Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Разработка и оптимизация биотехнологических методов культивирования in vitro lavandula angustifolia mill. с целью расширения исходного материала для селекции

Диссертация: Разработка и оптимизация биотехнологических методов культивирования in vitro lavandula angustifolia mill. с целью расширения исходного материала для селекции
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научная новизна. Впервые разработана технология получения каллусных культур Lavandula angustifolia Mill., позволяющая получить за 20−25 дней до 1300 — 1400 мг биомассы клеток. Оптимизированный состав питательной среды Мурасиге и Скуга для индукции каллусогенеза содержит следующий гормональный состав: 2ДЦ — 1мг/л, ИУК — 0,5 мг/л, кинетин 0,5 мг/л. Подобраны оптимальные режимы стерилизации… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. АНАЛИЗ СОСТОЯНИЯ ПРОБЛЕМЫ
    • 1. 1. Пряно-ароматические и эфиромасличные растения источники незаменимых биологически активных веществ
    • 1. 2. Использование биотехнологических методов для решения селекционных задач
    • 1. 3. Микроклональное размножение растений
      • 1. 3. 1. Модели микроклонального размножения
    • 1. 4. Стерильность как основа культуры клеток
    • 1. 5. Факторы, определяющие рост и развитие растений in vitro
    • 1. 6. Укоренение растений-регенерантов в культуре in vitro
    • 1. 7. Адаптация пробирочных растений к естественным условиям
  • ГЛАВА 2. МЕТОДОЛОГИЯ ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ
    • 2. 1. Объект исследований
    • 2. 2. Биотехнологические методы исследования
      • 2. 2. 1. Культивирование каллусных тканей на твердых питательных средах
    • 2. 3. Физико-химические методы исследования каллусной ткани
    • 2. 4. Микробиологические методы исследования
  • ГЛАВА. З.ПОЛУЧЕНИЕ КАЛЛУСНОЙ КУЛЬТУРЫ LAVANDULA ANGUSTIFOLIA MILL
    • 3. 1. Индукция каллусогенеза в растительном сырье
      • 3. 1. 1. Подбор растительного материала
      • 3. 1. 2. Введение эксплантов в стерильную культуру
      • 3. 1. 3. Подбор и оптимизация питательных сред для индукции каллусной культуры Lavandula angustifolia Mill
    • 3. 2. Пассирование каллусной культуры
    • 3. 3. Физико-химический анализ каллусной культуры
      • 3. 3. 1. Исследование динамики роста каллусной культуры
      • 3. 3. 2. Определение обводненности каллусных тканей
      • 3. 3. 3. Химический анализ каллусной культуры
  • ГЛАВА 4. РЕГЕНИРАЦИЯ РАСТЕНИЙ ИЗ КАЛЛСНОЙ КУЛЬТУРЫ LAVANDULA ANGUSTIFOLIA MILL
    • 4. 1. Побегообразование в каллусной ткани как разновидность морфогенеза в культуре клеток
    • 4. 2. Оптимизация методов укоренения побегов
    • 4. 3. Адаптация растений-регенерантов к естественным условиям
  • ГЛАВА 5. ИССЛЕДОВАНИЕ ЭНДО- И ЭКЗОГЕННОЙ АКТИВНОСТИ КАЛЛУСНЫХ КУЛЬТУР LAVANDULA
  • ANGUSTIFOLIA MILL
    • 5. 1. Проведение подготовительных работ для исследования эндо- и экзогенной активности каллусных культур
  • Lavandula angustifolia Mill
    • 5. 1. 1. Подготовка биологического материала и питательных сред к исследованию антибактериальной активности
    • 5. 1. 2. Подготовка посевного материала микроорганизмов
    • 5. 2. Исследование антибактериальной активности биологического материала методом серийных разведений в бульоне
    • 5. 3. Изучение эндо- и экзогенной активности клеточного сока и культуральной жидкости среды выращивания каллуса лаванды узколистной различных возрастов
    • 5. 3. 1. Исследование 7-дневного биологического материала
    • 5. 3. 2. Исследование 15-дневного биологического материала
    • 5. 3. 3. Исследование 27-дневного биологического материала
    • 5. 4. Разработка технологии получения биопрепарата на основе каллусной культуры Lavandula angustifolia Mill
  • ВЫВОДЫ

Разработка и оптимизация биотехнологических методов культивирования in vitro lavandula angustifolia mill. с целью расширения исходного материала для селекции (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Последнее десятилетие прошлого века охарактеризовалось повышенным интересом к лекарственным и лечебно-профилактическим средствам природного происхождения. К числу наиболее популярных объектов следует отнести эфиромасличные растения, которые на протяжении многих веков применялись не только как пряности и источники парфюмерной продукции, но и как лекарственные средства.

Ведущее место среди выращиваемых эфиромасличных культур занимает лаванда, эфирное масло которой широко используется в медицине, парфюмерно-косметической, пищевой промышленности, лакокрасочном производстве и других отраслях.

Отечественная промышленность всегда испытывала острый дефицит в сырье эфиромасличных растений. После распада СССР ситуация с этим видом сырья для России еще больше обострилась, так как основные площади под эфиромасличными культурами были сосредоточены на юге Украины и в Молдове (Воронина и др., 2001). Возрастающую потребность в эфиромасличных растениях можно удовлетворить в первую очередь с выведением новых продуктивных и генетически устойчивых сортов, содержащих высококачественное эфирное масло.

