Π”ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌΡ‹, курсовыС, Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚Ρ‹, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅...
Брочная ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² ΡƒΡ‡Ρ‘Π±Π΅

АллозимныС спСктры глюкозо-6-фосфат ΠΈΠ·ΠΎΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Ρƒ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ (Polychaeta: spionidae) ΠΈ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ ΠΈΡ… формирования

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

Апробация Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Π΅ полоТСния Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π΄ΠΎΠΊΠ»Π°Π΄Ρ‹Π²Π°Π»ΠΈΡΡŒ Π½Π° IV РСгиональной ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎ Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΠ°ΠΌ морской Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ ΠΈ ΡΠΊΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ (Владивосток, 2001), ΠœΠ΅ΠΆΠ΄ΡƒΠ½Π°Ρ€ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ: «Evolution, Genetics, Ecology and Biodiversity» (MAPEEG) (Владивосток, ΠœΠ‘Π‘ «Π’осток», 2001), VII Π”Π°Π»ΡŒΠ½Π΅Π²ΠΎΡΡ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΉ ΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ΄Π΅ΠΆΠ½ΠΎΠΉ школС — ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎ Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΠ°ΠΌ Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ (Владивосток, МЭБ Π’Π˜Π‘ΠžΠ₯… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • 1. Π’Π’Π•Π”Π•ΠΠ˜Π•
  • 2. ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«
    • 2. 1. ΠžΠ±Ρ‰Π΅ΠΏΡ€ΠΈΠ½ΡΡ‚Π°Ρ концСпция ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
      • 2. 1. 1. ΠΠ»Π»Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹
      • 2. 1. 2. Π˜Π·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹, опрСдСляСмыС Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π³Π΅Π½Π°ΠΌΠΈ
      • 2. 1. 3. Π“ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄Π½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹
  • Π¬ 2.1.4. Π’Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹
    • 2. 2. НовыС ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ гСнСрирования мноТСствСнности Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎ-Ρ„ΠΎΡ€ΠΌ
      • 2. 2. 1. ΠΠ»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΉ сплайсинг
      • 2. 2. 2. ИспользованиС Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… сайтов ΠΈΠ½ΠΈΡ†ΠΈΠ°Ρ†ΠΈΠΈ транскрипции ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ°Π΄Π΅Π½ΠΈΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡ
      • 2. 2. 3. Π Π΅Π΄Π°ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ мРНК
      • 2. 2. 4. ΠΠ»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Π°Ρ инициация трансляции
    • 2. 3. ΠΠ»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΉ сплайсинг Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ²
  • 3. ΠœΠΠ’Π•Π Π˜ΠΠ›Π« И ΠœΠ•Π’ΠžΠ”Π«
  • 4. РЕЗУЛЬВАВЫ
    • 4. 1. Π˜Π·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ спСктры Π“Π€Π˜ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄
      • 4. 1. 1. Polydora brevipalpa
      • 4. 1. 2. Polydora calcarea
      • 4. 1. 3. Polydora manchenko
      • 4. 1. 4. Polydora limicola
      • 4. 1. 5. Polydora glycymerica
      • 4. 1. 6. Polydora cornuta
      • 4. 1. 7. Dipolydora commensalis
      • 4. 1. 8. Dipolydora bidentata
      • 4. 1. 9. Dipolydora carunculata. ъ 4.1.10 Dipolydora cardalia
    • 4. 2. Доля ΠΈΠ΄Π΅Π½Ρ‚ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½Ρ‹Ρ… спСктров Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜
  • ΠžΠ‘Π‘Π£Π–Π”Π•ΠΠ˜Π•
    • 5. 1. Врудности ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Ρ€ΠΏΡ€Π΅Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… спСктров Π“Π€Π˜ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ с ΠΏΠΎΠ·ΠΈΡ†ΠΈΠΉ общСпринятой ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅ΠΏΡ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
      • 5. 1. 1. Π₯Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½ΠΎΠΉ измСнчивости ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜ΠΈ Π“Π€Π˜
      • 5. 1. 2. Π‘ΠΎΠΏΡ€ΡΠΆΠ΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π“Π€Π˜-2 с ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΌ ΠΈ Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜
      • 5. 1. 3. Π‘ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΎΠ΅ элСктрофорСтичСскоС Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜
      • 5. 1. 4. Π€ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ мСТлокусных Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΎΠ² Π“Π€Π˜-1/Π“Π€Π˜
    • 5. 2. ΠΠ»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΉ сплайсинг — ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ, способный Π³Π΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ спСктры Π“Π€Π˜, Π½Π°Π±Π»ΡŽΠ΄Π°Π΅ΠΌΡ‹Π΅ Ρƒ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄
      • 5. 2. 1. Π‘ΠΎΠ³Π»Π°ΡΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½ΠΎΠΉ измСнчивости Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
      • 5. 2. 2. Π‘ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΎΠ΅ элСктрофорСтичСскоС Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
      • 5. 2. 3. Π’ΠΊΠ°Π½Π΅ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΈ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½Π°Ρ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ сплайсинга Π² Π΄Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΌΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠ»Π° ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄
      • 5. 2. 4. Гибридизация Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
    • 5. 3. Π’ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΠ΅ Ρ€Π΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠΏΠΎΠ·ΠΎΠ½Π½ΠΎΠ΅ происхоТдСниС ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π“Π€Π˜
  • Π’Π«Π’ΠžΠ”Π«

АллозимныС спСктры глюкозо-6-фосфат ΠΈΠ·ΠΎΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Ρƒ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ (Polychaeta: spionidae) ΠΈ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ ΠΈΡ… формирования (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π˜Π·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ — мноТСствСнныС молСкулярныС Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ ΠΆΠ΅ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, экспрСссируСмыС Π² ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΌ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ΅ ΠΈ ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ сходной Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠ΅ΠΉ. БочСтая Π³Π΅Π»Π΅Π²Ρ‹ΠΉ элСктрофорСз фСрмСнтсодСрТащих ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΎΠ² с ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ ΠΎΠΊΡ€Π°ΡˆΠΈΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ элСктрофорСтичСских Π³Π΅Π»Π΅ΠΉ Π½Π° ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΡƒΡŽ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΡƒΡŽ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ Π²Ρ‹ΡΠ²Π»ΡΡ‚ΡŒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ Π² Π²ΠΈΠ΄Π΅ ΠΎΠΊΡ€Π°ΡˆΠ΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Π·ΠΎΠ½. Благодаря Ρ‚ΠΎΠΌΡƒ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ ΠΏΡ€ΠΎΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ ΠΊΠΎΠ΄ΠΎΠΌΠΈΠ½Π°Π½Ρ‚Π½ΠΎ, Ρ‚. Π΅. ΠΎΠ΄ΠΈΠ½ аллСль Π½Π΅ ΠΌΠ°ΡΠΊΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΎΠΉ, ΠΈ ΠΎ Π³Π΅Π½ΠΎΡ‚ΠΈΠΏΠ΅ особи ΠΌΡ‹ ΠΌΠΎΠΆΠ΅ΠΌ ΡΡƒΠ΄ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΏΠΎ Π²Ρ‹ΡΠ²Π»ΡΠ΅ΠΌΠΎΠΌΡƒ ΠΈΠ·ΠΎ-Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠΌΡƒ спСктру, ΠΎΠ½ΠΈ ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ ΡƒΠ΄ΠΎΠ±Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€Π°ΠΌΠΈ Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΈ Π΄Π°Π²Π½ΠΎ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ Π² Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… областях Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΌΠ΅Π΄ΠΈΡ†ΠΈΠ½Ρ‹. НаиболСС ΡˆΠΈΡ€ΠΎΠΊΠΎΠ΅ ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΎΠ½ΠΈ нашли Π² ΠΏΠΎΠΏΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ Π³Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ΅ для исслСдования гСнСтичСской измСнчивости ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… популяций ΠΈ Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ².

