Π”ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌΡ‹, курсовыС, Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚Ρ‹, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅...
Брочная ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² ΡƒΡ‡Ρ‘Π±Π΅

ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎ-гСнСтичСский Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· локуса Delta Ρƒ Drosophila virilis

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

ИсслСдованиС Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‡ΡŒ Π² Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ практичСских мСдицинских ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌ. ΠžΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠ΅Π½ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΏΠ°Ρ‚ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ Ρƒ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° (болСзнь ΠΠ»ΡŒΡ†Π³Π΅ΠΉΠΌΠ΅Ρ€Π°, синдром CADASIL, Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ Ρ€Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Π΅ ΠΎΠΏΡƒΡ…ΠΎΠ»ΠΈ) ΠΈ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… связаны с ΠΌΡƒΡ‚ациями Π² Π³Π΅Π½Π°Ρ…, Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Delta ΠΈ Notch, ΠΈΠ»ΠΈ с Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΠΌΠΈ Π΄Π΅Ρ„Π΅ΠΊΡ‚Π°ΠΌΠΈ функционирования Delta-Notch-cnmajihtioro ΠΏΡƒΡ‚ΠΈ (Ellisen et al., 1991; Wong, 1997; Struhl et al… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«
  • 1. ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Π΅ этапы Ρ€Π°Π½Π½Π΅Π³ΠΎ Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° Π΄Ρ€ΠΎΠ·ΠΎΡ„ΠΈΠ»Ρ‹
    • 1. 1. Π€ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π·Π°ΠΊΠ»Π°Π΄ΠΊΠΈ
    • 1. 2. Π”ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ° нСйробластов
    • 1. 3. Π”ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ° ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ — ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² сСнсорных ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΎΠ²
  • 2. Π“Π΅Π½Ρ‹, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ Π½Π΅Ρ€Π²Π½ΠΎΠΉ систСмы Π΄Ρ€ΠΎΠ·ΠΎΡ„ΠΈΠ»Ρ‹
  • 3. ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Π΅ Π³Π΅Π½Ρ‹ Delta-Notch сигнальной систСмы D. melanogaster
    • 3. 1. Локус Notch
    • 3. 2. Локус Delta
    • 3. 3. Локус Serrate
  • 4. УчастиС Delta-Notch сигнальной систСмы Π² ΠΆΠΈΠ·Π½Π΅Π΄Π΅ΡΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ²
    • 4. 1. ΠŸΠ»Π΅ΠΉΠΎΡ‚Ρ€ΠΎΠΏΠ½ΠΎΠ΅ дСйствиС Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Delta ΠΈ Notch Ρƒ D. melanogaster
    • 4. 2. Π“ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Delta-Notch систСмы Ρƒ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ²
    • 4. 3. Π€ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΎΠ² Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Delta ΠΈ Notch
  • 5. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ Delta-Notch сигнализации
    • 5. 1. ВзаимодСйствиС Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄Π° ΠΈ Ρ€Π΅Ρ†Π΅ΠΏΡ‚ΠΎΡ€Π°
    • 5. 2. ΠŸΠ΅Ρ€Π΅Π΄Π°Ρ‡Π° Delta-Notch сигнала Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΡƒ
    • 5. 3. ΠŸΠ΅Ρ€Π΅Π΄Π°Ρ‡Π° Delta-Notch сигнала ΠΈΠ· Ρ†ΠΈΡ‚ΠΎΠΏΠ»Π°Π·ΠΌΡ‹ Π² ΡΠ΄Ρ€ΠΎ
  • 6. РСгуляция функционирования Delta-Notch сигнального ΠΏΡƒΡ‚ΠΈ
    • 6. 1. РСгуляция снаруТи ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ
    • 6. 2. ΠŸΠΎΡΡ‚Ρ‚Ρ€Π°Π½ΡΠ»ΡΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ€Π΅Ρ†Π΅ΠΏΡ‚ΠΎΡ€Π° ΠΈ Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄Π°
    • 6. 3. ЦитоплазматичСскиС Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹, Π²Π»ΠΉΡΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π½Π° Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Delta-Notch сигнального комплСкса
    • 6. 4. Π―Π΄Π΅Ρ€Π½Ρ‹Π΅ эффСкторы
  • 7. ЀилогСнСтичСский Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· DSL Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ²
  • 8. Π—Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ Drosophila virilis для молСкулярногСнСтичСских исслСдований
  • ΠœΠΠ’Π•Π Π˜ΠΠ›Π« И ΠœΠ•Π’ΠžΠ”Π«
  • РЕЗУЛЬВАВЫ И ΠžΠ‘Π‘Π£Π–Π”Π•ΠΠ˜Π•
  • 1. ΠšΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π³Π΅Π½Π° Delta Drosophila virilis
  • 2. ЦитогСнСтичСский Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· локуса Dl D. virilis
  • 3. Локализация Π³Π΅Π½Π° DI Π½Π° ΠΏΠΎΠ»ΠΈΡ‚Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… хромосомах D. virilis
  • 4. Π‘Ρ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π³Π΅Π½Π° DI Ρƒ D. virilis ΠΈ D. melanogaster
  • 5. Π‘Ρ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ аминокислотных ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π³Π΅Π½Π° DI Ρƒ D. virilis ΠΈ D. melanogaster
  • 6. ΠšΠΎΠ½ΡΠ΅Ρ€Π²Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ ΠΈ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½Ρ‹ Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π±Π΅Π»ΠΊΡƒ Dl D. melanogaster
  • 7. Поиск ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΏΠΎΠ»Π°Π³Π°Π΅ΠΌΡ‹Ρ… сайтов модифицирования Π±Π΅Π»ΠΊΠ° Delta D. virilis
  • 8. ИсслСдованиС транскрипционной активности локуса Delta D. virilis
  • 9. Локализация мРНК Π³Π΅Π½Π° Delta D. virilis Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях развития
  • 10. ИсслСдованиС ?)Π΅//Π°-ΠΌΡƒΡ‚Π°Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΉ D. virilis
  • Π’Π«Π’ΠžΠ”Π«

ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎ-гСнСтичСский Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· локуса Delta Ρƒ Drosophila virilis (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ слоТного ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° ΠΈΠ· ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ — Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ взаимодСйствия ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… систСм Π³Π΅Π½ΠΎΠ². Π¦Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ вопросом Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ развития являСтся выяснСниС ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° взаимодСйствия Π² ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€Π΅Π½Π½ΠΈΡ… ΠΈ Π²Π½Π΅ΡˆΠ½ΠΈΡ… Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΡΡƒΠ΄ΡŒΠ±Ρƒ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ. КаТдая ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ° Π½Π΅ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΊΡ€Π°Ρ‚Π½ΠΎ Ρ€Π΅ΡˆΠ°Π΅Ρ‚ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡Ρƒ Π²Ρ‹Π±ΠΎΡ€Π° дальнСйшСго ΠΏΡƒΡ‚ΠΈ развития Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΆΠΈΠ·Π½ΠΈ, Ρ‚Π°ΠΊΠΈΡ… ΠΊΠ°ΠΊ пролифСрация, миграция, рост, Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ° ΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚очная ΡΠΌΠ΅Ρ€Ρ‚ΡŒ. Π Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ Π°Π²Ρ‚ΠΎΠ½ΠΎΠΌΠ½Ρ‹Π΅ ΠΈ Π½Π΅Π°Π²Ρ‚ΠΎΠ½ΠΎΠΌΠ½Ρ‹Π΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Π΅ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹, ΠΌΠ΅ΠΆΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Π΅ сигналы с Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹ΠΌ Π΄ΠΈΠ°ΠΏΠ°Π·ΠΎΠ½ΠΎΠΌ дСйствия Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»ΡΡŽΡ‚ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ Π² Ρ‚ΠΎΠΌ ΠΈΠ»ΠΈ ΠΈΠ½ΠΎΠΌ Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ. Часто для достиТСния ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Ρ†Π΅Π»Π΅ΠΉ Π² Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… аспСктах ΠΆΠΈΠ·Π½ΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎΠ΄Π½Ρƒ ΠΈ Ρ‚Ρƒ ΠΆΠ΅ ΡΠΈΠ³Π½Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ систСму, ΠΈ Π½Π°ΠΎΠ±ΠΎΡ€ΠΎΡ‚, ΠΎΠ΄Π½Π° ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ° развития ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ ΠΎΠ±Π΅ΡΠΏΠ΅Ρ‡ΠΈΠ²Π°Ρ‚ΡŒΡΡ взаимодСйствиСм Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… ΡΠΈΠ³Π½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΏΡƒΡ‚Π΅ΠΉ.

