИВНОСТИ В СВЯЗИ С УСЛОВИЯМИ ОБИТАНИЯ ПОЛОВЫХ И АПОМИКТИЧНЫХ ПОПУЛЯЦИЙ АГАМНЫХ КОМПЛЕКСОВ ASTERACEAE
    • 5. 1. Динамика кариотипической изменчивости в популяциях апомиктичных и половых видов агамиых комплексов Asteraceae
    • 5. 2. Динамика семенной продуктивности в апомиктичных и половых популяциях некоторых видов Asteraceae
  • 6. ГЕНОТИПИЧЕСКАЯ ИЗМЕНЧИВОС ТЬ В АПОМИКТИЧНЫХ И ПОЛОВЫХ ПОПУЛЯЦИЯХ АГАМИЫХ КОМПЛЕКСОВ ASTERACEAE
    • 6. 1. Идентификация локусов изофермептов
    • 6. 2. Частота встречаемости и число спектров энзимов в популяциях Taraxacum и Pilosella
    • 6. 3. Полиморфизм, гетерозиготность и внутрипопуляционное разнообразие в исследованных популяциях
    • 6. 4. Обсуждение
  • 7. РОЛЬ ФАКТОРОВ ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЙ РЕГУЛЯЦИИ В РЕАЛИЗАЦИИ ГАМЕТОФИТ1ЮГО АПОМИКСИСА. т
    • 7. 1. Эпигенетические аспекты реализации апомейоза у покрытосеменных
    • 7. 2. Экспериментальная индукция дипло- и апоспории
    • 7. 3. Экспериментальная индукция партеногенеза
      • 7. 3. 1. Индукция партеногенеза in vivo
      • 7. 3. 2. Активация мегагамет и регуляция эмбриогенеза в культуре in vitro неоилодогворённых завязей проса посевного. ф 7.3.3. Развитие мегагамет агамоспермиых и половых видов Hieracium и
  • Taraxacum в культуре in vitro неоплодотворённых завязей
  • 8. ВОЗМОЖНЫЕ ЭВОЛЮЦИОННЫЕ ПОСЛЕДСТВИЯ РЕАЛИЗАЦИИ ГАМЕТОФИТНОГО АПОМИКСИСА У ПОКРЫТОСЕМЕННЫХ
    • 8. 1. Гаметофитный апомиксис — нестабильная система семенного размножения
    • 8. 2. Анализ структуры некоторых агамных комплексов
    • 8. 3. Возможная роль гаметофитного апомиксиса в восстановлении сбалансированности генома
      • 8. 3. 1. Кроссинговер как механизм восстановления электростатически равновесного состояния молекул ДНК
      • 8. 3. 2. Причины непроявления гаметофитного апомиксиса на диплоидном уровне
      • 8. 3. 3. Гаметофитный апомиксис как возможный механизм выхода за границы «разрешённой» мейозом изменчивости
      • 8. 3. 4. Гаметофитный апомиксис как система размножения, имеющая тенденцию к достижению устойчивого состояния через восстановление сбалансированности генома
    • 8. 4. Трансформация агамоспермного вида в биологический вид
    • 8. 5. Возможная роль агамоспермии и полового размножения в хромосомном видообразовании
    • 8. 6. Видообразовательный потенциал агамоспермии у цветковых
      • 8. 6. 1. Некоторые эволюционные парадоксы
      • 8. 6. 2. Характер и механизмы изменчивости при агамоспермии
    • 8. 7. Циклические преобразования в системах семенного размножения покрытосеменных (гипотеза)
    • 8. 8. Стадии развития и пути эволюции агамных комплексов у цветковых
  • 9. ВИД И ЕГО СТРУКТУРА ПРИ ГАМЕТОФИТНОМ АПОМИКСИСЕ

Гаметофитный апомиксис: анализ причин и последствий реализации у цветковых: На примере популяций некоторых видов Asteraceae (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

диссертации. В последние пятнадцать лет интерес к проблеме гаметофитного апомиксиса возрос в связи с наметившимся прогрессом в исследовании природы этого уникального явления. Генетический анализ показал относительно простую генетическую природу апомейоза (Savidan, 1982; Nogler, 1984). Интенсивные исследования по локализации гена (ов) апомиксиса с целью их передачи методами генной инженерии культурным растениям (Bicknell, Borst, 1994, Kindiger е.а., 1996; Grossniklaus et al., 2001) порождают надежду на возможность широкого использования этого явления в селекции и семеноводстве в недалёком будущем. Это важно для решения задач сохранения гетерозисного эффекта в ряду поколений, стабилизации отдалённых гибридов и уникальных генных комбинаций и т. п., что обещает настоящую революцию в растениеводстве (Savidan, 1995; Vielle Calzada et al., 1996).

Но увлечение активным поиском генов, инициированное возросшими возможностями и достижениями молекулярной генетики и генной инженерии, невольно ведёт к упрощению самой проблемы гаметофитного апомиксиса, как системного явления, полного динамизма процессов определения пути семенной репродукции. А между тем нет ясности в вопросах о причинах перехода растений на этот способ семенного воспроизводства и о возможности возврата к облигатно половому воспроизводству. Настораживает, что в природе обли-гатный гаметофитный апомиксис не обнаружен, на диплоидном уровне и на базе хромосомно сбалансированных геномов фактически не реализуется. Запутанным остаётся вопрос о реальности категории вида при гаметофитном апо-миксисе. По-прежнему не ясно, к каким популяционно-генетическим последствиям ведёт гаметофитный апомиксис и что он собой представляет в эволюционном плане. А понимание этого важно и для осознания потенциальных возможностей использования гаметофитного апомиксиса в селекции, и для развития общих представлений о факторах и механизмах эволюции цветковых.

Роль гаметофитного апомиксиса в эволюции анализируется преимущественно в отношении эволюционной пластичности апомиктов (Battaglia, 1963; Хохлов, 1970; Мэйнард Смит, 1981; Грант, 1984; Рубцова, 1989 и др.). Доминирует при этом представление о том, что они могут иметь лишь временное адаптационное преимущество. Однако, па наш взгляд, гаметофитный апомиксис может являться фактором, существенно ускоряющим сами темпы формои видообразования даже в том случае, если переход на него оказывается временным. Такое понимание его роли в эволюции могло бы снять целый ряд противоречий, с которыми сталкиваются при разработке пунктуалистских воззрений на видообразование (Оно, 1973; Stanley, 1979; Carson, 1982; Тагаринов, 1988; Алтухов, 1989). Но роль гаметофитного апомиксиса в видообразовании не признаётся, так как не допускается возможность возврата апомиктов к облигатно-му половому воспроизводству (Darlington, 1932; Stebbins, 1950; Wet de, Harlan, 1970; Грант, 1984). Одной из причин, не позволяющей признать роль апомиксиса в видообразовании является то, что остаются неизвестными механизмы переключения с амфина апомиксис и в обратном направлении, роль в этом различных эндогенных и экзогенных факторов.

Всё вышеизложенное говорит об особой актуальности изучения проблемы гаметофитного апомиксиса, особенно в отношении причин и последствий его реализации в популяциях растений.

Связь работы с научными программами, темами. Работа выполнялась в рамках НТП «Разработать и внедрить биотехнологические методы повышения эффективности растениеводства» (шифр 0.СХ.01.01.01.Н6), темы РАСХН (шифр 0.25.05.25), ГНТП «Приоритетные направления генетики» (грант 5.32) и «Университеты России» (грант 015.07.01.14), проектов РФФИ № 97−04−49 032 и № 00−04−49 376, гранта Министерства образования РФ по фундаментальным исследованиям в области естественных наук Е 00−6.0−42.

Цель и задачи исследований. Целью работы было исследование причин и последствий реализации у цветковых гаметофитного апомиксиса как неустойчивой системы семенного размножения на примере популяций ряда видов агамных комплексов Asteraceae.

Для достижения цели решались следующие задачи:

1. Выявить степень устойчивости основных параметров системы семенного воспроизводства при гаметофитном апомиксисе в различных условиях обитания на примере популяций ряда видов Pilosella, Taraxacum, Chondrilla и Hieracium.

2. Исследовать особенности генетической структуры апомиктичных и половых популяций ряда видов агамных комплексов Pilosella и Taraxacum.

3. Изучить возможные причины неустойчивости апомиктичной системы семенного воспроизводства и отдельные физиологические факторы переключения с амфина апомиксис на примере некоторых апомиктичных и половых видов Роасеае и Asteraceae.

4. Теоретически обосновать возможные эволюционные последствия реализации гаметофитного апомиксиса у цветковых.

Научная новизна полученных результатов. Показано, что в агамном комплексе изменчивость уровня плоидпости даже в локальных популяциях всех форм зачастую имеет место в потомстве большинства (до 60−80%) вегети-рующих растений и существенно варьирует по годам. Это говорит о том, что всем формам агамокомплекса, включая и виды, обычно считающиеся облигат-но половыми, свойственна чрезвычайная динамичность процессов определения пути семенной репродукции (апо-амфимиксис), позволяющая отнести их к формам с неустойчивой системой семенного размножения. Показано, что изменчивость уровня плоидноети в апомиктичных популяциях имеет место не только за счёт реализации различных путей семейной репродукции, но и за счёт некратной редукции числа хромосом.

Впервые изучена изменчивость параметров частоты апомиксиса, семенной продуктивности при различных режимах цветения, кариотипической изменчивости, гибридогенеза, выраженности аллои автогамии в одних и тех же локальных популяциях агамокомплекса по годам. Показано, что динамика карио-типической изменчивости и степени выраженности гаметофитного апомиксиса в популяциях находится в непосредственной зависимости от условий внешней среды: экстремальные условия обитания ведут к большей неустойчивости системы семенного размножения.

Показано, что в агамном комплексе в постоянно идущий процесс гибридо-генеза втянуты все контактирующие между собой виды с перекрывающимися сроками цветения, но его последствия для формообразовательного процесса значительно выше при участии в гибридогенезе апомиктичных, а не половых форм. Обосновано, что многие клоны и популяции в пределах ареала гибридного агамовида имеют независимое происхождение.

С использованием изоферментного анализа на примере популяций апомиктичных и половых видов Pilosella и Taraxacum показано, что уровень генетической изменчивости в апомиктичиых популяциях может быть сравним с уровнем изменчивости в половых популяциях. Впервые показано, что в популяциях видов агамных комплексов уровень генетической изменчивости выше, чем обнаруживается в популяциях видов растений, не входящих в них.

Впервые показано, что лимитирующим фактором переключения на путь апозиготии из фитогормонов являются цитокинины, что указывает на опосре-дованность неустойчивости системы семенного размножения при апомиксисе динамикой ауксин-цитокииинового баланса в завязях на критических этапах репродуктивного развития.

Теоретически обосновано, что факультативно апомиктичная форма в состоянии вернуться к облигатно половому процессу и интегрироваться в био-огический вид. Показано, что в переходе на гаметофитный апомиксис и в возврате к половому размножению существенная роль принадлежит механизмам физиологической регуляции. Обосновано, что оптимальные условия для саль-тационного видообразования складываются не при облигатно половом размножении, а при установлении в системе семенного размножения динамического равновесия между апои амфимиксисом. Предложены оригинальная модель структуры вида при гаметофитном апомиксисе с иерархией внутривидовых таксономических категорий и оригинальная схема путей эволюции агам-ных комплексов у цветковых.

Практическая значимость полученных результатов. Разработанная техника культивирования in vitro неоплодотворённых завязей проса может быть использована для изучения механизмов переключения пути семенной репродукции, в частности активации мегагамет к партеногенетическому развитию, а также регуляции эмбриогенеза.

Разработанная техника получения межвидовых гибридов проса с доращи-ванием незрелых гибридных зародышей in vitro, а также амфидиплоидов, может быть использована для получения отдалённых гибридов в роде Panicum.

Результаты и выводы работы могут использоваться в курсах по эволюции растений, системам размножения и апомиксису у растений, экспериментальной эмбриологии растений, клеточной биотехнологии, читаемых студентам и аспирантам университетов и аграрных ВУЗов. t.

Основные положения, выносимые на защиту.

— гаметофитный апомиксис является неустойчивой системой семенного воспроизводства, стабилизация которой возможна только с возвратом к обли-гатно половому воспроизводству при постепенном достижении хромосомной сбалансированности геномов за счёт переходов по уровням плоидности;

— зависимость динамики кариотипической изменчивости и степени выраженности гаметофитного апомиксиса от факторов внешней среды стрессового характера с повышением степени неустойчивости системы семенного размножения в экстремальных условиях обитания популяций;

— существенная зависимость определения пути семенного воспроизводства (амфи — апомиксис) от динамики ауксин-цитокининового баланса в женских генеративных органах на критических этапах генеративного развития (спорогенез, гаметогенез), что и может являться причиной неустойчивости этой системы семенного воспроизводства;

— высокий уровень гибридогенеза и изменчивости уровня плоидности даже в локальных популяциях всех без исключения форм агамокомплекса, свидетельствующий о постоянно идущем в нём интенсивном процессе синтезогенети-ческого формообразования. Это ведёт к независимому происхождению многих клонов и популяций в границах ареала отдельных гибридогенных и полиплоидных агамовидов и сложности структуры этих видов;

— гипотеза о том, что у отдельных групп покрытосеменных в системе семенного воспроизводства в масштабах эволюционно значимого времени под воздействием условий внешней среды и с участием генетических и физиологических регуляторных механизмов имеют место циклические преобразования, при которых период облигатного полового воспроизводства растительной формы сменяется периодом динамического равновесия апои амфимиксиса с последующим возвратом к облигатно половому воспроизводству. При этом в период облигатного полового воспроизводства происходит стабилизация формы на уровне биологического вида, в период динамического равновесия апо-амфимиксиса — интенсивный процесс сальтационного формообразования и возникновения микровидов. При стабилизации системы семенного размножения на базе полового процесса микровиды трансформируются в биологические виды;

ВЫВОДЫ.

1. Экспериментально показано и теоретически обосновано, что гаметофитный апомиксис является неустойчивой системой семенного воспроизводства с чрезвычайной динамичностью реализации различных путей семенного воспроизводства (элементов амфии апомиксиса). Частота проявления апомейоза и партеногенеза в популяциях и потомстве отдельных растений широко варьирует по годам (в интервале от 0 до 100%). Нестабильные и экстремальные условия обитания провоцируют неустойчивость системы семенного размножения.

2. Автономные апомикты Asteraceae имеют высокую семенную продуктивность (на уровне 50−100%). Более стабильны по уровню семенной продуктивности популяции тех видов, которые являются близкими к облигатно апо-миктичным, в отличие от популяций видов с ярко выраженной факультативностью апомиксиса. Показана облигатная аллогамность популяций первых видов и частичная автофертильность — вторых.

3. Выявлено, что механизм дестабилизации системы семенного размножения, находится в сильной зависимости от факторов внешней среды и задействует уровень физиологической регуляции. Продемонстрировано, что механизм индукции апомейоза и партеногенеза может заключаться, прежде всего, в создании определённых градиентов концентрации основных групп фитогормонов в процессе формирования женской генеративной сферы с переопределением за счёт этого пути развития соответствующих клеток и их компетенции.

4. Установлено, что при гаметофитном апомиксисе уже в пределах отдельных ценозов неизбежно реализуется синтезогенетическое формообразование. В постоянно идущий процесс гибридогенеза при этом вовлечены все контактирующие между собой виды агамокомплекса с перекрывающимися сроками цветения. В популяциях постоянно с высокой частотой реализуются переходы по уровням плоидности в обоих направлениях.

5. При исследовании полиморфизма белков показано, что уровень генетической изменчивости в апомиктичных популяциях видов Pilosella и Taraxacum сравним с уровнем изменчивости в половых популяциях видов этих же родов. При этом в популяциях видов, входящих в агамные комплексы, уровень генетической изменчивости выше среднего уровня изменчивости в популяциях видов растений, не входящих в агамные комплексы.

6. Теоретически обосновано, что факультативно апомиктичная форма в состоянии вернуться к облигатно половому процессу и интегрироваться в био-огический вид. Показано, что в переходе на гаметофитный апомиксис и в возврате к половому размножению существенная роль принадлежит механизмам физиологической регуляции. Обосновано, что оптимальные условия для саль-тационного видообразования складываются не при облигатно половом размножении, а при установлении в системе семенного размножения динамического равновесия между апои амфимиксисом. Предложены оригинальная модель структуры вида при гаметофитном апомиксисе с иерархией внутривидовых таксономических категорий и оригинальная схема путей эволюции агамных комплексов у цветковых.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Результаты собственных исследований и анализ литературных данных по структуре агамных комплексов цветковых растений привели нас к заключению о том, что оптимальные условия для сальтациоиного, в частности синтезогене-тического, формообразования складываются не при облигатно половом воспроизводстве, а при установлении в системе семенного размножения биологической формы динамического равновесия между апои амфимиксисом. Обосновано и на примере фрагмента агамного комплекса Pilosella показано, что обязательными атрибутами гаметофитного апомиксиса является взрыв синтезоге-нетических процессов (полиплоидии и гибридогенеза), наряду с другими саль-тационными преобразованиями разрушающих структуру вида или видов и приводящих к возникновению большого числа новых форм.