ГСнСтичСская концСпция ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΠ΅ΠΌΠ°Ρ ΠΊΠ°ΠΊ основа для гСнСтичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Ρ€ΠΏΡ€Π΅Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза, Π±Ρ‹Π»Π° сформулирована Π΅Ρ‰Π΅ Π² 70-Π΅ Π³ΠΎΠ΄Ρ‹, ΠΈ Π½Π° ΠΏΡ€ΠΎΡ‚яТСнии Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ… дСсятилСтий сущСствуСт Π² Π½Π΅ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π²ΠΈΠ΄Π΅ (Harris and Hopkinson, 1976; ΠšΠΎΡ€ΠΎΡ‡ΠΊΠΈΠ½ ΠΈ Π΄Ρ€., 1977). Π­Ρ‚Π° концСпция выдСляСт Ρ‚Ρ€ΠΈ основныС ΠΏΡ€ΠΈΡ‡ΠΈΠ½Ρ‹ элСктрофорСтичСски выявляСмой мноТСствСнности Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ². Π’ΠΎ-ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Ρ…, это Π³Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Π΄ΡƒΠΏΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ, Π²Π΅Π΄ΡƒΡ‰ΠΈΠ΅ ΠΊ Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½ΠΈΡŽ нСзависимых Π³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… локусов, ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΈ Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ΅Π½Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΎ Π½Π°Π·Ρ‹Π²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ. Π’ΠΎ-Π²Ρ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ…, это Π³Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΡƒΡ‚Π°Ρ†ΠΈΠΈ, приводящиС ΠΊ Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½ΠΈΡŽ мноТСствСнных Π²Π°Ρ€ΠΈΠ°Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π³Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ локуса, ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π°Π»Π»Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ Π²Π°Ρ€ΠΈΠ°Π½Ρ‚Ρ‹ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΠ²ΡˆΠΈΡ… Π½Π°Π·Π²Π°Π½ΠΈΠ΅ «Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠΎΠ²». Π’-Ρ‚Ρ€Π΅Ρ‚ΡŒΠΈΡ…, это поспрансляционныС ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ», ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ приводят ΠΊ Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½ΠΈΡŽ Π²Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², ΠΈΠΌΠ΅ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π½Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΡƒΡŽ, ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΡƒΡŽ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Ρƒ.

Ясная гСнСтичСская интСрпрСтация ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… спСктров являСтся ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π²Ρ‹ΠΌ ΠΌΠΎΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠΌ Π² ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΊΠ°ΠΊ ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ² Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΎΠ΄Π½Π°ΠΊΠΎ ΠΎΠ½Π° всСгда ΠΈΠΌΠ΅Π»Π° ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΡ‹. Π—Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ‡Π°ΡΡ‚ΡŒ этих ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌ относится ΠΊ Ρ€Π°Π·Ρ€ΡΠ΄Ρƒ мСтодичСских ΠΈ Π²Ρ‹Ρ€Π°ΠΆΠ°Π΅Ρ‚ся Π² Π½Π΅Π΄ΠΎΡΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎ Ρ‡Π΅Ρ‚ΠΊΠΎΠΌ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π·ΠΎΠ½ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠΉ активности Π½Π° ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ичСски ΠΎΠΊΡ€Π°ΡˆΠ΅Π½Π½Ρ‹Ρ… элСктрофорСтичСских гСлях — Π·ΠΈΠΌΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ°Ρ…. Однако другая Ρ‡Π°ΡΡ‚ΡŒ Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Π΅Ρ‚ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΡ‹, связанныС с Π½Π΅ΡΠΎΠ²Π΅Ρ€ΡˆΠ΅Π½ΡΡ‚Π²ΠΎΠΌ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅ΠΏΡ†ΠΈΠΈ ΠΈ Π½Π΅Π΄ΠΎΡΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ Π½Π°ΡˆΠΈΡ… Π·Π½Π°Π½ΠΈΠΉ ΠΎ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€-ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ°Ρ… ΠΈΡ… Ρ„ормирования. Π’ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π΅ описано ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎ Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ‹Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… спСктров, Π½Π΅ ΠΈΠΌΠ΅ΡŽΡ‰ΠΈΡ… обоснованной ΠΈ ΡƒΠ±Π΅Π΄ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ гСнСтичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Ρ€ΠΏΡ€Π΅Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΠΈ. К Ρ‡ΠΈΡΠ»Ρƒ Ρ‚Π°ΠΊΠΈΡ… случаСв относится Π½Π΅Π΄Π°Π²Π½ΠΎ описанный Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ‹Ρ‡Π½Ρ‹ΠΉ элСктрофорСтичСский спСктр Π΄ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° глюкозо-6-фосфат ΠΈΠ·ΠΎΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ (Π“Π€Π˜) Ρƒ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΡ…Π΅Ρ‚Ρ‹ Polydora brevipalpa (Manchenko, 2001Π°). Π‘Ρ‹Π»ΠΎ выявлСно Π΄Π²Π° ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π“Π€Π˜: Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2. Анодный ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Π“Π€Π˜-1 Π²Ρ‹* являлся Ρƒ Π²ΡΠ΅Ρ… особСй, Π° ΠΊΠ°Ρ‚ΠΎΠ΄Π½Ρ‹ΠΉ Π“Π€Π˜-2 — Ρ‚ΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ Ρƒ ΡΠ°ΠΌΡ†ΠΎΠ². ΠΠ΅ΠΎΠ±Ρ‹Ρ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ спСктра состояла Π² Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ проявляли ΡΠΎΠ³Π»Π°ΡΠΎΠ²Π°Π½Π½ΡƒΡŽ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½ΡƒΡŽ ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Ρ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒ (ΠΈΠΌΠ΅Π»ΠΈ ΠΈΠ΄Π΅Π½Ρ‚ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½Ρ‹Π΅ спСктры) ΠΈ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π»ΠΈ Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄Ρ‹. Π‘ΠΏΠΎΡΠΎΠ±Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠ²Ρ‹Π²Π°Ρ‚ΡŒ Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄Ρ‹ in vivo присуща Ρ‚ΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌ, опрСдСляСмым Π΄ΡƒΠΏΠ»ΠΈΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π³Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ локусами, Π° ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΎΡΠ²Π»ΡΡ‚ΡŒ ΡΠΎΠ³Π»Π°ΡΠΎΠ²Π°Π½Π½ΡƒΡŽ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½ΡƒΡŽ ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Ρ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒ — Ρ‚ΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ Π²Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΡ‡Π½Ρ‹ΠΌ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌ, ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌΡΡ ΠΈΠ· ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» Π² Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ постгрансляционных ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΉ (ΠšΠΎΡ€ΠΎΡ‡ΠΊΠΈΠ½ ΠΈ Π΄Ρ€., 1977; Moss, 1982; Π€ΠΈΠ»ΠΈΠΏΠΏΠΎΠ²ΠΈΡ‡ ΠΈ ΠšΠΎΠ½ΠΈΡ‡Π΅Π², 1987). Π’Π°ΠΊΠΈΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ, общСпринятая концСпция ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π½Π΅ ΠΌΠΎΠ³Π»Π° Π΄Π°Ρ‚ΡŒ ΡƒΠ΄ΠΎΠ²Π»Π΅Ρ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ гСнСтичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Ρ€ΠΏΡ€Π΅Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΠΈ согласованной Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½ΠΎΠΉ измСнчивости Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΈΠ·ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ². Для объяснСния Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ‹Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… спСктров Π“Π€Π˜ Polydora brevipalpa ΠœΠ°Π½Ρ‡Π΅Π½ΠΊΠΎ (Manchenko, 2001Π°) ΠΏΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠΈΠ» ΠΌΠ΅f Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ сплайсинга (АБ). Π˜Π·Π²Π΅ΡΡ‚Π½ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΠ‘ ΠΏΡ€Π΅-мРНК транс-ΠΊΡ€ΠΈΠΏΡ‚ΠΎΠ², считываСмых с ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ структурного Π³Π΅Π½Π°, ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π΄Π°Π²Π°Ρ‚ΡŒ нСсколько структурно ΠΎΡ‚Π»ΠΈΡ‡Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌ (Andreadis et al., 1987). Для обозначСния ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², Π³Π΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… АБ, Π±Ρ‹Π» ΠΏΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ Ρ‚Π΅Ρ€ΠΌΠΈΠ½ «Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹» (Manchenko, 2001Π°). Богласованная аллозимная ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Ρ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΈ ΠΈΡ… ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄Ρ‹ Π±Ρ‹Π»ΠΈ расцСнСны ΠΊΠ°ΠΊ вСскиС Π°Ρ€Π³ΡƒΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ Π² ΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·Ρƒ участия ΠΠ‘ Π² Π³Π΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜ P. brevipalpa (Manchenko, 2001Π°). Однако ΠΏΡ€Π΅Π΄Π²Π°Ρ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΠΎΠ²Π°Π»ΠΈ ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Ρƒ Π±Π»ΠΈΠ·ΠΊΠΈΡ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ P. ciliata sp. l ΠΈ P. limicola * ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ Π“Π€Π˜ ΠΏΡ€ΠΎΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ Π½Π΅ΡΠΎΠ³Π»Π°ΡΠΎΠ²Π°Π½Π½ΡƒΡŽ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½ΡƒΡŽ ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Ρ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒ, Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½ΡƒΡŽ для ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², опрСдСляСмых двумя Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π³Π΅Π½Π°ΠΌΠΈ (Manchenko and Radashevsky, 1993,1998).

