Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Изотопный анализ трофической дифференциации почвообитающих коллембол

Диссертация: Изотопный анализ трофической дифференциации почвообитающих коллембол
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Однако для корректной интерпретации трофической структуры сообщества с помощью изотопного анализа необходимо учитывать целый ряд факторов, которые влияют, или могут влиять, на изотопный состав животных. В частности, степень трофического фракционирования изотопов может зависеть от физиологических особенностей отдельных видов, от состава пищи, от температуры. Разные виды коллембол могут иметь… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Коллемболы
    • 1. 2. Трофические связи коллембол- место коллембол в детритной пищевой сети
      • 1. 2. 1. Почвенные микромицеты
      • 1. 2. 2. Трофические связи коллембол и почвенных микромицетов
    • 1. 3. Методы исследования питания почвенных беспозвоночных на примере коллембол)
      • 1. 3. 1. «Традиционные» методы
      • 1. 3. 2. «Биохимические» методы
    • 1. 4. Изотопные методы
    • 1. 5. Изотопные исследования сообщества коллембол
  • Глава 2. Основные методы
    • 2. 1. Полевые исследования
    • 2. 2. Полевой эксперимент
    • 2. 3. Лабораторные исследования
    • 2. 4. Изотопный анализ
    • 2. 5. Статистическая обработка результатов
    • 2. 6. Влияние фиксирующей жидкости (этанол) на изотопный состав коллембол
  • Глава 3. Фракционирование изотопов азота и углерода сапротрофными грибами в лабораторной культуре
  • Глава 4. Влияние температуры на динамику изменения изотопного состава коллембол при смене изотопного состава пищи
  • Глава 5. Трофическое фракционирование изотопов углерода и азота в модельной системе растительный опад — сапротрофные грибы — коллемболы
  • Глава 6. Трофическое фракционирование изотопов азота в модельной системе сапротрофные грибы — коллемболы
  • Глава 7. Влияние межвидовой конкуренции на степень пищевой избирательности коллембол
  • Глава 8. Трофическая дифференциация естественного сообщества коллембол (полевые данные)
    • 8. 1. Сообщества коллембол подстилки среднетаежного леса окрестности биостанции «Мирное»)
    • 8. 2. Сообщество коллембол подстилки елового леса окрестности биостанции «Малинки»)
    • 8. 3. Роль наземного растительного опада в питании разных видов коллембол: экспериментальное исследование
  • Глава 9. Изотопный состав разных семейств коллембол: анализ литературных и собственных данных

Изотопный анализ трофической дифференциации почвообитающих коллембол (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Почвенные сообщества характеризуются большим функциональным и таксономическим разнообразием животных разных размерных классов, которые связаны друг с другом сложной сетью трофических взаимоотношений (Стриганова, 1980; Wardle, 2002). Теория пищевых сетей является одним из основных элементов современной функциональной экологии (Pimm, 1982; Begon et al. 1996). Классическая теория базируется преимущественно на наблюдениях и экспериментах, выполненных в водных, наземных и литоральных сообществах, основу существования которых составляет поток энергии, поставляемый живыми растениями (продуцентами). При этом продуценты, как правило, находятся под прямым контролем со стороны членов следующего трофического уровня (фитофагов). Детритные пищевые сети принципиально отличаются отсутствием такой непосредственной обратной связи, и принципы их функционирования остаются мало понятными, несмотря на то, что общая структура детритных пищевых сетей в почве подробно описана в нескольких частных работах (напр. Moore and De Ruiter, 1991, 1997; Wardle and Yeates, 1993). Для почвенных сообществ характерен высокий уровень распространения полифагии и малая трофическая специализация (Стриганова, 1980; Scheu and Setala, 2002), а также феномен чрезвычайно высокого («избыточного» Anderson, 1975; Ghilarov, 1977) биологического разнообразия. Эти обстоятельства, в сочетании со скрытым образом жизни почвенных организмов, чрезвычайно затрудняют детальные исследования трофических связей почвенных животных и общих принципов организации детритных пищевых сетей.

Среди типичных почвенных животных своим разнообразием и функциональной значимостью выделяется сборная группа «микроартропод», представленная преимущественно коллемболами и разными группами клещей (Swift et al., 1979). Почвенные коллемболы (ногохвостки), в силу своей высокой численности, разнообразия и относительно хорошей изученности, стали классическим объектом почвенной экологии (Кузнецова, 2005; Fontain and Hopkin, 2005). Считается, что микроартроподы преимущественно относятся к микрофитофагам (Стриганова, 1980). Потребляемая микроартроподами доля общей микробной продукции с трудом поддается точному определению, но может быть очень велика (напр. Persson et al., 1980; Вызов, 2005). Таким образом, коллемболы и другие микроартроподы занимают ключевую позицию в основании трофической пирамиды: они контролируют обилие и активность сапротрофных микроорганизмов — первичных деструкторов органического вещества, и в то же время служат ключевым пищевым ресурсом для широкого спектра почвенных и наземных хищников (Halaj and Wise, 2002; Wardle, 2002,2006).

В лабораторных условиях разные виды коллембол часто предпочитают питаться темноокрашенными грибами, относящимися к экологической группе «ранних колонизаторов оиада», например грибами родов Alternaria, Cladosporium, Ulocladium (Klironomos et al., 1992; Maraun et al., 2003 и др.). Однако пищевые связи коллембол в естественных условиях намного более разнообразны и их рацион включает многие другие компоненты (растительные ткани, бактерии, водоросли, нематоды, другие почвенные животные), относительная важность которых в энергетике природных популяций остается пока неизвестной (Некрасова и Александрова, 1982; Parkinson, 1988; Thimm and Larink, 1995; Klironomos and Kendrick, 1995; Lee and Widden, 1996; Sadaka-Laulan et al., 1998; Scheu, 2002; Чернова и др., 2007). Многообразие пищевых связей обуславливает необходимость дифференцированной оценки роли отдельных трофических и таксономических групп коллембол в регуляции активности и состава микробных популяций почвы, процессов деструкции органического вещества и, в конечном счете, потока энергии через почвенный ярус экосистем. Однако вопрос о трофических связях pi трофической специализации коллембол остается мало исследованным, во многом из-за методических трудностей.

Актуальность данного исследования определяется прежде всего недостатком данных о трофической структуре естественных сообществ коллембол, которые необходимы для корректной оценки роли коллембол в функционировании детритного блока экосистем.

В последние годы изотопные методы стали ключевым инструментом для анализа трофической структуры почвенных сообществ и трофических связей почвенных организмов (Neilson et al., 1998; Scheu and Falca, 2000; Ponsard and Arditi, 2000; Briones and Bol, 2003; Schmidt et al., 2004; Iiiig et al., 2005; Halaj et al., 2005). Изотопный анализ трофических связей основывается преимущественно на двух закономерностях:

1) изотопный анализ животного в целом соответствует изотопному составу его пищи и.

2) в пищевых цепях происходит небольшое, но достоверное накопление тяжелых изотопов азота, и, в меньшей степени, углерода (это накопление обычно называют «трофическим фракционированием изотопов»). Эти закономерности позволяют с той или иной точностью определить круг пищевых ресурсов организма, а также его приблизительный трофический уровень (Peterson and' Fry, 1987; Fry, 2006; Тиунов, 2007).

