Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Характеристика химического и антигенного составов гликополимеров поверхности бактерий Herbaspirillum seropedicae Z78 и Herbaspirillum lusitanum P6-12

Диссертация: Характеристика химического и антигенного составов гликополимеров поверхности бактерий Herbaspirillum seropedicae Z78 и Herbaspirillum lusitanum P6-12
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Материалы исследований, изложенные в диссертации, были представлены на 4-ой Международной конференции молодых ученых «Биология — от молекулы до биосферы» (Харьков, Украина, 2009) — на Всероссийском с международным участием симпозиуме «Современные проблемы физиологии, экологии и биотехнологии микроорганизмов» (Москва, Россия, 2009) — на 5-ой Межрегиональной конференции молодых… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Бактерии рода НегЬаБртИит — представители азотфиксирующих 12 диазотрофных ризобактерий
      • 1. 1. 1. Физиолого-морфологические особенности гербаспирилл
      • 1. 1. 2. Исследование генома НегЪазрмШит
      • 1. 1. 3. Применение диазотрофных ризобактерий рода НегЬазртПит
    • 1. 2. Организация и функции наружной мембраны, капсулы и 19 межклеточного пространства грамотрицательных бактерий
    • 1. 3. Липополисахариды грамотрицательных бактерий
      • 1. 3. 1. Общая характеристика липида А
      • 1. 3. 2. Общая характеристика олигосахарида кора
      • 1. 3. 3. Общая характеристика О-специфических полисахаридных цепей. 32 Структурное разнообразие и вариабельность
    • 1. 4. Экзополисахариды грамотрицательных бактерий
      • 1. 4. 1. Капсульные полисахариды
      • 1. 4. 2. Экстраклеточные полисахариды. Внеклеточные 37 липополисахариды
    • 1. 5. Функции экстаклегочных, капсульных и липополисахаридов в 41 растительно-микробных взаимодействиях
    • 1. 6. Способы получения антител для иммунохимических исследований
      • 1. 6. 1. Получение поликлональных антител
      • 1. 6. 2. Получение моноклональных антител с использованием 44 гибридомной технологии
      • 1. 6. 3. Использование рекомбинаторной фаговой библиотеки для 45 получения мини-антител
    • 1. 7. Методы исследования иммунохимической специфичности 48 полисахаридов поверхности
    • 1. 8. Методы выделения и исследования бактериальных полисахаридов
      • 1. 8. 1. Выделение и очистка экзополисахаридов
      • 1. 8. 2. Экстракция и фракционирование липополисахаридов
      • 1. 8. 3. Разделение липидного и углеводного компонентов 53 липополисахарида
      • 1. 8. 4. Изучение строения О-специфических полисахаридов
        • 1. 8. 4. 1. Деструктивные химические методы с применением 55 газожидкостной хроматографии и масс-спектрометрии
        • 1. 8. 4. 2. Структурный анализ полисахаридов методом ядерного 58 магнитного резонанса
    • 1. 9. Липополисахариды НегЪазртИит
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Микробиологические культуры и условия выращивания
    • 2. 2. Приборы и материалы
    • 2. 3. Микробиологические методы
      • 2. 3. 1. Оценка чистоты культуры
      • 2. 3. 2. Выявление капсулы
    • 2. 4. Методы выделения и исследования полисахаридов бактерий рода 66 НегЬазртИит
      • 2. 4. 1. Выделение полисахаридов из культуральной жидкости
      • 2. 4. 2. Выделение полисахаридов из капсульного материала
      • 2. 4. 3. Экстракция липополисахаридов
      • 2. 4. 4. Хроматографические методы
        • 2. 4. 4. 1. Гель-фильтрация
        • 2. 4. 4. 2. Газо-жидкостная хроматография и хромато-масс 71 спектрометрия
        • 2. 4. 4. 2. 1 Определение состава жирных кислот 71 полисахаридов и липополисахаридов
        • 2. 4. 4. 2. 2 Определение моносахаридного состава поли- 71 сахаридов
      • 2. 4. 5. Колориметрическое определение состава углеводсодержащих 72 полимеров
      • 2. 4. 6. Денатурирующий электрофорез в полиакриламидном геле
      • 2. 4. 7. Получение кроличьих антител
      • 2. 4. 8. Получение мини-антител
      • 2. 4. 9. Твердофазный иммуноферментный анализ
      • 2. 4. 10. Конкурентный иммуноанализ
      • 2. 4. 11. Выделение О-полисахаридов кислотным гидролизом 75 липополисахаридов
      • 2. 4. 12. ЯМР — спектроскопия 76 3 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Выделение и исследование химического состава капсульных и 77 экстраклеточных полисахаридов
    • 3. 2. Выделение и исследование химического состава липополисахаридов
    • 3. 3. Иммунохимическое исследование гликополимеров бактерий рода 100 Herbaspirillum
      • 3. 3. 1. Сравнительный иммунохимический анализ гликополимеров 101 Н. seropedicae Z78 и Н. lusitanum Р
      • 3. 3. 2. Конкурентный иммуноанализ в оценке строения углеводных 106 эпитопов ЛПС бактерий Н. seropedicae Z
    • 3. 4. Исследование О-специфического полисахарида
      • 3. 4. 1. Выделение О-специфических полисахаридов, коровых 108 олигосахаридов и определение их моносахаридного состава методом ГЖХ
      • 3. 4. 2. Исследование структуры повторяющегося звена 113 О-специфического полисахарида Н. seropedicae Z
        • 3. 4. 2. 1. Определение характера замещения моносахаридных 113 остатков методом метилирования с последующей ГЖХ-масс-спектрометрией
        • 3. 4. 2. 2. 'Н- и 13С-ЯМР-спектроскопия
  • ЗАКЛЮЧЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ Аг — антиген (ы) АП — ацетаты полиолов Ат — антитело (а)
  • ГЖХ — газожидкостная хроматография
  • ГЖХ-МС — ГЖХ-масс-спектрометрия
  • ДМСО — диметилсульфоксид
  • ЖК — жирные кислоты
  • ИФА — иммуноферментный анализ
  • К-Аг — К-антигены
  • КДО — 2-кето-3-дезокси-0-октолузоновая кислота
  • КЛПС — капсульный липополисахарид
  • КПС — капсульный полисахарид
  • JIA — липид А
  • ЛПС — липополисахарид м-Ат — мини-антитела
  • МЭЖК — метиловые эфиры жирных кислот
  • НК — нуклеиновые кислоты
  • ОПС — О-специфический полисахарид
  • ПААГ — полиакриламидный гель
  • ПС — полисахарид
  • ЭДТА — этилендиаминтетраацетат
  • ЭЛПС — экстраклеточный липополисахарид
  • ЭПС — экзополисахарид
  • ЯМР — ядерный магнитный резонанс
  • Acyl — ацил
  • Ara — арабиноза
  • COSY — Correlation Spectroscopy Gal — галактоза GalN — галактозамин Glc — глюкоза
  • GlcN — глюкозамин
  • GlcNAc — N-ацетилглюкозамин
  • Gro — глицерин
  • HSQC — Heteronuclear Single-Quantum Coherence Man — манноза ManN — маннозамин
  • NOESY — Nuclear Overhauser Effect Spectroscopy РСР-экстракция — экстракция ЛПС по методу Галаноса PW-экстракция — экстракция ЛПС по методу Вестфаля Rha — рамноза
  • ROESY — Rotating-frame nuclear Overhauser Effect Spectroscopy scFv — single-chain Fragments variable TOCSY — TOtal Correlation Spectroscopy

Характеристика химического и антигенного составов гликополимеров поверхности бактерий Herbaspirillum seropedicae Z78 и Herbaspirillum lusitanum P6-12 (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность. Для большинства растений характерны симбиозы с микроорганизмами (эндофитными и ризосферными), фиксирующими азот или оптимизирующими получение других необходимых веществ из почвы. Исследования особенностей таких взаимодействий являются основой отдельного направления в прикладной микробиологии. Перспективным модельным объектом для изучения эндофитной растительно-микробной ассоциации являются бактерии рода Herbaspirillum, благодаря потенциально высокой азотфиксирующей активности, способности продуцировать. фитогормоны и иные физиологически активные вещества (Baldani et al, 1986; Bastia et al, 1998; Lambrecht et al., 2000; Souza et al., 2000; Pedrosa et al, 2001; Ongena et al, 2007). Об интересе к исследованию гербаспирилл свидетельствует выполненное секвенирование нуклеотидных последовательностей генома бактерий H. seropedicae Z78 (Pedrosa and Genopar, 2005).

В прикреплении бактерий к корням, проникновении и распространении по макроорганизму участвуют как неспецифическая сорбция, так и специфические взаимодействия, которые на разных этапах опосредуются поверхностно локализованными белками и полисахаридами (ПС) (Michiels et al., 1991; Baldani et al., 1993; Mora and Newton, 2008). Уже сложилось представление о важной роли гликополимеров поверхности в обеспечении выживания бактерий в почве и взаимодействии их с растением (Dell Gallo and Haegi, 1990; Gulati et al., 2011). Анализ строения и функций различных структурных элементов клеточной поверхности эндофитных ассоциативных бактерий является ключевым направлением в изучении молекулярных механизмов формирования симбиотических отношений. В литературе отсутствуют данные, касающиеся исследований состава и функций экстраклеточных и капсульных гликополимеров гербаспирилл. Фрагментарно представлены сведения об исследовании липополисахаридов (ЛПС) — главного компонента внешней мембраны грамотрицательных бактерий. ЛПС, специфичность которых в контактных взаимодействиях определяют полисахаридные составляющие, играют важную роль в создании внутривидовых классификационных схем грамотрицательных бактерий (Caroff and Karibian, 2003).

Известны результаты иммунохимических исследований ассоциативных азотфиксаторов, фитопатогенных бактерий (Варбанец, 1994; Pier, 2003; Коннова с соавт., 2009), в то время как аналогичные аспекты изучения эндофитных диазотрофов, за исключением представителей рода Rhizobium, находятся на периферии исследовательских интересов. Изучение структурных особенностей и антигенного состава индивидуальных препаратов гликополимеров гербаспирилл является актуальным как для таксономических исследований, так и для понимания механизмов индукции и развития их биологического действия при формировании эндофитного симбиоза с растениями.

В связи с этим, целью работы было выявление особенностей структуры и антигенного состава гликополимеров поверхности бактерий Н. seropedicae Z78 и Н. lusitanum Р6−12.

Для реализации цели в ходе исследования решали следующие задачи:

1) выделение полисахаридов из культуральной жидкости, капсулы и внешней мембраны Н. seropedicae Z78 и Н. lusitanum Р6−12;

2) анализ химического состава углеводсодержащих биополимеров Н. seropedicae Z78 и Н. lusitanum Р6−12;

3) исследование антигенного состава полисахаридов гербаспирилл с применением кроличьих антител и фаговых мини-антител к препаратам экстраклеточных, капсульных и мембранных гликополимеров Н. seropedicae Z78;

4) выделение О-специфических полисахаридов (ОПС) из липополисахаридов и определение структуры повторяющегося звена ОПС Н. seropedicae Z78.