Синтезогенез как разновидность сальтациоиного формообразования несравнимо легче реализуется при апомиксисе, чем при половом процессе. Наглядным примером этого является структура природных агамных комплексов типа агамного комплекса Pilosella при известных трудностях получения межвидовых гибридов между половыми сородичами. Появление таких гибридов между «хорошими» биологическими видами в условиях естественной флоры проблематично.

Традиционно апомиксис не считается фактором видообразования, так как не представляется возможным возврат апомиктичных форм к облигатному половому воспроизводству с трансформацией их в биологические виды (Грант, 1984). Нами обосновано, что гаметофитный апомиксис, как раз напротив, представляет собой нестабильную систему семенного воспроизводства, как всякая нестабильная система стремящуюся к стабилизации своих параметров. По нашему мнению, стабилизация системы семенного размножения возможна только с возвратом её к облигатно половому воспроизводству. Многочисленные переходы по уровням плоидности в совокупности с гибридизацией, а также некратная редукция числа хромосом, репарация и рекомбинация, которые постоянно реализуются у апомиктичных форм агамного комплекса благодаря динамическому равновесию апои амфимиксиса, представляют собой механизм достижения хромосомной сбалансированности геномов. С восстановлением её становится возможен возврат агамоспермного микровида или таксономического вида к облигатно половому размножению и трансформация его в биологический вид.

Приведённый выше анализ указывает на то, что гаметофитный апомиксис является фактором сальтационного видообразования, в то время как участие полового воспроизводства в видообразовательном процессе такого рода должно быть менее значимым. Мы исходим из того, что половой процесс как фактор эволюции, прежде всего, выполняет роль консервативного начала, поддерживающего единство структуры вида и минимизирующего изменчивость в рамках допустимого механизмами совместимости при мейотическом рекомбиногенезе. Поэтому он должен выступать существенным барьером на пути сальтационного возникновения новых видов.

Именно пунктуалистские воззрения на процесс видообразования находят всё большее число сторонников (Оно, 1973; Stanley, 1979; Carson, 1982; Тах-таджян, 1983; Lalewski, 1987; Pollard, 1987; Татаринов, 1988; Алтухов, 1989; Стегний, 1991, 1993). В соответствии с ними утверждается, что видообразование осуществляется сальтационно через преобразования в системе генов, затрагивающих видоспецифичные признаки и существенно сказывающихся на жизнеспособности и размножении особей. Полагают при этом, что новые виды берут своё начало от одной или немногих особей-основателей (Carson, 1982; Алтухов, 1989; Стегний, 1993). Очевидно, что реализации такой изменчивости при половом размножении мешают барьеры хромосомной несбалансированности при рекомбиногенезе и неизбежная единичность трансформированных особей. Воспроизводству таких особей несравнимо более способствует унипаренталь-ное размножение, обеспечивающее оптимальные для индивидуального отбора условия. Среди унипарентальных форм размножения апомиксис — идеальный путь преодоления подобных сложностей. Поэтому даже временный переход на апомиксис должен благоприятствовать сохранению сильно отклонившихся форм и воспроизводству их в ряду поколений.

В свете вышеизложенного мы предполагаем, что в системе семенного воспроизводства у покрытосеменных в масштабах эволюционно значимого времени имеют место циклические преобразования, при которых период облигатного полового воспроизводства растительной формы сменяется периодом динамического равновесия апои амфимиксиса с последующим возвратом к облигатно половому воспроизводству. При этом на период облигатного полового воспроизводства выпадает стабилизация формы на уровне биологического вида, на период динамического равновесия апо-амфимиксиса — интенсивный процесс формообразования и возникновения микровидов, которые при стабилизации системы семенного размножения на базе полового процесса трансформируются в биологические виды.

Механизм переключения пути семенного воспроизводства с полового на агамоспермное находится в сильной зависимости от факторов внешней среды, -в частности от экстремальных и нестабильных условий обитания, — и задействует уровень физиологической регуляции, в частности динамику фитогормональ-ного баланса в процессе формирования женской генеративной сферы. Это переключение можно осуществлять в экспериментальных условиях как in vivo, так и in vitro. В частности, как показано в работе, одним из путей индукции партеногенетического развития зародыша является смещение фитогормональ-ного балланса в районе зародышевого мешка в сторону повышения концентрации цитокининов относительно концентрации ауксинов.

Факт зависимости проявления апоспории и партеногенеза от баланса фито-гормонов в семяпочке на критические моменты определения пути семенной репродукции указывает на то, что механизм эпигенетической реализации апомей-оза и партеногенеза может заключаться прежде всего в создании определённых градиентов концентрации основных групп фитогормонов с переопределением за счёт этого пути развития соответствующих клеток и их компетенции. Это приводит нас к заключению о том, что, во-первых, проблема гаметофитного апомиксиса является не только проблемой формальной генетики, но и, — а, может быть, и в большей мере — проблемой биологии развития и межклеточного взаимодействия, а, во-вторых, эволюция систем семенного размножения в отдельных таксономических группах и у покрытосеменных в целом может быть обусловлена эволюцией регуляторных систем.

