Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Нематодно-микозные инфекции ризосферы ягодных культур и биологические способы борьбы с ними

Диссертация: Нематодно-микозные инфекции ризосферы ягодных культур и биологические способы борьбы с ними
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые установлен высокий уровень сходства нематофауны ризосферы земляники садовой и смородины чёрной. Для этих культур выявлен 31 общий род. При этом коэффициент фаунистического сходства (КФС) составил 0,52. Выявлен общий для обеих культур комплекс корневых эндои эктопаразитических нематод, который включал представителей корневых ранящих нематод — эндопаразитов и нематод — переносчиков опасных… Читать ещё >

Содержание

  • 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Краткое описание культур на примере которых изучался фитопатокомплекс
    • 1. 2. Комплекс паразитических организмов ягодных культур
    • 1. 3. Нематодно- микозный компонент фитопатокомплекса
    • 1. 4. Паразитические нематоды земляники садовой и смородины чёрной
      • 1. 4. 1. Эктопаразитические корневые нематоды земляники и смородины
      • 1. 4. 2. Эндопаразитические корневые нематоды земляники и смородины
    • 1. 5. Микобиота насаждений земляники садовой и смородины чёрной
      • 1. 5. 1. Грибы-паразиты земляники садовой
      • 1. 5. 2. Грибы-паразиты смородины чёрной
    • 1. 6. Способы распространения нематодно-микозной инфекции
    • 1. 7. Биологические способы борьбы с нематодно-микозной инфекцией
      • 1. 7. 1. Бактерии как агенты биоконтроля
      • 1. 7. 2. Бактерии р. Bacillus
      • 1. 7. 3. Бактерии p. Pseudomonas
      • 1. 7. 4. Бактерии p. Enterobacter
      • 1. 7. 5. Грибы как агенты биоконтроля
      • 1. 7. 6. Таксономическое положение и классификация грибов- антагонистов нематод по механизмам воздействия
      • 1. 7. 7. Грибы p. Trichoderma
      • 1. 7. 8. Грибы p. Penicillium

Нематодно-микозные инфекции ризосферы ягодных культур и биологические способы борьбы с ними (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Всего в мире культурные насаждения страдают от поражения более чем 4300 видами (из 197 родов) паразитических нематод. Они вызывают потери около 12,3% общемировой сельскохозяйственной продукции (Sasser and Freckman, 1987), при этом экономический ущерб превышает 125 миллиардов долларов США в год (Chitwood, 2003). Помимо прямого ущерба нематоды способствуют распространению грибных, вирусных и бактериальных инфекций, снижающих урожайность на 50- 80%. При совместном поражении растений первичный вред наносится именно нематодами и представляет собой механическое разрушение корневых клеток, производимое во время миграции и с помощью железистых выделений бульбуса пищевода (Вайшер, Браун, 2001). Вторичный вред причиняется микроорганизмами, вторгающимися в корневую ткань через оставленные нематодами отверстия. При подобного рода взаимодействиях патогенный эффект наиболее сильно выражен при поражении нематодами рода Pratylenchus совместно с грибами, вызывающими увядание (вилт) (Вайшер и Браун, 2001).

В России в последние годы наблюдается резкое увеличение заражённости насаждений ягодных культур комплексной нематодно-микозной инфекцией. Это вызвано продолжающимся географическим распространением этих организмов, связанным с ослаблением фитосанитарного контроля, и подъёмом численности наиболее опасных их групп в результате снижения пестицидного пресса в агроценозах. Несмотря на это, комплексные исследования ризосферной нематофауны таких значимых культур как земляника садовая и смородина чёрная в условиях Центрального региона РФ не проводились с 70-х годов, а микобиоты с начала 90-х годов прошлого века. В связи с этим изучение ризосферной нематофауны и микобиоты, а также взаимодействий между их компонентами, оценка их вредоносности в агрои естественных ценозах на территории Центрального региона РФ является актуальной проблемой, имеющей не только научное, но и практическое значение.

Цель исследований. Работа была направлена на изучение видового состава возбудителей нематодно — микозных инфекций смешанного типа, изучение их взаимоотношений и разработку биологических способов борьбы с ними на ягодных культурах (землянике садовой и смородине чёрной).

При этом были поставлены следующие задачи:

1) Провести комплексные исследования нематофауны и микобиоты ризосферы земляники садовой, смородины чёрной и сопряжённых с ними ценозов;

2) Установить трофическую принадлежность выявленных видов-представителей нематофауны и микобиоты;

3) Выявить ассоциативные комплексы нематод и грибов, установить корреляционную зависимость между их распространением в данных ценозах;

4) Установить роль нематод в распространении представителей патогенной микобиоты;

5) Оценить нематицидную и фунгицидную активность различных штаммов грибов и бактерий из рабочей коллекции Лаборатории фитопаразитологии ЦП ИПЭЭ РАН, установить возможность их применения для подавления нематодно-микозных инфекций на ягодных культурах.

Научная новизна. В результате проведённых в 2006;2009 годах исследований ризосферы земляники садовой и смородины чёрной получены актуальные данные о видовом составе нематофауны и микобиоты, включая наиболее опасные группы фитопаразитов, оценена вредоносность их компонентов, изучено распространение каждой из названных групп паразитов в отдельности. Следует отметить, что комплексные исследования нематофауны земляники садовой и смородины чёрной в условиях Центрального региона РФ не проводились с 70-х годов (Овечников, 1972; Белозёрова, 1976; Метлицкий, Романенко, 1971; Метлицкий, 1979), а ризосферной микобиоты с начала 90-х годов прошлого века (Соловых, 1998; Головин, 1991,1993).

Впервые рассмотрен вопрос о взаимодействиях представителей нематофауны и микобиоты в ризосфере земляники садовой, смородины чёрной и сопряжённых с данными культурами ценозах на территории Центрального региона РФ.

Впервые проведена оценка биологической активности штаммов грибов и бактерий из рабочей коллекции Лаборатории фитопаразитологии ЦП ИПЭЭ РАН на нематод и изоляты патогенной микобиоты, выделенные из ризосферы ягодных культур.

Основные положения, выносимые на защиту:

Видовой составтрофическое группированиепространственное распространение компонентов нематофауны и микобиоты ризосферы земляники садовой и смородины чёрной, включая наиболее опасные группы фитопаразитових ассоциативные комплексы (на примере различных ценозов) — роль нематод в распространении микозных инфекций.

