Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Изучение молекулярно-биологических свойств вариантов вакцинного штамма Francisella tularensis с делетированными генами системы рекомбинации recA и recD

Диссертация: Изучение молекулярно-биологических свойств вариантов вакцинного штамма Francisella tularensis с делетированными генами системы рекомбинации recA и recD
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ РАБОТЫ Созданы плазмиды pPVAгесА и pPVArecD для аллельного обмена. Разработан алгоритм, позволяющий стабилизировать и аттенуировать вакцинный туляремийный штамм путем инактивации генов системы рекомбинации гесА и recD. В Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур ФБУН ГНЦ ПМБ («ГКПМ-Оболенск») депонированы авторские штаммы F. tularensis subsp… Читать ещё >

Содержание

  • ПЕРЕЧЕНЬ СОКРАЩЕНИЙ, УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ, СТР СИМВОЛОВ, ЕДИНИЦ И ТЕРМИНОВ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Характеристика возбудителя туляремии
      • 1. 1. 1. Лабораторная диагностика
      • 1. 1. 2. Вакцинный туляремийный штамм
    • 1. 2. Система рекомбинации микрорганизмов
      • 1. 2. 1. Модель процесса гомологичной рекомбинации
      • 1. 2. 2. ЯесА белок — ключевой фермент гомологичной 24 рекомбинации
      • 1. 2. 3. ЫесА белок — фермент, участвующий в 27 процессах репарации
      • 1. 2. 4. Фермент КесВСБ (экзонуклеаза V)
      • 1. 2. 5. Организация генома Г. Ш1агеп&1 $>
      • 1. 2. 6. Методы генетического исследования 34 Г. Шагет
      • 1. 2. 7. Генетическая модификация генов 37 рекомбинации вакцинных штаммов — путь к их стабилизации

Изучение молекулярно-биологических свойств вариантов вакцинного штамма Francisella tularensis с делетированными генами системы рекомбинации recA и recD (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

АКТУАЛЬНОСТЬ ПРОБЛЕМЫ:

Туляремия — зоонозная инфекция, имеющая природную очаговость. Особенностью данной инфекции, является множество путей передачи и высокая восприимчивость к заражению у людейПо данным ФГУЗ ФЦГиЭ Роспотребнадзора на территории Российской Федерации природные очаги-туляремии распространенны, повсеместно, поэтому наблюдаемый в настоящее время уровень заболеваемости (в 2010 году зарегистрировано 115 случаев туляремии, по сравнению с 2009 годом -57 случаев) представляет несомненную проблему для Российского здравоохранения.

Возбудителем туляремии является микроорганизм К шШгегтБ. В современной классификации" выделяют четыре подвида К? и/аге/шя: зиЬзЛЫагепБ'^, яиЬяр. Но1агсИса, БиЬзр. тесИааБ1айса и БиЬэр. пошсгйа. Наиболее тяжелую форму заболевания вызывает подвид ШЫгеутэ, циркулирующий на территории Северной Америки [58].

Р. tula.ve.mis и другие виды бактерий рода РгапЫ$е11а представляют немалый интерес для исследователей не только с точки зрения их дифференциации, но и изучения их генетической изменчивости. В, связи с этим актуальной является проблема изучения, эволюционных механизмов генетической изменчивости данного микроорганизма.

Для профилактики туляремии в Российской Федерации используется живая вакцина, основным недостатком * которой является' некоторая реактогенность и нестабильность [12]. Поэтому в настоящее время актуальной является проблема создания нового поколения стабильных и менее реактогенных вакцинных туляремийных штаммов. Одним из путей решения данной проблемы, является стабилизация генома вакцинного туляремийного штамма инактивированием одного из механизмов генетической изменчивости. Наиболее значимым видом генетической ч изменчивости является гомологичная рекомбинация.

В последнее время данныйпроцесс изучается у вакцинных штаммовнекоторых микроорганизмов. Так, туберкулезная вакцина на основе штаммаBacilleCalmette-Guerin (BCG), который былполучен из Mycobacterium bovis,-широко используется в настоящее, время: В разных странах живую/ туберкулезную вакцину готовят на основе. вариантов штамма BCG — (Pasteur, Frappier, Denmark, Russia) [27]. Среди этих вариантов" только у штамма. Russia, имеющего дефект в гене гесА, произошла стабилизация генома: и не изменились протективные свойства [92]. Инактивация генов гесА и recBG в клетках Salmonella: typhimurium привела^ кснижению вирулентности для мышей и замедленному росту в макрофагах (менее выраженному в случае гесА мутантов) — [34]. Дефект в гене reel) у S. typhimurium также привел к аттенуации для мышей и снижению пролиферации в макрофагах [36].

Таким образомна примере штаммов М. bovis BCG и S. typhimurium показаночто мутации в генах системы рекомбинации создают препятствия к изменениюсвойств: длявакцинных штаммов, приводя к их стабильности, а также способствуют снижению их вирулентности для экспериментальных животных, котораякак известно, является одним, из интегральных показателей реактогенности штамма:

Шри сравнительном? анализе нуклеотидной последовательности геномов? видов и разных подвидов* Francisella были обнаружены г ее Аи recD-подобные гены [96]. Ранее было показано наличие функционально-активногоrec/t-подобного гена вгеномах F, tularensis subsp. holarctica [16] и F. tularensis subsp: novicida [28].

Учитывая вышеизложенные факты, изучение роли гесАи recDподобных генов F. tularensis в функционировании системы гомологичной рекомбинации является на настоящий момент актуальной* задачей, решение которой необходимо для понимания. эволюционных механизмов генетической изменчивости туляремийного микроба, биологических и иммунологических свойств и влияния на стабильность вакцинных штаммов F. tularensis.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ: изучение влияния генов системы гомологичной рекомбинации гесА и гееИ на биологические и иммунологические свойства вакцинного штамма Р. Ш1агеп81з.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ:

1. Биоинформационный анализ генов системы гомологичной.

1 рекомбинации гесА и гееИ у Р. Ы1агет1 $.

2. Получение вакцинного варианта штамма Р. ийагетгБ 15/10 с делетированным геном г ее А.

3. Получение продуцента Е. соЫ ВШфЕЗ), экспрессирующего рекомбинантный белок ЯесА Р. ШагепБгй, выделение и очистка белка ЯесА.

4. Получение антител к рекомбинантному белку КесА Р. Ш1агет18 и анализ экспрессии белка ЯесА в клетках туляремийного микроба.

5. Получение вакцинного варианта штамма Т7. ЫЫгетгз 15/10 с делетированным геном гесЭ.

6. Изучение влияния генов гесА и гесБ на свойства вакцинного штамма К Ы1агет1 $ 15/10.

