Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Методы выявления и изучение молекулярно-генетических свойств изолятов вирусов оспы птиц

Диссертация: Методы выявления и изучение молекулярно-генетических свойств изолятов вирусов оспы птиц
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Лабораторные методы, основанные на выявлении генетического материала вируса оспы птиц (ВОП), обладают более высокой чувствительностью и специфичностью по сравнению с другими методами и сокращают время постановки диагноза до 4−5 часов с момента отбора проб. В последнее время появились методы ПЦР для выявления ВОП. Сравнительно недавно для выявления ВОП разработан такой метод, как ПЦР в режиме… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Общая характеристика
    • 2. 2. Морфология
    • 2. 3. Классификация
    • 2. 4. Геном ВОП
    • 2. 5. Морфогенез
    • 2. 6. Взаимодействие вируса с организмом-хозяином
    • 2. 7. Культивирование ВОП
    • 2. 8. ' Патогенез и распространение заболевания
    • 2. 9. Заболевание
    • 2. 10. Антигенная и генетическая вариабельность и филогения ВОП
    • 2. 11. Диагностика инфекции, вызываемой ВОП
    • 2. 12. Профилактика и лечение
    • 2. 13. Вирус оспы птиц и вирус ретикулоэндотелиоза (РЭВ)
    • 2. 14. Вирусы оспы птиц в качестве вакцинных векторов

Методы выявления и изучение молекулярно-генетических свойств изолятов вирусов оспы птиц (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования. Оспа птиц (ОП) — вирусное заболевание домашних и многих видов диких птиц, распространенное во многих странах мира с развитым птицеводством. Возбудителем оспы птиц является ДНК-содержащий эпителиотропный вирус рода Avipoxvirus, подсемейства Chordopoxvirinae, семейства Poxviridae, в котором насчитывается 10 видов [82]. Наибольший экономический ущерб птицеводству причиняет вирус оспы кур (ВОК, fowlpox), который определен как типичный вид данного рода [144].

Оспа кур наносит птицеводческим хозяйствам экономический ущерб, вызывая смертность до 50%, снижение яйценоскости и приводя к вынужденному убою больных и переболевших птиц [66]. Специфическая вакцинопрофилактика оспы птиц применяется не во всех хозяйствах, что сохраняет возможность для распространения заболевания.

Эффективность мероприятий по борьбе с оспой птиц во многом зависит от своевременного выявления возбудителя. Диагноз основывается на данных клинических и патологоанатомических наблюдений, оценки эпизоотической ситуации и результатах комплекса лабораторных исследований с выделением вируса [11].

Лабораторная диагностика оспы птиц включает выделение вируса на хорионаллантоисной оболочке (ХАО) SPF-эмбрионов кур, гистологических исследованиях и электронной микроскопии [144]. Данные методы хотя и достаточно надежны, но весьма трудоемки и требуют значительного времени.

Лабораторные методы, основанные на выявлении генетического материала вируса оспы птиц (ВОП), обладают более высокой чувствительностью и специфичностью по сравнению с другими методами и сокращают время постановки диагноза до 4−5 часов с момента отбора проб. В последнее время появились методы ПЦР для выявления ВОП [8, 83, 84, 91, 118]. Сравнительно недавно для выявления ВОП разработан такой метод, как ПЦР в режиме реального времени (ПЦР-РВ) [121]. Метод ПЦР-РВ более чувствителен по сравнению с обычной ПЦР и позволяет проводить количественный анализ исследуемого гена. Одним из недостатков метода ПЦР является возможность ингибирования реакции при исследовании проб патологического материала. Для контроля процесса выделения ДНК и наличия ингибиторов реакции в исследуемой пробе используется внутренний контрольный образец (ВКО), т. е. гетерологичная ДНК, которая добавляется в пробу перед выделением, а также положительный контрольный образец (ПКО).

Известные виды и штаммы ВОП могут значительно отличаться по биологическим и генетическим свойствам [140], поэтому необходимо не только выделять изоляты, но также проводить их изучение. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей генов даёт возможность устанавливать филогенетические связи ВОП. Чаще всего для этого анализируют участок гена P4b (fpvl67) и H3L (фу 140) [91, 118], кодирующие структурные иммунодоминантные белки ВОП. Необходимо отметить, что генетическое разнообразие изолятов ВОП, встречающихся на территории РФ, остаётся в настоящее время малоизученным.

Поскольку используются живые вакцины против оспы кур, необходимо дифференцировать полевые изоляты вируса от вакцинных штаммов. Работа, проведенная Susan A. Jarmin с коллегами [118], позволила выявить генный локус Н9, который может быть использован для различия полевых изолятов оспы кур от вакцинных штаммов.

Имеются свидетельства того, что вирус ретикулоэндотелиоза птиц (РЭВ) участвует в патогенезе В OK, увеличивая его вирулентность за счет подавления иммунного ответа [126]. РЭВ — иммуносупрессивный ретровирус. Как правило, вирулентные штамма ВОК имеют полногеномную последовательность РЭВ в своём геноме, в то время как вакцинные штаммы несут только длинные концевые повторы (LTR) [121].

Исходя из вышеизложенного, разработка и усовершенствование методов выявления ВОП в пробах патологического материала, дифференциация вакцинных штаммов от полевых изолятов, а также изучение молекулярно-генетических свойств выделенных изолятов ВОП является актуальной задачей.

Степень разработанности проблемы. Отечественными исследователями опубликован ряд рекомендаций по борьбе с оспой птиц (Новочеркасск, 1984; Кишинёв, 1989), разработаны вакцины против оспы птиц и изучены их свойства (Черкезова Т.В., 1989; Бочарников A.B., 2003; Николаева И. П., 2003; Смирнов В. Н., 2003; Черкезова Т. В., 2003; Бочарников A.B., 2004; Похвальный С. А., 2011). Предложены системы ПЦР и ПЦР в режиме реального времени для выявления ВОП (Huw Lee & Hwa Lee, 1997; Hauck, 2009; Jarmin S., 2006). Отечественными исследователями разработан метод гнездовой ПЦР на ген тимидинкиназы для выявления ВОП (Батченко Г. В., 2006).

Цель и задачи исследования

Основной целью данных исследований являлась разработка и усовершенствование методов выявления и дифференциации ВОП, а также изучение молекулярно-генетических свойств выделенных изолятов.

Для достижения поставленных целей было необходимо решить следующие задачи:

1. Разработать метод выявления ВОП на основе полимеразной цепной реакции и полимеразной цепной реакции в режиме реального времени с рекомбинантными положительным и внутренним контрольными образцами.

2. Определить первичную нуклеотидную последовательность и провести филогенетический анализ фрагментов генов P4b, Fpvl40 и генного локуса Н9 полевых изолятов ВОП, выделенных в 2008;2012 гг., а также 5 вакцинных и одного полевого штамма ВОК.