Применение изотопного анализа для исследования трофической структуры сообществ коллембол в лабораторных и полевых условиях показало высокую разрешающую способность метода. Так, Scheu and Falca (2000) в исследовании трофической структуры почвенного сообщества в двух типах леса обнаружили, что коллемболы занимают несколько трофических уровней и предположили, что часть видов могут быть отнесены к первичным разрушителям растительных остатков, тогда как другие — к вторичным деструкторам, питающимся преимущественно почвенными микроорганизмами. Позже, Chahartaghi et al. (2005), применяя изотопный анализ непосредственно к исследованию структуры сообщества коллембол, подтвердили наличие трофической дифференциации у разных видов ногохвосток (от предположительных альгофагов до хищников или некрофагов), причем характерная для вида трофическая специализация оставалась неизменной в разных типах леса.

Однако для корректной интерпретации трофической структуры сообщества с помощью изотопного анализа необходимо учитывать целый ряд факторов, которые влияют, или могут влиять, на изотопный состав животных. В частности, степень трофического фракционирования изотопов может зависеть от физиологических особенностей отдельных видов, от состава пищи, от температуры. Разные виды коллембол могут иметь разный изотопный состав (например, разное соотношение 15N/14N), поскольку они занимают разные трофические уровни, или потому, что их основные пищевые объекты (относящиеся к одному трофическому уровню, например сапротрофные грибы) имеют разный изотопный состав. В отличие от животных, почвенные микроорганизмы способны к весьма существенному фракционированию изотопов азота и-углерода в процессе жизнедеятельности (Robinson, 2001). Например, имеется значительная разница в изотопном составе представителей разных функциональных групп почвенных грибов (Herrn and Chapela, 2001; Hobbie et al., 2007; Mayer et al., 2009). Закономерности фракционирования изотопов ключевых биогенных элементов (13С/12С- 15N/14N) на базовых уровнях детритной пищевой сети (растительные остатки — сапротрофные микроорганизмы — микробофаги) пока исследованы очень слабоэто существенно затрудняет интерпретацию полевых данных о изотопном составе почвенных животных. Поэтому значительная часть нашей работы направлена на сбор данных о характере фракционирования изотопов почвенными грибами и коллемболами и совершенствование методов применения изотопного анализа в почвенно-зоологических исследованиях.

Целью работы является исследование трофической структуры естественных Iсообществ почвообитающих коллембол с помощью изотопного анализа. Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

• Исследовать характер фракционирования стабильных изотопов углерода и азота сапротрофными грибами (микромицетами).

• Исследовать закономерности трофического фракционирования стабильных изотопов углерода и азота в модельной системе растительный опадсапротрофные грибы — коллемболы.

• С помощью искусственной изотопной метки исследовать влияние межвидовой конкуренции на выбор объектов питания в экспериментальных сообществах коллембол ограниченного видового разнообразия.

• Провести анализ изотопного состава почвообитающих коллембол и их потенциальных пищевых субстратов в ряде лесных экосистем. На основании этого анализа выявит различия в характере питания различных видов коллембол.

• На основании собственных и литературных данных протестировать наличие связи между трофической специализацией вида и его принадлежностью к определенной таксономической группе (на уровне семейства) или жизненной форме.

Научная новизна.

Впервые проведен комплекс сопряженных лабораторных и полевых исследований, который позволил выявить основные закономерности фракционирования изотопов углерода и азота в модельной детритной трофической цепи: растительные остаткисапротрофные грибы — коллемболы. В лабораторных и полевых условиях сопоставлена внутривидовая и межвидовая вариабельность изотопного состава коллембол и их потенциальных пищевых субстратов (растения, растительные остатки, почва, почвенные грибы). Обнаружено существенное трофическое фракционирование.

13 13 13 стабильных ИЗОТОПОВ углерода (Д С = 5 СКоллемСолы — 8 С0Пад) у почвенных животных.

Установлено, что трофическое фракционирование изотопов азота (Д15Ы = 8'^коллемболы.

— з'^пшца) зависит от физиологического состояния коллембол. Обнаружена достоверная отрицательная корреляция величины Д15Ы с отношением в телах коллембол, которая предполагает, что степень трофического фракционирования изотопов азота возрастает у голодающих животных. Установлено, что в естественных сообществах коллембол представители разных семейств и разных жизненных форм закономерно отличаются по изотопному составу, что предполагает наличие разной трофической специализации у разных таксономических и экологических групп.

Практическая значимость работы.

Оптимизированы и адаптированы для работы с почвенными животными методы исследования трофических связей животных и структуры пищевых сетей с помощью изотопного анализа. Разработанные методы и подходы приложимы к любым биологическим объектам и могут быть использованы для широкого спектра фундаментальных и прикладных экологических исследований. Результаты, полученные в ходе исследования, позволяют расширить представления о принципах организации детритных пищевых цепей, что необходимо для разработки и совершенствования методов биологической мелиорации почв, а также в целях биоиндикации.

Выводы.

1) Изотопный состав углерода (соотношение 13С/12С) в модельной пищевой цепи «растительные остатки — подстилочные грибы — коллемболы» существенно изменяется, что не соответствует принятым представлениям о консервативности изотопного состава углерода в пищевых цепях.

2) Накопление тяжелого изотопа азота (15Ы) в экспериментальной системе «подстилочные грибы — коллемболы» составляет в среднем 3.9%о на один трофический уровень. Содержание тяжелого изотопа азота увеличивается при голодании животных.

3) В лабораторных условиях (при питании идентичной пищей) изотопный состав углерода и азота (13С/12С и 15Ы/14Ы) мало отличается у разных видов коллембол. Наблюдаемые в естественных условиях межвидовые отличия изотопного состава тканей коллембол не связаны с видоспецифическими особенностями фракционирования изотопов.

4) Изотопный состав углерода и азота отличается у разных видов почвенных микромицетов даже при выращивании на идентичном субстрате (межвидовая вариация б1^ достигает 4%о). В пределах одного вида изотопный состав углерода I1 азота мицелия грибов зависит от температуры и возраста грибных колоний. Вариации изотопного состава почвенных микофагов можно отчасти объяснить выборочным употреблением определенных видов почвенных грибов.

5) Присутствие конкурентных видов влияет на выбор пищевых объектов у коллембол. В моновидовых культурах все исследованные виды коллембол предпочитали одни и те же виды микромицетов, однако присутствие конкурентов приводило к расширению спектра потребляемых видов грибов.

6) В естественных сообществах межвидовые различия изотопного состава углерода и азота тканей коллембол достигали 7.6%<> и 9.3%о, соответственно, что указывает на существенные отличия в спектре пищевых объектов разных видов.

Разные виды коллембол в пределах одного семейства и жизненной формы имеют схожую трофическую специализацию. Минимальное содержание тяжелого азота (б'^ меньше, чем в подстилке) обнаружено у атмобионтных и верхнеподстилочных коллембол (представителей семейств Оюуйогшёае и 8ттЙшпс1ае). Это предполагает, что значительную долю их рациона составляют наземные водоросли.

