Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Иммунологические эффекты полихроматического видимого и инфракрасного света, близкого по спектральному составу к естественному

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Поскольку и «ранний» апоптоз, и многие другие эффекты света экологического диапазона длин волн (УФА, видимого и ИК излучений) связываются в настоящее время с образованием клетками активных форм кислорода и азота, представляется исключительно актуальным развитие таких исследований. В этой связи большое значение имеет изучение механизмов интереснейшего и пока мало известного феномена «трансляции… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Влияние видимого и инфракрасного (ИК) света на показатели клеточного и гуморального иммунитета в условиях in vivo и in vitro
      • 1. 1. 1. Изменения лейкоцитарной формулы
      • 1. 1. 2. Субпопуляционный состав лимфоцитов
  • Изменения в условиях in vivo
  • Изменения в условиях in vitro
    • 1. 1. 3. Пролиферативная активность лимфоцитов
  • Изменения в условиях in vivo
  • Изменения в условиях in vitro
    • 1. 1. 4. Функциональная активность лимфоцитов: антителогенез Изменения в условиях in vivo 29 Изменения в условиях in vitro
    • 1. 1. 5. Цитотоксичность NK-клеток
  • Изменения в условиях in vivo
  • Изменения в условиях in vitro
    • 1. 1. 6. Функциональная активность нейтрофильных гранулоцитов и моноцитов/макрофагов
  • Изменения в условиях in vivo
  • Изменения в условиях in vitro
    • 1. 1. 7. Продукция/секреция цитокинов
  • Изменения в условиях in vivo
  • Изменения в условиях in vitro

Иммунологические эффекты полихроматического видимого и инфракрасного света, близкого по спектральному составу к естественному (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность.

Широкое использование в медицине лазерных технологий позволило обосновать высокую эффективность монохроматического видимого и инфракрасного (ИК) света низкоинтенсивных лазеров при лечении заболеваний различного этиопатогенеза, что принято связывать с его противовоспалительным, иммуно-модулирующим и ранозаживляющим действием [79, 144, 327]. Однако механизмы, с помощью которых облучение небольшого участка поверхности тела пациента приводит к развитию этих системных эффектов, до сих пор не выяснены. Представления о характере влияния монохроматического лазерного излучения на иммунную систему также носят противоречивый характер. Не изучены и лечебные потенции естественного полихроматического видимого и ИК света (>400 нм) — доминирующей радиации Солнца, составляющей около 97% его энергии на поверхности Земли.

Необходимость проведения клинико-экспериментальных исследований полихроматического видимого и ИК света Солнца как важнейшего фактора среды стала очевидной в 80-х годах в связи с обоснованием иммуносупрессивного и проканцерогенного действия минорной компоненты солнечного спектра — УФ радиации [140, 229]. Это способствовало разработке в ряде стран генерирующих такое излучение фототерапевтических аппаратов, что позволило установить широкий спектр лечебных эффектов полихроматического видимого и ИК света, как поляризованного, так и неполяризованного [142, 180, 233, 237, 255, 256]. Методики светолечения с использованием полихроматического излучения были востребованы клинической практикой в нашей стране, значительные территории которой расположены в зоне солнечного дефицита. Учитывая относительно глубокое проникновение видимой и ИК радиации в кожные покровы человека, К.А.

Самойлова и сотр. [293] предположили, что основные механизмы эффектов такого излучения связаны с транскутанной фотомодификацией небольших количеств крови в густой сети поверхностных микрососудов, где скорость кровотока низка, и компоненты крови могут получить эффективную дозу света. Среди выявленных в нашей лаборатории иммунологических эффектов были активация фагоцитоза моноцитов и нейтрофилов, стимуляция цитотоксической активности NK-клеток, повышение ростостимулирующих свойств плазмы крови для поврежденных рентгеновским излучением аутологичных лимфоцитов — Лф [34, 268, 293].

Тем не менее, иммуномодулирующее действие полихроматического видимого и.

ИК света, близкого по спектральному диапазону к естественному, в настоящее время изучено явно недостаточно, что обуславливает актуальность и необходимость проведения дополнительных исследований.

Цель работы.

Изучить влияние облучений поверхности тела человека полихроматическим (видимым и инфракрасным) светом на функциональное состояние лимфоцитов и содержание ключевых цитокинов периферической крови и оценить роль транскутанной фотомодификации крови в изменении изученных показателей.

Задачи исследования.

При параллельном однократном облучении добровольцев и образцов их крови in vitro, а также в курсе ежедневных облучений.

1. Исследовать влияние полихроматического света на экспрессию мембран- • ных маркеров иммунокомпетентных клеток периферической крови.

2. Изучить влияние полихроматического света на уровень спонтанного и ФГА-индуцированного включения 3Н-тимидина в культурах мононуклеа-ров периферической крови.

3. Выяснить характер фотоиндуцированных изменений концентраций 10 цитокинов (ЮТ-а, 1Ь-1р, 1Ь-2, 1Ь-4, 1Ь-6, 1Ь-10, 1Ь-12, ШИ-а, ЮТ-у, ТСР-(51) в плазме периферической крови.

4. Оценить влияние фототерапевтического курса на количество лейкоцитов и относительное содержание мононуклеаров и нейтрофильных гранулоци-тов, а также концентрации 1§-М, 1&-А, и ЦИК в периферической крови.

Научная новизна.

— Впервые показано, что локальное облучение поверхности тела человека светом видимого и ИК диапазона в терапевтических дозах индуцирует быстрые функциональные изменения Лф всего объема циркулирующей крови (ОЦК), резкое снижение в ней повышенного содержания провоспалительных цитокинов и возрастание концентрации противовоспалительных факторов, при одновременном увеличении улиц с нормальными/низкими показателями количества 1Ь-10 (в 2 раза) и 1К1Ч-у (в 4 раза).

— Впервые на основе изучения количественного состава и функциональной активности мононуклеаров, состояния цитокиновой сети установлено иммуномо-дулирующее действие полихроматического видимого и ИК света экологического диапазона длин волн.

— Впервые получены доказательства того, что влияние видимого и ИК света на иммунную систему человека осуществляется через механизм транскутанной фотомодификации небольших объемов крови и «трансляции» (передачи) ею вызванных светом изменений всему ОЦК.

Теоретическое и практическое значение работы.

Выявленные в работе феномены — высокая скорость развития индуцируемых светом изменений состояния Лф и цитокиновой сети человека в условиях in vivo и in vitro, быстрота их генерализации через механизм «трансляции» локальных эффектов всему ОЦК представляют определенный вклад в теоретическую иммунологию и обосновывают необходимость изучения их молекулярной и биохимической природы. Практическое значение работы состоит в следующем. Во-первых, она обосновывает роль транскутанной фотомодицикации крови в имму-номодулирующем и противовоспалительном действии видимого и ИК света от различных фототерапевтических аппаратов, широко используемых современной медициной. Во-вторых, в ней впервые доказывается стимулирующий/регулирующий характер влияния на иммунную систему человека важнейшего фактора среды — полихроматического видимого и ИК света, что представляется чрезвычайно важным в связи с существующим в последние годы представлением об иммуносупрессивном действии минорной компоненты солнечной радиации — УФ лучей. В-третьих, характер выявленных изменений объясняет терапевтическую эффективность полихроматического света при вторичных имму-нодефицитах различной этиологии, вирусных инфекциях, заболеваниях воспалительной природы, а также позволяет рекомендовать его использование в профилактических целях. В-четвертых, изменения иммунологических показателей, зарегистрированные при эксфузиях небольших объемов крови у лиц контрольной группы, привлекают внимание к необходимости дальнейшего изучения этого феномена.

Основные положения, выносимые на защиту.

— Облучение небольшого участка поверхности тела человека полихроматическим видимым + ИК поляризованным (ВИП) светом (480−3400 нм) в дозах и интен-сивностях, используемых в лечебной практике, приводит к быстрой, регистрируемой через 0,5 ч — 24 ч, модуляции экспрессии маркерных молекул Лф периферической крови, стимуляции спонтанного и ФГА-индуцированного включения.

Н-тимидина в культурах мононукпеаров, снижению в плазме исходно повышенных количеств провоспалительных цитокинов (IL-6, IL-12, IFN-y) и возрастанию содержания противовоспалительных цитокинов (IL-10 и TGF-?l). У лиц с низким/нормальным уровнем IFN-y свет индуцирует его повышение и способствует одновременному возрастанию содержания физиологического антагониста — ILIO.

— Выявленные изменения сохраняются не менее 24 ч и поддерживаются в ходе фототерапевтического курса (в течение 5−10 сут), к концу которого развиваются и другие эффекты: растет относительное содержание моноцитов и Лф, повышается уровень IgM и IgA, снижается повышенное количество ЦИК.

— Характер и величина эффектов света носят обратную зависимость от исходных показателей, свидетельствуя о его регулирующем действии на иммунную систему человека.

— Большое сходство изменений, регистрируемых при параллельном облучении добровольцев, образцов их крови in vitro и при смешивании облученной и необ-лученной аутологичной крови в объемном соотношении 1:10 (что моделирует ситуацию в сосудистом русле после локального облучения поверхности тела) указывает на то, что основной механизм быстро развивающихся и многих курсовых эффектов связан с транскутанной фотомодификацией небольших количеств крови и «трансляцией» (передачей) ею вызванных светом изменений всему ОЦК.

Реализация результатов работы.

Результаты исследования учитываются в лечебной работе СПб Клинической больницы и поликлиники РАН и Центра реабилитации СПб государственного медицинского университета им. акад. И. П. Павлова, а также используются в лекциях и при проведении практических занятий со слушателями курсов повышения квалификации врачей в Центре лазерной медицины (СПб государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова).

Личный вклад автора в проведенное исследование.

Экспериментальные данные, включенные в диссертацию, получены лично авторомпроведена статистическая обработка, обобщение и интерпретация полученных результатов. Участие соавторов в большинстве опубликованных работ обусловлено научным руководством, теоретической и практической помощью в проведении эксперимента.

Апробация материалов диссертации.

Материалы работы обсуждались на 25 Конгрессах, Конференциях и Симпозиумах, в том числе: III и V Всемирных Конгрессах по лазерной медицине (Афины, Греция, 2000; Сан-Паоло, Бразилия, 2004) — 13-м Международном фотобиологическом Конгрессе (Сан Франциско, США, 2000) — 7, 8 и 10-м Международных Конгрессах Европейской медицинской лазерной ассоциации (Дубровник, Хорватия, 2000; Москва, 2001; Прага, Чехия, 2005) — 15, 16, 19 и 20-м Конгрессах Международной Академии по лазерной медицине (Флоренция, Италия, 2000, 2001, 2004, 2005) — III Съезде фотобиологов России (Воронеж, 2001) — Международном Симпозиуме «Биология клетки в культуре» (СПб, 2001) — Международной научно-практической Школе-Конференции «Цитокины. Воспаление. Иммунитет.» (СПб, 2002) — VI — VIII Всероссийских научных Конференциях с международным участием «Дни иммунологии в СПб» (2002 — 2004) — X Европейском фотобиологическом Конгрессе (Вена, Австрия, 2003) — Научно-практической конференции «Актуальные вопросы светотерапии» (СПб, 2005), Немецко-российской Школе по сравнительной иммунологии (СПб, 2005) и др.