Оценка биологической и хозяйственной эффективности штаммов грибов и бактерий — антагонистов на ягодных культурах.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены на Международной научной конференции «Естественные и инвазийные процессы формирования биоразнообразия водных и наземных экосистем» (ЮФУ, Ростов-на-Дону, 2007) — Международной научной конференции «Инновационные направления в питомниководстве плодовых культур (Москва, ГНУ ВСТИСП РАСХН, 2007) — Всероссийской конференции «Молодые учёные — садоводству России в 21 веке» (Москва, ГНУ ВСТИСП РАСХН, 2007) — Международной конференции на 7- съезде Российского Общества Нематологов «Нематоды естественных и трансформированных экосистем (Институт биологии Карельского отделения РАН, Петрозаводск, 2007) — Международном научно-практическом совещании «Паразитические нематоды растений. Биоразнообразие, изучение, коллекции» (ВНИИФ, М.О.,.

Голицино, 2008) — Всероссийской научной конференции молодых учёныхэкологов (Москва, 2008) — 3-ей Международной Российско-польской школе молодых учёных — экологов (Польша, г. Закопане, 2008) — XV Всероссийском совещании по почвенной зоологии (ИПЭЭРАН, Москва, 2008) — Международной научной конференции «Биоразнообразие и экология паразитов наземных и водных ценозов» (ЦП ИПЭЭ РАН, Москва, 2008) — Международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых учёных «Ломоносов-2009» (МГУ, Москва, 2009).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 17 печатных работ, 5 из которых в ведущих рецензируемых научных журналах рекомендованных ВАК РФ, как в области биологии, так и сельского хозяйства.

Объём и структура диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, 3 глав, выводов, списка литературы и приложений. Материалы диссертации изложены на 132 страницах машинописного текста, содержат 21 таблицу, 5 рисунков, 6 диаграмм и 1 схемусписок использованных источников включает 206 наименований, из которых 155 — зарубежная литература.

Выводы.

1.Впервые за последние 30 лет в условиях Центрального региона РФ проведено комплексное изучение ризосферной нематофауны и микобиоты насаждений земляники садовой и смородины чёрной. Впервые рассмотрены вопросы взаимодействия их компонентов в условиях Центрального региона РФ.

2. Согласно классификации нематод на основе морфологических признаков (Maggenti, 1991, Jairajpuri and Ahmad, 1992), фаунистический комплекс нематод ризосферы земляники садовой был представлен видами из 47 родов 24 семейств 7 отрядов двух классов. Среди представителей паразитической нематофауны преобладали представители рода Pratylenchus {P. pratensis, P. penetrans, P. crenatus), Rotylenchus (R. robustus), Helicotylenchus (H. digonicus), Longidorus (L. attenuatus, L. elongatus), Xiphinema (X. brevicollum, X. diversicaudatum). При этом R. robustus описывается в ризосфере земляники садовой в условиях Центрального региона РФ впервые.

3. В ризосфере насаждений земляники садовой имели место как сапротрофные {Penicillium, Gliocladium, пор. Mucorales), так и фитопатогенные (Fusarium, Rhizoctonia, Alternaria, Verticillium) грибы. При этом фитопатокомплекс был представлен фитопаразитическими нематодами видов Helicotylenchus digonicus, Rotylenchus robustus, Pratylenchus crenatus, Trichodorus similis и фитопатогенными грибами родов Fusarium, Rhizoctonia и Alternaria. Между распространением нематод данных видов и распространением грибов рода Fusarium (главным образом F. oxysporum ff. spp. и F. solani) отмечена наибольшая степень корреляции, которая нередко достигала 1.

4. В ризосфере смородины чёрной фаунистический комплекс нематод был представлен видами из 41 рода 25 семейств 7 отрядов 2 классов. Среди представителей паразитической нематофауны преобладали виды Paratylenchus nanus, Pratylenchus penetrans, P. pratensis, Xiphinema brevicollum, X. diversicaudatum, Trichodorus similis, T.primitivus. При этом фитопатокомплекс был представлен фитопаразитическими нематодами: Paratylenchus nanus, Pratylenchus penetrans, P. pratensis, Trichodorus spp. и грибами рода Fusarium, главным образомF. oxysporum ff.spp. и F. sporotrichioides. При этом синергетический патогенный эффект наблюдали, главным образом, в очагах Pratylenchus spp.

5. В результате изучения фауны нематод различных типов ценозов, включая естественный разнотравно-злаковый луговой ценоз, паровые поля под маточники и питомники ягодных культур, насаждения земляники садовой и смородины чёрнойустановлены как сходства, так и различия фаунистических комплексов. Выявлены виды паразитических нематод, которые могут переходить из естественного ценоза в насаждения земляники садовой и смородины чёрной, а также виды, являющиеся общими для обеих этих ягодных культур.

Установлено, что корневые эндопаразитические нематоды Pratylenchus pratensis, P. similis, встечающиеся в виде отдельных очагов в условиях Центрального региона РФ в естественных разнотравно — злаковых ценозах способны переходить на растения земляники, при этом очаговый характер их распространения переходит в диффузный за счёт создания более подходящей кормовой базы. Другие виды, в частности Xiphinema brevicollum способны переходить из естественного ценоза как на посадки земляники, так и на смородину. Впервые в РФ отмечено, что ряд видов, таких как Rotylenchus robustus, Pratylenchus pratensis, P. penetrans способен продолжительное время после возделывания культурных растений существовать в виде небольшого очага в условиях парового поля. После возвращения культурных растений на данные поля эти паразиты начинают быстро распространяться, и их распространение приобретает диффузный характер.

6. В результате изучения пространственного распространения компонентов фитопатокомплекса установлено, что почти все видыпредставители фитопаразитической фауны нематод {Helicotylenchus digonicus, Pratylenchus pratensis, Pratylenchus crenatus, Pratylenchus penetrans, Rotylenchus robustus), отмеченные нами в паровых полях ГНУ ВСТИСП пос. Михнево Московской области, были выделены и из поступивших на анализ образцов, отобранных с парового поля под маточник плодово-ягодных культур в Чеченской республике. Помимо этого, обнаруженые в высокой численности виды паразитических нематод: Trichodorus similis, Xiphinema brevicollum и Xiphinema pachtaicumописываются для территории Чеченской республики впервые.

Установлено, что паровые поля независимо от географической зоны не освобождаются в течение одного года от опасных видов фитопаразитических нематод и патогенной микобиоты.