Заключение

.

Комплекс сопряженных лабораторных и полевых исследований с применением изотопного анализа позволил оценить степень трофической дифференциации разных видов почвообитающих коллембол, а также выявить основные закономерности фракционирования стабильных изотопов азота и углерода в модельной детритной трофической цепч: растительный опад — сапротрофные грибы — коллемболы. 1.

Мы обнаружили существенное накопление С в модельной пищевой цепи растительные остатки — подстилочные грибы — коллемболы. Трофическое фракционирование углерода в системе, основанной на опаде СЗ растений, составило.

4.2/6о, что не соответствуют опубликованным оценкам средней величины Д13С в пищевых цепях в наземных экосистемах (Post, 2002; McCutchan et al., 2003). Более того, трофическое фракционирование изотопов углерода существенно отличалась у коллембол при культивировании на опаде СЗ и С4 растений. Если разница в степени фракционирования С/ С в СЗи С4-системах подтвердится в дальнейших экспериментах, это может заставить пересмотреть количественные результаты целого.

11 ряда экспериментальных работ, в которых, А С принимался равным в СЗи С4-системах (напр. Albers et al., 2006; Pringle and Fox-Dobbs, 2008).

Мы обнаружили, что трофическое фракционирование изотопов азота зависит от физиологического состояния коллембол. Степень трофического фракционирования изотопов азота достоверно снижалась с увеличением соотношения C: N в телах коллембол. Тем не менее, анализ собственных и литературных данных показал, что в среднем величина трофического фракционирования изотопов азота была схожей у разных видов коллембол и составила около 3.9%о. Напротив, полевые исследования указывают на существенные и систематические отличия изотопного состава азота разных видов коллембол. Резкий контраст между лабораторными оценками трофического фракционирования изотопов азота (схожие величины A15N у разных видов и семейств коллембол) и полевыми данными (достоверно отличные величины 815N у разных видов и даже у разных семейств) указывает на то, что разница в изотопном составе коллембол не связана с межвидовой разницей в физиологии процесса фракционирования изотопов, а отражает различия в спектре питания отдельных видов.

В лабораторных условия разные виды почвенных грибов, выращенных на идентичной питательной среде, обнаружили существенные различия в изотопном составе углерода и азота. Разница между видами достигала 2%о для 613С и 4%о для 513N. Более того, в пределах одного вида изотопный состав грибов зависел от возраста грибной колонии (разница между колониями достигала 6%о) и температуры. Вероятно, варьирование изотопной подписи у почвенных микофагов может быть по крайней мере отчасти объяснено выборочным употреблением определенных видов почвенных грибов.

Однако анализ естественных сообществ коллембол позволил показать, что несмотря на значительную вариабельность изотопного состава потенциальных пищевых объектов (растительный опад, сапротрофные грибы), внутривидовая дисперсия изотопного состава коллембол на порядок меньше, чем разница между видами. Таким образом, вариабельность изотопного состава почвенных грибов и других субстратов, по-видимому, усредняется на последующем трофическом уровне и не приводит к сильной внутривидовой вариабельности изотопного состава коллембол.

Как показали результаты лабораторного исследования с применением изотопной метки, присутствие конкурентов влияет на выбор объекта питания коллембол. Среди исследованных видов были обнаружены относительно толерантные к присутствию конкурентов виды (F. candida и S. tenebricosa), которые практически не изменили состав своего рациона в присутствии других видов. Менее толерантные виды коллембол были либо полностью вытеснены из культуры, либо их численность сильно упала в результате конкуренции. Этот эксперимент показал, с одной стороны, что выбор коллемболами пищевых объектов в естественных условиях (т.е., вероятно, в условиях постоянного или периодического недостатка пищевых ресурсов) зависит не только от «пищевых преферендумов» определенного вида, но и от присутствия других видов коллембол, которые являются пищевыми конкурентами. С другой стороны, эти данные предполагают, что, в соответствии с теоретическими представлениями, стабильное существование естественного многовидового сообщества коллембол должно сопровождаться разделением трофических ниш отдельных видов.

Изотопный анализ нескольких естественных сообществ коллембол подтвердил наличие трофической дифференциации видов. Межвидовые различия изотопного состава углерода и азота тканей коллембол достигали 7.6%о и 9.3%о, соответственно, что указывает ня существенные отличия в спектре пищевых объектов. Более того, удалось показать наличие характерной и устойчивой трофической специализации представителей разных таксономических (на уровне семейства) и экологических (жизненные формы) групп коллембол. Закономерная разница изотопного состава коллембол, обитающих в разных слоях лесной подстилки, и относящихся к разным семействам, указывает на освоение ими различных ресурсов углерода и азота. Это подтверждают и результаты полевого эксперимента.

Полученные в ходе лабораторных исследований средние оценки величин трофического фракционирования изотопов азота и углерода позволяют по изотопному составу коллембол очертить круг их возможных пищевых объектов. Применение этого подхода позволило предположить, что значительную долю в питании атмобионтных и верхнеподстилочных видов коллембол (представителей семейств Вюуг1-о1шс1ае и 8гшпйшпс1ае) составляют фотосинтезирующие почвенные водоросли, в то время как энергетика подстилочно-почвенных и почвенных коллембол (ОпусЫиг?<3ае, №апипс!ае) в большей степени основывается на углероде, поступающем (вероятно, через промежуточные звенья) из опада и/или корней высших растений.