ЦСль настоящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π·Π°ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Π»Π°ΡΡŒ Π² Π²Ρ‹ΡΡΠ½Π΅Π½ΠΈΠΈ молСкулярных ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ² формирования ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… спСктров Π“Π€Π˜ Ρƒ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ (Polychaeta: Spi-onidae).

Для достиТСния поставлСнной Ρ†Π΅Π»ΠΈ Π±Ρ‹Π»ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Ρ‹ ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ:

1) Π˜ΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ спСктры Π“Π€Π˜ Ρƒ Π΄Π΅ΡΡΡ‚ΠΈ Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ (Polychaeta: Spionidae).

2) Π˜ΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΡΠΎΠΏΡ€ΡΠΆΠ΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π“Π€Π˜-2 с ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΌ Ρƒ Π΄Π΅ΡΡΡ‚ΠΈ Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄.

3) Π˜ΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2.

Научная Π½ΠΎΠ²ΠΈΠ·Π½Π° Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. ΠŸΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΎ элСктрофорСтичСскоС исслСдованиС ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… спСктров глюкозо-6-фосфат ΠΈΠ·ΠΎΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ (Π“Π€Π˜) Ρƒ Π΄Π΅ΡΡΡ‚ΠΈ Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ Ρ€ΠΎΠ΄ΠΎΠ² Polydora ΠΈ Dipolydora (Polychaeta: Spionidae), Ρ€Π°Π½Π΅Π΅ Π½Π΅ ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π² ΡΡ‚ΠΎΠΌ ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ. УстановлСно, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Ρƒ Π²ΡΠ΅Ρ… исслСдованных Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ экспрСссируСтся Π΄Π²Π° ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° (Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2), ΠΎΠ΄ΠΈΠ½ ΠΈΠ· ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ… (Π“Π€Π˜-2) экспрСссируСтся ΠΏΠΎΡ‡Ρ‚ΠΈ ΠΈΡΠΊΠ»ΡŽΡ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ Ρƒ ΡΠ°ΠΌΡ†ΠΎΠ². ΠŸΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΎ исслСдованиС тканСспСцифичности экспрСссии ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€-ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Π“Π€Π˜-1 экспрСссируСтся прСимущСствСнно Π² ΡΠΎΠΌΠ°Ρ‚ичСских тканях Ρƒ ΠΎΡΠΎΠ±Π΅ΠΉ ΠΎΠ±ΠΎΠΈΡ… ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠ² ΠΈ Π² Π½Π΅Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… количСствах Π² Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΈΠ΄Π½Ρ‹Ρ… спСрматогСнных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°Ρ… самцов. Π˜Π·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Π“Π€Π˜-2 экспрСссируСтся Π² Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΈΠ΄Π½Ρ‹Ρ… спСрматогСнных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°Ρ… самцов ΠΈ Π² ΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… количСствах Ρƒ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΊ. УстановлСн Ρ„Π°ΠΊΡ‚ Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2 Ρƒ Π²ΡΠ΅Ρ… исслСдованных Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ². Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Ρƒ ΠΊΠ°ΠΆΠ΄ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈΠ· ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ срСди особСй, ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΡ€ΡƒΡŽ-Ρ‰ΠΈΡ… ΠΎΠ±Π° ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, ΠΏΡ€Π΅ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°ΡŽΡ‚ Ρ‚Π΅, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΈΠΌΠ΅ΡŽΡ‚ ΠΈΠ΄Π΅Π½Ρ‚ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½Ρ‹Π΅ спСктры Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2. Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ сдСлана ΠΎΡ†Π΅Π½ΠΊΠ° Π΄ΠΎΠ»ΠΈ Ρ‚Π°ΠΊΠΈΡ… особСй Ρƒ 10 исслСдованных Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ².

Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Ρ‹ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅, ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π² ΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·Ρƒ Π³ΠΈΠΏΠΎΡ‚Π΅Π·Ρ‹ ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΉ сплайсинг способСн Π³Π΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ Π½Π° ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚рофорСтичСских гСлях ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ Π½Π΅ΠΎΡ‚Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠΌΡ‹ ΠΎΡ‚ ΠΊΠ»Π°ΡΡΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΡ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², опрСдСляСмых Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π³Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ локусами.