Π¦Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π² ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ ΡΡƒΠ΄ΡŒΠ±Ρ‹ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Π² Π»ΠΎΠΊΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… взаимодСйствиях ΠΈΠ³Ρ€Π°Π΅Ρ‚ Delta-Notch-ΡΠΌΡ‚Π½Π°Π»ΡŒΠΏΠ°Ρ систСма (ΠΈΠ»ΠΈ ΡΠΈΠ³Π½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΏΡƒΡ‚ΡŒ). Π’Π°ΠΊ, многочислСнныС исслСдования ΠΏΠΎ Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° Ρƒ Π΄Ρ€ΠΎΠ·ΠΎΡ„ΠΈΠ»Ρ‹ ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π»ΠΈ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Ρ‹ Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… (Notch, Delta, Suppressor of Hairless ΠΈ Π΄Ρ€.) ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΠ½Π΅ΠΉΡ€Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… (achaete-scute комплСкс ΠΈ Π΄Ρ€.) Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ΡΡ ΠΊΠΎΠΌΠΏΠΎΠ½Π΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ Delta-Notch-сигнальной систСмы, ΠΎΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²Π»ΡΡŽΡ‚ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΠΊΡ†ΠΈΡŽ ΠΈ ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π΄Π°Ρ‡Ρƒ сигнала Π»Π°Ρ‚Π΅Ρ€Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ ингибирования (Muskavitch et al., 1994; Artavanis-Tsakonas et al., 1995). Π’ ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π»Π°Ρ‚Π΅Ρ€Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ ингибирования ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊ Π½Π΅Ρ€Π²Π½ΠΎΠΉ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ подавляСт Π½Π΅ΠΉΡ€Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π» сосСдних ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ Π² Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ Π² ΡΠΏΠΈΠ΄Π΅Ρ€ΠΌΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚Ρ‹ (ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΈ ΡΠΏΠΈΠ΄Π΅Ρ€ΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ). ВпослСдствии Π²Ρ‹ΡΡΠ½ΠΈΠ»ΠΎΡΡŒ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Delta-Notch-сигнальная систСма ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ Π²Ρ‹Π±ΠΎΡ€ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°ΠΌΠΈ ΠΈΡ… ΠΏΡƒΡ‚ΠΈ развития Π½Π΅ Ρ‚ΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ Π² Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅, Π½ΠΎ ΠΈ Π²ΠΎ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… процСссах Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах эмбриогСнСза ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚Π°ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ·Π° Π΄Ρ€ΠΎΠ·ΠΎΡ„ΠΈΠ»Ρ‹ (Artavanis-Tsakonas et al., 1999).

Π’ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½ΠΈΠ΅ Π³ΠΎΠ΄Ρ‹ исслСдования, ΠΊΠ°ΡΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ΡΡ ^//я-М^с/Π³-сигнального ΠΏΡƒΡ‚ΠΈ, Π²Ρ‹Π·Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‚ ΠΎΠ³Ρ€ΠΎΠΌΠ½Ρ‹ΠΉ интСрСс, ΠΏΠΎΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΡƒ ΠΎΡ‚Π° систСма ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ Ρ‡Ρ€Π΅Π·Π²Ρ‹Ρ‡Π°ΠΉΠ½ΠΎ ΡˆΠΈΡ€ΠΎΠΊΠΈΠΉ спСктр ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… процСссов, Ρ‚Π°ΠΊΠΈΡ… ΠΊΠ°ΠΊ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ°, пролифСрация, Π°ΠΏΠΎΠΏΡ‚ΠΎΠ· ΠΈ Π΄Ρ€., Ρƒ Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ². Π“ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Delta ΠΈ Notch Π½Π°ΠΉΠ΄Π΅Π½Ρ‹ Ρƒ Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈ Π±Π΅ΡΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ…: Ρƒ C. elegans (Tax et al., 1994), Ρƒ Π»ΡΠ³ΡƒΡˆΠ΅ΠΊ Xenopus (Chitnis et al., 1995), ΠΊΡƒΡ€ (Henrique et al., 1995,) ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅ΠΉ (Dunwoodie et al., 1997) ΠΈ Π΄Ρ€., Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ Ρƒ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° (Laborda et al, 1993). НаличиС Π³Π΅Π½ΠΎΠ², Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Delta ΠΈ Notch, Ρƒ ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ…, Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Ρ ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΈ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°, ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Ρ‹Π²Π°Π΅Ρ‚, Ρ‡Ρ‚ΠΎ исслСдованиС этих Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΈΠΌΠ΅Π΅Ρ‚ ΡƒΠ½ΠΈΠ²Π΅Ρ€ΡΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ Π·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π² ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ всСобщих закономСрностСй рСгуляции развития ΠΈ Ρ„ункционирования эукариотичСских ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ.

ИсслСдованиС Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‡ΡŒ Π² Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ практичСских мСдицинских ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌ. ΠžΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠ΅Π½ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΏΠ°Ρ‚ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ Ρƒ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° (болСзнь ΠΠ»ΡŒΡ†Π³Π΅ΠΉΠΌΠ΅Ρ€Π°, синдром CADASIL, Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ Ρ€Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Π΅ ΠΎΠΏΡƒΡ…ΠΎΠ»ΠΈ) ΠΈ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… связаны с ΠΌΡƒΡ‚ациями Π² Π³Π΅Π½Π°Ρ…, Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Delta ΠΈ Notch, ΠΈΠ»ΠΈ с Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΠΌΠΈ Π΄Π΅Ρ„Π΅ΠΊΡ‚Π°ΠΌΠΈ функционирования Delta-Notch-cnmajihtioro ΠΏΡƒΡ‚ΠΈ (Ellisen et al., 1991; Wong, 1997; Struhl et al., 1999).