Показать весь текст

Список литературы

  1. .А. (2005) Зоомикробиые взаимодействия в почве. М., ГЕОС, 212с.
  2. Е.В., Кочетова JI. М., (1994) Оценка потенциальных санитарных возможностей коллембол. тКивотные в природных экосистемах, С. 50−59, Н. Новгород.
  3. JI.JT., Успенская Г. Д. (1980) Некоторые вопросы экологии грибов (пути формирования основных экологических групп грибов, их место и роль в биогеоценозах). Итоги науки и техники. Сер. Ботаника, Т.4, С. 49−105.
  4. М.С. (1970) Закономерности приспособления членистоногих к жизне на суше. М: Наука, 276с.
  5. М.С. (1984) Коллемболы, их место в системе, особенности и значение. Фауна и экология ногохвосток. М: Наука, С. 3−11.
  6. С.Ю., Сергеева Т. К. (1989) Особенности пищевых связей лесных жужелиц родов Carabus и Cychrus. Зоологический Журнал, Т. 68, С. 45−51.
  7. Н.В. (1971) Биогеоценологические исследования в широколиственных лесах. М.: Наука, 333 с.
  8. Г. А. (2003) Лекции по природоведческой микробиологии. М: Наука, 348с.
  9. Д.Г. (ред.) (1991) Методы почвенной микробиологии и биохимии. Москва: Изд-во МГУ, 304 с.
  10. JI.O. Киселева Н. К. и др. (1971) Пестрота почвенного покрова и ее связь с парцеллярной структурой биогеоценоза. Кн.: Биогеоценологические исследования в широколиственно-еловых лесах/ ред. Дылис Н. В. М.: Наука, С. 151−224.
  11. Количественные методы в почвенной зоологии (1987). М.: Наука, 287с.
  12. Н.А. (1988) Типы населения коллембол в хвойных лесах европейской части СССР. В Кн.:Экология микроартропод лесных почв. М.: Наука, С. 25−52.
  13. Н.А. (2005) Организация сообществ почвообитающих коллембол. М., Прометей, 243с.
  14. А.В. (2001) Методы выделения и характеристики комплексов микроскопических грибов наземных экосистем. М: МАКС Пресс, 91с.
  15. О.Е. (2005) Антропогенная экология почвенных грибов. М.: Медицина для всех, 196с.
  16. Т.Г. (1988) Почвенная микология. М.: Из-во МГУ, 220с.
  17. К.А., Александрова И. В. (1982) Участие коллембол и дождевых червей в превращении органического вещества водорослей. Почвоведение, 10: 65−71.
  18. Определитель коллембол фауны СССР под ред. Н. М. Черновой и Б. Р. Стригановой (1988). М: Наука, 215с.
  19. Ю. Ю., (2009) Внутри- и Межвидовые взаимоотношения коллембол подотряда Poduromorpha и подотряда Entomobryomorpha на основе трофической деятельности. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. Н. Новгород.
  20. Т.К., Грюнталь С. Ю. (1988) Сезонные изменения питания жужелицы Agonum assimile (Coleoptera, Carabidae). Зоологический Журнал, Т. 67, С. 1589−1592.
  21. Ю.В., Борисова В. Н. (1988) Экспериментальный анализ взаимоотношения микроартропод с гифомицетами лесной подстилки. В Кн.: Экология микроартропод лесных почв. М.: Наука, С. 115−122.
  22. С.К. (1970) Жизненные формы ногохвоеток (Collembola). Зоологический журнал, Т. 49, С. 1437−1454.
  23. .Р. (1980) Питание почвенных сапрофагов. М., Наука, 244с.
  24. А.В. (2007) Стабильные изотопы углерода и азота в почвенно-экологических исследованиях. Известия РАН, Сер. Биол., Т. 4, С. 475−489.
  25. Ю.И., Ананьева С. И., Хаюрова Е. П. (1971) Комплекс почвообитающих беспозвоночных в пятнистых тундрах Западного Таймыра. В кн.: Биогеоценозы таймырской тундры и их продуктивность. JL: Наука, с. 198−211.
  26. Н.М. (1977) Экологические сукцессии при разложении растительных остатков. М., Наука, 200с.
  27. Н.М., Бокова А. И., Варшав Е. В., Голощапова Н. П., Савенкова Ю. Ю. (2007) Зоофагия у коллембол. Зоологический Журнал, 86(8), С. 1−13.
  28. W. -R.', Hesse С. (2003) Isotope fractionations in the biosynthesis of cell components by different fungi: a basis for environmental carbon flux studies. FEMS Microbiology Ecology, V. 46, P. 121−128.
  29. T.S., Sterner R.W. (2000) The effect of dietary nitrogen content on trophic level 15N enrichment. Limnological Oceanographer, V. 45, P. 601−607.
  30. D., Schaefer M., Scheu S. (2006) Incorporation of plant carbon into the soil animal food web of an arable system. Ecology, V. 87, P. 235−245.
  31. J.M. (1975) The enigma of soil animal species diversity. Progress in soil zoology. Ed. Vanek J. Prague: Academia, P. 51−58.
  32. J., (1941) Zur Oekologie der Collembolen. Opusc. Entomology, V. 3, P. 1−256.
  33. Auerswald K., Wittmer M.H.O.M., Zazzo A., Schaufele R., Schnyder H. (2010) Biases in the analysis of stable isotope discrimination in food webs. Journal of Applied Ecology, V. 47, P. 936−941.
  34. Barnes C., Sweeting C.J., Jennings S., Barry J.T., Polunin N.V.S. (2007) Effect of temperature and ration size on carbon and nitrogen stable isotope trophic fractionation. Functional Ecology, V. 20, P. 356−362.
  35. I.P., Cherrett J.M., Ford I.B. (1986) A survey of the invertebrates feeding on living clover roots (Trifolium repens L.) using P as a ladiotracer. Pedobiologia, V. 29, P. 201−208.
  36. Berg M.P., Staffer M., van den Huevel H.H. (2004) Feeding guilds in Collembola based on digestive enzymes. Pedobiologia, V. 48, P. 589−601.
  37. Bernays EA, Bright KL, Gonzales N, Angel J (1994) Dietary mixing in a generalist herbivore: tests of two hypotheses. Ecology, V. 75, P. 1997−2006.
  38. M., Griffiths B.S., Ritz K. (2000) Food preferences of earthworms for soil fungi. Pedobiologia, V. 44, P. 666−676.
  39. В., Compstedt D., Ekblad A. (2008) Can isotopic fractionation during respiration explain the C-enriched sporocarps of ectomycorrhizal and saprotrophic fungi? New Phytologist, V. 177, P. 1012−1019.
  40. D.R., Pataki D.E., Randerson J.T. (2008) Carbon isotopes in terrestrial ecosystem pools and C02 fluxes. New Phytologist, 178: 24−40.
  41. P., Spooncr B. (2001) Soil fungi: diversity and detection. Plant and Soil, V. 232, P. 147−154.
  42. Briones M.J.I., Bol R. (2003) Natural* abundance of C-13 and N-15 in earthworms from different cropping treatments. Pedobiologia, V. 47, P. 560−567.
  43. Bugoni L., McGill R. A. R., Furness R. W. (2008) Effects of preservation methods on stable isotope signatures in bird tissues. Rapid communications in mass spectrometry, V. 22, P. 2457−2462.
  44. S., Verisimo P., Freire J. (2009) Effects of preservatives on stable isotope analyses of four marine species. Estuarine, Coastal and Shelf Science, V. 82, P. 348−350.
  45. A. (1980) Root-feeding in a grassland soil: observations from a rhizotron. In: New Product and Techniques. Proc. 39th N.Z. Weed and Pest Control Conf. pp. 230−233.