7. Выбор последовательностей нуклеотидов в гене гесИ для ПЦР-диагностики с гибридизационно-флуоресцентной детекцией подвидов Р. Ы1агеп$ 18 конструирование праймера, содержащего СЫ-сайт Е. соИ, для дифференциации подвидов туляремийного микроба.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА. Впервые получены варианты вакцинного штамма Р. шШгетгя 15/10 с инактивированными генами системы гомологичной рекомбинации гесА и г ее И. Показано, что при инактивации гена гесА в геноме штамма Т7. шШгетгя 15/10 снижается вирулентность данного штамма, сохраняется его способность к персистенции в макрофагах и не ухудшаются вакцинные свойства. Установлено, что инактивация гена гесО в геноме штамма Р. ийагатз 15/10 приводит к аттенуированию штамма при сохранении его протективных свойств и значительном снижении способности к гомологичной рекомбинации. Впервые показано отсутствие индукции белка RecA в клетках штамма F. tularensis 15/10 после воздействия УФ-облучения и налидиксовой кислоты.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ РАБОТЫ Созданы плазмиды pPVAгесА и pPVArecD для аллельного обмена. Разработан алгоритм, позволяющий стабилизировать и аттенуировать вакцинный туляремийный штамм путем инактивации генов системы рекомбинации гесА и recD. В Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур ФБУН ГНЦ ПМБ («ГКПМ-Оболенск») депонированы авторские штаммы F. tularensis subsp. holarctica 15/1 OA гесА (per. номер 6622.) с делецией гена г ее А, и F. tularensis subsp. holarctica 15/10 A recD (per. номер B-6823) с делецией гена recD (Федеральный уровень внедрения). Результаты исследований послужили основой для составления двух патентов на изобретение: «Способ стабилизации вакцинного туляремийного штамма» № 2 010 141 704 от 11.10.2010 (Оболенск, 2010, Федеральный уровень внедрения) и «Способ аттеннуации вакцинного туляремийного штамма» № 2 011 131 560 от 28.07.2011 (Оболенск, 2011, Федеральный уровень внедрения). Материалы диссертации используются в программе подготовки аспирантов ФБУН ГНЦ ПМБ (учрежденческий уровень внедрения). ПОЛОЖЕНИЯ ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

1. Делеция гена гесА в геноме вакцинного штамма F. tularensis 15/10 приводит к снижению способности данного штамма к гомологичной рекомбинации. Инактивация гена гесА сопровождается повышением чувствительности к ультрафиолетовому излучению. Полученный штамм F. tularensis 15/10isrecA сохраняет свои ростовые свойства и способность к размножению в макрофагах и не меняет свою устойчивость к бактерицидному действию нормальной кроличьей сыворотки. Жизнеспособность лиофильно высушенной культуры F. tularensis 15/10АгесА не меняется в процессе ее хранения.

2. Антитела к рекомбинантному белку RecA распознают нативный белок RecA штамма F. tularensis 15/10. Количество белка RecA в клетках штамма Е. Ш1агепБ1з 15/10 после воздействия УФ-облучения и налидиксовой кислоты не меняется.

3. Делеция гена гесИ в геноме: штамма Е. Ш1агеп81 В 15/10 приводит к подавлениюгомологичнойрекомбинацииШтамм Е. Магет18 15/10АгесВ не меняет свою — устойчивость, к бактерицидному действию" нормальной кроличьей сыворотки, обладает пониженными? ростовыми" свойствами изамедленнойспособностью к размножению в макрофагах, по сравнению с исходным вакцинным туляремийным штаммом.

4. У штамма, Е. шШгетшБ 15/10* с. инактивированным геном гесА на? порядок снижена вирулентность для: мышей, при: сохранении его протективных свойств. Делециягена гесБ у вакцинного — туляремийного штамма приводит к его аттенуированию. и сохранению протективных: свойств.

5. Созданная система праймеров и зондов на основе-вариабельной последовательности гена1 гесВ позволяетпроводить дифференциацию подвидов туляремийного микроба методом ПЦР в режиме реального времени (ПЦР-РВ). Сконструированный праймер, содержащий СЫ-последовательность Е. соЫ, позволяет различать., подвиды туляремийного микроба методом ПЦР.

РАБОТА ВЫПОЛНЕНА в лаборатории микробиологии туляремии? (ЛМТ) ШЦ ПМБ по Государственным контрактам № 118-Д от 115.06£0091г. и № 124-Д от 11.06.2009 г. в рамках Федеральнойцелевой. программы «Национальная система химической^ и биологической безопасности Российской Федерации (2009;2013 годы)».

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ.

Материалыдиссертациидоложены и представленына: научно-практической школегконференции молодых ученых и специалистов «Современные технологии обеспечения биологической безопасности» (Оболенск, 25−27 мая 2010 г., 31 мая- 2 июня 2011 г.), III научно-практической школе-конференции «Современные технологии обеспечения биологической безопасности» (Оболенск, 31 мая- 2 июня 2011 г.) и на третьем съезде военных врачей медико-профилактического профиля вооруженных сил Российской Федерации (Санкт-Петербург, 8−10 декабря 2010 г.) «Достижения науки и практики в обеспечении санитарно-эпидемиологического благополучия вооруженных сил Российской Федерации». Апробация диссертации состоялась на заседании межлабораторного семинара ФБУН ГНЦ ПМБ 21 июня 2011 г.

ПУБЛИКАЦИИ.

Основное содержание работы отражено в 9 научных публикациях, в том числе в 4 статьях журнала из списка изданий, рекомендованного ВАК, а также в двух принятых к рассмотрению заявках на патент Российской Федерации.

ОБЪЕМ И СТРУКТУРА ДИССЕРТАЦИИ.

Диссертация изложена на 129 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, результатов и обсуждения, выводов и списка литературы, включающего 20 работ отечественных и 151 работы зарубежных авторов. Работа иллюстрирована 31 рисунками и 14 таблицами.

ВЫВОДЫ.

1. Показано, что гомология нуклеотидных последовательностей гена гесА подвидов Р. ййагет'^ составляет 99%, а на уровне видов у Р. ШагепБгз и Р. phylomiraghia снижается до 81%. Гомология последовательностей гена гесВ" для разных подвидов Р. ш1агет1Б составляет около 90%, а для видов Р. ИйагегшБ и Р. phylomiraghia -85%. Белки 11есА видов Р. 1и1агеп$ 1Б и Р. phylomiraghia отличаются единичными аминокислотными заменами и делециямив аминокислотных последовательностях белка И-есО у разных видов и подвидов туляремийного микроба присутствуют протяженные области делеций и многочисленные аминокислотные замены.