ВСорСтичСская ΠΈ ΠΏΡ€Π°ΠΊΡ‚ичСская Ρ†Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅, говорящиС ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ Π“Π€Π˜ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ Π³Π΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ АБ, послуТат Π²Π°ΠΆΠ½ΠΎΠΉ прСдпосылкой для формулирования ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠ΅Π½ΠΈΠΉ Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΉ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅ΠΏΡ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ·ΠΎ-Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‰Π΅ΠΉ Π²Π°ΠΆΠ½ΡƒΡŽ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ ΠΠ‘ Π² ΠΈΡ… Π³Π΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ. Π­Ρ‚ΠΎ составит основу для ясной гСнСтичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Ρ€ΠΏΡ€Π΅Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΠΈ элСктрофорСтичСских Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Ρ‚Π²Π΅Ρ€Π΄ΠΈΡ‚ для ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² статус Π½Π°Π΄Π΅ΠΆΠ½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ².

Апробация Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Π΅ полоТСния Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π΄ΠΎΠΊΠ»Π°Π΄Ρ‹Π²Π°Π»ΠΈΡΡŒ Π½Π° IV РСгиональной ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎ Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΠ°ΠΌ морской Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ ΠΈ ΡΠΊΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ (Владивосток, 2001), ΠœΠ΅ΠΆΠ΄ΡƒΠ½Π°Ρ€ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ: «Evolution, Genetics, Ecology and Biodiversity» (MAPEEG) (Владивосток, ΠœΠ‘Π‘ «Π’осток», 2001), VII Π”Π°Π»ΡŒΠ½Π΅Π²ΠΎΡΡ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΉ ΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ΄Π΅ΠΆΠ½ΠΎΠΉ школС — ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎ Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΠ°ΠΌ Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ (Владивосток, МЭБ Π’Π˜Π‘ΠžΠ₯, 2003) ΠΈ Π΅ΠΆΠ΅Π³ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… Π½Π°ΡƒΡ‡Π½Ρ‹Ρ… конфСрСнциях Π˜Π½ΡΡ‚ΠΈΡ‚ΡƒΡ‚Π° Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ моря (Владивосток, 2004,2006).

Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° ΠΈ ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΌ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. Π Π°Π±ΠΎΡ‚Π° состоит ΠΈΠ· Π²Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΡ, ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€Π° Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹, описания ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΠΎΠ² ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ², Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² ΠΈ ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΡ, Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠ² ΠΈ ΡΠΏΠΈΡΠΊΠ° Ρ†ΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΠΎΠΉ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹, содСрТащСго 209 ссылок. ДиссСртация ΠΈΠ·Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½Π° Π½Π° 108 страницах, содСрТит 4 Ρ‚Π°Π±Π»ΠΈΡ†Ρ‹ ΠΈ 43 рисунка.

Π’Π«Π’ΠžΠ”Π«

1. Π£ Π²ΡΠ΅Ρ… дСсяти исслСдованных Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ (Polydora brevipalpa, P. cal-carea, P. cornuta, P. glycymerica, P. limicola, P. manchenkoi, Dipolydora biden-tata, D. cardalia, D. carunculata, D. commensalis (Polychaeta: Spionidae)) Ρƒ ΡΠ°ΠΌΡ†ΠΎΠ² выявлСно Π΄Π²Π° ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π“Π€Π˜ — Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2, Ρƒ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΊ-Ρ‚ΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ ΠΎΠ΄ΠΈΠ½ Π“Π€Π˜-1.

2. Π˜Π·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Π“Π€Π˜-1 Ρƒ Π²ΡΠ΅Ρ… исслСдованных Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² экспрСссируСтся Π² ΡΠΎΠΌΠ°Ρ‚ичСских тканях, Π° Π“Π€Π˜-2 — Π² ΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΌΠ΅.

3. Π£ Π²ΡΠ΅Ρ… исслСдованных Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ выявлСны Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄Π½Ρ‹Π΅ Π·ΠΎΠ½Ρ‹ ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Π“Π€Π˜-2 Π½Π΅ ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ ΠΈΠΌΠ΅Ρ‚ΡŒ посттрансляционноС происхоТдСниС. Об ΡΡ‚ΠΎΠΌ ΠΆΠ΅ ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΈ Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΎΠ΅ элСктрофорСтичСскоС Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2.

4. Богласованная полиаллСльная аллозимная ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Ρ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π“Π€Π˜-1 ΠΈ Π“Π€Π˜-2 Ρƒ Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΈΠ½ΡΡ‚Π²Π° особСй Ρƒ Π²ΡΠ΅Ρ… исслСдованных Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΈΠ² Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ эти ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π³Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ локусами.