3. Разработать метод выявления генома вируса ретикулоэндотелиоза (РЭВ) в геноме ВОП с использованием ПЦР и провести анализ изолятов и штаммов ВОП на наличие встроенной последовательности РЭВ.

4. Изучить молекулярно-генетические свойства изолятов и штаммов.

ВОП.

Научная новизна результатов исследования.

1. Разработаны методы выявления ВОП с помощью ПЦР и ПЦР-РВ с рекомбинантными ПКО и ВКО.

2. Определены нуклеотидные последовательности фрагментов генов Р4Ь, Рру140 и генного локуса Н9 изолятов ВОП, выделенных в 2008;2012 гг., а также пяти вакцинных штаммов и штамма ВОК для контрольного заражения. Проведен филогенетический анализ изолятов и штаммов ВОП с использованием полученных последовательностей.

3. Разработан метод выявления встройки генома РЭВ в ВОП с использованием ПЦР и проведен анализ изолятов и штаммов ВОП на наличие встроенной последовательности РЭВ.

Практическая значимость работы. С помощью разработанных методов выявления генома ВОП на основе ПЦР исследовано 65 проб патологического материала от кур, голубей и диких птиц, поступивших в 2008;2012 гг. из России, Украины и Казахстана. В 16 пробах от кур и 3 пробах от голубей был выявлен ВОП. Установлено, что из 18 выявленных изолятов 16 являются вирусами оспы кур и 2 — вирусами оспы голубей. Разработаны методы, позволяющие дифференцировать полевые изоляты ВОК, выделенные в России, от вакцинных штаммов. 18 изолятов ВОП, выделенных в 2008;2012 гг., пять вакцинных и один штамм ВОК для контрольного заражения были исследованы на наличие генома вируса ретикулоэндотелиоза птиц. Изучены молекулярно-генетические свойства изолятов и штаммов ВОП.

Научные результаты, выносимые на защиту:

Методы выявления ВОП на основе ПЦР и ПЦР-РВ с рекомбинантным положительным и внутренним контролем.

Результаты филогенетического анализа нуклеотидных последовательностей фрагментов генов Р4Ь, БруМО изолятов ВОП, выделенных в 2008;2012 гг., а также 5 вакцинных и одного штамма ВОК для контрольного заражения.

Способ дифференциации полевых изолятов ВОК от вакцинных штаммов на основе анализа генного локуса Н9.

Результаты анализа изолятов и штаммов ВОП с помощью ПЦР и ПЦР-РВ на наличие встроенной последовательности РЭВ.

Соответствие диссертации паспорту научной специальности. В соответствии с формулой специальность 03.02.02 Вирусология, охватывает проблемы инфекционности вирусов, разработки мер и средств диагностики вызываемых вирусами заболеваний, включая области исследования — генной инженерии, изучение генетических и негенетических взаимодействий между вирусами, эпидемиологии и путей распространения вирусных инфекций, изучение путей передачи вирусов, выявление естественных хозяев, разработку мер диагностики вирусных заболеваний, совершенствование лабораторных диагностических систем. В диссертационной работе проведены исследования по разработке методов ПЦР для выявления ВОП, а так же исследования молекулярно-биологических и филогенетических свойств изолятов ВОП.

Результаты научного исследования соответствуют пунктам паспорта специальности — 4, 6, 8, 10.

Апробация результатов исследования. Результаты исследований по теме диссертации доложены и обсуждены на заседаниях Учёного совета ФГБУ «ВНИИЗЖ» в 2010;2012 гг., доложены и опубликованы на Международных научно-практических конференциях молодых ученых (Россия, 2010 г.- Россия, 2012 г.) и Международной научно-практической конференции «Трансмиссивные болезни животных: актуальные аспекты биобезопасности и контроля» (Крым, Украина, 2012).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, в том числе 3 работы опубликованы в изданиях, включенных в перечень высшей аттестационной комиссии (ВАК) РФ.

Структура диссертации. Диссертация изложена на 133 страницах компьютерного текста и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, результаты собственных исследований и их обсуждение, заключение, выводы, практические предложения, приложения. Список использованной литературы включает 154 источника. Работа иллюстрирована 25 рисунками и 7 таблицами. В приложении представлены копии титульных листов документов, подтверждающих достоверность результатов работы, ее научную новизну и практическую значимость.

6. ВЫВОДЫ.

1. Разработаны методы полимеразной цепной (ПЦР) и полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР-РВ) с рекомбинантными положительным и внутренним контрольными образцами для выявления ВОП, аналитическая чувствительность которых составила 101'4 ЭИД50/мл (8,1 копийДНК/реакцию) и 1,19 ЭИД50/мл (2,0 копий ДНК/реакцию), соответственно. С помощью разработанных методов геном ВОП выявили в 18 пробах.

2. В результате проведенных гистологических исследований эпителиальных тканей кожи кур, зараженных вирусом оспы кур изолята Chicken/RusIvanovo/FPV/l 857/10, были обнаружены характерные эозинофильные тельца включений.

3. Определена первичная нуклеотидная последовательность фрагмента гена Р4Ь размером 578 п.н. и гена Fpvl40 размером 1983 п.н. 18 изолятов ВОП, 5 вакцинных и штамма ВОК «Кучинский». В результате проведённого филогенетического анализа установлено, что 22 изолятов и штаммов ВОП относятся к вирусам оспы кур, в то время как 2 изолята относятся к вирусам оспы голубей.

4. Разработан метод для амплификации участка гена Р4Ь 1281 п.н. на основе ПЦР. По результатам филогенетического анализа изолятов и штаммов ВОП было показано высокое внутривидовое сходство вирусов по этому участку гена.

5. Определены первичные нуклеотидные последовательности генного локуса Н9 14 изолятов ВОП, 5 вакцинных и полевого штамма ВОК «Кучинский». Анализ последовательностей данного локуса позволяет дифференцировать полевые изоляты от вакцинных штаммов.

6. Разработаны методы ПЦР для выявления генома вируса ретикулоэндотелиза птиц и для выявления сайта встраивания генома РЭВ в геном ВОП. Анализ 18 изолятов ВОП, 5 вакцинных и одного полевого штамма ВОК на наличие встройки генома РЭВ показал, что в геноме всех полевых изолятов ВОК имеется полная геномная последовательность РЭВ, в то время как в вакцинных штаммах — только длинные концевые повторы РЭВ.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

В результате проведенных исследований разработаны следующие нормативные документы:

— «Методические рекомендации по выявлению вируса оспы кур с помощью полимеразной цепной реакции» (2010 г.);

— «Методические рекомендации по выявлению ДНК вируса оспы птиц методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени с рекомбинантным положительным контролем» (2011 г.).

Данные методические рекомендации прошли комиссионные испытания, были одобрены Учёным советом, утверждены директором ФГБУ «ВНИИЗЖ» и рекомендованы для использования при проведении диагностических и научных исследований.