Научная новизна работы. Получены приоритетные данные о составе экстраклеточных, капсульных гликополимеров и О-антигенов Н. seropedicae Z78 и Н. lusitanum Р6−12.

Впервые для типового штамма Н. seropedicae Z78 установлен состав повторяющихся звеньев О-специфической части липополисахарида внешней мембраны, имеющих нетипичные для грамотрицательных бактерий составляющие — ТУ-ацетил-Э-глюкозамин и неуглеводный заместитель — глицерин. Необходимо отметить, что подобные компоненты часто встречаются в структуре тейхоевых кислот грамположительных (Наумова с соавт., 1987; Varbanets et al, 1990; Стрешинская с соавт., 1998) бактерий и крайне редко обнаруживаются у грамотрицательных представителей.

С применением поликлональных кроличьих и фаговых мини-антител впервые получены сведения об антигенных свойствах гликополимеров Н. яегоресИсае Ъ1Ъ и Я ¡-шНапит Р6−12.

Научно-практическая значимость. Данные о составе и структуре мембранных, экстраклеточных и капсульных гликополимеров НегЪазртИит необходимы для понимания механизмов индукции и развития их биологического действия при формировании симбиоза с растениями. Они также могут служить основой внутривидовых классификационных схем исследуемых бактерий.

Препараты полисахаридов НегЬазртИит, а также фаговые мини-антитела к ним применяются при проведении плановых НИР сотрудниками лаборатории биохимии и иммунохимии ИБФРМ РАН. Полученные антитела планируется использовать для дальнейшего сёрологического анализа коллекционных культур НегЬазртИит, а также вновь изолированных из природной среды микроорганизмов.

Результаты диссертационной работы использованы при подготовке курсовых и дипломных работ студентами биологического факультета СГУ.

Апробация работы. Материалы исследований, изложенные в диссертации, были представлены на 4-ой Международной конференции молодых ученых «Биология — от молекулы до биосферы» (Харьков, Украина, 2009) — на Всероссийском с международным участием симпозиуме «Современные проблемы физиологии, экологии и биотехнологии микроорганизмов» (Москва, Россия, 2009) — на 5-ой Межрегиональной конференции молодых ученых «Стратегия взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой» (Саратов, Россия, 2010) — на 1-ой Общероссийской электронной научной конференции «Актуальные вопросы современной науки и образования» (Красноярск, Россия, 2010) — на 14-ой международной Пущинской школе-конференции молодых ученых «Биология — Наука XXI века» (Пущино, Россия, 2010) — на Международной научной студенческой конференции «Студент и научно-технический прогресс» (Новосибирск, Россия, 2010) — на 3-ем и 4-ом Всероссийских с международным участием конгрессах студентов и аспирантов-биологов «Симбиоз-Россия 2010, 2011» (Нижний Новгород, Воронеж, Россия, 2010, 2011) — на 5-ой школе-симпозиуме «Адаптация к климатическим изменениям в регионе Балтийского моря: вклад биотехнологии растений и микроорганизмов» (Миккели, Финляндия, 2010) — на 4-ой Всероссийской школе-конференции «Химия и биохимия углеводов» (Саратов, Россия, 2011) — на 1-ой Всероссийской с международным участием школе-конференции молодых ученых «Современные проблемы микробиологии, иммунологии и биотехнологии» (Пермь, Россия, 2011) — на 24-ой зимней молодежной научной школе «Перспективные направления физико-химической биотехнологии» (Москва, Россия, 2012).

Доклад «Химическая и иммунохимическая характеристика мембранных, капсульных и экстраклеточных гликополимеров НегЬаяряШит яегоресИсае Z78», представленный на 3-ем Всероссийском с международным участием конгрессе студентов и аспирантов-биологов «Симбиоз-Россия 2010» (Нижний Новгород, Россия, 2010), был удостоен диплома первой степени.

Диссертация обсуждена и одобрена на расширенном заседании лаборатории биохимии ИБФРМ РАН.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 17 работ, в том числе 5 статей в журналах рекомендованных ВАК РФ для опубликования основных научных результатов диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук. Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

1. Выявлен сложный многокомпонентный состав гликополимеров культуральной жидкости, капсулы и внешней мембраны бактерий.

Н. зегоресНсае 278 и Н. 1жНапит Р6−12. ЛПС внешней мембраны отличны по структуре от экстраклеточных и капсульных гликополимеров липополисахаридной природы. В капсульном материале Н. зегоресИсае 2Л% дополнительно присутствует гликолипид, а в культуральной жидкости — свободный полисахарид.

2. В составе всех исследуемых гликанов Н. зегоресИсае Ъ1% обнаружены общие антигенные детерминанты, наряду с наличием индивидуальных иммунодоминантных групп в мембранных й капсульных полисахаридах.

Н. зегоресИсае и Н. I из Напит Р6−12 являются серологически различными.

3. В О-специфической цепи ЛПС Н. яегоресИсае показано наличие двух типов повторяющихся звеньев: 1,3-глицерофосфата и 1,3-глицерофосфата, замещенного во втором положении М-ацетил-о-глюкозамином.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, изложения полученных результатов и их обсуждения, заключения, выводов и списка цитируемой литературы, содержащего 332 источника, в том числе — 273 зарубежных. Работа изложена на 160 страницах машинописного текста, содержит 21 рисунок и 8 таблиц.

ВЫВОДЫ.

1. Впервые в капсульном материале и культуральной жидкости бактерий Я. seropedicae Ъ1% и Я lusitanum Р6−12 обнаружен компонент липополисахаридной природы. Для Я seropedicae Z78 дополнительно в составе капсульного материала выявлено присутствие полисахарида, ассоциированного с липидным компонентом, и полисахарида в культуральной Жидкости. •.

2. Капсульные и экстраклеточные полисахариды Я seropedicae Z78 имеют близкий моносахаридный состав, представленный глюкозой и галактозой, в отличие от таковых Я lusitanum Р6−12, у которых в экстраклеточных гликополимерах преобладают манноза и глюкоза, а в капсульных — галактоза и глюкозамин. Кроме того, в составе капсульных и экстраклеточных гликанов обоих штаммов выявлено присутствие многоатомных спиртов (глицерина и эритрита).

3. Впервые для Я seropedicae Z78 установлен состав двух типов повторяющихся звеньев О-специфической части липополисахарида внешней мембраны. Первый тип представлен редким для грамотрицательных бактерий компонентом — 1,3-глицерофосфатом, а второй — 1,3-глицерофосфатом, замещенным /У-ацетил-О-глюкозамином.

4. Преобладающими компонентами липидных составляющих гликополимеров Я. seropedicae Z78 и Я lusitanum Р6−12 являются 3-гидроксидекановая, додекановая, 3-гидроксидодекановая, гексадекановая и октадеценовая кислоты. Гликолипид и липополисахарид из капсулы Я seropedicae Z78 существенно отличаются составом жирных кислот между собой и от всех исследуемых гликополимеров.

5. Для бактерий Я seropedicae Z78 с применением поликлональных кроличьих и высокоспецифичных фаговых, мини-антител показано, что экстраклеточные полисахариды содержат общие антигенные детерминанты с мембранными и капсульными гликанами, которые характеризуются наличием дополнительных индивидуальных иммунодоминант.

6. В состав антигенных детерминант капсульных гликополимеров и липополисахарида Я. seropedicae Z78 входят рамноза, глюкозамин и галактозамин, ответственные за перекрёстные реакции с мини-антителами (м-АтЛпс> м-Аткпа и м.

Аткпсп) — Наибольшим эффектом ингибирования взаимодействия препаратов с гомологичными м-Ат обладают коровый олигосахарид ЛПС278 и э-рамноза.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Перспективным модельным объектом для изучения эндофитной растительно-микробной ассоциации являются бактерии рода Herbaspirillum, благодаря потенциально высокой азотфиксирующей активности, способности продуцировать фитогормоны и иные физиологически активные вещества (Baldani et al, 1986; Bastia et al., 1998; Lambrecht et’al., 2000; Souza et al, 2000; Pedrosa et al, 2001; Ongena et al, 2007). Об интересе к исследованию гербаспирилл свидетельствует выполненное секвенирование нуклеотидных последовательностей генома бактерий Я. seropedicae Z78 (Pedrosa and Genopar, 2005).

В литературе отсутствуют данные, касающиеся исследований состава и функций экстраклеточных и капсульных гликополимеров гербаспирилл. I.

Фрагментарно представлены сведения об исследовании липополисахаридов. Ни для одного из штаммов не определена структура повторяющихся звеньев ОПС. В связи с этим, перед нами стояла задача о подборе оптимального метода экстракции ЛПС, изучении химической структуры их ОПС, выделении экстраклеточных и капсульных полисахаридов, выявлении химических особенностей и антигенного состава выделенных гликополимеров.

Были получены и охарактеризованы экстраклеточные и капсульные полисахариды Я seropedicae Z78 и Я. lusitanum Р6−12. В составе капсульного материала Я seropedicae Z78 были обнаружены два вида гликополимеров. Один из них липополисахаридной природы и полисахарид, ассоциированный с липидным компонентом. Для Я. lusitanum Р6−12 характерно образование лишь полимера липополисахаридной природы. В культуральную жидкость Я. seropedicae Z78 и Я lusitanum Р6−12 выделяют экстраклеточные формы ЛПС, а Я. seropedicae Z78 еще и полисахарид. ЭПС Я lusitanum P6−1Z отличается от капсульного гликана моносахаридным составом, а также составом липидной компоненты. Капсульные и экстраклеточные ПС Я seropedicae Z78 имеют близкий моносахаридный и значительные различия в составе жирных кислот. Полисахаридные части КПС Я seropedicae Z78 и Я lusitanum Р6−12 содержат остатки глицерина и бутантетраола. В то время как ПС части ЭПС обоих штаммов характеризуются присутствием только глицерина. Остатки полиспиртов с большей долей вероятности соединены посредством фосфодиэфирных связей и несут на себе высокую плотность отрицательного заряда. Известно, что низкомолекулярные ЭПС ризобий могут служить супрессорами растительных защитных реакций. Возможно, по аналогии с полианионным ЭПС ризобий и различных фитопатогенов (А81аш а1, 2009; 8Шро а1, 2010), КПС и ЭПС гербаспирилл могут хелатировать ионы Са2+, участвуя в подавлении защитных реакций 'растения. Для многих микроорганизмов было показано, что ЛПС, наряду с другими микробными метаболитами, индуцируют защитные механизмы растительных клеток. Однако в случае симбиотических отношений, бактериальные ПС, в том числе и ЛПС, часто выступают как ее супрессоры, подавляя выделение N0, активных форм кислорода и приток ионов кальция (БШро е/ а1, 2010). КПС1278, ЭПС1278, КПС1Р6.12 и КПС11р6.12, являясь экстраклеточной формой ЛПС, также могут оказывать подобное воздействие на растение, для оптимизации условий эндофитного существования. Гетерогенность полисахаридсодержащих полимеров поверхности Н. зегоресНсае и Н. 1 т Напит Р6−12, очевидно, связана с их различной ролью в процессе колонизации растения и реализации эффективного симбиоза.