5. Π‘Π²ΠΎΠ΅ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΈΠ΅ спСктров Π“Π€Π˜ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ΄ΠΎΡ€ΠΈΠ΄ — согласованная аллозимная ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Ρ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π΄Π²ΡƒΡ… Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΈΠ·ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Ρƒ Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΈΠ½ΡΡ‚Π²Π° исслСдованных особСй наряду с Π½Π°Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ΠΌ Ρ€Π΅Π΄ΠΊΠΈΡ… особСй с Π½Π΅ΡΠΎΠ³Π»Π°ΡΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Π°Π»Π»ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ½ΠΎΠΉ ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Ρ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ ΠΈ Ρ€Π°Π·Π½Π°Ρ Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии этих ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² — ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ объяснСно участиСм Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ сплайсинга Π² ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΠΈ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π³Π΅Π½Π° Π“Π€Π˜.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Π›.И., Π‘Π΅Ρ€ΠΎΠ² O.JL, ΠŸΡƒΠ΄ΠΎΠ²ΠΊΠΈΠ½ А. И., ΠΡ€ΠΎΠ½ΡˆΡ‚Π°ΠΌ А. А., Π‘ΠΎΡ€ΠΊΠΈΠ½ Π›. Π―.,
  2. Π‘.И., Полякова Π•. Π’., ΠœΠ°Π½Ρ‡Π΅Π½ΠΊΠΎ Π“. П. Π“Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ° ΠΈΠ·ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ². М. Наука. 1977.278 с.
  3. Basnakian A.G., Singh A.B., Shah S.V. Identification and expression of deoxyribo-nuclease (DNase) I alternative transcripts in the rat // Gene. 2002. V. 289. P. 87−96.
  4. Major transcript of the frameshifted coxll gene from tripanosome mitochondria contains four nucleotides that are not encoded in the DNA // Cell. 1986. V. 46. P. 819−826.
  5. Caceres J.F., Kornblihtt A.R. Alternative splicing: multiple control mechanisms and involvement in human disease // Trends Genet. 2002. V. 18. P. 186 193.
  6. Chaloupka J.A., Bullock S.A., Iourgenko V., Levin L.R., Buck J. Autoinhibitoryregulation of soluble adenylyl cyclase // Molecular Reproduction and Development. 2006. V. 73. P. 361 -368.
  7. Chessler S.D., Lernmark A. Alternative splicing of GAD67 results in the synthesis of a third form of glutamic-acid decarboxylase in human islets and other non-neural tissues // J. Biol. Chem. 2000. V. 275. P. 5188 5192.
  8. Cooper A.J.L. The role of glutamine transaminase К (GTK) in sulfur and a-keto acid metabolism in the brain, and in the possible bioactivation of neurotoxicants // Neurochemistry Internationa. 2004. V. 44. P. 557 577.
  9. Cramer P., Pesce C.G., Baralle F.E., Kornbliht A.R. Functional association betweenpromoter structure and transcript alternative splicing // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. V. 94. P. 11 456 11 460.
  10. Crombie Π’., Swaffield J.C., Brown A.J. Protein folding within the cell is influenced by controlled rates of polypeptide elongation // J. Mol. Biol. 1992. V. 228. P. 7 12.
  11. Dayton J.S., Lindsten Π’., Thompson C.B., Mitchell B.S. Effects of human Tlymphocyte activation on inosine monophosphate dehydrogenase expression // J. Immunol. 1994. V. 152. P. 984 991.
  12. Delaloy C., Lu J., Houot A.M., Disse-Nicodeme S., Gasc J.M., Corvol P., Heunemaitre X. Multiple promoters in WNK1 gene: one controls expression of a kidney specific kinase-defective isoform // Mol. Cell. Biol. 2003. V. 23. P. 9208 9221.
  13. De Luis 0., del Mazo J. Gene expression of mouse Ml and M2 pyruvate kinaseisoenzymes correlates with differential polyA. tract extension of their mRNAs during the development of spermatogenesis // Biochim. Biophys. Acta. 1998. V. 1396. P. 294−305.
  14. De Maria A., Arruti C. Bovine DNase 1: gene organization, mRNA expression, andchanges in the topological distribution of the protein during apoptosis in lens epithelial cells // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2003. V. 312. P. 634 641.
  15. DeglTnnocenti D., Marzocchini R., Malentacchi F., Ramazzotti M., Raugei G.,
  16. Ramponi G. ACYP1 gene possesses two alternative splicing forms that induce apoptosis // IUBMB Life. 2004. V. 56. P. 29 33.
  17. Dikic I., Schlessinger J. Identification of a new Pyk2 isoform implicated in chemokine and antigen receptor signaling // J. Biol. Chem. 1998. V. 273. P. 14 301 14 308.
  18. Doyen N., Dandon M.F., Bentolila L.A., Nguyen Q.T., Rougeon F. Differential splicing in mouse thymus generates 2 forms of terminal deoxynucleotidyl transferase // Nucleic Acids Res. 1993. V. 21. P. 1187−1191.
  19. V. 272. P. 32 715−32 718. Fedorova L., Fedorov A. Introns in gene evolution // Genetica. 2003. V. 118. P. 123−131.
  20. Gott J.M., Emeson R.B. Functions and mechanisms of RNA editing // Annu. Rev.
  21. Genet. 2000. V. 34. P. 499 531. Graveley B.R. Alternative splicing: increasing diversity in the proteomic world //
  22. Harris H., Hopkinson D.A. Handbook of Enzyme Electrophoresis in Human Genetics.
  23. Hellen C.U., Sarnow P. Internal ribosome entry sites in eukaryotic mRNA molecules //
  24. Hirono A., Beutler E. Molecular cloning and nucleotide sequences of cDNA for human glucose-6-phosphate dehydrogenase varriant A (-) // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. V. 85. P. 3951 -3954.
  25. Houdebine L.M., Attal J. Internal ribosome entry sites (IRESs): reality and use // Transgenic Research. 1999. V. 8. P. 157 177.
  26. Jen C.-H., Michalopoulos I., Westhead D.R., Meyer P. Natural antisense transcriptswith coding capacity in Arabidopsis may have a regulatory role that is not linked to double-stranded RNA degradation // Genome Biology. 2005. V. 6. P. 51.
  27. Jin P., Fu G.K., Wilson A.D., Yang J., Chien D., Hawkins P.R., Au-Young J., Stuve
  28. L. PCR isolation and cloning of novel splice variant mRNAs from known drug target genes // Genomics. 2004. V. 83. P. 566 571.
  29. Johnson J.M., Castle J., Garrett-Engele P., Kan Z., Loerch P.M., Armour C.D.,
  30. Santos R., Schadt E.E., Stoughton R., Shoemaker D.D. Genome-wide survey of human alternative pre-mRNA splicing with exon junction microarrays // Science. 2003. V. 302. P. 2141−2144.
  31. Kessler R., Eschrich K. Splice isoforms of ubiquitous 6-phosphofructo-2kinase/fructose-2,6-bisphosphatase // Molecular Brain Research. 2001. V. 87. P. 190- 195.
  32. Kim J.E., Kim K.H., Lee S.W., Seol W., Shiba K., Kim S. An elongation factorassociating domain is inserted into human cysteinyl-tRNA synthetase by alternative splicing // Nucleic Acids Res. 2000. V. 28. P. 2866 2872.