5.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Использование современных методов диагностики инфекционных заболеваний, основанных на выявления генетического материала возбудителя, имеет ряд преимуществ по сравнению с традиционными лабораторными методами. Так молекулярно-генетические методы позволяют получить результат исследования за более короткий период времени, что значительно ускоряет процедуру постановки диагноза. Изучение структуры генома позволяет дать индивидуальную характеристику выявленного изолята, которая при сравнительном анализе может служить основой для определения его филогенетической принадлежности, а также определения возможных источников и путей распространения. Вместе с тем традиционные методы исследования, такие как вирусовыделение в SPF-эмбрионах кур и гистологические исследования, не теряют своей актуальности и остаются «золотыми стандартами» при проведении диагностических исследований на наличие ВОП.

В настоящем исследовании были разработаны методы ПЦР для выявления и дифференциации ВОП. Методы включают ПЦР и ПЦР-РВ, в которых геном-мишенью является ген Р4Ь. Оба метода включают рекомбинантный положительный контрольный образец, а метод ПЦР-РВ внутренний контрольный образец, который позволяет контролировать процесс выделения и исключать ложноотрицательные результаты вследствие ингибирования ПЦР или старения реактивов. При разработке метода ПЦР-РВ с ВКО был определен такой важный параметр реакции, как эффективность амплификации, что позволило оценить эффективность работы тест-системы и дать более полную характеристику разработанному методу. Было установлено, что для системы праймеров на ген Р4Ь, эффективность амплификации при внесении ВКО снизилась с 86,6% до 81,2%.

С использованием различных изолятов и штаммов ВОП методы ПЦР и ПЦР-РВ были оптимизированы по температурному профилю реакции и составу реакционной смеси.

Аналитическая чувствительность разработанного метода ПЦР, определенная с разведениями препарата вакцинного штамма «КЭМ-7» вируса оспы кур, составила 10 м ИЭД50/мл или 0,125 ИЭД5о/реакцию, а при использовании в качестве матрицы рекомбинантной плазмиды — 1620 копии/мл или 8,1 копии/реакцию.

Аналитическая чувствительность метода ПЦР-РВ, определенная с разведениями препарата вакцинного штамма «КЭМ-7», вируса оспы кур составила 1,19 ЭИД50/мл или 0,059 ЭИД50/реакцию, а при использовании в качестве матрицы рекомбинантной плазмиды — 400 копии/мл или 2,0 копии/реакцию.

Тестирование специфичности ПЦР и ПЦР-РВ проводили в присутствии вируса осповакцины и различных ДНК-содержащих патогенов птиц (Mycoplasma gallisepticum, вирус инфекционного ларинготрахеита, аденовирус, вирус болезни Марека). Результаты показали, что неспецифической амплификации отмечено не было, а разработанные методы специфично выявляли ДНК ВОП.

С использованием разработанных методов было исследовано 65 проб патологического материала от кур, голубей и диких птиц, поступивших в период с 2008 по 2012 гг. В результате проведенных исследований методом ПЦР и ПЦР-РВ вирус оспы птиц был выявлен в 16 пробах из 10 регионов России, а также 2 пробах с Украины. Из 18 положительных проб, 15 проб были получены от кур и 3 пробы от голубей. Все положительные пробы были получены в весенний и осенний период, что может быть следствием сезонности распространения заболевания.

Были проведены гистологические исследования кожных тканей перепонки крыла с характерными поражениями через две недели после внутрикожного заражения вирусом оспы кур изолята Chicken/RusIvanovo/ FPV/1857/10. В результате проведённых исследований в гистологических препаратах были обнаружены характерные оспенные поражения: эозинофильные серповидные тельца включений, увеличенные в размере клетки в два-три раза по сравнению с отрицательным контролем, паутиновидные цитоплазматические структуры.

Анализ филогенетических дендрограмм, построенных на основе нуклеотидных последовательностей гена Р4Ь, позволяет выявить наличие трёх генетических групп среди вирусов оспы птиц: вирусов оспы кур и схожих с ними вирусов, вирусов оспы канареек и схожих с ними вирусов и вирусов оспы попугаев. Отличия нуклеотидных последовательностей между представителями этих генетических групп достигают значения 18,3%. Среди вирусов оспы кур и вирусов, схожих с ними, можно выделить пять подгрупп. В генетической группе вирусов оспы канареек и схожих с ними вирусов можно выделить четыре подгруппы. В группу вирусов оспы попугаев входит одна подгруппа. Все выделенные в ходе работы изоляты из России и Украины относились к группе вирусов оспы кур и схожих с ними вирусов. Все изоляты от кур относятся к подгруппе 1, к которой относится большинство изолятов от кур со всего мира. К этой подгруппе относится и изолят, выделенный от голубя в районе птицефабрики, от кур с которой одновременно выявляли ВОП. Другие два изолята от голубей, исследованные в ходе нашей работы, из России и Украины относятся к подгруппе 4, в которую кроме всего прочего объединены три изолята от голубей из Германии, Индии и Англии.

Для того чтобы увеличить участок анализируемой последовательности гена Р4Ь были подобраны праймеры, позволяющие амплифицировать участок гена размером 1281 п.о. По результатам сравнительного анализа двенадцати последовательностей расширенного участка гена Р4Ь изолятов ВОП, была установлена очень высокая идентичность их нуклеотидных последовательностей (99−100%), за исключением изолята, выделенного от голубя (приблизительно 96%).

Был проведен анализ последовательностей гена фу 140 изолятов ВОП. При этом наблюдается полиморфизм длины этого гена. Между исследованными изолятами вируса кур и голубей, различие составляет 14 п.н. На основании выравнивания 43 последовательностей была построена дендрограмма, отражающая генетическое родство изолятов и штаммов вирусов оспы птиц по участку гена фу 140. Анализ нуклеотидных последовательностей гена фу 140 позволяет выявить наличие трёх генетических групп: вирусов оспы кур и схожих с ними вирусоввирусов оспы голубей, индеек и схожих с ними вирусов, а также вирусов оспы канареек и схожих с ними вирусов. Первая группа (вирусов оспы кур) включает в себя все представленные последовательности изолятов, выделенных от кур, включая те, которые получены в ходе нашей работы. Сюда же входит изолят вируса, выделенный нами от голубя, отловленного в районе птицефабрики. Другие два изолята от голубей, исследованные в ходе нашей работы, из России и Украины относятся к группе вирусов оспы голубей, индеек и схожих с ними вирусов. Анализ данного гена в отличие от гена Р4Ь позволяет дифференцировать вирусы индеек от вирусов голубей.