Показано, что наиболее эффективным способом экстракции ЛПС из внешней мембраны Н. зегоресНсае 7Л% и Н. 1ш Напит Р6−12 является метод Вестфаля из обезжиренных клеток. Данная процедура позволяет получить препараты с достаточно высокими выходами, не содержащие примесей посторонних компонентов, которые наиболее подходят для дальнейших исследований структуры и биологической функции.

В связи с отсутствием в литературе данных о структуре ОПС НегЬаэрНШит, было проведено выделение и исследование этих полимеров. Впервые для Н.

1 13 хегоресИсае с применением методов Ни С-ЯМР спектроскопии была I установлена тонкая химическая структура исследуемого ОПС. Показано, что в состав повторяющихся звеньев входит необычный для большинства грамотрицательных бактерий компонент неуглеводной природы — глицерин. Одним из повторяющихся звеньев является 1,3-глицерофосфат, а другим — 1,3-глицерофосфат, замещенный во втором положении ТУ-ацетил-э-глюкозамином.

Необходимо отметить, что подобные структуры являются характерными для тейхоевых кислот грамположительных (Наумова с соавт., 1987; УагЬапе1з ег а1, 1990; Стрешинская с соавт., 1998) и редко встречаются у представителей грамотрицательных бактерий. В составе ОПС некоторых из них были обнаружены компоненты кислой неуглеводной природы, такие как фосфат рибита или этаноламинфосфат, находящиеся в боковой цепи полимера (Krytstyna et al., 2001). Показано, что ОПС бактерий рода Salmonella содержит 2-ацетимидоиламино-2,6-дидезокси-Ь-галактозу и фосфат рибита в основной цепи (Перепелов с соавт., 2009). ОПС малоизученного вида Budvicia aquatica построен из глицерофосфатов в основной цепи, замещенных во втором положении остатками Glc (Здоровенко с соавт., 2011). Для бактерий Е. coli 029 было показано сходство структуры ОПС со структурой тейхоевой кислоты (Perepelov et al., 2006). ОПС, содержащий глицерин в качестве повторяющегося звена, был обнаружен в составе ЛПС Proteus mirabilis 040 (Kondakova et al., 2005). Таким образом, впервые показано присутсвие глицерофосфатов в повторяющемся звене-ОПС почвенных микроорганизмов, что, возможно, обусловлено эндофитным образом жизни изучаемых бактерий и позволяет подавлять защитные реакции макропартнера.

На следующем этапе нашей работы мы провели исследования антигенного состава гликополимеров H. seropedicae Z78 и H. lusitanum Р6−12. Были получены и охарактеризованы высокоспецифичные фаговые мини-антитела ко всем выделенным препаратам биогликанов Н. seropedicae Z78.

Показано отсутствие в составе гликополимеров Н. seropedicae Z78 и Н. lusitanum Р6−12 общих антигенных детерминант, несмотря на наличие в составе полисахаридных составляющих этих гликанов одинаковых Сахаров. Подобные явления уже наблюдались для структурно близких гликоконьюгатов других бактерий, для которых были выявлены серологичекие различия, либо серологическая неидентичность. Более того такой феномен отмечали для Ки О-антигенов (имеющих близкие структуры полисахаридов) одного бактериального штамма (Kenne and Lindberg, 1983).

С использованием м-Ат к различным гликанам Н. seropedicae Z78 была выявлена сложная природа полисахаридсодержащих антигенов поверхности Н. seropedicae Z78. В составе всех исследуемых гликанов штамма Н. seropedicae Z78 обнаружены общие антигенные детерминанты. Кроме того, для мембранных и капсульных полисахаридов данного штамма показано присутствие индивидуальных иммунодоминант.

Показано, что общими для мембранного и капсульных полисахаридов бактерий Н. БегоресИсае Ъ1Ъ моносахаридами являются рамноза, глюкозамин и галактозамин, которые входят в состав антигенных детерминант этих гликополимеров и ответственны за их перекрёстные реакции с гомологичными препаратами мини-антител. Полученные мини-антитела к мемранному ЛПС проявляют большую специфичность к коровой области ЛПС278, в которой наиболее экспонированным сахаром является рамноза.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор выражает глубокую признательность своим научным руководителям заслуженному деятелю науки Российской Федерации, доктору биологических наук, профессору В. В. Игнатову и кандидату биологических наук Смолькиной О. Н. за неоценимую поддержку на всех ключевых этапах выполнения данной работы.