2. Создан продуцент Е. coli, синтезирующий рекомбинантный белок RecA F. tularensis 15/10, состоящийиз 359 а.о. продукта гена гесАи 6 остатков гистидина. Мышиная сыворотка к рекомбинатному белку RecA F. tularensis 15/10 выявляет белковую полосу с молекулярной массой 43 кДа в лизате клеток F. tularensis* 15/10- а также белковые полосы с молекулярной массой 38 кДа в лизатах клеток Е. coli и Y: pestis .

3. Количествобелка RecA вклетках F. tularensis 15/10 после воздействия УФ-облучения и налидиксовой кислоты, не меняетсятранскрипционная активность гена гесА в течение логарифмической фазы роста клеток F. tularensis 15/10 в жидкой питательной среде, определенная методом ПЦР-РВ, не меняется, что косвенно-указывает на конститутивный синтез данного белка в-клетках туляремийного микроба.

4. Получен штамм F. tularensis 15/10 Ar ее А, культурально-морфологические свойства которого при выращивании на плотных и. жидких питательных средах, способность, выживать в нормальной кроличьей? сыворотке и размножатьсяв макрофагоподобных клетках J774. A1, чувствительность к пероксиду водорода" и частота возникновения' стрептомицин-резистентных мутантовсущественно не* отличаются от таковых исходного вакцинного > штамма*. Однако, у штамма-F. tularensis 15/10 Ar ее А, по сравнению-с исходным, подавлена способность к гомологичной' рекомбинации и повышена чувствительность к УФ-облучению.

5. Получен штамм F. tularensis 15/10 ArecD, обладающий сниженной способностью к размножению в макрофагоподобных клетках J774. A1, подавленным ростом на плотных и жидких питательных средах, сниженной способностью к гомологичной рекомбинации, по сравнению с исходным вакцинным штаммом. При этом чувствительность данного штамма к пероксиду водорода и частота возникновения стрептомицин-резистентных мутантов не изменились.

6. Показано, что протективные свойства штаммов F. tularensis 15/10 А гесА и F. tularensis 15/1 QAreeD не изменились по сравнению с исходным вакцинным штаммом. Однако, остаточная вирулентность штамма F. tularensis 15/10АгесА ниже на порядок, а штамма F. tularensis 15/10АrecD — на шесть порядков, по сравнению с таковой штамма F. tularensis 15/10.

7. Система праймеров и зондов, созданная для детекции гена recD методом ПЦР в реальном времени, обладает специфичностью, позволяющей дифференцировать подвиды туляремийного микроба.

8. Разработана ПЦР-система дифференциации подвидов F. tularensis с помощью праймера Chi lf.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенная-работа является новым этапом в изучении* влияния генов системы гомологичной рекомбинации гесА и recD на свойства вакцинного туляремийного штамма:

Для профилактики туляремии в РФ используется живая вакцина, созданная на основе штамма F. tularensis 15/10. Одним из недостатков этой вакцины является нестабильность, выражающаяся в R-S диссоциации, приводящей к снижению иммуногенности, поэтому проблема стабильности и изменчивости вакцинного туляремийного штамма остается актуальной-[58]. Одним из путей решения данной, проблемы является стабилизация генома вакцинного' туляремийного* штамма инактивацией одного из механизмов генетической изменчивости. Наиболее значимым видом генетической изменчивости являетсягомологичная* рекомбинация, обеспечивающая воспроизводство" генетического разнообразия* и поддержание целостности-генома. Еще в 1965 году было1 выявленочто мутации, вызывающие нарушение рекомбинации, приводят, впоследствии, к снижению способности давать рекомбинантное потомство при конъюгации и трансдукции [41].

Известно, что гены системы рекомбинации влияют не только на такие биологические процессы как репарация ДНК, SOS мутагенез, но и на i иммунологические свойства вакцинных штаммов. Ранее было показано, что инактивация генов гесА и гесВС в клетках S. typhimurium приводит к снижению вирулентности для мышей и замедленному росту в макрофагах [34- 36]. Мутации в генах системы рекомбинации в штаммах М. bovis BCG, урЫтипит также явились определяющими факторами снижения^ их остаточной? вирулентности: и препятствовали изменению их свойств. Эти-факты позволили? нампредположить, что инактивация ключевых геноврекомбинации, которыми? являются. КесА, и КесВСЕ) мультиферментный: комплекс экзонуклеазы V, может привести к стабилизации свойств штаммови может быть, полезна при? создании и улучшении свойств? существующих вакцинныхштаммов.

Компьютерный анализтранслированных аминокислотных последовательностейР. 1и1агетшБ, представленных вбазеданныхМШ1- показал консервативность строения^ Нес, А белка: науровнеподвидов Е-.ЛиЫгепБ^ различия проявлялись толькопо одной аминокислоте, а на видовом уровне различия^ между Е. ЬиХагетгз и F-.phylomiragh.ia'. — в виде единичных аминокислотных замен? иделеций. При этом" ЛесВСВ мультиферментныйкомплекс обладал большейвариабельностью? ваминокислотной последовательности субъединиц как на уровне видов, так и на: уровне подвидов в виде протяженных областейделеции. имногочисленных аминокислотных замен. Поэтому нам показалосьинтересным изучение роли и влиянияпродуктов: геновгесАи гесО на-биологические и иммунологическиесвойства/7. Ш/ягелшУ.

Для этого нами были получены штаммы Е. Ш1агет18 Т5/10с-делецией генов-. гесМ и гееВ с использованием рекомбинантныхплазмид. рРУД г ее А, рРУЛгёсД созданных на основе суицидного вектора рРУ [73].

Исследование биологических и иммунологиических свойств полученных штаммов выявило, что инактивация генов гесАи- гесВ:

— не оказывает существенного влияния: на ростовые свойства при росте на агаризованных и жидких питательных средах (необходимо отметить, что для штамма Е. ш1агепБ18 5/АгееВ присутствовали различия: в динамике роста на жидкой питательной среде и в размере колоний на агаризованной среде);

— не оказывает влияния на эффективность размножения штаммов в макрофагоподобных клетках (при этом для штамма F. tularensis 15/10АrecD было отмечено некоторое снижение этого показателя).

— по способности противостоять факторам неспецифического иммунного^ ответа, в" частности, к бактерицидному действию нормальной кроличьей сыворотки, дефектные штаммы не у ступали^ исходному;

— наблюдается" снижение остаточной вирулентности для мышей с сохранением при этом протективных свойств;

— значительно снижена способность к гомологичной рекомбинации, частота интеграции чужеродной ДНК составляет менее 10~9;

— делеция генов гесА и recD не влияет на действие таких повреждающих факторов, как перекись водорода и стрептомицин, а действие УФоблучения оказывает более губительное воздействие на штамм F. tularensis 15/10 с делецией гена гесА, что подтверждает ключевую роль этого гена в процессах SOS — репарации.