Таким образом, эволюция систем размножения у покрытосеменных, по нашему мнению, может оказаться одной из сфер приложения нового синтеза, начавшегося совсем недавно в области эволюционной теории (Гилберт и др., 1997), пытающегося объяснить как макро-, так и микроэволюционные события событиями, происходящими на уровне изменения морфогенетических полей. В частности процессы мегагаметофитогенеза и индукции к развитию яйцеклетки у покрытосеменных могут быть связаны с изменениями морфогенетического поля. Механизм репликации и изменения этого морфогенетического поля, вероятно, опосредован созданием и изменением физиологических градиентов ауксинов и цитокининов вдоль продольной оси семязачатка.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.И. Определение числа хромосом и описание их морфологии в меристеме и пыльцевых зёрнах культурных растений. Л, 1988. 61 с
  2. Ф., Кайгер Д. Современная генетика Т.З. М.: Наука, 1988. 331с.
  3. АкифьевА.П., Дегтярёв С. В., Худолий Г. А., Терентьев М. А. Эволюционные аспекты молекулярной организации хромосомной ДНК эукариот // Генетические механизмы селекции и эволюции. М., 1986. С. 104—112.
  4. Т.А. Культура завязей кукурузы в связи с апомиксисом: Автореф. дис.. канд. биол. наук. Санкт-Петербург: БИН АН РАН, 1994. 18 с.
  5. Ю.П. Популяционная генетика рыб. М.: Лег. пищ. пром-сть, 1974. 245 с.
  6. Ю.П. Генетические процессы в популяциях. М: Наука, 1989.
  7. Ю.П., Клименко В. В. Положительная корреляция между уровнем индивидуальной гетерозиготности и способностью к полному термическому партеногенезу у тутового шелкопряда // Докл. АН СССР. 1978. Т. 239., № 2. С. 460−462.
  8. Ю.П., Победоносцева Е. Ю. Особенности генетического процесса в экспериментальной популяционной системе Drosophila melanogaster //Журн. общ. биологии. 1979. Т.40, № 6. С. 916—923.
  9. Ю.П., Рычков Ю. Г. Генетический мономорфизм видов и его возможное биологическое значение // Журн. общ. биологии. 1972. Т. 33, № 3. С. 281—300.
  10. Е.В., Чернышев А. И. Молекулярная организация генома растений // Организация генома. М: Наука, 1989. С. 218—236.
  11. А.С. Структура и эволюция ДНК покрытосеменных растений // Геном растений. Киев: Наукова думка, 1988. С. 21—42.
  12. Н.К. Влияние химических стимуляторов на образование плодов у инжира // Тр. гос. Никитск. бот. сада. 1960. 32. С. 43—48.
  13. Н.К., Казас, А.Н. Индуцированный апомиксис у инжира // Апомиксис и цитоэмбриология растений. Саратов: Изд-во. Сарат. ун-та, 1978. Вып. 4. С. 10—11.
  14. .Л. Экспериментальная полиплоидия и гипотеза непрямого (опосредованного партеногенезом) происхождения естественной полиплоидии у бисексуальных животных // Генетика. 1969. Т. 7. С. 129—148.
  15. .Л. Отбор по способности к термическому искусственному партеногенезу и получение улучшенных по этому признаку партенокло-нов у шелковичного червя // Генетика. 1973. Т. 9, № 9. С. 93−106.
  16. П.П. Использование апомиксиса для выведения новых сортов ореха грецкого // Состояние и перспективы развития промышленного ореховодства. М., 1989. С. 37.
  17. В. Генетическая изменчивость партеногенетических популяций животных // Acta hydrobiol. lituanica. 1983. 4. Р. З—17.
  18. В.К., Лекявичюс Э. К., Алтухов Ю. П. Экспериментальное исследование зависимости способа размножения дафний от уровня их индивидуальной гетерозиготности //Генетика. 1985. Т. 21, № 4. С. 591—597.
  19. С.О. Сравнительное изучение фертильности апомиктичного клона крупноплодной земляники сорта Мици Штиндлер и его исходной формы // Проблемы апомиксиса и отдалённой гибридизации. Новосибирск: Наука, 1987. С. 192−199.
  20. С.О. Экспериментальный апомиксис у крупноплодной земляники (Fragaria х ananassa Duch.). Дис. канд. биол. наук. Новосибирск, 1997. 138 с.
  21. В.П. Цитоэмбриология межвидовой несовместимости у растений. Киев, 1975. 284 с.
  22. В.П. Межвидовая несовместимость у растений. Киев, 1986. 232 с.
  23. В.П., Хведынич О. А., и др. Основы эмбриогенеза злаков. Киев, 1991. 176 с.
  24. Т.Б. Хлебное зерно. Л., 1987. 103 с.
  25. Т.Б. Эмбриоидогения новая категория способов размно-же-ния цветковых растений // Проблемы репродуктивной биологии семенных растений. Тр. БИН РАН. Вып. 8. СПб., 1993. С. 15−25.
  26. Т.Б. Генетическая гетерогенность семян: эмбриологические аспекты // Физиол. раст. 1999. Т. 46, № 3. С. 438−454.
  27. Т.Б. Эмбриоидогения новый тип вегететивного размно-же-ния // Эмбриология цветковых растений: Терминология и концепции. Т. 3. Системы репродукции. С. Пб: Мир и семья, 2000. С. 334−350.
  28. Д.К., Бородин П. М. Влияние стресса на наследственную изменчивость // Эволюционная генетика. Л., 1982. С. 35−59.
  29. Ю.Ф., Коломиец О. Л. Мейоз как фильтр хромосомных перестроек // Тез. докл. 2-го Всесоюз. съезда мед. генетики. Алма-Ата, 4— дек., 1990. М, 1990. С. 97.
  30. Л.Я. Неортодоксальное видообразование у амфибий // Макроэволюция: материалы I Всес.конф.по пробл.эволюции. М, 1984. С.43—44.
  31. Л.Я., Даревский И. С. Сетчатое (гибридогенное) видообразование у позвоночных // Журн.общ. биол. 1980. 41, № 4. С. 485—506.
  32. П.М. Стресс и генетическая изменчивость //Генетика. 1987. Т. 23, № 6. С. 1003−1009.
  33. П.М. Мифы и рифы хромосомного видообразования // Вестник ВОГиС. 1998. № 3. С. 8—10.
  34. Е.А. Биологическая роль пролина. М.: Наука, 1975. 88 с.
  35. A.M., Егорова Н. А., Резникова С. А. Влияние холодовой предобработки на индукцию андрогенного развития в пыльниках кориандра II Физиология растений. 1985. Т. 32. С. 558—564.
  36. A.M., Русина JI.B. Культура неоплодотворённых завязей и семяпочек in vitro как способ получения гаплоидных растений // Физиология и биохимия культ, растений. 1988. Т. 20. С. 419—430.
  37. А.Е. Цитоскелет генеративной сферы высших растений // Журн. общ. биол. 1996. Т.57, № 5. С.567−590.
  38. В.П., Васильева Е. Д., Осинов А. Г. Эволюция диплоидно-триплоидно-тетраплоидного комплекса рода Cobitis (Cobitidae) // Гибридизация и проблема вида у позвоночных. М.: Изд-во МГУ, 1993. С. 6—33.
  39. Е.М., Соловова К. П. Получение искусственного партеногенеза у цветковых растений и некоторые проблемы селекции // Онтогенез. 1973. Т. 4, № 3. С. 240—248.
  40. Н.Н. Развитие эволюционных идей в биологии. М.: Из дат. отдел УНЦ ДО МГУ, Прогресс Традиция, АБФ, 1999. 640 с.
  41. Э., Медьеши Г., Верецкеи J1. Электрофорез в разделении биологических макромолекул. М.: Мир, 1982. 432 с.
  42. Генетика изоферментов / Корочкин Л. И. и др. М.: Наука, 1977. 275 с.
  43. Т.И. «Транспозиционные взрывы» при дестабилизации генома у Drosophila melanogaster II Молекулярные механизмы генетических процессов. М: Наука, 1985. С. 13—20.
  44. У. Биология размножения в мире животных. М.- Л.: Био-медгиз, 1937. 143 с.
  45. С.Ф., Опиц Д. М., Рэф Р.А. Новый синтез эволюционной биологии и биологии развития // Онтогенез. 1997. Т. 28, № 3. С. 325−343.
  46. М.С. Экологическое значение партеногенеза // Успехи соврем. биологии. 1982. Т. 93, Вып. 1. С. 10—22.
  47. В.И., Созинов И. А. Генетика изоферментов животных и растений. Киев: Урожай, 1993. 528 с.
  48. К.П. Апомиксис у восточноевропейских представителей рода Alchemilla L. Автореф. канд. биол. наук. М., 1983. 17 с.
  49. И.Н. Генетический контроль поведения хромосом в мейозе // Цитология и генетика мейоза / Под ред. Хвостовой В. В., Богданова Ю. Ф. М.: Наука, 1975. С. 312—338.
  50. И.П. Биологический смысл перекомбинации генов // Успехи соврем, биологии. 1991. Т. 111, Вып. 4. С. 532—546.
  51. В. Полиплоидия в эволюции высших растений // Современные достижения молекулярной биологии хромосом и клеток. Алма-Ата, 1989. С. 7—45.
  52. В. Видообразование у растений. М: Мир, 1984. 528 с.
  53. В. Эволюционный процесс. М.: Мир, 1991. 486 с.
  54. В.В., Креславекий А. Г., Михеев А. В., Северцов А. С., Со-ломатин В.М. Концепция вида и симпатрическое видообразование. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1983. 192 с.
  55. Д.Л. Критика неодарвинизма // Журн. общей биол.1999. Т. 60, № 5. С. 488−509.
  56. Д.Л. Эпигенетическая теория эволюции как возможная основа нового эволюционного синтеза // Журн. общ. биол. 2001. Т. 62, № 2. С. 99−109.
  57. М.А., Блинцов А. Н., Барикова Ю. В., Ермаков И. П. Изменение содержания эндогенных цитокининов в завязях Triticum aestivum до и после оплодотворения // Физиол. раст. 1998. Т. 45, № 6. С. 865−869.
  58. М.А., Блинцов А. Н. Возможные факторы индукции ранних этапов эмбриогенеза у покрытосеменных // Физиол. раст. 2001. Т. 48, № 4. С. 491−497.
  59. С.Л., Шоме П. С. Активация контролирующих элементов у кукурузы И Мобильность генома растений. М: Агропромиздат, 1990. С. 177—227.
  60. Г. Гормоны растений. Системный подход. М., 1985. 304 с.
  61. А.К. Некоторые особенности развития женского га-метофита у огурца (Cucumis sativus L.), обусловленные воздействием колхицина//Цитология и генетика. 1971. Т. 5, № 1.С. 23—28.
  62. А.К. Естественная и стимулятивная апоспория у представителей семейства тыквенных // Проблемы апомиксиса у растений и животных. 1973. С. 96—1−5.
  63. Л.К. Цитоембрюлопчне дослидтення жшочно1 генеративны зони в насшному зачатку соняшника // Укр. ботан. журн. 1959, Т. 16, № 3. С. 8−19.
  64. Л.К. Особливост развитку чолов1чного та жшочного гаметофтв топинамбура {Helianthus tuberosum) II Укр. ботан. журн. 1965. Т. 22, № 1.С. 43−58.
  65. В.А. Зоология беспозвоночных. М.: Высш. шк., 1981. 606 с.
  66. У.Ф. Четырнадцать месяцев концепции «эгоистической» ДНК // Эволюция генома. М: Мир, 1986. С. 13—39.
  67. Н.П. Эволюция популяций и радиация. М., 1966. 743 с.
  68. А.Г., Радыгина В. И., Буланый Ю. И. Определитель сосудистых растений Саратовской области (Правобережье Волги). М.: Изд-во МПГУ, 2001. 278 с.
  69. Н.Х., Тырнов B.C. Гаметофитные мутации // Эмбриология цветковых растений: терминология и концепции. Т. 3. Санкт-Петербург, 2000. С. 378−384.
  70. И.П., Матвеева Н. П. Регуляция начальных этапов эмбриогенеза у высших растений // Физиология растений. 1994. Т. 41, № 3. С. 467— 477.
  71. И.М. Одуванчик лекарственный // Биологическая флора Московской области. М.: Изд-во МГУ, 1990. С. 210−229.
  72. Л.А. Показатели популяционной изменчивости по полиморфным признакам // Фенетика популяций. М.: Наука, 1982. С. 38−44.
  73. Л.А. Популяционная биометрия. М.: Наука, 1991.
  74. Жизнь животных. Т. 1. М.: Просвещение, 1987. 447 с.
  75. Жизнь животных. Т. 2. М.: Просвещение, 1988. 447 с.
  76. Жизнь животных. Т. 3. М.: Просвещение, 1984. 464 с.
  77. Е.Г. О причинах апомиксиса у Роа. Эволюционные аспекты // Цитология и генетика культурных растений. Новосибирск, 1972. С. 343−250.
  78. Л.А. Популяционная жизнь луговых растений. Йошкар-Ола: РИИК «Ланар», 1995. 225 с.
  79. А.А., Король А. Б. Рекомбинация в эволюции и селекции. М: Наука, 1985. 400 с.
  80. К.М. Вид и видообразование. Л.: Наука, 1968. 404 с.
  81. К.М. О причинах эволюции в сторону арогенеза // Закономерности прогрессивной эволюции. Л., 1972. С. 135—148.
  82. М.В., Силис Д. Я., Хавкин Э. И. Сравнение многолетней и однолетней ржи и их гибридов с помощью изоферментного анализа // Генетика. 1998. Т. 34, N 6. С. 778−787.
  83. К.М. Вид и видообразование. Л.: Наука, 1968. 404 с.
  84. Л.С. Партеногенез у насекомых // Апомиксис у растений и животных. Новосибирск: наука, 1978. С. 175−187.
  85. Ильин М.М. Chondrilla L. II Бюллетень отдел, каучукон. 1930. № 3. С. 1.61.
  86. В.А. Селекция проса на высокую продуктивность // Селекция зерновых и крупяных культур. Саратов, 1991: 73—96.
  87. А.Г. Стрессовые условия среды и генетическая изменчивость в популяциях животных // Генетика. 1999. Т. 35, № 4. С. 421−431.
  88. Л.З. Об адаптивном значении скорости мутационного процесса // Исследования по генетике. № 9. Л.: Изд-во ЛГУ, 1981. С. 105−112.
  89. .А. Генетическая изменчивость в современной и среднеголоценовой популяции Littorina squalida II Журн. общ. биологии. 1976. Т. 37, № 3. С. 369—377.
  90. К.А. Изменение последовательностей и стресс // Мобильность генома растений. М: Агропромиздат, 1990. С. 165—176.
  91. Ф.Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наукова думка, 1980. 488 с.
  92. Р.В. Биологичское разнообразие и интродукция растений // Растительные ресурсы. 1997. Т. 33, Вып. 3. С. 1—10.
  93. О.П., Проскурина О. Б., Жинкина И. А. Способ окраски препаратов эмбриологических структур растений. А.С. № 1 631 424// Бюлл. изобр. 1991. № 8.
  94. А.С. К формообразующей роли апомиксиса // Современные проблемы филогении растений. М: Наука, 1986. С. 48—49.
  95. А.С. Половое размножение, агамоспермия и видообразование у цветковых//Журн. общ. биол. 1998. Т. 59, № 2. С. 171−191.
  96. А.С. Апомиксис как неустойчивая система размножения и проблема видообразования у покрытосеменных // Материалы X Московского совещания по филогении растений. М.: МОИП, 1999а. С. 86—88.
  97. А.С. Генетический контроль гаметофитного апомиксиса и проблема хромосомной нестабильности геномов у покрытосеменных // Генетика. 19 996. Т. 35, № 8. С. 1041−1053.
  98. А.С. Семенная продуктивность апомиктов // Эмбриология цветковых растений: Терминология и концепции. Т. 3. Системы репродукции. С. Пб: Мир и семья, 2000а. С. 266−270.
  99. А.С. Геномная изменчивость, гибридогенез и возможности хромосомного видообразования при гаметофитном апомиксисе // Успехи соврем. биол. 20 006. Т. 120, № 5. С. 501−511.
  100. А.С. Проблема вида и видообразования при гаметофитном апомиксисе как неустойчивой системе семенного размножения // Ботан. журн. (в печати).
  101. А.С., Куприянов П. Г. Апомиксис в эволюции цветковых растений. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1993. 196 с.
  102. А.С., Силкин М. А., Давоян Н. И. Гиногенез in vitro как модельная система для изучения активации мегагамет // Апомиксис у растений: состояние проблемы и перспективы исследований / Под ред. Тырнова B.C. и др. Саратов, 1994. С. 76—78.
  103. А.С., Чернышева М. П. Частота апомиксиса в популяциях некоторых видов Taraxacum и Hieracium И Бот. журн. 1997. Т.82, № 9. С. 14—24.
  104. А .С., Шишкинская Н. А. Апомиксис. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1999. 102 с.
  105. А.С., Костючкова М. К., Чернышова М. П., ДавоянН.И. До-ращивание незрелых зародышей и получение регенерантов межвидовых гибридов проса in vitro // Сельскохозяйственная биология. 1999а. № 1. С. 63—67.
  106. А.С., Костючкова М. К., Калинина И. В., Блюднева Е. А. Эмбриологическое изучение межвидовых гибридов проса (Panicum miliaceum х P. coloratum, Poaceae) // Бот. журн. 19 996. Т. 84, № 3. С. 67—73, 168—169.
  107. А.С., Чернышова М. П., Сенников А. Н., Отькало О. В., Тито-вец В.В. Потенциал формообразования агамного комплекса Pilosella. 1. Базовые таксономические виды // Бот. журн. 1999 В. Т. 84, № 4. С. 25—38.
  108. А.С., Залесная С. В., Титовец В. В., Киреев Е. А. Потенциал формообразования агамного комплекса Pilosella. 2. Естественные межвидовые гибриды // Бот. журн. 2000а. Т. 85, № 3. С. 1−13.
  109. А.С., Залесная С. В., Титовец В. В. Потенциал формообразования агамного комплекса Pilosella. 3. Геномная изменчивость в популяциях и потомстве отдельных растений // Бот. журн. 20 006. Т. 85, № 12. С. 13−28.
  110. А.С., Блюднева Е. А., Силкин М. А. Активация мегагамет и регуляция эмбриогенеза в культуре in vitro неоплодотворённых завязей проса посевного// Физиология растений. 2000 В. Т. 47, N 2. С.291−301.
  111. А.С., Демочко Ю. А., Мартынова B.C. Кариотипическая изменчивость в популяциях апомиктичных и половых видов агамных комплексов Asteraceae // Ботан. журн. 2003а. Т. 88, № 9. С. 35−54.
  112. А.С., Демочко Ю. А., Семенная продуктивность в апомиктичных и половых популяциях некоторых видов Asteraceae // Ботан. журн. 20 036. Т. 88, № 8. С. 42−56.
  113. Козо-Полянский Б.М. К вопросу о филогенетическом значении апомиксиса// Ботан. журн. 1948. Т. 33, № 1. С. 123—127.
  114. Комаров B. J1. Учение о виде у растений. JL, 1940. 212 с.
  115. Конспект флоры Саратовской области. Ч. 3. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1983. 108 с.