Новые возможности для селекции открываются при использовании технологии клонального микроразмножения. Высокая чувствительность каллусной культуры в сочетании с возможной изменчивостью клеток, создают реальные предпосылки для клеточной селекции. Данный метод позволяет быстро размножить уникальный генотип или новый сорт, что ускоряет его практическое использование. В настоящее время найдены условия размножения более 500 экономически важных или исчезающих видов дикорастущих растений. Многие из них размножаются уже в производственных условиях. Что касается лекарственных растений, технологии клонального микроразмножения разработаны в отделе биологии клетки и биотехнологии Института физиологии растений РАН для мандрагоры туркменской, кирказона маньчжурского, женьшеня, в Санкт-Петербургской химико-фармацевтической академии для ряда видов раувольфии, в ВИЛАРе для стефании гладкой. Имеющиеся литературные данные о биотехнологических исследованиях эфиромасличных культур, и в частности лаванды узколистной, крайне ограничены.

В этой связи нами проведены исследования возможностей использования биотехнологических приемов в расширении генофонда исходного материала лаванды узколистной — культуры, обладающей огромным биологическим и экономическим потенциалом.

Цель и задачи исследования

Целью наших исследований было разработать и оптимизировать биотехнологию получения каллусной культуры и растений-регенерантов Lavandula angustifolia Mill.

В соответствии с целью исследования нами были поставлены следующие задачи:

• разработать технологию индукции каллусогенеза Lavandula angustifolia Mill;

• выявить наиболее эффективный режим стерилизации растительных эксплантов;

• оптимизировать технологию получения каллусных культур Lavandula angustifolia Mill;

• подобрать питательные среды для длительного культивирования каллусной ткани;

• разработать технологию получения из каллусной культуры растений-регенерантов;

• исследовать биологическую активность полученной клеточной культуры.

Научная новизна. Впервые разработана технология получения каллусных культур Lavandula angustifolia Mill., позволяющая получить за 20−25 дней до 1300 — 1400 мг биомассы клеток. Оптимизированный состав питательной среды Мурасиге и Скуга для индукции каллусогенеза содержит следующий гормональный состав: 2ДЦ — 1мг/л, ИУК — 0,5 мг/л, кинетин 0,5 мг/л. Подобраны оптимальные режимы стерилизации растительных эксплантов Lavandula angustifolia Mill.

Изучены физико-химические свойства полученных культур, в результате чего выяснено, что каллусная ткань лаванды узколистной содержит все биологически активные вещества, присутствующие в интактном растении.

Разработана технология длительного культивирования каллусной ткани лаванды узколистной, позволяющая поддерживать активно растущую каллусную ткань неограниченное количество времени (2,5 года).

Впервые разработана технология получения из каллусной культуры лаванды узколистной растений-регенерантов, включающая в себя семь стадий. Постепенная адаптация растений-регенерантов к естественным условиям позволило получить нам до 94,7% приживаемости.

В результате проведенных микробиологических исследований выявлена эндои экзогенной активности каллусных культур Lavandula angustifolia Mill. На основе каллусной культуры лаванды узколистной получен биопрепарат стимулирующий рост бифидобактерий.

Практическая ценность работы. Разработка биотехнологических методов культуры in vitro позволяет получить возможность комплексного оздоровления посадочного материалавысокий коэффициент размножениявозможность получения большого количества растений за короткий сроквозможность хранения и накопления растений для высадки в оптимальные срокивозможность тиражирования форм, обладающих пониженной способностью к репродукции в обычных условиях и получение материала с увеличенным потенциалом к дальнейшему размножению за счет повышенной способности к ризогенезу и образованию большого числа побегов у древесных растений.

Разработка альтернативных имеющимся технологиям использования лекарственных растений становится возможной благодаря биотехнологическим методам. Использование каллусных культур в получении веществ растительного происхождения позволяет независимо от влияния климатических, сезонных и географических условий стабильно выпускать продукцию в течение года, уменьшить площади почвы, вовлеченной в хозяйственный оборот.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

• технология получения каллусной культуры Lavandula angustifolia Mill, позволяющая в кроткие сроки получить необходимую клеточную биомассу;

• исследование физико-химических характеристик полученной культуры, в результате которой выявлена биологическая активность каллусной культуры;

• технология длительного пассирования каллусной культуры Lavandula angustifolia Mill, позволяющая поддерживать активно растущую каллусную ткань неограниченное время;

• технология получения растений-регенерантов из каллусной культуры Lavandula angustifolia Mill, позволяющая получить до 94,7% приживаемости;

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на научно-практических конференциях: 7-ой Пущинской школе — конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2003), II Московском международном конгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 2003), Nova Science Publishers, Inc. New York, 2004; международной конференции «Наука и бизнес: Поиск и использование новых биомолекул: биоразнообразия, окружающая среда, биомедицина». (Пущино 2004), 8-ой международной Пущинской школе-конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2004), 3-й съезд Общества биотехнологов России им. Ю. А. Овчинникова.

Москва, 2005), XVIII зимняя молодежная научная школа «Перспективные направления физико-химической биологии и биотехнологии» (Москва, 2006).

Публикации: по теме диссертации опубликовано 7 научных работ.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, 4 глав теоретических и экспериментальных исследований, выводов, списка литературы, включающего 173 работ, в том числе 100 работ отечественных авторов и 73 работ зарубежных авторов. Работа изложена на 129 страницах машинописного текста, иллюстрирована 14 таблицами и 26 рисунками.

выводы.

1. Разработана биотехнология получения каллусной культуры лаванды узколистной (Lavandula angustifolia Mill.). Экспериментально доказано, что наилучшие показатели каллусогенеза получены на модифицированной питательной среде Мурасиге и Скуга содержащей 2ДД в концентрации 1мг/л, ИУК — 0,5мг/л и кинетина — 0,5мг/л. Начало каллусообразования наблюдалось уже через 10−13 дней после посадки экспланта на питательную среду.