Таким образом, мы подтвердили функциональную взаимосвязь между гомологичной рекомбинацией и репарацией поврежденной ДНК, и, как следствие, взаимосвязь между УФ-чувствительными мутантами и их рекомбинационной способностью [41−43- 82- 164].

Суммируя вышеизложенное, нам кажется перспективным, использование предложенного нами подхода генетической модификации механизма системы рекомбинации путем инактивации ее ключевых звеньев, что может явиться предпосылкой для создания улучшенного туляремийного вакцинного штамма со сниженной остаточной вирулентностью и стабильными вакцинными свойствами.

Для определения уровня экспрессии RecA и его зависимости от воздействия таких индуцирующих повреждения ДНК факторов, как УФоблучения и налидиксовой кислоты, нами был создан экспрессирующий вектор pET23b (+)/RecA-(His)6 который позволил нам провести выделение секретируемого белка Р. 1и1агет18 15/10 из клеток Е. соН ВЬ21 с высокой степенью очистки и получить антисыворотку к этому белку. Полученная-антисыворотка содержала специфические антитела к этому белку, позволяющие детектировать нативный белок ЯесА Р. шШгепягя- 15/10:

Результаты, полученные с помощью иммуноблоттинга* и анализа активности гена гесА методом ПЦР-РВ совмещенной с обратной транскрипцией, показали, что синтез белка ЯесА в клетках Р. Ыагет18 15/10, по-видимому, является конститутивным и не индуцируется под воздействием УФ-облучения и налидиксовой кислоты.