Диссертационная работа была апробирована на совместном научном семинаре лаборатории радиационной цитологии, группы фотобиологии животной клетки и лаборатории защитных механизмов клетки Института цитологии РАН 07 июля 2005 г. и семинаре отдела иммунологии НИИ экспериментальной медицины РАМН 13 октября 2005 г.

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 40 работ (включая 8 статей), из них 22 — в зарубежных изданиях.

Объем и структура диссертации.

выводы.

1. Однократное облучение добровольцев полихроматическим видимым и инфракрасным светом через 0,5 — 24 ч приводит к увеличению в периферической крови количества клеток, экспрессирующих маркеры CD3, CD8, CD 16, CD25 и HLA-DR (па 5 — 11%), и снижению уровня С04+клеток (на 8%).

2. Характер влияния света зависит от исходных показателей, эффекты усиливаются при курсовых воздействиях. Это особенно выражено при сниженном уровне CD4+ и CD8+ лимфоцитов (прирост в обоих случаях — на 9%) и низких/нормальных показателях HLA-DR+KneTOK (+13%).

3. Однократное облучение добровольцев через 0,5 — 24 ч приводит к повышению ФГА-индуцированного и спонтанного включения 3Н-тимидина в культурах мо-нонуклеаров (в 2.6 раза). Выявлена достоверная положительная корреляция между включением 3Н-тимидина и уровнем CD8+клеток в периферической крови.

4. Однократное облучение добровольцев индуцирует через 0,5 ч возрастание в плазме крови исходно низких/нормальных концентраций IFN-y (в 4 раза), IL-10 (в 2 раза) и TGF-pi (в 1,5 раза). Повышенные концентрации IL-6 и IFN-y снижаются до уровня нормы через 0,5 ч, a IL-12 — к 5 сут. Эффекты сохраняются не менее 24 ч и поддерживаются в ходе курсовых облучений. Содержание IL-ip, IL-2, IL-4 и IFN-a не меняется.

5. Регистрируемые у облученных лиц быстрые изменения уровня экспрессии маркеров лимфоцитов (и как следствие — количества клеток, несущих тот или иной маркер), включения 3Н-тимидина в культурах мононуклеаров и содержания цитокинов отмечаются и после облучения образцов крови тех же добровольцев in vitro, а также после смешивания облученных и необлученных образцов ауто-логичной крови в объемном соотношении 1:10 (феномен «трансляции» вызванных светом изменений).

6. К концу курсового облучения добровольцев в периферической крови возрастает относительное содержание циркулирующих моноцитов и лимфоцитов (+0,5% и +3%, соответственно), концентрации 1§-М (+26%) и (+17%), а также уменьшается содержание ЦИК (на 19%).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Влияние на здоровье человека доминирующих видов солнечной радиации на Земле — видимого и ИК излучения (400−3500 нм) — остается практически не изученным.

В настоящей работе предпринята попытка оценить возможность изменений клеточного и гуморального иммунитета, а также цитокиновой сети добровольцев после их однократных и 5−10-кратных ежедневных облучений полихроматическим поляризованным светом, близким по спектральному диапазону (4 803 400 нм) и по соотношению энергии видимого и ИК области к естественной солнечной радиации без ее УФ компоненты. Учитывая системный характер имму-номодулирующего, противовоспалительного и ранозаживляющего действия видимого и ИК лазерного света [79, 76, 239, 327], а также тот факт, что работами нашей лаборатории доказана ведущая роль транскутанной фотомодификации крови в инициации системных эффектов света при его аппликации на поверхность тела человека, мы исследовали структурно-функциональное состояние Лф и уровень цитокинов только в периферической крови.

Выяснилось, что и иммунокомпетентные клетки, и содержание шести из десяти изученных цитокинов проявляют в условиях in vivo высокую фотореактивность. Об этом свидетельствуют развивающиеся в течение 30 мин после облучения в терапевтической дозе участка поверхности тела человека (D=15 см) изменения экспрессии мембранных маркеров мононуклеаров, столь же быстрая стимуляция ФГА-индуцированного включения 3Н-тимидина в культурах мононуклеаров и сдвиги в цитокиновой сети.

Однако некоторые из выявленных изменений обнаруживались и в контрольной (placebo) группе, где помимо имитации процедуры облучения проводился забор крови для исследований, как и в основной группе (см. главу 2). Поэтому о реальных эффектах света в условиях in vivo судили на основании их сопоставления с результатами облучения крови тех же лиц in vitro и с последствиями смешения образцов облученной и необлученной аутологичной крови (1:10), которое моделирует ситуацию в сосудистом русле облученного человека, когда небольшие количества транскутанно фотомодифицированной крови контактирует со всем ОЦК.

Выявив большое сходство (достоверные корреляции) эффектов света при его действии на кровь in vivo и in vitro, а также in vivo и при смешивании облученной и необлученной крови (1:10) — феномен «трансляции» эффектов света от облученной крови к необлученной, — мы пришли к заключению, что действие ВИП света на иммунную систему человека состоит в следующем:

1. Быстрое и сохраняющееся до конца курса облучения возрастание количества CD3+ и CD8+ Т-Лф у лиц с их исходно пониженным уровнем, которое коррелирует как с возрастанием экспрессии на поверхности CD8+ клеток активаци-онного маркера HLA-DR, так и с повышением спонтанного и ФГА-индуцированного синтеза ДНК.

2. Быстрое и устойчивое увеличение количества CD20+, CD16+ и HLA-DR+ клеток. В последних двух случаях эффект коррелирует с экспрессией на поверхности активационных маркеров CD25 и HLA-DR.

3. Быстрое снижение количества С04+Т-Лф у лиц с их исходно нормальным содержанием (при неизменном уровне CD95+ клеток) и постепенное возрастание содержания С04+Т-Лф у добровольцев с их сниженнным количеством.

4. Неуклонный рост количества в плазме крови IgM и IgA, снижение количества ЦИК у лиц с их превышающим норму уровнем.

5. Быстрое и сохраняющееся в течение 5 сут ежедневных облучений падение содержания в плазме/сыворотке основных противовоспалительных цитокинов (IL-6, IL-12, IFN-y) у лиц с их исходно повышенными показателямибыстрое 4-кратное увеличение концентрации IFN-y у лиц с его низким/нормальным содержанием при одновременном росте количества противовоспалительных цитокинов IL-10 и TGF~pi (в последнем случае — только у лиц с исходно пониженным уровнем). 6. Большинство эффектов однократных и многократных (курсовых) воздействий света носит регулирующий характер, способствуя возрастанию иммунологических показателей тем более значительно, чем ниже исходный уровень, и наоборот.

Прежде чем оценить терапевтическое и экологическое значение выявленных эффектов ВИП света, необходимо прокомментировать некоторые из результатов исследования.

Прежде всего, большой неожиданностью явились весьма значительные изменения структурно-функционального состояния Лф и цитокиновой сети в контроле (группе placebo), которые мы связываем с процедурами взятия из вены крови для исследований, т. е. с кровопотерей, болевым и эмоциональным стрессом. Недавно нам удалось подтвердить это тем фактом, что в условиях нашего эксперимента повторяющиеся гемоэксфузии (но не свет) индуцируют появление в плазме крови белка теплового шока HSP70. Применение на этом фоне ВИП света предотвращало появление этого фактора. По-видимому, определяющим вектором здесь является резкое возрастание концентрации IL-10, который продуцируется при стрессовых состояниях и организма, и клеток. Совершенно очевидно, что следует значительно расширить исследования иммунологических эффектов, индуцируемых небольшими по объему гемоэксфузиями и, возможно, при определенных ситуациях использовать их с целью иммунокоррекции.

Информативность результатов тестирования экспрессии мембранных маркеров мононуклеаров существенно возросла бы, при использовании метода проточной цитофлуориметрии с двойными и тройными метками. Это позволило бы уточнить, с чем реально коррелирует повышение количества Лф, несущих тот или иной маркер, выявить реальные изменения субпопуляционного состава Лф, оценить возможность и сроки апоптотической гибели клеток и т. п.

Поскольку и «ранний» апоптоз, и многие другие эффекты света экологического диапазона длин волн (УФА, видимого и ИК излучений) связываются в настоящее время с образованием клетками активных форм кислорода и азота, представляется исключительно актуальным развитие таких исследований. В этой связи большое значение имеет изучение механизмов интереснейшего и пока мало известного феномена «трансляции» — передачи вызванных светом изменений от небольшого количества непосредственно облученной крови к значительно большему объему необлученной. Представляется, в частности, важным выяснить, какова максимальная степень разведения облученной крови необлученной, при которой все еще сохранится «трансляция» тех или иных вызванных светом изменений. Поскольку выдвинутая нами гипотеза о роли в этом явлении АФК и N0 базируется пока на косвенных фактах, литературных данных, имеет смысл продолжить исследование.

Исследование цитокиновой сети, проводившееся методом ИФА, могут быть дополнены изучением внутриклеточного синтеза ряда цитокинов и, прежде всего, 1Ь-2, поскольку необходимо уточнить, какие механизмы определяют возможность стимуляции ДНК-синтетической активности ЛФ при действии света. Кроме того, это позволило бы сопоставить чувствительность к ВИП-излучению ТЫ и ТИ2. Интригующим остается и механизм исключительно быстрых изменений содержания в плазме крови цитокинов. Действительно, каким образом в тег чение 30 мин осуществляется элиминация повышенных концентраций провоспа-лительных цитокинов и столь же быстрое повышение уровня провоспалитель-ных? По нашему мнению, здесь заслуживает внимания, прежде всего, иммуно-модулирующая роль а2-макроглобулина, способного при действии оксидантов (а видимый и ИК свет обладают такой активностью) связывать провоспалительные цитокины и освобождать противовоспалительные белки и ростовые факторы. Ответ на этот вопрос может быть получен в опытах с облучением суспензии клеток крови в культуральным средах, лишенных сывороточных факторов. Однако необходимо проверить вклад и других возможных механизмов, в частности, освобождения преформированных форм цитокинов, повышения в плазме уровня растворимых рецепторов, роли эритроцитов, тромбоцитов и альбумина как переносчиков цитокинов и т. п.

В целом, результаты настоящей работы вместе с другими данными, полученными в нашей лаборатории и доказавшими стимулирующее действия ВИП света на фагоцитоз моноцитов и нейтрофилов, цитотоксические свойства №С-клеток [268, 293], позволяют характеризовать влияние видимого и ИК света на иммунную систему человека как активирующее.

Результаты настоящей работы обосновывают целый ряд лечебных эффектов ВИП света, выявленных клиницистами при терапии заболеваний воспалительного характера, вирусных инфекций, вторичных иммунодефицитов различной этиологии (в том числе, послеоперационных), а также при коррекции процессов ранозаживления, поскольку модуляция содержания цитокинов и клеточной активности является одним из важных факторов оптимального заживления ран при сбалансированном соотношении регенерации и воспаления.