2. Использование вытяжки из каллуса лаванды в качестве биологически активной добавки к питательной среде позволило нам получить 100% частоту каллусогенеза и достаточно высокие показатели индекса роста и начала каллусогенеза.

3. Исследована динамика роста каллусной культуры лаванды узколистной (Lavandula angustifolia Mill.). Продолжительность ростового цикла каллусных клеток составила 21−28 дней. Каллусная ткань обладала высокой и стабильной скоростью роста.

4. Подобрана эффективная схема получения стерильных растительных эксплантов. Сочетание стерилизующих агентов таких как, хлоргексидин и этанол позволило получить до 96% не инфицированных эксплантов.

5. Выявлено, что каллус лаванды узколистной обладает как эндотак и экзогенной активностью. Наибольшая биологическая активность в отношении тест-микроорганизмов наблюдалась у клеточного сока и культуральной жидкости среды выращивания каллуса лаванды 15-дневного возраста.

6. Разработана технология длительного пассирования каллусной культуры лаванды узколистной. Пассаж каллуса проводили через каждые 20 — 30 дней на среду Мурасиге-Скуга с содержанием гормонов 2ДД 1мг/л и кинетина Змг/л.

7. Разработана биотехнология культивирования растений-регенерантов лаванды узколистной. Частота морфогенеза на средах с гормональным составом 6-БАП 2мг/л и НУК 0,5мг/л составила 84%.