  33. Kim H., Klein R., Majewski J., Ott J. Estimating rates of alternative splicing in mammals and invertebrates // Nature Genetics. 2004. V. 36. P. 915 916.
  34. Kimura S., Kotani Π’., McBride O.W., Umeki K., Hirai K., Nakayama Π’., Ohtaki S.
  35. Human thyroid peroxidase: complete cDNA and protein sequence, chromosome mapping, and identification of two alternately spliced mRNAs // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. V. 84. P. 5555 5559.
  36. Kinnaird J.H., Revell D.F., Connerton I.F., Hasleham I. Fincham J.R.S. Alternativemodes of messenger-RNA processing in a 3' splice site mutant of Neurospora crassa И Curr. Genet. 1992. V. 22. P. 37 40.
  37. Kitagawa H.T. Molecular cloning, sequencing and alternative splicing of the acidphosphatase (Acph) gene from Drosophila virilis IIDNA Sequence. 2003. V. 14. P. 135 -139.
  38. Kobayashi Y., Dokiya Y., Sugita M. Dual targeting of phage-type RNA polymerase to both mitochondria and plastids is due to alternative translation initiation in single transcripts // Biochim. Biophys. Res. Commun. 2001. V. 289. P. 1106 1113.
  39. Kochiwa H., Itaya M., Tomita M., Kanai A. Stage-specific expression of Caenorhabdi-tis elegans ribonuclease HI enzymes with different substrate specificities and bivalent cation requirements // FEBS Journal. 2006. V. 273. P. 420 429.
  40. Kohtz J.D., Jamison S.F., Will C.L., Zuo P., Luhrmann R., Garcia-Blanco M.A.,
  41. Manley J.L. Protein-protein interactions and 5'-splice-site recognition in mammalian mRNA precursors // Nature. 1994. V. 368. P. 119 124.
  42. Kolb V.A. Cotranslational protein folding // Mol. Boil. 2001. V. 35(4). P. 584 590.
  43. Kondrashov F.A., Koonin E.V. Origin of alternative splicing by tandem exon duplication // Hum. Mol. Genet. 2001. V. 10. P. 2661 2669.
  44. Konno R Rat D-amino-acid oxidase cDNA: rat D-amino-acid oxidase as anintermediate form between mouse and other mammalian D-amino-acid oxidases //Biochim. Biophys. Acta. 1998. V. 1395. P. 165 -170.
  45. Koslowski M., Tureci O., Bell C., Krause P., Lehr H-A., Brunner J., Seitz G., Nestle F.O., Huber C., Sahin U. Multiple splice variants of lactate dehydrogenase Π‘ selectively expressed in human cancer // Cancer Research. 2002. V. 62. P. 6750 -6755.
  46. Kountikov E., Wilson M., Miller N., Clem W., Bengten E. Organization and expression of thirteen alternatively spliced exons in catfish CD45 homologs // Developmental and Comparative Immunology. 2004. V. 28. P. 1023 1035.
  47. Kozak M. The scanning model for translation: an update // J. Cell. Biol. 1989. V. 108. P. 229−241.
  48. Kravchenko E., Chumakov P.M. Alternative transcripts of POLRMT gene coding for nuclear RNA polymerase IV // Mol. Biol. 2005. V. 39. P. 58 61.
  49. Kriventseva E.V., Koch I., Apweiler R, Vingron M., Bork P., Gelfand M.S.,
  50. Malek О., Knoop V. 7>
  51. Polydora brevipalpa (Polychaeta: Spionidae) // Biochem. Genet. 2001b. V. 39. P. 285−288.
  52. Manchenko G.P. Handbook of detection of enzyme on electroforetic gels // CRC Press. 2003.514 Ρ€.
  53. Manchenko G.P. and Pankova V.V. Sex-linkage of a gene responsible for the expression of alternative GPI isozyme in Polydora brevipalpa (Polychaeta: Spionidae) // Gene Families and Isozymes Bulletin. 2001. V. 34. P. 55.
  54. Maniatis Π’., Tasic B. Alternative pre-mRNA splicing and proteome expansion in metazoans // Nature. 2002. V. 418. P. 236 243.
  55. Manley J.L., Tacke R. SR proteins and splicing control // Genes Dev. 1996. V. 10. P. 1569−1579.
  56. Mao G.F., Kunapuli S.P., Rao A.K. Evidence for two alternatively spliced forms ofphospholipase C-f5 2 in haematopoietic cells // Brit. J. Haematol. 2000. V. 110. P. 402−408.
  57. Mar S.S., Mori H., Lee J.H., Fukuda K., Saburi W., Fukuhara A., Okuyama M.,
  58. Chiba S., Kimura A. Purification, characterization, and sequence analysis of two a-amylase isoforms from azuki bean, Vigna angularis, showing different affinity towards P-cyclodextrin sepharose // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2003. V. 67. P. 1080−1093.
  59. Marie J., Simon M.-P., Dreyfus J.-C., Kahn A. One gene, but two messenger RNAs encode liver L and red cell L' pyruvate kinase subunits // Nature. 1981. V. 292. P. 70 72.
  60. Marrs K.A., Walbot V. Expression and RNA splicing of the maize glutathione Stransferase Bronze 2 gene is regulated by cadmium and other stresses // Plant Physiol. 1997. V. 113. P. 93 102.
  61. Meng J-P., Zang F-P., Huhtaniemi I., Pakarinen P. Characterization and developmental expression of a testis-specific adenosine deaminase mRNA in the mouse // J. An-drol. 1997. V. 18. P. 88−95.
  62. Miller P.W., Schmidt R.R. Precursor messenger-RNA alternative splicing yieldsmultiple chloroplastic, NADP-specific glutamate dehydrogenase isoenzymes // Plant Physiol. 1993. V. 102. P. 70 79.
  63. Miller S.W., Hayward D.C., Bunch T.A., Miller D.J., Ball E.E., Bardwell V.J.,
  64. Zarkower D., Brower D.L. A DM domain protein from a coral, Acropora mille-pora, homologous to proteins important for sex determination // Evolution and development. 2003. V. 5. P. 251 258.
  65. Miranda-Vizuete A., Spyrou G. Genomic organization and identification of a nowelalternative splicing variant of mouse mitochondrial thioredoxin reductase (TrxR2) gene // Mol. Cell. 2002. V. 13. P. 488 492.
  66. Miro X., Casacuberta J.M., Gutierrez-Lopez M.D., de Ladnazuri M.O., Puigdomenech P. Phosphodiesterases 4D and 7 A splice variants in the responce of HUVEC cells to TNF-a // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2000. V. 274. P. 415 421.
  67. Mironov A., Fickett J., Gelfand M. Frequent alternative splicing of human genes // Genome Res. 1999. V. 9. P. 1288 1293.
  68. Miwa M., Hanai S., Poltronieri P., Uchida M., Uchida K. Functional analysis ofpoly (ADP-ribose) polymerase in Drosophila melanogaster II Mol. Cell. Biochem. 1999. V. 193. P. 103−107.
  69. Montoya G.E., Vernot J.P., Patarroyo M.E. Comparative analysis of CD45 proteins in primate context: owl monkeys versus humans // Tissue Antigens. 2004. V. 64. P. 165- 172.
  70. Morgan B.A., Johnson W.A., Hirsh J. Regulated splicing produces different forms of dopa decarboxylase in the central nervous system and hypoderm of Drosophila melanogaster // EMBO J. 1986. V. 5. P. 3335 3342.
  71. Moss D.W. Isoenzymes, Chapman and Hall Ltd. London. 1982.204 pp.
  72. Mukai F., Ishiguro K., Sano Y., Fujita S.C. Alternative splicing isoform of tau protein kinase/glycogen synthase kinase 3(5 //J. Neurochem. 2002. V. 81. P. 1073 -1083.
  73. Murphy R.W., Sites J.W., Jr., Buth D.G., Haufler C.H. Proteins: isozyme electrophoresis. In: Molecular Systematics (D.M. Hillis, C. Moritz, B.K. Mable, eds.). Sinauer. Sunderland. 1996. P. 51 120.
