Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Обоснование приемов световой биотехнологии при клональном микроразмножении винограда

Диссертация: Обоснование приемов световой биотехнологии при клональном микроразмножении винограда
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Также известно, что растения могут приспосабливаться к низкой интенсивности излучения за счёт снижения затрат ассимилятов на дыхание, увеличения площади листьев (что позволяет за счёт оптимизации фотосинтетической деятельности накапливать в побегах углеводы (А. С. Смурыгин, 1977)) и интенсивности фотосинтеза. Прямая зависимость скорости процесса фотосинтеза от притока энергии наблюдается только… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Биотехнология как фактор развития сельского хозяйства
    • 1. 2. Оздоровление растений от хронических инфекций: необходимость, преимущества и недостатки методов
    • 1. 3. Возможности, модели и необходимые условия реализации кло-нального микроразмножения
    • 1. 4. Влияние светового излучения на растения винограда в условиях изолированной культуры
    • 1. 5. Сохранение генофонда винограда in vitro. Роль освещения при депонировании
    • 1. 6. Резюме анализа литературных данных
  • 2. ОБЪЕКТЫ, МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДИКА ПРОВЕДЕНИЯ ИССЛЕДО ВАНИЙ
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Изучение интенсивности излучения при клональном микроразмножении винограда
      • 3. 1. 1. Исследование интенсивности излучения на этапе ввода эксплантов в культуру
      • 3. 1. 2. Установление оптимальных параметров интенсивности освещения на этапе микрочеренкования
      • 3. 1. 3. Оптимизация параметров интенсивности излучения на этапе адаптации и доращивания растений в условиях СУВР
    • 3. 2. Определение оптимальной продолжительности фотопериода
    • 3. 3. Изучение влияния синергетического эффекта интенсивности освещения и регулятора роста эмистим в предельно малых дозах на морфогенез винограда in vitro
      • 3. 3. 1. Влияние интенсивности освещения и фиторегулятора эмистим на этапе ввода в культуру
      • 3. 3. 2. Изучение влияния интенсивности освещения и эмистима на этапе укоренения побегов
      • 3. 3. 3. Влияние малых доз интенсивности освещения и эмистима на этапе микрочеренкования побегов, сохраняющих апикальное доминирование
    • 3. 4. Исследование влияния на морфогенез спектрального состава света низкой интенсивности
      • 3. 4. 1. Влияние качества света на регенерационную способность меристем
      • 3. 4. 2. Выявление спектральной избирательной реакции на этапе микрочеренкования побегов
      • 3. 4. 3. Изучение отзывчивости адаптированных растений на облучение разнокачественным светом
    • 3. 5. Минимализация роста растений при депонировании
    • 3. 6. Проверка качества оздоровленных растений
    • 3. 7. Экономическое обоснование оздоровления и клонального микроразмножения винограда

Обоснование приемов световой биотехнологии при клональном микроразмножении винограда (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Для стабилизации и устойчивого развития отрасли виноградарства и виноделия РФ необходимо создание долговечных высокопродуктивных виноградников. Их закладка должна осуществляться сертифицированным по международным стандартам посадочным материалом с лучшими наследственными свойствами, оздоровленного от заболеваний хронического и системного характера.

На сегодняшний день наиболее надёжным и перспективным методом оздоровления растений является выделение апикальных меристем, регенерация из них пробирочных растений и дальнейшее клональное микроразмножение в условиях изолированной культуры.

В нашей стране данный метод разработан и успешно применяется в промышленных масштабах для ряда ценных сельскохозяйственных культур. Однако, применение этого прогрессивного способа оздоровления и ускоренного размножения растений значительно отстаёт от реальных потребностей виноградарства. Наиболее существенной причиной, сдерживающей его распространение, является отсутствие массового производства. В первую очередь данное явление можно объяснить низким уровнем материально-технической базы, которая в настоящее время устарела и морально, и физически. Но вместе с тем, и сама технология культивирования нуждается в усовершенствовании. Наряду с другими факторами оптимизации, огромная роль принадлежит световым воздействиям, роль которых в процессе производства безвирусного посадочного.

Тимирязев КА. Земледелие и физиология растений. Растение и солнце// М.: Сельхозгиз, 1937.-С.85. материала изучена недостаточно, а некоторые их аспекты не изучены и вовсе. Вследствие этого, масса достоинств данного метода нивелируются за счёт возникающих проблем и ограничений. Использование новых и улучшение существующих приёмов световой биотехнологии может внести ценный вклад в совершенствование процесса получения оздоровленного посадочного материала винограда через культуру изолированных тканей и органов. Необходимость внедрения в практику данных разработок и обуславливает актуальность темы диссертационного исследования.

В соответствии с выбранной темой была сформулирована цель исследования: установить возможность использования новых и усовершенствовать.

• существующие приёмы световой биотехнологии, позволяющие повысить эффективность метода оздоровления и клонального микроразмножения винограда.