Был проведен анализ нуклеотидных последовательностей локуса Н9, который может быть потенциально использован для различия полевых изолятов от вакцинных штаммов. ПЦР-продукты были получены для всех изолятов и штаммов вируса оспы кур, за исключением штамма «Кучинский». Размер ампликона со всеми изолятами и штаммами составил приблизительно 2200 п.н. за исключением вакцинного штамма «ВГНКИ 3/7». Со штаммом «ВГНКИ 3/7» с одной системой праймеров нарабатывается два ПЦР фрагмента размером 2200 и 1000 п.н., что может быть следствием гетерогенности данного штамма. Анализ нуклеотидных последовательностей локуса Н9 показал, что последовательность в 1000 п.н. штамма «ВГНКИ 3/7» идентична последовательности локуса вакцинных штаммов Chick’N’Pox и FPV М (номер доступа АМ396 439) и сопоставима с расчётным продуктом 999 п.н. для FPV USDA. Дополнительная последовательность в 1207 нуклеотидов, обнаруженная во всех изолятах и штаммах, за исключением штаммов «Кучинский» сходна с последовательностями двух европейских полевых изолятов (НР1 и FPV 174), и трех вакцинных штаммов: Nobilis Variole W (Nobilis), Diftosec CT (Diftosec) и Poxine.

Полученные в ходе работы и имеющиеся в базе данных последовательности имеют различия. Так, в позиции 473 во всех вакцинных штаммах, секвенированных в ходе нашей работы (КЭМ-7, ВГНКИ 3/7, НР-В, К, Gibbs), а также в полевом изоляте с птицефабрики Украины наблюдается замена основания, А на С, приводящая к смене аминокислоты изолейцина на лейцин. Во всех полевых изолятах, выделенных на территории России, в двух европейских полевых изолятах (AM396440/HPl-200/Germany, AM396436/FPV 174/04/UnitedKingdom), а также в вакцинных штаммах АМЗ 96 441/Duphar (Poxine) и AM396439/FPV M (Websters) сохраняется основание А.

Другим важным различием, обнаруженным в ходе работы, является делеция четырёх нуклеотидов (СТАТ) в позиции 893−896 во всех полевых изолятах с территории России, полученных в ходе работы. В тоже время во всех вакцинных штаммах, секвенированных в ходе нашей работы, во всех изолятах и штаммах, представленных в базах данных, а также в полевом изоляте, выделенном от курицы с птицефабрики Украины, эта последовательность сохраняется.

Таким образом, выявленные различия позволяют проводить дифференциацию полевых изолятов, выявляемых на территории России, от вакцинных штаммов.

Есть данные о том, что вирус ретикулоэндотелиоза участвует в патогенезе ВОК, увеличивая его вирулентность за счет подавления иммунного ответа. РЭВ — иммуносупрессирующий онкогенный ретровирус. Как правило, вирулентные штамма ВОК имеют полногеномную последовательность РЭВ в своём геноме, в то время как вакцинные штаммы имеют только длинные концевые повторы.

Нами был проведен анализ всех изолятов и штаммов ВОП, изученных в данной работе, методом ПЦР с праймерами, рассчитанными на все гены вируса ретикулоэндотелиоза птиц и на область встройки ДНК РЭВ в геном ВОП, а также методом ПЦР в режиме реального времени с праймерами, рассчитанными на последовательность гена gag вируса ретикулоэндотелиоза птиц. В случае положительного результата в ПЦР, делали вывод о наличие полногеномной последовательности РЭВ в геноме ВОП. В ходе проведённого анализа изолятов и штаммов ВОК на наличие вируса ретикулоэндотелиоза было установлено, что все полевые изоляты имеют встройку полного генома вируса ретикулоэндотелиза, в отличие от вакцинных штаммов. ДНК РЭВ не была обнаружена в обоих изолятах вируса оспы голубей предположительно потому, что геном ВОГ не имеет специфического сайта рекомбинации для встраивания генома вируса ретикулоэндотелиза. Было показано, что во всех вакцинных штаммах ВОП есть длинные концевые повторы РЭВ.