  46. S., Angulo E., Courchamp F. (2009) Variation in discrimination factors (A15N and Al3C): the effect of diet isotopic values and applications for diet reconstruction. Journal of Applied Ecology, V. 46, P. 443−453.
  47. S., Angulo E., Courchamp F., Figuerola J. (2010) Trophic experiments to estimate isotope discrimination factors. J. Appl. Ecol. 47, 948−954.
  48. M., Langel R., Scheu S., Ruess L. (2005) Feeding guilds in Collembola based on nitrogen stable isotope ratios. Soil Biology and Biochemistry, V. 37, P. 1718−1725.
  49. B., Snider R.J., Snider R.M. (1995) Food prefeience and effects of food type on the life history of some soil Collembola. Pedobiologia, V. 39, P. 496−505.
  50. Christensen M (1989) A view of fungal ecology. Mycologia, V. 81, P. 1−19.
  51. K. (1964) Bionomics of Collembola. Annual Review of Entomology, V. 9, P. 147−148.
  52. K., (1967) Competition between collembolan species in culture jars. Revue De’ecologie et de biology du sol, V. 4, P. 439−462.
  53. A., Johnston N.M. (1999) Scaling of metabolic rate with body mass and temperature in teleost fish. Journal of Animal Ecology, V. 68, P. 893−905
  54. Dawson T.E., Mambelli S., Plamboeck A.H., Templer P.H., Tu K.P. (2002) Stable isotopes in plant ecology. Annual of Review in Ecology and Systematic, V. 33, P. 507−559.
  55. Dawson T.E., Mambelli S., Plamboeck A.H., Templer P.H., Tu K.P. (2002) Stable isotopes in plant ecology. Annual Review of Ecology and Systematics, V. 33, P. 507−559.
  56. DeNiro M.J., Epstein S. (1981) Influence of diet on the distribution of nitiogen isotopes in animals. Geochimica et Cosmochimica Acta, V. 45, P. 341−351.
  57. R.F., Fagan W.F. (2003) Might nitrogen limitation promote omnivoiy among carnivorous arthropods? Ecology, V. 84, P. 2522−2531.
  58. W., (1963) Leistungsspezifitat bei Streuzersetzern. Soil organisms, P. 92−102.
  59. Dunstan G.A., Volkman J.K., Barrett S.M., Leroi J.-M., Jeffrey S.W., (1994) Essential polyunsaturated fatty acids from 14 species of diatom (Bacillariophyceae). Phytochemistry, V. 35, P. 155−161.
  60. Edwards M.S., Turner T.F., Sharp Z. D (2002) Short- and Long-Term Effects of Fixation and
  61. Preservation on Stable Isotope Values (813C, 515N, d34S) of Fluid-Preserved Museum Specimens. Copeia, V. 4, P. 1106−1112.
  62. K. S., Callaghan T. V., Jones H. E., Leake J. R., Michelsen A., Read D. J. (2001) Assimilation' and isotopic fractionation of nitrogen by mycorrhizal fungi. New Phytologist, V. 151, P. 503−512.
  63. K., Ruess L., Scheu S. (2009) Collembola switch diet in presence of plant roots thereby functioning as herbivores. Soil Biology and Biochemistry, V. 41, P. 1151−1154.
  64. M. (1998) The effects of different methods of preservation on the 15N concentration in Folsomia Candida (Collembola). Applied Soil Ecology, V. 9, P. 101−104.
  65. I., Mahieu N., Cadisch G. (2003) Carbon isotopic fractionation during decomposition of plant materials of different quality. Global Biogeochemical Cycles, 17(3), Art. No. 1075.
  66. A.H., Atkinson D., Read D.J., Usher M.B. (eds.) Ecological interactions in soil. Oxford, Blackwell Scient. Publications, pp. 333−337.
  67. M.T., Hopkin S.P. (2005) Folsomia Candida (Collembola): A «standard» soil arthropod. Annual Review of Entomology, V. 50, P. 201−222.
  68. Fry B. (2006) Stable isotope ecology. Springer.
  69. A. (2000) Arbuscular mycorrhizal fungi, Collembola and plant growth. Trends in Ecology & Evolution, V.15, P. 369−372. .
  70. A.C., Bower E. (1997) Interactions between insects and mycorrhizal fungi. In: Gange A.C., Brown V.K. (eds.) Multitrophic Interactions in Terrestrial Systems. Blackwell Science, P. 115−132.
  71. Gannes L.Z., O’Brien D.M., Martinez del Rio C. (1997) Stable isotopes in animal ecology: assumptions, caveats, and a call for more laboratoty experiments. Ecology, V. 78, P. 1271−1276.
  72. Gebauer G., Taylor A.F.S. (1999) 15N natural abundance in fruit bodies of different functional groups of fungi in relation to substrate utilization. New Phytologist, V. 142, P. 93−101.
  73. M.S. (1977) Why so many species and so many individuals can coexist in the soil? Ecological Bulletin, V. 25, P. 593−597.
  74. S.K., Potter D.A. (1993) Potential role of Collembola as biotic mortality agents for entomopatogenic Nematodes. Pedobiologia, V. 37, P. 30−38.
  75. H., (1943) Okolodie und lebensgemeinschaften der Collembolen imSchweizerischen Exkursionsgebiet Basels. Revue Suisse de Zoologie, Bd. 50, S. 131−224.
  76. C., Forbes A.E. (2006) Changes in 5,3C stable isotopes in multiple tissues of insect predators fed isotopically distinct prey. Oecologia, V. 147, P. 615−624.
  77. A., Cherrett J.M. (1993) The exploitation of food resources by soil meso- and macro invertebrates. Pedobiologia, V. 37, P. 303−327.
  78. J., Wise D.Ii. (2002) Impact of a detrital subsidy on trophic cascades in a terrestrial grazing food web. Ecology, V. 83, P. 3141−3151.
  79. J., Peck R.W., Niwa C.G. (2005) Trophic structure of a macroarthropod litter food web in managed coniferous forest stands: a stable isotope analysis with 615N and 5l3C. Pedobiologia, V. 2, P. 109−118.
  80. L.L., Scrimgeour C.M. (1997) Terrestrial plant ecology and I5N natural abundance: The present limits to interpretation for uncultivated systems with original data from a Scottish old field. Advances in Ecological Research, V. 27, P. 133−212.
  81. S.C., Gehring C.A., Selmants P.C., Deckert R.J., (2006) Carbon and nitrogen elemental and isotopic patterns in macrofungal sporocarps and trees in semiarid forests of the south-western USA. Functional Ecology 20, 42−51.
  82. Haubert D.*, Langel R., Scheu S., Ruess L. (2005) Effects of food quality, starvation and life stage on stable isotope fractionation in Collembola. Pedobiologia, V. 49, P. 229−237.
  83. D., Hagglom M.M., Langel R., Scheu S., Ruess L., (2006) Trophic shift of stable isotopes and fatty acids in Collembola on bacterial diets. Soil Biology and Biochemistry, V. 38, P. 2004−2007.
  84. D.L. (2001) The magnitude of fungal diversity: the 1.5 million species estimate revisited. Mycological Research, V. 105, P. 1422−1432.
  85. Henn, M.R., Chapela, I.H. (2000) Differential C isotope discrimination by fungi during decomposition of C3- and C4-derived sucrose. Applied and Environmental Microbiology, V. 66, P. 4180−4186.
  86. M.R., Chapela I.H. (2001) Ecophysiology of I3C and 15N isotopic fractionation in forest fungi and the roots of the saprotrophic-mycorrhizal divide. Oecologia, V. 128, P. 480 487.