8. Разработана технология получения биопрепарата из каллусной ткани лаванды узколистной. Использование данного биопрепарата в качестве добавки к питательным средам для выращивания бифидобактерий позволяет увеличить концентрацию данных микроорганизмов на 210% по отношению к контролю.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.М., Султанова О. Д. Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда.- Кишинев, 1977. С. 28−36.
  2. И.В., Александрова И. В., Быков В. А. Особенности каллусогенеза ландыша майского (Convallaria majalis L.) в зависимости от физиологического состояния экспланта // Биотехнология, 2002. № 5. — С. 49−58.
  3. Р. Методы культуры клеток для биохимиков. Перевод с анг. к.б.н. Панова М. А. М.: Мир, 1983. — 264 с.
  4. Н.Ф., Логвиненко И. Е., Бакова Н. И., Давыдюк Л. П. Интродукция новых видов и сортов ароматических растений на юге Украины: Тез. докл. всесоюз. конф. «1нтродукщя харчових i кормовых рослин». Кшв, 1994.-е. 136−137.
  5. А. Ароматы и масла омолаживающие и исцеляющие. М.- СПб.: ДИЛЯ, 2000. 160с.
  6. Н.В. Микроклональное размножение как способ сохранения редких и исчезающих видов растений. -http:www.ib.komisc.rU/t/ru/ir/vt/02−56/06.html.
  7. О.Д. Пряности (лечебные свойства, медицинское использование). СПб.: ЗАО Весь, 1999. — 246с.
  8. P.M., Усманова И. Ю., Ломаченко Н. В. Вещества специализированного обмена растений (классификация, функции). -Уфа, 1998.- 159с.
  9. В.Б., Семенова Е. Ф., Елисеев В. И. О возможности интродукции ароматических растений в Пензенской области: Материалы Всесоюз. конф. «Вопросы совершенствования сельскохозяйственного производства». Пенза, 1995. — 4.2. — С. 99 108.
  10. М.В. Биохимические основы интродукции и особенности выращивания новых эфиромасличных растений в Молдавии: Дис. д. биол. наук. Кишинев, 1990. — 582с.
  11. Е.В., Лабецкая Н. В., Журавлев Ю. Н. Получение и культивирование каллусной ткани Iris setosa Pall, ex Link // Биотехнология. 2000. — № 5. — С. 47−51.
  12. Н.И., Носов A.M., Корниенко А. В. Влияние экзогенных регуляторов роста на каллусогенез и рост культивируемых клеток Stevia rebaudiana // Физиология растений, 1998. Т. 45. — № 6. -С. 888−892.
  13. Е.Д., Кисель И. И. Биотехнология. Культура клеток и тканей, http://vet.kharkov.ua/journals/shbioll2002
  14. А. М. Клеточная дифференциация и экспериментальный морфогенез у эфиромасличных растений: Автореф. дис. д-ра. биол. наук: 03.00.05 / Институт ботаники. Кишинёв, 1992. — С. 43.
  15. Р. Г. Гормональная регуляция дифференцировки растительной клетки в культуре in vitro / Рост и гормональная регуляция жизнедеятельности растений. Иркутск, 1974. — С. 67−85.
  16. Р.Г. Жизнь клетки вне организма. М., Знание, 1975. -С. 64.
  17. Р.Г. Культура изолированной ткани и физиология морфогенеза растений. М., Наука, 1964. — С. 272.
  18. Р.Г. Культура тканей и клеток растений. М. 1971. — С. 48.
  19. Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений. М., Наука, 1975. — С. 50.
  20. Н.А. Культивирование эфедры односемянной в условиях in vitro // Биотехнология, 2002. № 5. — С. 59−64.
  21. Ветчинникова JI.B. http://insteco.kre.karelia.ru/HP/vetchinnikova/.
  22. Л.И., Вечерко Н. А. Особенности биологии развития и селекции фрезии в условиях закрытого грунта Юго-Восточного Казахстана // Депонированные научные работы. Алма-Аты. — Вып. 1.- 1996.-С. 42−57.
  23. Г. А., Приходько Н. И. Использование культуры зародышей in vitro для получения межвидовых гибридов томатов // Тр. по прикл. ботан., генет. и селекции ВНИИ растениеводства. -1980. Т.63. — № 3. — С. 64−74.
  24. Е.П., Горбунов Ю. Н., Горбунова Е. О. Новые ароматические растения для Нечерноземья. М.: Наука, 2001. -С. 173.
  25. В.А. Биотехнологические методы в садоводстве // Современные проблемы плодоводства. Тезисы докладов. -Самохваловичи, 1995. С. 9−13.
  26. В.А. О генетической стабильности при клональном микроразмножении плодовых и ягодных культур // Сельскохозяйственная биология. М. — 1995. — С. 57−63.
  27. В.А., Дьякова Т. Н. Микроклональное размножение декоративных кустарников // Культура клеток растений и биотехнология. Тезисы докл. IV Всесоюзной конференции, Кишинев, «Штиинца». 1983. — С. 134.
  28. В.А., Трушечкин В. Г., Попов Ю. Г. Регенерационная способность верхушек черной смородины под влиянием различных ростовых веществ и условий культивирования // Сельскохозяйственная биология. 1976. — Т. XI. — С. 879−885.
  29. А.А., Пережогина В. В., Ковалев В. П. Пряно-вкусовые растения на Северо-Западе России. СПб.: Дом науч.-техн. Пропоганды, 1992. — С. 23.
  30. К.З., Рекославская Н. И., Швецов С. Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений Новосибирск: Наука, 1990. — С. 243.
  31. П.Я., Осипов А. В. Экспресс-метод и приборы для диагностики морозоустойчивых растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1972. — Т. 4. — Вып. 6. — С. 650−655.
  32. И.Ю., Сушкова З. В., Полещук С. В., Горбатенко Б. Л., Зоз Н.Н. и др. Использование синтетических антиоксидантов в качестве регуляторов роста в культуре тканей in vitro // Докл. РАСХН. 1993. -№ 2.-С. 9−13.
  33. Е.В., Запорожский А. А. Использование пряно-ароматических растений в колбасном производстве: Тез. докл. Всерос. студенчес. науч. конф. с междун. участием «Студенты России пищевой промышленности XXI века». — Краснодар, 1998. -С.33 — 34.