Как показывают работы последних лет [268, 327, 332], поляризованность света не является обязательным условием его эффективности. Результаты проведенного нами сопоставления влияния поляризованного и неполяризованного света с >.=480−3400 нм на гуморальный иммунитет также свидетельствует об их практически равной эффективности. Это обстоятельство позволяет предполагать, что действие на иммунную систему человека естественного (неполяризованного) полихроматического видимого и ИК света будет сходным с таковым с случае ВИП света. Если учесть, что видимый и ИК свет абсолютно доминирует в спектре Солнца на поверхности Земли, то возникает вопрос о том, каким образом их активирующее влияние на иммунную систему человека сочетается с иммуносу-прессивным действием минорной компоненты солнечной радиации — УФВ (290 320 нм) и УФА (320−400 нм) излучений.

Более 30 лет назад в опытах на экспериментальных животных было обнаружено, что высокоантигенные перевивные опухоли не отторгаются организмом, если животные предварительно подвергались хроническому облучению УФ светом экологического диапазона длин волн. С тех пор исследованию механизмов иммуносупрессивного и проканцерогепного действия УФВ и УФА света было посвящено очень много работ. С учетом малой проникающей способности этих излучений исследования были направлены, в основном, на изучение иммунологических феноменов, развивающихся в самых поверхностных отделах кожи человека и животных, при этом кровь как возможная мишень иммуносупрессивного действия УФ радиации практически не принималась во внимание. Анализу этих эффектов посвящено большое количество обзоров, и в настоящее время механизм иммуносупрессивного действия УФ радиации связывают как с прямой альтерацией структурно-функционального состояния антиген-презентирующих клеток кожи (эпидермальных клеток Лангерганса, дермальных дендритных клеток и макрофагов), в том числе снижением продукции IL-12, так и с опосредованным влиянием секретируемых УФ-модифицированными кератиноцитами медиаторов: IL-10, IL-1, TNF-a, IL-6, IL-8 и PGE2 [140, 146, 150, 163, 195, 229, 230, 231, 263, 306, 308, 310]. Локальные изменения антиген-представляющих свойств и цитокинового профиля клеток кожи приводит к системной иммуносупрессии с девиацией Т-клеточного ответа в пользу ТЬ2 (повышением синтеза IL-4 и IL-10) и подавлением активности Thl-Лф (продукции IL-2 и IFN-y). Более того, имеются доказательства прямого супрессирующего действия УФВ излучения на функциональную активность NK-клеток — активных продуцентов IFN-y [195, 263], а также негативного влияния данного вида радиации (как и гамма-лучей) на проведение сигнала IFN-y на клеточном уровне [138, 264, 306]. Современные исследования показывают, что именно УФВ лучи является наиболее «агрессивной» компонентой Солнечного излучения, в то время как УФА область спектра (особенно ее длинноволновой диапазон — УФА1, 340−400 нм) проявляет иммуносупрессирующие свойства намного слабее. Более того, имеются данные, свидетельствующие о иммунопротективном влиянии УФА1 излучения при его применении до воздействия УФВ лучей [163]. Общность кислород-зависимых механизмов действия УФА1 и видимого света позволяют предполагать, что такой защитной функцией может обладать и видимое излучение, причем даже в более выраженной степени. Действительно, данные, полученные нами и другими сотрудниками лаборатории, прямо указывают на такую возможность.

О защитном эффекте видимого света при УФ повреждении клеток свидетельствует известный уже около 50 лет феномен фотореактивации: благодаря активации видимым светом фермента фотолиазы происходит мономеризация пи-римидиновых димеров, вызванных в ДНК УФ радиацией, и восстанавливается пролиферация УФ-облученных клеток. Недавно показано, что активация систем репарации ДНК может быть индуцирована и растворимыми факторами крови человека после его облучения ВИЛ светом [34].

В связи с этим можно предполагать, что описанное некоторыми авторами отсутствие выраженных признаков иммунодепрессии после достаточно продолжительного пребывания на «южном» солнце в летний период практически здоровых лиц или после их облучения полихроматическим (УФ + видимый + ИК) светом в соляриях и фототерапевтических кабинетах [209, 218] обусловлено иммуностимулирующим действием видимого и ближнего ИК излучения.