Π’ Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π° общая схСма Delta-Notch сигнализации, выявлСны основныС ΠΊΠΎΠΌΠΏΠΎΠ½Π΅Π½Ρ‚Ρ‹ этой систСмы, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ постоянно ΠΏΠΎΠΏΠΎΠ»Π½ΡΡŽΡ‰ΠΈΠΉΡΡ Π½Π°Π±ΠΎΡ€ Π²Π½Π΅ΡˆΠ½ΠΈΡ… ΠΈ Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€ΠΈΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π΅Π΅ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅. Π’Π΅ΠΌ Π½Π΅ ΠΌΠ΅Π½Π΅Π΅, остаСтся Π΅Ρ‰Π΅ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎ вопросов, ΠΊΠ°ΡΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ структуры ΠΈ Π²Π·Π°ΠΈΠΌΠΎΠ΄Π΅ΠΉΡΡ‚вия всСх этих ΠΊΠΎΠΌΠΏΠΎΠ½Π΅Π½Ρ‚ΠΎΠ². Π’ Ρ‡Π°ΡΡ‚ности, нСдостаточно понятСн ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ взаимодСйствия Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄Π° (Delta) ΠΈ Ρ€Π΅Ρ†Π΅ΠΏΡ‚ΠΎΡ€Π° (Notch), Π² Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ³ΠΎ послСдний активируСтся ΠΈ ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π΄Π°Π΅Ρ‚ сигнал Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€ΡŒ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ. НСкоторыС Π΄Π΅Ρ‚Π°Π»ΠΈ взаимодСйствия Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€ΠΈΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΉ части Π±Π΅Π»ΠΊΠ° Notch, цитоплазматичСских ΠΈ ΡΠ΄Π΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² — участников Delta-Notch сигнализации Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ Π½Π΅ ΡΡΠ½Ρ‹. ΠžΡ‡Π΅Π½ΡŒ ΠΌΠ°Π»ΠΎ извСстно ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ происходит с Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠΌ Π΄ΠΎ ΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅ Π΅Π³ΠΎ нСпосрСдствСнного взаимодСйствия с Ρ€Π΅Ρ†Π΅ΠΏΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ Π½Π° ΠΏΠΎΠ²Π΅Ρ€Ρ…ности ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ.

Пока Π½ΠΈΡ‡Π΅Π³ΠΎ Π½Π΅ ΠΈΠ·Π²Π΅ΡΡ‚Π½ΠΎ Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΎ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ°Ρ… Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€Π΅Π½Π½Π΅ΠΉ, Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΉ, части Π±Π΅Π»ΠΊΠ° Delta, хотя Π΅ΡΡ‚ΡŒ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ этот цитоплазматичСский Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½ Π²Π°ΠΆΠ΅Π½ для функционирования Delta-ΠΏΠΎΠ΄ΠΎΠ±Π½Ρ‹Ρ… Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ² (Chitnis et al., 1995; Henderson et. al., 1997; Lissemore and Starmer, 1999).

Для Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ вопросов функционирования Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΈ ΠΈΡ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚ΠΎΠ² вСсьма ΠΏΠΎΠ»Π΅Π·Π½ΠΎ сравнСниС структуры этих Π³Π΅Π½ΠΎΠ², Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ особСнностСй ΠΈΡ… ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΠΈ ΠΈ Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ Ρƒ ΡΠ²ΠΎΠ»ΡŽΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎ ΠΎΡ‚Π΄Π°Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ².

ΠŸΠΎΡΡ‚ΠΎΠΌΡƒ ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡΡ‚Π°Π²Π»ΡΠ»ΠΎΡΡŒ интСрСсным ΡΡ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡŽ ΠΈ ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΡŽ Π³Π΅Π½Π° Delta Ρƒ Π΄Π²ΡƒΡ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² Π΄Ρ€ΠΎΠ·ΠΎΡ„ΠΈΠ»Ρ‹ — D. melanogaster ΠΈ D. virilis, Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π²ΡˆΠΈΡ… ΠΎΠΊΠΎΠ»ΠΎ 60 ΠΌΠ»Π½. Π»Π΅Ρ‚ Π½Π°Π·Π°Π΄ ΠΈ ΠΎΡ‚носящихся ΠΊ Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹ΠΌ ΠΏΠΎΠ΄Ρ€ΠΎΠ΄Π°ΠΌ Ρ€ΠΎΠ΄Π° Drosophila (Beverly et al., 1984). Π”Π²Π΅Π½Π°Π΄Ρ†Π°Ρ‚ΡŒ Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ virilis ΠΈΠ·Π΄Π°Π²Π½Π° ΡˆΠΈΡ€ΠΎΠΊΠΎ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ ΠΊΠ°ΠΊ ΡƒΠ΄ΠΎΠ±Π½Ρ‹ΠΉ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚ Π² Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΡΠ²ΠΎΠ»ΡŽΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Ρ…, цитогСнСтичСских, популяционных ΠΈ Π±ΠΈΠΎΡ…имичСских исслСдованиях. Π’ΠΈΠ΄ Drosophila virilis Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° хромосом ΠΈ Ρ€ΡΠ΄Π° Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… морфологичСских ΠΈ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΈΠ·Π½Π°ΠΊΠΎΠ² рассматриваСтся ΠΊΠ°ΠΊ Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ примитивная, ΠΏΠΎ-Π²ΠΈΠ΄ΠΈΠΌΠΎΠΌΡƒ, прСдковая Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ° всСй Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ virilis (Throckmorton, 1982).

Π­Ρ‚Π° Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΠ° ΠΏΡ€ΠΈΠ²Π»Π΅ΠΊΠ»Π° нашС Π²Π½ΠΈΠΌΠ°Π½ΠΈΠ΅ Π΅Ρ‰Π΅ ΠΈ ΠΏΠΎΡ‚ΠΎΠΌΡƒ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π² Π½Π°ΡˆΠ΅ΠΌ распоряТСнии Π½Π°Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠ»Π°ΡΡŒ ΡƒΠ½ΠΈΠΊΠ°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ коллСкция ΠΌΡƒΡ‚Π°Ρ†ΠΈΠΉ Π² Π»ΠΎΠΊΡƒΡΠ΅ Delta, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ΠΉ Ρƒ Drosophila virilis являСтся горячСй Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΎΠΉ (hot spot) для транспозиции ΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… элСмСнтов (Evgen'ev et al., 1997). ИспользованиС этой ΠΊΠΎΠ»Π»Π΅ΠΊΡ†ΠΈΠΈ ΠΎΡ‚ΠΊΡ€Ρ‹Π²Π°Π΅Ρ‚ ΡˆΠΈΡ€ΠΎΠΊΠΈΠ΅ возмоТности для дальнСйшСго исслСдования сСмСйства Π½Π΅ΠΉΡ€ΠΎΠ³Π΅Π½ΠΎΠ².

ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«.

Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. ΠšΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ ΠΈ ΠΊΠ°Ρ€Ρ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ участок Π”ΠΠš Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠΌ 14 Ρ‚.ΠΏ.Π½., содСрТащий 3' ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ локуса Delta D.virilis.

2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ in situ Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π³Π΅Π½ Delta Π±Ρ‹Π» Π»ΠΎΠΊΠ°Π»ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ Π² Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½Π΅ 21 °F Π²ΠΎ 2 хромосомС D.virilis. ΠŸΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½Π½Π°Ρ локализация ΠΏΠΎΠ΄Ρ‚Π²Π΅Ρ€Π΄ΠΈΠ»Π° ΠΈ ΡƒΡ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΈΠ»Π° Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ цитогСнСтичСского Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° локуса Delta D. virilis, Π²Ρ‹ΠΏΠΎΠ»Π½Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ с ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ хромосомных пСрСстроСк.