7. Впервые установлен высокий уровень сходства нематофауны ризосферы земляники садовой и смородины чёрной. Для этих культур выявлен 31 общий род. При этом коэффициент фаунистического сходства (КФС) составил 0,52. Выявлен общий для обеих культур комплекс корневых эндои эктопаразитических нематод, который включал представителей корневых ранящих нематод — эндопаразитов и нематод — переносчиков опасных непо-и тобрагрупп вирусов: Pratylenchus penetrans, P. pratensis, Trichodorus similis, T. primitivus, X. brevicollum, X. diversicaudatum. Среди одних и тех же представителей фитопатогенной микобиоты ризосферы земляники и смородины отмечали лишь Fusarium oxysporum ff. spp., остальныеявлялись либо специфичными для какоголибо одного хозяина, либо вторичными, поражающими ослабленные растения.

8. Установлено, что распространение представителей микобиоты при помощи нематод в ризосфере ягодных культур осуществляется как пассивно, так и активно. Пассивное распространение происходит в случае прилипания спор грибов к поверхности тела нематоды. В нашем случае подобным образом происходит распространение некоторых мукоровых грибов, в частности Mucor plumbeus и грибов рода Penicillium. Активное распространение наблюдали в случаекогда вследствие поражения ранящими нематодами происходило выделение корневых экссудатов, служащих фактором активации представителей патогенной микобиоты, главным образом p. Fusarium.

9. Проведена in vitro и in vivo оценка антагонистической активности штаммов грибов и бактерий из рабочей коллекции Лаборатории фитопаразитологии ЦП ИПЭЭ РАН, в результате чего отобраны биоагенты полифункционального действия. Так, установлено, что внесение в ризосферу смородины чёрной суспензии спор и мицелия культуры гриба Trichoderma viride R оказывает не только репеллентное действие на фитопаразитических нематод специфичного патогенного эффекта, способствует подавлению сопряжённой с ними микозной инфекции, но и обладает рост-стимулирующим действием. При внесении биоагентов в ризосферу земляники аналогичное действие, помимо суспензии культуры Trichoderma viride R, отмечено для Bacillus thuringiensis 132 и Bacillus polymyxa Al.