  34. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений: В 2 т. /Пер. с англ. М.: Мир, 1986. — Т.2. — С. 308.
  35. Е.А. Получение каллусных культур Silene vulgaris G. // Биотехнология, 2002. -№ 6. С.41−45.
  36. М.И. Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур. Автореф. дис. канд. с.-х. наук. Орел, 2003. -С. 26.
  37. Р.А. Изолирование и поддержание каллусных и суспензионных культур клеток // Биотехнология растений: культура клеток / Пер. с англ. В.И.Негрука- С предисл. Р. Г. Бутенко. М.: Агропромиздат, 1989.-С. 8−32.
  38. Н. Н. Проблемы регуляции морфогенеза и дифференциации в культуре клеток растений // Культура клеток растений.-М.: Наука, 1981.-С. 113−123.
  39. Т.А. Основы биотехнологии: Учеб. Пособие для высш. пед. учеб. заведений / Егорова Т. А., Клунова С. М., Живухина Е. А. М.: Издательский центр «Академия», 2003. — С. 208.
  40. Н.М. Хорошие и плохие соседи на огородной грядке. -М.: Маркетинг, 1999. С. 52.
  41. Н. Лекарственные растения. М.: ABF, 1998. — С. 491.
  42. .В. Инфильтративный туберкулез легких у лиц, инфицированных вирусом гепатита В: Автореф. дис. канд. мед. наук. -СПб., 1997.-С. 19.
  43. В.А., Котиков И. В., Трошин Л. П. Влияние регуляторов роста на проявление генетически детерминированных признаков окраски кожицы и сока ягод винограда на уровне каллусной ткани in vitro // Научный электронный журнал КубГАУ. № 2 (4). — 2004.
  44. В.А. Растения и работоспособность. М.: Знание, 1984. -С. 63.
  45. М.М. Влияние экстрактов радиолы розовой на развитие эксплантов родиолы розовой и иремельской в условиях in vitro. // Биотехнология, 2002. № 6. — С.52 — 56.
  46. Ф.Л. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений / Ф. Л. Калинин, В. В. Сарнацкая, В. Е. Полищук. Киев: Наукова думка, 1980. — С. 488.
  47. Ф.Л., Сорнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев, 1980. — С. 145.
  48. Р.А., Бенсон Н. А., Трофимова Н. А., Двинянинова И. Б. Клеточная культура Серпухи венценосной как перспективный продуцент фитоэкдистеройдов // Биология культивируемых кулеток и биотехнология растений. М., 1991. С. 38−41.
  49. А.О. Некоторые виды эфиромасличного сырья в медицинской практике //Вестник ВГУ, 2005. -№ 1. С. 205−211.
  50. Н.В., Бутенко Р. Г. Клональное микроразмножение растений. -М., Наука. 1983.-С. 96.
  51. В.И. Природные ингибиторы роста // Физиология растений. 1997. Т. 44. — № 3. — С.471−480.
  52. О.В. Генетические аспекты морфогенеза растений // Успехи соврем, биологии. 1993. Т. 113. — Вып. 3. — С. 269−285.
  53. А.И. Пряно-вкусовые лекарственные растения в Северном Зауралье: Сб. науч. тр. науч.-прак. конф. «Сельскохозяйственная наука развитию АПК Тюменской области». — Тюмень, 2000. -С.116−117.
  54. Н.Б. Лекарственные растения в радиозащитном питании: Тез. и докл. Третья междунар. конф. по селекции, технологиям возделывания и переработке нетрадиционных растений. Алушта, 1994.-С. 179−180.
  55. Д.А., Яговенко Т. В., Костюченко В. И., Пигарева С. А. Сравнительная характеристика различных генотипов люпина в культуре ткани // С.-х. биология. Сер. Биология растений. 1998. -№ 5.-С. 69−12.
  56. В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений 3. Каллусообразование in vitro // Биополимеры в клетках. 1997. Т. 13. — № 5.-С. 362−371.
  57. Г. А., Панфиткина Т. И. Применение искусственной культуры зародышей при отдаленной гибридизации моравскойрябины // Бюлл. научн. информ. центр, ген. лаб. им. Мичурина. -1976.-№ 23.-С. 3−6.
  58. М.П. Клональное микроразмножение промышленных сортов гладиолуса: Автореф. дис. канд. с-х. наук. М., 1998. — С. 19.
  59. B.C. Лекарства с огорода. М.: КУбК-а, 1995. — С. 351.
  60. Л.А., Забелина Е. К. Каллусо- и побегообразование у различных форм гороха Pisum sativum в условиях in vitro // Генетика.- 1988. XXIV. — Т. 9. — С. 1632−1640.
  61. Н.С., Хадеева Н. В., Шаин С. С., Майсурян А. Н. Разработка методов культивирования тканей копеечника in vitro // Биотехнология. 1999. -№ 1. — С. 55−61.
  62. А.Г., Мустафина А. Р. Сравнительный анализ содержания эндогенных фитогормонов в морфогенной и неморфогенной каллусной ткани гороха посевного // Биотехнология.- 2001. № 1.-С. 27−29.
  63. В.И. Некоторые итоги и проблемы интродукции и селекции эфиромасличных культур // Интродукция и селекция эфиромасличных культур. Ялта, 1978. — С. 5−28.
  64. Щ.С., Буторина А. К. Генетическая инженерия лесных древесных растений // Генетика. 2003. — Т. 39. — № 3. — С. 309−317.
  65. И.Г. Анализ каллусной ткани Aconitum septentrionale Koelle: физиологические и генетические аспекты: Дис. канд. биол. наук / Башкирский государственный университет (БашГУ), 2000. -С. 102.
  66. В.К., Вечерко H.A., 2003.-http:/nebrk.by.ru/n2/Art2ll.htm.
  67. С. Г., Смит Г. Факторы культивирования, влияющие на накопление вторичных метаболитов в культурах клеток и тканей растений // Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.: Агропромиздат, 1987. С.75−104.
  68. B.C., Комов В. П. Способность к каллусогенезу у эксплантов хвои пяти видов рода Taxus L. // Растительные ресурсы, 2001. -Т.37. Вып.4. — С. 100−107.
  69. В.А. Растения продуценты биологически активных веществ // Соросовский Образовательный Журнал, 2001. -№ 8. -С.13−19.