Результаты проведенного анализа на наличие последовательности полного генома РЭВ в полевых изолятах ВОК совпадают с анализом генного локуса Н9. Таким образом, проведение молекулярно-генетического анализа данных сайтов генома ВОП позволяет дифференцировать выявляемые полевые изоляты оспы от вакцинных штаммов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.А. Оспа птиц // Зооиндустрия. 2005. -№ 8−9. — С. 4−7.
  2. A.B., Кулаков В. Ю. Стабильность вакцинных штаммов вирусов инфекционного ларинготрахеита и оспы птиц // Ветеринария. -2004. № 3. — С. 22−24.
  3. Калнек / Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц // М. 2003.
  4. Культуральная вакцина против ньюкаслской болезни и оспы птиц // В. Н. Смирнов, А. Т. Кушнир, Д. В. Колбасов и др. / V Международный конгресс по птицеводству, Москва, 21−24 апреля 2003. Москва, 2003. -С. 125−129.
  5. Н.П., Ушакова А. Н. Выявление вируса оспы птиц с помощью молекулярно-биологических методов на территории Российской Федерации в 2009—2011 гг.. // Ветеринария и кормление. 2011. — № 6. -С. 20−21.
  6. Методика выявления генома вируса оспы кур методом полимеразной цепной реакции / Г. В. Батченко, С. Н. Колосов, Л. О. Щербакова, В.В. Дрыгин- ФГУ «ВНИИЗЖ». Владимир, 2006. — 6с.
  7. Методика оценки патогенности Mycoplasma gallisepticum гистохимическим методом / A.B. Спрыгин, A.B. Борисова, М. И. Сорокина и др.- ФГУ «ВНИИЗЖ». Владимир, 2009. — 12с.
  8. Ю.Николаева И. П., Седунова А. И., Талыбова О. Н. Культивирование вируса оспы кур // V Международный конгресс по птицеводству, Москва, 21−24 апреля 2003. Москва, 2003. — С. 103−105.
  9. Оспа птиц и мероприятия по её профилактике в хозяйствах Ростовской области: рекомендации- Северо-кавказский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт. Новочеркасск, 1984. — 12с.
  10. С.А., Кулаков В. Ю. Иммунобиологические свойства аттенуированного штамма «КЭМ-7» вируса оспы кур // Ветеринария и кормление 2011. — № 6. — С. 42−43.
  11. Профилактика оспы птиц: рекомендации- Кишиневский сельскохозяйственный институт. Кишинёв, 1989. — 8с.
  12. Д.Н., Рид В.М. Оспа // Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц / под ред. Б. У. Кэлнека. 10е изд. — Эймс, Айова, США, 2003. — Г. 24. — С. 743−761.
  13. Т.В. Реактогенность, безвредность и иммуногенность вакцинного штамма «К» вируса оспы кур для цыплят суточного возраста // Деп. рукопись в РЖ сер. Ветеринария ВНИИиТЭИ Госкомпродзаг СМ СССР, ВАСХНИЛ, М., 1989, № 7. — С. 28.
  14. AAAP. Avian Histopathology / ed. O.J. Fletcher. 3rd ed. — Madison, WI: Omni Press, 2008.-438 p.
  15. Adams, C. J., Feldman S. H., Sleeman J. M. Phylogenetic analysis of avian poxviruses among free-ranging birds of Virginia // Avian Dis. 2005. — Vol. 49, N 1. — P. 601−605.
  16. Alcami, A. New insights into the subversion of the chemokine system by poxviruses // Eur. J. Immunol. 2007. — Vol. 37. — P. 880−883.
  17. Alcami, A., Smith G.L. A soluble receptor for interleukin-1 beta encoded by vaccinia virus: a novel mechanism of virus modulation of the host response to infection // Cell. 1992. — Vol. 71, — P. 153−67.
  18. A multiplex PCR for detection of poxvirus and papillomavirus in cutaneous warts from live birds and museum skins / J. Perez-Tris, R.A. Williams, E. Abel-Fernandez et al. // Avian Dis. 2011. — Vol. 55, № 4. — P. 545−553.
  19. Analysis and comparison of the 4b core protein gene of avipoxviruses from wild birds: evidence for interspecies spatial phylogenetic variation / S.C. Weli, T. Traavik, M. Tryland et al. // Arch. Virol. 2004. — Vol. 149. — P. 2035−2046.
  20. Analysis of the fowlpox virus gene encoding the 4b core polypeptide and demonstration that it possesses efficient promoter sequences / M.M. Binns, M.E.G. Boursnell, F.M. Tomley, J. Campbell // Virology. 1989. — Vol. 170.-P. 288−291.
  21. An epizootic of avian pox in endemic short-toed larks (Calandrella rufescens) and Berthelot’s pipits (Anthus berthelotti) in the Canary Islands, Spain / J.E. Smits, J.L. Telia, M. Carrete et al. // Vet. Pathol. 2005. — Vol. 42. — P. 5965.
  22. An outbreak of lymphomas in commercial broiler breeder chickens vaccinated with a fowlpox vaccine contaminated with reticuloendotheliosis virus / A.M. Fadly, R.L. Witter, E.J. Smith et al. // Avian Pathol. 1996. — Vol. 25. — P. 35−47.
  23. Antoniou, A.N., Powis S.J. Pathogen evasion strategies for the major histocompatibility complex class I assembly pathway // Immunology. 2008. -Vol. 124. — P. 1−12.
  24. Applications of canarypox (ALVAC) vectors in human and veterinary vaccination / J. Taylor, J. Tartaglia, M. Riviere et al. // Dev. Biol. Stand. -1994.-Vol. 82.-P. 131−135.
  25. A sensitive one-step real-time PCR for detection of avian influenza viruses using a MGB probe and an internal positive control / L. Di Trani, B. Bedini, I. Donatelli et al. // BMC Infectious Diseases. 2006. — Vol. 6, N 87.
  26. Atypical distribution of fowl pox lesions in broilers / CG Senties-Cue, BR Charlton, P Woolcock Brunetti et al. // Avian Dis. 2010. — Vol. 54, № 4. -P. 1316−1318.
  27. Avipoxvirus phylogenetics: identification of a PCR length polymorphism that discriminates between the two major clades / S. Jarmin, R. Manvell, R.E. Gough et al. // J. Gen. Virol. -2006. Vol. 87. — P. 2191−2201.
  28. A virulence factor of myxoma virus colocalizes with NF-kB in the nucleus and interferes with inflammation / C. Camus-Bouclainville, L. Fiette, S. Bouchiha et al. // Virol. J. 2004. — V. 78. — P. 2510−2516.
  29. Bagust, T.J., Dennett D.P. Reticuloendotheliosis virus: experimental infection of poultry and immunofluorescent identification of Australian isolates // Australian Vet. J. 1977. — Vol. 53. — P. 506−508.
  30. Baxby, D., Bennett M., Getty B. Human cowpox 1969−93: a review based on 54 cases // Br. J. Dermatol. 1994. — Vol. 131. — P. 598−607.
  31. Baxby D. Jenner’s smallpox vaccine. The riddle of the origin of vaccinia virus: London: Heinemann Educational Books Ltd, 1981.
  32. Baxi, M.K., Oberoi M.S. Comparative evaluation of cell culture-adapted and chicken embryo-adapted fowl pox vaccine strains // Avian Dis. 1999. — Vol. 43. — P. 16−21.
  33. Beard, C. W, Schnitzlein W.M., Tripathy D.N. Effect of route of administration on the efficacy of a recombinant fowlpox virus against H5N2 avian influenza // Avian Dis. 1992. — Vol. 36. -P. 1052−1055.