  87. M.R., Chapela I.H. (2004) Isotopic fractionation during ammonium assimilation by basidionycete fungi and its implications for natural nitrogen isotope patterns. New Phytologist, V. 162, P. 771−781.
  88. Hishi T., Hyodo ?., Saitoh S., Takeda H. (2007) The feeding habits of collembola along decomposition gradients using stable carbon and nitrogen isotope analyses. Soil Biology and Biochemistry, V. 39, P. 1820−1823.
  89. E.A., Ouimette A.P., (2009) Controls of nitrogen isotope patterns in soil profiles. Biogeochemistry, DOI 10.1007/sl 0533−009−9328−6.
  90. E.A., Werner R.A. (2004) Intramolecular, compound-specific, and bulk carbon isotope patterns in C-3 and C-4 plants: a review and synthesis. New Phytologist, 161: 371−385.
  91. E.A., Sanchez F.S., Rygiewicz P.T. (2004) Carbon use, nitrogen use, and isotopic fractionation of ectomycorrhizal and saprotrophic fungi in natural abundance and Relabelled cultures. Mycological Research, V. 108, P. 725−736.
  92. S.P. (1997) Biology of the Springtails (Insecta: Collembol). Oxford University Press, pp. 333.
  93. J., Sustr V., Smrz J., (1999) Feeding of the oribatid mite Scheloribates laevigatus (Acari: Oribatida) in laboratory experiments. Pedobiologia, V. 43, P. 328−339.
  94. H.B., Elmholt S., Petersen H. (2003) Collembolan dietary specialization on soil grown fungi. Biology and Fertility of Soils, V. 39, P. 9−15.
  95. H.B., Johansson T., Canback B., Hedlund K., Tunlid A. (2005) Selective foraging of fungi by collembolans in soil. Biology Letters, 1: 243−246.
  96. H.B., Hedlund K., Axelsen J.A. (2008) Life-history traits of soil collembolans in relation to food quality. Applied Soil Ecology, V. 38, P. 146−151.
  97. P. S. (1996) On spurious correlation in geographical problems. Canadian Geographer, V. 40, P. 194−202.
  98. S., Kaneko N. (2004) The feeding preference of a collembolan (Folsomia Candida Willem) on ectomycorrhiza (.Pisolithus tinctorius (Pers.)) varies with mycelial growth condition and vitality. Applied Soil Ecology, V. 27, P. 1−5.
  99. Kaneko N, McLean MA, Parkinson D (1995) Giazing preference of Onychiurus subtenuis (Collembola) and Oppiella nova (Oribatei) for fungal species inoculated on pine needles. Pedobiologia, V. 9, P. 538−546.
  100. B.C. (1982) Beware of spurious self-correlations. Watei Resources, V. 18, P.1041−1048.
  101. A., Struwe S. (1987) Functional groups of microfungi on decomposing ash litter. Pedobiologia, V. 30, P. 151−159.
  102. A., Struwe S. (1992) Functional groups of microfungi in decomposition. In: Carroll G.C., WicklowD.T. (eds.) The fungal community. Marcel Dekker, pp. 619−630.
  103. J.N., Widden P., Deslandes I. (1992) Feeding preferences of the collembolan Folsomia Candida in relation to micro fungal succession on decaying litter. Soil Biology and Biochemistry, V. 24, P. 685−692.
  104. J.N., Kendrick B. (1995) Relationships among microarthropods, fungi, and their environment. Plant and Soil, V. 170, P. 183−197.
  105. J.N., Hait M.M. (2001) Animal nitrogen swap for plant carbon. Nature, V. 410, P. 651−652.
  106. C. B., Angel R. A. (1967) A preliminary study of the dietary requirements of Tomocerus (Collembola). American Midland Naturalist, V. 77, P. 510−516.
  107. A., Yoshioka T., Ando T., Takahashi M., Koba K., Wada E. (1999) Natural 13C and 15N abundance of field-collected fungi and their ecological implications. New Phytologist, V. 144, P. 323−330.
  108. A., Miyajima T., Tateishi T., Watanabe T., Takahashi M., Wada E. (2007) Dynamics of 15N natuial abundance in wood-decomposing fungi and their ecophysiological implications.Tsotopes in Environmental and Health Studies, V. 43, P 83−94.
  109. C.J. (1989) Ecological Methodology. Harper and Row, New York, 654pp.
  110. Macko S.A., Estep M.L.F., Engel M-H., Hare P.E. (1986) Kinetic fractionation of stable nitrogen isotopes during amino-acid transamination. Geochimica et Cosmochimica Acta, V. 50, P. 2143−2146.
  111. M., Martens H., Migge S., Theenhaus A., Scheu S. (2003) Adding to 'the enigma of soil animal diversity1: fungal feeders and saprophagous soil invertebrates prefer similar food substrates. European Journal of Soil Biology, V. 39, P. 85−95.
  112. Maitinez del Rio C., Wolf B.O. (2005) Mass balance models for animal isotopic ecology. In: Starck, M.A., Wang, T. (eds.) Physiological and Ecological Adaptations to Feeding in Vertebrates. Science publishers, Enfield, New Hampshire, P. 141−174.
  113. Martinez del Rio C., Wolf N., Carleton S.A., Gannes L.Z. (2009) Isotopic ecology ten years after a call for more laboratory experiments. Biological Review, V. 84, P. 91−111.
  114. Mayor J.D., Schuur E.A.G., Henkel T.W. (2009) Elucidating the nutritional dynamics of fungi using stable isotopes. Ecology Letters, V. 12, P. 171−183.
  115. McCue M.D. (2008) Endogenous and environmental factors influence the dietary fractionation of C and N in hissing cockroaches Gromphadorhina portentosa. Physiological and Biochemical Zoology, V. 81, P. 14−24.
  116. McCutchan J.H., Lewis W.M., Kendall C., McGrath C.C. (2003) Variation in trophic shift for stable isotope ratios of carbon, nitrogen, and sulfur. Oikos, V. 102, P. 378−390.
  117. McMillan J.H., Healey I.N. (1971) A quantitative technique for the analysis of the gut contents of Collembola. Review of Ecology and Biology, V. 8, P. 295−300.
  118. A., Quarmby C., Sleep D., Jonasson S. (1998) Vasicular plant 15N natural abundance in heath and forest tundra ecosystems is closely correlated with presence and type of mycorrhizal fungi in roots. Oecologia, V. 115, P. 406−418.
  119. A.A., Smith M.S., Kunst L. (2000) All fatty acids are not equal: discrimination in plant membrane lipids. Trends in Plant Science, V. 5, P. 95−101.
  120. M., Wada E. (1984) Stepwise enrichment of 15N along food chains: further evidence and the relation between 515N and animal age. Geochimica et Cosmochimica Acta, V. 48, P. 1135−1140.
  121. Y., Wada E. (1967) The abundance ratio of 15N/14Nin marine environments. Rec.
  122. Oceanogr. Works Jpn, V. 9, P. 37−53.
  123. K.A., Tillberg C.V. (2005) Temporal and spatial variation to ant omnivory in pine forests. Ecology, V. 86, P. 1225−1235.
  124. Moore J.C. and de Ruiter P.C. (1991). Temporal and Spatial Heterogeneity of Trophic Interactions within Belowground Food Webs: An Analytical Approach to Understanding Multi-Dimensional Systems. Agriculture, Ecosystems and Environment, V. 34, P. 371−397.