Показать весь текст

Список литературы

  1. О.О., Говоров Д. Н. Использование биопрепаратов и регуляторов роста при защите земляники от вертициллёзного увядания // Изв. Тимирязев, с.-х. акад. 2000. Вып. 1. С.116−128.
  2. Г. С. Анализ видового состава и динамики популяций нематод- паразитов корней садовой земляники в нечернозёмной зоне РСФСР. Автореф. канд. дисс. М.: 1975. 28с.
  3. Микроорганизмы- возбудители болезней растений/ Билай В. И., Гвоздяк Р. И., Скрипаль И. Г. и др.- Под ред. Билай В. И. Киев: Наук. Думка, 1988.552 с.
  4. В. Ф., Чухляев И. И. Земляника. М.: Колос, 1983. 40 с.
  5. В.И. Фузарии. Киев: Наукова думка, 1977. 442 с.
  6. ., Браун Д. Д. Ф. Знакомство с нематодами (Общая нематология). Учебник для студентов. Pensoft Publishers, София-Москва, 2001.206 с.
  7. В. Л. Плодовые растения мира. СПб.- М.- Краснодар: Лань, 2003. 592 с.
  8. М.С., Стриганова Б. Р. Количественные методы в почвенной зоологии. М.: Наука, 1987. 269 с.
  9. С.Е. Предупреждение загнивания черенков чёрной смородины. Садоводство и виноградарство. М.: ВСТИСП, 1991.Т. 4. С. 20−21.
  10. Ю.Головин С. Е., Метлицкий О. З. Влияние фитопатогенных грибов на развитие гнилей черенков смородины и крыжовника // Вестн. Рос. акад.с.-х.наук, 1993, № 5. С. 31−34.
  11. П.Головин С. Е. Основные виды почвенных грибов, связанные с гнилью зелёных черенков плодовых и ягодных культур и методика их диагностики // Плодоводство и ягодоводство России. М.: 1994. С. 116−123.
  12. Д.Н. Биологические препараты защиты земляники от вертициллёза // IV Съезд О-ва физиологов растений России. Междунар.конф. «Физиология растений-наука III тысячелетия»: Тез. докл. М., 1999. Т.1. С. 210−211.
  13. Д.Н. Биологические препараты защиты земляники от вертициллёза // Фитосанитарное оздоровление экосистем. ВНИИЗР. СПб: 2005. Т.2. С. 153−155.
  14. X. Нематоды растений и борьба с ними. М.: Колос, 1972.444 с.
  15. Е.С., Кралль Э. Л. Паразитические нематоды растений и меры борьбы с ними. Л.: Наука, 1969. Т.1. 443 с.
  16. Е.С., Кралль Э. Л. Паразитические нематоды растений и меры борьбы с ними. Л.: Наука, 1971. Т. 2. 522 с.
  17. В.Ф. Вертициллёзное увядание чёрной смородины // Земля сибирская, дальневосточная. 1978. № 9. С. 58.
  18. Г. В. Фитонематоды чёрной смородины и малины и роль Xiphinema americanum Cobb, 1913 в переносе вируса мозаики хеноподиевых (Sowbane mosaic virus). Автореф. дис. канд. биол. наук. Кишинёв, 1972. 22 с.
  19. Г. В., Нестеров П. И., Вердеревская Т. Д. Нематофауна ризосферы и динамика. Нематофауна ризосферы и динамика численности фитогельминтов малины и смородины // Паразиты животных и растений. 1971. Вып. 6. С. 98−106.
  20. Н.И. Нематоды семейства Trichodoridae и их роль в распространении вирусных болезней на карофеле в Московской области. Автореф. канд. дисс. М.: 2008. 24 с.
  21. , Э. Л. Паразитические корневые нематоды. Семейство Hoplolaimidae. Л.: Наука, 1978. 420 с.
  22. М.А. Определитель микроскопических почвенных грибов. Л.: Наука, 1967. 303 с.
  23. М.А. Защита растений от нематод. М.: Наука, 1989. 150 с.
  24. О.З., Головин С. Е. Борьба с микозами при ускоренном размножении посадочного материала ягодных кустарников // Ягодоводство в Нечерноземье. М, 1989. С. 75−84.
  25. О.З., Романенко Н. Д. Паразитические нематоды чёрной смородины // Культура смородины в СССР. М.: 1972. С. 625−635.
  26. О.З. Паразитические нематоды и основы борьбы с ними в ягодоводстве СССР. Диссертация на соискание учёной степени доктора сельскохозяйственных наук. М., 1979. 515 с.
  27. Н.А. Грибы- гифомицеты- регуляторы численности паразитических нематод / ред. Илялетдинов А. Н., Прядко Э. И. Алма-ата. «Наука» Казахстой ССР. 1990. С. 12−37.
  28. В.Д. Выбор трофической стратегии хищным нематофаговым грибом Arthrobotrys oligospora. Автореф. канд. дисс. М.:2002. 26 с.
  29. Микроорганизмы- возбудители болезней растений / Билай В. И., Гвоздяк Р. И., Скрипаль И. Г. и др.- Под ред. Билай В. И. Киев: Наук. Думка, 1988. 552 с.
  30. О.Новоселова Т. А. Ягодные кустарники. Ростов-на-Дону: Феникс, 2003. 256 с. 31,Овечников Г. Т. Эколого-фаунистический анализ нематод смородины и крыжовника Московской области. Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1972. 26 с.
  31. А.А. Основы фитогельминтологии. М.: Изд-во АН СССР, 1962. Т. 1.479 с.
  32. И.Ф., Рыбалов JI.H. Вертициллёзное увядание чёрной смородины // Защита растений. 1982. № 6. С. 36.
  33. Н. М. Грибы-паразиты культурных растений. Определитель в трёх томах. Том 1. Грибы совершенные. Киев: Наукова думка. 1977. 296 с.
  34. Н. М. Грибы-паразиты культурных растений. Определитель в трёх томах. Том 2. Грибы несовершенные. Киев: Наукова думка. 1977. 300 с.
  35. Н.М. Грибы-паразиты культурных растений. Определитель в трёх томах. Том 3. Пикнидиальные грибы. Киев: Наукова Думка, Т. 3, 1978. 230 с.
  36. Н.М., Милько А. А. Атлас Мукоральных грибов. Издательство «Наукова Думка». Киев, 1971. 116с., 36 л. ил.
  37. И.В., Меркулова JI.C. Проявление устойчивости к вертициллёзу у гибридного потомства земляники // Агрономия: вестн. РГАЗУ (Рос. гос. аграр. заочн. ун-т). М.: 2004. С. 151- 153.
  38. Ю.П. Распространённость возбудителя вилта земляники и других культур // Защита плодовых и ягодных культур от вредителей и болезней в НЧЗ РСФСР: Сб. науч. тр. НИЗИСНП. 1978. Т. 12. С. 29−34.
  39. Н.Д. Фитогельминты-вирусоносители. М.:Наука. 1993.283 с.
  40. Н.Д. Изучение фитопаразитарных комплексов (нематоды-вирусы-грибы-бактерии) и проблемы их биоконтроля в фитоценозах России // Аграрная Россия. 1999. № 3(4). С.13−17.
  41. Н.Д., Буров Б. В. К вопросу изучения ассоциаций нематод и грибов в различных фитоценозах России // Динамика биоразнообразия животного мира. М., 1997. С. 149−156.
  42. Н.Д. Нематоды- переносчики вирусов (глава 6) // кн. Прикладная нематология. М.: Наука, 2006. С. 122−161.
  43. Г. И. Экология почвенных нематод. JL: Наука, 1986. 247 с.
  44. М.Т. Нематоды на ягодных культурах // Защита растений, 1967. № 12. С. 54