  34. Biological and immunogenic properties of a canarypox-rabies recombinant, ALVAC-RG (vCP65) in non-avian species / J. Taylor, B. Meignier, J. Tartaglia et al. // Vaccine. 1995. — Vol. 13. — P. 539−549.
  35. Boehmer, P.E., Lehman I.R. Herpes simplex virus DNA replication // Annu. Rev. Biochem. 1997. — Vol. 66. — P. 347−384.
  36. Bolte, A. L., Meurer J., Kaleta E. F. Avian host spectrum of avipoxviruses // Avian Pathol. 1999. — Vol. 28, N 5. — P. 415−432.
  37. Boyle, D., Heine H. Recombinant fowlpox virus vaccines for poultry // Immunol. Cell Biol. 1993. — Vol. 71. — P. 391−397.
  38. Bradley, R. R., Terajima M. Vaccinia virus K1L protein mediates host-range function in RK-13 cells via ankyrin repeat and may interact with a cellular GTPase-activating protein // Virus Res. 2005. — Vol. 114. — P. 104−112.
  39. Budding of fowlpox and pigeonpox viruses at the surface of infected cells / Y. Hatano, M. Yoshida, F., J. Uno et al. // Electron. Microsc. (Tokyo) 2001. -Vol. 50.-P. 113−124.
  40. Buscaglia, C., Bankowski R.A., Miers L. Cell-culture virus-neutralization test and enzyme-linked immunosorbent assay for evaluation of immunity in chickens against fowlpox // Avian Dis. 1985. — Vol. 29. — P. 672−680.
  41. Carter, J.K.Y., Cheville N.F. Isolation of surface tubules of fowlpox virus // Avian Dis. 1981. — Vol. 25. — P. 454−462.
  42. Characterization of avipoxviruses from wild birds in Norway / S.C. Weli, M.I. Okeke, M. Tryland et al. // Can. J. Vet. Res. 2004. — Vol. 68. — P. 140−145.
  43. Characterization of poxviruses from forest birds in Hawaii / D.N. Tripathy, W.M. Schnitzlein, P.J. Morris et al. // J. Wildl. Dis. 2000. — Vol. 36. — P. 225−230.
  44. Cheevers, W.P., O’Callaghan D.J., Randall C.C. Biosynthesis of host and viral deoxyribonucleic acid during hyperplastic fowlpox infection in vivo // J. Virol. 1968. — N 2. — P. 421−429.
  45. Chung, Y.S., Spradbrow P.B. Studies on poxvirus isolated from a magpie in Queensland // Australian. Vet. J. 1977. — Vol. 53. — P. 334−336.
  46. Clinical Trials database. URL: http://clinicaltrials.gov (дата обращения: 07.07.12).
  47. Clubb S.L. Avian pox in cage and aviary birds. In Zoo and wild animal medicine // ed M.E. Fowler. Philadelphia, Pennsylvania: WB Saunders Company, 1986. — P. 213−219.
  48. Comparison of the genetic maps of variola and vaccinia viruses / S.N. Shchelkunov, S.M. Resenchuk, A.V. Totmenin et al. // FEBS Lett. 1993. -Vol. 327.-P. 321−324.
  49. Concurrent avian malaria and avipox virus infection in translocated South Island saddlebacks (Philesturnus carunculatus carunculatus) / M.R. Alley, K.A. Hale, W. Cash et al. / New Zeeland Vet. J. 2010. — Vol. 58, N 4. — P. 218−223.
  50. Construction of recombinant fowlpox viruses carrying multiple vaccine antigens and immunomodulatory molecules / DB Boyle, MA Anderson, R Amos et al. // Biotechniques. 2004. — Vol. 37. — P. 104−106, 108−111.
  51. Cook, G.C. The smallpox saga and the origin (s) of vaccination // J. Royal Soc. Health. 1996. — Vol. 116. — P. 253−255.
  52. Cooper J.E. Veterinary aspect of captive bird of prey Cherington, UK: Standfast Press, 1985. — 256 p.
  53. Courtney, В. C. Development of internal controls for probe-based nucleic acid diagnostic assays / В. C. Courtney, M. M. Smith, E. A. Henchal et al. // Anal. Biochem. 1999. — Vol. 270. — P. 249−256.
  54. Cowpox Virus Evades CTL Recognition and Inhibits the Intracellular Transport of MHC Class I Molecules / A. Dasgupta, E. Hammarlund, M.K. Slifka, K. Friih // The Journal of Immunology. 2007. — Vol. 178. — P. 16 541 661.
  55. Cox, W.R. Avian pox infection in a Canada goose (Branta canadensis) // J. Wild. Dis. 1980. — Vol. 16. — P. 623−626.
  56. Development and use of fowlpox vectored vaccines for avian influenza / M. Bublot, N. Pritchard, D.E. Swayne et al. // Ann. New York Acad. Sci. -2006.-Vol. 1081.-P. 193−201.
  57. Development of internal controls for PCR detection of Bacillus anthracis / G. Brightwell, M. Pearce, D. Leslie et al. // Mol. Cell. Probes. 1998. — Vol. 12. -P. 367−377.
  58. Diversity, origins and virulence of Avipoxviruses in Hawaiian Forest Birds / S.I. Jarvi, D. Triglia, A. Giannoulis et al. // Conserv. Genet. 2008. — Vol. 9, N2.-P. 339−348.
  59. Doyle, T.M. Immunisation of fowls against fowlpox by means of pigeon pox virus // J. Comparative Pathol. 1930. — Vol. 43. — P. 40−45.
  60. Efficacy studies on a canarypox-rabies recombinant virus / J. Taylor, C. Trimarchi, R. Weinberg et al. // Vaccine. 1991. — Vol. 9. — P. 190−193.
  61. Evidence for incomplete replication of a penguin poxvirus in cells of mammalian origin / L.M. Stannard, D. Marais, D. Kow, K.R. Dumbell // J. Gen. Virol. 1998.-Vol. 79.-P. 1637−1646.
  62. Evaluation of immune effects of fowlpox vaccine strains and field isolates / J. Wang, J. Meers, P.B. Spradbrow, W.F. Robinson // Vet. Microbiol. 2006. -Vol. 116.-P. 106−119.
  63. Fatunmbi, 0.0., Reed W.M. Evaluation of a commercial quail pox vaccine (Bio-Pox Q) for the control of «variant» fowl poxvirus infections // Avian Dis.- 1996.-Vol. 40.-P. 792−797.
  64. Fenner, F. Adventures with poxviruses of vertebrates // FEMS Microbiology Reviews. 2000. — Vol. 24, N 6. — P. 123−133.
  65. Fenner, F., Burnet FM. A short description of the poxvirus group (vaccinia and related. viruses) // Virology. 1957. — Vol. 4. — P. 305−314.
  66. Fenner F. Poxviruses // Fields virology. / ed. Knipe D.M., Howley P.M. -New York: Lippincott Raven Press, 1996. P. 2673−2702.
  67. Field and vaccine strains of fowlpox virus carry integrated sequences from the avian retrovirus, reticuloendotheliosis virus / C. Hertig, B.E. Coupar, A.R. Gould, D.B. Boyle // Virology. 1997. — Vol. 235. — P. 367−376.
  68. Field isolates of fowlpox virus contaminated with reticuloendotheliosis virus / I.S. Diallo, M.A. Mackenzie, P.B. Spradbrow, W.F. Robinson // Avian Pathol.- 1998.-Vol. 27.-P. 60−66.
  69. Fowlpox. URL: http://web.oie.int/wahis/public.php (дата обращения: 14.02.12).
  70. Ghildyal, N., Schnitzlein W.M., Tripathy D.N. Genetic and antigenic differences between fowl pox and quail pox viruses // Arch. Virol. 1989. -Vol. 106. — P. 85−92.