Автор выражает благодарность за плодотворное сотрудничество коллегам из лаборатории биохимии — доктору биологических наук, профессору С. А. Конновой, кандидату биологических наук, доценту Ю. П. Федоненко, кандидату биологических наук И. В. Егоренковой, сотрудникам ИБФРМ РАН доктору биологических наук Л. Ю. Матора, кандидату биологических наук, доценту Г. Л. Бурыгину, кандидату химических наук, с.н.с. O.E. Макарову, кандидату биологических наук Чернышевой М. П., а также другим сотрудникам ИБФРМ РАН и сотрудникам лаборатории химии углеводов ИОХ РАН (Москва), на разных этапах проявивших интерес к теме и принимавших участие в представленном исследовании.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.Д., Винарская Н. В. Структура, функция, биологическая активность эндотоксинов' грамотрицательных бактерий // Токсини Мпсрооргашзм1 В. 2002. — С. 1−7.
  2. О., Янн К. Методы химии углеводов // Бактериальные липополисахариды / Под. ред. Н. К. Кочеткова. М.: Мир, 1967. — С. 325 -332.
  3. Р. В. Серология и иммунохимия вирусов растений. М.: Наука, 1993.-300 с.
  4. .В. Строение бактерий. Л.: Изд-во Ленинградского ун-та, 1985. -190 с.
  5. М. В. Минеева Л.А. Микробиология. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1985. -376 с.
  6. С., Лебеденко Е. Современые технологии создания антител для клинического применения // Acta Nature. 2009. — Т. 1.-С.32−50.
  7. Л.А., Богатырев В. А. Коллоидное золото в твердофазных методах анализа// Биохимия. 1997. — Т. 6. — С. 411 -418.
  8. Н.П. Успехи микробиологии. М., 1982, Т. 17: — С. 158 — 177.
  9. П.Емцев В. Т., Чумаков М. И, Брук М. Х. Об ассоциативном симбиозе
  10. Clostridium с высшими растениями // Биологический азот в сельском хозяйстве / Под ред. Е. Н. Мишустина. -М.: Наука, 1988. С. 54−71.
  11. Д.А., Макаров О. Е., Скворцов И. М., Игнатов В. В. Выделение, фракционирование и моносахаридный состав О-специфических полисахаридов S-формы Azospirillum brasilense II Микробиология. 1989. -Т. 58, № 2.-С. 236−239.
  12. Завалин А. А, Чистотин М. В., Кожемяков А. П. Эффективность инокуляции зерновых культур Azotobapterium radiobacter в зависимости от азотного удобрения, почвенных и метеорологических условий // Агрохимия. 2001. -Т 1, № 2. — С. 31 -35.
  13. И .Я., Косенко JI.B. Методы изучения микробных полисахаридов. -Киев: Наук. Думка, 1982. 192 с. .
  14. Г. М. 2−0-метил-0-рамноза в составе липополисахарида Bacterium alcaligenes faecalis // Биоорг. химия. 1981. — Т. 7, № 1. — С. 103 -110.
  15. Г. М. Внеклеточный липополисахарид грамотрицательных бактерий // Микробиол. журн. 1988. — Т. 50, № 4. — С. 98 — 107.
  16. Г. М. ' Липополисахариды неферментирующих грамотрицательных бактерий: Дис.. д-ра биол. наук. Киев, 1990. — 384 с.
  17. Э.Л., Варбанец Л. Д., Броварская О. С., Валуева О. Н., Шашков А. С., Книрель Ю. А. Липополисахарид Budvicia aquatica 97U124: иммунохимические свойства и строение // Микробиология. 2011. Т. 80, № 3,-С. 366−371.
  18. Л. Вейсман, Лерой Е. Худ, Уильям Б. Вуд Введение в иммунологию. -М.: Высшая школа, 1983. 159 с.
  19. КагаваЯ. Биомембраны. М.: Высшая школа, 1985. — 303 с,
  20. И.В., Нездойминого Э. Л. История и предварительные итогиIисследования микофлоры Российской Арктики // Микология и фитопатол. -1994. Т. 28. — Вып. 3. — С. 70 — 83.
  21. Кац Л. Н. Поверхностные структуры бактериальной клетки // Успехи совр. биологии. 1973. — Т. 76, № 1 — 3. — С. 395 — 414.
  22. Ю.А. Липополисахариды грамотрицательных бактерий // Прогресс химии углеводов / Под. ред. И. В. Торгова. -М.:Наука, 1985. С. 54−71.
  23. Ю.А., Здоровенко Г. М., Яковлева Л. М., Шашков А. С., Соляник Л. П., Захарова И .Я. Антигенные полисахариды бактерий // Биоорган. Химия. 1988.-Т. 14, № 2.-С. 166−171.
  24. Ю.А., Кочетков Н. К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. I. Общая характеристика липополисахаридов и структура липида, А (обзор) // Биохимия. 1993. — Т. 58. — С. 166 — 181.
  25. Ю.А., Кочетков Н. К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. III. Структура О-специфических полисахаридов//Биохимия1−1994.-Т. 59, № 12.-С. 1784- 1851.
  26. В.В., Микеров А. Н., Макоров О. Е., Скворцов И. М., Игнатов В. В. Полисахаридные комплексы, липополисахариды и О-специфические полисахариды бактерий Xanthomonas campestris pv. campestris 8183a // Микробиология. 1997. — Т. 66, № 2. — С. 192 — 197.
  27. И.Н., Бахолдина С. И., Соловьева Т. Ф. Новый способ выделения О-специфического полисахарида из грамотрицательных бактерий Yersinia pseudotuberculosis II Биоорг. химия. 1998. — Т. 24, № 7. — С. 549 — 553.
  28. И.Н., Соловьева Т. Ф., Оводов Ю. С. Структура и свойства липида, А компонента эндотоксинов грамотрицательных бактерий // Химия природных соединений. — 1989. -№ 5. — С. 601 -616.
  29. Е.М. Липиды клеточных мембран. Л.: Наука, 1981. -339 с.
  30. А.Я. Молекулярная иммунология. М.: Высшая школа, 1985. -287 с.
  31. Е., Мейер М. Экспериментальная иммунохимия. М.: Медицина, I1968.-684 с.
  32. Г. Ф. Биометрия. М.: Высш. школа, 1980. -293 с.
  33. Ляшенко В. А, Воробьев А. А. Молекулярные основы иммуногенности антигенов. М.: Медицина, 1982. — 272 с.
  34. Л.Ю., Шварцбург Б. И., Щеголев С. Ю. Иммунохимический анализ О-специфических полисахаридов почвенных азотфиксирующих бактерий Azospirillum. brasilense II Микробиология. 1998. — T. 67, № 6. — С. 815 — 820.
  35. E.H., Шильникова В. К. Биологическая фиксация атмосферного азота. -М.: Наука, 1968.-531 с.
  36. И.Б., Садиков Б. М., Стрешинская Г. М., Полин А. Н. Тейхоевая кислота клеточной стенки' Arthrobacter crystallopoietes II Антибиот. Мед. Биотехнол. 1987. -№ 32. — С. 107−111.
  37. Ю.С. Химия иммунитета. Сыктывкар: Изд-во Сыктывкарского ГУ, 1997.-203 с.
  38. Оводов Ю.С. K-антигены бактерий. Строение K-антигенов бактерий // Биохимия. 2006. — Т. 71.-Вып. 9.-С. 1155- 1174.
  39. Л.В., Васюкова Н. И., Леонтьева Т. В., Метлицкий Л. В. Биохимические механизмы специализации фитопатогенов // Успехи соврем, биологии. 1985. — Т. 100, № 2. — С. 230 — 242.
  40. Л.Ф., Якимова М. Ф., Ковальжиу А. И., Волоскова М. М. Симбиотическая азотфиксация и пути ее повышения. Кишинев: Штиница, 1992.- 146 с.
  41. Л.А. Хроматография белков и нуклеиновых кислот. М.: Наука, 1985. -536 с.
  42. М.Н., Гручушкина H.H., Азова Л. Г., Семенова Е. В., Мыльникова С. И. Руководство к практическим занятиям по микробиологии / под ред. Н. С. Егорова. -М.: Изд-во МГУ, 1983. 220 с.
  43. H.A. Растительно-микробные симбиозы как эволюционный континуум // Журнал общей биологии. 2009. — Том 70, № 1, С. 10 — 34.
  44. О. Ионообменные разделения в аналитической химии: Пер. с англ. -М.: Химия, 1966.-416 с.
  45. П.Г., В.В. Малцйцев, И. М. Богданова, Солопова О. Н. Введение в молекулярную иммунологию и гибридомную технологию. М.: Из-во МГУ, 2006.-321 с.
  46. Т.Ф., Оводов Ю. С. Физические свойства липополисахаридов граммотрицательных бактерий // Биол. мембраны. 1992. — Т. 9, № 3. — С. 245 -258.
  47. A.C. Спектрофотойетрическое определение суммарного количества нуклеиновых кислот // Биохимия. 1958. — Т. 23, № 5. — С. 656 — 662.
  48. Г. М., Тульская Е. М., Шашков A.C., Евтушенко Л. И., Таран В. В., Наумова И. Б. Тейхоевые кислоты клеточных стенок Nocardiopsis lesteri, Nocardiopsis lucenensis и Nocardiopsis tregalose II Биохимия. 1998. Т. 63, № 2.-С. 230−234.
  49. В.Д., Левашов B.C., Борисов Л. Б. Микробиология. М.: Медицина, 1983.-512 с.
  50. М. В. Биологически активные вешества гриба ботри-тис (Botrytis cmerea). II Прикл. биохим. микробиол. 1985. — Т. 21. — Вып. 6. — С. 707−713.
  51. О.С., Шашков A.C. Масс-спектрометрия и ЯМР-спектроскопия в установлении структуры полисахаридов // Успехи химии углеводов / Под ред. И. В. Торгова. М.: Наука, 1985. — С. 30 — 54.
  52. П.А. Теоретические и практические вопросы взаимодействия в системе макроорганизмы микроорганизмы // Сельскохозяйственная микробиология в XIX—XXI вв.еках: Тез. докл. Всерос. Конф., 25−28 сентября 2001 г.-СПб, 2001.-С. 80−81.
  53. А.С., Чижов О. С. Спектроскопия 13С-ЯМР в химии углеводов и родственных соединений // Биоорг. химия. 1976. — Т. 2, № 4. — С. 437 — 497.
  54. Р., Боденхаузен Дж., Вокаун А. ЯМР в одном и двух измерениях: Пер. с англ. М.: Мир, 1990. — 709 с
  55. Adams G.A. Extraction of lipopolysaccharides from gram-negative bacteria with dimethyl sulfoxide // Can. J. Biochem. 1967. — V. 45. — P. 422 — 426.
  56. Albus U, Baier R, hoist O, Piihler A, Niehaus K. Suppression of an elicitor-induced oxidative burst reaction «in Medicago sativa cell cultures by Sinorhizobium meliloty lypopolysaccharides // New phytol. 2001. — V. 151. — P. 597 — 606.
  57. Alexander C., Rietschel E.Th. Bacterial lipopolysaccharides and innate immunity // J. Endotox. Res. 2001. — V. 7,№ 3.-P. 167−202.
  58. Alexander D.C., Valvano M.A. Role of the rfe gene in the biosynthesis of thei
  59. Escherihia coli 07-specific lipopolysaccharide and other O-specific polysaccharides containing N-acetylglucosamine // J. Bacterid. 1994. — V. 176. -P. 7079−7084.
  60. Al-Qutub M.N., Braham P.H., Karimi-Naser L.M., Liu X., Genco C.A., Darveau R.P. Hemin-Dependent Modulation of the Lipid A Structure of Porphyromonas gingivalis Lipopolysaccharide // Infection and Immunity. 2006. — V. 74, № 8. -p. 4474−4485.
  61. Arata S., Hirayama T., Kasai N. Isolation of 9-hydroxy-d-tetradecalactone from Lipid A from Pseudomonas diminuta and Pseudomonas vesicularis II FEMS Microbiol. Lett. 1989. — V. 60, № 2. — P. 219 — 222.
  62. Aspinall G.O. Chemical characterization and structure determination of polysaccharides // The Polysaccharides / Ed. G.O. Aspinall. New York: Acad. Press, 1982.-V. l.-P. 135−131.
  63. Atkins E.D.T., Attwool, P.T., Miles M.J., Morris V.J., O’Neill M.A. and Surtherland I.W. Effect of acetilation on the macromolecular and interactions gelling properties of a bacterial polysaccharide Internat. // J. Biol. Macromol. -1989. P. 115−117.
  64. Atkins, E.D.T., Biomolecular structures of naturally occurring carbohydrate polymers // Intrernal. J. Biol. Macromol. 1986. — V. 8. — P. 323 — 329.