  116. В.А. Перенос информации в биосфере и возможное эволюционное значение этого процесса // Успехи соврем, биологии. 1976. Т. 81, Вып. 2. С. 51—67.
  117. КорочкинЛ.И. Генетика развития и некоторые молекулярные моменты эволюции (гипотеза) // Молекулярная генетика и биофизика. Киев: Вища шк., 1984. Вып. 9. С. 75—82.
  118. А.И., Кику В. Н. Цитоэмбриология томата. Кишинев, 1986. 230 с.
  119. В.А. Теория эволюции: необходимость нового синтеза // Эволюционные исследования. Макроэволюция. Владивосток, 1984. С. 4−12.
  120. В.А. Нерешённые проблемы теории эволюции. Владивосток, 1986. 138 с.
  121. В. А. Происхождение и ранняя эволюция цветковых растений. М.: Наука, 1989. 263 с.
  122. П.Г. Некоторые возможности использования понятия «система семенного размножения» у цветковых растений // Седьмой Всесо-юзн. симпозиум по эмбриологии растений. Тезисы докладов. Киев, 1978. Ч. 3. С. 47−50.
  123. П.Г. Способ приготовления препаратов зародышевых мешков. А. с. № 919 636 // Бюлл. изобр. 1982. № 14. С. 7.
  124. П.Г. Соотносительная роль факторов, вызывающих появление дефектных пыльцевых зёрен у растений в природе // Апомиксис и цитоэмбриология растений. Саратов: Изд-во Саратовского ун-та. 1983. Вып.5. С.3−33.
  125. П.Г. Таксономический полиморфизм и проблема эволюционной ценности апомиксиса // Современные проблемы филогении растений. М: Наука, 1986а. С. 43—45.
  126. П.Г. Роль апомиктичных родовых комплексов во флорах и эволюционное значение апомиксиса у цветковых // Источники информации в филогенетической систематике растений. М: Наука, 19 866. С. 38—40.
  127. П.Г. Диагностика систем семенного размножения в популяциях цветковых растений. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1989. 160 с.
  128. Куприянова J1.A. Генетическое разнообразие гибридных однополых видов и форм рода Lacerta (Lacertidae, Reptilia): его возможные цитогенети-ческие механизмы, цитогенетика мейоза природных полиплоидных форм // Цитология. 1999. Т. 41, № 12. С. 1038−1047.
  129. К.К., Амбегаокар К. Б. Полиэмбриония // Эмбриология растений: использование в генетике, селекции, биотехнологии: в 2 томах. Т. 2. М.: Агропромиздат, 1989. С. 5−38.
  130. Р.Е. Об эволюционных предпосылках апомиксиса у покрытосеменных // Бюлл. Моск. о-ва испыт. природы. Отд. биол. 1972. Т. 77, вып. 2. С. 70—75.
  131. Р.Е. Репродуктивная биология семенных растений. М: Наука, 1981.96 с.
  132. Е. В. Генетика изоферментов растений. Новосибирск: Наука, 1986. 144 с.
  133. Левонтин. Генетические особенности эволюции. М.: Мир, 1978.
  134. Т.Г. Род. Хондрилла Chondrilla L. И Флора СССР. М.-Л.: Наука, 1964. С. 560−586.
  135. Т.Г. Хондрила Chondrilla L. // Флора Европейской части СССР. Ленинград: Наука, 1989. Т. 8. С. 57 — 61.
  136. ЛейпольдМ., Шмидтке И. Экспрессия генов у филогенетических полиплоидных организмов // Эволюция генома. М: Мир, 1986. С. 217—233.
  137. А.П., Чеснокова С. В. Способ получения препаратов зародышевых мешков у растений. А. с. № 1 454 309 // Бюлл. изобр. 1989. № 4.
  138. Л.П. Модификационная изменчивость макрогаметофи-тогенеза табака, индуцированная температурой. Дисс. канд. биол. наук. Саратов, 1991. 207 с.
  139. Г. Ю. Архетип, стиль и ранг в биологической систематике. М. КМК Ltd, 1996. 436 с.
  140. П.Ф. Флора средней полосы Европейской части СССР. М-Л., 1940. 826 с.
  141. Э. Систематика и происхождение видов. М.: Иностр. лит-ра, 1947. 504 с.
  142. Э. Популяции, виды и эволюция. М: Мир, 1974. 460 с.
  143. С.И., Малецкая Е. И. Самофертильность и агамоспермия у сахарной свёклы (Beta vulgaris L.) II Генетика. 1997. Т. 32, № 12. С. 1643— 1650.
  144. С.И., ЛевитесЕ.В., Малецкая Е. И., Овечкина О. Н. Автосегрегация и сцепленное наследоапние в агамоспермных потомствах сахарной свёклы {Beta vulgaris L.) И Генетика. 1998. Т. 34, № 4. С. 520—527.
  145. Г. Диск-электрофорез. Теория и практика электрофореза в полиакриламидном геле. М: Мир, 1971. 247 с.
  146. Е.Я. Изучение апомиктов природной флоры // Растительные богатства Сибири. Новосибирск, 1971. С. 162—169.
  147. Е.Я., Аврасина И. В. Кариологический полиморфизм сибирских биотипов мятлика лугового Роа pratensis II Генетикаю 1975. Т. 11, № 3. С. 45−49.
  148. Е.Я., Новосёлова А. Н., Саврова O.K., Пеккер Е. Г. Характеристика биотипов Роа pratensis L. II Декоративные растения и их интродукция в Западную Сибирь. Новосибирск, 1977. С. 149−157.
  149. А.А. Некоторые аспекты генетики современных и древних популяций Сибири // Вопр. антропологии. 1973. Вып. 45. С. 77—84.
  150. С.К., Азимова Е. Д., Колумбаева С. К., Ереженов А. Е., Рахимбаев И. Р. Культивирование неоплодотворённых завязей пшеницы // Матер. Всесоюзн. науч. конф. по с-х. биотехнологии, Целиноград, 25— июня, 1991. Целиноград, 1991а. С. 62—63.
  151. С.К., Ереженов А. Е., Рахимбаев И. Р. Нуцеллярная и интегументальная эмбриония в культуре неоплодотворённых завязей пшеницы // Изв. Каз. ССР. Сер. биол. 19 916. № 2. С. 84—85.
  152. Мэйнард Смит Дж. Эволюция полового размножения. М: Мир, 1981.272 с.
  153. В.И. Учение о макроэволюции. На путях к новому синтезу. М: Наука, 1991.288 с.
  154. С.А. Род Hieracium L. Ястребинка // Флора Юго-Востока Европейской части СССР. Вып. VI. Pirolaceae -Compositae. Л., 1936. С. 475 483.
  155. Г. А. Гаметофитный апомиксис // Эмбриология растений: использование в генетике, селекции, биотехнологии. М.: Агропромиздат, 1990. С. 39−91.
  156. Оно С. Генетические механизмы прогрессивной эволюции. М: Мир, 1973. 228 с.
  157. М.К. Культура неоплодотворённых завязей и семяпочек: возможности и перспективы // Сельскохозяйственная биология. 1987. № 1. С. 27—33.
  158. А.Г. Практикум по цитологии растений. М., 1980. 304 с.
  159. Д.Ф. Генетически регулируемый апомиксис. Новосибирск, 1964. 187 с.
  160. Д.Ф. Генетические основы апомиксиса. Новосибирск: Наука, 1979. 278 с.
  161. Д.Ф. Апомиксис в природе и опыте. Новосибирск: Наука, 1988. 214 с.
  162. Поддубная-Арнольди В. А. Эмбриологический метод в систематике покрытосеменных растений // Изв. Ассоциации н.-и. ин-тов при Моск. ун-те. 1930. Т. 3,№ 1-а. С. 62—101.
  163. Поддубная-Арнольди В. А. Развитие пыльцы и зародышевого мешка у межвидовых гибридов в роде Taraxacum II Докл АН СССР. 1939а. Т. 24, № 4. С. 376−379.
  164. Поддубная-Арнольди В. А. Эмбриогенез при отдалённой гибридизации в роде Taraxacum И Докл АН СССР. 19 396. Т. 24, № 4. С. 380−383.
  165. Поддубная-Арнольди В. А. Цитоэмбриология покрытосеменных растений. М.: Наука, 1976. 507 с.
  166. В.В. Фитогормоны. JL, 1982. 249 с.
  167. В.В., Саламатова Т. С. Физиология роста и развития растений. Ленинград: Изд-во ЛГУ, 1991. 239 с.
  168. В.В. Изучение индуцированного апомиксиса у тыквенных культур // Апомиксис и цитоэмбриология растений. Саратов: Изд-во. Сарат. ун-та, 1978. Вып. 4. С. 99—100.
  169. М.Г. Филогения, флорогенетика, флорография, систематика: Избр. тр. в 2-х ч. Киев: Наук, думка, 1983. Ч. 2. С. 281—479.
  170. С.В., Тупицына Н. Н. Полиплоидные комплексы в роде Hieracium L. (Asteraceae) // Turczaninowia. 2000. Т. З, Выл. 4. С. 79−81.
  171. В.А., Васильева Л. А. Роль мобильных генетических элементов в микроэволюции // Генетика. 1992. Т. 28, № 2. С. 5—17.
  172. П., Эверт Р., Айкхорн С. Современная ботаника. Т. 1. М.: Мир, 1990. 348 с.
  173. Р., МихаэлисА. Генетический и цитогенетический словарь. — М.: Колос, 1967.
  174. Рис Г., Дженкинс Дж., Хатчинсон Дж. О генотипических эффектах изменений ДНК // Эволюция генома. М: Мир, 1986. С. 281—290.
  175. Г. С., Кольцова А. С., Мосолкова И. М. Индуцированный апомиксис у луковичных на примере тюльпана // Сб. науч. тр. Никитск. Бот. сада. 1983. Т. 91. С. 102−113.
  176. О.И. Развиток насшних зачатюв у плодах партенокар-тчных форм помидор1 В // Укр. бот. журн. 1959. Т. 16. N 1. С. 44−56.
  177. Ю.Г. Система древних изолятов человека в Северной Азии в свете проблем стабильности и эволюции популяций // Вопр. антропологии. 1973. Вып. 44. С. 3—22.
  178. З.М. Эволюционное значение апомиксиса. Л: Наука, 1989. 154 с.
  179. Р., Кофмен Т. Эмбрионы, гены и эволюция. М: Мир, 1986. 402 с.
  180. М.И. Морфология семяпочек покрытосеменных растений. Л., 1973. 112 с.
  181. Р.И. Молекулярные механизмы стресс-индуцируемой наследственной изменчивости //Генетика. 1987. Т. 23, № 6. С. 1050−1063.
  182. В.Н., Голубинский И. Н. Апомиксис и партенокарпия в роде Pyrus (Rosaceae) и возможности их гормональной регуляции // Тез. докл. VII съезда ВБО, Донецк, 11—13 мая 1983. Л., 1983. С. 267—268.
  183. В.Н., Кривенцов В. И., Ядров А. А., Шолохова В. А., Ка-зас А.Н. Стимулятор апомиксиса цветковых растений. А.С. № 1 323 048// Бюлл. изобр. 1985. № 26.
  184. Г. В. Получение наследственных изменений у тлей при перемене кормовых растений // Журн. общ. биологии. 1951. Т. 12, № 3. С. 176—191.
  185. К.Н., Беков А.А.-Х., Рахимбаев И. Р. Изоферменты в хе-мосистематике высших растений. Алма-Ата: Наука, 1982. 160 с.
  186. A.M., Бормотов В. Е. Характерная особенность регенерации при гиногенезе у сахарной свёклы // Докл. АН Беларуси. 1994. Т. 38. С. 57—59.
  187. А.Н. Морфологические закономерности эволюции. М., Л., 1939. 607 с.
  188. А.С. Введение в теорию эволюции. М.: Изд-воМГУ, 1981.318с.
  189. А.С. Многозародышевость семян и селекция. Ч. 1. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1983. 84 с.
  190. А.Н. Валидизированные номенклатурные комбинации в роде Hieracium (Asteraceae), первоначально недействительно обнародованные, А .Я. Юксипом // Ботан. журн. 1998. Т. 83, № 2. С. 68—79.
  191. СкаукрофтУ.Р. Сомаклональная изменчивость: миф о клональ-ном единообразии // Мобильность генома растений. М.: Агропром-издат, 1990. С. 228—260.
  192. Словарь ботанических терминов. Киев: Наук, думка, 1984. 308 с.
  193. В.А., Киндигер Б., Дивальд Ч., Хатыпова И. В. Сравнительный анализ апомиктического размножения у кукурузно-трипсакумных гибридов и трипсакума ежевидного // Докл. АН (Россия). 1996. Т. 346, № 6. С. 845−847.
  194. А.П. Полиплоидия среди цветковых растений разных ландшафтов СССР // Труды Ленингр. о-ва естествоиспытателей. Т. 75, вып. 3. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1982. С. 1—128.
  195. С.П., Федотова Ю. С., Смирнов В. Г., Михайлова Е. И., Богданов Ю. Ф. Изучение генетического контроля мейоза у ржи // Генетика. 1994. Т. 30, № 8. С. 1043—1056.
  196. Сравнительная эмбриология цветковых. Т. 1—5. Л.: Наука, 1981— 1990.
  197. Дж.Л., Айала Ф. Х. Эволюция дарвинизма // В мире науки. 1985. № 9. С. 13—39.
  198. В.Н. Реорганизация структуры интерфазных ядер в онто- и филогенезе малярийных комаров // Докл. АН СССР. 1979. Т. 249, № 5. С. 1231.
  199. В.Н. Эволюционное значение хромосомных инверсий // Журн. общ. биологии. 1984. Т. 45, № 1. С. 3—15.
  200. В.Н. Системная реорганизация генома при видообразовании // Проблемы генетики и теории эволюции. Новосибирск, 1991. С. 242— 252.
  201. В.Н. Архитектоника генома, системные мутации и эволюция. Новосибирск: Изд-во Новосиб. ун-та, 1993. 110 с.
  202. Л.А. ДНК низших и высших организмов—два пути эволюции?//Успехи соврем, биологии. 1991. Т. 111, Вып. 4. С. 519—531.
  203. С.И. Основы экспериментального мутагенеза. Киев: Ви-ща школа, 1981.
  204. В.А. Развитие исследований Б.Л. Астаурова по искусственным способам размножения и регуляции пола у тутового шелкопряда // Биология развития и управление наследственностью. М.: Наука, 1986. С. 26—38.
  205. Е., Саура А., Локки Ю. Полиморфизм генов и эволюция партеногенетических насекомых // Проблемы экспериментальной биологии. М.: Наука, 1977. С. 7−20.
  206. В.В. Биологический прогресс и природа генетических рекомбинаций. М.: Наука, 1992. 135 с.
  207. В.В. Возможная функция и происхождение кроссинго-вера // Генетика. 1998. Т. 34, № 4. С. 453—461.
  208. Л.П. Сальтационизм в современных теориях эволюции // Дарвинизм: история и современность. Л.: Наука, 1988. С. 108—123.
  209. А.Л. Макроэволюционные процессы в истории растительного мира//Бот. журн. 1983. Т. 68, № 12. С. 1593—1603.
  210. А.Л. Система магнолиофитов. Л.: Наука, 1987. 439 с.
  211. Терёхин Э. С. Репродуктивная биология сорных заразиховых. Л.: Наука, 1988. 143 с.
  212. Э.С. Семя и семенное' размножение. Санкт-Петербург, 1996а. 377 с.
  213. Э.С. Гаметофитный апомиксис у Potamogeton obtusifolius (Potamogetonaceae) // Ботан. журн. 19 966. Т. 81, № 2. С. 37−47.
  214. Э.С., Чубаров С. И., Романова В. О. К антэкологии видов Potamogeton (Potamogetonaceae). Способы опыления и системы скрещивания //Ботан. журн. 1997. Т. 82, № Ю. С. 14−25.
  215. Тимофеев-Ресовский Н.В., Воронцов Н. Н., Яблоков А. В. Краткий очерк теории эволюции. М., 1977. 297 с:
  216. В.Н. Некоторые особенности систематики облигатных апомиктов на примере рода Alchemilla L. II Совещание по объёму вида и внутривидовой систематики. JL, 1967. С. 60−61.
  217. В.Х. Анатомия и морфология растений. 2е изд. М.: Высшая школа, 1980. 317 с.
  218. Е.И. Апомиксис у подсолнечника // Апомиксис и селекция. М.: Наука, 1970. С. 110−116.
  219. .П. Физиологическая структура популяции, возникающая в процессе термального отбора//Генетика. 1982а. Т. 18, № 5. С. 773—781.
  220. .П. Эволюционное значение температурных адаптаций животных// Успехи соврем, биологии. 19 826. Т. 93, Вып. 2. С. 302—319.
  221. .П. Физиологический анализ изменений приспособленности особей в онтогенезе и селективного преимущества гетерозигот // Журн. общ. биологии. 1984. Т. 45, № 5. С. 602—614.
  222. К., Пэйл ван дер Л. Основы экологии опыления. М.: Мир, 1982.390 с.
  223. Р. Амплификация, делеция и перегруппировка последовательностей: основные источники изменчивости в процессе дивергенции видов // Эволюция генома. М: Мир, 1986. С. 291—312.
  224. Р. Повторяющиеся последовательности и изменения генома//Мобильность генома. М: Агропромиздат, 1990. С. 146—164.
  225. П. Ферменты: четвертичная структура и надмолекулярные комплексы. М.: Мир, 1986. 374 е.
  226. Н.П. Семенное размножение Taraxacum officinale Wigg. в различных природных фитоценозах // Репродуктивная биология растений на Севере. Сыктывкар, 1999. С. 63−74.
  227. Р.Б. Непостоянство генома. М: Наука, 1985. 472 с.
  228. Хон Б., Деннис Э. Предисловие к английскому изданию // Мобильность генома растений. М: Агропромиздат, 1990. С. 7—8.
  229. С.С. Бесполосеменные растения // Учён. зап. Сарат. ун-та, 1946. Т. 16, вып. 1.С. 3—74.
  230. С.С. Перспективы эволюции высших растений // Учён. зап. Сарат. пед. ин-та, 1950. Т. 11. С. 3—197.
  231. С.С. Полиплоидия и апомиксис у покрытосеменных растений // Полиплоидия и селекция. М.- Л., 1965. С. 62—69.
  232. С.С. Апомиксис: классификация и распространение у покрытосеменных растений // Успехи современной генетики. Вып 1. М: Наука, 1967. С. 43—105.
  233. С.С. Эволюционно-генетические проблемы апомиксиса у покрытосеменных растений // Апомиксис и селекция. М: Наука, 1970. С. 7— 21.
  234. С.С., Гришина Е. В., Зайцева М. И., Тырнов B.C., Малышева-Шишкинская Н.А. Гаплоидия у покрытосеменных растений. Ч. 1. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1970. 137 с.
  235. С.С., Зайцева М. И. Опыт определения количества апомик-тических видов во флоре окрестностей Саратова антморфологическим методом // Апомиксис и цитоэмбриология растений. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1971. Вып. 2. С. 25−40.
  236. С.С., Зайцева М. И., Куприянов П. Г. Выявление апомиктичных растений во флоре цветковых растений СССР. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1978.224 с.
  237. Хромосомные числа цветковых растений. 1969. 926 с.
  238. М.И., Банникова В. П. Цитоэмбриологические основы несовместимости при отдаленной гибридизации покрытосеменных растений // Цитология и генетика. 1968. Т. II. N 2. С. 152−164.
  239. Н.Н. Система злаков (Роасеае) и их эволюция. JI: Наука, 1987. 76 с.
  240. Н.Н. Одуванчик -Taraxacum Wigg. // Флора Европейской части СССР. Т. 8. Л., 1989. С. 61−114.