  45. Н.И. Симфизиологические связи популяций нематод и грибов в почвенных биоценозах // В кн. Паразитические нематоды растений и насекомых. М.: Наука, 2004. 320 с.
  46. Ю.А. Общая фитопатология (часть 1): Учебное пособие. Томск: ТГУ, 2001. 170 с.
  47. Achouak, W., Heulin, Т., Villemin, G., Balandreau, J. Root colonization by symplasmata forming Enterobacter agglomerans // FEMS Microbiol Ecol. 1994. Vol. 13. P. 287−294.
  48. Ahren, D., Ursing, В. M., & Tunlid, A. Phylogeny of nematode-trapping fungi based on 18S rDNA sequences // FEMS Microbiology Letters, 1998. P. 179 184.
  49. Akgul, Hasan Celal. Plant parasitic nematode species found in strawberry fields in Northwestern Anatolia // Japanese Journal of Nematology. 2004. Vol.34. No.2. P.73−78.
  50. Anderson, R.V. and Potter, John. Stunt Nematodes: Tylenchorhynchus, Merlinius, and related genera (Chapter 12). Nickle, William (ed.). Manual of Agricultural Nematology. CRC Press: New York. 1991. 1035 p.
  51. Back, M.A., P.P.J. Haydock and P.Jenkinson. Disease complexes involving plant-parasitic nematodes and soil-borne pathogens // Plant Pathol. 2002. Vol.51. P. 683−697.
  52. Barron, G.L. Lignolytic and cellulolytic fungi as predators and parasites. In G.C. Carroll& D.T. Wicklow (eds.). The fungal community, its organization and role in the ecosystems. New York: Marcel Dekker. 1992. P. 311−326.
  53. Berner, I., S. Konetschny-Rapp, G. Jung and G.Winkelmann. Characterization of ferrioxamine E as the principal siderophore of Erwinia herbicola (Enterobacter agglomerans) // BioMetals. 1988. Vol.l.No 1. P. 51−56.
  54. Berta de los Santos, Carmen Barrau and Fernando Romero. Strawberry fungal diseases // Food, Agriculture & Environment. 2003. Vol. l (3&4). P. 129−132.
  55. Bowers, J.H., Nameth, S.T., Riedel, R.M., Rowe, R.C. Infection and colonisation of potato roots by Verticillium dahliae as affected by Pratylenchus penetrans and P. crenatus //Phytopathology. 1996. Vol. 86. P. 614—621.
  56. Bridge, J. Nematode management in sustainable and subsistence agriculture // Ann. Rev. Phytopathol. 1996. Vol.34. P. 201- 225.
  57. Burd, G.I., Dixon, D.G., Glick, B.R. A plant growth-promoting bacterium that decreases nickel toxicity in seedlings // Applied and Environmental Microbiology. 1998. Vol. 64. P. 3663−3668.
  58. Castillo, P., Vovlas, N. Pratylenchus (.Nematoda: Pratylenchidae) Diagnosis, Biology, Pathogenicity and Management. Nematology Monographs and Perspectives, vol. 6. Hunt DJ, Perry RN, series eds. Leiden, The Netherlands: Brill. 2008. 529 p.
  59. Ciancio, A., K.G.Mukerji. Integrated Management of Fruit Crops and Forest Nematodes. Springer. 2009. 350 p.
  60. Chaverri, P., Samuels, G. J., & Hodge, К. T. The genus Podocrella and its nematode-killing anamorph Harposporium // Mycologia. 2005. Vol. 97. P. 435 443.
  61. Chen, D.Y., Ni, H. F., Yen, J.H., and Tsay, T.T. Identification of stunt nematode Tylenchorhynchus annulatus and a new recorded Tylenchorhynchusleviterminalis (Nematoda: Belonolaimidae) in Taiwan // Plant Pathol. Bull. 2006. Vol. 15. P. 251−262.
  62. Chen, P. and T.T. Tsay. Effect of Crop Rotation on Meloidogyne spp. and Pratylenchus spp. Populations in Strawberry Fields in Taiwan // J. Nematol. 2006. Vol. 38(3). P. 339−344.
  63. Chernin, L.S., Z.F. Ismailov, S. Haran, and I. Chet. Chitinolytic Enterobacter agglomerans antagonistic to fungal plant pathogens // Appl. Environ. Microbiol. 1995. Vol. 61. P. 1720−1726.
  64. Chitwood, D.J. Research on plant-parasitic nematode biology conducted by the United States Department of Agriculture- Agricultural Research Service // Pest Manage. Sci. 2003.Vol. 59. No 6−7. P. 748−753.
  65. Clarke, A.J., Hennessy J. Hatching agents as stimulants of movement of Globodera rostochiensis juveniles // Revue de Nematologie. 1987. Vol. 10, No 4. P. 471−476.
  66. Colbran, R.C. Nematodes in strawberries // Queensland Agricultural Journal. 1974. Vol. 100 (11). P. 522−525.
  67. Cornells, P., Matthijs, S. Diversity of siderophore-mediated iron uptake systems in fluorescent pseudomonads: not only pyoverdines // Environ. Microbiol. 2002. Vol. 4. Issue 12. P. 787−798.
  68. Dahiya, N., R. Tewari, R.P. Tiwari and G.S. Hoondal, Production of an antifungal chitinase from Enterobacter sp. NRG4 and its application in protoplast production // World Journal of Microbiology & Biotechnology. 2005. Vol 21. No 8−9. P. 1611−1616.
  69. De Cal, A, Pascual, S., Melgarejo, P. Involvement of resistance induction by Penicillium oxalicum in the biocontrol of tomato wilt // Plant Pathology. 1997. Vol. 46. No 1. P. 72−79.
  70. Dern, R. Die phytoparasitaren Nematoden an Ribes nigrum und R. rubrum Hessen- Nassaus und Versuche zu deren Bekampfung // Proceedings of the 9th International Nematology Symposium (Warsaw). 1970. P. 419−435.
  71. Duan, J., Yi, Т., Lu, Z., Shen, D., Feng Y. Pantoea agglomerans YS19 forms multicellular symplasmata via cell aggregation // FEMS Microbiol. Lett. 2007. Vol. 270. P. 220−226.
  72. Feng, Y., Shen, D., Dong, X., Song, W. In vitro symplasmata formation in the rice diazotrophic endophyte Pantoea agglomerans YS19 // Plant and Soil. 2003. Vol. 255. P. 435−444.
  73. Flegg, J J.M. Extraction of Xiphinema and Longidorus species from soil by a modification of Cobb’s decanting sieving technique // Ann. Biol. 1967. Vol. 60. P. 429−437.
  74. France, R.A., G.S.Abawi. Interaction between Meloidogyne incognita and and Fusarium oxysporum f. sp. phaseoli on selected bean genotypes // J.Nematol.1994. Vol. 26. No 4. P. 467−474.
  75. Friman, E. UV inhibition of the nematode infection process in Arthobotrys oligospora and Dactiylaria Candida // Journal of General Microbiology. 1993. Vol. 139. P. 2841−2847.
  76. Gaugler, Randy and Anwar L. Bilgrami. Nematode behavior. Edited by Randy Gaugler and Anwar L. Bilgrami. CAB International. 2004. 420 p.
  77. Gaur, H.S. Dissemination and mode of survival of nematodes in dust storms //Indian Journal of Nematology. 1988. Vol. 18. P. 94−98.