По всей вероятности, позитивный характер влияния этих излучений на иммунную систему является своего рода адаптивным механизмом, выработанным в процессе эволюции, который позволяет противодействовать негативным эффектам УФ радиации Солнца. Задача будущих исследований состоит в выяснении того, каким образом при действии на организм человека солнечной радиации суммируются иммунологические эффекты ее отдельных компонент — УФ, видимого и ИК излучений с учетом сезонных и суточных изменений соотношения их энергии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. О.Ю. Аутоиммунные заболевания // Низкоинтенсивная лазерная терапия / Под ред. Москвина C.B. и Буйлина В. А. М.: ТОО «фирма «Техника», 2000. — С. 700−721.
  2. В.Г., Стрижова Н. В., Шепелева А. Л., Стрельцова Т.В., Калинин
  3. B.А., Серова Т. А., Антропова Р. Б., Обрачевский Л. С. Лазерная терапия при язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки и ее влияние на иммунологические показатели организма // Лазерная медицина. 2000. -Т. 4, № 1. — С. 9−20.
  4. М.Г., Арбулиев K.M., Гаджиев Д. П. Бактериотоксический шок при остром гнойном пиелонефрите // Урология. 2002. — Т. 3. — С. 18−21.
  5. P.A., Корнилов A.A., Самойлова К. А., Дуткевич И.Г., Снопов
  6. P.A., Миронова А. П., Самойлова К. А. Десорбция гликопро-теинов с поверхности лимфоцитов периферической крови человека после облучения коротковолновыми УФ лучами // Цитология. 1984, — Т. 26, № 2.-С. 209−214.
  7. И.М., Мавлян-Ходжаев Р.Ш. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на процессы фагоцитоза // Мат. Междунар. конф.: «Новые достижения лазерной медицины». СПб, 1993. — С. 238−239.
  8. С.А., Гусев Л. И., Казанова Г. В., Киселевский М. В., Грабовщи-иер А.Я. Низкоинтенсивная лазерная терапия в детской онкологии // Вопр. онкологии. 2000. — Т. 46, № 4. — С. 41−43.
  9. В.В., Кротова Т. П., Орбачевский Л. С. Лазерная терапия в комплексном лечении больных с респираторными аллергозами и аллергодер-матозами // Лазерная медицина. 1998. — Т. 2, № 1. — С. 17−21.
  10. П.Брилль Г. Е. Молекурно-клеточные основы терапевтического действия низкоинтенсивного лазерного излучения. Саратов: Изд-во Саратов, мед. ун-та, 2000.-42 с.
  11. П.Брилль Г. Е., Брилль А. Г. Гуанилатциклаза и NO-синтетаза возможные первичные акцепторы энергии низкоинтенсивного лазерного излучения // Лазерная медицина. — 1997. — Т. 1, № 2. — С. 39−42.
  12. М.Булякова Н. В., Попова М. Ф., Зубкова С. М., Азарова B.C., Ильясова Ш. Г. Стимуляция регенерации облученных и необлученных скелетных мышц млекопитающих: лазерная и тканевая терапия. М.: Наука, 1995. — 154 с.
  13. Е.В., Волгарев А. П., Самойлова К. А. Влияние УФ- облучения и УФ-облученной аутологичной крови на функциональное состояние лимфоцитов периферической крови человека // Цитология. 1990. — Т. 32, № 12.-С. 1217−1224.
  14. В.А., Утц С.Р. Лазерная терапия различных заболеваний: дерматология // Низкоинтенсивная лазерная терапия / Под ред. Москвина C.B. и Буйлина В. А. М.: ТОО «фирма «Техника», 2000. — 724 с.
  15. Н.Д. Оксид азота как регулятор клеточных функций // Биохимические основы патологических процессов / Под ред. Северина Е. С. -М: Медицина, 2000. С. 266−291.
  16. И.А. Роль активных форм кислорода в регуляции функций клетки. Автореф. дис.. д-ра. биол. наук. СПб., 1999. -41 с.
  17. Н.Ф., Федорчук А. Г., Прокопенко И. В. Лазерная иммуномодуля-ция: вовлечение клеточной путей сигнальной трансдукции // Фотобиология и фотомедицина. 1999. — Т. 2, № 1. — С. 44−49.
  18. Н.Ф., Шишко Е. Д., Яниш Ю. В. Новые данные по фоточувствительности животной клетки и механизму лазерной биостимуляции // Доклады АН СССР- 1983. Т. 273, № 1.-С. 224−227.
  19. Л.И. Лазеры в хирургии и терапии термических ожогов. Руководство для врачей. М.: Медицина, 2000. — 224 с.
  20. A.B., Пешкова Е. М., Седулина О. Ф., Попова O.A. Лечение дифтерийного бактерионосительства с использованием низкоинтенсивного лазерного излучения // Лазерная медицина. 2000. — Т. 4, № 2. — С. 33−36.
  21. И.И., Ковальчук Л. В., Конопля А. И., Гапонов A.M. Функциональная активность лейкоцитов человека под влиянием инфракрасного лазерного облучения // Иммунология. 1998. — № 2. — С.32−34.
  22. В.К., Вертьянов В. А., Шкроб Л. О. ВЛОК в комплексном лечении хронического остеомиелита // Тез. Междунар. Конф. «Новое в лазерной медицине и хирургии». Переславль-Залесский, 1990. Ч. 1. — С. 17−18.
  23. В.К., Шкроб Л. О., Канорский И. Д., Сопромадзе М. А. Иммуно-корригирующая терапия у больных с сахарным диабетом с гнойно-некротическими осложнениями // Анналы хирургии. 1999. — № 6. — С. 140−144.
  24. Г. В., Симонова Т. А. Локальная терапия при ревматологических заболевания // Тез. докл. Всесоюзн. конф. ревматологов. Москва, 1988. — С. 76−77.
  25. E.H. Рецепторная (цитокин-опосредованная) и нерецепторная (ла-зер-индуцированная) активация эффекторных функций фагоцитов. Авто-реф. дис.. канд. мед. наук. М., 2001. — 21 с.
  26. В.В., Фрейдлин Т. С., Щербак И. Г. Альфа-2-макроглобулин как главный цитокин-связывающий белок плазмы крови // Мед. иммунология. 1999.- Т. 1, № 5. — С. 5−12.
  27. Е.Е. Роль активных форм кислорода в качестве сигнальных молекул в метаболизме тканей при состояниях окислительного стресса // Вопр. мед. химии. 2001. — Т. 47, № 6. — С. 561−581.
  28. Е.Б., Серебряная Н. Б., Рождественская E.H., Ващенко В. И., Каткова И. В., Дьякова В. В., Бойцова М. Ю. Некоторые клеточные механизмы действия лазерного облучения крови // Пат. физиология и экспер. терапия. 1998. — № 3.-С. 6−7.
  29. A.A., Байбеков А. И., Алиев Ж. Ш. Влияние магнито-инфракрасной терапии на клеточный и гуморальный иммунитет у больных с деформациями челюстно-лицевой области после реконструктивной операции // Новое в стоматологии. 2001. — Т. 94, № 4. — С. 83−86.
  30. .Н., Евтушенко В. А., Кицмашок З. Д. Низкоинтенсивная лазерная терапия в онкологии. Томск: STT, 1998. — 336 с.
  31. Илич-Стоянович О., Насонов Е. Л., Балабанова P.M. Влияние низкоинтенсивной инфракрасной импульсной лазерной терапии на маркеры активности воспаления у больных ревматоидным артритом // Тер. Архив. 2000. -№ 5.-С. 32−34.
  32. Иммунологические методы / Под ред. Г. Фримеля: Пер. с нем. М: Медицина, 1987.-472 с.
  33. А., Алексеев Л., Бачурин П., Яздовский В. Комплементзависимый микролимфоцитолиз для количественного анализа субпопуляций лимфоцитов // Иммунология. 1988. — № 6. — С. 75−76.
  34. А.И., Осин А.Я, Деркач В. В. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на уровень регуляторных белков и циркулирующих иммунных комплексов у больных бронхиальной астмой детей // Лазерная медицина. 2001. — Т. 5, № 3. — С. 8−11.
  35. Н.М. Методы оценки иммунного статуса и их интерпретация // Справочник по иммунотерапии СПб: Изд-во «Диалог», 2002. — С. 23−48.
  36. В.И., Петухов Е. В., Зродников B.C. Фототерапия (светолечение). Руководство для врачей / Под ред. Палеева Н. Р. М.: Медицина, 2001.-392 с.
  37. А.Л. Влияние лазерного излучения с длиной волны 633 нм на иммунокомпетентную систему организма // Применение методов и средств лазерной техники в биологии и медицине. Сб. научн. трудов Всесоюз. конф. Киев, 1982. — С. 189−190.
  38. Л.А. Инфракрасные лазерные лучи в терапии тяжелых форм псориаза: Автореф. дис. канд. мед. наук. СПб, 1996. — 17 С.
  39. С.А., Калинина Н. М. Иммунология для врача. СПб: ТОО Изд-во «Гиппократ», 1998. — 156 с.
  40. Ю.Б., Поляков A.B. Применение инфракрасного лазерного излучения с целью иммунокоррекции при хроническом и подостром тиреоиди-те // Тез. Докл. 1-й Всеросс. конф. «Актуальные вопросы лазерной медицины». Москва, 1991. — С. 94−95.
  41. Г. И. Первичные и вторичные молекулярно-клеточные механизмы квантовой терапии // Проблемы физической биомедицины / Под ред. Брилля Г. Е. Саратов: Изд-во Саратов. Мед. ун-та, 200. — С. 42−53.
  42. Г. И., Страшкевич И. А., Чичук Т. В., Модестова Т. М., Владимиров Ю. А. Влияние эндогенных фотосенсибилизаторов на лазер-индуцированный прайминг лейкоцитов крови // Биол. мембраны. 1998. -Т. 15, № 3,-С. 273−283.
  43. Клиническая иммунология / Под ред. Караулова A.B. М.: Медицинское информационное агентство, 1999. -604 с.
  44. И.В., Гамалей И. А. НАДФН-оксидаза специализированный ферментативный комплекс для образования активных форм кислорода // Цитология. — 1997. — Т. 39, № 4−5. — С. 320−340.
  45. Г. И., Высоцкий В. В., Погорелов В. М., Еровиченков A.A., Малов В. А. Крови и инфекция. М.: Триада-фарм, 2001. — 456 с.
  46. Т.И., Волянский Ю. Л., Васильев Н. В., Мальцев В. И. Адаптационный синдром и иммунитет. Харьков: Основа, 1995. — 368 с.
  47. H.A. Иммунные комплексы и повреждение тканей. М.: Медицина, 1996. — 256 с.
  48. Т.В., Першин С. Б., Миненков A.A. Иммуномодулирующие эффекты низкоинтенсивного лазерного излучения // Вопр. курортол. 1997. -№ 1. — С. 42−45.
  49. И.Л., Пекли Ф. Ф., Рыбалкин C.B. Влияние лазертерапии на местный синтез иммуноглобулина класса, А у детей, больных острым и хроническим гайморитом // Вестн. оторинолар. 1998. -№ 2. — С. 19−21.
  50. В.А., Брудная М. С., Комиссарчик Я. Ю. Электронно-микроскопическое исследование поверхности необлученных и УФ-облученных лимфоцитов крови человека // Цитология. 1983. — Т. 25, № 4. — С. 476−479.
  51. В.А., Самойлова К. А., Левин C.B. Деструктивные изменения внешних примембранных слоев (гликокаликса) клеток асцитной гепатомы Зайдела при действии УФ излучения // Цитология. 1979. — Т. 21, № 5. — С. 594−601.
  52. В.И., Сорокин A.M., Иванов A.B., Лаптева P.M., Полевая Е. Б. Влияние лазерного излучения неповреждающей интенсивности на систему иммунитета // Сов. Медицина. 1985. — № 7. — С. 8−11.
  53. Лазеры в клинической медицине. Руководство для врачей / Под ред. С. Д. Плетнева. М.: Медицина, 1996. — 432 с.
  54. Г. Ф. Биометрия. М: Высш. школа, 1980. — 293 с.
  55. Н.Г. Поляризованный свет в лечении дерматозов // Росс, журнал кожн. и вен. болезней. 1998. — № 1. — С. 63−65.
  56. Г. Н., Майстровская О. С., Чудновский В. М. Гелий-неоновое излучение как индуктор интерферонообразования // Вопр. вирусологии. 1994. -Т. 39,№ 3.-С. 119−121.
  57. И., Пернис Б. Иммунологические методы. М.: Мир, 1988. -428 с.
  58. И.В., Иконников А. И., Климанов М. Е. Лазерная терапия у больных аутоиммунным тиреоидитом // Мат. 1-й Поволжской научн.-практ. конф. «Лазеры в медицине и экологии». Самара, 1998. — С. 108−109.
  59. В.М., Андрейчук Т. Н., Кару Т. Й., Челидзе П. В., Зеленин A.B. Активация транскрипционной функции в лимфоцитах под влиянием облучения He-Ne лазером // Мол. Биол. 1990. — Т. 24, № 4. — С. 1067−1075.