Достижению поставленной цели должны способствовать решения следующих основных задач: оптимизации параметров интенсивности освещения, близкого по качеству к естественномуустановления оптимальной продолжительности фотопериодаизучения влияния синергетического эффекта интенсивности освещения и регулятора роста эмистим в предельно малых дозахисследования влияния на морфогенез винограда in vitro спектрального состава светаминимализации роста растений при депонировании винограда путём регулирования интенсивности лучистой энергии и концентрации осмотического ингибитора роста маннитоценки качества полученных растенийобоснования экономической эффективности разработанных мероприятий.

Объектом исследования является морфогенез (фотоморфогенез) вино.

• града in vitro.

Предмет исследования — экспланты и адаптированные к нестерильным условиям окружающей среды пробирочные растения сортов Дружба, Цветочный, Цимлянский чёрный, Кристалл, Каберне северный, Фиолетовый ранний, Рихтер-110 и Феркаль.

Информационная база исследований включает в себя материалы, опубликованные в отечественных и зарубежных изданиях, а также непубликуемые материалы (отчёты о научно-исследовательских работах).

Методологической и теоретической основой исследования послужило использование пшотетико-дедуктивного и индуктивного методов научного познания. Достоверность научных выводов основывается на теоретических и методологических положениях. При решении конкретных задач использовались методы биометрического анализа.

Изучение теоретических вопросов, проведение серии лабораторных опытов и обработка полученных данных привели к следующим результатам, содержащих, по мнению автора, элементы научной новизны:

1) впервые применительно к технологии клонального микроразмножения винограда установлены: возможность снижения энергоёмкости производства за счёт уменьшения на отдельных этапах культивирования интенсивности освещения до наименьшего оптимального уровнявлияние на морфогенез архитектуры эксплантовцелесообразность усиления ростовых процессов и повышения общего иммунитета пробирочных растений за счёт синергетического действия интенсивности освещения и регулятора роста эмистим в предельно малых дозах;

2) предложена замена продолжительности традиционного длиннодневного фотопериода 16 ч на более короткий — 14 ч;

3) изучено влияние на морфогенез винограда освещения определённого спектрального состава;

4) выявлена возможность минимализации роста при депонировании растений in vitro без понижения температурного оптимума культивирования;

5) показана экономическая эффективность модифицированной технологии производства оздоровленного посадочного материала винограда.

Теоретическаязначимость исследования заключается в том, что оно показало целесообразность пересмотра некоторых аспектов культивирования в направлении снижения энергоёмкости метода клонального микроразмножения.

Практическая значимость работы состоит в том, что полученные результаты позволяют усовершенствовать биотехнологию получения оздоровленного посадочного материала винограда.

Реализация результатов исследования. При выполнении диссертационной работы в культуре in vitro был размножен ряд сортов винограда: Дружба, Цветочный, Цимлянский чёрный, Фиолетовый ранний, а также подвойные сорта Рихтер-110 и Феркаль. Оздоровленные растения сортов Цветочный и Цимлянский чёрный высажены в полевые условия на базисный маточник. Адаптированы к нестерильным условиям окружающей среды растения сортов Фиолетовый ранний и Феркаль.

Положения, выносимые на защиту:

1) Теоретическое обоснование использования приёмов световой биотехнологии в культуре изолированных тканей: влияния на морфогенез различной интенсивности освещения на фоне применения фиторегулятора роста эмистим в предельно малых дозахвлияния на морфогенез винограда in vitro качества света;

2) Научно-методические разработки и практические рекомендации по: оптимизации параметров интенсивности освещенияустановлению оптимальной продолжительности фотопериодаминимализации роста растений при депонировании;

3) Экономическое обоснование проведённых мероприятий.

Апробация работы: основные положения и результаты исследования были доложены и представлены на 2-ой Всероссийской научно-технической конференции «Современные достижения биотехнологии» (Ставрополь, 12−13 сентября 2002 г.), 5-ой Всероссийской научно-практической конференции «Биотехнология-2003» (Сочи, 22−26 сентября 2003 г.), молодёжной научной конференции «Экологические аспекты агропромышленного комплекса» (Пер-сиановский, 27−28 ноября 2003 г.), Международной научно-производственной конференции «Актуальные проблемы и пути их решения в современном плодоводстве, овощеводстве и виноградарстве Дона» (Персиановский, 3−4 марта 2004 г.), школе молодых учёных и специалистов «Адаптивное ведение виноградарства» (Новочеркасск, 19−23 апреля 2004 г.). Материалы также демонстрировались в соавторстве (доля участия автора 50%) на выставке-ярмарке «Донская лоза — 2003» (Константинове^ 30 августа 2003 г.) и на Всероссийской выставке-ярмарке научно-исследовательских работ и инновационной деятельности студентов, аспирантов и молодых учёных Российской Федерации «Иннов-2003» и удостоены диплома II степени (Новочеркасск, 4−7 мая 2003 г.). По основным полученным результатам исследования опубликовано шесть научных работ, три из которых в соавторстве (доля личного участия автора в одной из статей — 50%, в двух статьях — по 30%). Одна статья находятся в настоящее время в печати.

Автор выражает глубокую благодарность зав. лабораторией биотехнологии ВНИИ садоводства и питомниководства В. А. Высоцкому и зав. сектором люминофоров института «Гиредмет» Э. И. Боеву за помощь, оказанную в приобретении фотосинтетических ламп определённого спектрального состава.