3. Π‘Π΅ΠΊΠ²Π΅Π½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ локуса Delta D. virilis, Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹ΠΉ послСднСму (ΡˆΠ΅ΡΡ‚ΠΎΠΌΡƒ) экзону локуса Dl D.melanogaster.

4. ΠšΠΎΠΌΠΏΡŒΡŽΡ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Π”ΠΠš исслСдуСмого Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π», Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΎΠ½ ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π½ΠΎ ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠ²ΠΈΠ½Ρƒ ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΏΠΎΠ»Π°Π³Π°Π΅ΠΌΠΎΠ³ΠΎ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° Delta D. virilis, Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π½Π° 83% Π±Π΅Π»ΠΊΡƒ Delta D. melanogaster, ΠΏΡ€ΠΈΡ‡Π΅ΠΌ исслСдуСмая Ρ‡Π°ΡΡ‚ΡŒ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° Dl D. virilis Π½Π° 35 аминокислот Π΄Π»ΠΈΠ½Π½Π΅Π΅, Ρ‡Π΅ΠΌ Ρƒ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° D1 D.melanogaster.

5. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Ρ‹ Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€Ρ‹ ΠΈ ΠΊΠΎΠ»ΠΈΡ‡Π΅ΡΡ‚Π²ΠΎ ΠΌΠ°ΠΆΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… транскриптов локуса Delta D.virilis. УстановлСно, Ρ‡Ρ‚ΠΎ локус Delta D. virilis ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ Π΄Π²Π° зиготичСских (5,7 ΠΈ 4,8 Ρ‚.Π½.) ΠΈ Π΄Π²Π° матСринских (3,9 ΠΈ 2,8 Ρ‚.Π½.) ΠΌΠ°ΠΆΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… транскрипта, Π² ΠΎΡ‚Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ ΠΎΡ‚ ΡΠΎΠΎΡ‚Π²Π΅Ρ‚ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ локуса D. melanogaster, Π³Π΄Π΅ ΠΈΠ· Ρ‚Ρ€Π΅Ρ… ΠΌΠ°ΠΆΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… транскриптов ΠΎΠ΄ΠΈΠ½ (5.4 Ρ‚.Π½.) считаСтся зиготичСским, Π° Π΄Π²Π° Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ…, Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠΌ 4.6 ΠΈ 3.6 Ρ‚.Π½., матСринскими.