  71. Highly attenuated poxvirus vectors: NYVAC, ALVAC and TROVAC. E. Paoletti, J. Taylor, B. Meignier et al. // J. Dev. Biol. Stand. 1995. — Vol. 84. -P. 159−163.
  72. Holt, G., Krogsrud J. Pox in wild birds // Acta. Vet. Scand. 1973. — Vol. 14. -P. 201−203.
  73. Hoorfar, J., Cook N. Critical aspects of standardization of PCR // Methods Mol. Biol. 2003. — Vol. 216. — P. 51−64.
  74. ICTV avipoxvirus taxonomy. URL: http://www.ictvonline.org/virusTaxonomy.asp?version=2007 (датаобращения: 22.10.12).
  75. Identification and characterization of three immunodominant structural proteins of fowlpox virus / D. Boulanger, P. Green, B. Jones, et al. // J. Virol. 2002. — Vol. 76. — P. 9844−9855.
  76. Identification of the canarypox virus thymidine kinase gene and insertion of foreign genes / H. Amano, S. Morikawa, H. Shimizu et al. // Virology. -1999.-Vol. 256, 280−290.
  77. Infection of human cancer cells with myxoma virus requires Akt activation via interaction with a viral ankyrin-repeat host range factor / G. Wang, J. W. Barrett, M. Stanford et al. // Proc Natl.Acad. Sci. USA- 2008. Vol. 103.. p. 4640^4645.
  78. Investigation of the morphology of cell clones, derived from the mammalian EBTr cell line and their susceptibility to vaccine avian poxvirus strains FK and Dessau / I.V. Sainova, A.I. Kril, K.B. Simeonov // J. Virol. Methods. -2005.-Vol. 124.-P. 37−40.
  79. Johnston, J.B., McFadden G. Technical knockout: understanding poxvirus pathogenesis by selectively deleting viral immunomodulatory genes // Cell Microbiol. 2004. — Vol. 9. — P. 695−705.
  80. Kim, T., Tripathy D.N. Evaluation of pathogenicity of avian poxvirus isolates from endangered Hawaiian wild birds in chickens // Avian Dis. 2006. — Vol. 50.-P. 288−291.
  81. Kim, T.J., Tripathy D.N. Reticuloendotheliosis virus integration in the fowl poxvirus genome: not a recent event // Avian Dis. 2001. — Vol. 45. — P. 663 669.
  82. Laidlaw, S.M., Skinner M.A. Comparison of the genome sequence of FP9, an attenuated, tissue culture-adapted European strain of Fowlpox virus, with those of virulent American and European viruses // J. Gen. Virol. 2004. -Vol. 85. — P. 305−3.322.
  83. Lee, H.L., Hwa Lee K. Application of the polymerase chain reaction for the diagnosis of fowl poxvirus infection // J. Virol. Methods. 1997. — Vol. 63. -P. 113−119.
  84. Luschow, D., Hoffmann T., Hafez H.M. Differentiation of avian poxvirus strains on the basis of nucleotide sequences of 4b gene fragment // Avian Dis. 2004. — Vol. 48, N 3. — P. 453−462.
  85. Maniatis T., Fritsch E.F., Sambrooks S. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. N.Y.: Cold Spring Harbor, 2006. — 800 p.
  86. Mayr, A., Mahnel H. Characterization of a fowlpox virus isolated from a rhinoceros // Arch. Gesamte Virusforsch. 1970. — Vol. 31. — P. 51−60.
  87. Mayr, A., Malicki K. Attenuation of virulent fowl pox virus in tissue culture and characteristics of the attenuated virus // Zentralbl Veterinarmed. 1966. -Vol. 13.-P. 1−13.
  88. Mercer, A. A., Fleming S. B., Ueda N. F-box-like domains are present in most poxvirus ankyrin repeat proteins // Virus Genes 2005. — Vol. 31.-P. 127−133.
  89. Minke, J.M., Audonnet J.C., Fischer L. Equine viral vaccines: the past, present and future // Vet. Res. 2004. — Vol. 35. — P. 425−443.
  90. Molecular characterization of reticuloendotheliosis virus insertions in the genome of field and vaccine strains of fowl poxvirus / M. Garcia, N. Narang, W.M. Reed et al. // Avian Dis. 2003. — Vol. 47. — P. 343−354.
  91. Morphogenesis of canary poxvirus and its entrance into inclusion bodies / R.E. Ricklefs, J.L. Bollmerb, G.J. Sadasiv et al. // Am. J. Vet. Res. 1985. -Vol. 46.-P. 529−535.
  92. Moss B. Poxviridae: the viruses and their replication // Fields virology / ed. B.N. Fields, D.M. Knipe, P.M. Howley. New York: Lippincott Raven Press, 1996.-P. 2637−2671.
  93. Moss, B. Vaccinia and other poxvirus expression vectors // Curr. Opin. Biotechnol. 1992. — Vol. 3. — P. 518−522.
  94. Myxoma virus M-T5 protects infected cells from the stress of cell cycle arrest through its interaction with host cell cullin-1 Johnston / Wang J. B., Barrett G, Nazarian J. W et al. // J. Virol. 2005. — Vol. 79. — P. 1 075 010 763.
  95. Nelson, J.B. The behaviour of poxviruses in respiratory tract: IV. The nasal instillation of fowlpoxvirus in chickens and in mice // J. Exp. Med. 1941. -Vol. 31.-P. 203−212.
  96. NYVAC: a highly attenuated strain of vaccinia virus / J. Tartaglia, M.E. Perkus, J. Taylor et al. // Virology. 1992. — Vol. 188. — P. 217−232.
  97. OIE. Quality standard and guidelines for veterinary laboratories: infectous diseases. 2nd ed. — Paris, 2008. — 70 p.
  98. Paoletti, E. Application of pox virus vectors: an update // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996.-Vol. 93.-P. 11 349−11 353.
  99. Pastoret, P.P., Vanderplasschen A. Poxviruses as vaccine vectors // Comp. Immun. Microbiol. Infect. Dis. 2003. — Vol. 344, № 26. — P. 343−355.
  100. Pattyn, S.R. Monkeypoxvirus infections // Revue Scientifique et Technique de 1'Office International des Epizooties. 2000. — Vol. 19. — P. 92−97.
  101. Payne, L.N. Retrovirus-induced disease in poultry // Poult. Sci. 1998. -Vol. 77. — P. 1204−1212.
  102. Pennycott, T.W. Scaly leg, papillomas and pox in wild birds // Vet. Rec. -2003.-Vol. 152.-P. 444.
  103. Perkus, M.E., Tartaglia J., Paoletti E. Poxvirus-based vaccine candidates for cancer, AIDS, and other infectious diseases // J. Leukoc. Biol. 1995. — Vol. -58. — P. 1−13.
  104. Poxviruses and immune evasion / B.T. Seet, J.B. Johnston, C.R. Brunetti et al. // Annu. Rev. Immunol. 2003. — Vol. 21. — P. 377−423.
  105. Proctor, H., Owens I. Mites and birds: Diversity, parasitism and coevolution // Trends in Ecology and Evolution. 2000. — Vol. 15. — P. 358−364.
  106. Recombinant fowlpox virus inducing protective immunity in non-avian species / J. Taylor, R. Weinberg, B Languet et al. // Vaccine. 1988. — Vol. 6.-P. 497−503.
  107. Retention of 1,2 kbp of 'novel' genomic sequence in two European field isolates and some vaccine strains of Fowlpox virus extends open reading frame fpv241 / S. Jarmin, R. Manvell, R.E. Gough et al. // J. Gen. Virol. -2006. Vol. 87. — P. 3545−3549.