  78. Gilman, Joseph C, A manual of soil fungi. Second edition. The Iowa State College Press. 1957. 450 p.
  79. Goldberg, J. Pseudomonas: global bacteria // Trends Microbiol. 2000. Vol. 8. P. 55−57.
  80. Govorova, G. Methodological base of strawberry breeding in Russia for fungal pathogen resistance // Acta Horticulture. 1993. Vol. 348. P. 458−462.
  81. Grayston, S.J., Vaughan, D., Jones, D. Rhizosphere carbon flow in trees, in comparison with annual plants: the importance of root exudation and its impacton microbial activity and nutrient availability // Applied Soil Ecology. 1997. Vol. 5. P. 29−56.
  82. Greipsson, S., El-Mayas, H. Synergistic effect of soil pathogenic fungi and nematodes reducing bioprotection of Arbuscular mycorrhizal fungi on the grass Leymus arenarius II BioControl. 2002. Vol. 47. No 6. P. 715−727.
  83. Gruzdeva, L.I., Matveeva, E.M. and Kovalenko, Т.Е. Plant parasites of the soil nematode communities in natural and agrocenoses in European North. The 2nd Scandinavian- Baltic Symposium for Parasitology. Rovaniemi, Finland, August 30-Sep.l, 2007. P. 32.
  84. Hackney, R. W. and O. J. Dickerson. Marigold, Castor Bean, and Chrysanthemum as Controls of Meloidogyne incognita and Pratylenchus alleni II J. Nematol. 1975. Vol. 7. No 1. P.84−90.
  85. Hannum, Sandra M. Potential impact of strawberries on human health: a review of the science //Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2004. Vol. 44. Issue l.P. 1−17.
  86. Harman, G.E., Howell, C.R., Viterbo, A., Ctet I, Lorito M. Trichoderma species- opportunistic, avirulent plant symbionts // Nature Rev. Microbiol. 2004. Vol. 2. P. 43−56.
  87. Hasan, A. Interaction between Pratylenchus cojfeae and Pythium aphanidermatum and/or Rhizoctonia solani on Chrysanthemum // J. Phytopathol. 1987. Vol. 123. Issue 3. P. 227 232.
  88. Hebbar, K.P., A.G. Davey, J. Merrin, and P.J. Dart. Rhizobacteria of maize antagonistic to Fusarium moniliforme, a soil-borne fungal pathogen: colonization of rhizosphere and roots // Soil Biol. Biochem. 1992. Vol. 24. P. 989 997.
  89. Heinonen, M. Antioxidant activity and antimicrobial effect of berry phenolics~a Finnish perspective //Molecular nutrition & food research. 2007. Vol. 51. No 6. P. 684−691.
  90. Howell, C.R., R.C. Beier, and R.D. Stipanovic. Production of ammonia by Enterobacter cloacae and its possible role in the biological control of Pythium preemergence damping-off by the bacterium // Phytopathology. 1988. Vol. 78. P. 1075−1078.
  91. Юб.НгаЬак, E.M., Willis, D.K. The lemA gene required for pathogenicity of Pseudomonas syringae pv. syringae on bean is a member of a family of two-component regulators // Journal of Bacteriology. 1992. Vol.174. P. 3011−3020.
  92. , R. S. & Grundler, F. M. W. Nematode parasitism of plants. In: The Physiology and Biochemistry of free-living and plant-parasitic nematodes. Perry, R. N. & Wright, D. J. (Eds), CABI Publishing, UK. 1998. P. 213 243.
  93. Kapasakalidis, P.G., Rastall, Gordon. Extraction of polyphenols from processed black currant (Ribes nigrum. L.) residues// Journal of agricultural and food chemistry. 2006. Vol. 54. Issue 11. P. 4016−4021.
  94. Karssen, G. and M. Moens. Root- knot nematodes. In book: Plant Nematology/ Edited by R.N. Perry and M. Moens. CABI Publishing. 2006. P. 5990.
  95. Keel C, Defago G. Interactions between beneficial soil bacteria and root pathogens: mechanisms and ecological impact. In: Gange, A.C., Brown, V.K., eds. Multitrophic interactions in terrestrial system. Oxford: Blackwell Science. 1997. P. 27−47.
  96. Khan, Zakaullah, Young Ho Kim. A review on the role of predatory soil nematodes in the biological control of plant parasitic nematodes // Applied soil ecology. 2007. Vol. 35. P. 370−379.
  97. Kilian, M., Steiner, U., Krebs, В., Junge, H., Schmiedeknecht, G., and Hain, R. FZB24 Bacillus subtilis — mode of action of a microbial agent enhancing plant vitality // Pflanzenschutz-Nachrichten, Bayer. 2000. Vol. 53. No 1. P. 72−93.
  98. Kimpinski, J., W. J. Arsenault, С. E. Gallant, and J. B. Sanderson. The Effect of Marigolds (Tagetes spp.) and Other Cover Crops on Pratylenchus penetrans and on Following Potato Crops // J. Nematol. 2000. Vol. 32. No. 4. P. 531−536.
  99. Krall, E.L. Root parasitic nematodes: family Hoplolaimidae. Brill. 1990.580 p.
  100. LaMondia, J.A. The association of lesion nematodes with black root rot in strawberry fields. NE-SARE // Small Fruits Newsletter. 1994. Issue 4. P. 10−11.
  101. LaMondia, J. A. Interaction of Pratylenchus penetrans and Rhizoctonia fragariae in Strawbeny Black Root Rot // Journal of Nematology. 2003.Vol. 35(1). P. 17−22.
  102. Leslie, John F. and Brett A. Summerell. The Fusarium Laboratory Manual. Blackwell Publishing, 2006. P. 388.
  103. Leyns, F., G. Borgonie, G. Arnaut, D. De Waele. Nematicidal activity of Bacillus thuringiensis isolates I I Fundamental and Applied Nematology. 1995. Vol. 18. P. 211−218.
  104. Loper, J.E., C.A. Ishimaru, S.R. Carnegie, and A. Vanavichit. Cloning and characterization of aerobactin biosynthesis genes of the biological control agent Enterobbacter cloacae // Appl. Environ. Microbiol. 1993. Vol. 59. P. 41 894 197.
  105. Loper, J.E., I. Paulsen, D. Bruck, M. Pechy- Tarr, M. Maurhofer, C. Keel- and H. Gross. Genomics of secondary metabolite production by Pseudomonas fluorescens PF-5 // Pseudomonas 2007. ASM Conferences. 2007. P. 23.
  106. Lopez-Llorca L. V., Macia-Vicente J. G. and H.-B. Jansson. Mode of Action and Interactions of Nematophagous Fungi. In book: Integrated Management and Biocontrol of Vegetable and Grain Crops Nematodes. 2007. Vol. 2. P. 51−76.
  107. , L.T., С. Lee Campbell. Introduction to plant diseases: identification and management. Springer. 1992. P.364.
  108. Mach, R. L. and S. Zeilinger. Regulation of gene expression in industrial fungi: Trichoderma II Applied Microbiology and Biotechnology. January 2003. Vol. 60. No 5. P. 515−522.