  65. Aucklen H.M., Wilkinson S.G., Pitt T.Z. Immunochemical characterization of two new serotypes of Serratia marcescens (027 and 028) // FEMS Microbiol. Lett. -1996.-V. 138.-P. 74−82.
  66. Baldani J. I., Baldani V. L. D., Sampaio M. J., and Dobereiner J. A found Azospirillum species from cereal roots // An. Acad. Bras. Cienc. 1984. — V. 56. -P. 365 -368.
  67. Baldani J. I., Baldani V. L. D., Seldin L., and Dobereiner J. Characterization of Herbaspirillum seropedicae gen. nov., sp. nov., a root-associated nitrogen-fixing bacterium // Int. J. Syst. Bacteriol. 1986. — V. 36. — P. 86 — 93.
  68. Baldani J.I., Baldani V. L. D.» and Dobereiner J. Genus Herbaspirillum II Bergey’s manual of Syystimatic bacteriology / Ed. D.K. Boone, R.W. Kastenholz. New York: Springer, 2003. — V. 1. — P. 198 — 200.
  69. Baldani J.I., Caruso L., Baldani V.L.D., Gop S.R., Dobereiner J. Recent advances in bnf with non-legume plants // Soil Biol. Biochem. 1997. — V. 29, № 5/6. — P. 911 -922.
  70. Baldani V.L.D., Baldani J.I., Dobereiner J. Inoculation of rice plants with the endophytic diazotrophs Herbaspirillum seropedicae and Burkholderia spp. // Biol. Fertil. Soils. 2000. — V. 30. — P. 485 — 489.
  71. Bashan Y., Holguin G. Azospirillum plant relationships: environmental and physiological advances (1990 — 1996). // Can. J. Bacteriol. — 1997. — V. 43. — P. 103 -121.
  72. Bastin D.A., Reeves P.R. Sequence and analysis of the O antigen gene (rfb) cluster of Escherihia coli 0111// Gene. 1995. — V. 164. — P. 17 — 23.
  73. Bax A., Lerner L. Two-dimensional nuclear magnetic resonance spectroscopy // Science. 1986. — V. 232, № 4753. — P. 960 — 967.
  74. Bedini E., de Castro C., Erbs G., Dow J.M., Newman M.-A., Parrilli M., Unverzagt C. Structure-dependent modulation of a pathogen response in plants by synthetic O-antigen polysaccharides // J. Am. Chem. Soc. 2005. — V. 127. — P. 2414−2416.
  75. Belunis C.J., Clements T., Carty S.M., Raetz C.R. Inhibition of lipopolysaccharide biosynthesis and sell growth following inactivation of the kdtA gene in Escherihia coli II J. Biol. Chem. 1995. — V. 270. — P. 27 646 — 27 652.
  76. Berenblum I., Chain E. An improved method for the colorimetric determination of phosphate // Biochem. J. 1938. — V. 32, № 2. — P. 295 — 298.
  77. Beynon L.M., Cox A.D., Taylor C.J., Wilkinson S.G., Perry M.B. Characterization of a lipopolysaccharide containing two different trisaccharide repeating units from Burkholderia cepacia sertype E (02) // Carbohydr. Res. 1995. — V. 272. — P. 231 -239.
  78. Bishop D.G., Hewett M.J., Knox K.W. Occurrence of 3-hydrohytridecanoic and 3-hydroxypentadecanoic acids in the lipopolysaccharides of Veillonella II Biochim. Biophys. Acta. 1971. — V. 231, № 2. — P. 274 — 276.
  79. Bock K., Pedersen C. Carbon-13 nuclear magnetic resonance spectroscopy of monosaccharides // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 1983. — V. 41. — P. 27 -66.
  80. Bogatyrev V.A., Dykman L.A., Matora L.Yu., Schwartsburd B.I. The serotyping of Azospirillum spp by cell gold immunoblotting // FEMS Microbiol. Let. 1992. -V. 96. — P. 115−118.
  81. Boivin A., Mesrobeanu J., Mesrobeanu L. Technique pour la preparation des polysaccharides microbiens specifiques // Ibid. 1943. — V. 113, № 21. — P. 490 -492.
  82. Boivin A., Mesrobeanu J., Mesrobeanu L. Extraction d’un complexe toxique et antigenique a partir du bacilli d’aertrycke // C. R. Soc. Boil. 1933. — V. 114, № 30.-P. 307−310.
  83. Borneleit P., Blechschmidt B., Blasig R., Franke P., Gunter P., Kleber H.-P. Preparation of R-type lipopolysaccharides of Acinetobacter calcoaceticus by EDTA-salt extraction 11 Curr. Microbiol. 1989. — V. 19. — P. 77 — 81.
  84. Bredford M. A rapid and sentive method for protein analysis the principe of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. — V. 72. — P. 248 — 254.
  85. Brisson J.R., Sue S.C., Wu W.G., Manus G., Nghia P.T., Uhrin D. // NMR Spectroscopy of Glycoconjugates / Eds. Jimenez-Barbero J., Peters T. Weinhem: Wiley — VCH, 2002. — P. 59 — 93.
  86. Bugert P, Geider K. Molecular analysis of the ams operon required for exopolysaccharide synthesis of Erwinia amylovora II Mol Microbiol. 1995. — V. 15.-P. 917−933.
  87. Bull C.T., Weller D.M., and Thomashow L.S. Relationship between root colonization and suppression of Gaeumannomyces graminis var. tritici by Pseudomonas fluuorescens strain 2−79 // Phytopathology. 1991. — V. 81. — P. 954−959.
  88. Calix J.J., Nahm M.H.', Zartler E.R. Elucidation of structural and antigenic properties of Pneumococcal serotype 11 A, 11B, 11C, and 1 IF polysaccharide capsules // J Bacteriol. 2011 — V. 193, № 19. — P. 5271 — 5278.
  89. Carlson R.W., Busch M., Mayer H. Distribution and phylogenetic significance of 27-hydroxyoctacosanoic acid in lipopolysaccharides from bacteria belonging to the a-2 subgroup of Proteobacteria II J. Syst. Bacteriol. 1991. — V. 41, № 2. — P. 213 — 217.
  90. Caroff M., Karibian D. Structure of bacterial lipopolysaccharides // Carbohydr. Res. 2003. — V. 338. — P. 2431 — 2447.
  91. Choma A. Fatty acid composition of Mesorhizobium huakuii lipopolysaccharides. Identification of 27-oxooctacosanoic acid // FEMS Microbiol. Lett. 1999. — V. 177, №. 2. — P. 257 — 262.
  92. Choma A., Komaniecka I. Characterization of a novel Lipid A structure isolated from Azospirillum lipoferum lipopolysaccharide // Cabohydr. Res. 2008. -V. 343.-P. 799−804.
  93. Ciucanu I., Kerek F. A simple and rapid method for the permethylation of carbohydrates // Carbohydr. Res. 1984. — V. 131, № 1. — P. 209 — 217.
  94. Coenye, T., and Vandamme P. Diverdity and cignificance of Burkholderia species occupying diversr ecological niches // Environ. Microbiol. 2003. — V. 5. -P. 719−729.
  95. Conrad H.E. Methylation of carbohydrates with methyl iodide in dimetyl sulfoxide in the presence of methylsulfinyl-anion // Meth. Carbohydr. Chem. -1972.-V. 6.-P. 361 -364.
  96. Crutchley M.J., Marsh D.G., Cameron J. Biological studies on free endotoxin and non-toxin material from culture supernatant fludies of Escherihia coli 078K80 // J Gen Microbiol. 1968. — V. 50, № 3. — P. 413 — 420.
  97. Crutchley M.J., Marsh D.G., Cameron J. Free endotoxin // Nature. 1967. -V. 214, № 5091.-P. 102- 103.
  98. Corsaro M.M., De Castro C., Molinaro A., Parrilli M. Structure of lipopolysaccharides from phytopathogenic bacteria // Recent Res Develop Phytochem. -2001. -V. 5. P. 119−138.
  99. Coulon C., Vinogradov E., Filloux A., Sadovskaya I. Chemical analysis of cellular and extracellular carbohydrates of a biofilm-forming strain Pseudomonas aeruginosa PAH // PLoS One. 2010. — V. 5, № 12. — P. 1 — 10.
  100. Cuicanu I., Kerek F. A simple and rapid method for the permetylation of carbohydrates // Carbohydr. Res. 1984. — V. 131. — P. 209 — 217.
  101. Cadieux J. E., Kuzio J., Milazzo F.H., Kropinski A.M. Spontaneous release of lipopolysaccharide by Pseudomonas aeruginosa II J. Bacteriol. 1983. — V. 155, № 2.-P. 817- 825.
  102. De Boer W.R., Kruyssen F.J., Wouters J.T., Kruk C.M. The structure of teichoic acid from Bacillus subtilis var, niger WM as determined by C nuclear-magnetic-resonance spectroscopy // Eur. J. Biochem. 1976. — V. 62, № 1. — P. 1 -6.
  103. Del Gallo M., Negi M., Neyra C. Calcofluor and lectin-binding exocellular polysaccharides of Azospirillum brasilense and Azospirillum lipoferum II J. Bacteriol. 1989.-V. 171.-P. 3504−3510.
  104. Desaki Y, Miya A, Venkatesh B, Tsuyumu S, Yamane H, Kaku H, Minami E, Shibuya N. Bacterial lipopolysaccharides induce defense responses associated with programmed cell death in rice cells // Plant cell Physiol. 2006. — V. 47. — P. 1530- 1540.
  105. Ding L., Seto B.L., Ahmed S.A., Coleman W.G. Purification and properties of the Escherihia coli K-12 NAD-dependent nucleotide diphosphosugar epimerase, ADP-L-glycero-D-mannoheptose-6-epimerase // J. Boil. Chem. -1994. V. 269. — P. 24 384 — 24 390.
  106. Dmitriev B.A., Ehlers S., Rietschel E.T. Layer murein revisited: a fundamentally new concept of bacterial cell wall structure, biogenesis and function // Med. Microbiol. Immunol. (Berl). 1999. — V. 187. — P. 173 — 181.
  107. Dobereiner J., and Baldani. V.L.D. Nitrogen fixation with non-legumes: Biological nitrogen fixation by the endophytic diazotrophs in non-leguminous crops in the tropics / Ed. K.A. Malik, J.K. Ladha. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1998.-P. 3−7.
  108. Dobereiner J. History and new perspectives of diasotrophs in associations with non-leguminous plants // Symbiosis. 1992a. — V. 13.-P. 1−13.
  109. Dobereiner J. Recent changes in concepts of plant bacteria interactions: Endophytic N2 fixing bacteria // Ciencia e Cultura. 19 926. — V. 44. — P. 310 -313.
  110. Domenico Ph., Diedrich D.L.,. Straus D.C. Extracellular polysaccharide production by Klebsiella pneumoniae and its relationship to virulence // Can. J. Microbiol. 1985. — V. 31, № 5. — P. 472 — 478.
  111. Dow J.M., Newman M.-A., Roepenack E. The induction and modulation of plant defense responses by bacterial lipopolysaccharides // Annu. Rev. Phytopathol. 2000. — V. 38. — P. 241 — 261.
  112. Dow M., Molinaro' A., Cooper R.M., Newman M.-A. Microbial glicobiology: structures Relevance and Applications: Microbial glycosylated components in plant disease / Ed. A. Moran, P. Brennan, O. Hoist. San Diego: Elsevier, 2009. — P. 803 — 820.
  113. Dubois M., Gilles K. A., Hamilton J. K., Rebers P. A., Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances // Anal. Chem. 1956. — V. 28, № 3. — P. 350 — 356.
  114. Dykman L.A., Matora L.Yu., Bogatyrev V.A. Use of colloidal gold to obtain antibiotin antibodies // J. Microbiol. Meth. 1996. — V. 24. — P. 247 — 248.
  115. Falk E.C., Johnson J.L., Baldani V.L.D., Dobereiner J., and Krieg N.R. Deoxyribonucleic and ribonucleic acid homology studies of the genera
  116. Azospirillum and Conglomeromona II Int. J. Syst. Bacteriol. 1986. — V 36. — P. 80−85.