  70. В.Г. Растения в терапии и профилактике болезней. -Томск, изд-во Томского ун-та, 1989. С. 208.
  71. О. А, Бугара А. М. Цитологические особенности каллусных культур розы эфиромасличной // Ученые записки ТНУ, 2002. Т. 14 (53). — № 1. — С.45−58.
  72. JI.B., Никиточкина Т. Д., Семыкин В. И. Эфиромасличные культуры. М.: МСХА, 1994. — С. 144.
  73. Ю.Г., Трушечкин В. Г. Получение растений земляники методом культуры изолированных верхушек побегов // Плодоводство и ягодоводство нечерноземной полосы / Сб. научных работ НИЗИСНП.- 1972.-Т. 4. С. 184−193.
  74. Г. М., Кораблева О. А., Романенко JI.P. Проблемы интродукции пряно-ароматических растений в условиях Полесья Украины // Материалы междунар. науч. конф. Краснодар, 1993. — Ч. 2. — С. 393−396.
  75. Э.Э., Бакун В. К., Ефименко Д. И., Бакун Т. В., Самосудов В. Н. Оздоровление и размножение земляники в питомниководческом комплексе // Садоводство и виноградарство. -1983.-№ 7.-С. 17−19.
  76. А. Биотехнология: свершения и надежды. Пер. с англ. М. -1987.-С.411.
  77. Д.Н. Особенности клонального микроразмножения и ускорение селекции новых ремонтантных форм малины. Автореф. дис. канд. с.-х. наук. Брянск, 2004. — С. 20.
  78. В.В. Культивирование in vitro тканей хвойных Сибири: Автореф. дне. канд. биол. наук. Красноярск, 1992. С. 21.
  79. Е.В., Гольд В. М., Юшкова Е. В., Репях С. М. Особенности каллусообразования Thalictrum minus L. и Catharanthus roseus (L.) G. Don в условиях in vitro // Растительные ресурсы, 1999. Т. 35. -Вып. 4.-С. 61−67.
  80. JI.A., Ковалев С. Ю., Кравчук Н. С., Тинькова Г. С. Диетические масла с использованием СОг-экстрактов из лекарственных и пряно-ароматических растений // Тез. докл. науч.-практ. конф. М., 1998. — С. 329.
  81. И.Б., Тимин Н. И., Юрьева Н. А., Дмитриева Н. Н. Применение метода изолированных зародышей в межвидовой гибридизации лука // Тр. ВНИИ сел. и семен. овощ, культур. 1982. — Т. 15.- С. 57−65.
  82. Н.И. Регулирование процесса ризогенеза при микроразмножении яблони // Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве. Сборник статей. Мичуринск. 1992. — С. 10−15.
  83. В.М., Осипова Л. В., Расторгуев С. А. Индукция морфогенеза в тканевых культурах плодовых и ягодных растений // Генетика. 1994. — Т. 30. — С. 160.
  84. М.Т. Клональное микроразмножение и особенности регенерации растений ежевики и малины черной in vitro // Диссер. на соискание уч. ст. кандидата с.-х. наук. 1992. — С. 211.
  85. В.В. Культивирование каллусных тканей на твердых питательных средах // В кн. Методы культивирования клеток: Сб. науч. тр. Л.: Наука, 1988. — С. 232−241.
  86. А.В., Кормош С. М., Фогел Л. М. Перспективы интродукции пряно-ароматических культур в Закарпатье: Тез. докл. Третьей междунар. конф. по селекции, технологиям возделывания ипереработки нетрадиционных растений. Симферополь, 1994. -С. 38.
  87. М.В. Экономические аспекты промышленного культивирования, /из книги Биотехнология сельскохозяйственных растений / Пер. с англ. В.И. Негурка- С предисл. Р. Г. Бутенко. М.: Агропромиздат, 1987. — С. 301.
  88. JI.B. Особенности популяции культивируемых клеток // Культура клеток растений. М.- Наука, 1981. — С. 5−16.
  89. С.А. Условия культивирования in vitro и последующая продуктивность растений земляники // Автореф. дисс. канд. с.-х. наук. -М.- 1997. -С. 20.
  90. Р.П., Долгих Ю. И., Гужов Ю. Л. Выбор оптимальных сред для массовой регенерации растений сахарного тростника из каллусной культуры // Физиология растений. 1996. — Т. 43. -Вып.1. — С.111 — 115.
  91. Г. Размножение сельскохозяйственных культур in vitro // В книге биотехнология сельскохозяйственных растений / Пер. с англ.
  92. B.И. Негурка, с предисл. Р. Г. Бутенко. М.: Агропромиздат, 1987.1. C. 105−133.
  93. К. Эфиромасличные растения Узбекистана и пути их рационального использования: Автореф. дис. д. биол. наук. -Ташкент, 1999.-С. 42.
  94. У.М., Шевченко Ю. П. Возделывание пряно-ароматических культур в условиях Центральной нечерноземной зоны России // Тез. докл. Первого междунар. симпоз. Пущино, 1995.-С. 530−531.
  95. B.C. Сельскохозяйственная биотехнология. М.: Высшая школа. — 2003. -С. 469.
  96. Е.П., Мазан И. Ф. Лечение и профилактика растительными средствами (болезни пищеварительной системы). Баку, Азербайджан, 1992. — С. 316.
  97. .Ю., Полещук С. В., Горбатенко И. Ю., Ванюшин Б. Ф. Действие антиоксидантов на рост и развитие растений // Изв. РАН. Сер. биол. 1999. -№ 1.-С. 30−38.
  98. Alimgazinova В. New technologies in medicinal plants cultivation // Biotechnology approaches for exploitation and preservation of plant resources: Abstr. Int. Symp. Yalta, 2002. — P. 25.
  99. Alimgazinova B.Sh. In vitro technologies in medicinal plants cultivation // Book Abstr. Int. Conf. L «Med. Raw Mater, and Phytoprep. Med. and Agr.», Karaganda, Sept., 29 oct. 1, 1999. — Karaganda, 1999. — P.76.
  100. Arapetyan E., Bilinska I. Antibiotics help plants in struggle with bacteria and fungi / Abstr. 11th Congress of the Federation of European Societies of Plant Physiology, Bulg. J. Plant Physiol. 1998. — Spec, issue. — P. 223.
  101. Beresneva L.V., Kovalchuk I.U. Clonal micropropagation of grape for preservation in genbank in Kazakhstan // Biotec. Aproaches for Exp. and Preser. of Plant R. Absrtacts, Yalta. 2002. — P. 27.