  109. Maggenti, A. R. Nemata: Higher Classification. Chapter 5 in Manual of Agricultural Nematology, W. R. Nickle, Ed., Marcel Dekker, Inc. New York. 1991. P. 147−187.
  110. Magnusson, M. L. Root diffusates and plant parasitic nematodes // Vaxtskyddsnotiser. 1986. Vol. 50. No 6. P. 168−170.
  111. Matsubara, Yoh-ichi, Itsuka Hirano, Daisuke Sassa and Kaneyuki Koshikawa. Incresed tolerance to Fusarium wilt in mycorrhizal strawberry plants raised by capillary watering methods // Environ. Control in Biol. 2004.Vol. 42. No 3. P.185−191.
  112. McKenry, M.V. and P.A. Roberts. Phytonematology study guide on nematodes and nematicides. Univ. of Calif. Special Publ. #4045. 1985. 56 p.
  113. McKinley, R.T., P.W. Talboys. Effects of Pratylenchus penetrans on development of strawberry wilt caused by Verticillium dahliae И Annals of Applied Biology. 1979. Vol. 92. Issue 3. P. 347 357.
  114. Meagher, J.W. and P.T. Jenkins. Interaction of Meloidogyne hapla and Verticillium dahliae, and the chemical control of wilt in strawberry // Australian Journal of Experimental Agriculture and Animal Husbandry. 1970. Vol. 10. No45.P.493196.
  115. Miller, P.M. and S. Anagnostakis, Suppression of Pratylenchus penetrans and Tylenchorhynchus dubius by Trichoderma viride I I J. Nemat. 1977. Vol. 9. P. 182−183.
  116. Morgan, G.T., and W.B. Collins. The effects of organic treatments and crop rotation on soil populations of Pratylenchus penetrans in strawberry culture // Can. J. Plant Sci. 1964. Vol. 44. P. 272−275.
  117. Mukherjee, P. K., Nautiyal, C. S. and Mukhopadhyay, A. N. Molecular Mechanisms of Biocontrol by Trichoderma spp. In book: Molecular Mechanisms of Plant and Microbe Coexistence. 2008. Vol. 15. Part 2. P. 243−262.
  118. Murakami, Y. Biological control in ancient China. Skokubutsu Boeki (Plant Protection). 1981. Vol. 35. P. 542−544. in Japanese, Abstract in English.
  119. Naemura, A., Mitani, T, Ijiri, Y., Tamura, Y., Yamashita, Т., Okimura, M., Yamamoto, J. Anti-thrombotic effect of strawberries // Blood Coagulation and Fibrinolysis. 2005. Vol. 16. No 7. P. 501−509.
  120. Nakahara, S., Kusano, M., Fujioka, S., Shimada, A., Kimura, Y. Penipratynolene, a novel nematicide from Penicillium bilaiae Chalabuda // Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. 2004. Vol. 68. No. 1. P. 257−259.
  121. Nordbring- Hertz, B. Ecology and recognition in the nematode-nematophagous fungus system // Advances in Microbial Ecology. 1988. Vol. 10. P. 81−114.
  122. Park, C.S., Paulitz, T.C., Baker, R. Biocontrol of Fusarium wilt of cucumber resulting from interactions between Pseudomonas putida and nonpathogenic isolates of Fusarium oxysporum II Phytopathology. 1988. Vol. 78. P. 190−194
  123. Ploeg, Antoon. Proceedings of the UCR Turfgrass and Landscape Management Research Conference and Field Day. Potential for using marigolds to manage plant- parasitic nematodes. Department of Nematology, University of California. 1998. P.4.
  124. Palmer, L.T. and D. H. MacDonald. Interaction of Fusarium spp. and certain plant parasitic nematodes on Maize I I Phytopathology. 1974. Vol.64. P. 1417.
  125. Parikka P., S. Kukkonen. Root damage a common problem in strawberry production in Finland // Acta Horticulturae. 2002. No 567. P. 643−645.
  126. Persson, Yvonne and Erland Baath. Quantification of mycoparasitism by the nematode-trapping fungus Arthrobotrys oligospora on Rhizoctonia solani and the influence of nutrient levels // FEMS Microbiology Letters. 1992. Vol. 101. Issue LP. 11−16.
  127. Persson, Y., Veenhuis, M., and Nordbring- Hertz, B. Morphogenesis and significance of hyphal coiling by nematode-trapping fungi in mycoparasitic relationships // FEMS Microbiology Ecology. 1985. Vol. 31. P. 283- 291.
  128. Phillips, Dennis and Hossein Golzar. Strawberry root and crown rot disease survey. Department of agriculture and food- Government of Western Australia. 2008. 13 p.
  129. Powell, N.T.Interactions Between Nematodes and Fungi in Disease Complexes // Annual Review of Phytopathology. 1971. Vol. 9. P. 253−274.
  130. Risede, J.M. The root-invading nematode-fungus complex of plantains and bananas: A review // Seminario Internacional sobre Produccion, Comercializacion e Industrializacion de Platano. 2005. P. 28.
  131. Ryder, M.H., Z. Yan, Т.Е. Terrace, A.D. Rovira, W. Tang and R.L.Corell. Use of strain of Bacillus isolated in China to suppress take-all and
  132. Rhizoctonia root rot and promote seedling growth of glasshouse- grown wheat in Australian soils // Soil Biol.Biochem. 1999. Vol.31. P. 19−29.
  133. Qualitative Pathway-Initiated Risk Assessment of the Importation of Ribes species fruits, Currants {Ribes rubrum, Ribes sativum and Ribes nigrum) and Gooseberry {Ribes uva-crispa). USDA. Animal and Plant Health Inspection Service.2007.20 p.
  134. Sacherer, P., Defago G, Haas D. Extracellular protease and phospholipase С are controlled by the global regulatory gene gacA in the biocontrol strain Pseudomonas fluorescens CHAO // FEMS Microbiology Letters. 1994. Vol. 116. P. 155−160.
  135. Sasser, J.N. Worldwide Dissemination and Importance of the Root-knot Nematodes, Meloidogyne spp. // J. Nematol. 1977. Vol. 9. Issue 1. P. 26−29.
  136. Sasser, J.N., Freckman, DW. A world perspective on nematology: The role of the society. In: Veech J.A., Dickson D.W., editors. Vistas on Nematology. Hyattsville, MD: U.S.A. Society of Nematology, Inc. 1987. P. 7−14.
  137. Schmidli-Sacherer, P., Keel C, Defago G. The global regulator GacA of Pseudomonas fluorescens CHAO is required for suppression of root diseases in dicotyledons but not in Gramineae // Plant Pathology. 1997. Vol. 46. P. 80−90.
  138. Schultze, Kornelia, Schimek Christine, Wostemeyer Johannes, Burmester Anke. Sexuality and parasitism share common regulatory pathways in the fungus Parasitellaparasitica // Gene. 2005. Vol. 348. P. 33−44.