На основании проведенного нами, анализа последовательности гена гесВ выявлены вариабельные области, послужившие основой для-создания системы праймеров и зондов, направленных на детекцию и разделение возбудителей туляремии. Даннаясистема имеет хорошую. чувствительность и специфичность, подтвержденную при исследовании разных подвидов туляремийного микроба, что позволяет ее дальнейшее использование для созданиия тест-системы основанной на мультилокусной ПЦР* в режиме реального времени. На основе сравнительного анализа нуклеотидной последовательности геномов подвидов туляремийного микроба" нами был сконструированпраймер СЫ Н позволяющий проводить внутривидовую* дифференциацию^. Ш/агетшя.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. М., Лапин A.A., Павлов В. М., Мокриевич A.Hi, Миронова Р. И., Дятлов И. А. ПЦР дифференциация подвидов Francisella tularensisc помощью одного праймера. // Проблемы особо опасных инфекций.- 2011. N. 107.-С. 46−48.
  2. H.A. Инфекция и иммунитет у животных, залегающих в зимнюю спячку. // Журн. микробиол. — 1944. Т. 3. — С. 5−14.
  3. В.М. Гомологичная генетическая рекомбинация. // Сорософский образовательный журнал. 1998. — N. 7. — С. 13−21.
  4. A.A., Павлов В. М., Мокриевич А. Н., Домотенко Л. В., Храмов М. В. Простая жидкая питательная среда для молекулярно-генетических исследований Francisella tularensis.il Проблемы особо опасных инфекций.-2009.-N. 102-С. 66−67.
  5. Ю.И. Требования- к качеству лабораторных грызунов и условия их содержания // Руководство по вакцинному и сывороточному делу.- М.: Медицина, 1978. С. 24−36.
  6. . Гены. М.: Мир, 1987. 544 с.
  7. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Изд-во Мир, Москва. 1984. 480 с.
  8. И.С. Таксономия, идентификация и иммунологическая диагностика возбудителя туляремии.- Автореф. дис. д-ра биол. наук. М., 1990. 47 с.
  9. А.Н., Фурсов В. В., Павлов В. М. Криотрансформация плазмид. //Проблемы особо опасных инфекций. 1994. — N. 4. — С. 186−190.
  10. Т.Н., Емельянова О. С., Майский И. Н., Олсуфьев Н. Г., Руднева Г. П. Туляремия. М.: Медгиз, 1960. С. 459.
  11. Н.Г. Таксономия, микробиология и лабораторная диагностика возбудителя туляремии. М.: Медицина, 1975. С. 186.
  12. Н. Г. Мещерякова И.С. Внутривидовая таксономия возбудителя туляремии Francisella tularensis МкКой и Чепин. // Ж. гигиенны, эпидемиол., микробиол. и иммунол.-1982-N. 26-С. 291−299.
  13. Оноприенко Н. Н, Павлович Н. В. Роль липополисахарида в токсичности бактерий рода Francisella. // Мол. генетика, микробиол. и вирусол. -2002. -№ 3.- С. 25- 28.
  14. В.М., Мокриевич А. Н. Клонирование гена F. tularensis, кодирующего синтез RecA подобного белка в Е. coli. Актуальные проблемы профилактики туляремии: Тез. докл. Всесоюзн. научн. конф. Октябрь 1991 г., Симферополь. — М.: 1991.- С. 142.
  15. В.М., Родионова И. В., Мокриевич А. Н., Мещярикова И. С. Изоляция и молекулярно-генетическая характеристика криптической плазмиды из Francisella novicida-подобного штамма F6168 // Мол. генет. микробиол. вирусол. -1994. N 3. — G. 39−40.
  16. Под редакцией академика РАМН, профессора Онищенко Г. Г., профессора В. В. Кутырева чл.-корр. РАМН- Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство
  17. А.С. Молекулярная биология. Структура и биосинтез нуклеиновых кислот. Издательство: Высшая школа. 1990. -353.с.
  18. Хесин, Р: Б. Непостоянство генома. Издательство-Р: М.-Р. Наука. -1985. 472.С.
  19. S.K., Taylor A.F., Chaudhury А. М., and Smith G. R. recD-P. the gene for an essential third subunit of exonuclease V. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. — V. 83. — P. 5558−5562.
  20. Ancuta P., Pedron Т., Girard R. et al. Inability of the Francisella tularensis" lipopolysaccharide to m imic or to antagonize the induction of cell activation by endotoxins // Infect Immun. 1996. — Vol. 64. — P. 2041−2046:
  21. Anthony L.S., Gu M.Z., Cowley S: C. et al. Transformation and allelic replacement in Francisella spp. // J. Gen. Microbiol.-1991. V. 137. — P. 26 972 703.
  22. Bailone A., Sommer S., and Devoret R. Mini-F plasmidinduced
  23. SOS signal in Escherichia coli is recBC dependent. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1985. V. 821-P. 5973−597.7. '
  24. Bailone A., Sommer S., Knezevic J., Dutreix M., and Devoret R. A recA protein mutant deficient in its interaction with the umuDC complex. // Biochimie.-1991.-V. 73.-P: 479−484.
  25. Bates H., and Bridges B.A. Mutagenic DNA repair in Eschenchia coli. XIX. On the roles of recA protein in ultraviolet light mutagenesis. //Biochimie.- 1991.-V. 73.-P. 485−489.
  26. Behr M.A. BCG different strains, different vaccines? // Lancet Infect Dis. -2002.-2.-N. 2.-P. 86−92.
  27. Berg J.M., Khisimuzi MDLULI E., Nano F. Molecular Cloning of the recA Gene and Construction of a recA Strain of Francisella novicida. //Infect, and immun.- 1992.- V. 60. (2).- P. 690−693.
  28. Biek D.P., and Cohen S. N. Identification and characterizationof recD, a gene affecting plasmid maintenance and recombination in Escherichia coli.// J. Bacterid.-1986.-V. 167-P. 594−603.
  29. Birge E.A., and Low K.B. Detection of transcribable recombination products following conjugation in rec+, recB- and recC- strains of Escherichia coli K-12.// J. Mol. Biol.-1974.-V. 83-P. 447−457.
  30. Brcic-Kostic K., Salaj-Smic T., Marsic E., Kajie S., StojiUkovic I., and Trgovcevic Z. Interaction of recB CD. enzyme with DNA damaged by gamma radiation.//Mol.-1991.-Gen. Genet.-V. 228.-P. -136−142.
  31. Buchmeier N.A., Lipps C.J., So M.Y.H., and Heffron F. Recombination-deficient mutants of Salmonella typhimurium are avirulent and sensitive to the oxidative burst of macrophages.// Mol. Microbiol.-1993.-V. 7.-P. 933−936.
  32. Burckhardt S. E., Woodgate R., Scheuermann R. H., and Echols H. UmuD mutagenesis protein of Escherichia coli-P: overproduction, purification, and cleavage by recA.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1988.-V. 85-P. 1811−1815.
  33. Cano D., Pucciarelli M., Garcia-del Portillo F., Casadesus J>. Role of the RecBCD’recombination-pathway in Salmonella virulence.// J Bacteriol.- 2002.-V. 184(2)-P: 592−595
  34. Chaudhury A. M., and Smith G. R. A new class of Escherichia coli recBC mutants-P. implications for the role of recBC enzyme in homologous recombination.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1984.-V. 81- P: 7850−7854.
  35. Chen H.-W., Ruan B., Yu, M., Wang J. and Julin D.A. The RecD subunit of the RecBCD enzyme from Escherichia coli is a single-stranded DNA-dependent ATPase. // J. Biol. Chem. 1997. — V. 272: — P. 10 072−10 079.
  36. Chow S. A., Chiu S. K., and Wong B- C. RecA proteinpromoted homologous pairing between duplex molecules-P. functional role of duplex regions of gapped duplex DNA.//Biochimie.-1991. V. 73-Pi 157−161.
  37. Chow S.A., Chiu S.K., and Wong B.C. RecA proteinpromoted homologous pairing and strand exchange between intact and partially single-stranded duplex DNA.// J. Mol. Biol.- 19 921-V. 223 -P: 79−93″