  241. М.И., Ишин А. Г. Сравнение способов колхицинирования растений (на примере злаков) с точки зрения эффективности воздействия (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 1999. № 5. С. 5−12.
  242. ЧеботарьА.А. Эмбриология кукурузы. — Кишинёв: Штиинца, 1972.384 с.
  243. А.А. Просо — Panicum L. // Эмбриология зерновых, бобовых и овоще-бахчевых возделываемых растений. Кишинёв, 1987а. С. 44—48.
  244. ЧеботарьА.А. Кукуруза— Zea mays L. II Эмбриология зерновых, бобовых и овощебахчевых возделываемых растений. — Кишинёв: Штиинца, 19 876. С. 15—24.
  245. Н.Б., Емельянова О. В. Роль отдалённой гибридизации в возникновении однополо-женских комплексов у рыб // Биология развития и управление наследственностью. М.: Наука, 1986. С. 82—105.
  246. Числа хромосом цветковых растений флоры СССР. Асегасеае -Menyanthaceae. Л.: Наука, 1990. 509 с.
  247. Г. Х. Морфологическая дивергенция и конвергенция в эксперименте с тлями (Homoptera, Aphidiidea) // Энтомол. обозр. 1965. 44. С. 3—25.
  248. Г. Х. Динамика клонов, популяций и видов и эволюция // Журн. общ. биологии. 1978. Т. 39, № 1. С. 15—33.
  249. И.А. Стресс как экологическое явление // Зоол. журн. 1984. Т. 63, № 6. С. 805−812.
  250. М.А. Индивидуальное развитие и эволюционная теория // Эволюция и биоценотические кризисы. М.: Наука, 1987. С. 76−123.
  251. Р.Н. Ястребиночка Pilosella Hill. II Флора Европейской части СССР. Т. 8. Л., 1989. С. 300−377.
  252. И.И. Кибернетические вопросы биологии. Новосибирск: Наука, 1968. 223 с.
  253. Е.Г. Закономерности всречаемости нуклеотидов с 5'-стороны от кодонов в генах Escherichia coli // Молекулярная биология. 1985. Т. 19. С. 1086—1091.
  254. Эволюция генома / Ред. Доувер Г., Флейвелл Р. М: Мир, 1986. 368 с.
  255. Л.А. Модификация систем размножения растений на основе методов культуры in vitro (на примере сорго) / Дисс.. докт. биол. наук. 1998. 276 с.
  256. Энциклопедия Саратовского края. Саратов: Приволжское кн. изд-во, 2002. 688 с.
  257. Г. А. Антропосоциогенез: философские и психологические аспекты. М.: Знание, 1982. 64 с.
  258. О.И., Лобанова Л. П. Пролиферация эндотелия: причины и последствия // Ботан. журн. 2000. Т.85, № 11. С. .
  259. С.В. Апомиксис и эволюция // Науч. сессия ЛГУ 1946 г.: Тез. докл. по секции биол. наук. Л., 1946. С. 8—13.
  260. А.Я. Род Hieracium L. И Флора СССР. Т. 30. М.-Л., 1960. С. 9—698.
  261. В.Е., Яаска В. Х. Электрофоретический анализ ферментов гексаплоидных тритикале и их родительских видов // Физиол. и биохим. культурных растений. 1976. Т. 8, вып. 2. С. 142−147.
  262. А.В., Юсуфов А. Г. Эволюционное учение. М.: Высш. шк., 1989. 335 с.
  263. Akerberg Е. Cytogenetic studies in Роа pratensis and its hibrid with Poa alpina II Hereditas. 1941. Vol. 28. P. 1−126.
  264. Akerberg E., Bingefors S. Progeny studies in the hybrid Poa pratensis x Poa alpina I I Hereditas. 1953. Vol. 39. P. 125−136.
  265. Akhter S., Morita Т., Yoshida Y., Clonal diversity in the aga-mospermous polyploids of Taraxacum hondoense in nortern Honshu, Japan // J. Plant Res. 1993.Vol. 106, P. 167−179.
  266. Allard R. W. Genetic systems with colonizing ability in predominantly self-pollinated species // The genetics of colonizing species. Academic Press, London, UK, 1965. P. 49−75.
  267. Almgard G. Experiments with Poa. Ill // Ann. Agric. Coll. Sweden. 1966. № 3. P. 3—64.
  268. Anderson E. Origin of the Angiosperms // Nature. 1934. Vol. 139. P. 462.
  269. Anderson E. Introgressive hybridization // Biol. Reviews. 1953. V. 28. P. 280—307.
  270. Asker S. Apomixis and sexuality in the Potentilla argentea complex. I-III // Hereditas. 1970a. Bd. 66, H. 1. S. 127−143- 1970 b. Bd. 66, H. 2. S. 189−204- 1971. Bd. 67, H. l.S. 111−142.
  271. Asker S. Progress in apomixis research // Hereditas. 1979. Bd. 66, H. 2. S. 231—240.
  272. Asker S.E., Jerling L. Apomixis in Plants. Boca Raton: CRC Press, 1992. 298 p.
  273. Asselin de Beauville M. Obtention d’haploides in vitro a partir d’ovaries non fecondes de riz, Oryza sativa L. II CR Acad Sci (Paris). 1980. 290 D. P. 489— 492.
  274. AyalaF.J. Molecular evolution. Sinauer, Sunderland, Mass., 1976. 177 p.
  275. Averett J.E. Polyploidy in Plant taxa: Summary // Polyploidy in Plant, biological relevance. New York, 1980. P. 269—273.
  276. Babcock E.B., Stebbins G.L. The American species of Crepis. Their interrelationships and distribution as affected by polyploidy and apomixis. Washington. 1938. Carnegie Iant. Publ. N 504. 199 p.
  277. Baker H. G. Self-compatibility and establishment after long-distance dispersal // Evolution. 1957. Vol. 9. P. 347.
  278. Bantin J., Matzk F., Dresselhaus T. Tripsacum dactyloides (Poaceae): a natural model system to study parthenogenesis // Sex Plant Reprod. 2001. Vol. 14. P. 219−226.
  279. Bara J.J. Reproduction —a factor of plant evolution // Acta Soc. bot. pol. 1989. Vol. 58, № 1. P. 127—139.
  280. Bara J.J. Apomixis, species, and evolution // Apomixis Newsletter. 1999. N 11. P. 4−5.
  281. S. С. H., Richardson B. J. Genetic attributes of invading species // Ecology of biological invasions: an Australian perspective. Australian Academy of Science, 1986. P. 21−33.
  282. S. С. H., Husband B. The genetics of plant migration and colonization // Plant population genetics, breeding, and genetic resources. Sinauer, Sunderland, Massachusetts, USA, 1990. P. 254−277.
  283. Bashaw E.C., Hanna W.W. Apomictic reproduction // Reproductive Ver-sality in the Grasses. Cambridge Univ. Press. 1990. P. 100—130.
  284. BattagliaE. Ricerche cariologiche ed embriologishe sul genere Rud-beckia (Asteraceae). VI. Apomissia in Rudbeckia speciosa // Nuova G. Bot. Ital. (NS). 1946. Vol. 53. P. 483—511.
  285. Battaglia E. L’alterazione della meiosi nella reproduzione apomittica di Erigeron karwinskianus DC. var. mucronatus DC. И Caryologia. 1950. N 2. P. 165−204.
  286. Battaglia E. Apomixis // Recent advances in the embryology of Angio-sperms. Delhy, 1963. 467 p.
  287. Battjes J., Menken S.B.J., Den Nus J.C.M. Clonal diversity in some mi-crospecies of Taraxacum sect. Palustria (Lindb. fil.) Dahlst. from Czechoslovakia II hot Jb. Syst. 1992. Vol. 114. P. 315−328.
  288. Batygina T.B. A new approach to the system of reproduction in flowering plants // Phytomorphology. 1989. Vol. 39, N 4. P. 311−325.
  289. Bayer RJ. Patterns of clonal diversity in geographically marginal populations of Antennaria rosea (Asteraceae: Inuleae) from subarctic Alaska and Yu-con territory // Bot. Gaz. 1991. 152. P. 486—^93.
  290. Bayer R.J. Evolution of polyploid agamic complexes with examples from Antennaria (Asteraceae) // Opera Bot. 1996. Vol. 132. P. 53−65.
  291. Bayer R.J., Stebbins G.L. Chromosome numbers, patterns of distribution, and apomixis in Antennaria (Asteraceae: Inuleae) // Syst. Bot. 1987. Vol. 12, № 2. P. 305—319.
  292. Bayer R., Ritland K., Purdy B. Evidence of partial apomixis in Antennaria media (Asteraceac: Inuleae) detected by the segregation of genetic markers //Botany. 1990. Vol. 77, № 8. P. 1078−1083.
  293. Belous V.E., Berdychev A.G., OleynikN.A., Perphilyeva L.P. Sugar Beet Development During Cultivation of Isolated Ovules in Vitro // Proceeding of the XI Int. Symp. and Seed Reproduction". St. Peterburg, 1992. P. 71—72.
  294. Bengtsson B.O., Ceplitis A. The balance between sexual and asexual reproduction in plants living in variable environments // J. Evol. Biol. 2000. Vol. 13. P. 415−422.
  295. Bergman B. Meiosis in two different clones of the apomictic Chondrilla juncea II Hereditas. 1950. Vol. 36. P. 297−320.
  296. Bernstein H., ByerlyH.C., HorfF.A., Michod R.E. Origin of sex //J. Teor. Biol. 1984. Vol. 110. P. 323—351.
  297. Berthaud J., Barre M., Savidan Y. The diversity of agamic species Trip-sacum in Mexico // Harnessing apomixis: a new frontier in plant science / Abstracts of 1st International converence. September, 24—27, 1995, Texas, USA. Texas, 1995. P. 25.
  298. Bicknell R.A., Borst N.K. Agrobacterium-mediated transformation of Hieracium aurantiacum И Int. J. Plant Sci. 1994. Vol. 155, № 4. P. 467—^70.
  299. Bicknell, R.A., Borst, N.K., and Koltunow, A.M. Monogenic inheritance of apomixis in two Hieracium species with distinct developmental mechanisms // Heredity. 2000. Vol. 84. P. 228−237
  300. Bierzychudek P. Patterns in plant parthenogenesis // Experientia. 1985. Vol.41. P. 1255−1264.
  301. Birari S.P. Apomixis and sexuality in Themeda Forssk. at different ploidy levels (Graminae) // Genetica (Ned), 1980. V.54, № 2. P. 133−139.
  302. Blakey C.A. A molecular map in Tripsacum dactyloides, eastern gama-grass. Ph.D. dissertation, University of Missouri, Columbia (dissertation № 9 412 465). 1993.
  303. Bocher T.W. Cytological and embryological studies in the amphi-apomictic Arabis Holboellii complex // Kgl. danske vidensk selsk biol. scr. 1951. Bd. VI, N7. P. 1−59.
  304. Bohanes В., Jakse M., Ihan A., Javornik B. Studies of Gynogenesis in Onion {Allium сера L.) — Induction Procedures and Genetic Analysis of Regener-ants // Plant Science. 1995. Vol. 104. P. 215—224.
  305. Bremer G. Problems in breeding and cytology of sugar cane. VI. Additional contemplations on fertilization and parthenogenesis in Saccharum II Euphytica. 1963. Vol. 12. P. 178—188.
  306. Britten R.J., Davidson E.N. DNA sequence arrangement and preliminery evidence on its evolution //Fed. Proc. 1976. Vol. 35, № 10. P. 2151—2157.
  307. Brix K. The influence of the daylength on the relationship of sexual and asexual embryosacs in Eragrostis curvula (Schrad.) Necs. I I Proc. 6th Congr. South African Genet. Soc. Pretoria. 1977.
  308. Burger R. Evolution of Genetic Variability and the Advantage of Sex and Recombination in Changing Environments // Genetics. 1999. Vol. 153. P. 1055−1069.
  309. Camilo L., Quarin C.L. Effect of pollen source and pollen ploidy on endosperm formation and seed set in pseudogamous apomictic Paspalum notatum II Sexual Plant Reproduction. 1999. Vol. 11, № 6. P. 331−335.
  310. Campbell M.N., Delfosse E.S. The biology of Australian weeds. 13. Hypericum perforatum L. И Aust. Inst. Agric. Sci. 1984. Vol. 50. P. 63−73.
  311. Cambbel C.S., Dickinson T.A. Apomixis, patterns of morphological variation, and specien concepts in subfam. Maloideae (Rosaceae) // Syst. Bot. 1990. Vol. 15, N 1. P. 124−135
  312. Campbell C.S., Alice L.A., Wright W.A. Comparisons of within-population genetic variation in sexual and agamospermous Amelanchier (Rosaceae) using RAPD markers // Plant systematics and evolution. 1999. Vol 215. N 1−4. P. 157−167.
  313. Campion В., Alloni С. Induction of haploid plants in onion {Allium сера L.) by in vitro culture of unpollinated ovules // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1990. Vol. 20. P. 1—6.
  314. Campion В., Assimonty M.T., Vicini E., Schiavi M. Advances in haploid plant induction in onion {Allium сера L.) through in vitro gynogenesis // Plant Sci. 1992. Vol. 86. P. 97−104.
  315. Cappadocia ML, Chretien L., Laublin G. Production of Haploids in Ger-bera jamesonii via Ovule Culture: Influence of Fall Versus Spring Sampling on Callus Formation and Shoot Regeneration // Can. J. Bot. 1988. Vol. 66. P. 1107— 1110.
  316. Carman J.G. Asynchronous expression of duplicate genes in angio-sperms may cause apomixis, bispory, tetraspory, and polyembryony // Biol. J. Linn. Soc. 1997. Vol. 61. P. 51−94.
  317. Carman J.G. The evolution of gametophytic apomixis // Эмбриология цветковых растений: терминология и концепции. В Зх томах. Т. 3. Системы репродукции. Санкт-Петербург, 2000. С. 218−245.
  318. Carman, J.G. The gene effect: Genome collision and apomixes // The Flowering of Apomixis: From Mechanisms to Genetic Engineering / Y. Savidan, J.G. Carman, T. Dresselhaus, eds. Mexico, D.F.: CIMMYT, IRD, European Commission DG VI, 2001. P. 95−110.
  319. Carman J.V., Crane C.V., Riera-Lizarazu O. Comparative histology of cell walls during meiotic and apomeiotic megasporogenesis in two hexaploid Australasia Elymus species // Crop Sci. 1991. Vol. 31. P. 1527—1532.
  320. Carson H.L. Selection for parthenogenesis in Drosophila mercatorum II Genetics. 1967. Vol. 55. P. 157—171.
  321. Carson H.L. The genetics of speciation at the diploid level // Amer. Nat. 1975. Vol. 109, № 965. P. 83—92.
  322. Carson H.L. Speciation as a mayor reorganisation of polygenic balances // Mechanisms of Speciation. Liss., 1982. P. 411—433.
  323. Case T.J., Taper M.L. On the coexistence and coevolution of asexual and sexual competitors // Evolution (USA). 1986. Vol. 40, № 2. P. 366—387.
  324. Castillo A.M., Cistue L. Production of Gynogenic Haploids of Hordeum vulgare II Plant Cell Reports. 1993. Vol. 12. P. 139—143.
  325. Chapman H.M., Parh D., Oragisie N. Genetic structure and colonizing success of a clonal, weedy species, Pilosella officinarum (Asteraceae) // Heredity. 2000. Vol. 84. P. 401−409.
  326. H., Brown Je. «Thawing» of «frozen» variation in an adven-tive, facultatively apomictic, clonal weed // Plant Species Biology. 2001. Vol. 16, N2. P. 107−118.
  327. Charles worth B. The evolution of sex and recombination // Trends Ecol. Evol. 1989. Vol. 4. P. 264—267.
  328. Christoff M. Die genetische Grundlage der apomiktischen Fortpflanzung bei Hieracium aurantiacum L. II Z. Indukt Abstamm Vererbungslehre. 1942. Bd. 80. S. 103−125.
  329. ChristoffM., PopoffF. Cytologische Studien uber die Gattung Hieracium 11 Planta. 1933. H. 20. S. 440—447.
  330. Christoff M., Parasova G. Die genetischen Grundlagen der apomiktischen Fortpflanzung in der Gattung Potentilla II Z. Indukt Abstamm Vererbungslehre. 1943. Bd. 81. S. 1−27.
  331. Clausen J. Partial apomixis as an equilibrium system in evolution // Caryologia. 1954. Vol. 6, № 1—3. P. 469—479.
  332. Clausen J., Keck D.D., Hiesey W.M. Experimental studies on the nature of species. I. Effect of varied environments on western American plants // Carnegia Inst. Wash. Publ. 1940. Vol. 520.
  333. Clausen J., Keck D.D., Hiesey W.M. Experimental studies on the nature of species. II. Plant evolution through amphidiploid and autoploidy with exampl from the Madiinae//Carnegia Inst. Wash. Publ. 1946. Vol. 564. P. 1−174.
  334. Cole C.J. Newly attained polyploidy and/or clonal reproduction in animals: the brink of extinction or threshold to new prontiers // Polyploidy, biological relevance. New York, 1980. P. 539—541.
  335. Comai L. Genetic and epigenetic interactions in allopolyploid plants // Plant Mol. Biol. 2000. Vol. 43. P. 387−399.
  336. Сох E.C., Gibson T.C. Selection for high mutation rates in chemostats // Genetics. 1974. Vol. 77. P. 169—184.
  337. Сох Т., Ford H. The plastic growth responses of three agamospecies of dandelion to two levels of nutrient// Ann. Bot. 1987. Vol. 59. P. 81—91.
  338. Crane C.V., Carman J.C. Mechanisms of apomixis in Elymus rectisetum from Eastern Australia and New Zealand // Am. J. Bot. 1987. Vol. 74. P. 477— 496.
  339. CrowJ.F., Kimura M. Evolution in sexual and asexual populations // Amer. Nat. 1965. Vol. 99. P. 439—450.
  340. Cuellar O., Kluge A. G. Natural parthenogenesis in the gekkonid lizard Lepidodactylus lugubris// Journal of Genetics. 1972. Vol. 6. P. 14.
  341. D’Amato F. Triploidia e apomissia in Statice oleaefolia Scop. var. con-fusa Goodr. II Caryologia. 1949. Vol. 2. P. 71—84.
  342. Darlington C.D. Recent advances in cytology. London, 1932. 559 p.
  343. Darlington C.D. Apomixis: the escape // The evolution of genetic systems. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1939. P. 108−113.
  344. Davis G.L. Apomixis and abnormal anther development in Calotis Lap-pilacea Benth. (iCompositae) II Austr. J. Bot., 1968. V. 16, № 1. P. 1−17.
  345. Devillers Ch. Genetique, ontogenese et selection dans le deterministe du changement evolutif // Bull. Cent. rech. explor. prod. Elf. Aquitane. 1986. Vol. 10, № 2. P. 313—321.
  346. Dawe R.K. Meiotic chromosome organization and segregation in plants // Annu. Rev. Plant. Physiol. Plant Mol. Biol. 1998. V.49. P.371−395.