  74. Murray K.D., Isackson P.J., Jones E.G. iV-methyl-D-aspartate receptor dependenttranscriptional regulation of two calcium/calmodulin-dependent protein kinase type II isoforms in rodent cerebral cortex // Neuroscience. 2003. V. 122. P. 407 -420.
  75. Niesel D.W. Bewley G.C., Miller S.G., Armstrong F.B. Purification and structuralanalisis of the soluble sn- glycerol-3-phosphate dehydrogenase isozymes in Dro-sophila melanogaster II J. Biol. Chem. 1980. V. 255. P. 4073 4080.
  76. Noguchi Π’., Inoue H., Tanaka T. The Ml and M2-type isozymes of rat pyruvate kinase are produced from the same gene by alternative RNA splicing //J. Biol. Chem. 1986. V. 261. P. 13 807−13 812.
  77. Noh S.A., Kwak M.S., Lee H.S., Huh G.H., Liu J.R., Shin J.S., Bae J.M. Genomicorganizations of two small subunit ADP-glucose pyrophosphorylase genes from sweet potato // Gene. 2004. V. 339. P. 173 180.
  78. Ohno S., Kawasaki H., Imajoh S., Suzuki K., Inagaki M. Yokokura H., Sakoh Π’.,
  79. Hidaka H. Tissue-specific expression of three distinct types of rabbit protein kinase Π‘ // Nature. 1987. V. 325. P. 161 166.
  80. Ono Y., Kurokawa Π’., Fujii Π’., Kawahara K., Igarashi K., Kikkawa U., Ogita K.,
  81. Nishizuka Y. Two types of complementary DNAs of rat brain protein kinase Π‘ // FEBS Letters. 1986. V. 206. P. 347 352.
  82. Ortiz D.F., Strommer J.N. The Mul maize transposable element induces tissue-specificaberrant splicing and polyadenylation in two Adhl mutants // Mol. Cell. Biol. 1990. V. 10. P. 2090−2095.
  83. Pan S.S., Han Y.S., Farabaugh P., Xia H. Implication of alternative splicing for expression of a variant NAD (P)H:quinone oxidoreductase-1 with a single nucleotide polymorphism at 465C>T // Pharmacogenetics. 2002. V. 12. P. 479 488.
  84. Pankova V.V., Pudovkin A.I., Manchenko G.P. Allozymic variation determined byalternatively spliced exon of the Gpi gene in Polydora brevipalpa (Polychaeta: Spionidae) // GFI Bulletin. 2004. V. 37. P. 30.
  85. Papadopoulou D., Louis C. The glutamate dehydrogenase gene of Drosophilamelanogaster: molecular analysis and expression // J. Neurogenet. 2000. V. 14. P. 125−145.
  86. Peters J., Nash H.R., Eicher E.M., Bulfield G. Polymorphism of kidney pyruvate kinase in the mouse is determined by a gene, Pk-3, on chromosome 9 // Biochem. Genet. 1981. V. 19. P. 757−769.
  87. Poly W.J. Nongenetic variation, genetic-environmental interactions and altered geneexpression. III. Posttranslational modifications // Π‘ΠΎΡ‚Ρ€. Biochem. Physiol. 1997. V. 118. P. 551 -572.
  88. Pourter L.D., Ibrahim H., Taylor L., Curthoys N.P. Complexity and species variation of the kidney-type glutaminase gene // Physiological Genomics. 2002. V. 9. P.157 -166.
  89. Pozzoli U., Sironi M. Silencers regulate both constitutive and alternative splicing events in Mammals // Cellular and Molecular Life Sciences. 2005. V. 62. P. 1579 -1604.
  90. Quest A.F.G., Eppenberger H.M., Wallimann T. Two different B-type creatine kinase subunits dimerize in a tissue-specific manner // FEBS Letters. 1990. V. 262. P. 299−304.
  91. Radashevsky V.I., Pankova V.V. The morphology of two sibling sympatric Polydora species (Annelida: Spionidae) from the Sea of Japan // The Journal of Marine Biological Association of United Kindom" (JMBA). 2006. V. 86. P. 245−252.
  92. Ranson H., Collins F., Hemingway J. The role of alternative splicing in generatingheterogeneity within the Anopheles gambiae class I glutathione-transferase family // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 14 284 14 289.
  93. Raymond C.S., Shamu C.E., Shen M.M., Seifert K.J., Hirsch Π’., Hodgkin J.,
  94. Zarkower D. Evidence for evolutionary conservation of sex-determining genes // Nature. 1998. V. 391. P. 691 -695.
  95. Richardson B.J., Baverstock P.R., Adams M. Allozyme electrophoresis: A handbook for animal systematics and population studies. Academic Press. Sydney. 1986. 410 pp.
  96. Rider M.H., Vandamme J., Lebeau E., Vertommen D., Vidal H., Rousseau G.G.,
  97. Vandekerckhove J., Hue L. The two forms of bovine heart 6-phosphofructo-2-kinase/fructose-2,6-bisphosphatase result from alternative splicing // Biochem. J.1992. V. 285. P. 405−411.
  98. Ross V.L., Board P.G. Molecular-cloning and heterologous expression of an alternatively spliced human Mu class glutathione-S-transferase transcript // Biochem. J.1993. V. 294. P. 373−380.
  99. Rueter S.M., Emeson RB. Adenosine-to-Inosine conversion in mRNA. In: (Grosjean H., Benne R., eds.) Modification and Editing of RNA. Washington, DC- ASM Press. 1998. P. 343−361.
  100. Rueter S.M., Dawson T.R., Emeson R.B. Regulation of alternative splicing by RNA editing //Nature. 1999. V. 399. P. 75 80.
  101. Sabina R.L., Ogasawara N., Holmes E.W. Expression of three stage-specific transcripts of AMP deaminase during myogenesis // Mol. Cell. Biol. 1989. V. 9. P. 2244 -2246.
  102. Salmon A., Erb C., Meshorer E., Ginzberg D., Adani Y., Rabinovitz I., Amitai G.,
  103. Soreq H. Muscarinic modulations of neuronal anticholinesterase responses // Chemico-Biological Interactions. 2005. V. 157. P. 105 113.
  104. Sanford J.R., Bruzik J.P. Developmental regulation of SR protein phosphorylation and activity // Genes Dev. 1999. V. 13. P. 1513 1518.
  105. Schmucker D., Clemens J. C, Shu H., Worby C. A, Xiao J., Muda M., Dixon J. E,
  106. Zipursky S.L. Drosophila DSCAM is an axon guidance receptor exhibiting extraordinary molecular diversity // Cell. 2000. V. 101. P. 671 684.
  107. Schutt C., Nothiger R. Structure, function and evolution of sex-determining systems in Dipterian insects // Development. 2000. V. 127. P. 667 677.
  108. Setoyama C., Tamaoki H., Nishina Y., Shiga K.O., Miura R. Functional expression of two forms of rat acyl-CoA oxidase and their substrate specificities // Biochem. Bioph. Res. Commun. 1995. V. 217. P. 482−487.
  109. A.A., Dudekula D.B., Ко M.S.H. Genome-wide assembly and analysis of alternative transcripts in mouse // Genome Research. 2005. V. 15. P. 748 754.
  110. Shaw C.R. Electrophoretic variation in enzymes // Science. 1965. V. 149. P. 936 943.1. J^"
  111. Shaw-Lee R., Lissemore J.L., Sullivan D.T., Tolan D.R. Alternative splicing of fructose -1,6-bisphosphate aldolase transcripts in Drosophila melanogaster predicts 3 isozymes // J. Biol. Chem. 1992. V. 267. P. 3959 3967.
  112. Shi H., Xiong L., Stevenson Π’., Lu Π’., Zhu J-K. The Arabidopsis salt overly sensitive 4 mutants uncover a critical role for vitamin B6 in plant salt tolerance // Plant Cell. 2002. V. 14. P. 575−588.
  113. Shin D., Park C. iV-terminal extension of canine glutamine synthetase created bysplicing alters its enzymatic properties // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. P. 1184 -1190.