  117. Fedonenko Y.P., Zatonsky G.V., Konnova S.A., Zdorovenko E.L., Ignatov V.V. Structure of the O-specific polysaccharide of the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense Sp245 // Carbohydr. Res. 2002. — V. 337. — P. 869 -872.
  118. Fett W.f., Osman S.F., Fishman M.R., Siebles T.S. Alginate production by plant pathogenic Pseudomonas II Appl. Environ. Microbiol. 1986. — V. 52, № 3. -P. 466−473.
  119. Fontaine T., Stephan M.P., Debarbieux L., Previato J.O., Mendon9a-Previato L. Lipopolysaccharides from six strains of Acetobacter diazotrophicus II FEMS Microboil. Lett. 1995. — V. 132. — Issue 1 — 2. — P. 45 — 50.
  120. Galanos C. Physical state and biological activity of lipopolysaccharides. Toxicity and immunogenicity of the lipid A component // Z. Immunol. Forsch. -1975.-V. 149. P. 214 — 216.
  121. Galanos C., Luberitz O., Westohal O. A new method for the extraction of R lipopolysaccharides // Eur. J. Biochem. 1969. — V. 9, № 2. — P. 245 — 249.
  122. Galanos C., Luderitz O. Electrodialysis of lipopolysaccharides and their conversion to uniform salt forms // Eur. J. Biochem. 1975. — V. 54. — P. 603 -610.
  123. Gerber I.B., Zeidler D., Durner J., Dubery I.A. Early perception responses of Nicotiana tabacum cells in response to lipopolysaccharides from Burcholderia cepacia II Planta. 2004. — V. 218. — P. 647 — 656.
  124. Gervig G.J., Kamerling J.P., Vliegenthart J.F.G. Determination of the D and L configuration of neutral monosaccharides by high-resolution capillary g.l.c. // Carbohydr. Res. 1978. — V. 62. — P. 349 — 357.
  125. Gil J.F., Hoyos C.L., Cimino R.O., Krolewiecki A.J., Lopez Quiroga I., Cajal S.P., Juarez M., Garcia Bustos M.F., Mora M.C., Marco J.D., Nasser JR.B.
  126. Role of three ELISA tests using promastigote homogenates of Leishmania braziliensis, L. amazonensis and L. guyanensis in the diagnosis of tegumentary leishmaniasis // Medicina (B Aires). 2011. — V. 71, № 5. — P. 420 — 428.
  127. Goldman R.C., Leive L. Electroforetic separation of lipopolysaccharide monomers differing in polysaccharide length // Meth. Enzymol. 1987. — V. 138. -P. 267−275.
  128. Goldstein I.J., Hay J.W., Lavis B.A., Smith F. Controlled degradation of polysaccharides by periodate oxidation, reduction, and hydrolysis // Meth. Carbohydr. Chem. 1965. — V. 5. — P. 361 — 370.
  129. Gorshkova R.P., Isakov V.V., Zubrov V.A., Ovodov Y.S. Structure of the O-specific polysaccharide of lipopolysaccharide from Yersinia bercovieri 0:10 // Bioorg. Chem. 1994.-V. 20.-P. 1231 — 1235.
  130. Gross M., Rudolph K. Characterization of leval, alginate and «LPS» // J. phytopathol. 1987. — V. 119, № 3.-P. 206−215.
  131. Gusso CL, Rigo LU, Pedrosa FO, Yates MG, et. al. Effect of an ntrC mutation on amino acid or urea utilization and on nitrogenase switch-off in Herbaspirilium seropedicae II Can. J. Microbiol. 2008. — V. 54. — P. 235 — 239.
  132. Gyaneshwar P.E.K., James P.M. Reddy B., Reinhold-Hurek, and Ladha J.K. Herbaspirillum colonization increases growth ant nitrogen accumulation in aluminium tolerant rice varieties // New Phytol. 2002. — V. 154. — P. 131−146.
  133. Hakomori S.-I. A rapid permetylaion of glicolipids and polysaccharides catalyzed by methylsulfinyl carbanion in dimethylsulfoxide // J. Biochem. 1964. — V. 55.-P. 205−208.
  134. Heike R.U.S., Freudenberg M., Weckesser J., Mayer H. Lipopolysaccharide of Rhodospirillum salinarum 40: structural studies on the core and lipid A region // Arch. Microbiol. 1995. — V. 164. — P. 280 — 289.
  135. Heimer R., Glick D.L., Abruzzo J.L. The detection of antigens in immune complexes II Scand. J. Immunol. 1981. — V. 13, № 5. — P. 441 — 446.
  136. Hitchcock P. J., Brown T.M. Morphological heterogeneity among Salmonella lipopolysaccharide chemotypes in silver-stain polyacrylamide gels // J. Bacterid. 1983.-V. 154.-P. 269−277.
  137. Hols O., Ulme A. J., Brade H., Fla H.-D., Rietsche E. T. Biochemistry and cell biology of bacterial endotoxins // FEMS Immunol. Med. Microbiol. 1996. -V. 16.-P. 83 — 104.
  138. Hoist O., Brade H. Chemical structure of the core region of bacterial lipopolysaccharides // Bacterial Endotoxic Lipopolysaccharides / Ed. D.C. Morrison, J.I. Ryan. Boca Raton: CRC Press, 1992. — V. 1. — P. 135 — 170.
  139. Iida T., Haishima Y., Tanaka A., Nishiyama K., Saito S., Tanamoto K. Chemical structure of lipid A isolated from Comamonas testosteroni lipopolysaccharide // Eur. J. Biochem. 1996. — V. 237, № 5. — P. 468 — 475.
  140. Im W.-T., Bae H.-S., Yokota A., and Lee S.T. Herbaspirillum chlorophenolicum sp. nov., a 4-chlorophenol-degrading bacterium // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2004. — V. 54. — P. 851 — 855.
  141. James E.K., Olivares F.L., Baldani J.I., Dobereiner J., Moench L. Herbaspirillum, an endophytic diazotroph colonizing vascular tissue in leaves of Sorghum bicolor II J. Experimental Botany. 1997. — V. 48. — P. 785 — 789.
  142. Jann B., Jann K. Capsules of Escherichia coli II Escherichia colv. Mechanisms of Virulence / Ed. M. Sussman. Cambridge: Cambridge University Press, 2001.-P. 113−143.
  143. Jann B., Jann K. Structure and biosynthesis of the capsular antigens of E. coli II Curr. Top. Microbiol. Immunol. 1990. — V. 150. — P. 19 — 42.
  144. Jann K., Jann B. Biochemistry and expression of bacterial capsules // Biochem. Soc. Trans. 1991,-V. 19.-P. 623 -628.
  145. Jansson P.E., Kenne L., Leigren H., Lindberg B., Lonngren J. A practical guide to the methylation analysis of carbohydrates // Chem. Commun. Univ. Stockholm. 1976. — V. 8. — P. 1 — 75.
  146. Jansson P.E., Kenne L., Lindbreg B. Structure of extracellular polysaccharide from Xanthomonas campestris II Carbohidr. Res. 1975. — V. 45. -P. 275−282.
  147. Johnson K.G., Perry M.B., Mc Donald I.J., Russell R.R.B. Cellular and free lipopolysaccharides of some species of Neisseria II Can. J. Microbiol. 1975. — V.21, № 12.-P. 1969- 1980.
  148. Johnson K.J., Mc Donald I.J., Perry M.B. Studies on the cellular and free lipopolysaccharide from Branhamella catarralis II Can. J. microbial. 1976. — V.22, № 4.-P. 1969- 1980.
  149. Jung S.Y., Lee M.H., Oh T.K., Yoon J.H. Herbaspirillum rhizosphaerae sp. nov., isolated from rhizosphere soil of Allium victorialis var. platyphyllum // Int J Syst. Evol. Microbiol. 2007. — V. 57, № 10. — P. 2284 — 2288.
  150. Kabat E.A. Basic principles of antigen-antibody reaction // Meth. Enzymol. Immunochemical Techniques. New York: Academic Press, 1980. — V. 70. — P. 3 -49.
  151. Kabat E.A. Structural concepts on immunology and immunochemistry. i
  152. New York: Holt Rinehardt Winston, 1976. 547 p.
  153. Kadowaki T., Inagawa H., Kohchi C., Hirashima M., Soma G. Functional characterization of lipopolysaccharide derived from symbiotic bacteria in rice as a macrophage-activating substance // Anticancer Res. 2011. — V. 31, № 7. — P. 2467−2476.
  154. Kannenberg E.L., Carlson R.W. Lipid A and O-chain modifications cause Rhizobium lipopolysaccharides to become hydrophobic during bacteroid development // Mol. Microbial. 2001. — V. 39. — P. 379 — 391.
  155. Karkhanis D., Zeltner Y., Jackson J., Carlo J. A new and improved microassay to determing 2-keto-3-deoxyoctnate in lipopolysaccharide of gramnegative bacteria // Anal. Biofchem. 1978. — V. 85, № 2. — P. 595 — 601.
  156. Karlsson C., Jansson P.E., Wollin R. Structure of the O-polysaccharide from the LPS of a Hafnia alvei strain isolated from a patient with suspect yersinosis // Carbohydr. Res. 1997. — V. 300. — P. 191 — 197.
  157. Kasai N., Nowotny A. Endotoxic glycolipid from a heptoseless mutant of Salmonella minnesota II J. Bacteriol. 1967. — V 94. — P. 1824 — 1836.
  158. Kato H., Iida T., Haishima Y., Tanaka A., Tanamoto K. Chemical structure of lipid A isolated from Flavobacterium meningosepticum lipopolysaccharide // J. Bacteriol. 1998.-V. 180, № 15.-P. 3891 -3899.
  159. Kauffmann F., Liideritz O., Stierlin H., Westphal O. Zur Immunchemie der O-Antigene der Enterobacteriaceen. I. Analyse der Zuckerbausteine von Salmonella-O-antigenen // Zentralbl. Bakt. I Orig. 1960. — V. 178. — S. 442 -458.
  160. Keenleyside W.J., Perry M., Mac Lean L., Poppe C., Whitfield C. A plasmid-encoded rfb 0:54 g^ne cluster is required for biosynthesis of the 0:54 antigen in Salmonella enterica serovar Borreze // Mol. Microbiol. 1994. — V. 11. -P. 437−448.
  161. Kenne L., Lindberg B. Bacterial polysaccharides // The polysaccharides, Vol. 2 / Ed. G.O. Aspinall. Orlando: Academic Press, 1983. — P. 287 — 363.
  162. Kim Y.B., Watson D.W. Biologically active endotoxins from Salmonella mutants deficient in O- and R-polysaccharides and heptose // J. Bacteriol. 1967. -V. 94.-P. 1320- 1326.
  163. Kirchhof G.B., Eckert M., Stoffels J.I., Baldani V.M., Reis A., and Hartmann A. Herbaspirillum frisingense sp. nov., a new nitrogen-fixing bacterial species that occurs in C4-fibre plants // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. — V. 51. P. 157- 168.
  164. Klassen G., Pedrosa F.O., Souza E.M., Funayama S., Rigo L.U. Effect of nitrogen compounds on nitrogenase activity in Herbaspirillum seropedicae strain SmRl // Can J Microbiol. 1997. — V. 43. P. 841 — 846.
  165. Kloepper J.W., Beauchamp C.J. A review of issues related to measuring colonization of plant roots by bacteria // Can. J. Microbiol. 1992. — V. 38. — P. 1219 — 1232.
  166. Knirel Yu.A., Vinogradov E.V., Mort A.J. Applicatoin of anhydrous hydrogen fluoride for the structural analysis of polysaccharides // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem.- 1989.-V. 47.-P. 167−202.
  167. Koch A.L., Woeste S.W. The elasticity of the sacculus of Esherichia coli II J. Bacteriol. 1992,-V. 174.-P. 4811 -4819.
  168. Kocharova N.A., Blaszczyk A., Zatonsky G.V., Torzewska A., Bystrovai
  169. O.V., Shashkov A.S., Knirel Yu.A. Structure and cross-reactivity of the O-antigen of Providencia stuartii 018 containing 3-acetamido-3,6-dideoxy-D-glucose and Antoni Rozalskib II Carbohydr. Res. 2004. — V. 339. — P. 409 — 413.
  170. Kocharova N.A., Katzenellenbogen E., Zatonsky G.V., Gamian A., Brzozowska E., Shashkov A.S., Knirel Yu.A. Structure of the O-polysaccharide of Citrobacter youngae PCM 1503 // Carbohydr Res. 2010. — V. 22- № 17. — P. 2571 -2573.