  347. Dawley R.M. Hybridization and polyploidy in a community of three sun-fish species (Pisces: Centrarchidae) II Copeia. 1987. N 2. P. 326−335.
  348. DeGroote D.K., Sherwood R.T. In vitro sexual and apomictic embryo sac development in Cenchrus ciliaris II Can. J. Bot. 1984. V. 62, № 10. P. 2053— 2057.
  349. Dewald C.L., Kindiger B.K. Cytological and molecular evaluation on the reproductive behavior of Tripsacum andersonii and a female fertile derivative (Poaceae) // Amer. J. Bot. 1998. Vol. 85, № 9. P. 1237—1242.
  350. Dickinson H.G. The regulation of alternation of generation in flovering plants И Biol. Rev. Cambridge Phil. Soc. 1994. Vol. 69, № 3. P. 419−442.
  351. Diels L. Die Methoden der Phytographie und der Systematic der Pflan-zen // Abderhaldens Handbuch der biologischen Arbeitsmethoden. Abt. 11. Berlin, 1921
  352. Diggle P.K., Lower S., Ranker T.A. Clonal diversity in alpine populations of Polygonum viviparum (Polygonaceae) // Int. J. Plant Sci. 1998. Vol. 159. P. 606−615.
  353. Diver C. Fossil records in Mendelian mutants // Nature. 1929. Vol. 124. P. 1—83.
  354. Doctrinal M. Gynogenese de la Betterave Sucriere Influence de Quelques Facteurs sur le Renddement en Embryons // Bull. Soc. Bot. Fr. Actual. Bot. 1990. Vol. 137. P. 144.
  355. Doll R. Apomixis und Speciation in den Gattungen Taraxacum und Chondrilla II Feddes Repertorium. 1976. Bd. 87, H. 7—8. S. 483—492.
  356. Doncaster C. P., Pound G.E., Coxt S.J. The ecological cost of sex // Nature. 2000. Vol. 404. P. 281−285.
  357. Dopp W. Apomixis bei Archegoniaten // Ruhland W. (Ed.) Handbuch der Pflanzenpgysiologie. Bd. XVIII. Springer, Berlin, Haidelberg, New York, 1967. S. 531—550.
  358. Dore C., Marie F. Production of Gynogenetic Plants of onion {Allium сера L.) After Crossing With Irradiated Pollen // Plant Breeding. 1993. Vol. Ill, № 2. P. 142—147.
  359. Doums C., Perdieu M. A., Jarne P. Resource allocation and stressful conditions in the aphallic snail Bulinus truncates // Ecology. 1997. Vol. 79. P. 720.
  360. Downie S.R., Denford K.E. Taxonomy of Arnica (Asteraceae) subgenus Arnica // Rhodora. 1988. Vol. 90, № 863. P. 245—275.
  361. Dujardin M., Hanna W.W. Developing apomictic pearl millet -Characterization of a BC3 plant // J. Genet. Breed. 1989. Vol. 43. P. 145—151.
  362. Dynesius M., Jansson R. Evolutionary consequences of changes in species' geographical distributions driven by Milankovitch climate oscillations // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. Vol. 97, N 16. P. 9115−9120.
  363. EdelmanJ.R., Lin Y.J. Repetitive DNA/heterochromatin: Can it be the 'driving force' of evolution and speciation? // Cytobios. 1995. Vol. 83, № 333. P. 117—127.
  364. Ehrlich P.R., Raven P.H. Differentiation of populations // Science. 1969. Vol. 165. P. 1228—1232.
  365. Ehrlich P.R., White R.P. Colorado checkerspot butterflies: isolation, neutrality, and the biospecies // Amer. Nat. 1980. Vol. 115. P. 328—341.
  366. Elkonin L.A., Enaleeva N.Kh., Tsvetova M.I., Belyaeva E.V., Ishin A.G. Partially fertile line with apospory obtained from tissue culture of male sterile plant of sorghum {Sorghum bicolor L. Moench) II Annals Botany. 1995. Vol. 76. P. 359 364.
  367. Ellstrand N.C., Roose M.L. Patterns of genotypic diversity in clonal plant species. //Am. J. Bot. 1987. Vol. 74. P. 123−131.
  368. Ellestrum S., Zagorcheva L. Sterility and apomictic embryo sac formation in Raphanobrassica II Hereditas. 1977. Vol. 87. P. 107.
  369. Endler J.A. Gene flow and population differentiation // Science. 1973. Vol. 179. P. 243—250.
  370. Endler J.A. Geographic variation, speciation, and clines. Princeton, N.Y.: Princeton Univ. Press, 1977. 246 p.
  371. Ernst A. Bastarderung als Ursache der Apogamie im Pflanzenreich. Jena, 1918. 666 s.
  372. Fagerlind F. Die Terminologie der Apomixis-Prozesse // Hereditas. 1940. Bd. 26, H. l.S. 1−22.
  373. Fagerlind F. Sporogenesis, Embryosackentwicklung und pseudogame Samenbildung bei Rudbeckia laciniata L. II Acta Horti Bergiani. 1946. Bd. 14. S. 39—90.
  374. Fagerlind F. Macrogametophyte formation in two agamospermous Erig-eron species // Acta Horti Bergiani. 1947. Bd. 14. S. 221—247.
  375. Farquharson L.I. Naturalselection of tetraploids in a mixed colony of Tripsacum dactyloides II Proc. Ind. Acad. Sci. 1954.Vol. 63. P. 80−82.
  376. Fenster Ch.B. Gene flow in Chamaecrista fasciculata. 1. Gene dispersal // Evolution (USA). 1991. Vol. 45, № 2. P. 398—409.
  377. Ferrant V., Bouharmont J. Origin of Gynogenetic Embryos of Beta vulgaris L. И Sex. Plant Repr. 1994. Vol. 7. P. 12—16.
  378. Focke W.O. Die Pflanzenmischlinge. Berlin, 1881. 569 s.
  379. Ford H., Richards A. J. Jsozyme variation within and between Taraxacum agamospecies in a single locality // Heredity. 1985. Vol. 55. P. 285−291.
  380. Franke R. Uber das Auftreten von unreducierten Gameten bei Angio-spermen // Arch. Zuchtungsforsch. Berlin. 1975. Bd. 5. S. 201—208.
  381. Freter L.E., Brown W.V. A cytotaxonomic stady of Bouteloua curtipen-dula and B. unijlora II Bull. Torrey Bot. Club. 1955. Vol. 82. P. 121—130.
  382. Fryxell P.A. Mode of reproduktion in higher plants // Bot. Rev. 1957. Vol. 23. P. 135—233.
  383. Frost H.B., Soost R.K. Seed reproduction development of gametes and embryos // The Citrus Industry, Vol. II. Berkeley: University of California Press, 1968. P. 290—324.
  384. Gade В., Parker E.D. The effect of life cycle stage and genotype on des-iccationtolerance in the colonizing parthenogenetic cockroach Pycnoscelus suri-namensis and its sexual ancestor P. indicus II J. Evol. Biol. 1997. N 10. P. 479 493.
  385. Gadella T.W.J. Biosystematic studies in Hieracium pilosella L. and some related species of the subgenus Pilosella II Bot. notis. 1972. Bd. 25, № 4. S. 361— 369.
  386. Gadella T.W.J. Cytology and reproduction of Hieracium subgenus Pilosella II Proc. Kon. Ned. Acad. Wet. ser. 1984. С 87 (4). P. 379—399.
  387. Gadella T.W.J. Sexual tetraploid and apomictic pentaploid population of Hieracium pilosella (Compositae) // Plant Syst. and Evol. 1987. Vol. 157, № 3−4. P. 219−245.
  388. Gadella T.W.J. Some notes on the origin of polyploidy in Hieracium pilosella aggr. // Acta. Bot. Neerl. 1988. Vol. 37, № 4. P. 515—522.
  389. Gadella T.W.J. Reproduction, variation and interspecific hybridization in the species of Hieracium section Pilosellina (Compositae) // Polish Bot. Stud. 1991a. Vol. 2. P. 85−103.
  390. Gadella T.W.J. Variation, hybridization and reproductive biology of Hieraci-um pilozela L. II Proc. Kon. Ned. Akad. v. Wetensch. 1991b. Vol. 94, N 4. P. 455—488.
  391. Gadella T.W.J. Notes on some triple and inter-sectional hybrids in Hieracium pilosella L. subgenus Pilosella (Hill) S.F. Gray II Reprinted from Proc. Kon. Ned. Akad. v. Wetensch. 1992. Vol.95, № 1. P. 51—63.
  392. Gajewsky W. A cytogenetic study on the genus Geum L. Monographiae Botanicue (Warsaw). 1957. Vol. 4.
  393. Galinat W.C., Chaganti R.S.K., Hager F.D. Tripsacum as a possible am-phidiploid of Wild maize and Manisutis // Bot. Mus. Leafl. Harward Univ. 1964. Vol. 20. P. 289−316.
  394. Gentcheft C. Degenerative phenomens in the male gametophytes of Hieracium in relation to mitotic behavior of the cell // Yearb. Univ. st. Kliment Ochridsky Sofia. 1941. Vol. 19. P. 107—150.
  395. Gerstel D.U., Hammond B.Z., Kidd C. An additional note on the inheritance of apomixes in Guayule // Bot. Gaz. 1953. Vol. 115. P. 89−93.
  396. Giessler S. Analysis of reticulate relationships within the Daphnia long-ispina species complex. Allozyme phenotype and morphology // J. Evol. Biol. 1997. Vol. 10. P. 87−105.
  397. Gould F.W., Kapadia Z.J. Biosistematic studien in the Bouteloua curti-pendula complex. II. Taxonomy//Brittonia. 1964. Vol. 16. P. 182−192.
  398. Gounaris E.K., Sherwood R.T., Gounaris I., Hamilton R.N., Gustine D.L. Inorganic salts modify embryo sac development in sexual and aposporous Cenchrus ciliaris // Sex. Plant Reprod. 1991. Vol. 4. P. 188—192.
  399. Grazi F., Umaerus M., Akerberg E. Observations on the origin of reproduction and the embryology of Poa pratensis II Hereditas. 1961. Vol. 47. P. 489— 541.
  400. Griffin M. Now much evolutionary advantage does sen confer // J. Theor. Biol. 1983. Vol. 102, № 3. p. 447-^58.
  401. Grimanelli D., Hernandez M., Perotti E., et al. Dosage effects in the endosperm of diplosporous apomictic Tripsacum (Poaceae) // Sexual Plant Reproduction. 1997. Vol. 10, № 5. P. 279−28.
  402. Grimanelli D., Leblanc O., Espinosa E., Perotti E., Gonzalez L.D., Savidan Y. Non Mendelian transmission of apomixes in maize-Tripsacum hybrids caused by a transmission ratio distortion // Heredity. 1998. Vol. 80, № 1. P. 40 -47.
  403. Grimanelli D., Leblanc O., Perotti E., Grossniklaus, U. Developmental genetics of gametiphytic apomixis // Trens in Genetics. 2001. Vol. 17, N 10. P.
  404. Grossniklaus U., Schneitz K. The molecular and genetic basis of ovule and megagametophyte development // Seminars in Cell and Developmental Biology. 1998. Vol. 9. P. 227−238.
  405. Grossniklaus U., Nogler G.A., van Dijk P.J. How to Avoid Sex: The genetic control of gametophytic apomixes // Plant Cell. 2001. Vol. 13. P. 1491−1498.
  406. GuntherK., Hannemann H.-J., Hieke F., Konigsmann E., Schumann H. Insekten. Leipzig- Jena- Berlin: Urania-Verlag, 1974. 630 s.
  407. Gupta P.C., Roy R.P., Sing A.P. Aposporus apomixis: seasonal variation in tetraploid Dichanthium annulatum (Forssk.) Starf. II Portug. Acta. Biol. 1970. Vol. 11. P. 253—260.
  408. Gustafsson A. Kastrierunger und Pseudogamie bei Rubes // Bot. Not. (Lund.). 1930. S. 477−494.
  409. Gustafsson A. Zytologische und experimenteller Studien in der Gattung Taraxacum И Hereditas. 1932. Bd. 16. S. 41—62.
  410. Gustafsson A. The genesis of European blackberry flora. Lunds. univ. Arsskrift. 1943. Bd. 39, H. 6. P. 1—200.
  411. Gustafsson A. Apomixis in higher plants. Pt. I-III // Lunds. univ. Arsskrift. 1946. Bd. 42, S. 1—68- 1947. Bd. 43. S. 69—370.
  412. Hakansson A. Parthenogenesis in Allium II Bot. Not. (Lund). 1951. P. 143—179.
  413. Hakansson A., Levan A. Endo-duplicational meiosis in Allium odorum II Hereditas. 1957. Vol. 43. P. 179—200.
  414. Haldane J.B.S. The cost of natural selection // J. Genet. 1957. Vol. 55. P. 511—524.
  415. Haluskova J., Cellarova E. RPDF analysis of Hypericum perforatum L. somaclones and their progenies // Euphytica. 1997. Vol. 95. P. 229−235.
  416. Harlan J.R., de Wet J.M.J., OnO. Winge and a prayer: Tne origins of poliploidy // Bot. Rev. 1975. Vol. 41. P. 361—390.
  417. Harrison J.W.H., Peacock A.D. On parthenogenesis originating in Lepi-dopterous crosses // Trans. Nat. Hist. Soc. Nothumberland. N.S. 1926. Vol 6. P. 11−18.
  418. Haynes R.H. Molecular mechanisms in genetic stability and change: The role of desoxyribonucleotide pool balance // Genetic Consequences of Nucleotide Inbalances. N. Y., 1985. P. 1—23.
  419. Heiser C.B. Natural hybridization with particular reference to introgres-sion // Bot. Rev. 1949. Vol. 15. P. 645—687.
  420. Helentjaris Т., Weber D., Wright S. Identification of the genomic locations of duplicate nucleotide sequences in maize by analysis of restriction fragment length polymorphisms // Genetics. 1988. Vol. 118. P. 353−363.
  421. Hermsen J.G.Th. Mechanisms and genetic implications of 2n-gamete formation // Iowa State J. Res. 1984. Vol. 58. P. 421—434.
  422. Herr J.M. A new clearing sguash technique for the study of ovule development in angiosperms // Amer. J. Bot. 1971. Vol. 58. P. 785—790.
  423. Heslop-Harrison J. Apomixis, environment, and adaptation // Presented biosyst. symp. IX bot. congr. Montreal, 1959. Mimeographed.
  424. Hoffman A.A., Parsons P.A. Extreme environmental change and evolution. Cambridge: Univ. Press, 1997. 259 p.
  425. Holm S., Ghatnekar L., Bengtsson B.O. Sefing атв outcrossing but no two natural populations of diploid Potentilla argentea II J. evol. boil. 1997. Vol. 10. P. 343−352.
  426. Holmgren Zitologische Studien uber die Fortpflanzung bei den Gattun-gen Erigeron und Eupatorium II Kgl. sven. vetenskapsakad. handl. 1919. Bd. 59, H.7. S. 1−48.
  427. Horandl E., Dobes Ch., Lambrou M. Chromosomen- und Pollenunter-suchungen an osterreichischen Arten des apomiktischen Ranunculus auricimus-Komplexes // Bot. Helv. 1997. Vol. 107., N 2. S. 195−209.
  428. Horandl E., Jakubowsky G., Dobes C. Isozyme and morphological diversity within apomictic and sexual taxa of the Ranunculus auricomus complex // Plant Syst. Evol. 2001. Vol. 226. P. 165−185.
  429. Horsten Von C.G. Studier over slaktet Taraxacum Wigg. med sarskild hansyntill gruppen Vulgaria Dt. I Skandinavien // LTs Jorlag, Stockholm, 1954.
  430. Hosemans D., Bossoutrot D. Induction of haploid plants from in vitro culture of unpollinated beet ovules {Beta vulgaris L.) HZ. Pflanzenzuchtg. 1983. Vol. 91. P. 74—77.
  431. Huang Guozhong, Gu Ming-guang. Получение in vitro партеногенети-ческих семян из неопылённых початков кукурузы // Acta genet, sin. 1995. Vol. 22, № 3. P. 230—238 (кит).
  432. Huang H., Dane F., Norton J.D. Genetic analysis of 11 polymorphic isozyme loci in chestnum species and characterization of chestnum cultivars by multi-locus allozyme genotypes //J. Am. Soc. Hortic. Sci. 1994. Vol. 119. P. 840 849.
  433. Hunziker H.R. Beitrag zur Aposporie und ihrer Genetik bei Polentilla II Arch. Julius Klaus-Stiftung Vererbungsforsch. 1954. Bd. 29, H. 1. S. 136−222.
  434. В. C., Barrett S. С. H. Colonisation history and population genetic structure of Eichhornia paniculata in Jamaica // Heredity. 1991. Vol. 66. P. 287−291.
  435. Hussey M.A., Bashaw E.C., Hignight K.W., Dahmer M.L. Influence of photoperiod on the frequency of sexual embryos sacs in facultative apomictic buffelgrass // Euphytica. 1991. Vol. 54. P. 141—145.
  436. Iwanada M. Chemical induction of aposporous apomictic seed production // Proc. Int. Congr. Research for the potato in the vier 2000, CIP, Lima. Peru, 1983. P. 104—105.
  437. Izmailow R. Problem of apomixis in the Ranunculus auricomus group // Acta biol. Cracov. Ser. bot. 1976. Vol. 19. P. 15—28.
  438. Jenniskens M.-J.P.J., Wetzels P., Sterk A.A. Aspects of the flowering ecology of taxa of Taraxacum II Bot. Jahrb. Syst. 1984. Vol. 104. P. 369−400.
  439. Juel O. Parthenogenesis bei Antennaria alpina (Z.) Br. И Bot. Centralbl. 1898. Bd. 74, H. 13. S. 369−372.
  440. Juel O. Vergleichende Untersuchungen uber typische und parthenoge-netische Fortpflancung bei der Gattung Antennaria II Kgl. sven. vetenskapsakad. hangl. 1900. Bd. 33, H. 5. S. 1−59.
  441. Kashin A.S. Discussing the role of determination of apomixis monogenic heredity // Apomixis Newsletter. 1992a. № 6. P. 27−29.
  442. Kashin A.S. Physiological aspects of apomixis in Angiosperms // Apomixis Newsletter. 1992b. № 4. P. 19—24.
  443. Kaul M.L.I., Murthy T.G.K. Mutant genes affecting higher plant meiosis II Theor. Appl. Genet. 1985. Vol. 70. P. 449—466.
  444. Kellogg E.A. Variation and species limits in agamospermous grasses // Syst. Bot. 1990. Vol. 15, N 1. P. 112−123
  445. Kimber G., Riley R. Haploid angiosperms // Bot. Rev. 1963. Vol. 29. P. 480—531.
  446. Kindiger В., Dewald C.L. Genome accumulation in eastern gamagrass, Tripsacum dactyloides (L.) L. (Poaceae) // Genetica. 1994. Vol. 92. P. 197—201.
  447. Kindiger В., Dewald C.L. A system for genetic change in apomictic eastern gamagrass // Crop Sci. 1996. Vol. 36. P. 250−255.
  448. Kindiger В., Dewald C.L. The reproductive versatility of eastern gamagrass//Crop Sci. 1997. Vol. 37. P. 1351—1360.
  449. Kindiger В., Sokolov V., Dewald C.L. A comparison of apomictic reproduction in eastern gamagrass (Tripsacum dactyloides) and apomictic maize-Tripsacum hibrids II Genetica. 1996a. Vol. 97. P. 103—110.