  125. K. (1984) Interaction between two decomposer basidiomycetes and a collembolan under Sitka spruce: distribution, abundance and selective grazing. Soil Biology and Biochemistry, V. 16, P. 227−233.
  126. O’Connor F. B. (1967) The Enchytraeidae. In: Soil biology. London.
  127. K., Scheu S. (2002) Stable isotope enrichment (8I5N and 813C) in a generalist predator (Pardosa lugubris, Araneae: Lycosidae): effects of prey quality. Oecologia, V. 130, P. 337−344.
  128. Y., Tayasu I., Okuda N., Sota T. (2009) Vertical heterogeneity of forest floor inverbrate food wed as indicated by stable-isotope analysis. Ecological Research, V. 24, P. 1351−1359.
  129. Olive P.J.W., Pinnegar J.K., Polunin N.V.C., Richards G., Welch R. (2003) Isotope trophic-step fractionation: a dynamic equilibrium model. Journal of Animal Ecology, V. 72, P. 608−617.
  130. Ostle N., Briones M.J.I., Ineson P., Cole L., Staddon P., Sleep D. (2007) Isotopic detection of recent photosynthate carbon flow into grassland rhizosphere fauna. Soil Biology and Biochemistry, V. 39, P. 768−777.
  131. Ostrom P. H, Colunga Garcia M, Gage S. H (1997) Establishing pathways of energy flow for insect predators using stable isotope ratios: field and laboratory evidence. Oecologia, V. 109, P.108−113.
  132. D., Visser S., Whittaker J.B. (1979) Effects of collembolan grazing on fungal colonization of leaf litter. Soil Biology and Biochemistry, V. l 1, P. 529−535.
  133. D. (1988) Linkages between resourse availability, microorganisms and soil invertebrates. Agriculture Ecosystems and Environment, V. 24, P. 21−32.
  134. M.E., Grey J. (2010) Laboratory measures of isotope discrimination factors: comments on Cant, Angulo & Courchamp (2008,2009). Journal of Applied Ecology, V. 47, P. 942−947.
  135. T., Baath E., Clarholm M., Lundkvist H., Soderstrom B.E., Sohlenius B. (1980) Trophic structure, biomass dynamics and carbon metabolism of soil organisms in a Scots pine forest. Ecological Bulletin, V. 32, P. 419−459.
  136. H. (2002) Collembolan ecology at the turn of the millennium. Pedobiologia, V. 46, P. 246−260.
  137. H., Luxton M. (1982) A comparative analysis of soil fauna populations and their role in decomposition process. Oikos, V. 39, P.287−388.
  138. Peterson B.J., Fry B. (1987) Stable isotopes in ecosystem studies. Annual Review of Ecology and Systematica V. 18, P. 293−320.
  139. D. L., Gregg J. w. (2001) Uncertainty in source partitioning using stable isotopes. Oecologia, V. 127, P. 171−179.
  140. D. L., Gregg J. w. (2003) Source partitioning using stable isotopes: coping with too many sources. Oecologia, V. 136, P. 261−269.
  141. D.L., Eldridge P.M. (2006) Estimating the timing of diet shifts using stable isotopes. Oecologia, V. 147, P. 195−203.I
  142. Pokarzhevskii A.D., Van Straalen N.M., Zaboev D.P., Zaitsev A.S. (2003) Microbial links and element flows in nested detrital food webs. Pedobiologia, V. 47, P.213−224.
  143. M.M., Langel R., Korner C., Maraun M., Scheu S. (2007) The underestimated i importance of belowground carbon input for forest soil animal food webs. Ecology1. tters, V. 10, P. 729−736.
  144. M.M., Langel R., Scheu S., Maraun M. (2009) Compartmentalization of the soil animal food wed as indicated by dual analysis of stable isotope ratios (15N/14N and 13C/12C). Soil Biology and Biochemistry, V. 41, P. 1221−1226.
  145. J.F. (2000) Vertical distribution of Collembola (Hexapoda) and their food resources in organic horizons of beech forests. Biology and Fertility of Soils, V. 32, P. 508−522.
  146. S., Amlou M. (1999) Effects of several preservation methods on the isotopic content of Drosophila samples. Animal Biology, V. 322, P. 35−41.
  147. S., Arditi R. (2000) What can stable isotopes (51SN and 513C) tell about the food web of soil macro-invertebrates? Ecology, V. 81, P. 852−864.
  148. S., Arditi R. (2001) Detecting omnivory with 615N. Trends in Ecology and Evolution, V. 16, P. 20−21.
  149. S., Averbuch P. (1999) Should growing and adult animals fed on the same diet show different 515N values? Rapid Communication in Mass Spectrometry, V. 13, P. 13 051 310.
  150. T. B. (1959) Studies on the food of Collembola in a Douglas fir plantation. Proceedings of the Zoological Society of London, V. 132, P. 71−82.
  151. D.M. (2002) Using stable isotopes to estimate trophic position: Models, methods, and assumptions. Ecology, V. 83, P. 703−718.
  152. D.M., Layman C.A., Arlington D.A., Takimoto G., Quattrochi J., Montana C.G. (2007) Getting to the fat of the matter: models, methods and assumptions for dealing with lipids in stable isotope analyses. Oecologia, 152: 179−189.
  153. M., Guiguer K., Barton D.R. (2003) Effects of temperature on isotopic enrichment in Daphnia magna: implications for aquatic food-web studies. Rapid Communications in Mass Spectrometry, V. 17, P. 1619−1625.
  154. Pringle R.M., Fox-Dobbs K. (2008) Coupling of canopy and understory food webs by ground-dwelling predators. Ecology Letters, 11: 1328−1337.
  155. DJ. (1980) Optimal foraging for complementary resources. American Naturalist, V. 116, P. 324−346.
  156. Read D.S., Sheppard S.K., Bruford M.W., Glen D.M., Symondson W.O.C. (2006) Molecular detection of predation by soil micro-arthropods on nematodes. Molecular ecology, V.15, P. 1963−1972.
  157. C.T., Felicetti L.A., Sponheimer M. (2005) The effect of dietary protein quality on nitrogen isotope discrimination in mammals and birds. Oecologia, V. 144, P. 534−540.
  158. C.T., Felicetti L.A., Florin S.T. (2010) The impact of protein quality on stable isotope ratio discrimination and assimilated diet estimation. Oceologia, V. 162, P. 571 579.
  159. D. (2001) 615N as an integrator of the nitrogen cycle. Trends in Ecology and Evolution, V. 16, P. 153−162.
  160. Ruess L., Haggblom M.M., LangelR, Scheu S. (2004) Nitrogen isotope ratios and fatty acid composition as indicators of animal diets in belowground systems. Oecologia, V. 139, P. 336−346.
  161. L., Tiunov A.V., Haubert D., Richnow H.H., Haggblom M.M., Scheu S. (2005) Carbon stable isotope fractionation and trophic transfer of fatty acids in fun gal-based soil food chains. Soil Biology and Biochemistry, V. 37, P. 945−953.
  162. J. (1979) Ecological specialization in some Mesaphorura species (Collembola, Tullbergiinae). Acta Ent. Bohemoslov., V. 76, P. 1−9.
  163. J. (1998) Biodiversity of Collembola and their functional role in the ecosystem. Biodiversity and Conservation, V. 7, P. 1207−1219.