  38. Clark A.J., and Margulies A. D. Isolation and characterizationof recombination-deficient mutants of E. coli K-12.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA-1965.-V. 53-P. 451−459.
  39. Clark A.J. Recombination-deficient mutants of E. coli and other bacteria.// Annu. Rev. Genet 1973.-V. 7.-P. 67−86.
  40. Clark, A.J., and M. R. Volkert. A new classification of pathways repairing pyrimidine dimer damage in DNA, In E. C. Friedberg, P. C. Hanawalt, and C. F. Fox (ed.), DNA repair mechanisms. Academic Press, Inc., New York. 1978. -P. 57−72.
  41. Conley E.C., and West S.C. Homologous pairing and the formation of nascent synaptic intermediates between regions of duplex DNA by recA protein.// Cell -1989.-V. 56.-P. 987−995.
  42. Conley E.C., and West S.C. Underwinding of DNA associated with duplex-duplex pairing by recA protein.// J. Biol. Chem.- 1990.- V. 265.-P. 10 156−10 163.
  43. Cole R.S. Inactivation of Eschenchia coli, F' episomes at transfer, and bacteriophage lambda by psoralen plus 360-nm light-P. significance of deoxyribonucleic acid cross-links.//J. Bacteriol.- 1971.- V. 107.-P. 846−852.
  44. Cole R.S. Properties of F' factor deoxyribonucleic acid transferred from ultraviolet-irradiated donors-P: photoreactivation in the recipient and the influence of recA, recB, recC, and uvr genes.// J*. Bacteriol.- 1971.-V. 106:-P: 143−149.
  45. Cox M.M., and Lehman I. R. Directionality and polarity in recA proteinpromoted branch migration.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1981. — V. 78.-P. 6018−6022.
  46. Cox M.M., and Lehman I.R. RecA protein of Eschenichia coli promotes branch migration, a kinetically distinct phase of DNA strand exchange.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1981.-V. 78.-P. 3433−3437.
  47. De la Puente-Redondo V.A., del Blanco N.G., Gutierrez-Martin C.B., Garcia-Pena F.J., Ferri E.F.R. Comparison of different Approaches for typing of Francisella tularensis strains. // J. Clin. Microbiol. 2000. — V. 38. — N. 3. -P. 1016−22.
  48. DasGupta, C., Shibata T., Cunningham R. P, and Radding C.M. The topology of homologous pairing promotedby recA protein.// Cell. 1980. — V. 22.. p. 437−446.
  49. DasGupta C., and Radding C.M. Polar branch migration promoted by recA protein-P. effect of mismatched base pairs.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1982.--V. 79. P. 762−766.
  50. DiCapua E., Engel A., Stasiak A., and Koller T. Characterizationof complexes between recA protein and duplex DNA by electron microscopy.// J. Mol. Biol.- 1982.-V. 157.- P. 87−103.
  51. DiCapua E., Schnarr M., Ruigrok R W., Lindner P., and Timmins P. A. Complexes of recA protein in solution. A study by small angle neutron scattering.// J. Mol. Biol.- 1990.- V. 214 -P. 557−570.
  52. Editor by Ngo T.T. and Lenhoff H.M. Enzyme-mediated immunoassay.// Plenum Press, New York and London. 1988. — P 444.
  53. Egelman E.H., and Stasialk A. Structure of helical recA-DNA complexes. Complexes formed in the presence of ATP--y-S or ATP.// J. Mol. Biol.- 1986.-V. 191.-P. 677−697.
  54. El’bert B.I., Tinker I.S., Romanova V. P., Zavarzina K. V., and Puchkeva T. I. On the epidemiological effectiveness of cutaneous v accination with tularemia yolk vaccine against tularemia. // Rostov. 1947. — V. 6. — P. 62−70.
  55. Ellis J., Oyston P.C.F., Green M., Titball R.W. Tularemia. // Clinical. Microbiol. Rev. 2002. — P. 631−646
  56. Ehrlich, S.D. DNA cloning in Bacillus subtilis. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978. — V. 75. — P. 1433−1436.
  57. Ennis D.G., Ossanna N., and D.W. Mount. Genetic separation of Eschenichia coli recA functions for SOS mutagenesis and repressor cleavage.// J. Bacteriol.- 1989.-V. 171.-P. 2533−2541.
  58. Finch P.W., Storey A., Brown K., Hickson I.D., and Emmerson P.T. Complete nucleotide sequence of recD, the structural gene for the alpha subunit of exonuclease V of Escherichia coli. // Nucleic Acids Res. 1986. — V. 14. — P. 85 838 594.
  59. Finch P.W., Storey A., Chapman K.E., Brown K., Hickson I.D., and Emmerson P.T. Complete nucleotide sequence of the Escherichia coli recB’gene. // Nucleic Acids Res. 1986. — V. 14. — P. 8573−8582.
  60. Finch, P.W., Wilson R E., Brown K., Hickson I. D., Tomkinson A. E., and Emmerson P.T. Complete nucleotide sequence of the Escherichia coli recC gene and of the thyA-recC intergenic region. // Nucleic Acids Res. 1986. — V. 14.1. P. 4437−4451.
  61. Fishel R. General genetic recombination, In U. N. Streips and R. E. Yasbin (ed.), Modern microbial genetics. Wiley-Liss, New York. 1991.-P. 91−121.
  62. Fischer W., Haas R. The RecA Protein of Helicobacter pylori Requires a Posttranslational Modification for Full Activity.// J. Bacteriology.- 2004- V. 186(3). -P. 777−784
  63. Frank DW, Zahrt TC. Genetics and genetic manipulation in Francisella tularensis. // Ann N Y Acad Sci. 2007. — V. 1105. — P. 67−97.
  64. Franklin N. Illegitimate recombination, in The Bacteriophage lambda. // Gold Spring Harbor, New York.-1971. P. 175−194.
  65. Ganesan S., and Smith G. R. Strand-specific binding to duplex DNA ends by the subunits of Escherichia coli recBCD enzyme. // J. Mol. Biol. 1993. — V. 229. -P. 67−78.
  66. Golovliov I., Sandstrom G., Ericsson M., Sjostedt A., and Tarnvik A. Cytokine expression in the liver during the early phase of murine tularemia. // Infect. Immun. 1995. — V. 63. — P. 534−538
  67. Golovliov I., et al. An Attenuated Strain of the Facultative Intracellular Bacterium Francisella tularensis Can Escape the Phagosome of Monocytic Cells. // Infect.Immun. 2003. — V. 71. — P. 5940−5950.
  68. Golovliov I, Sjostedt A, MokrievichA, Pavlov V. A method for allelic replacement in Francisella tularensis. // FEMS Microbiol Lett.- 2003-V. 222.-P. 273−280.
  69. Gray C.G., Cowley S.C., Cheung K.K., Nano F.E. The identification of five genetic loci of Francisella novicida associated with intracellular growth. // FEMS Microbiol Lett. 2002.- V. 215.-P. 53−56.
  70. Holliday R. A. Mechanism for gene conversion: in fungi. // Genet. Res. 1964-:-V. 5: — P: 282−304.,, '.: .
  71. Horii: T., T. Ogawa, T. Nakatani, T. Hase, H. Matsubara, and: H. Ogawa. Regulation of the SOS functions-P. purification of E. coli LexA protein and determination of its specific site cleaved: by the-RecA protein-// Cell- 1981, — V. 27-P. 515−522.
  72. Howard-Flanders P,. and Boyce R.P. DNA repair and genetic recombination-P: studies on mutants of Escherichia coli defective: in these processes.//Radiat. Res.- 1966.- V. 6 P- 156−181.
  73. Johansson A., Berglund L., Eriksson U., et. al. Comparative analysis of PGR versus culture for diagnosis of ulceroglandular tularemia // J. Clin. Microbiol. -2000. V. 38. N. 1. — P. 22 — 26.
  74. Johansson A., Forsman M! and Sjostedt A. The development of tools for diagnosis of tularemia and typing of Francisella tularensis. II APMIS. 2004. -V. 112--P. 898−907.