6. Анализ распрСдСлСния мРНК Delta Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π½Π΅Ρ€Π°Π΄ΠΈΠΎΠ°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π», Ρ‡Ρ‚ΠΎ транскрипты Π³Π΅Π½Π° Delta D. virilis Π»ΠΎΠΊΠ°Π»ΠΈΠ·ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Ρ… Π² Ρ‚Π΅Ρ… ΠΆΠ΅ ΠΎΡ€Π³Π°Π½Π°Ρ… ΠΈ Ρ‚канях ΠΈ Π½Π° Ρ‚Π΅Ρ… ΠΆΠ΅ стадиях развития, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΈ Ρƒ D.melanogaster.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. ., Π‘Ρ€Π΅ΠΉ Π”., Π›ΡŒΡŽΠΈΡ Π”ΠΆ., Π Π΅Ρ„Ρ„ Π­., Π ΠΎΠ±Π΅Ρ€Ρ‚Π΅ К., Уотсон Π”ΠΆ., ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ биология ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ. // М.: ΠœΠΈΡ€, 1994−1996, Ρ‚. 1 -3.
  2. И.Π‘., Π‘Π°Ρ€ΠΈΡ‡Π΅Π²Π° Π­. М. ΠœΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΡ экспрСссии ΠΏΡ€ΠΈΠ·Π½Π°ΠΊΠ° Delta Ρƒ Drosophila virilis. Π­Ρ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ полоТСния ΠΏΡ€ΠΈ транслокациях, Π΄Π΅Ρ„ΠΈΡˆΠ΅Π½ΡΠΈ ΠΈ Π΄ΡƒΠΏΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΡΡ…. // Π“Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ°. 1982. Π’.28. № 3. Π‘.441−453.
  3. И.Π‘., Π‘ΡƒΠ±Π±ΠΎΡ‚Π° Π . П. ΠžΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ потомства ΠΎΠ±Π»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… самцов ΠΈΠ· Π΄Π²ΡƒΡ… Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΉ Drosophila virilis, Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ΠΏΠΎ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½ΡŽ гСнСтичСской Π½Π΅ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ. //Π”ΠΎΠΊΠ»Π°Π΄Ρ‹ АкадСмии Наук, 1990. Ρ‚. 312. № 6. с. 1501−1504.
  4. И.Π‘., Π Ρ‹Π±Ρ†ΠΎΠ²Π° Н. Н., Π—Π΅Π»Π΅Π½Ρ†ΠΎΠ²Π° Π•. Π‘., Π›Π΅Π·ΠΈΠ½ Π“. Π’., ΠšΠΎΡ€ΠΎΡ‡ΠΊΠΈΠ½ Π›. И., Π•Π²Π³Π΅Π½ΡŒΠ΅Π² М. Π‘. Локус Delta Ρƒ Drosophila virilis: ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ Ρ…ромосомная локализация. //Π”ΠΎΠΊΠ»Π°Π΄Ρ‹ АкадСмии Наук, 1998. Ρ‚.358, № 4 с.567−569.
  5. Π›.И. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π² Π³Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΡƒ развития. //Москва. Наука,. 1999. 235 Π‘.
  6. Ahmad, I., Zagouras, P., and Artavanis-Tsakonas S. Involvement of Notch-1 in mammalian retinal neurogenesis-association of Notch-1 activity with both immature and terminally differentiated cells.// Mech. Development, 1995. V. 53, P .73−85.
  7. Alexander M.L. The Genetics and Biology of Drosophila. /(M.Ashburner, E. Novitski Eds.).// Academic Press. New York, 1976. V.lc. P.1365−1427.
  8. Artavanis-Tsakonas S., Rand M., Lake R. Notch signaling: Cell fate control and signal integration in development. // Science, 1999. V. 284. P. 770−776.
  9. Artavanis-Tsakonas S., Matsuno K., Fortini M.E. Notch signalling.// Science, 1995. V.268. P. 225−232.
  10. Ashburner M. Drosophila. A laboratory handbook. //Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, 1989. NY. 256 P.
  11. Axelrod JD, Matsuno K, Artavanis-Tsakonas S, Perrimon N. Interaction between Wingless and Notch signaling pathways mediated by disheveled.// Science. 1996, V.271 P. 1826−1832.
  12. Bang AG, Bailey AM, Posakony JW. Hairless promotes stable commitment to the sensory organ precursor cell fate by negatively regulating the activity of the Notch signaling pathway.// Dev Biol., 1995. V.172 P. 479−494.
  13. Bettenhausen Π’., Hrabe de Angelis, M., Simon, D., Guenet, J.L. and Gossler, A. Transient and restricted expression during mouse embryogenesis of Dill, a murine gene closely related to Drosophila Delta. //Development, 1995, V.121, P.2407−2418.
  14. Beverley S.M. Wilson A.C. Molecular evalution in Drosophila and the higher Diptera II. A time scale for fly evolution. //J. Mol. Evol., 1984. V. 21. P. l-13.
  15. Bier E. Anti-neural-inhibition: a conserved mechanism for neural induction.// Cell. Review, 1997 V. 89 P.681−684.
  16. Bishop SA, Klein T, Arias AM, Couso JP. Composite signalling from Serrate and Delta establishes leg segments in Drosophila through Notch.// Development, 1999 Jul, V.126, P.2993−3003.
  17. Blanchet-Tournier M.F., Tricoire H., Busson D., Lamour-Isnard C. The segment-polarity gene fused is highly conserved in DrosophilaJ/GensA995.v. 19.p. 157−162.
  18. Blaumueller C. M, Qi H.L., Zagouras P., and Artavanis-Tsakonas S. Intercellular cleavage of Notch leads to a heterodimeric receptor on the plasma membane.// Cell, 1997. V.90, P.281−291.
  19. Bray S. Notch affair. //Cell, 1998. V. 93. P. 499−503.
  20. Brennan K, Tateson R, Lewis K, Arias AM. A functional analysis of Notch mutations in Drosophila. //Genetics, 1997, SeP. V.147 P.177−188.
  21. Burris P.A., Zhang Y., Rusconi J.C., Corbin V. The pore-forming and cytoplasmic domains of the neurogenic gene product, BIG BRAIN, are conserved between Drosophila virilis and Drosophila melanogaster. Gene. 1998. v. 206. p. 69−76.
  22. Cabrera C.V. Lateral inhibition and cell fate during neurogenesis in Drosophila: the interactions between Scute, Notch and Delta.// Development, 1990. V.109, P.733−742.
  23. Campos-Ortega J.A. Genetic mechanisms of early neurogenesis in Drosophila melanogaster. //Mol Neurobiol. 1995, V.10 № 2 P. 75−89.
  24. Campos-Ortega J.A. Celluar interactions during early neurogenesis of Drosophila melanogaster. IITINS, V. ll, No.9,1988, P.245−150.
  25. Campos-Ortega J.A. Genetics of neurogenesis in Drosophila melanogaster.//TINS, V.8, No.6,1985, P.245−250.
  26. Campos-Ortega, J. A. and Hartenstein, V. The embryonic development of Drosophila melanogaste.//. Springer-Verlag: Berlin, 1985.
  27. Campuzano S, Modolell J. Patterning of the Drosophila nervous system: the Achaete-scute gene complex. Trends //Genet., 1992 Jun.V.8 P. 202−208. Review.
  28. Casey P. J. Protein lipidation in cell signalling.// Science. 1995. V.268. P. 221−225.
  29. Doherty, D., Feager G., Younger Sheperd S Jan L.Y. and Yan Y.N. Delta is a ventral dorsal signal complementary to Serrate, another Notch ligand, in Drosophila wing formation.// Genes and Dev., 1996. V. 10 P. 421−434.
  30. Dominguez M, de Celis JF. A dorsal/ventral boundary established by Notch controls growth and polarity in the Drosophila eye. //Nature, 1998, Nov 19, V.396 P.276−278.
  31. Donoviel, D.B., Hadjantonakis A., Ikeda M., Zheng H., Hyslop P., Bernstein A. Mice lacking both presenilin genes exhibit early embrionic patterning defects.//Genes and Development, 1999. V.13. P. 2801−2810.
  32. Dorsky RI, Chang WS, Rapaport DH, Harris WA. Regulation of neuronal diversity in the Xenopus retina by Delta signalling. //Nature, 1997, V.385 P.67−70.
  33. Dunwoodie S.L., Henrique D, Harrison S.M., Beddington R.S. Mouse D113: a novel divergent Delta gene which may complement the function of other Delta homologues during early pattern formation in the mouse embryo. //Development, 1997. V.124 P.3065−3076.
  34. Ellisen L.W., Bird J., West D.C., Soreng A.L., Reynolds T.C., Smith S.D. and Sklar J. TAN-l, the human homolog of the Drosophila Notch gene, is broken by chromosomal translocations in T lymphoblastic neoplasms// Cell, 1991 V.66 № 4, P.649−661.