  114. Shiokawa D., Matsushita Π’., Kobayashi Π’., Matsumoto Y., Tanuma S.I. Characterization of the human DNAS1L2 gene and the molecular mechanism for its transcrip-f tional activation induced by inflammatory cytokines // Genomics. 2004. V. 84. P.95. 105.
  115. Siaterli M.Z., Vassilacopoulou D., Fragoulis E.G. Cloning and expression of human placental L-Dopa decarboxylase // Neurochemical Research. 2003. V. 28. P. 797 803.
  116. Sikorav J.-L., Duval N., Anselmer A., Bon S., Krejci E., Legay C., Osterlund M.,
  117. Reimund Π’., Massoulie L. Complex alternative splicing of acetylcholinesterase transcripts in Torpedo electric organ- primary structure of the precursor of the glycolipid-anchored dimeric form // EMBO J. 1988. V. 7. P. 2983 2993.
  118. Singh R. RNA-protein interactions that regulate pre-mRNA splicing // Gene Expression. 2002. V. 10. P. 79 92.
  119. Siqueira S.F., Dias S.M.G., Hardouin P., Pereira F.R.S., Lejeune Π’., de Souza A.P.
  120. Transcription of succinate dehydrogenase subunit 4 (sdh4) gene in potato: detection of extensive RNA editing and co-transcription with cytochrome oxidase sub-unit III (сохЗ) gene // Curr. Genet. 2002. V. 41. P. 282 289.
  121. Slavov D., Gardiner K. Phylogenetic comparison of the pre-mRNA adenosinedeaminase ADAR2 genes and transcripts: conservation and diversity in editing site sequence and alternative splicing patterns // Gene. 2002. V. 299. P. 83−94.
  122. Soldati Π’., Schafer B.W., Perriard J.C. Alternative ribosomal initiation gives rise tochicken brain-type creatine kinase isoproteins with heterogeneous amino termini // J. Biol. Chem. 1990. V. 265. P. 4498 4506.
  123. Stamm S., Zhu J., Nakai K., Stoilov P., Stoss O., Zhang M.Q. An altemative-exon database and its statistical analysis // DNA Cell Biol. 2000. V. 19. P. 739 756.
  124. Stamm S., Ben-Ari S., Rafalska I., Tang Y.S., Zhang Z.Y., Toiber D., Thanaraj
  125. T.A., Soreq H. Function of alternative splicing // Gene. 2005. V. 344. P. 1 20.
  126. Stromberg P., Hoog J.O. Human class V alcohol dehydrogenase (ADH5): a complex transcription unit generates C-terminal multiplicity // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2000. V. 278. P. 544 549.
  127. Stuart K., Panigrahi A.K. RNA editing: complexity and complications // Mol. Microbiol. 2002. V. 45. P. 591 -596.
  128. Su D., Gladyshev V.N. Alternative splicing involving the thioredoxin reductase module in mammals: a glutaredoxin-containing thioredoxin reductase 1 // Biochemistry. 2004. V. 43. P. 12 177−12 188.
  129. Tailor P., Gilman J., Williams S., Mustelin T. A novel isoform of the low molecular weight phosphotyrosine phosphatase, LMPTP-C, arising from alternative mRNA splicing // Eur. J. Biochem. 1999. V. 262. P. 277 282.
  130. Takahara K., Hayashi N., Fujitasagawa K., Morishita Π’., Hashimoto Y., Noda A.
  131. Alternative splicing of bovine terminal deoxynucleotidyl transferase Π‘ DNA // Biosci. Biotech. Bioch. 1994. V. 58. P. 786 786.
  132. Takenaka M., Noguchi Π’., Sadahiro S., Hirai H., Yamada K., Matsuda Π’., Imai E.,
  133. Tanaka T. Isolation and characterization of the human pyruvate kinase M gene // Eur. J. Biochem. 1991. V. 198. P. 101 106.
  134. Cancer. 2001. V. 32. P. 222 235. Uy R., Wold F. Posttranslational covalent modification of protein // Science. 1977. V. 198. P. 890−896.
  135. Venter J.C., Adams M.D., Myers E.W. et al. (274-coauthors). The sequence of the human genome // Science. 2001. V. 291. P. 1304 -1351. Visvikis A., Pawlak A., Accaoui M.J., Ichino K., Leh H., Guellaen G., Wellman M.
  136. Structure of the 5' sequences of the human y-glutamyltransferase gene // Eur. J. Biochem. 2001. V. 268. P. 317−325. Wahle E., Riiegsegger U. Π—'-End processing of pre-mRNA in eukaryotes // FEMS
  137. Weiss Π‘., Zeng Y., Huang J.M., Sobocka M.B., Rushbrook J.I. Bovine NAD (+)dependent isocitrate dehydrogenase: alternative splicing and tissue-dependent expression of subunit 1 //Biochemistry. 2000. V. 39. P. 1807- 1816.
  138. Wiens M., Koziol C., Batel R., Muller W.E.G. Prolidase in the marine sponge Suberites domuncula: Enzyme activity, molecular cloning, and phylogenetic relationship // Mar. Biotechnol. 1999. V. 1. P. 191 199.
  139. Wilanowski T.M., Hayward D.C., Gibson J.B. Nucleotide sequence and expression of the 5"-glycerol-3-phosphate dehydrogenase gene in Locusta migratoria II Bio-chimica and Biophysica Acta. 1998. V. 1443. P. 414 418.
  140. Wirz Π’., Soldati Π’., Hissle J.P., Perriard J.C. A unique chiken Π’ crestine kinase gene gives rise to 2 Π’ — creatine kinase isoproteins with distinct N — termini by alternative splicing // J. Biol. Chem. 1990. V. 265. P. 1656 -1666.
  141. Wright D.A., Shaw C.R. Genetics and ontogeny of a-glycerophosphate dehydrogenase isozymes in Drosophila melanogaster И Biochem. Genet. 1969. V. 3. P. 343 -353.
  142. Wright R.M., Vaitaitis G.M., Wilson C.M., Repine T.B., Terada L.S., Repine J.E.cDNA cloning, characterization, and tissue-specific expression of human xanthine dehydrogenase/xanthine oxidase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. P. 10 690−10 694.
  143. Yamaguchi S., Nakanishi S. Regional expression and regulation of alternative forms of mRNAs derived from two distinct transcription initiation sites of the rat mGluR5 gene // J. Neurochem. 1998. V. 71. P. 60 68.
  144. Yang X.L., Liu F.M., Skene R.J., McRee D.E., Schimmel P. Crystal structure of an
  145. EMAP-II-like cytokine released from a human tRNA synthetase // Helvetica Chimica Acta. 2003. V. 86. P. 1246 1257.
  146. Ye D.J., Lee C.H., Queener S.F. Differential splicing of Pneumocystis carinii f. sp. carinii inosine 5'-monophosphate dehydrogenase pre-mRNA // Gene. 2001. V. 263. P. 151 158.
  147. Yoshimura K., Yabuta Y., Ishikawa Π’., Shigeoka S. Identification of a cis element for tissue-specific alternative splicing of chloroplast ascorbate peroxidase pre-mRNA in higher plants // J. Biol. Chem. 2002. V. 277. P. 40 623 40 632.
  148. Zheng Y., Zhou Z.M., Min X., Li J.M., Sha J.H. Identification and characterization of the BGR-like gene with a potential role in human testicular develop-ment/spermatogenesis // Asian Journal of Andrology. 2005. V. 7. P. 21 32.
  149. Zhou Z., Licklider L.J., Gygi S.P., Reed R. Comprehensive proteomic analysis of the human spliceosome // Nature. 2002. V. 419. P. 182 185.
  150. Zhu F., Zhang M. DNA polymerase zeta: new insight into eukaryotic mutagenesis and mammalian embryonic development // World Journal of Gastroenterology. 2003. V. 9. P. 1165- 1169.
  151. Zwicky R., Muntener K., Csucs G., Goldring M.B., Baici A. Exploring the role of5' alternative splicing and of the 3'-untranslated region of cathepsin Π’ mRNA // Biol. Chem. 2003. V. 384. P. 1007 1018.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