  75. Kahn R., Cunningham R. P., DasGupta C., and Radding C. M. Polarity of heteroduplex formation promoted by Escherichia coli recA protein. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1981.-V. 78. P. 4786−4790.
  76. Karlin S. and Brocchieri L. Evolutionary C onservation of RecA G enes in Relation to Protein Structure and Function. // J1 Bacteriol. 1996. — V. 178. — N. T. -P. 1881−1894.
  77. Karoui El M., Ehrlich D., and Gruss A. Identification of the lactococcal exonucleaseyrecombinase and its modulation by the putative Chi sequence. // Proc. Natl. Acad: Sci. USA. 1998 — V. 95, P: 626−631.
  78. Keller M., Boettger E.C., Sande P. Tuberculosis vaccine strain Mycobacterium bovis BCG Russia is a natural recA mutant. // Nature Precedings! 2008.
  79. Kowalczykowski S. C. Mechanistic aspects of the DNA strand exchange activity of E. coli recA protein. // Trends Biochem. Sci. 1987.-V. 12.-P: 141−145.
  80. Kowalczykowski S. C., Dixon D: A., Eggleston A. K., Lauder S. D., and Rehrauer W. M. Biochemistry of Homologous Recombination in Escherichia coli. // Microbiol. Rev. 1994. — V. 58. — N. 3. — P! 401−465.
  81. Kugeler K. J., Gurfield N., Creek J. G. et al. Discrimination between-Francisella tularensis and Francisella-like endosymbionts when screening ticks by PCR // Appl. Environ. Microbiol. 2005. — V. 7. — N. 11. — P. 7594 — 7597.
  82. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4.//Nature (London). 1970. — V. 227.-P. 680−685.
  83. Larsson P., et al. The complete genome sequence of Francisella tularensis, the causative agent of tularemia. // Nature Genetics. -2005. V. 37. — P. 153 7 159.
  84. Lin P. F., and P. Howard-Flanders. Genetic exchanges caused by ultraviolet photoproducts in phage lambda DNA molecules-P. the role of DNA replication. // Mol. Gen. Genet. 1976. — V. 146. — P: 107−115.
  85. Little J. W., Edmiston S. H., Pacelli L. Z., and Mount D: W. Cleavage of the Escherichia coli lexA protein by the recA protease. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1980.-V. 77.- P. 3225−3229.
  86. LoVullo E. D, Sherrill L.A., Perez L.L. & Pavelka M.S., Jr. Genetic tools for highly pathogenic Francisella tularensis subsp. tularensis. II Microbiology. 2006. -V. 152.-P: 3425−3435.
  87. Long G.W., Oprandy J J., Narayanan R.B., et. al. Detection of Francisella tularensis in blood by polymerase chain reaction // J. Clin. Microbiol. 1993. -V.31.N. l.-P. 152- 154.
  88. Lovett SiT., DeLuca C. L., and Kolodner R. D. The genetic dependence of recombination in recD mutants of Escherichia coli. // Genetics. 1988. — V. 120. -P. 37−45.
  89. Lowiy O.H., Rosenbrough N.R., Farr A.L. and Randall RJ. Protein measurement with the folin phenol.// J. Biol. Chem. 1951.- Y. 193. — P. 115−119.
  90. Maier T.M., Havig A., Casey M., Nano F.E., Frank D: W., and Zahrt T.C. Construction and Characterization of a Highly Efficient Francisella Shuttle Plasmid. // Applied and Environmental Microbiology. 2004. — P. 7511−7519.
  91. Markham B.E., Harper J.E., and Mount D.W. Physiology of the SOS response-P. kinetics of lexA and recA transcriptional activity following induction. // Mol. Gen. Genet.- 1985.-V. 198. P. 207−2121
  92. McEntee K., Weinstock G.M., and Lehman I.R. Initiation of general recombination catalyzed in vitro by the recA protein of Escherichia coli.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1979. — V. 76.- P. 2615−2619.
  93. McEntee, K., Weinstock G.M., and Lehman I.R. RecA protein-catalyzed strand assimilation-P. stimulation by Escherichia coli single-stranded DNA-binding protein. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1980.- V. 77. — P. 857−861.
  94. McEntee K., Weinstock G.M., and Lehman I. R. Binding of the recA protein of Escherichia coli to single- and doublestranded DNA. // J. Biol. Chem. 1981. -V. 256. — P. 8835−8844.
  95. McEntee K., Weinstock G.M., and Lehman I.R. DNA and nucleoside triphosphate binding properties of recA protein from Escherichia coli. // Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 1981. — V. 26: — Pi 265−279.
  96. McPartland A., Green L., and Echols H. Control of recA gene RNA in E. coli regulatory and signal genes. // Cell.- 1980. V. 20. — P. 731−737.
  97. Miller R.V., and Kokjohn T.A. General microbiology of recA-P. environmental and evolutionary significance. //Annu. Rev. Microbiol. 1990. -V. 44. — P. 365−394.
  98. Muniyappa K., Shaner S. L., Tsang S. S., and Radding C. M. Mechanism of the concerted action of recA protein and helix destabilizing proteins in homologous recombination. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. — V. 81. — P. 2757−2761.
  99. Nano F.E., Zhang N., Cowley S.C. et al. A Francisella tularensis pathogenicity island required for intramacrophage growth. // J. Bacteriol. 2004. -V. 186.-P. 6430−6436.
  100. Niebylski M. L., Peacock M. G., Fischer E. R. et al. Characterization of an endosymbiont infecting wood ticks, Dermacentor andersoni, as a member of a genus Francisella // Appl. Environ. Microbiol. 1997. — V. 63. — P. 3933 — 3940.
  101. Noda H., Munderloh U. G., Kurtti T. J. Endosymbionts of ticks and their relationship to Wolbachia spp. and tick-borne pathogens of humans and animals // Appl. Environ. Microbiol. 1997. — V. 63. — P. 3926 — 3932.
  102. Norqvist, A., Kuoppa K. Sandstrom G. Construction of a shuttle vector for use in Francisella tularensis. FEMS.// Immunol Med Microbiol. 1996. — V. 13. -P. 257−60.
  103. Ogawa T., Wabiko H., Tsurimoto T., Horii T., Masukata H., and Ogawa H. Characteristics of purified recA protein and the regulation of its synthesis in vivo. // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1978. — V. 43. — P. 909−916.
  104. Oliver D.B., and Goldberg E.B. Protection of parental T4 DNA from a restriction exonuclease by the product of gene 2. // J. Mol. Biol. 1977. — V. 116.-P. 877−881.
  105. Oyston P.C.F. Francisella tularensis: unravelling the secrets of an intracellular pathogen. // Journal of Medical Microbiology. 2008. — V. 57. -P. 921−930.
  106. Papavinasasundaram K.G., Anderson C., Brooks P.C., Thomas N.A. Movahedzadeh F., Jenner P.J., Colston M.J. and Davis E.O. Slow induction of RecA by DNA damage in Mycobacterium tuberculosis. II Microbiology. 2001. V. 147.-P. 3271−3279.
  107. Pavlov V.M., et al. Isolation and molecular-genetic characteristic of a cryptic plasmid from the Francisella novicida like F6168 strain.// Mol Gen Mikrobiol Virusol. 1994. — P. 39−40.
  108. Pavlov V.M., Mokrievich A. N., Volkovoy K. Cryptic plasmid pFNLlO from Francisella novicida-like F6168: the base of plasmid vectors for Francisella tularensis. IIFEMS Immunol Med Microbiol. 1996. — V. 13. — P. 253−56.
  109. Porter, R. D., T. McLaughlin, and B. Low. Transduction vs. «conjuduction"-P. evidence for multiple roles for exoV in genetic recombination in E. coli.// Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1978. V. 43. — P: 1043−1046.