  35. Fanto M, Mlodzik M. Asymmetric Notch activation specifies photoreceptors R3 and R4 and planar polarity in the Drosophila eye. //Nature. 1999 V.397 P.523−6.
  36. Fehon RG, Johansen K, Rebay I, Artavanis-Tsakonas S. Complex cellular and subcellular regulation of Notch expression during embryonic and imaginal development of Drosophila: implications for Notch function.//J Cell Biol., 1991. V.113 P.657−669.
  37. Fehon, R.G., Kooh, P.J., Rebay, I., Regan, C.L., Xu, Π’., Muskavitch, M.A. and
  38. Artavanis-Tsakonas, S. Molecular interactions between the protein products of the neurogenic loci Notch and Delta, two EGF-homologous genes in Drosophila. //Cell, 1990. Π£. 61, P.523−534.
  39. Fleming RJ, Gu Y, Hukriede NA. Serrate-mediated activation of Notch is specifically blocked by the product of the gene fringe in the dorsal compartment of the Drosophila wing imaginal disc.//Development, 1997 № 15 P.2973−81.
  40. Fleming RJ, Scottgale TN, Diederich RJ, Artavanis-Tsakonas S. The gene Serrate encodes a putative EGF-like transmembrane protein essential for proper ectodermal development in Drosophila melanogaster J'/Genes Dev. 1990 № 12A P.2188−2201.
  41. Fortini, M.E. and Artavanis-Tsakonas, S. The suppressor of Hairless protein participates in Notch receptor signaling. //Cell, 1994. V.79 P.273−282
  42. Fortini, M.E. and Artavanis-Tsakonas, S. Notch-. Neurogenesis is only part of the picture. //Cell, 1993. 75 P. 1245−1247.
  43. Fortini ME, Rebay I, Caron LA, Artavanis-Tsakonas S. An activated Notch receptor blocks cell-fate commitment in the developing Drosophila eye. //Nature, 1993 V.365 № 6446 P.555−557.
  44. Fransson L. Structure and function of cell associated proteoglican.// Trends Biochem. Sci., 1987, V.12p 406−411.
  45. Gho M, Lecourtois M, Geraud G, Posakony JW, Schweisguth F. Subcellular localization of Suppressor of Hairless in Drosophila sense organ cells during Notch signalling. //Development. 1996, Y.122 P.1673−1682.
  46. Ghysen A, Dambly-Chaudiere C. Genesis of the Drosophila peripheral nervous system. //Trends Genet., 1989 V.5 P.251−5. Review.
  47. Go, M. J. and Artavanis-Tsakonas, S. A genetic screen for novel components of the Notch signaling pathway during Drosophila bristle development. //Genetics, 1998. V.150. № 1 P.211−220.
  48. Greenwald I. LN-HNotch signaling: lessons from worms and flies.//Genes Dev. 1998i1. N. 12, Π .1751−1762.
  49. Gu, Y., Hukriede, N. A. and Fleming, R. J. Serrate expression can functionally replace Delta activity during neuroblast segregation in the Drosophila embryo.// Development, 1995. V.121: 855−865.
  50. Gubenko, I. S, Evgen’ev M.B. Cytological and linkage maps of Drosophila virilis chromosomes. //Genetica. 1984. 65, P. 127−139.
  51. Gubenko I.S., Subbota R.P., Semeshin V.F. Unusual Drosophila virilis stress-puff at 20CD: cytological localization of a heat sensitive locus and some peculiarities of the heat shock response. //Hereditas. 1991. V. 115. P. 283−290.
  52. Hackel P.O., Zwick E., Prenzel N., Ullrich A. Epidermal growth factor receptors: critical mediators of multiple receptor pathways. //Curr. Opin. Cell Biol. 1999, V. 11. P. 184−189.
  53. Haenlin M, Kunisch M, Kramatschek B, Campos-Ortega J. A .Genomic regions regulating early embryonic expression of the Drosophila neurogenic gene Delta.// Mech Dev., 1994, V. P.199−110
  54. Haenlin M., Kramatschek Π’., Campos-Ortega J.A. The pattern of transcription of the neurogenic gene Delta, of Drosophila melanogaster. Development. 1990. No. 110, P.905−914.
  55. Hardy J. and Israel A. In search of y-secretase.// Nature. 1999. V. 398. P. 466−467.
  56. Hartenstein V, Younossi-Hartenstein A, Lekven A. Delamination and division in the Drosophila neurectoderm: spatiotemporal pattern, cytoskeletal dynamics, and common control by neurogenic and segment polarity genes. //Dev Biol., 1994, V. l65 P.480−499.
  57. Hartenstein V. Atlas of of Drosophila Development. //Cold Spring Harbor Laboratory1. Press, 1993. 57 P.
  58. Hartenstein, A.Y., Rugendorff, A., Tepass, U. and Hartenstein, V. The function of the neurogenic genes during epithelial development in the Drosophila embryo.// Development, 1992. V. l 16 P.1203−1220
  59. Heitzler P, Simpson P. Altered epidermal growth factor -like sequences provide evidence for a role of Notch as a receptor in cellfate decisions.// Development. 1993. V. 117. P. 1113−1123.
  60. Heitzler P, Simpson P. The choice of cell fate in the epidermis of Drosophila./ICe 11., 1991 Mar 22. V.64 P.1083−1092.
  61. Heitzler P, Bourouis M, Ruel L, Carteret C, Simpson P. Genes of the Enhancer of split and achaete-scute complexes are required for a regulatory loop between Notch and Delta during lateral signalling in Drosophila. //Development, 1996 V 122 P. l61 -171.
  62. Henderson S., Gao D. Christensen S., E., Kimble J. Functional domains of lag-2, a putative signaling ligand for LIN-12 and GLP-1 receptors in Caenorhabditis elegands. //Mol.Biol.Cell, 1997, V.8 P.1751−1762.
  63. Henrique D, Hirsinger E, Adam J, Le Roux I, Pourquie O, Ish-Horowicz D, Lewis J. Maintenance of neuroepithelial progenitor cells by Delta-Notch signalling in the embryonic chick retina.// Curr Biol, 1997. V.7 P.661−670.
  64. Hing H.K., Sun X., Artavanis-Tsakonas S. //Mech. Dev. 1994. V. 47. P. 261.
  65. Hinz, U., Giebel, B. and Campos-Ortega, J.A. The basic-helix-loop-helix domain of Drosophila lethal of scute protein is sufficient for proneural function and activates neurogenic genes. //Cell, 1994. V.76 P. 77−87
  66. Hirschberg C. and Snider M., Topography of glycosilation in the rough endoplasmic reticulum and Golgi apparatus.//Annu. Rev. Biochem. 1987. V.56. P.63−88.
  67. Hukriede NA, Gu Y, Fleming RJ. A dominant-negative form of Serrate acts as a general antagonist of Notch activation. //Development. 1997. V. 124 P.3427−37.
  68. Huppert SS, Jacobsen TL, Muskavitch MA. Feedback regulation is central to Delta
  69. Notch signalling required for Drosophila wing vein morphogenesis. //Development. 1997. V.124P.3283−3291.
  70. Jacobsen T.L., Brennan K, Arias A.M., Muskavitch M.A. Cis-interactions between Delta and Notch modulate neurogenic signalling in Drosophila J7 Development, 1998 Nov. V.125 P.4531−4540.
  71. Jehn BM, Bielke W, Pear WS, Osborne BA. Cutting edge: protective effects of Notch-1 on TCR-induced apoptosis.// J Immunol. 1999.V. 162 P.635−8.
  72. Jen W. C, Wettstein D., Turner D., Chitnis A., Kintner C. the Notch ligand, X-Delta-2, mediates segmentation of the paraxial mesoderm in Xenopus embryos.// Development. 1997. V. 124. P. 1169−1178.
  73. Johnston S.H., Rauskolb C, Wilson R, Prabhakaran B, Irvine K.D., Vogt T.F. A family of mammalian Fringe genes implicated in boundary determination and the Notch pathway. Development. 1997 Jun, V.124 P.2245−2254.
  74. Jonsson, F. and Knust, E. Distinct functions of the Drosophila genes Serrate and Delta revealed by ectopic expression during wing development.// Dev. Genes Evol., 1996. 206 P. 91−101