  60. Е.А. Влияние сфинголипидов на активацию Т лимфоцитов // Биохимия. 1998.-Т. 63,№ 1.с. 122−132.
  61. Механизмы влияния облученной ультрафиолетовыми лучами крови на организм человека и животных / Под ред. Ганелиной И. В. и Самойловой К. А. -Л.: Наука, 1986.-264 с.
  62. В.И., Архипов Т. С., Ибрагимов Е. К. Лазерное облучение селезенки и тимуса у больных язвенной болезнью желудка и двенадцатиперстной кишки // Новое в лазерной медицине и хирургии Тез. Международ. Конф.-М., 1990,-4. 1.-С. 214−215.
  63. В.И., Иконников А. И., Климанов М. Е. Лазерная терапия у больных аутоиммунным тиреоидитом // Мат. 1-й Поволжской научн.- практ. конф. «Лазеры в медицине и экологии» Самара, 1998. — С. 108−109.
  64. О.В., Евстигнеев А. Р. Экспериментальное исследование влияния излучения гелий-неонового и арсенидгаллиевого лазеров на розеткооб-разующую функцию лимфоцитов периферической крови // Иммунология -1988.- № 4.-С. 88−89.
  65. В.А., Александрова О. Ю., Гольдина Е. М. Иммуномодулирую-щее действие низкоэнергетического лазерного излучения при лечении бронхиальной астмы // Вопр. курортол. 1998. — № 4. — С. 23−25.
  66. В.А., Денисов И. Н., Александрова О. Ю., Поляков A.B. Лечение аутоиммунного тиреоидита с использованием низкоинтенсивного лазерного излучения // Вопр. курортол. 1998. — № 3. — С. 15−16.
  67. H.B. Механизм лечебно-стимулирующего действия луча лазера на организм животных и повышение их продуктивности. Казань: Изд-во Казанского ун-та, 1985. — 199 с.
  68. C.B. Эффективность лазерной терапии. М.: НПЛЦ «Техника», 2003.-256 с.
  69. П.Г. Реактанты острой фазы. СПб: Наука, 2001. — 423 с.
  70. Низкоинтенсивная лазерная терапия / Под ред. Москвина C.B. и Буйлина В. А. М.: ТОО «фирма «Техника», 2000. — 724 с.
  71. Новые направления в использовании светотерапии «Биоптрон // Мат. науч-но-практ. конф. Москва, Екатеринбург: Цептер Инт., 2003. — 48 с.
  72. В.А. Биофизика лазерных терапевтических воздействий и клиническое использование чрезкожной лазерной терапии: Автореф. дис. д-ра техн. наук. СПб, 2003. — 39 с.
  73. А.Я. Лазерная профилактика острых заболеваний органов дыхания у детей // Лазерная медицина. 2000. — Т. 4, № 2. — С. 8−12.
  74. Э.М., Борщевский В. В., Борткевич Л. Г. Низкоинтенсивное лазерное излучение у больных туберкулезом мочевой системы // Урология. -2001.- № 6.-С. 13−17.
  75. Е.А. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на синтетические процессы клеток. Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 2003. -27 с.
  76. Т.Н., Ицкович А. И., Шегеда М. Г. Особенности низкоинтенсивной лазерной терапии острой пневмонии у доношенных новорожденных // Лазерная медицина 2001.-Т. 5, № 3.-С. 11−15.
  77. В.И., Плотников A.B. Применение внутрисосудистой лазерной терапии при лечении больных экземой // Вестн. дерматол. 1991. — № 1. -С. 34−38.
  78. Л.Л., Мирошников Б. И., Зайчик А. Ш., Якушев В. И. Лазерная терапия при остром неспецифическом эпидидимоорхите // Урология и нефрология 1991. -№ 2. — С. 45−49.
  79. Результаты использования и методики применения прибора «Биоптрон» в клинической практике российских врачей. М.: Цептер Инт., 2000. — 88 с.
  80. А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. Пер. с англ. М.: Мир, 2000. — 592 с.
  81. Самойлова К А. Особенности действия на клетки животных УФ излучения разной длины волны // Фотобиология животной клетки / под ред. Трошина A.C.-Л.: Наука, 1979.-С. 269.
  82. К.А. Сравнительный анализ действия на клетки нефотосинтези-рующих организмов ультрафиолетового излучения различных областей спектра: Автореф. дис. д-ра биол. наук. Ленинград, 1979. — 52 с.
  83. К.А., Миронова А. П., Арцишевская P.A. Выход веществ из лимфоцитов периферической крови человека, облученных коротковолновыми УФ лучами // Цитология. 1984. — Т. 26, № 1. — С. 102−108.
  84. К.А., Оболенская К. Д., Фрейдлин И. С. Изменение фагоцитарной активности лейкоцитов донорской крови после ее УФ-облучения. II. Моделирование эффекта аутотрансфузии УФ-облученной крови // Цитология. 1987. — Т. 29, № 9. — С. 1048−1055.
  85. В.Ф., Беляков В. К., Лавров В. Ф., Тупикин Г. В. Влияние малоинтенсивного лазерного излучения различных длин волн на костномозговые предшественники иммунопоэза // Биофизика. 1993. — Т. 38, № З.-С. 504−506.
  86. Ю.К., Каламкарян A.A., Мандель А. Ш. Основные методы лечения больных псориазом // Вестн. дерматол. 1987. — № 7. — С. 22−27.
  87. Е.В., Мешкова Р. Я. Иммунобиологические свойства лазер-индуцированных комплексов естественных цитокинов // Цитокины и воспаление. 2002. — Т. 1, № 2.-С. 13−17.
  88. А.П., Завьялов А. И., Грашкина И. Г. Лечение гелий-неоновым лазером больных очаговым облысением // Иммунология в дерматовенерологии / Под. ред. Главинской Т.А. Н. Новгород, 1991. — С. 94−97.
  89. Л.Я., Кузбмина О. Н., Харкевич С. Н. // Перспективные направления лазерной медицины: Мат. Международ. Конф по лазер. Мед. М., 1992.-С. 513−514.
  90. С.А. Иммуномодулирующее влияние лазерного излучения на лимфоидную ткань миндалин // Folia Otorhinolaryngologica. 1998. — Vol. 4, № 3−4.-P. 33−35.
  91. Е.И., Бугаева И. О., Рудик Д. В. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на активность фагоцитоза // Проблемы физической биомедицины / Под ред. Брилля Г. Е. Саратов: Изд-во Саратов. Мед. унта, 2003.-С. 137−142
  92. A.A., Балдуева И. А., Бубнова Л. Н., Закревская A.B., Зуева Е. Е., Калинина Н. М., Лисицина З. Н. Стандартизация методов иммунофенотипи-рования клеток крови и костного мозга человека // Мед. иммунология. -1999. Т. 1,№ 5.-С. 21−43.
  93. ИЗ. Тотолян A.A., Фрейдлин И. С. Клетки иммунной системы. СПб.: Наука, 2000.-Т. I-II.-231 с.
  94. Р.К., Садыков Ш. Б., Романов В. А., Халитова Г. Х. Показатели активности иммунной системы при лазерной терапии вазомоторного ринита // Вестн. оторинолар. 1989. — № 1. — С. 46−49.
  95. В.Б., Погосян С. И., Золотилин С. А., Мартин Карабайо М.А. Влияние излучения He-Ne лазера на функциональную активность и внутриклеточный pH фагоцитов мыши // Биол. мембраны. 1992. — Т. 9, № 10−11.-С. 1172−1174.
  96. К.Т., Литвинов Д. Ю. Редокс-зависимая регуляция экспрессии генов, индуцируемых окисью азота // Мол. Биол. 2004. — Т. 38, № 1. — С. 56−68.
  97. И.С., Кузнецова С. А. Иммунные комплексы и цитокины // Мед. иммунология. 1999. — Т. 1, № 1−2. — С. 27−36.
  98. И.С., Тотолян A.A. Клетки иммунной системы. СПб.: Наука, 2001. — T. III-V. — 390 с.
  99. P.M., Игнатьева Г. А., Сидорович И. Г. Иммунология. М.: Медицина, 2000.-432 с.
  100. Хан М. А. Способ лечения атопических дерматитов у детей // Патент на изобретение № 2 158 617. Москва, 2000.
  101. Хан М.А., Балаболкин И. И., Цой Е. А., Баканов М. И., Ботвиньева В. В., Нарциссов Р. П. Лечение атопического дерматита у детей поляризованным полихроматическим светом // Педиатрия. 2000. — № 2. — С. 17−20.
  102. Т.В., Страшевич И. А., Клебанов Г. И. Свободнорадикальные механизмы стимулирующего действия низкоинтенсивного лазерного излучения // Вестн. РАМН. 1999. — № 2. — 27−32.
  103. В.Н., Иваненко Т. В., Скокова Т. В., Ольшанский А. Я. Иммунологические и физико-физические эффекты действия лазера на биологические объекты // Иммунология. 1990. — № 6. — С. 30−32.
  104. Шапкина Л А. Применение низкоинтенсивного лазерного излучения в лечении детей больных сахарным диабетом // Лазерная медицина. 2000. -Т. 4, № 2.-С. 22−25.
  105. Ю.Л., Жибурт Е. Б., Серебряная Н. Б. Иммунологическая и инфекционная безопасность гемокомпетентной терапии. СПб.: Наука, 1998. -232 с.
  106. Ю.Л., Матвеев С. А., Чечеткин A.B. Кардиохирургическая трансфузиология. -М.: Классик-Консалтинг, 2000. 129 с.
  107. М.В., Селицкая Р. П., Путилина Л. П., Пономарева Ю. Ю. Влияние лазеротерапии на иммунитет у больных бронхиальной астмой и туберкулезом легких // Пробл. туб. 1994. № 5. — С. 23−26.
  108. Н.З., Назар П. С., Зоря Л. В. Применение иммуномодулирующей и лазерной терапии у больных ревматоидным артритом // Врач, дело 1987. — № 4.-С. 59−61.
  109. А.А. Основы иммунологии. М.: Медицина, 1999. 608 с.
  110. Agaiby A., Ghali L., Dyson M. Laser modulation of T-lymphocyte proliferation in vitro // Laser Therapy 1998. — Vol. 10 — P. 153−158.
  111. Agaiby A.D., Ghali L.R., Wilson R., Dyson M. Laser modulation of angiogenic factor production by T-lymphocytes // Lasers Surg Med. 2000. — Vol. 26. -P. 357−363.
  112. Ailioaie C., Marinela L., Ailioaie L. Beneficial effects of laser therapy in the early stages of rheumatoid arthritis onset // Laser Therapy 1999. — Vol. 11, № 2.-P. 79−87.
  113. Akdis C.A., Blaser К. Mechanisms of interleukin-10-mediated immune suppression//Immunology. 2001. — Vol. 103, № 2.-P. 131−136.
  114. Allan I.M., Lunec J., Salmon M., Bacon P.A. Reactive oxygen species selectively deplete normal T lymphocytes via a hydroxyl radical dependent mechanism // Scand. J. Immunol. 1987. — Vol. 26. — P. 47−53.
  115. Anderson M.T., Staal F.J., Gitler C., Herzenberg L. Separation of oxidant-initiated and redox-regulated steps in the NF-kB signal transduction pathway // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. — Vol. 91. — P. 11 527−11 531.
  116. Aragane Y., Kulms D., Luger Th. A., Schwarz Th. Down-regulation of interferon y-activated STAT1 by UV light // Proc. Natl. Sci. USA. 1997. — Vol. 94. -P. 11 490−11 495.
  117. Aragane Y., Kulms D., Metze D., Wilkes G., Roppelmann B., Luger T., Schwarz T. Ultraviolet light induces apoptosis via direct activation of CD95 (Fas/APO-1) independently of its ligand CD95L // J Cell Biol. 1998. — Vol. 1. -P. 171−182.
  118. Armstrong R. The physiological role and pharmacological potential of nitric oxide in neutrophil activation // Int. Immunopharmacol. 2001. — Vol. 1. — P. 1501−1512.
  119. Aronis E., Braziotis A., Kafouros K., Pagratis N., Papakostas Th., Venetsanosth
  120. P. The action of visible polarized light on skin diseases // Proc. 18 Int. Congr. Dermatology. New York, 1992. — P. 25.
  121. Basu-Modak S., Tyrrell R.M. Singlet oxygen: a primary effector in the ultraviolet A/near-visible light induction of the human heme oxygenase gene // Cancer Research. 1993. — Vol. 53. — P. 4505−4510.
  122. Baxter G.D. Therapeutic laser: theory and practice. Edinburgh: Churchill Livingstone, 1994. -253 p.
  123. Bender K., Blattner C., Knebel A., Iordanov M., Herrlich P., Rahmsdorf H.J. UV-induced signal transduction // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1997. -Vol. 37.-P. 1−17.
  124. Berki T., Nemeth P., Hegedus J. Biological effect of low-power helium-neon laser irradiation // Lasers in Med Sci. 1988. — Vol. 3. — P.35−39.