  108. Reticuloendotheliosis group virus pathogenic to chicken isolated material infected with turkey herpesvirus (HVT) / H. Koyama, Y. Suzuki, Y. Ohwada, Y. Saito // Avian Dis. 1977. — Vol. 20. — P. 429−434.
  109. Schnitzlein, W.M., Ghildyal N., Tripathy D.N. A rapid method for identifying the thymidinekinase genes of avipoxviruses // J. Virol. Methods. -1988.-Vol. 20.-P. 341−352.
  110. Serologic response against fowl Poxvirus and Reticuloendotheliosis virus after experimental and natural infections of chickens with Fowl Poxvirus / R. Hauck, C. Prusas, H. M. Hafez, D. Luschow // Avian Diseases 2009. — V. 53.-P. 205−210.
  111. Shchelkunov, S.N., Blinov V.M., Sandakhchiev L.S. Genes of variola and vaccinia viruses necessary to overcome the host protective mechanisms // FEBS Lett. 1993. — Vol. 319. — P. 80−83.
  112. Shirinov, F.B., Ibragimova A.I., Misirov Z.G. Spread of fowl poxvirus by the mite Dermanyssus gallinae // Veterinariya. 1972. — Vol. 4. — P. 48−49.
  113. Shisler, J. L., Jin X. L. The vaccinia virus K1L gene product inhibits host NF-kB activation by preventing IkBa degradation // Virology Journal. 2004.- Vol. 78. P. 3553−3560.
  114. Singh, P., Kim T.J., Tripathy D.N. Re-emerging fowlpox: evaluation of isolates from vaccinated flocks // Avian Pathol. 2000. — Vol. 29. — P. 449 455.
  115. Singh, P., Schnitzlein W.M., Tripathy D.N. Constraction and characterization of fowlpox virus field isolate whose genome lacks Reticuloendotheliosis provirus nucleotide sequences //• Avian Dis. 2005. -Vol. 49.-P. 401−408.
  116. Singh, P., Schnitzlein W.M., Tripathy D.N. Reticuloendotheliosis virus sequences within the genomes of field strains of fowlpox virus display variability // J. Virol. 2003. — Vol. 77. — P. 5855−5862.
  117. Smallpox and its eradication / F. Fenner, D.A. Anderson, I. Arita et al. -Geneva: World Health Organisation, 1988. 320 p.
  118. Smith G.L., Law M. The exit of vaccinia virus from infected cells // Virus Res. 2004. — Vol. 106. — P. 189−197.
  119. Somogyi, P., Frazier J., Skinner M.A. Fowlpox virus host range restriction: gene expression, DNA replication, and morphogenesis in non-permissive mammalian cells // Virology. 1993. — Vol. 197. — P. 439−444.
  120. Specificity in the immunosuppression induced by avian reticuloendotheliosis virus / M.H. Walker, B.J. Rup, A.S. Rubin, H.R. Bose // J. Infect. Immun. -1983.-Vol. 40.-P. 225−235.
  121. Stability of recombinant vacciniarabies vaccine in veterinary use / P.P. Pastoret, B. Brochier, B. Languet et al. // Dev. Biol. Stand. 1996. — Vol. 87.- P. 245−249.
  122. Structure of intracellular mature vaccinia virus observed by cryoelectron microscopy / J. Dubochet, M. Adrian, K. Richter et al. // J. Virol. 1994.-Vol. 68.-P. 1935−1941.
  123. Tadese, T., Potter E.A., Reed W.M. Development of a mixed antigen agar gel enzyme assay (AGEA) for the detection of antibodies to poxvirus in chicken and turkey sera // J. Vet. Med. Sci. 2003. — Vol. 65. — P. 255−258.
  124. Tadese, T., Reed, W. M. Detection of specific reticuloendotheliosis virus sequence and protein from REV-integrated fowlpox virus strains // J. Virol. Methods. 2003. — Vol. 110. — P. 99−104.
  125. Taqman Real-Time PCR Detects Avipoxvirus DNA in Blood of Hawafi «Amakihi (Hemignathus virens) / M.E.M. Farias, D.A. LaPointe, C.T. Atkinson et al. // PLoS ONE. 2010. — Vol. 5, N 5. — P. 1−6.
  126. Taylor, J., Paoletti E. Fowlpox virus as a vector in non-avian species // Vaccine. 1988. — Vol 6. — P. 466−468.
  127. The complete DNA sequence of vaccinia virus / S.J. Goebel, G.P. Johnson, M.E. Perkus et al. // Virology. 1990. — Vol. 179. — P. 247−266.
  128. The genome of canarypox virus / E.R. Tulman, C.L. Afonso, Z. Lu et al. // J. Virol. 2004. — Vol. 78. — P. 353−366.
  129. The genome of fowlpox virus / C. L. Afonso et al. // J. Virol. 2000. -Vol. 74,-P. 3815−3831.
  130. The phylogenetic analysis of avipoxvirus in New Zealand / H.H. Jeong, L. Howe, M. Alley, B. Gartrell // Veterinary Microbiology. 2011. in press.
  131. Transactivation of latent Merak’s disease herpesvirus gene in QT35, a quail fibroblast cell line, by herpesvirus of turkeys / T. Yamaguchi, S.L. Kaplan, P. Wakenell, K.A. Schat // J. Virol. 2000. — Vol. 74. — P. 10 176−10 186.
  132. Tripathy, D.N., Hanson L.E. Immunity to fowlpox // Am. J. Vet. Res. 1975. — Vol. 36. — P. 541−544.
  133. Tripathy D.N., Reed W.M. Poxvirus // Diseases of Poultry. Ames, IA: Iowa State University Press, 2003. — P. 253−269.
  134. Tripathy D.N., Reed W.M. Pox // A laboratory manual for isolation, identification and characterization of avian pathogens / ed. L. Dufour-Zavala. 5th ed. — Madison, Wisconsin: Omni Press, 2008. — Chap. 25. — P. 116−119.
  135. Vaccinia virus blocks Stat 1-dependent and Stat 1-independent gene expression induced by type I and type II interferons / B.A. Mann, J.H. Huang, P. Li et al. // J. Interferon Cytokine Res. 2008. — Vol. 28 — P. 367−380.
  136. Van Riper C., Forrester D.J. Avian pox // Infectious Diseases of Wild Birds / N.J. Thomas, D.B. Hunter, C.T. Atkinson. Ames, Iowa: Blackwell Publishing, 2007. — P. 131−176.
  137. Venereal pox in breeder turkeys in Minnesota / A.L. Metz, L. Hatcher, J.A. Newman, D.A. Halvorson // Avian Dis. 1985. — Vol. 29.-P. 850−853.
  138. Virus Taxonomy: Vlllth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses» / C.M. Fauquet, M.A. Mayo, J. Maniloff et al. // Elsevier Academic Press, 2005. 443 p.
  139. Weli, S.C., Nilssen O., Traavik T. Avipoxvirus multiplication in a mammalian cell line // Virus Res. 2005. — Vol. 109. — P. 39−49.
  140. Weli, S.C., Nilssen O., Traavik T. Morphogenesis of fowlpox virus in a baby hamster kidney cell line // Med. Electron. Microsc. 2004. — Vol. 37. — P. 225−235.
  141. Weli S.C., Tryland M. Avipoxviruses: infection biology and their use as vaccine vectors // Virology Journal. 2011. — Vol. 8. — P. 49.
  142. Witter R.L., .L. Reticuloendothelosis // Diseases of poultry / ed. T.M. Saif, H.J. Barnes, J. Glisson, L.R. McDougald, D.E. Swayne. 1 lnd ed. — Ames, IA: Iowa State University Press, 2003. — P. 517−535.
  143. Yuasa, N., Yoshida I., Taniguchi T. Isolation of a reticuloendotheliosis virus from chickens inoculated with Marek’s disease vaccine // Natl. Inst. Anim. Health (Tokyo). 1976. — Vol. 16. — P. 141−151.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!