  171. Kondo S., Hisatsune K. Rapid preparation of samples for compositional sugar analysis of the «degraded polysaccharide» fraction of lipopolysaccharides from Vibrio cholerae II Microbiol. Immunol. 1988. — V. 32. — P. 907 — 915.
  172. Krauss J.H., Seydel U., Weckesser J., Mayer H. Structural analysis of the nontoxic lipid A of Rhodobacter capsulatus 37b4 // Eur.J. Biochem. 1989. — V. 180, № 3,-P. 519−526.
  173. Kumada H., Haishima Y., Umemoto T., Tanamoto K. Structural study on the free lipid A isolated from the lipopolysaccharide of Porphyromonas gingivalis II J. Bacteriol. 1995. — V. 177, № 8. — P. 2098 — 2106.
  174. Lacave C., Asselineau J., Serre A., Roux J., Comparison of the chemical composition a lipopolysaccharide fraction and of a polysaccharide fraction isolated from Brucella melitensis II Europ. J. Biochem. 1969. — V. 9. — P. 189 — 198.
  175. Lambrecht M., Okon Y. A., Vande B., and Vanderleyden J. Indol-3-acetic acid: A signaling molecule in bacteria-plant interactions // Trends Microbiol. -2000.-V. 8.-P. 298−300.
  176. Lebbar S., Haeffner-Cavaillon N" Karibian D" Le-Beyec Y., Caroff M. 252 Cf-plasma desorption mass spectrometry analysis of lipids A obtained by an elimination reaction under mild conditions // Rapid. Commun. Mass Spectrom. -1995.-V. 9.-P. 693−696.,
  177. Lee C.-J. Bacterial capsular polysaccharides-biochemistry, immunity and vaccine // Mol. Immunol. 1987. -V. 24. — P. 1005 — 1019.
  178. Leontein K., Lindberg B., Lonngren J. Assigment of absolute configuration of sugars by g.l.c. of their acetylated glycosides formed from chiral alcohols // Carbohydr. Res. 1978. — V. 62. — P. 359 — 362.
  179. Lerouge I., Vaanderleyden J. O-antigen structural variations: Mechanisms and possible roles in animal/plant-microb interactions // FEMS Microbiol Rev. -2002.-V. 26.-P. 17−47.
  180. Lindberg A.A., Holme T. Evaluation of some extraction methods for the preparation of bacterial lipopolysaccharides for structural analysis // Microbiol. Immunol. 1972. — V. 80. — P. 751 — 759.
  181. Lipkind G.M., Shashkov A.S., Mamyan S.S., Kochetkov N.K. The nuclear Overhauser effect and structural factors determining the conformations of disaccharide glycosides // Carbohydr. Res. 1988. — V. 181. — P. 1 — 12.
  182. Liideritz O., Galanos C., Risse HJ et al. Structural relationships of Salmonella O and R antigens // Ann. NY Acad Sci. 1966. — V. 133. — P. 349 -347.
  183. Lugtenberg B., van Aphen L. Molecular architecture and functioning of the outer membrane of E. coli and other Gram-negative bacteria // Biochem. Biphis. Acta. 1983, — V. 737.-P. 51 — 115.
  184. Maitra S.K., Nachum R., Pearson F.C. Establishment of beta-hydroxy fatty acids as chemical marker molecules for bacterial endotoxin by gas chromatography-mass spectrometry // Appl. Environ. Microbiol. 1986. — V. 52. -P. 510−514.
  185. Manneewannakul K., Manneewannakul S. Ippen-Ihler K. Synthesis of F pilin.//J. Bacterid. 1993.-V. 175. — P. 1384 — 1391.
  186. Marsh D.G., Fett W.F., OsmanS.F., Fishman M.R., Siebles T.S. Alginate production by plant pathogenic Pseudomonas II Appl. Environ. Microbiol. 1986. -V. 52, № 3,-P. 466−473.
  187. Marsh D.G., Crutchley M.J., Purification and physiko-chemical analysis of fractions from the culture supernatant of Escherihia coli 078K80. Appl. Environ. Microbiol. 1988. — V. 52, № 2. — P. 566 — 573.
  188. Masound H., Mayer H., Kontrohr T., Hoist O., Weckesser J. The structure of the core region of the lipopolysaccharide from rhodocyclus gelatinosus // Arch. Microbial. 1991. — V. 12. — P. 222 — 227.
  189. Mayer H., Tharanathan R.N., Weckesser J. Analysis of lipopolysaccharides of Gram-negative bacteria // Meth. Microbiol. 1985. — V. 18. — P. 157 — 207.
  190. Meyer A., Puhler A., Niehaus K. The lipopolysaccharides of the phytopathogen Xanthomonas campestris pv campestris induce an oxidative burst reaction in cell cultures of Nicotiana tabacum II Planta. 2001. — V. 213. P. 214 -222.
  191. Mobley H.L.T, Mendz G.L., Hazell S.L., Helicobacter pylori Physiology and Genetics. Washington (DC): ASM Press, 2001. — 319 p.
  192. Model P., Russel M. The bacteriophages. New York: Plenum, 1988. — P. 456.
  193. Mora A. P. Structure-bioactivity relationships of bacterial endotoxins // J. Toxicol. Toxin Rev. 1994. — V. 14. P. 47 — 83.
  194. Mora L., and Newton W.E. Isolation, identification and localisation of diazotrophic bacteria from C4-plant Miscanthu II New Horizons in Nitrogen fixation / Ed. B.Eckert. Dordrecht: Kluwer academic publishers, 2008. — 705 p.
  195. Morgan W.T.J., Partridge S.M. Studies in immunochemistry. The use of phenol and of alkali in the degradation of antigenic material isolated from Bact. dysenteriae (Shiga) // Biochem. J. 1941. — V. 35. — P. 407 — 417.
  196. Munford R.S., Hall C.L., Rick P.D. Size heterogeneity of Salmonella typhinumirium lipopolysaccharides in outer membranes and culture supernatant membrane fragments // J. Bacteriol. 1980. — 144, № 2. — P. 630 — 640.
  197. Munford R.S., Varley A.W. Shield as Signal: Lipopolysaccharides and the Evolution of Immunity to Gram-Negatiye Bacteria // PLoS Pathogens. 2006. -V. 2.-Issue 6.-P. 467−471.
  198. Nazarenko E.L., Crawford R.J., Ivanova E.P. The structural diversity of carbohydrate antigens of selected gram-negative marine bacteria // Mar Drugs. -2011.-V. 9,№ 10.-P. 1914- 1954.*
  199. Nazir R., Warmink J. A., Boersma H. and Dirk J. V. Elsas Mechanisms that promote bacterial fitness in fungal-affected soil microhabitats // FEMS Microbiology Ecology.-2010,-V. 71. Issue 2. — P. 169- 185.
  200. Newman M.-A., Dow J.M., Molinaro A., Parrilli M. Priming induction andmodulation of plant defense responses by bacteria lipopolysaccharides // J. i
  201. Endotoxin Res. 2007. — V. 13. — P. 69 — 84.
  202. Noindorf L., Bonatto A.C., Monteiro R.A., Souza E.M., Rigo L.U., Pedrosa F.O., Steffens M.B., Chubatsu L.S. Role of PII proteins in nitrogen fixation control of Herbaspirillum seropedicae strain SmRl // BMC Microbiol. -2011.-V. 11,№ 11.-P. 8- 12.
  203. Olivares F. L., James, E. K., Baldani J. I., and Dobereiner J. Infection of mottled stripe disease-susceptible and resistant sugar cane varieties by the endophytic diazotroph Herbaspirillum II New Phytol. 1997. — V. 135. — P. 723 -737.
  204. Ollivier J.S., Towe A., Bannert B. Hai E.-M., Kastl A., Meyer M., Xia Su, Kleineidam K. and Schloter M. Nitrogen turnover in soil and global change // FEMS Microbiology Ecology. 2011. — V. 78. — Issue 1. — P. 3 — 16.
  205. Orskov F., Sharma V., Orskov I. Influence of growth temperature on the development of Escherichia coli polysaccharide K antigens // J. Gen. Microbiol. -1984. V. 130. — P. 2681 — 2684.
  206. Parker J.H., Smith G.A., Fredrickson H.L., Vestal J.R., White D.C. Sensitive assay, based on hydroxy fatty acids from lipopolysaccharide lipid A, for Gram-negative bacteria in sediments // Appl. Environ. Microbiol. 1982. — V. 44. -P. 1170- 1177.
  207. Pedrosa F.O., Monteiro R.A., Wassem R., Cruz L.M., Ayub R.A. Genome of Herbaspirillum seropedicae strain SmRl, a Specialized Diazotrophic Endophyte of Tropical Grasses // Plos Genet. 2011. — V. 7. — Issue 5. — P. 1 — 10.
  208. Pereira J.A.R., Cavalkante V.A., Baldani J.I., and Dobereiner J. Field inoculation of sorghum and rice with Azospirillum spp. and Herbaspirillum seropedicae II Plant soil. 1988. — V. 10. — P. 269 — 274.
  209. Perepelov A.V., Babicka D., Shashkov A.S., Arbatsky N.P., Senchenkova S.N., Rozalsky A., Knirel Yu.A. Structure and cross-reactivity of the O-antigen of Proteus vulgaris 08 // Carbohydr. Res. 1999. — V. 318. — P. 186 — 192.
  210. Pietscher K., Weckesser J., Fischer U., Mayer H. The lipopolysaccharides of Rhodospirillum rubrum, Rhodospirillum molischianum, and Rhodophila globiformis II Arch. Microbiol. 1990. — V. 154, № 5. — P. 433 — 437.
  211. Pike R.M., Chandler C.H. The spontaneous release of somatic antigen from Vibrio cholerae II J. Gen. Microbiol. 1974. — V. 81, № 1. — P. 59 — 67.
  212. Putnoky P., Petrovics G., Kreszt A., Grosskopf E., Ha D.T.C., Banfalvi Z., i
  213. Kondorosi A. Rhizobium meliloti lipopolysaccharide and exopolysaccharide can have the same function in the plant-bacterium interaction // J. Bacteriol. 1990. -V. 172.-P. 5450 -5458.
  214. Quispel A. A search of signals in endophytic microorganisms // Molecular signals in plant-microbe communications / Ed. D.P.S.Verna. New York: CRC Press, 1992.-P. 471 -491.
  215. Raetz C.R.H. and Whitfiel C. Lipopolysaccharide enotoxins // Annu. Rev. Biochem. 2002. — V. 71, № l.-P. 635−700.
  216. Raetz C.R.H. Reynolds C.M., Trent M.S., and Bishop R.E. Lipid A modification systems in gram-negative bacteria // Annu. Rev. Biochem. 2007. -V. 76, № l.-P. 295 -329.
  217. Reinhold B., Hurek T. Azoarcus sp. strain BH72 as a model for nitrogen-fixing grass endophytes // Journal of Biotechnology. 2003. — V. 106. — P. 169 -178.
  218. E.T., Brade L., Shade U. // Surface structures of microorganisms and their interactions with the mammalian hosts // Weinheim: Veriag Chemie. -1988. P. 1−41.
  219. Roberto F., Kosuge T. Cytokin production by Pseudomonas savastanoi. // J. cell Biochem. 1986. — V. 10. — P. 36 — 40.
  220. Rocchetta H.L., Burrows L.L., and Jam J.S., Genetics of O-antigen biosynthesis in Pseudomonas aeruginosa II Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1999. -V. 63.-P. 523 -553.
  221. Roppll J., Mayer H., Weckesser J. Identification of a 2,3-diamino-2,3-dideoxyhexose in the lipid A component of lipopolysaccharides // Carbohydr. Res. 1975.-V. 40, № 1.-P. 31−40.
  222. Rothballer M., Schmid M., Klein I., Gattinger A., Grundmann S., Hartmann A. Herbaspirillum hiltneri sp. nov., isolated from surface-sterilized wheat roots // Int J Syst Evol Microbiol. 2006. — V. 56, № 6. — P. 1341 — 1348.
  223. Rothfield L., Pearlnman-Kothencz M. Sythesis and assembly of bacterial membrane components. A lipopolysaccharide-phospholipid-protein complex excreted by living bacteria // J. Mol. Biol. 1969. — V. 44, № 3. — P. 477 — 492.