  75. Joutel A., Corpechot C., Ducros A. NotchZ mutations in CADASIL, a hereditary adult-onset condition causing stroke and dementia.// Nature. 1996. V. 383. P. 707−710.
  76. Kerszberg M., Changeux J.P. A simple molecular model of neurulation. //Bioessays, 1998 SeP.V.20 P.758−770.
  77. Kidd S., Kelley M. R. and Young M. W. Sequence of the Notch locus of Drosophila melanogaster: relationship of the encoded protein to mammalian clotting and growth factors.// Mol. Cell. Biol. 1986. V.6 P. 3094−3108.
  78. Kidd S., Lieber Π’., Young M.W. Ligand-iduced cleavage and regulation of nuclear enry of Notch in Drosophila melanogaster embryos. //Genes Dev. 1998.12 P. 3728−3740.
  79. Kim J., Irvine K. D., Carroll S. B. Cell recognition, signal induction, and symmetrical gene activation at the dorsal-ventral boundary of the developing Drosophila wing.
  80. Cell, 1995.V.82 P.795−802.
  81. Kimble J, Simpson P. The LIN-12/Notch signaling pathway and its regulation.//Annu Rev Cell Dev Biol. 1997- N.13 P.333−361.
  82. Klambt C, Jacobs JR, Goodman CS. The midline of the Drosophila central nervous system: a model for the genetic analysis of cell fate, cell migration, and growth cone guidance. //Cell, 1991 Feb 22. V.64 P.801−815.
  83. Klein, T. and Arias, A. M. Interactions among Delta, Serrate and Fringe modulate Notch activity during Drosophila wing development. //Development, 1998. V.125 P. 2951−2962.
  84. Klueg, К. M., Parody, T. R. and Muskavitch, M. A. T. Complex proteolytic processing acts on Delta, a transmembrane ligand for Notch, during Drosophila development. //Mol. Biol. Cell, 1998. V.9 P.1709−1723.
  85. Knust E., Schorans H., Grawe F., Campos-Ortega J. A. Seven genes of Enhancer of split complex of Drosophila melanogaster encode helix-loop-helix proteins.// Genetics. 1992. V. 132. P. 505−518.
  86. Kopan R., Schroeter E.H., Weintraub H., Nye J.S.Signal transduction by activated mNotch: impotance of proteolytic processing and its regulation by the extracellular domain. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 1683−1688.
  87. Kopan R., Turner D.L. The Notch pathway: democracy and aristocracy in the selection of cell fate. //Curr. Opin. Neurobiol. 1996. V.6 P. 594−601.
  88. Kopczynski C.C., Muskavitch M.A.T. Complex spatio-temporal accumulation of alternative transcripts from the neurogenic gene Delta during Drosophila embriogenesis.// Development, 107,1989, P. 623−636.
  89. Kunisch M, Haenlin M, Campos-Ortega JA Lateral inhibition mediated by the Drosophila neurogenic gene Delta is enhanced by proneural proteins.// Proc Natl Acad Sci USA, 1994, V.11,N.91 P.10 139−10 143.
  90. Laborda J., Sausville E.A., Hoffman Π’., Notario V. dlk, a putative mammalian homeotic gene differentially expressed in small cell lung carcinoma and neuroendocrine tumor cell line.// J. Biol. Chem, 1993. V.268 P. 3817−3820.
  91. Lardelli, M., Dahlstrand, J. and Lendahl, U. The novel Notch homologue mouse Notch 3 lacks specific epidermal growth factor-repeats and is expressed in proliferating neuroepithelium //Mech. Dev. 1994. V.46, P. 123−136.
  92. Lawrence P. The making of a fly. The genetics of animal design. //Oxford, Blackwell, 1992.
  93. Lecourtois M, Schweisguth F Indirect evidence for Delta-dependent intracellular processing of Notch in Drosophila embryos. Curr Biol 1998 V.13 P.771−774
  94. Lehmann R., Dietrich U., Jimenez F., Campos-Ortega J. A. et al. Mutations of early neurogenesis in Drosophila. Roux Arch. dev. Biol., 1981. V. l90 P. 226−229.
  95. Lehmann R., Jimenez F., Dietrich U., Campos-Ortega J.A. On the phenotype and development of mutants of early neurogenesis in Drosophila melanogaster. Roux’s Arch. Dev. Biol. 192,1983, P. 62−74
  96. Lecourtois M, Schweisguth F. The neurogenic suppressor of hairless DNA-binding protein mediates the transcriptional activation of the enhancer of split complex genes triggered by Notch signaling. Genes Dev. 1995-V.9 P.2598−2608.
  97. Lendahl U. A growing family ofNotch ligands. BioEssays, 1998, v. 20. P. 103−107.
  98. Lim, J.K. In situ hybridization with biotinylated DNA. 11 Dros. Inf. Serv. 1993, V.72,73−77.
  99. Lindsley D.L., Zimm G. Genetic variations of Drosophila melanogaster. II Carnegie Inst. Wash. Publ., 1968. P.23−29.
  100. Lindsell CE, Shawber CJ, Boulter J, Weinmaster G. Jagged: a mammalian ligand that activates Notchl. // Cell, 1995 Mar 24 V.80 P.909−917.
  101. Lindsell CE, Boulter J, diSibio G, Gossler A, Weinmaster G. Expression patterns of Jagged, Deltal, Notchl, Notch2, and Notch3 genes identify ligand-receptor pairs that may function in neural development. Mol Cell Neurosci., 1996. V. 8 P. 14−27.
  102. Lissemore JL, Starmer WT Phylogenetic analysis of vertebrate and invertebrate Delta/Serrate/LAG-2 (DSL) proteins. Mol Phylogenet Evol 1999 V.2 P.308−319
  103. Long AD, Lyman RF, Langley CH, Mackay TF. Two sites in the Delta gene region contribute to naturally occurring variation in bristle number in Drosophila melanogaster. II Genetics, 1998. V.149 P. 999−1017.
  104. Lukowitz W., Schroder C., Glaser G., Hulskamp M., Tautz D. Regulatory and coding regions of the segmentation gene hunchback are functionally concerved between Drosophila virilis ΠΈ Drosophila melanogaster. II Mech. Dev. 1994. v. 45. p. 105−115.
  105. Maine E.M., Lissemore J.L., Starmer W.T. A Phylogenetic analysis of vertebrate and invertebrate Notch-related genes. //Mol Phylogenet Evol. 1995. V. 4. P. 139−149.
  106. Martin-Bermudo, M. D., Carmena A. and Jimenez, F. Neurogenic genes control gene expression at the transcriptional level in early neurogenesis and in mesectoderm specification. //Development, 1995. 121 P. 219−224
  107. Matsuno K., Go M.J., Sun X., Eastman S., Artavanis-Tsakonas S. Suppressor of Hairless-independent events in Notch signaling imply novel pathway elements. // Development, 1997. V.124. P. 4265−4273.
  108. Michael M.W., Bowtell D., Rubin J.M. Comparison of the sevenless genes of Drosophila virilis ΠΈ Drosophila melanogaster. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. v.87. p. 5351−5353.
  109. Modolell J., Campuzano S. The achaete-scute complex as an integrating device. Int. II J. Dev. Biol. 1998,42, P.275−282.
  110. Moghal N., Sternberg P.W. Multiple positive and negative regulators of signaling by the EGF-receptor. //Curr. Opin. Cell Biol. 1999, V. 11. P. 190−196.
  111. Murrel, J., Farlow M., Ghetti Π’., Benson M. A mutation in the amyloid precursor protein assosiated with hereditary Alzheimer’s disease.// Science. 1991. V.254. P.97−99.
  112. Muskavitch M.A.T. Delta-Notch Signaling and Drosophila II Cell Fate Choice. (Review) Develop.Biol. No.166,1994, P. 415−430.
  113. Newfeld S.J., Smoller D.A., Yedvobnick B. Interspecific comparison of the unusually repetitive Drosophila locus mastermind. //J.Mol.Evol. 1991.V.32. p.415−420.
  114. Oellers N, Dehio M, Knust E. bHLH proteins encoded by the Enhancer of split complex of Drosophila negatively interfere with transcriptional activation mediated by proneural genes. //Mol Gen Genet, 1994 Sep 1. V.244 P.465−473.