  125. Bingisser R., Holt P.G. Immunomodulating mechanisms in the lower respiratory tract: nitric oxide mediated interactions between alveolar macrophages, epithelial cells, and T-cells // Swiss Med wkly. 2001. — Vol. 131. — P. 171−179.
  126. Black H.S., deGruijl F.R., Forbes P.D., Cleaver J.E., Ananthaswamy H.N., deFabo E.C., Ullrich S.E., Tyrrell R.M. Photocarcinogenesis: an overview // J. Photochem. Photobiol. B. 1997. — Vol. 40. — P. 29−47.
  127. Bogdan C. Nitric oxide and the immune response // Nat. Immunol.-2001.-Vol. 2.-P. 907−16.
  128. Bolton P., Dyson M., Young S. The effect of polarized light on the release of growth factors from the U-937 macrophage-like cell line // Laser Therapy. -1992.-Vol. 4.-P. 33−42.
  129. Bonner J.C., Hofman M., Brody A.R., A platelet-derived growth factor hornologue secreted by alveolar macrophages is complexed to an alpha-macroglobulin//Transplant. Proc. 1989. — Vol. 21. — P. 3704−3705.
  130. Borth W., Luger T.A. Identification of a2-macroglobulin as a cytokine binding plasma protein // J. Biol. Chem. 1989. — Vol. 264, № 10. — P. 5818−5825.
  131. Bouma M.G., Buurman W.A., Frans A.J.M., Van den Wildenberg. Low energy laser irradiation fails to modulate the inflammatory function of human monocytes and endothelial cells // Lasers Surg. Med. 1996. — Vol. 19. — P. 207−215.
  132. Boyurn A. Separation of blood leukocytes, granulocytes and lymphocytes // Tissue Antigens. 1974. — Vol. 4. — P. 269−274.
  133. Briskin B.S., Aliev I.M., Polonski A.K., Khachatarian N.N., Stupin I.V. Immunomodulation by laser irradiation in immunodeficiency // Laser Therapy -1996.-Vol. 8, № 1. P. 67−68.
  134. Campana W., Moya M, Gavotto A., Simes J.C., Spitale L., Soriano F., Palma J.A. He-Ne laser on microcrystalline arthropathies // J. Clin. Laser Med. Surg. -2003. Vol. 21, № 2. — P. 99−103.
  135. Cen Y., Yan X.R., Effect of gamma-interferon on the fibroblasts in hypertrophic scars // Zhongguo. Xiu. Fu. Chong. Jian. Wai. Ke. Za. Zhi. 1999. — Vol. 13.-P. 122−126.
  136. Cigone M.G., Ulisse S., Santoni A. Natural killer cells and nitric oxide // Int. Immunopharmacol. 2001. -Vol. l.-P. 1513−1524.
  137. Clydesdale G., Dandie W., Muller H.K. Ultraviolet light induced injury: immunological and inflammatory effects // Immunol. Cell. Biol. 2001. — Vol. 79.- P. 547−568.
  138. Cohen N., Lubart R., Rubinstein S., Breitbart H. Light irradiation of mouse spermatozoa: stimulation of in vitro fertilization and calcium signals // Photo-chem. Photobiol. 1998. — Vol. 68. — P. 407−413.
  139. Coleman J.W. Nitric oxide in immunity and inflammation // Int. Immunopharmacol. 2001. — Vol. l.-P. 1397−1406.
  140. Danno K., Mori N., Toda K., Kobayashi T., Utani A. Near-infrared irradiation stimulates cutaneous wound repair: laboratory experiments on possible mechanisms // Phodermatol. Photoimmunol. Photomed. 2001. — Vol. 17. — P. 261−265.
  141. Danpure H.J., Tyrrell R.M. Oxygen-dependence of near UV (365 nm) lethality and the interaction of near UV and X-rays in two mammalian cell lines // Photochem. Photobiol. 1976. — Vol. 23. — P. 171−177.265.
  142. Dennis P.A., Sarsela O., Harpel P., Rifkin D.B. Alpha2-macroglobulin is a protein for basic fibroblast growth factor // J. Biol. Chem. 1989. — Vol. 264. -P. 7210−7216.
  143. Droge W. Free radicals in the physiological control of cell function // Physiol. Rev. 2002. — Vol. 82. — P. 47−95.
  144. Dube A., Bansal H., Gupta P.K. Modulation of macrophage structure and function by low level He-Ne laser irradiation // Photochem. Photobiol. Sci. -2003. Vol. 2, № 8. — P. 851−855.
  145. Dyson M., Agaiby A., Ghali L. Photobiomodulation of human T-lymphocyte proliferation in vitro II Lasers Med. Sci. 2002. — Vol. 17. — A22.
  146. Dyson M., Young S. The effect of laser therapy on wound contraction and cellularity in mice // Lasers Med. Sci. 1986. — Vol. 1. — P. 125−130.
  147. Eisenstark A. Mutagenic and lethal effects of visible and near-ultraviolet light on bacterial cells//Ad van. Genetics. 1971. — Vol. 16.-P. 167−198.
  148. ELISA and other solid phase immunoassays: theoretical and practical aspects / ed. Kemeny D. M. Challacombe S. J. Colchester: John Wiley and Sons, 1988. -367 p.
  149. Farrar M.A., Schreiber R.D. The molecular cell biology of interferon-y and its receptor // Annu. Rev. Immunol. 1993. — Vol. 11. — P. 571−611.
  150. Fedoseyeva G.E., Smolyaninova N.K., Karu T.I., Zelenin A.V. Human lymphocyte chromatin changes following irradiation with a He-Ne laser // Lasers Life Sci. 1988. — Vol. 2. — P. 197−205.
  151. Fedyk E.R., Phipps R.P. Reactive oxygen species and not lipoxygenase products are required for mouse B-lymphocyte activation and differentiation // Int J Immunopharmacol. 1994. — Vol. 16. — P. 533−546.
  152. Fenyo M. Theoretical and experimental basis of biomodulation // Optic Laser Technology. 1984. — Vol. 16. — P. 209−215.
  153. Fenyo M., Mandl J., Falus A. Opposite effect of linearly polarized light on biosynthesis of interleukin-6 in a human B lymphoid cell line and peripheral human monocytes // Cell Biol. Int. 2002. — Vol. 26. № 3. — P. 265−269.
  154. Femandes-Botran R. Soluble cytokine receptors in biological therapy // Expert Opin. Drugs. 2002. — Vol. 2, № 6. — P. 585−605.
  155. Femandes-Botran R. Soluble cytokine receptors: their role in immunoregulation // FASEB J. 1991. — Vol. 5. — P. 2567.
  156. Finkel T. Oxygen radicals and signalling // Curr. Opin. Cell Biol. 1998. -Vol. 10.-P. 248−253.
  157. Flemming K., Cullum N., Nelson E. A. A systemic review of laser therapy for venous leg ulcers // J. Wound Care. 1999. — Vol. 8. — P. 111−114.
  158. Fluckiger, A. C., Garrone P., Durand I., Galizzi J. P., Banchereau J. Inter-leukin 10 (IL-10) upregulates functional high affinity IL-2 receptors on normal and leukemic B lymphocytes // J Exp Med. 1993. — Vol. 178(5) — P. 14 731 481.
  159. Funk J.O., Kruse A., Kirchner H. Cytokine production after helium-neon laser irradiation in cultures of human peripheral blood mononuclear cells // J. Photochem. Photobiol. 1992. — Vol. 16. — P. 347−355.
  160. Funk J.O., Kruse A., Neustock P., Kirchner H. Helium-neon laser irradiation induces effects on cytokine production at the protein and the mRNA level // Exp Dermatol. 1993. — Vol. 2. — P. 75−83.
  161. Gamaley I.A., Klyubin I.V. Roles of reactive oxygen species: signalling and regulation of cellular function // Int. Rev. Cytol. 1999. — Vol. 188. — P. 203 255.
  162. Gamble J.R., Vadas M.A. Endothelial cells adhesiveness for human T-lymphocytes is inhibited by transforming growth factor-p // J. Immunol. -1991. -Vol. 146.-P. 1149−1154.
  163. Garber T.R., Gonias S.L., Webb D.J. Interleukin-4 and interleukin-10 bind covalently to activated alpha2-macroglobulin by a mechanism that requires Cys949 // J. Interferon Cytokine Res. 2000. — Vol. 20, № 2, P. 125−131.
  164. Gilioli G. Studio intrastritturale di colture cellulari «vero» infettate con virus Herpes Simplex e sottoposte all’azione laser // Proc. Int. Congr. Laser Medicine and Surgery. Bologna, 1985. — P. 207.
  165. Gilmour J.M., Vestey J.P., Gerge S., Norval M. Effect of phototherapy and urocanic acid isomers on natural killer cell function // J. Invest. Dermatol. -1993. Vol. 101, № 2. — P. 169−174.
  166. Godar D. UVA1 radiation triggers two different final apoptosis pathways // J. Invest. Dermatol.- 1999.-Vol. 112,№ l.-P. 3−12.
  167. Godar D., Lucas A.D. Spectral dependence of UV-induced immediate and delayed apoptosis: the role of membrane and DNA damage // Photochem. Photobiol. 1995. — Vol. 62. — P. 108−113.
  168. Godar D.E. Preprogrammed and programmed cell death mechanisms of apop-tosis: UV-induced immediate and delayed apoptosis // Photochem. Photobiol. -1996.-Vol. 63.-P. 825−830.
  169. Goldman M., Stordeur P. Interleukin-10 as an anti-stress cytokine // Eur. Cytokine Netw. 1997. — Vol. 8. — P. 301−302.
  170. Grether-Beck S., Bonizzi G., Schmitt-Brenden H., Felsner I., Timmer A., Sies H., Johnson J.P., Piette J., Krutmann J. Non-enzymatic triggering of the cera-mide signalling cascade by UVA radiation // The EMBO J. 2000. — Vol. 19. -P. 5793−5800.
  171. Grevve M., Gyufko K., Krutmann J. Interleukin-10 production by cultured human keratinocytes: regulation by ultraviolet B and ultraviolet A1 radiation // J. Invest. Dermatol. 1995. — Vol. 104. — P. 3−6.
  172. N., Schneid N., Reuveni H., Halevy S., Lubart R. 780 nm low power diode laser irradiation stimulates proliferation of keratinocyte cultures: involvement of reactive oxygen species // Lasers Surg Med. 1998. — Vol. 22. -P. 212−218.
  173. Groux, H., Bigler M., de Vries J. E., Roncarolo M. G. Inhibitory and stimulatory effects of IL-10 on human CD8+ T-cells II J Immunol. 1998. — Vol. 160(7)-P. 3188−3193.
  174. Hadar E.J., Ershler W.B., Kreisle R.A., Ho S.P., Volk M.J., Klopp R.G. Lymphocyte-induced angiogenesis factor is produced by L3T4+ murine T-lymphocytes, and its production declines with age // Cancer Immunol. Immuno-ther. 1988. — Vol. 26. — P. 31 -34.
  175. Hamuro J., Murata Y., Suzuki M., Takatsuki F., Suga T. The triggering and healing of tumor stromal inflammatory reactions regulated by oxidative and reductive macrophages // Gann. Monograph. Cancer Res. 1999. — Vol. 48. — P. 153−164.
  176. Henson S.E., Nichois T.C., Holers V.M., Karp D.R. The ectoenzyme y-glutamyl transpeptidase regulates antiproliferative effects of S-nitrosoglutathione on human T and B lymphocytes // J Immunol. 1999. — Vol. 163. — P. 18 451 852.
  177. Hersey P., Bradley M., Hasic E., Haran G., Edwards A., McCarthy W.H. Immunological effects of solarium exposure // Lancet. 1983. — Vol. 1(8324). -P. 545−548.
  178. Hill J.R., Corbett J.A., Kwon G., Marshall C.A., McDaniel M.L. Nitric oxide regulates interleukin 1 bioactivity released from murine macrophages // J. Biol. Chem. 1996. — Vol. 271. — P. 22 672−22 678.
  179. Hoidal J.R. Reactive oxygen species and cell signaling // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2001. — Vol. 25, № 6. — P. 661−663.
  180. Huang S.S., O’Grady P., Huang J.S. Human transforming growth factor p • a2-macroglobulin complex is a latent form of transforming growth factor P* // J. Biol. Chem. 1988. — Vol. 263, № 3. — P. 1535−1541.
  181. Inoue K., Nishioka J., Hukuda S. Altered lymphocyte proliferation by low dosage laser irradiation // Clin. Exp. Rheumatol. 1989. — Vol. 7. — P. 521−523.
  182. Iton, K., Hirohata S. The role of IL-10 in human B cell activation, proliferation, and differentiation // J Immunol. 1995. — Vol. 154(9). — P. 4341−4350.