  224. Russa R., Urbanic-Sypniewska T., Lindstrom K., Mayer H. The structure of the homopolymeric O-specific chain from the phenol soluble LPS of the Rhizobium meliloti type strain NZP 2213 // Carbohydr. Polym. 1995. — V. 27. -P. 299−303.
  225. Savardecker J. S, Sloneker J.H., Jeans A. Quantitative determination of monosaccharides as their alditol acetates by gas liquid chromatography // Anal. Chem. 1965. — V. 37. — P. 1602 — 1603.
  226. Sachdev S. Phage Display In Biotechnology and Drug Discovery. Boca Raton London New York Singapore: Sidhu, 2005. — 308 p.
  227. Saunder N. J., Pede J. F., Hoo D. W., Moxon E. R. Simple sequence repeats in the Helicobacter pylori genome // Mol. Microbiol. 1998. — V. 27. — P. 1091 -1098.
  228. Schmid M., Baldani J.I., Hartman A. The Genus Herbaspirillum II Procaryotes.-2006.-V. 5. P. 141 — 150.
  229. Schnaitman C.A., Klena J.D. Genetics of lipopolysaccharide biosynthesis in enteric bacteria // Microbiol. Rev. 1993. — V. 57. — P. 655 — 682.
  230. Seufferheld M.J., Alvares H.M., Farias M.E. Role of Polyphosphates in Microbial Adaptation to Extreme Environments // Appl. Environ. Microbiol. -2008.-V. 74.-P. 5867−587.
  231. Shashkov A.S., Lipkind G.M., Knirel Yu.A., Kochetkov N.K.13
  232. Stereochemical factors determining the effects of glycosylation on the C chemical shifts in carbohydrates // Magn. Reson. Chem. 1988. — V. 26. — P. 735 -747.
  233. Shibaev V.N. Biosynthesis of bacterial polysaccharide chains composed of repeating units // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 1986. — V. 44. — P. 277 -339.
  234. Silipo A., Erbs G., Shinya T., Maxwell J. Dow, Parrilli M., Lanzetta R., Shibuya N., Newman M.-A., and Molinaro A. Glycoconjugates as elicitors or suppressors of plant innate immunity // Glycobiology. 2010. — V. 20, № 4. — P. 406−419.
  235. Sletmoen M., Maurstad G., Sikorski P., Paulsen B.S., Stokke B.T. Characterisation of bacterial polysaccharides: steps towards single molecular studies // Carbohydr. Res. 2003. — V. 338. — P. 2459 — 2475.
  236. Souza E.M., Pedrosa F.O., Rigo L.U., Machado H.B., Yates M.G. Expression of the nifA gene of Herbaspirillum seropedicae: role of the NtrC and NifA binding sites and of the -24/-12 promoter element // Microbiology. 2000. -V. 146, № 6.-P. 1407- 1418.
  237. Spaink H.P., Kondorosi A., Hooykaas P.J.J. The Rhizobiaceae. Molecular Biology of Model Plant-Associated Bacteria. Dordrecht Boston London: Kluwer Academic Publishers, 1998. 558 p.
  238. Stead D.E. Grouping of plant-pathogenic and some other Pseudomonas spp. by using cellular fatty acid profiles // Int. J. Syst. Bacteriol. 1992. — V. 42, № 2. — P. 281−295.
  239. Sutherland I.W. Structure-function relationships in microbial exopolysaccharides // Biotech Adv. 1994. — V. 12. — P. 393 — 448.
  240. Tanamoto K., Kato H., Haishima Y., Azumi S. Biological properties of lipid A isolated from Flavobacterium meningosepticum II Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2001. — V. 8. — P. 522 — 527.
  241. Taylor A., Knox K.W., Work E. Chemical and biological properties of an extracellular lipopolysaccharide from Escherihia coli grown under lysine-limiting conditions // Biochem. J. 1966. — V. 99, № 1. — P. 53 — 61.
  242. Tsai C.M., Frasch C.E. A sensitive silver stain for delecting lipopolysaccharides in polyacrylamide gels // Anal. Biochem. 1982. — V. 119.-P. 115−119.
  243. Tul’skaya E.M., Shashkov A.S., Evtushenko L.I., Taran V.V., and Naumova I.P. Novel cell-wall teichoic acid from Nocardiopsis albus subsp. albus. as a species-specific marker // Microbiology. 1995. — V. 141. — P. 1851 — 1856.
  244. Tul’skaya E.M., Vylegzhanina K.S., Streshinskaya G.M., Shashkov A.S., and Naumova I.B. New cell wall glycopolymers of the representatives of the genus Kribbella II Biochim. Biophys. Acta. 1991. — V. 1074. — P. 237 — 242.
  245. Unger F.M. The chemistry and biological significance of 2-deoxy-D-manno-2-octulosonic acid (Kdo) // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 1982. — V. 38.-P. 322−387.
  246. Urbanic-Sypniewska T., Seydel U., Grecj M., Weckesser J., Mayer H. Chemical studies on the lipopolysaccharide of Rhizobium meliloty 10 406 and its lipid A region // Arch. Microbiol. 1989. — V. 152, №. 4. — P. 527 — 532.
  247. Van Peer R., and Schippers B. Plant growth response to bacterization with selected Pseudomonas: effect of soil organic matter content, number of rhizophere bacteria and inoculation // Soil Biol. Biochem. 1989. — V. 20. — P. 45 — 49.
  248. Varbanets L.D., Shashkov A.S., Kocharova N.A. Phosphorus-containing glycopolymers of Clavibacter michiganense cell walls // Carbohydr. Res. 1990. -V. 204.-P. 157- 160.
  249. Vinogradov E.V., Bock K., Hoist O., Brade H. The structure of the lipid Acore region of the lipopolysaccharides from Vibrio cholerae 01 smooth strain 569B (Inaba) and rough mutant strain 95R (Ogawa) // Eur. J. Biochem. 1995. — V. 233.-P. 152- 158.
  250. Vinogradov E.V., Brade L., Brade H., Holstb O. Structural and serological characterisation of the O-antigenic polysaccharide of the lipopolysaccharide from Acinetobacter baumannii strain 24 // Carbohydr. Res. 2003a. — V. 338. — P. 2751 -2756.
  251. Wang Z., Li J., Vinogradov E., Altman E. Structural studies of the core region of Aeromonas salmonicida subsp. salmonicida lipopolysaccharide // Carbohydr. Res. 2006. — V. 341.-P. 109 — 117.
  252. Webwer O.B., Cruz L. M., Baldani J. I. and Dobereiner J. Herbaspirillum-like bacteria in babana (Musa sp.) plants // Brasil. J. Microbiol. 2001. — V. 32. -P. 201 -205.
  253. Weckesser J., Mayer H. Different lipid A types in lipopolysaccharides of phototrophic and related non-phototrophic bacteria // FEMS Microbiol. Rev. -1988. V. 54, № 2. — P. 143 — 154.
  254. Weintraub A. Immunology of bacterial polysaccharide antigens // Carbohydr. Res. 2003. — V. 338. — P. 2539 — 2547.
  255. Weintraub A., Zahringer U., Wollenweber H.W., Seydel U., Rietschel E.T. Structural characterization of the lipid A component of Bacteroides fragilis strain NCTC 9343 // Eur. J. Biochem. 1989. — V. 183. — P. 425 — 431.
  256. Weller D.M. Biological control of soilborne plant pathogens in the rizophere with bacteria // Annu. Rev. Phytopathol. 1988. — V. 26. — P. 379 -407.
  257. Wesphal O., Luderitz O. Chemische Erforschung von Lipopolysacchariden Gram-negativer Bacterien // Angew Chemie. 1954. — V. 66. — P. 407 — 414.
  258. Westphal O., Jann K. Bacterial lipopolysaccharides. Extraction with phenol-water and further applications of the procedure // Meth. Carbohydr. Chem. 1965. — V. 5.-P. 83−91.
  259. Westphal O., Luderitz O., Bister F.Z. Uber die Extraktion von Bakterien mit Phenol/Wasser // Z. Naturforsh: Anorg. Chem. Org. Chem. Biochem. Biophys. Biol. 1952. — Bd. 7B. — S. 148 — 155.
  260. Whitfield C., Paiment A. Biosynthesis and assembly of Group 1 capsular polysaccharides in Escherichia coli and related extracellular polysaccharides in other Bacteria // Carbohydr. Res. 2003. — V. 338. — P. 2491 — 2502.
  261. Whitfield C., Roberts I.S. Structure, assembly and regulation of expression of capsules in Escherichia coli II Molecular Microbiol. 1999. — V. 31. — Issue 5. -P. 1307 — 1319.
  262. Whitfield C., Valvano M.A., Biosynthesis and expression of cell-surface polysaccharides in Gram-negative bacteria // Adv. Microb. Physiol. 1993. — V. 35.-P. 135 -246.
  263. Wiese A., Seydel U. Interaction of peptides and proteins with bacterial surface glycolipids: a comparison of glycosphingolipids and lipopolysaccharides // J. Ind. Microbiol. Biotech. 1999. — V. 23. — P. 414 -424.
  264. Wilkinson S.G. Bacterial lipopolysaccharides themes and variation // Prog. Lipid Res. — 1996. — V. 35, № 3. — P. 283 — 343.
  265. Wilkinson S.G., Caudwell P.F. Lipid composition and chemataxonomy of Pseudomonas putrefactions (Alteromonas putrefactions) // J. Gen. Microbiol. -1980. V. 118, № 2. — P. 329 — 341
  266. Williams M.N.V., Hollingsworth R.I., Brzoska P.M., Singer E.R., Rhizobium meliloti chromosomal loci required for suppression of exopolysaccharide mutations, by lipopolysaccharide // J. Bacterid. 1990. — V. 172.-P. 6596−6598.
  267. Wyckoff T.J., Raetz C.R., Jackman J.E. Antibacterial and antiinflammatory agents that target endotoxin // Trends. Microbiol. 1998. — V. 6. -P. 154- 159.
  268. Yadomae T., Yamada H., Miyazaki T. et. Al. Characterization of an extracellular polysaccharide from a Xanthomonas species // Carbohidr. Res. -1978.-V. 60.-P.129- 139.
  269. Yakovleva L.M., Zdorovenko G.M., Gvozdiak R.I., Zacharova I.Ya. Extracellular carbohydrate-containg substances of some phytopathogenic Pseudomonas II 3rd Bratislawa Symposium on saccharides. Bratislawa. -Bratislawa, 1986.-P. 38.
  270. Yao X., Jericho M., Pink D., Beveridge T.J. Thickness and elasticity of gram-negative murein sacculi measured by atomic force microscopy // J. Bacteriol. 1999. — V. 182, № 22.-P."6865−6875.o (c)
  271. Yokota A., Rodrigues M., Yamata I. Lipopolysaccharides of chemolithotrophic bacteria Thiobacillus species containing lipid A with 2,3-diamino-2,3-didideoxyglucose // Arch. Microbiol. 1987. — V. 149, № 2. — P. 106 — 111.
  272. Zakria M., Ohsako A., Saeki Yu., Yamamoto A., Akao Sh. Colonization and growth promotion characteristics of Enterobacter sp. and Herbaspirillum sp. On Brassica oleracea II Soil science and Plant Nutrition. 2008. — V.54. — P. 507 -516.
  273. Zdorovenko E.L., Varbanets L.D., Zatonsky G.V., Ostapchuk A.N. Structures of two putative O-specific polysaccharides from the Rahnella aquatilis 3−95 lipopolysaccharide // Carbohydr. Res. 2006. — V. 341. — P. 164 — 168.
  274. Zdorovenko E.L., Valueva O.A., Varbanets L.D., Shubchinskiy V.V., Shashkov A.S., Knirel Yu.A. Structure of the O-polysaccharide of the lipopolysaccharide of Pragia fontium 97U116 // Carbohydr Res. 2010. — V. 345, № 12. -P. 1812−1815.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!