  450. Kindiger В., Sokolov V., Khatypova I.V. Evaluation of apomictic reproduction in a set of 39 chromosome Maize-Tripsacum backcross hybrids // Crop Sci. 1996b. Vol. 36, № 5. P. 1108—1113.
  451. King L.M., Shaal B.A. Genotypic variation within asexual lineages of Taraxacum officinale И Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. Vol. 87. P. 998−1002.
  452. Kirschner J., Stepanek J. Clonality as a part of the evolution process in Taraxacum I I Folia Geobot. Fhytotax. 1994. Vol. 29. P. 265−275.
  453. Kitany Y. Induction of Parthenogenetic Haploid Plants with Brassinolide // Japanese J. Genet. 1994. Vol. 69, № 1. P. 35—40.
  454. Knox R.B. Apomixis: seasonal and population diferences in a grass // Science. 1967. Vol. 157. P. 325—326.
  455. Knox R.B., Heslop-Harrison J. Experimental control of aposporius apomixis in a grass of the Andropogoneae I I Bot. Notisher. 1963. Vol. 116. P. 127— 141.
  456. Koltunow A.M., Johnson S.D., Bicknell R.A. Sexual and apomictic development in Hieracium II Sexual Plant Reproduction. 1998. Vol. 11, № 4. P. 213 -230.
  457. Koltunow A.M., Johnson S.D., Bicknell R.A. Apomixis is not develop-mentally conserved in related, genetically characterized Hieracium plants of varying ploidy // Sexual Plant Reproduction. 1999. Vol. 12, № 5. P. 253−260.
  458. Lagercrantz U., Lydiate G.J. Comparative genome mapping in Brassica //Genetics. 1996. Vol. 144. P. 1903−1910.
  459. Lakshmi Sita G., Ravingran S., Raghavan Swamy B.V. Gynogenic Plants from Mulberry (Morus indica L.) II Proceeding of the XI Int. Symp. and Seed Reproduction". St. Peterburg, 1992. P. 308—309.
  460. Lalewski K. Some deas on the origin of species // J. Bengal. Natur. Hist. Soc. 1987. Vol. 6, № 2. P. 5—109.
  461. S. R., Waldron B. L., Monsen S. В., et al. AFLP Variation in Agamospermous and Dioecious Bluegrasses of Western North America // Crop Science. 2001. Vol. 41. P. 1300−1305.
  462. Lazanyi A. Duplicativ de poligene in microevolutia plantelor cultivate // Cere, genet, veg. si anim. 1989. Vol. 1. P. 37—42.
  463. Leblanc O., Grimanelly D., Gonzalez-de-Leon D., Savidan Y. Detection of the apomictic mode of reproduction in Maize-Tripsacum hybrids using maize RFLP markers // Theor. Appl. Genet. 1995a. Vol. 90. P. 1198—1203.
  464. Leblanc O., Peel M.D., Carman J.G., Savidan Y. Megasporogenesis and megagametogenesis in several Tripsacum species (Poaceae) // Amer. J. of Botany. 1995b. Vol. 82, № 1. P. 57—63.
  465. Leigh E.G. The evolution of mutation rates // Genetics. 1973. Vol. 73. P. 1—18.
  466. Leitch I.J., Bennet M.D. Polyploidy in angiosperms // Trends Plant Sci. 1997. Vol. 2. P. 270−476.
  467. Levin D.A. The nature of plant species // Science. 1979. Vol. 204. P. 381—384.
  468. Levin D.A. Dispersal versus gene flow in plants // Ann. Missouri Bot. Gard. 1981. Vol. 68. P. 233—253.
  469. Levin D.A. Local speciation in plants: The rule not the exception // Syst. Bot. 1993. Vol. 18, № 2. P. 197—208.
  470. Lewis H., Roberts M.R. The origin of Clarkia lingulata II Evolution. 1956. Vol. 10. P. 126−138.
  471. Lidforss B. Uber das studium polimorphe Gattungen // Bot. Not. (Lund.) 1907. S. 241−261.
  472. Lidforss B. Resume seiner Arbeiten uber Rubus II Zsch. und Abst. und Verebr. 1914. Bd. 12. S. 1−13.
  473. Linch M. The limits to life history evolution in Daphnia II Evolution. 1984. Vol. 38, № 3. P. 465—482.
  474. Little T.J., Hebert P.D.N. Clonal diversity in high arctic ostracodes // J. Evol. Biol. 1997. Vol. 10. P. 233−252.
  475. Lokki J., Saura A. Polyploidy in Insect evolution. New York, 1980. P. 277—312.
  476. Lotsy J.P. Evolution by Means of Hibridization. M. Nijhoff, The Hague, 1916.
  477. Love A. Preparatory studies for breeding Iselandic Poa irrigata II Hereditas. 1952. Vol. 38. P. 11−32.
  478. Lubbers E.L. Molecular markers shared by diverse apomictic Pennise-tum species // Theor. Appl. Genet. 1994. Vol. 89. P. 636—642.
  479. Luerrant E.O. Heterochrony in plants. The intersection of evolution ecology and ontogeny // Heterochrony Evol.: Multidisap. Approach. N. Y., London, 1988. P. 111—133.
  480. Lyman J., Ellstrand N. Clonal diversity in Taraxacum officinale (Com-positae): an apomict// Heredity. 1979. Vol. 53. P. 1−10.
  481. Makinen Y., Brewbaker S.L. Isoenzyme patterns Polonica // Physiol. Plantarum. 1967. Vol.14, № 1. P. 61−69.
  482. Maleska J. Problems of the mode of reproduction in microspecies of Taraxacum section Palustria Dalstedt. // Acta biol. Krakov. Ser Bot. 1973. Vol.16. P. 37—84.
  483. MarxJ.L. Evolution’s link to development explored // Science. 1988. Vol. 240, № 4854. P. 880—882.
  484. Masci S. Facultative apomictic complex of Ranunculus auricomus I I Harnessing apomixis: a new frontier in plant science / Abstracts of 1st International converence. September, 24—27, 1995, Texas, USA. Texas, 1995. P. 48.
  485. Matzk F. A novel approach to differentiated embryos in the absence of endosperm// Sex. plant Reprod. 1991. Vol.4. P. 88—94.
  486. Matzk, F., Meister, A., and Schubert, I. An efficient screen for reproductive pathways using mature seeds of monocots and dicots // Plant J. 2000. Vol. 21. P. 97−108 (
  487. Matzk F., Meister A., Brutovska R., Schubert I. Reconstruction of reproductive diversity in Hypericum perforatum L. opens novel strategies to manage apomixes II The Plant Journal. 2001. Vol. 26, N 3, P. 275−282.
  488. Mazzucato A., Falcinelli M., Veronesi F. Evolution and adaptedness in a facultatively apomictic grass, Poa pratensis L. // Euphytica.1996. Vol. 92. P. 1319.
  489. McClintock B. The significance of responses of the genome to challenge II Science. 1984. Vol. 226, N 4676. P. 792−801.
  490. McWilliam J.R., Shanker K., Knox R.B. Effest of temperature and pho-toperiod on growth and reproductive development in Hyparrhenia hirta I I Aust. J. Agric. Res. 1978. Vol. 21. P. 557—569.
  491. Menken S.B.J., Morita Т. Uniclonal population strukture in the pen-taploid obligate agamosperm Taraxacum albidum Dahlst. II Plant Species Biol. 1989. Vol.4. P. 29−36.
  492. Menken S.B.J., Morita Т., et al. Genetic interpretation of enzyme variation in sexual and agamospermous taxa of Taraxacum sections Vulgaria and Mongolia II Genetica. 1989. Vol. 78. SP. 111−119.
  493. Menken S.B.J., Smit E., Den Nijs H.J.C.M. Genetical population structure in plants: Gene flow between diploid sexual and triploid asexual dandelions (Taraxacum section Ruderalia) // Evolution. 1995. Vol. 49. P. 1108−1118.
  494. Mogie M. A model for the evolution and control of generative apomixis // Biol. J. Linn. Soc. 1988. Vol. 35. P. 127—154.
  495. Mogie M. The genetic control of apomixis 11 The evolution of asexual reproduction in plants. London: Charman & Hall, 1992. P. 139—196.
  496. Mogie M., Ford H. Sexual and asexual Taraxacum species // Bot. J. Linn. Soc. 1988. Vol. 35. P. 155−168.
  497. Mol R. In Vitro Gynogenesis in Melandrium album — from Parthenoge-netic Embryos to Mixoploid Plants // Plant Science. 1992. Vol. 81. P. 261—269.
  498. Morita T. Phytogeography and speciation Taraxacum (Asteraceae) in East Asia. // Plant Tax. 1994. Vol. 24, № 3. P. 145−155.
  499. Morita Т., Sterk A.A., Nijs J.C.M. den. The significance of agamospermous triploid pollen donors in the sexual relationships between diploids and triploids in Taraxacum (Compositae) // Plant Species Biol. 1990. Vol. 5. P. 167—176.
  500. Muller H.J. Our load of mutations // Amer. J. Hum. Genet. 1950. Vol. 2. P. 111—176.
  501. Muntzing A. Further studies on apomixes and sexuality in Poa II Heredi-tas. 1940. Bd. 26, H. 1−2. S. 115−190.
  502. Muntzing A., Muntzing G. Some new results concerning apomixis, sexuality and polimorphism in Potentilla II Bot. not. (Lund). 1941. S. 237—278.
  503. Muntzing A. Heteroploidy and polymorphism in some apomictic species of Potentilla II Hereditas. 1958. Vol. 44. P. 280—329.
  504. Muntzing A., Muntzing G. The mode of reproduction of hybrids between sexual and apomictic Potentilla argentea II Bot. Notis. 1945. S. 49−71.
  505. Murashige Т., Scoog F. A revized medium for rapid growth and bicas-says with tobacco tissue cultures. // Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. P. 473 497.
  506. Murbeck S. Om vegetative embryobildning hos tlertalet Alchemillor och den forklaring ofver formbestandighten inom Hagtet, som densamma innebar // Bot. Notis. 1897. S. 273−277.
  507. Murbeck S. Parthenogenese bei den Gattungen Taraxacum und Hieracium II Bot. Notis. 1904. S. 285−296.
  508. Murphy R.W., Darevsky I.S., MacCulloch R.S., et al. Old age, multiple formations or genetic plasticity? Clonal diversity in the uniparental Caucasian rock lizard, Lacerta Dahli II Genetica. 1997. Vol. 101, № 2. P. 125−130.
  509. Nageli С. von, Peter G.A. Die Hieracium Mittel-Europas. Bd. 1. Mono-graphische Bearbeitung der Piloselloiden mit besonderer Berucksichtigung der mitteleuropaischen Sippen. Munchen, 1885. 931 s.
  510. Napayan R.K.J. Evolutionary significance of DNA variation // Evol. Trends Plant. 1988. Vol. 2, № 2. P. 121—130.
  511. NassarN.M.A. Development and selection for apomixis in cassica, Manihot esculenta Crantzll Can. J. Plant Sci. 1994. Vol. 74, № 4. p. 857—858.
  512. NaumovaT., Den NijsA.P.M., Willimse M.T.M. Quantitative analysis of aposporous parthenogenesis in Poa pratensis genotypes // Acta Bot. Neerl. 1993. Vol. 42, № 3. P. 299—312.
  513. Naumova Т., de Bock Th.S.M., Wagenvoort M. Apomixis and sexuality in Brachiaria decumbens accessions // Apomixis Newsletter. 1995. № 8. P. 28— 31.
  514. Naumova T.N., Hayward M.D., Wagenvoort M. Apomixis and sexuality in diploid and tetraploid accessions of Brachiaria decumbens II Sex. Plant Reprod. 1999. Vol. 12, N 1. P. 43−52.
  515. Naumova T.N., van der Laak Je., Osadtchiy Ja., et. al. Reproductive development in apomictic populations of Arabis olboellii (Brassicaceae) // Sex Plant Reprod. 2001. Vol. 14. P. 195−200.
  516. Nevo E., Beilis A., Ben-Shlomo R. The evolutionary significance of genetic diversity: Ecological, demographic and life history correlates // Evolutionary dynamics of genetic diversity. Berlin: Springer, 1984. P. 13—213.
  517. Nijs J.C.M. den, Sterk A.A. Cytogeographical studies of Taraxacum sect. Taraxacum (= sect. Vulgaria) in Central Europe // Bot Jahrb. Syst. 1980. Vol 101. P. 527−554.
  518. Nijs J.C.M. Den, Sterk A.A. Cytogeographical studies of Taraxacum sectio Taraxacum in France and adjacent parts of Italy and Swirzelland, including some Taxonomic remarks // Acta Bot. Neerl. 1984. Vol. 33. P. 1— 24.
  519. Noack K.L. Uber Hypericum-Kreuzungen. VI. Fortpflanzungsverhalt-nisse und Bastarde von Hypericum perforatum L. II Z. Indukt. Abstamm. Vere-bungslehre. 1939. H. 76. S. 569−601.
  520. Nogler G.A. How to obtain diploid apomictic Ranunculus auricomus plants not foind in the wild state // Bot. Helv. 1982. Vol. 92. P. 13−22.
  521. Nogler G.A. Gametophytic apomixis // Embryology of Angiosperms. Berlin e.a., 1984a. P. 475−518.
  522. Normark B.B., Judson O.P., Moran N.A. Genomic signatures of ancient asexual lineages // Biologicalio J. of the Linnean Society. 2003. Vol. 79. P. 69−84.
  523. Nogler G.A. Genetics of apospory in apomictic Ranunculus auricomus.V.Conclusion // Botanica Helvetica. 1984b. Vol. 94, № 2. P. 411—422.
  524. Nogler G.A. Genetics of apomixis in Ranunculus auricomus. VI. Epilogue // Botanica Helvetica. 1995. Vol. 105, № 1. P. 111—115.
  525. Norrlin J.P. Suomen Keltanot // A. J. Mela. Suomen Kasvio. Viides pai-nos toimittanut A.K. Cajander. Helsingissa, 1906. S. 613—746.
  526. Noyes D.N., Soltis D.E. Genitypic variation in agamospermous Erigeron compasitus (Asteraceae) // Amer. J. Bot. 1996. Vol 83. P. 1292−1303.
  527. Noyes, R.D., and Rieseberg, L.H. Two independent loci control aga-mospermy (apomixis) in the triploid flowering plant Erigeron annuus // Genetics. 2000. Vol. 155. P. 379−390.
  528. Nygren A. Tne genesis of some Scandinavian species of Calamagrostis //Hereditas. 1946. Vol. 32. P. 131—262.
  529. Nygren A. Form and byotipe formation in Calamagrostis purpurea II Hereditas. 1951. Bd. 37, H. 4. S. 519—532.
  530. Nygren A. Apomixis in the angiosperms // Bot. Rev. 1954. Vol. 20. P. 577—649.
  531. Nygren A. Artificial and natural hybriization in European Calamagrostis II Symb. Bot. Upsal. 1962. Vol. XVII, № 3. P. 5—105.
  532. Nygren A. Investigation on North American Calamagrostis. I. // Nord. J. Bot. 1981. Vol. I, № 1. P. 25—101.
  533. Nussinov R. The ordering of nucleoitides in the DNA: Strong pyrimidine-purine patterns near homooligomer tracts //J. Theor. Biol. 1990. V. 149. P. 21—42.
  534. Okabe S. Parthenogenesis bei Ixeris dantata II Bot. Mag. (Tokyo), 1932. Vol.46. P. 518—523.
  535. Ollgaard H. New species of Taraxacum from Denmark // Bot. Not. 1978. Vol. 131. P. 497−521.
  536. Ostenfeld C.H. Further studies on the apogamy and hybridization of the Hieracia IIZ. Indukt Abstamm Vererbungslehre. 1910. Bd. 3. S. 241−285.
  537. Ostrowski M. F., Jarne P., David P. Quantitative genetics of sexual plasticity: the Environmental Threshold Model and genotype-by-environment interaction for phallus development in the snail Bulinus truncates //Evolution. 2000. Vol. 54. P. 1614.
  538. Otto S. P., Whitton J. Polyploid incidence and evolution // Annu. Rev. Genet. 2000. Vol. 34. P. 401−437.
  539. Overath R.D., Asmussen M.A. Genetic Diversity at a Single Locus Under Viability Selection and Facultative Apomixis: Equilibrium Structure and Deviations from Hardy-Weinberg Frequencies // Genetics. 1998. Vol. 148. P. 2029.
  540. Overath R.D., Asmussen M.A. The Cytonuclear Effects of Facultative Apomixis. I. Disequilibrium Dynamics in Diploid Populations // Theor. Population Biology. 2000. Vol. 58. P. 107−121.
  541. Ozias-Akins P., Lubbers E.L., Hanna W.W., McNay J.W. Transmission of the apomictic mode of reproduction in Pennisetum: Co-inheritance of the trait and molecular markers // Theor. Appl. Genet. 1993. Vol. 85. P. 632—638.
  542. Ozias-Akins P., Lubers E.L., Arthur L., Hanna W.W. Molecular markers for apomixis in Pennisetum И Apomixis: Exploiting hybrid vigor in rice. IRRI Manila, 1994. P. 51—53.
  543. Palmer A.R., Strobeck C. Fluctuating asymmetry: measurement, analysis, patterns // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1986. Vol. 17. P. 391−421.
  544. Palop-Esteban M., Gonzalez-Candelas F. Development of microsatellite markers for the critically endandered Limonium dufourii (Girard) Kuntze (Plum-baginaceae) // Molecular Ecology Notes. 2002. Vol. 2, N 4. P. 521−523.
  545. Pazy B. Diploidization failure and apomixis in Orobanchaceae // Bot. J. Linn. Soc. 1998. Vol. 128, № 1. P. 99—103.
  546. Peck J.R., Waxman D. What’s wrong with a little sex? // J. Evol. Biology. 2000. Vol. 13, N 1. P. 63−69.
  547. Pessino S.C. Identification of a maize linkage group related to apomixes in Brachiaria // Theor. Appl. Genet. 1997. Vol. 94. P. 439−444.
  548. Pessino, S.C., Evans, C., Ortiz, J.P.A., Armstead, I., Do Valle, C.B., Hayward, M.D. A genetic map of the apospory region in Brachiaria hybrids: Identification of two markers closely associated with the trait // Hereditas. 1998. Vol. 128. P. 153−158.
  549. Peterhans A., Schliipmann H., Basse Ch., Paszkowski J. Intrachromo-somal recombination in plants // EMBO Journal. 1990. Vol. 9, № 11. P. 3437— 3445.
  550. Pogan E., Wcislo H. Embryological analysis of Hieracium pilosella L. from Poland // Acta Biologia Crasoviensia. Ser. Botanica. 1995. Vol. 37. P. 53— 61.
  551. Pollard Je.W. The moveable genome. Weismann’s doctrine and new models for speciation // Biol. Forum (ex.:. Biol."). 1987. Vol. 80, № 1. P. 11—54.
  552. Powers L. Fertilization without reduction in guayule (Parthenium argen-tatum Gray.) and a hypothesis as to the evolution of apomixes and polyploidy // Genetics. 1945. Vol. 30. P. 323−346.
  553. Price S. C., Jain S. K. Are inbreeders better colonisers? // Oecologia. 1981. Vol. 49. P. 283.