  183. James K., van den Haan J., Lens S., Farmer K. Preliminary studies on the interaction of TNF and IFN gamma with alpha2-macroglobulin // Immunol. Lett. -1992.-Vol. 32, № 1. P.49−57.
  184. Jr. С. A., Travers P., Walport M., Shlomchik M. J. Immunobiology: the immune system in health and disease. New York: Garland Publishing, 2001.-732 p.
  185. Jordanou P., Baltopoulos G., Giannakopoulou M., Bellou P., Ktenas E. Effect of polarized light in the healing process of pressure ulcers // Int. J. Nurs Pract. 2002. — Vol.8. — P. 49−55.
  186. Kanariou M., Petridou E., Vrachnou E., Trichopoulos D. Lymphocyte alterations after prolonged sunlight exposure // J Epidemiol Biostat. 2001. — Vol. 6. -P. 463−5.
  187. Karu T. The sciences of low-power laser therapy. London: Gordon and Breach science publishers, 1998. — 299 p.
  188. Karu Т., Kurchikov A., Letokhov V., Mokli V. He-Ne laser irradiation influences single-channel ionic currents through cell membranes: a patch-clamp study // Lasers Life Sci. 1996. — Vol. 7. — P. 35−48.
  189. Каш Т., Smolyaninova N., Zelenin A. Long-term and short-term responses of human lymphocytes to He-Ne laser radiation // Lasers Life Sci. 1991. — Vol. 4. -P. 167−178.
  190. Karu T.I., Ryabykh Т.О., Fedoseyeva G.E., Puchkova N.I. Helium-neon la-ser-indused respiratory burst of phagocytic cells // Lasers Surg. Med. 1989. -Vol. 9.-P. 585−588.
  191. Khronntsova O.M., Kustova N.I. Laser acupuncture influence on immunological status of patients with frequent acute respiratory viral disease // Laser Therapy. 1996. — Vol. 8, № 1. — P. 70.
  192. Klebanov G.I., Teselkin Yu. O., Babenkova I.V., Bashkujeva T.Yu., Chichuk T.V., Vladimirov Yu.A. Low-power laser irradiation induces leukocyte priming // Gen. Physiol. Biophys. 1998. — Vol. 17. — P. 365−375.
  193. Kol R., Ben-hur E., Marko R., Rosenthal I. Inhibition of human lymphocyte stimulation by visible light and phtalocyanine photosensitization: Mitogen and wavelength dependency// Int. J. Radiat. Biol. 1989. — Vol. 55. — P. 1015−1022.
  194. Kolb H., Kolb-Bachofen V. Nitric oxide in autoimmune disease: cytotoxic or regulatory mediator? // Immunology Today. 1998. — Vol. 19, № 2. — P.556−560.
  195. Koo P.H., Stach R.W., Interaction of nerve growth factor with murine a2-macroglobulin // J. Neurosci. Res. 1989. — Vol. 23. — P. 247−261.
  196. Kripke M.L. Photoimmunology // Photochem. Photobiol. 1990. — Vol. 52. -P. 919−924.
  197. Krutmann J. Therapeutic photoimmunology: photoimmunological mechanisms in photo (chemo) therapy // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1998. -Vol.44.-P. 159−164.
  198. Krutmann J. Ultraviolet A radiation-induced biological effects in human skin: relevance for photoaging and photodermatosis // J. Dermatol. Science. 2000. -Vol. 23. — Suppl. l — S22-S26.
  199. Krutmann J., Grewe M. Involvement of cytokines, DNA damage, and reactive oxygen intermediates in ultraviolet radiation-induced modulation of intercellular adhesion molecule-1 expression // J. Invest. Dermatol. 1995. — Vol. 105. — 67S-70S.
  200. Kubasova T, Horvath M, Kocsis K, Fenyo M. Effect of visible light on some cellular and immune parameters // Immunol. Cell Biol. 1995. — Vol. 73. — P. 239−244.
  201. Kubitschek H.E. Mutagenesis by near-visible light // Bacterid. 1967. — Vol. 126.-P. 140−146.
  202. Kumae, T., Arakama H. In vitro effects of therapeutic laser on superoxide generation from rat alveolar macrophage // Laser Therapy. 1999. — Vol. 11. -P. 119−127.
  203. Kupin V.I., Sorokin A.M., Ivanov A.V., Lapteva R.M., Polevaya E.B. The effect of nondamaging intensity laser irradiation on the immune system // Neoplasma. 1987. — Vol. 34, № 3. p. 325−331.
  204. Kymplova J., Navratil L., Knizek J. Contribution of phototherapy to the treatment of episiotomies // J. Clin Laser Med Surg. 2003. — Vol. 21. — P. 3539.
  205. Lasers in medicine and dentistry: Basic science and up-to-date clinical application of low-energy-level laser therapy-LLLT / ed. Simunovic Z. Rijeka: Vitagraf, 2000. — 544 p.
  206. Legres L.G., Pochon F., Barray M., Gay F., Chouaib S., Delain E. Evidence for the binding of a biologically active interleukin-2 to human alpha2-macroglobulin // J. Biol. Chem. 1995. — Vol. 270, № 15. — P. 8381−8384.
  207. Lievens P., Van der Veen Ph. Wound healing process: influence of LLLT on the proliferation of fibroblasts and on the lymphatic regeneration // Abstr. Book 7th Int. Congr. Eur. Med. Laser Assn. Dubrovnic. — 2000. — P. 32−33.
  208. Lubart R, Friedmann H, Lavie R. Photobiostimulation as a function of different wavelengths // Laser Therapy. 2000. — Vol. 12. — P. 38−41.
  209. Lubart R., Friedman H., Lavie R., Grossmann N., Sinyakov M., Belotsky S. Effect of visible light on reactive oxygen species production // Laser and Technology. 2000. — Vol. 10. — P. 7−11.
  210. Lusa J., Hubacek J. In vitro He-Ne laser effect on some immunological functions of the polymorphonuclears and monocytes in rabbits // Acta Univ. Palacki. Olomuc. Fac. Med. 1996. — Vol. 140. — P. 43−46.
  211. Manteifel V., Bakeeva L., T. Karu. Ultrastructural changes in chondriome of human lymphocytes after irradiation with He-Ne laser: appearance of giant mitochondria // J. Photochem. Photobiol. 1997. — Vol. 38. — P. 25−30.
  212. Manual of clinical laboratory immunology. 5th ed. / Ed. By N. Rose et al. -Washington, D.C.: ASM Press, 1997. 1255 p.
  213. Matsuda T., Hirano T., Nagasawa S., Kishimoto T. Identification of a2-macroglobulin as a carrier protein for IL-6 // J. Immunol. 1989. — Vol. 142, № l.-P. 148−152.
  214. McGowan M., Yu W., Nairn J.O., Lanzafame R.J. The effect of low level laser irradiation on IL-2 release from CD4 T-cells // Lasers Surg. Med. 1996. -Suppl. 8. — P. 6.
  215. Medenica L., Lens M. The use of polarised polychromatic non-coherent light alone as a therapy for venous leg ulceration // J. Wound Care. 2003. — Vol. 12, № l. p. 37−40.
  216. Meier B., Gross A.C., Hancock J.T., Kaup P.J., Jones O.T.C. Identification of superoxide generating NADPH oxidase system in human fibroblasts // Biochem. J. 1991. — Vol. 275. — P. 241−245.
  217. Meyers A.D., Joyce J., Cohan J.J. Effects of low-watt He-Ne laser radiation on human lymphocyte cultures // Lasers Med Surg. 1987. — Vol. 6. — P. 540 542.
  218. Miyazaki Y., Yamasaki M., Mishima H., Manslio K., Tachibana H., Yamada K. Oxidative stress by visible light irradiation suppresses immunoglobulin production in mouse spleen lymphocytes // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2001. -Vol. 65, № 3.-P. 593−598.
  219. Monstrey S., Hoeksema H., Depuydt K., Van Maele G., Van Landuyt K., Blondeel P. The effect of polarised light on wound healing // Eur. J. Plast. Surg. 2002. — Vol. 24. — P. 377−382.
  220. Monstrey S., Hoeksema H., Saelens H., Depuydt K., Hamdi M., Van Landuyt K., Blondeel P. A conservative approach for deep dermal bum wounds using polarized light therapy // Br. J. Plast. Surg. — 2002. — Vol. 55. — P. 420−426.
  221. Moore K.W., de Waal Malefyt R., Coffinan R.L., O’Garra A. Interleukin-10 receptor // Annu. Rev. Immunol. 2001. — Vol. 19. — P. 683−765.
  222. Munakata T., Semba U., Shibuya Y., Kuwano K., Akagi M., Arai S. Induction of interferon-gamma production by human natural killer cells stimulated by hydrogen peroxide // J. Immunol. 1985. — Vol. 134, № 4. — P. 2449−2455.
  223. Nara Y., Matano S., Morioka T. Regulatory action of low intensity laser on mitogenes of cultured lymphocytes using concanavalin A // Surg Med Lasers. -1991.-Vol. 4.-P. 17−20.
  224. Nathan C. F. Secretory products of macrophages // J. Clin. Invest. 1987. -Vol. 79.-P. 319−326.
  225. Nathan C., Xie O. Nitric oxide synthase: roles, tolls, and controls // Cell -1994.-Vol. 78.-P. 915−918.
  226. Neill W.A., Halliday K.E., Norval M. Differential effect of phototherapy on the activities of human natural killer cells and cytotoxic T cells // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1998. — Vol. 47. — P. 129−135.
  227. Norval M. Foreword to the photoimmunology papers // J. Photochem. Photo-biol. B: Biol. 1998. — Vol. 44. — P. 87−90.
  228. O’Kane S., Gallaglian G.A., Hannigan B.M., Gilmore W.S., Allen J.M. Low intensity laser irradiation induces cytokine release from two haemopoietic cell lines // Lasers Surg Med. 1994. — Suppl. 6 — P. 8.
  229. Obata J. Clinical effects of total laser irradiation for the control of disease activity of chronic rheumatoid arthritis // Surg. Med. Lasers. 1990. — Vol. 3, № 3. -P. 140.
  230. Obolenskaya K.D., Samoilova K.A. Comparative study of effects of polarized and non-polarized light on human blood in vivo and in vitro. I. Phagocytosis of monocytes and granulocytes // Laser and Technology. 2002. — Vol. 12, № 2−3.-P. 7−13.
  231. Ogawa S. Super Lizer (an instrument for linear polarized infra-red ray irradiaittion): its properties and clinical usage // Abstr. Book 4 Congr. World Assn. Laser Therapy. Tokyo, Tsukua, 2002. — P. 91.
  232. Ohta A., Abergel P., Uitto J. Laser modulation of human immune system: inhibition of lymphocyte proliferation by a gallium-arsenide laser at low energy // Lasers Surg Med. 1987. — Vol. 7. — P. 199−201.
  233. Oldroyd S.D., Thomas G.L., Gabbiani G., El Nahas A.M. Interferon-gamma inhibits experimental renal fibrosis // Kidney Int. 1999. — Vol. 56. — P. 21 162 127.
  234. Onuchin S.G., Benenson Y.V., Belousov S.G., Onuchina Y.L., Utyomova Y.D., Zyazina S.M., Mironycheva N.Y. Immunological efficacy of low energy hellion-neon laser therapy in patients with diabetes mellitus // Laser Therapy. -1996.-Vol. 8, № 1. P. 73−74.
  235. Oren D.A., Charney D.S., Lavie R., Sinyakov M., Lubart R. Stimulation of reactive oxygen species production by an antidepressant visible light source // Biol. Psychiatry. 2001. — Vol. 49. — P. 464−467.
  236. Ortutay J, Barabas K. Laser therapy in rheumatology // Lasers in medicine and dentistry: Basic science and up-to-date clinical application of low-energy-level laser therapy-LLLT / ed. Simunovic Z. Rijeka: Vitagraf, 2000. — P. 329 343.
  237. Pani G., Colavitti R., Borrello S., Galeotti T. Endogenous oxygen radicals modulate protein tyrosine phosphorylation and JNK-1 activation in lectin-stimulated thymocytes // Biochem. J. 2000. — Vol. 347. — P. 173−181.
  238. Parshad R., Sanford K.K. Proliferative response of human diploid fibroblasts to intermittent light exposure // J. Cell. Physiol. 1977. — Vol. 92. — P. 481−485.