  102. Bhansali R.R. Somatic embryogenesis and regeneration of plantlets in pomegrante // Annals of Botany. 1990. — 66. — P. 249−253.
  103. Bogunia H., Pizywara L. Rola cukrowcw w roslinnych kulturach in vitro // Wiad. bot. 1999. — 43, № 1−2. — P. 25−36.
  104. Broom O.C., Zimmerman R.H. Culture of shoot meristems: fruit plants // Cell culture and somatic cell genetics of plants. 1984. — V. 1. — P. 111 122.
  105. Calvo M.C., Segura J. Plant regeneration from cultured leaves of Lavandula latifolia Medicus: Influence of growth regulators and illumination conditions // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1989. -19. — № 1. — P. 33−42.
  106. Carlson M. Keep insects away the herbal way // Gardens West. 2000. Vol. 14, № l.-P. 26−30.
  107. Chipman E. Growing savory herbs // Canada. Dep. of agriculture: Ottawa. Can., 1980.- 17 p.
  108. Chung W.W. A novel approach for efficient plant regeneration from tissue culture of Cassava // Plant Cell Rep. 1990. — 8. — 11. — P. 639 642.
  109. Cousineau J.C., Donnelly D.J. Adventilious shoot regeneration from leaf explants of tissue cultured and greenhouse grown raspberry // Plant cell tissue and organ culture. — 1991. — V. 27. — № 3. — P. 249−25 5.
  110. Dalton C.C., Peel E. Product Formation and plant cell specialization: A case of photosynthetic development in plant cell cultures // Progr. Indust. Microbiol. 1983. Vol. 17. P. 109−166.
  111. Evans D.A., Sharp W.R., Flik C.E. Cell culture methods for crop improvement // Handbook of plant cell culture. New York, 1981. — P. 47−53.
  112. Fenaroli G. Le sostance aromatiche Naturali // Hoepli., Milano. Vol. 1. -1963.-P. 64−97.
  113. Filipek J. Antioxidative properties of Alchilla xanthochlora, Salvia officinalis and Solidago virgaurea water extracts. Biologia, Bratislava. -1994. Vol. 49, № 3. — P. 359−364.
  114. Fowler M.W. Regulation of carbohydrate metabolism in cell suspension cultures // In Frontiers of Plant Tissue Culture, Calgary: University of Calgary, 1978.-P. 443−452.
  115. Fowler M.W. Substrate utilisation by plant cell cultures. Journal of Chemical Tehnology and Biotehnology. 1982. 32. — P. 338−346.
  116. Gamborg O.L., Shiluk J.P., Shamin E.A. Plant tissue culture ethods and application in Agriculture. — Academic Press. New York, 1981. — P. 67.
  117. Gautheret R. La culture des tissus vegetaux. Paris, 1959. P. 864.
  118. Gawrys A. Rabata z ziolami // Kwiernik. 2000. — № 5. — P. 37−39.
  119. Gladstones L.S. Prospeets for interspecific hybridization of L. atlantieus with L. cosentini // Theor. and Appl. Genet. 1985. — № 2. — P. 71.
  120. Goebel K. Uber Regeneration in Pflanzenreich. Biol. Zbl. Bd., 1902. -22.-P. 385−397.
  121. Haberlandt G. Kulturversuche mit isolierten Pflanzenzellen. -Sitzungsber. Akad. Wiss., Wien Math. naturw., 1902., Bd.III. — P. 6992.
  122. Haccius D. Questions of unicellutar origin of non-zigotic embryos in callus cultures // Phytomorfology. 1978. — 28. — P. 78−81.
  123. Hajhashemi V., Ghannadi A., Sharif B. Antiinnflammatory and analgesic properties of the leaf extracts and analgesic properties of the leaf extracts and essential oil of Lavandula // Univ. Isfahan, Iran, 2002. P.184−197.
  124. Holdgate D.P. Propagation of ornamentals by tissue culture // Appllied and Fundamental Aspects of plant cell, tissue and organ culture. Ed. J. Reinhert and J.P.S.Bojaj, Berlin, Heidelberg and New York: Springer -Verlag. 1975. — P. 86−94.
  125. Huang Hao, Lu Mingbo, Mei Xingguo. Huazhong ligong daxue xuebao // J. Huazhong Univ. Sci. and Technol. 1999. Vol. 27. — № 4. -P. 107−109.
  126. Huang, Li-Chun, Liu, Din-Ming. Clonal multiplication of Lycorus aurea by tissue culture // Sci. hort (Neth.). 1989. — 40. — № 2. — P. 145−152.
  127. Idrissi A., Berrada M. Etude chimique comparative de quelques population de lavandula du Maroc // Colloque int. sur les plantes aromatiques et medicinales du Maroc. Rabat, 1985. P. 220.
  128. Juned S.A., Jackson M.T., Ford-Lloid B.V. Genetic variation in potato cv. Record: evidence from in vitro regeneration ability // Ann. of Bot. 1991. -67.-P. 199−203.
  129. Juned S.A., Jackson M.T., Ford-Lloid B.V. Genetic variation in potato cv. Record: evidence from in vitro regeneration ability // Ann. of Bot. 1991. -67.-P. 199−203.
  130. Kahkonen M.P., Hopia A.I., Vuorela H.J., Raiha J.-P., Rihlaja K., Kujala T.S., Heinonen M. Antioxidant activity of plant extracts containing phendic compounds // J. Agr. Food Chem. 1999. — Vol. 47, № 10. — P. 3954−3962.
  131. Kalinovic I., Martincic J., Rozman V., Guberac V. Insecticidal activity of substanes of plant origin ageinst stored product insects // Ochr. Rostl. -1997.-Vol. 33.-№ 2.-P. 135−142.
  132. Kim H.M., Cho S.H. Lavender oil inhibits immediate type allergic reaction in mice and rats // J. Pharm. Pharmacol. 1999. — Vol. 51. -P.221−226.
  133. Leung F.Y., Foster S. Encyclopedia of Common Natural Ingredients Used in Food, Drugs and Cosmetics, 2nd ed. John Wiley&Sons, Inc., New York, 1996.-P. 339−342.
  134. Lio Z.-H., Nakano H. Antibacterial activity of spice extracts against foodrelated bacteria // J. Fac. Eppl. Biol. Sc. Hirochima Univ. 1996. -Vol. 35.-№ 2.-P. 181−190.