  139. Seeram, N.P. Berry fruits: compositional elements, biochemical activities, and the impact of their intake on human health, performance, and disease // Journal of agricultural and food chemistry. 2008. Vol.56. Issue 3. P. 627−629.
  140. Seinchorst, J.W. A rapid method for the transfer of nematodes from fixative to anhydrous glycerin //Nematologica. 1959. Vol. 4. P. 57−69.
  141. Siddiqi, Rafiq M., Southey, J.F. Criconema palmatum N. sp. (Nematoda: Criconematidae) From North Devon, England // Nematologica. 1962. Vol. 8. No 3. P. 221−224.
  142. Siddiqui, Z. A., and Mahmood, I. Biological control ofHeterodera cajani and Fusarium udum by Bacillus subtilis, Bradyrhizobium japonicum and Glomus fasciculatum on pigeonpea // Fundamental and applied Nematology. 1995. Vol. 18. P. 559−556.
  143. Siddiqui, I.A., A. Zareen, M.J. Zaki and S.S. Shaukat. Use of Trichoderma species in the control of Meloidogyne javanica root knot nematode in Okra and Mungbean// Pakistan Journal of Biological Sciences. 2001. Vol. 4. Issue 7. P. 846−848
  144. Scholler, M., Hagedorn, G., & Rubner, A. A reevaluation of predatory orbiliaceous fimgi. II. A new generic concept // Sydowia. 1999. Vol.51. P. 89 113.
  145. Scott, D.H., G.M. Darrow. Growing strawberries in the southeastern and gulf coast states. USDA. Farmers Bulletin No 2246. 1972. 33 p.
  146. So Deuk Park, Zakaullah Khan, II Kweon Yeon and Young Ho Kim. A survey for plant- parasitic nematodes associated with strawberry (Fragaria ananassa Duch.) crop in Korea // Plant Pathol. J. 2005. Vol. 21(4). P. 387−390.
  147. Steifert, Keith. FusKey- Fusarium interactive key. Agriculture and Agri-Food Canada. 1996. 65 p.1.nk http://wvvnv.ctu.edu.vrL/colleges/agri/gtrinh/fuskey.pdf
  148. Suatmadji, R. W. Studies on the effect of Tagetes species on plant parasitic nematodes. Stichting Frond Landbouw Export Bureau publicatie 47. H. Veenman Und ZonenN. V., Wageningen, Netherlands. 1969. 132 p.
  149. Timper, P. and В. B. Brodie. Infection of Pratylenchus penetrans by Nematode-pathogenic fungi // J. Nematol. 1993. Vol. 25. No 2. P. 297−302.
  150. Townshend, J.L. Fungus hosts of Aphelenchus avenae Bastian, 1865 and Bursaphelenchus fungivorus Franklin&Hooper, 1962 and their attractiveness to these nematode species // Canadian Journal of Microbiology. 1964. P. 727−737.
  151. Traitler, H., Winter, Richli, Ingenbleek. Characterization of gamma-linolenic acid in Ribes seed // Lipids. 1984. Vol. 19. No.12. P. 923−928.
  152. Truitman, P., and E. Nelson. Production of non-volatile and volatile inhibitors of Pythium ultimum sporangium germination and mycelia growth by strains of Enterobacter cloacae (abstract) // Phytopathology. 1992. Vol. 82. P.1120.
  153. Tzean, S. S. and R. H. Estey. Species of Phytophthora and Pythium as Nematode-destroying Fungi // Journal of Nematology. 1981. Vol. 13. No. 2. P. 160−163.
  154. Watanabe, Tsuneo and Shoji Inoue. Root fungus floras in relation to growth of strawberry plants in pasteurized soil in the field // Ann.Phytopath.Soc.Japan. 1980. Vol. 46. P. 471−479.
  155. Wechter, W.P., Begum, D., Presting, G., Kim, J.J., Wing, R.A., Kluepfel, D. A. Physical mapping, BAC-end sequence analysis, and marker tagging of the soilborne nematicidal bacterium, Pseudomonas synxantha BG33R // OMICS. 2002. Vol. 6. P. 11−21.
  156. Windham, G.L., Windham, M.T. and Williams, W.P. Effects of Trichoderma spp. on maize growth and Meloidogyne arenaria reproduction // Plant Disease. 1989. Vol. 73. P. 493−495.
  157. Wheeler, T.A., Madden, L.V., Rowe, R.C., Riedel, R.M. Modelling of yield loss in potato early dying caused by Pratylenchus penetrans and Verticillium dahlia // Journal of Nematology. 1992. Vol.24. P. 99−102.
  158. Whipps, John M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // Journal of Experimental Botany. 2001. Vol. 52. P. 487−511.
  159. Whitelaw, M.A. Growth promotion of plants inoculated with phosphate-solubilizing fungi // Advances in Agronomy. 2000. Vol. 69. P. 99−151.
  160. Wright, S.A., Zumoff, C.H., Schneider, L., Beer, S.V. Pantoea agglomerans strain EH318 produces two antibiotics that inhibit Erwinia amylovora in vitro // Applied and Environmental Microbiology. 2001. Vol.67. P. 284−292.
  161. Yeates, G. W. Nematodes as soil indicators: functional and biodiversity aspects // Biology and Fertility of Soils. 2003. Vol. 37. No 4. P. 199−210.
  162. Yeates, G. W., Bongers, Т., de Goede, R. G. M., Freckman, D. W. & Georgieva, S. S. Feeding habits in soil nematode families and genera an outline for soil ecologists // Journal of Nematology. 1993. Vol. 25. P. 315−331.
  163. Yeates, G.W., Bongers, T. Nematode diversity in agroecosystems // Agriculture, Ecosystems and Environment. 1999. Vol. 74. P. 113−135.
  164. Yeates, G.W., P. A. A. Loof, W. M. Wouts. Criconematidae (.Nematoda: Tylenchida) from the New Zealand region: analysis of and key to Criconema (Nothocriconemella) species //New Zealand Journal of Zoology. 1997. Vol. 24. P. 153−162.
  165. Zebrowska, J., Hortynski, J., Cholewa, Т., Honcz, K. Resistance to Verticillium dahliae (Kleb.) in the strawberry breeding lines // Communications in Agricultural and Applied Biological Sciences. 2006. Vol. 71. P. 1031−1036.
  166. Zuckerman, Bert M., M. Bess Dicklow, Nelia Acosta. A Strain of Bacillus thuringiensis for the Control of Plant-parasitic Nematodes // Biocontrol Science and Technology. 1993. Vol. 3. Issue 1. P. 41 46.1. Интернет- ресурсы
  167. АФО (Американское фитопатологическое общество): www.apsnet.org http://www.apsnet.org/online/common/names/strabery.asp
  168. ЕОЗР (Европейское общество защиты растений): http://www.eppo.org http://www.eppo.org/QUARANTINE/fungi/Phytophthorafragariae/PHYTFRds. pdf
  169. Nematode-plant expert information system: http://plpnemweb.ucdavis.edu/nemaplex/1.dex Fungorum (CncTeMaTHKa микобиоты): http://www.indexfungorum.org
  170. ФАО (Продовольственная и сельскохозяйственная организация Объединённых Наций): http://faostat.fao.org
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!