  115. Pan D., Valentine S.A., Courey A.J. The bipartite Drosophila melanogaster twist promoter is reorganized in Drosophila virilis. // Mech Dev. 1994. v. 46. p. 41−53.
  116. Pan, D. and Rubin, G. M. Kuzbanian controls proteolytic processing of Notch and mediates lateral inhibition during Drosophila and vertebrate neurogenesis. //Cell, 1997 V.90P. 271−280.
  117. Panin VM, Papayannopoulos V, Wilson R, Irvine KD. Fringe modulates Notch-ligand interactions. //Nature, 1997 Jun 26. V. 387 P.908−912.
  118. Parks, A. L., Klueg К. M., Stout J. R. and Muskavitch, M. A. Ligand endocytosis drives receptor dissotiation and activation in the Notch pathway. //Development. 2000. V. 127. P. 1373−1385.
  119. Parks, A. L., Huppert, S. S. and Muskavitch, M. A. The dynamics of neurogenic signalling underlying bristle development in Drosophila melanogaster. //Mech. Dev., 1997. V. 63 P. 61−74
  120. Parody, Π’. and Muskavitch, M.A. The pleiotropic function of Delta during postembryonic development of Drosophila melanogaster. //Genetics, 1993.V.135 P.527−539.
  121. Paulson D.F. Chromosomal deficiensis and embrionic development of Drosophila melanogaster. //Proc. Natl. Acad. Sci., V.23, 1937, P.133−137.
  122. Pear WS, Aster JC, Scott ML, Hasserjian RP, Soffer B, Sklar J, Baltimore D. Exclusive development of T cell neoplasms in mice transplanted with bone marrow expressing activated Notch alleles.// J Exp Med., 1996 -183 P.2283−2291.
  123. Qi H, Rand MD, Wu X, Sestan N, Wang W, Rakic P, Xu T, Artavanis-Tsakonas S. Processing of the Notch ligand Delta by the metalloprotease Kuzbanian.// Science, 1999. V.283 P.91−94.
  124. Rauskolb C, Correia T, Irvine K.D. Fringe-dependent separation of dorsal and ventral cells in the Drosophila wing. //Nature. 1999 V.401 P.476−480.
  125. Rebay I., Fleming R.J., Fehon R.G., Cherbas L., Cherbas P., Artavanis-Tsakonas S. Specific EGF repeats of Notch mediate interactions with Delta and Serrate: implications for Notch as a multifunctional receptor. /Cell. 1991. V. 67. P. 687−699.
  126. Robey E. Notch in vertebrates. //Curr. Opin. Genet. Dev. 1997. V. 7. P. 551 -557.
  127. Rooke J., Xu Π’., Positive and negative signals between interacting cells for establishing neural fate. //BioEssays 1998, V.20 P.209−214.
  128. Rooke J, Pan D, Xu T, Rubin GM. KUZ, a conserved metalloprotease-disintegrin protein with two roles in Drosophila neurogenesis.// Science. 1996 V.273 P. 1227−1231.
  129. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular cloning. A laboratory manual. N.Y.: Cold Spring Harbor Lab. Press, 1989.
  130. Sanger F., Nicklen S. Coulson A.K. DNA sequencing with chain-termination ingibitors// Proc. Nat.Acad.Sci. USA., 1977 V.74.P.5463−5467.
  131. Seugnet L., Simpson P., Haenlin M. Transcriptional regulation of Notch and Delta: requiment for neuroblast segregation in Drosophila. Development. 1997. v. 124 P. 2015−2025.
  132. Shelly LL, Fuchs C, Miele L. Notch-1 inhibits apoptosis in murine erythroleukemia cells and is necessary for differentiation induced by hybrid polar compounds. J Cell Biochem, 1999. V.73 P.164−175.
  133. P., Carteret C. 1990a. Proneural clusters: equivalence groups in the epithelium of Drosophila. //Development 110, P.927−932.
  134. Simpson P. Lateral inhibition and the development of the sensory bristles of the adult peripheral nervous system of Drosophila. il Development, 1990b.V.l09 P.509−519.
  135. Siren M. and Portin P. Interaction of Hairless, Delta, Enhancer of split and Notch genes of Drosophila melanogaster as expressed in adult morphology. //Genet. Res., 1989. V. 53 P. 23−26.
  136. Skeath JB, Carroll SB. The achaete-scute complex: generation of cellular pattern and fate within the Drosophila nervous system.// FASEB J., 1994 Jul. V.8 P.714−721. Review.
  137. Sun, X. and Artavanis-Tsakonas, S. Secreted forms of Delta and Serrate define antagonists of Notch signaling in Drosophila. //Development, 1997. V. l24 P. 34 393 448.
  138. Sun, X., and Artavanis-Tsakonas, S., The intercellular deletions of Delta and Serrate define dominant negative forms of the Drosophila Notch ligands. //Development, 1996, V.122, p2465−2474.
  139. Struhl G, Greenwald I. Presenilin is required for activity and nuclear access of Notch in Drosophila. //Nature, 1999. V.398 P.522−525.
  140. Struhl G, Adachi A. Nuclear access and action of Notch in vivo. //Cell, 1998.V. 93 P.649−660.
  141. Struhl G, Basler K. Organizing activity of wingless protein in Drosophila.!1 Cell, 1993. Feb 26.V. 72 P.527−540.
  142. Struhl G, Fitzgerald K, Greenwald I. Intrinsic activity of the Lin-12 and Notch intracellular domains in vivo. //Cell, 1993.V.74 P.331−345.
  143. Tautz D., Hulskamp M., Sommer R.J. Whole mount in situ hybridization in Drosophila. In: In Situ Hybridization. A Practical Approach. /Ed. D.G. Wilkinson.1994. P.61−73.
  144. Tax, F.E., Yeargers, J.J. and Thomas, J.H. Sequence of C. elegans lag-2 reveals a cell signalling domain shared with Delta and Serrate of Drosophila. //Nature, 1994. V.368 P. 150−154
  145. Technau G.M., Campos-Ortega J.A. Cell autonomy of expression of neurogenic genes of Drosophila melanogaster.// Proc. Natl. Acad. Sci., V.84,1987, P.4500−4504.
  146. Throckmorton L.H. The virilis species grouP. In The genetics and biology of Drosophila.// Ashburner M., ed., Acad. Press, 1982, V. 36, P. 227−296.
  147. Thomas, U., Speicher, S. A. and Knust, E. The Drosophila gene Serrate encodes an EGF-like transmembrane protein with a complex expression pattern in embryos and wing discs.// Development, 1991. V. 111 P.749−61.
  148. Vassin H., Bremer K.A., Knust E., Campos-Ortega J.A. The neurogenic locus Delta, of Drosophila melanogaster, is expressed in neurogenic territories and encodes a putative transmembrane protein with EGF-like repeats.// EMBO J. No.6, 1987, P. 3431−3440.
  149. Vassin H, Vielmetter J, Campos-Ortega J A. Genetic interactions in early neurogenesis of Drosophila melanogaster. J Neurogenet. 1985 Nov, V.2 P.291−308.
  150. Vervoort M., Dambly-Chaudiere C., Ghysen A.// Curr. Opin. Neur. 1997. V.7. P. 21−28.
  151. Wadsworth, S.C., Vincent, W.S. III. and Bilodeau-Wentworth, D. A Drosophila genomic sequence with homology to human epidermal growth factor receptor.// Nature, 1985.V. 314, P. 178−180.
  152. Welshons W. J., Keppy T. The recombinational analysis of aberrations and the position of the Notch locus on the polytene chromosome of Drosophila. //Molec. gen. Genet., 1981. V. 181 P.319−324.
  153. Wong, P.C., Zheng H., Chen H., Becher M., Sisinathsinghji D., Trumbauer M., Chen H. Y., Price L., Van der Ploeg L., Sisodia S. Presenilin 1 is required for Notch 1 and Dll 1 expression in the paraxial mesoderm. //Nature. 1997. V. 387. P. 288−292.
  154. Yochem, J., Weston, K. and Greenwald, I. The Caenorhabditis elegans I in-12 gene encodes a transmembrane protein with overall similarity to Drosophila Notch. //Nature, 1988.V. 335,547−550.
  155. Zhou L., Boulianne G.L. Comparison of the neuralized genes of Drosophila virilis and D. melanogaster. Genome. 1994. v. 37. p. 840−847.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