  239. Petrek M., Hubacek J., Ordeltova M. Immunomodulatory effects of laser therapy in the treatment of chronic tonsillitis // Acta Univ Palacki Olomuc Fac Med. 1991.-Vol. 129.-P. 119−126.
  240. Platzer C., Docke W., Volk H., Prosch S. Catecholamines trigger IL-10 release un acute systemic stress reaction by direct stimulation of its promoter/enhancer activity in monocytic cells // J, Neuroimmunol. 2000. — Vol. 1. -P. 31−38.
  241. Reth M. Hydrogen peroxide as second messenger in lymphocyte activation // Nature Immunol.-2002. Vol. 3.-P. 1129−1134.
  242. Roberts J.E. Light and immunomodulation // Ann. N Y Acad. Sci. 2000. -Vol. 917.-P. 435−445.
  243. Roberts J.E. Visible light indeed changes in the immune response through an eye-brain mechanism (photoneuroimmunology) // J Photochem Photobiol.1995.-Vol. 29.-P. 3−15.
  244. Roozendaal R., Vellenga E., Postma D.S., De Monchy J.G., Kauffinan H.F. Nitric oxide selectively decreases interferon-gamma expression by activated human T-lymphocytes via a cGMP-independent mechanism // Immunology. -1999.-Vol. 98. -P.393−399.
  245. Rosette C., Karin M. Ultraviolet light and osmotic stress: activation of the JNK cascade through multiple growth factor and cytokine receptors // Science.1996.-Vol. 274.-P. 1194−1197.
  246. Rossano F., Cipollaro De L’Ero G., Gombos F., Gaeta G.M., Serpico R., Baroni A., Tufano M.A. Soft laser (904 nm) irradiation induces cytokine release by human mononuclear cells // Int. J. Immunopathol. Pharmacol. 1993. — Vol. 6.-P. 13−19.
  247. Roth S., Droge W. Regulation of T cell activation and T cell growth factor (TCGF) production by hydrogen peroxide // Cell Immunol. 1987. — Vol. 108. -P. 417−424.
  248. Rowbottom, A. W., Lepper M. A., Garland R. J., Cox C. V., Corley E. G. In-terleukin-10-induced CD8 cell proliferation // Immunology 1999. — Vol. 98(1). — P. 80−89.
  249. Rubin L.A., Nelson D.L. The soluble interleukin-2 receptor: biology, function. And clinical application // Ann. Intern. Med. 1990. — Vol. 113, № 8. — P. 619−627.
  250. Ryter S.W., Tyrrell R.M. Singlet molecular oxygen ^Oi): a possible effector of eukaryotic gene expression // Free Radic. Biol. Med. 1998. — Vol. 24. — P. 1520−1534.
  251. Samoilova K.A., Obolenskaya K.D. On high sensitivity of blood cells to scattered daylight // Abstr. Book 4th Congr. Eur. Soc. Photobiology, Amsterdam, 1991.-P. 95.
  252. Sauer H., Wartenberg M., Hescheler J. Reactive oxygen species as intracellular messengers during cell growth and differentiation // Cell Physiol. Biochem. -2001, — Vol.11, № 4. -P. 173−186.
  253. Schaffer C.J., Nanney L.B. Cell biology of wound healing // Int. Rev. Biol. -1996. Vol. 169. — P. 161−181.
  254. Schechter B. Lymphocyte stimulation by non-specific mitogens // Lymphocyte stimulation, differential sensitivity to radiation, biochemical and immunological processes. New York, London: Plenun Press, 1980. — P. 1−13.
  255. Schenk H., Vogt M., Droge W., Schulze-Osthoff K. Thioredoxin as a potent costimulus of cytokine expression // J. Immunol. 1996. — Vol. 156. — P. 765 771.
  256. Schindl L., Schindl M., Polo L., Jori G., Perl S., Schindl A. Effect of low power laser-irradiation on differential blood cell count and body temperature in endotoxin-preimmunized rabbits // Life Sci. 1997. — Vol. 60, № 19. — P. 16 691 677.
  257. Schwarz T. UV light affects cell membrane and cytoplasmic targets // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1998. — Vol. 44. — P. 91−96.
  258. Shevchenko Yu.L., Matveev S.A., Chechetkin A.V., Boytsova M.Yu. Intravascular laser irradiation of blood in cardiosurgery // Laser and Technology. -1999.-Vol. 8, № 1.-P. 38−42.
  259. Shieven G.L., Ledbetter J.A. Ultraviolet radiation induces differential calcium signals in human peripheral blood lymphocyte subsets // J. Immunother. -1993. Vol. 14, № 3. — P. 221−225.
  260. Shreedhar V., Giese T., Sung V.W., Ullrich S.E. A cytokine cascade including prostaglandin E2, IL-4, and IL-10 is responsible for UV-induced systemic immune suppression// J. Immunology. 1998. — Vol. 160. — P.3783−3789.
  261. Simmer S., Braksma Y., Kleinman Y. Low power laser therapy in cutaneous immunological disorders // Laser Therapy. 1996. — Vol. 8, № 1. — P. 69−70.
  262. Simon J.C., Cruz Jr P.D., Bergstresser P.R., Tigelaar R.E. Low dose ultraviolet B-irradiated Langerhans cells preferentially activate CD4- cells of the T helper 2 subset // J. Immunology. 1990. — Vol. 145, № 7-P.2087−2091.
  263. Staal F.J., Anderson M.T., Staal G.E., Herzenberg L.A., Gitler C. Redox regulation of signal transduction: tyrosine phosphorylation and calcium influx // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1994. — Vol. 91.-3619−3622.
  264. Stadler I., Evans R., Kolb B., Nairn J. O., Narayan V., Buehner N., Lan-zafame R. J. In vitro effects of low-level laser irradiation at 660 nm on peripheral blood lymphocytes // Lasers Surg Med. 2000. — Vol. 27. — P. 2555−261.
  265. Stolpen A.H., Guinan E.C., Fiers W., Pober J.S. Recombinant tumour necrosis factor and immune interferon act singly and in combination to recognize human vascular endothelial cell monolayers // Am. J. Pathol. 1986. — Vol. 123. -P. 16−24.
  266. Suzuki Y., Ono Y. Involvement of reactive species procuced via NADPH oxidase in tyrosine phosphorylation in human B- and T-lineage lymphoid cells // Biochem Biol Research Com. 1999. — Vol. 255. — P. 262−267.
  267. Tadakuma T. Possible application of the laser in immunology // The Keio J. Med. 1993.-Vol. 42.-P. 180−182.
  268. Tatla S., Woodhead V., Foreman J.C., Chain B.M. The role of reactive oxygen species in triggering proliferation and IL-2 secretion in T cells // Free Radic Biol Med. 1999. — Vol. 26. — P. 14−24.
  269. Taylor-Robinson A.W., Liew F.Y., Severn A., Xu D., McSorley S.J., Garside P. Regulation of the immune response by nitric oxide differentially produced by T-helper type 1 and T-helper type 2 cells // Eur. J Immunol. 1994. — Vol. 24. -P. 980−984.
  270. Thannickal V.J., Fanburg B.L. Reactive oxygen species in cell signalling // Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2000. — Vol. 279. — L1005-L1028.
  271. Thornhill M.H., Williams D.M., Speight P.M. Enhanced adhesion of autologous lymphocyte to gamma-interferon-treated human endothelial cells in vitro II Br. J. Exp. Pathol. 1989. — Vol. 70. — P. 59−64.
  272. Tirlapur U.K., Konig K., Peuckert C., Rrieg R., Halbhuber K. J. Femtosecond near-infrared laser pulses elicit generation of reactive oxygen species in mammalian cells leading to apoptosis-like death // Exp. Cell. Res. 2001. — Vol. 263. -P. 88−97.
  273. T-Lymphocyte subpopulations in Immunotoxicology / ed. Kimber I. and M. Selgrade USA: Wiley and sons, 1998. — 312 p.
  274. Todorovic M. Piler light therapy effect on wound healing after facial incisions // Proc. 14th Balcan Congr. Stomatology. Thessalonici, Greece, 2000. — P. 25.
  275. Tuner J, Hode L. Low laser therapy. Clinical practice and scientific background. Grangsberg, Prima Books in Sweden AB, 1999. — 404 p.
  276. Tyrrell R.M. Synergistic lethal action of ultraviolet violet radiations and mild heat in Escherichia coli // Photochem. Photobiol. — 1976. — Vol. 24. — P. 345−351.
  277. Ullrich S.E., Schmitt D.A. The role of cytokines in UV-induced systemic immune suppression // J. Dermatol. Sei. 2000. — Vol. 23. — S10-S12.
  278. Van der Veen R.C. Nitric oxide and T helper cell immunity // Int. Immuno-pharmacol.-2001.-Vol. l.-P. 1491−1500.
  279. Van Reyk D.M., King N.J., Dinauer M.C., Hunt N.H. The intracellular oxidation of 2'.7'-dichlorofluorescin in murine T lymphocytes // Free Radic. Biol. Med. 2001. — Vol. 30. — P. 82−88.
  280. Vologdina A.V., Samoilova K.A. Comparative study of effects of polarized and non-polarized light on human blood in vivo and in vitro. II. Lipid peroxide content in erythrocyte membranes and plasma // Laser and Technology. 2003. -Vol. 13.-P. 10−19.
  281. Watt S.L., Auerbach R.A. Mitogenic factor for endothelial cells obtained from mouse secondary mixed leukocyte cultures // J. Immunol. 1986. Vol. 136. -P. 197−202.
  282. Webb R.B., Brown M.S. Sensitivity of strains of Escherichia coli differing in repair capability to far UV, near UV and visible radiation // Photochem. Photobiol. 1976. — Vol. 24. — P. 425−432.
  283. Webb R.B., Malina M.M. Mutagenic effects of near ultraviolet and visible radiant energy on continuous cultures of Escherichia coli // Photochem. Photo-biol. 1970. — Vol. 12. — P. 457−468.
  284. Wiegand-Steubing R., Louie A.Y., Yamamoto R.S., Berns M.W. Low power laser irradiation of HeLa cells and monocytes // Lase Life Sci. 1990. — Vol. 3. -P. 217−227.
  285. Wilder J. Stimulus and response. The law of initial value. Bristol: Wright J. and Sons Ltd., 1967. — 352 p.
  286. Yamaguchi N., Matono S., Ivase T. Acceleration of human lymphocytes blas-toid transformation by low energy laser irradiation in vitro II J. Jpn. Soc. Laser Med. 1992.-Vol. 13.-P. 3−9.
  287. Yamaguchi N., Trukamoto Y., Matono S. The effects of semiconductor laser irradiation on the immune activities of human lymphocytes in vitro I I Lasers Life Sci. 1994. — Vol. 6. — P. 143−149.
  288. Yamazaki M., Miura Y., Tsuboi R., Ogawa H. Linear polarized infrared irradiation using Super Lizer is an effective treatment for multiple-type alopecia areata // Int. J. Dermatol. 2003. — Vol. 42. — P. 738−740.
  289. Young S., Bolton P., Dyson M., Harvey W., Diamantopoulos C. Macrophage responsiveness to light therapy // Lasers Surg. Med. 1989. — Vol. 9. — P. 497 505.
  290. Yu W., Nairn J.O., Lanzafame R.J. Effects of photostimulation on wound healing in diabetic mice // Lasers Surg. Med. 1997. — Vol. 20. — P. 56−63.
  291. Yu W., Nairn J.O., McGowan M., Lppolito K., Lanzafame R.J. Photomodulation of oxidative metabolism and electron chain enzymes in rat liver mitochondria // Photochem. Photobiol. 1997. — Vol. 66. — P. 866−871.
  292. , L. M., Ojcius D. M., (Jaraud F.,^Roth C., Maxwell E., Li Z., Rong H., Chen J., Wang X. Y., Catino J. J., King I. Interleukin-10 inhibits metastasis through an NK cell-dependent mechanism // J Exp. Med. 1996. — Vol. 184 — P. 579−584.
  293. Zozula Y.U., Lysiany N.I., Markova O.V., Glavatsky A.Y., Gorobets O.B. Immune system induces after glial brain tumour using laser technique // Laser Therapy. Vol. 8, № 1. p.73.
  294. Zuclich J., Kurtin W.E. Oxygen dependence of near-ultraviolet induced corneal damage // Photochem. Photobiol. 1977. — Vol. 25. — P. 133−135.
Заполнить форму текущей работой