  164. S. (2002) The soil food web: structure and perspectives. European Journal of Soil Biology, V. 38, P. 147−156.
  165. S., Falca M. (2000) The soil food web of two beech forests (Fagus sylvatica) of contrasting humus type: stable isotope analysis of a macro- and a mesofauna-dominated community. Oecologia, V. 123, P. 285−296.
  166. S., Folger M. (2004) Single and mixed diets in Collembola: effects on reproduction and stable isotope fractionation. Functional Ecology, V. 18, P. 94−102.
  167. S., Setala H. (2002) Multitrophic interactions in decomposer food webs. Multitrophic level interactions. Eds. Tscharntke T., Hawkins B.A. Cambridge: Cambridge University Press, P. 223−264.
  168. S., Simmerling F. (2004) Growth and reproduction of fungal feeding Collembola as affected by fungal species, melanin and mixed diets. Oecologia, V. 139, P. 347−353.
  169. Schmidt, O., Scrimgeour, C.M., Handley, L.L. (1997) Natural abundance of 15N and 13C in earthworms from a wheat and wheat-clover field. Soil Biology and Biochemistry, V. 29, P.1301−1308.
  170. O., Scrimgeour C.M., Curry J.P. (1999) Carbon and nitrogen stable isotope ratios in body tissue and mucus of feeding and fasting earthworms (Lumbricus festivus). Oecologia, Y. 118, P. 9−15.
  171. O. (1999) Intrapopulation variation in carbon and nitrogen stable isotope ratios in the earthworm Aporrectodea longa. Ecological Research, V. 14, P. 317−328.
  172. O., Curry J.P., Dyckmans J., Rota E., Scrimgeour C.M. (2004) Dual stable isotope analysis (S13C and 515N) of soil invertebrates and their food sources. Pedobiologia, V. 48, P. 171−180.
  173. T. R., (1984) The role of microarthropods in decomposition and mineralization processes. Annual Reviews of Entomology, V. 29, P. 25−46.i 1
  174. Seeber J., Seeber G.U.H., Kossler W., Mayer J., Scheu S. (2005) Abundance and trophic structure of macro-decomposers on alpine pastureland (Central Alps, Tyrol): effects of ! abandonment of pasturing. Pedobiologia, V. 49, P. 221−228.
  175. Semenina, E.E., Tiunov, A.V., (2010) Isotopic fractionation by saprotrophic microfungi: Effects of species, temperature and the age of colonies. Pedobiologia, V. 53, P. 213 217.
  176. E.E., Tiunov A.Y. (2010) Trophic fractionation (A15N) in Collembola depends on nutritional status and on 815N in the diet: a laboratory experiment and mini-review. Pedobiologia, doi: 10.1016/j.pedobi.2010.10.004.
  177. H., Laakso J., Mikola J., Huhta V. (1998) Functional diversity of decomposer organisms in relation to primary production. Applied Soil Ecology, V. 9, P. 25−31.
  178. Shaw P.J.A. (1985) Grazing preferences of Onychiurus armatus (Insecta: Collembola) for mycorrhizal and saprophytic fungi of pine plantations. In:
  179. Siepel H., de Ruiter-Dijkman E.M. (1993) Feeding guilds of Oribatid mites based on their carbohydrase activities. Soil Biology and Biochemistry, V. 25, P. 1491−1497.
  180. S.B., (1969) Preliminary observations on the food preference of certain Collembola (Insecta). Revue Ecologie Biologie, V. 6, P. 461−467.
  181. Sokal R.R., Rohlf F. J (1995) Biometry, W.FI. Freeman and Company, New York, 887pp.
  182. C., Schrader S., Giesemann A. (2006) Influence of chemical agents commonly used for soil fauna investigations on the stable C-isotopic signature of soil animals. European Journal of Soil Biology, V. 42, P. 326−330.
  183. A., Scheu S., Schaefer M. (1999) Contramensal interaction between two collembolan species: effects on population development and on soil processes. Functional Ecology, V. 13, P. 238−246.
  184. T., Larink O. (1995) Grazing preferences of some collembola for endomycorrhizal fungi. Biology and Fertility of Soils, V. 19, P. 266−268.
  185. Tillberg C. V., McCarthy D. P., Dolezall A. G., Suarez A. V. (2006) Measuring the trophic ecology of ants using stable isotopes. Insect Society, V. 53, P. 65−69.
  186. A.V., Scheu S. (2005) Arbuscular mycorrhiza and Collembola interact in affecting community composition of saprotrophic microfungi. Oecologia, V. 142, P. 636−642.
  187. S. A., Rygiewicz P. T., Edmonds R. L., (2004) Patterns of nitrogen and carbon stable isotopes ratios in macrofungi, plants and soils in two old-growth conifer forests. New Phytologist, V. 164, P. 317−335.
  188. F., Rusek J. (1994) Activity of digestive enzymes in seven species of Collembola (Insecta, Entognatha). Pedobiologia, V. 38, P. 400−406.
  189. Vander Zanden M.J., Rasmussen J.B. (2001) Variation in 815N and 813C trophic fractionation: Implications for aquatic food web studies. Limnological Oceanographer, V. 46, P. 2061−2066.
  190. M.A., Ponsard S. (2003) Sources of variation in consumer-diet S15N enrichment: a meta-analysis. Oecologia, V. 136, P. 169−182.
  191. J., Naar Z., Dobolyi C. (2002) Selective feeding of collembolan species Tomocerus longicornis (Mull.) and Orchesella cincta (L.) on moss inhabiting fungi. Pedobiologia, V. 46, P. 526−538.
  192. H.A., Prast J.E., Verweij R.A. (1988) Relative importance of fungi and algae in the diet and nitrogen nutrition of Orchesella cincta (L.) and Tomocerus minor (Lubbock) (CollembolaJ. Functional Ecology, V. 2, P. 195−201.
  193. S., Parkinson D. (1975) Fungal succession on aspen poplar leaf litter. Canadian Journal of Botany, V. 53, P. 1640−1651.
  194. S. (1985) Role of soil invertebrates in determining the composition of soil microbial communities. In: Fitter A.H., Atkinson D., Read D.J., Usher M.B. (eds.) Ecological interactions in soil. Oxford, Blackwell, P. 297−317.
  195. E., Mizutani H., Minagawa M. (1991) The use of stable isotopes for food web analysis. Critical Review of Food Science, V. 30, P. 361−37.
  196. D.E. (1987) Trophic behaviour of mycophagous microarthropods. Ecology, V. 68, P. 226−229.
  197. , D.A. (2002) Communities and ecosystems: linking the aboveground and belowground components. Princeton University Press, Princeton.
  198. D.A. (2006) The influence of biotic interactions on soil biodiversity. Ecology Letters, V. 9, P. 870−886.
  199. Webb S.C., Hedges R.E.M., Simpson S.J. (1998) Diet quality influences the 513C and 615N of locusts and their biochemical components. Journal of Experimental Biology, V. 201, P. 2903−2911.
  200. White T.C.R. (1993) The inadequate environment. Nitrogen and the abundance of animals. Berlin, Springer-Verlag, 425 pp.
  201. K., Gunn A., Cherrett J.M. (1995) The application of a rhizotron to study the subterranean effects of pesticides. Pedobiologia, V. 39, P. 132−143.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!