  135. Litz R.E., Jarret R.L., Asokan H.P. Tropical and sutropical fruits and vegetables // Tissue culture as a plant production system for Horticultural crops. Nijhoff- Dordrecht- Netherlands, 1986. — P. 237−251.
  136. Maheswaran G., Williams E.G. Direct secondary somatic embryogenesis from immature sexual embryos of Trifolium repens cultured in vitro // Annals of Botany. 1986. — Vol. 57. — P. 109−117.
  137. Maretzki A., Thom M., Nickell L.G. Utilisation and metabolism of carbohydrates in cell and callus cultures. In Tissue Culture and Plant Science, London: Academic Press., 1974. P. 239−261.
  138. Morard P., Henry M. Optimization of the mineral composition of in vitro culture media // J. Plant Nutr. 1998. — Vol. 21. — № 8. — P. 1565−1576.
  139. Morel G. Sur la culture des tissus de derux Monocotiledones. C. R. Acad, sci., 1950.-P. 1099−1101.
  140. Murashige T. Clonal crops through tissue culture // Plant Tissue Cult. And Its Biotehnol. Appl., Berlin, etc.: Spring. Verl., 1977. — P. 395−403.
  141. Murashige T. Plant propagation through tissue cultures // Ann. Rev. Plant Physiol. 1974. — Vol. 25. — P. 136−166.
  142. Nemeth G. Induction of rooting // Biotechnology in Agriculture and forestry |Trees|. Ed. Y. P. S. Bajaj. Springer Verlag. — Berlin, Heidelberg. — 1986. — P. 49−64.
  143. Newton J. Treasures from the Aegean // Gardens West. 2000. — Vol. 14, № 2.-P. 58−61.
  144. Padma T.V. Spices protect against cancer // Everymans Sc. 1994. — Vol. 29, № 1.-P. 28−29.
  145. Parrot W.A., Dryden G., Vogt S., Hildebrandt D., Collins G.B., Williams E.G. Optimization of somatic embryogenesis and embryo germination in soybean // In vitro cell developm. Biol. 1988. — Vol. 24. — P. 817−820.
  146. Paster N., Juven B.J., Shaaga E., Menasherov M., Nitzan R., Ravid U. Inhibitory effect of oregano and thyme essential oils on moulds and food borne bacteria. S.I., 1990. Vol. 33 — P. 37.
  147. Рокоту J., Reblova Z., Janitz W. Exctrary z rozmaryny a salveje jako prirodni antioxidanty tuky a oleju // Czech J. Food Sc. 1998. — Vol. 16. — № 6. — P. 227−234.
  148. Power C.J. Organogenesis from Helianthus annuus ibreds and hybrids from the cotyledons of zigotic embryos // Amer. J. Bot. 1987. — Vol. 74. -P. 497−503.
  149. Reustle G., Natter I. Effect of polyvinylpyrrolidone and activated charcoal on formation of microcallus from grapevine protoplasts (Vitis sp.) // Vitis. 1997. Vol. 33.-№ 3.-P. 117−121.
  150. Revilla M.A., Power J.B. Morphogenetic potencial of long-term callus cultures of Actinidia delisiosa. J. hortuc. 1988. — Vol. 63. — № 3. — P. 541−545.
  151. Sasanelli N. Persrectives pour Lemploid plantes a nermalicide. Rev. Suisse Agr. 1997. — Vol. 29. — № 3. — P. 157−158.
  152. Sharma H.S., Gill B.S. Effect of embryo age and culture media on plant growth and vernalization responce in Winter wheat // Euphytica. 1982. -Vol. 31.-P. 629−634.
  153. Sharp W.R., Sondahl M.R., Caldas L.S., Marralfa S. B The physiology of in viro asexual embryogenesis // Hort. Rev. 1980. — Vol. 2. — P. 268 310.
  154. Shetty K. Plant propagatio compositions and methods: Пат.5 906 941 США, МПК6 C12N 5/04, A61K 35/12 // University of Massachusetts. -№ 08/842 560- Заявл. 15.04.97.- опубл. 25.05.99- НПК 435/431.
  155. Skoog F. Aspects of growthfactor interaction in morphogenesis of tobaco tissue cultures. In: Les cultures de tissus de plantes. Paris, C.N.R.S., 1971.-P. 115.
  156. Stafford A. Natural Products and Metabolites from Plant and Plant Tissue Cultures // Plant Cell and Tissue Culture // Eds Stefford A., Warren G. Milton Keyness: Open University Press, 1991. P. 124−150.
  157. Steward F. C., Shantz E.M., Pollard J.K., Mapes M.O., Mitra J. Growth induction in explanted cells and tissues: metabolic and morphogenetic manifestations // 19-th Growth Symposium, 1961. P. 193−244.
  158. Street H.E. Laboratory Manual of Cell Biology, Hall D. And Hawkins S. (eds.), English Universities Press, London, 1975. P. 222.
  159. Thorpe T.A., Meier D.D. Effects of gibberellic acid, abscisic acid on shoot formation in tobacco callus cultures. Physiol. Plantarum, 1973. -Vol. 29.-P. 121.
  160. Tisserat В., Esan E.B., Murashige T. Somatic embryogenesis in angiosperms // Horticultural Rev. 1977. — № 1. — P. 1−78.
  161. Tolley E., Mead Ch. Hebs: Gardens, decorations, and recipes. New York: Potter, 1985.-P. 244.
  162. Vasil I.K., Vasil V. Clonal propagation // Intern. Rev. of Cytol. Suppl: Rerspectives in Plant Cell and Tissue Culture No I. Acad, press. 1980. P. 145−173.
  163. Wan G., Sorensen E.L., Liang G.H. The effect of kinetin on callus characters in alfalfa (Medicago sativa L.) // Euphytica. 1988. — Vol. 39. -№ 3. — P. 249−254.
  164. Wantanabe K., Sato F., Furuta V., Yamada Y. Induction of pigment production by S-containing compounds in cultured Lavandula vera cells // Agric. Biol. Chem. 1985. — Vol. 49. — № 2. — P. 533−534.
  165. Yao Hongjun, Luo Xiaofrang, Tian Yanting // J. Beijing Forest. Univ. 1999. Vol. 21. — № 3. — P. 78−84.
  166. Yeoman M.M., Miedzybrodzka M.B., Lindsey K., McLauchlan W.R. The synthetic potential of cultured plant ctll // Plant ctll cultures: Results and perspectives. Amsterdam etc.: Elsevier, 1980. P. 327−344.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!