  554. Przyborowski J.A. Haploidyzacja roslin wyzszych i jej zastosowania // Wiad. bot. 1994. Vol. 38, № 3—4. P. 53—62.
  555. Pupilli, F., Labombarda, P., Caceres, M.E., Quarin, Q.L., and Arcioni, S. The chromosome segment related to apomixis in Paspalum simplex is homoeolo-gous to the telomeric region of the long arm of rice chromosome 12. // Mol. Breed. 2001, in press.
  556. Quari C.L., Pozzobon M.T., Vails J.F.M. Cytology and reproductive behavior of diploid, tetraploid and hexaploid germplasm accessions of a wild forage grass: Paspalum compressfolium I I Euphytica. 1996.V.90, № 3.P. 345−349.
  557. Ramsey Ju., Schemske D.W. Pathweys, mechanisms, and rates of polyploid formation in flowering plants // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1998. Vol. 29, N 1. P. 467−501.
  558. Raspe O., Jacquement A-L., De Sloover Ja. Isoenzymes in Sorbus aucu-paria (Rosaceae: Maloidea): genetic analysis and evolutionary significance of zymograms // Int. J. Plant Sci. 1998. Vol. 159, N 4. P. 627−636.
  559. Raven P.H., Axelrod D.I. Angiosperm biogeography and past continental movements // Ann. Missuori Bot. Gard. 1974. Vol. 61. P. 539−673.
  560. Read J.C., Bashaw E.C. Cytotaxonomic relationship and the role of apomixis in speciation in buffelgrass and birdwoodgrass // Crop science. 1969. Vol. 9, № 6. P. 805—806.
  561. Rensch B. Probleme der berichteten Entwicklung und der Bouplanentc-tehung. Munchen, 1951. 419 p.
  562. Richards A.J. Eutriploid facultativ agamospermy in Taraxacum II New Phytol. 1970. Vol. 69. P. 761−774.
  563. Richards A. The origin of Taraxacum agamospecies // Bot. J. Linn. Soc. 1973. Vol. 66. P. 189—211.
  564. Richards A.J. Charter 11. Agamospermy // Plant breeding systems. L.: George Allen & Univ., 1986. P. 403−456.
  565. Richards A.J. Genetic variability in obligate apomicts of the genus Taraxacum II Fol. Geo. Phyto. 1996. Vol. 31. P. 405−414.
  566. Ricker W.E. Hereditary and environmental factors affecting certain sal-monid populations // The Stock Concept of Pacific Salmon. Vancouver: Univ. Brit. Columbia, 1972. P. 19—160.
  567. Rieseberg L.H., Noyes R.D. Genetic map-based studies of reticulate evolution in plants // Trends in plant science. 1998. Vol. 3, N 7. P. 254−259.
  568. Robetrson M. Split genes: the meaning of nonsense DNA // New sci. 1983. Vol. 99, № 1368. P. 262—265.
  569. Rosenberg O. Cytological studies on the apogamy in Hieracium // Bot. Tidsskr. 1907. Vol. 28. P. 143—170.
  570. Rosenberg O. Die Reduktionsteilung und ihre Degeneration in Hieracium II Sven. bot. tidskr. 1917. Bd. 11, H. 2. S. 145−206.
  571. Rosenberg O. Die semiheterotypische Teilung und ihre Bedeutung fur die Entstehung verdoppelter Chromosomenzahlen II Hereditas. 1927. Bd, 8, H. 3. S. 305−338.
  572. Rosenberg O. Apogamie und Parthenogenesis bei Pflanzen // Handb. Vererb. Wiss. 1930. Bd. 12. S. 1−66.
  573. Rosenzweig M. L. Species Diversity in Space and Time. Cambridge Univ. Press, Cambridge, U.K., 1995.
  574. Roteli P., Guy P. Breeding schemes in autotetraploid forages: recent achievement and new approaches // Ploidy and chromosome manipulation in forage breeding. Alghero (Italy), 1991. P. 14—22.
  575. Roche D., Hanna W.W., Ozias-Akins P. Is supernumerary chromatin involved in gametophytic apomixes of polyploid plants? // Sex Plant Reprod. 2001. Vol. 13. P. 343−349.
  576. Rousi A., Huttunen H., Hyrkas-Lyytikainen K. Chromosome and reproductive behavior of Finnish Taraxacum agamospecies // Nord. J. Bot. 1985. Vol. 5, № 2. P. 127−141.
  577. Rutishauser A. Pseudogamie und Polymorphic in der Gattung Polentilla II Arch. Julius Klaus-Stiflung Vererbungsforsch. 1948. Bd. 23, H. 2. S. 267−424.
  578. Rutishauser A. Entwicklungserregung der Eizelle bei pseudogamen Arten der Gattung Ranunculus II Bull. Schweiz. Akad. Med. Wiss. 1954. Vol. 10. P. 491−512.
  579. Rutishauser A. Genetik der Pseudogamie bei Ranunculus auricomus S.J.W. Koch. II Ber. Schweiz. Bot. Ges. 1965. Bd. 75. S. 157−182.
  580. Rutishauser A. Fortpflanzungsmodus und Meiose apomiktischer Blutenpflan-zen. Wien, New York: Springer Verlag, 1967. 245 s.
  581. Rychlewski J. Karyological studies on Nardus stricta L. II Acta. Biol. Cracov. Ser. Biol. 1967. Vol. 10. P. 55−72.
  582. San NoeumL.H. Haploides d’Hordeum vulgare L. par culture in vitro d’ovaries non fecondes //Ann Amelior Plant. 1976. Vol. 26. P. 751—754.
  583. Saran S, de Wet J.M.J. Environmental control of reproduction in Dichanthium intermedium // J. Cytol. Genet. 1976. Vol. 11. P. 22—28.
  584. Savidan Y.H. Nature et heredite de L’apomixie chez Panicum maximum Jacq. // Travaux et documents d L’ORSTOM. 1982. Vol. 153. P. 3—159.
  585. Savidan Y.H. Do we need a classification of apomictic types? // Apomixis Newsletter. 1991. № 3. P. 27—29.
  586. Savidan Y. Editors Note // Apomixis Newsletter. 1992b. № 6. P. 29.
  587. Savidan Y. Les promesses de l’apomixis // ORSTOM Actual. 1995. № 47. P. 2—7.
  588. Savidan Y. Apomixis: genetics and breeding // Plant Breed Rev. 2000. Vol.18. P. 13−85.
  589. Savidan Y., Dujardin M. Apomixis: The next green revolution? // La Recherche, Paris, 1992. Vol. 23. P. 326—334.
  590. Sax K. The cytogenetics of facultative apomixes in Malus species // J. Arnold Arbor (Harv. Univ.). 1959. Vol. 40. P. 289−297.
  591. Schel J.H.N., Kieft H., Lammeren A.A.M. van. Intractions stages of maize caryopsis {Zea mays) II Can. J. bot. 1984. Vol. 62, № 12. P. 2842—2853.
  592. Schmelzer G.H. Review of Pennisetum section Brevivalvula (Poaceae) // Euphytica. 1997. Vol. 97. P. 1−20.
  593. Schmelzer G.H., Renno J.-F. Genotypic variation in progeny of the agamic grass complex Pennisetum section Brevivalvula in West Africa // Plant Systematics and Evolution. 1999. Vol. 215, N 1−4. P. 71−83.
  594. Schuhwerk F., Lippert W. Chromosomenzhalen von Hieracium 0Compositae, Lactuceae). Teil 1 // Sendtnera. 1997. Vol. 4. P. 181−206.
  595. Schuhwerk F., Lippert W. Chromosomenzhalen von Hieracium L. 0Compositae, Lactuceae). Teil 2 // Sendtnera. 1998. Vol. 5. P. 269−286.
  596. Sell P.D., West C. Hieracium L., Pilosella Hill II Flora of Turkey and the East Aegean Islands / Ed. by P. Davis. Cambridge, 1975. Vol. 5. P. 696—763.
  597. Selander R. K., Evolutionary consequences of inbreeding // Genetics and conservation. Benjamin/Cummings, San Francisco, California, USA, 1983. P. 201−215.
  598. Shaposhnikov C.Ch. Populations and species in aphids and the need for a universal species concept. Ottawa: Agriculture Canada, 1981. 62 p.
  599. Shaposhnikov C.Ch. Aphids and step toward the universal species concept II Evolutionary Theory. 1984. P. 37−42.
  600. Shrtek Ji. Chromosome number in selected Hieracium species in the Krkonose Mts. (the West Sudeten) // Folia Geobot. Phytotax. 1994. Vol. 29. P. 91 100.
  601. Shishkinskaya N.A. A non-traditional view on apomixis // Apomixis Newsletter. 1991. № 3. P. 34—36.
  602. Sing A.P., Mehra K.L. Methods for induction and utilization of variability in the improvement of an apomictic grass: Dichanthium annulatum complex // Theoret. Appl. Genetics. 1971. Vol. 41. P. 259—262.
  603. Sitbon M. Production of gaploid Gerbera jamesonii plants by in vitro culture of unvertilized ovules // Agronomie. 1981. Vol. 1. P. 807—812.
  604. Skalinska M. Cytological analysis of some Hieracium species, subgen. Pilosella, from mountains of southern Poland // Acta Biol. Cracov. 1967. Vol. 10. P. 127—141.
  605. Skalinska M. Experimental and embryological studies in Hieracium au-rantiacum L. И Acta biol. crac. Ser. bot. 1971. Vol. 14, № 2. P. 139—152.
  606. Soler C., Galindo C., Gonzales-Castano C., et al. Isozyme variation in Spanish natural populations of Elytrigia pundens (Pers.) Tutin and E. Repens (L.) Nevski II Heredity. 1993. Vol. 71. P. 51−58.
  607. Solbrig O.T., Simpson B.B. Components of regulation of a population of dandelions in Michigan // J. Ecol. 1974 Vol. 62. P. 473−486.
  608. Sojak J. Prehled ceskoslovenskych druhu rodu Pilosella Hill. II Preslia (Praha). 1971. Vol. 43, № 2. P. 183—186.
  609. Sparvoli E. Osservazioni cyto-embriologiche in Eupatorium riparium Reg. II. Megasporogenesi e sviluppo del gametofito femminile // Ann. di Bot. (Rome). 1960. Vol. 26. P. 481—504.
  610. StaceC.A., Gornall R.J., Squirrell J., Shi Y. Chromosome numbers in Hieracium L. section Alpina (Fries) F.N. Williams I I Watsonia. 1995. Vol. 20, № 4. P. 367—377.
  611. Stanley S.M. Macroevolution. San Francisco: Acad, press, 1979. 332 p.
  612. Stebbins G.L. Apomixis in the angiosperms // Bot. Rev. 1941. Vol. 7, № 10. P. 507—542.
  613. Stebbins G.L. Variation and evolution in plants. New York, 1950. 643 p.
  614. Stebbins G.L. The role of hybriization in evolution. Proc. Amer. Phil. Soc. 1959. Vol. 103. P. 231—251.
  615. Stebbins, G. L. Chromosomal Evolution in Higher Plants. Edward Arnold, London, 1971.
  616. Stebbins G.L., Babcock E.B. The effect of polyploidy and apomixes on the evolution of species in Crepis II J. Hered. 1939. Vol. 30, N 12. P. 519−530.
  617. Storchova H., Chrtek J., Bartish I.V., et al. Genetic variation in agamospermous taxa of Hieracium sect. Alpina (Compositae) in the Tatry Mts. (Slovakia) // Plant Systematics and Evolution. 2002. Vol.235, N 1−4. P. 1−17.
  618. Strasburger Ed. Die Apogamie der Eualchemillen und allgemaine Gesi-chtspunkte die sich aus ihr ergeben // Jahrb. Wiss. Bot. 1905. Bd. 41, H. 1. S. 88 164/
  619. Sunderland N., Roberts M. Cold Pretreatment of Excised Buds in Float Culture of Tobacco Anthers // Ann. bot. 1979. Vol. 43. P. 405—^14.
  620. Suomolainen E. Parthenogenesis in animals // Ann. genet. 1950. Vol.3. P. 193—234.
  621. Suomolainen E. Significance of parthenogenesis in the evolution in insects // Annu. Rev. Entomol. 1962. Vol.7. P. 349—365.
  622. Tackholm G. Zytologische Studien die Gattung Rosa 11 Acta horti berg. 1922. Bd. 7, N3. S. 97−381.
  623. Tao Zirong, Liu Minsong, Zhu Zhongchun. Индукция дигаплоидных растений из неоплодотворённых завязей картофеля в условиях in vitro II Acta Genet. Sin. 1988. Vol. 15. P. 329—334 (кит.).
  624. Tas I.C.Q., Van Dijk P.J. Crosses between sexual and apomictic dandelions (Taraxacum). I. The inheritance of apomixes I I Heredity. 1999. Vol. 83, N 6. P. 707−714.
  625. Teryokhin E.S. Apomixis in Potamogeton obtusifolius Mert. et Koch (Potamogetonaceae) I I Apomixis Newsletter. 1994. N 7. P. 41.
  626. Thodey J.M. Disruptive selection // Proc. Roy. Soc. London. 1972. Vol. 182. P. 109—143.
  627. Thomas P.T. Reproductive versatility in Rubus. II. The chromosomes and development. J. Genet. 1940. Vol. 40, N 1−2. P. 119−128.
  628. Toline C.A., Linch M. Mutational divergence of life-history traits in an obligate parthenogen // Genome. 1994. Vol. 37. P. 33−35.
  629. Truong-Andre I., Demarly Y. Obtaining plants by in vitro culture of un-vertilized meize ovaries (Zea mays L.) and preliminary studien on the progeny of a gynogenetic plant I IZ. Pflanzenzuchtg. 1984. Vol. 92. P. 309—320.
  630. Tucker K.W. Automictic Parthenogenesis in the Honey bee // Genetics. 1958. Vol. 43, № 3. P. 33—59.
  631. Turesson G. Studien uber Festuca ovina L. 1. Normalgeschlechtliche, halb- und ganzvivipare Typen nordischer Herkunft // Hereditas. 1926. Bd. 8, H. 12. S. 161−206.
  632. Turesson G. Zur Natur und Regrenzung der Arteinheiten // Hereditas. 1929. Bd. 12, H. 3. S. 323−334.
  633. Yahara T. Evolution of agamospermous races in Bochmeria and Eupato-rium U Plant Species Biol. 1990 Vol. 5. P. 183−196.
  634. Yahara Т., Ito M., Watanabe K. et al. Very low genetic heterozygosities in sexual and agamospermous populations of Eupatorium altissimum (Asteraceae) // Botany. 1991. Vol. 78, № 5. P. 706−710.
  635. Yang H.Y., Zhou C. In Vitro Induction of Haploid Plants from Unpolli-nated Ovaries and Ovules // Theor. Appl. Genet. 1982. Vol. 63. P. 97—104.
  636. Van Dijk P.J., Tas I.C.Q., Falque M., et al. Crosses between sexual and apomictic dandelions (Taraxacum). II. The breakdown of apomixes // Heredity. 1999. Vol. 83, N6. P. 715−721.
  637. Van Geyt J., Speckmann Jr., Hallun K.D., Jacobs M. In Vitro Induction of Haploid Plants from Unpollinated Ovules and Ovaries of the Sugarbeet (Beta vulgaris L.) И Theor. Appl. Genet. 1987. Vol. 73. P. 920—925.
  638. Vielle Calzada J.-PH., Crane Ch.F., Stelly D.M. Apomixis: The asexual revolution//Science. 1996. Vol. 274, N5291. P. 1322−1323.
  639. Wada A., Suyama A. Local stability of DNA and RNA secondary structure and its relation to biological function // Progr. Biophys. and Mol. biol. 1986. V. 47. P. 113—157.
  640. Weimarck G. Apomixis and sexuality in Hierochloe australis and in Shwedish H. odorata on different polyploid levels // Bot. Not. 1967. Vol. 120. P. 209−235.
  641. Wendel J.F. Genome evolution in polyploids // Plant Mol. Biol. 2000. Vol. 42. P. 225−249.
  642. Werner J.E., Peloquin S.J. Frequency and mechanisms of 2n egg formation in haploid tuberosum- wild species F1 hybrids // Amer. Potato J. 1987. 64, № 12. P. 641—654.
  643. Wet De J.M.J., Borgaonkar D.S., Richardson W.I. Chromosome number and mode of reproduction in tne Bothriochloininae II Caryologia. 1963. Vol. 16, № l.P. 47—55.
  644. Wet De J.M.J. Diploid-tetraploid-haploid cycles and the origin of variability in Dichanthium agamospecies // Evolution. 1968a. Vol. 22, № 2. P. 394— 397.
  645. Wet De J.M.J. Biosistematics of the Bothriochloa barbinodis complex (Gramineae) // Amer. J. Bot. 1968b. Vol. 55, № 10. P. 1246—1250.
  646. Wet De J.M.J., Harlan J.R. Apomixis, polyploidy and speciation in Dichanthium // Evolution. 1970. Vol. 24, № 2. P. 270—277.
  647. White M.J.D. Animal Cytology and Evolution, 2d ed. Cambridge University Press, Cambridge, 1954.
  648. White M.J.D. Heterozygosity and genetic polymorphism in parthenoge-netic animals // Essays in evolution and genetics in Honor of Theodosius Dobzhansky / Eds M.K. Hecht. Steere W.C. Amsterdam: North-Holland Publ. Сотр., 1970. 237 p.
  649. Widen В., Cronberg N., Widen M. Genotypic diversity, molecular markers and spatial distribution of genetics in clonal plants, a literature survey // Folia Geobot. Phytotax. 1994. Vol 29. P. 245−263.
  650. Williamse M.T.M., Naumova T. Apomictic genes and seed plant reproduction // Apomixis Newsletter. 1992. № 5. P. 19—32.
  651. Wilson A.S., MaxonL.R., SarichV.M. Two types of molecular evolution. Evidence from studies of interspecific hybridization // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1974. Vol. 71. P. 2843—2847.
  652. Wilson A.S., White T.T., Carlson S.S., Cherry L.M. Molecular evolution and cytogenetic evolution // Molecular human cytogenetics. N.Y.: Acad. Press, 1977. P. 375—393.
  653. Winkler H. Verbreitung und Ursache der Parthenogenesis im Pflanzen-und Tierreich. Jena, 1920. 166 s.
  654. Wittzell H. Chloroplast DNA variation and reticulate evolution in sexual and apomictic sections of dandelions // Molecular Ecology. 1999. Vol. 8, N 12. P. 2023−2035.
  655. Zahn K.H. Compositae — Hieracium. Abt. II. // Endler A. Das Pflanzen-reich. 82 (IV. 280). Leipzig, 1923. P. 1147—1532.
  656. Zhao Z., Gu M. Получение диплоидных чистых линий кукурузы через партеногенез, индуцированный химическим путём // Acta Genet. Sin. 1984. Vol. 11, № 1. P. 39—46 (кит.).
  657. Zhou Shi-Qi, Qian De-Qi, Cao Xiu-Yun. Induction of parthenogenesis and chromosome behavior in plants of parthenogenetic origin in cotton (Gos-sypium hirsutum) II Genome. 1991. Vol. 34, № 2. P. 255—260.
  658. Zhu Z.C., Wu H.S. Induction of haploid plantlets from unpollinated ovaries of Nicotiana tabacum L. cultured in vitro // Acta Genet. Sin. 1981. Vol. 8. P. 63—65.
  659. Zhu Z.C., Wu H.S., An Q.K., Liu Z.Y. Induction of haploid plantlets from unpollinated ovaries of Triticum aestivum cultured in vitro // Acta genet, sinica. 1981. Vol. 8. P. 386—396.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!