  110. Register, J.C., III, and Griffith J. 10 nm recA protein filaments formed in the presence of magnesium and adenosine 5'-0−3-thiotriphosphate may contain RNA. // Mol. Gen. Genet. 1985. — V. 199.- P. 415−420.
  111. Rinken R., Thomas B., and Wackernagel W. Evidence that recBC-dependent degradation of duplex DNA in Escherichia coli recD mutants involves DNA unwinding. // J. Bacteriol. 1992. — V. 174.- P. 5424−5429.
  112. Roberts J. W., Roberts C.W., Craig N.L., and Phizicky E. M. Activity of the Escherichia coli recA gene product. // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. -1978.-V. 43 P. 917−920.
  113. Rould E., Muniyappa K., and Radding C.M. Unwinding of heterologous DNA by recA protein during the search for homologous sequences.// J. Mol. Biol. -1992.-V. 226.-P. 127−139.
  114. Rupp W.D., and Howard-Flanders P. Discontinuities in the DNA synthesized in an excision-defective strain of Escherichia coli following ultraviolet irradiation. // J. Mol. Biol. 1968. — V. 31. — P. 291- 304.
  115. Rupp W.D., Wilde G.E., III, Reno D.L., and Howard-Flanders P. Exchanges between DNA strands in ultravioletirradiated Escherichia coli. //J. Mol. Biol. -1971 -V. 61.- P. 25−44.
  116. Russell C. Bt, Thaler D.S., and Dahlquist F.W. Chromosomal transformation of Escherichia coli recD strains with linearized’plasmids. // J. Bacteriol. 1989. -V.171.-P: 2609−2613.
  117. Sancar A., and Rupp W.D. Physical map of the recA gene.// Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1979. — V. 76*. — P. 3144−3148.
  118. Sandstrom G. The tularemia vaccine. // J. Chem. Tech. Biotech. 1994. -V. 59.-P. 315−320
  119. Sandri R.M., and Berger H. Bacteriophage PI-mediated generalized transduction in Escherichia coli-P. fate of transduced DNA in rec+ and recA -recipients.// Virology. 1980. — V. 106. — P. 14−29.
  120. Scoles G. Phylogenetic analysis of the Francisella-like endosymbionts of Dermacentor ticks // J. Med. Enthomol. 2004.- V. 41. — P. 277 — 286.
  121. Shibata T., DasGupta C., Cunningham R.P., and Radding C.M. Purified Escherichia coli recA protein catalyzes homologous pairing of superhelical DNA and single-stranded fragments.// Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1979: — V. 76.-P. 1638−1642.
  122. Sjostedt A., Eriksson U., Berglund L., Tarnvik A. Detection of Francisella tularensis in ulcers of patients with tularemia by PCR. // J. Clin. Microbiol. 1997. -V. 35.-N. 5.-P. 1045−1048.
  123. Sjostedt A., Family XVII. Francisellaceae, genus I. Francisella. // Brenner DJ. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology.-NY., 2003. — P. 201−210.
  124. Simon R., Priefer U. and Puhler A. Abroad host range mobilization system for in vivo genetic engineering: transposon mutagenesis in Gram-negative bacteria. // Biotechnology.-1983. V. 1. — P. 784−791.
  125. Simon R. High frequency mobilization of gram-negative bacterial replicons by the in vitro constructed Tn5-Mob transposon. // Mol-Gen-Genet. 1984. -V. 196.-P. 413−420.
  126. Sladek F.M., MunnM.M., Rupp W. D-, and Howard- Flanders P. In vitro repair of psoralen-DNA cross-links byrecA, uvrABC, and the 5-exonuclease of DNA polymerasel. // J. Biol. Chem. 1989. — V. 264 — P. 6755−6765.
  127. Smith K.C., and Wang T.-C. V. recA-dependent DNA repair processes. // Bioessays. 1989. — V. 10. — P. 12−16.
  128. Soltis D.A., and Lehman I.R. RecA protein-promoted DNA strand exchange-P. isolation of recA protein-DNA complexes in the presence of single-stranded DNA binding protein. // J. Biol. Chem. 1983. — V. 258. — P. 6073−6077.
  129. Stahl F.W. Special sites in generalized recombination.// Annu. Rev. Genet. -1979.-.V. 13.-P. 7−24.
  130. Stahl M .M., Kobayashi I., S tahl F .W., and Huntington S .K. A ctivation of Chi, a recombinator, by the action of an endonuclease at a distant site. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. — V. 80. — P: 2310−2313.
  131. Stasiak A., Stasiak A.Z., and Koller T. Visualization of recA-DNA complexes involved in consecutive stages of an in vitro strand* exchange reaction. // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1984. — V. 49. — P: 561−570.
  132. Sun L.V., Severin D.D.M., Ghu M.C., Petersen J.M. Development of a multitarget real-time TaqMan PGR' assay for enhanced detection» of Francisella tularensis in complex specimens // J. Clin. Microbiol. 2003: — V. 41. — P: 5492 -5499.
  133. Taylor A.F. The recBCD enzyme of Escherichia coli, In R. Kucherlapati and G. R. Smith (ed.). // Genetic recombination. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 1988. — P. 231−263.
  134. Taylor A.F. and Smith G.R. RecBCD enzyme is a DNA helicase with fast and slow motors of opposite polarity. // Nature. 2003. — V. 423- - P. 889−893:
  135. Titball R.W., Sjostedt, A., Pavelka, M.S., Nano F.E. Biosafety and selectable markers. // Ann N Y Acad.Sci. 2007. — V. 1105. — P. 405−417.
  136. Towbin H., Staenelin, Gordon J. Electroforetic transfer of proteins from polyacrilamide gels to nitrocellulose sheets-P. procedure and some applications.//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1979.' - V. 76. — P. 4350−4354.
  137. Tsang S.S., Ghow S.A., and Radding G. M'. Networks of DNA and recA protein are intermediates-in homologous pairing. // Biochemistry. 1985. — V. 24. -P. 3226−3232.
  138. Tyeryar F.J., Lawton W.D. Transformation of Pasteurella novicida. II J.Bacteriol. 1969. — V. 100. — P. 1112−1113.
  139. Wackernagel W., and Radding C.M. Formation in vitro of infective joint molecules of lambda DNA by T4 gene 32 protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1974.-V. 71.-P. 431−435.
  140. Wang T.-C.V., and Smith K.C. Mechanisms for recFdependentand recB-dependent pathways of postreplication repair in UV-irradiated Escherichia coli uvrB. // J. Bacteriol. 1983. — V. 156. — P. 1093−1098.
  141. Wang T.-C.V., and Smith K.C. Inviability of dam recA and dam recB cells of Escherichia coli is correlated with their inability to repair DNA double-strandbreaks produced b y mismatch repair.//J. Bacteriol. 1986. — V. 165. — P. 10 231 025!
  142. Willetts N.S., Clark A.J., and Low B: Genetic location of certain mutations conferring recombination deficiency in Escherichia coli. // J. Bacteriol. 1969. -V. 97. — P. 244−249.
  143. West S.C., Cassuto E., Mursalim J., and Howard-Flanders P. Recognition of duplex DNA containing single-stranded regions by recA protein. //Proc. Natl. Acad. Sci: USA. 1980s — V. 77. — P.' 2569−2573.
  144. В.М., Мокриевич А. Н., Вахрамеева Г. М., Миронова Р. И., Комбарова Т. Н., Лапин A.A. Заявка на получение патента на изобретение «Способ1 стабилизации туляремийного вакцинного штамма» под № 2 010 141 704 от 11.10.2010.
  145. A.A., Мокриевич А. Н., Вахрамеева Г. М., Миронова Р: И., Комбарова Т. И., Игнашина E.H., Павлов В. М. Заявка на получение патента на изобретение «Способ аттенуации туляремийного вакцинного штамма» под № 2 011 131 560 от 28:07.2011.в) тезисы ¿-конференций
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!