3 Результаты исследований.

3.1 Изучение интенсивности излучения при клональном микроразмножении винограда.

Обзор литературных источников показал, что величина излучения лучистой энергии в процессе регенерации винограда in vitro варьирует от 1000 до 7000, а на этапе адаптации пробирочных растений к условиям in vivo и их до-ращивания она должна быть не менее 8000 лк. При этом наиболее благоприятна энергетическая освещённость около 3000 лк, а более высокая — угнетает рост растений.

Однако необходимо отметить, что изучены не все возможные аспекты повышения эффективности оздоровления и дальнейшего микроразмножения при помощи регулирования лучистой энергии. Есть данные (К. Д. Стоев, 1971), что у растений in vivo (в поле) при значительном снижении света фотосинтез сохраняет довольно высокую интенсивность. Поскольку величина силы света, необходимой для растений in vitro, чаще всего обусловлена требовательностью к свету материнского растения, то это утверждение актуально и для изолированной культуры.

Этот тезис подтверждает W. М. Morgan (1993). Он сообщает, что свет является основным необходимым для коррекции роста и развития условием, но значительно меньшей интенсивности, чем солнечный. Растения in vitro усваивают энергию углерода, которая приходит из добавляемого в питательную среду сахара, больше чем в процессе фотосинтеза, а потому высокий уровень света не обязателен.

В. И. Деменко и В. А. Крючкова (2001) показали положительное кратковременное действие этиоляции на этапах адаптации и укоренения побегов при микроклональном размножении подвоев яблони.

Также известно, что растения могут приспосабливаться к низкой интенсивности излучения за счёт снижения затрат ассимилятов на дыхание, увеличения площади листьев (что позволяет за счёт оптимизации фотосинтетической деятельности накапливать в побегах углеводы (А. С. Смурыгин, 1977)) и интенсивности фотосинтеза. Прямая зависимость скорости процесса фотосинтеза от притока энергии наблюдается только при низких интенсивностях света. Фотосинтез же начинается при очень слабом освещении. У многих светолюбивых растений максимальная (100%-ая) интенсивность фотосинтеза наблюдается при освещённости, достигающей половины от полной солнечной. Дальнейшее возрастание энергетического освещения не увеличивает, а снижает фотосинтез (В. В. Полевой, 1989).

По данным Г. С. Муромцева, Р. Г. Бутенко и др. (1990), фотосинтез, осуществляемый растениями, характеризуется в целом весьма низкой интенсивностью, так как фотосинтетический аппарат использует лишь 3−4% падающего света.

В связи с этим представляется интересной возможность снижения энергоёмкости производства путём получения качественных растений-регенерантов при наименьшем оптимальном пороге интенсивности освещения, а следовательно, экономии электроэнергии и снижения за счёт этого себестоимости получаемых мериклонов.

Поэтому нами было принято решение — изучить влияние низкой интенсивности излучения на морфогенез при оздоровлении и клональном микроразмножении винограда in vitro.

3.1.1 Исследование интенсивности излучения на этапе ввода эксплантов в культуру.

Посев меристем сорта Кристалл осуществляли на модифицированную для ввода питательную среду Мурасиге и Скуга (таблица 2). Изучаемая интенсивность освещения — 700−800 (1 вариант), 1300−1400 (2 вариант) и 1800−2000 лк (3 вариант). Повторность опыта 4-х кратная, по 10 пробирок в каждой повторности на один вариант освещения. Полученные результаты представлены в таблице 7 и на рисунке 2.

Математическая обработка полученных данных (приложение 2) показала, что достоверные различия по такому показателю как размер меристем наблюдаются только между вариантами 1300−1400 и 1800−2000 л к. При этом наибольшее количество развившихся эксплантов отмечено при интенсивности излучения 1800−2000 лк: размером < 1 мм — 13 штразмером от 1 до 2 мм — 8 шт- > 2 мм — 2 шт (рисунок 2). В других вариантах опыта количество развившихся меристем этих размеров было меньшим.

Заключение

.

С целью повышения эффективности метода оздоровления через культуру апикальных меристем и клонального микроразмножения винограда, нами разрабатывались приёмы световой биотехнологии, позволяющие снизить энергоёмкость производства за счёт уменьшения уровня расходуемой на освещение электроэнергии. Данная работа позволила выявить ранее не изученные аспекты метода и показала целесообразность использования новых биотехнологических приёмов. Некоторые закономерности прослеживаются сразу по нескольким обозначенным направлениям исследования. В частности, данное суждение относится к отзывчивости эксплантов и регенерированных растений на организуемые условия в исследованиях по установлению оптимальных параметров интенсивности освещения, изучению влияния на морфогенез спектрального состава света и влияния синергетического эффекта интенсивности лучистой энергии и эмистима. Так, на этапе ввода эксплантов в культуру, при наименьшем возможном размере эксплантов (а соответственно и площади фотосинтетической поверхности), наблюдается весьма слабый отклик морфологических показателей на организованные факторы. На этапах укоренения и микрочеренкования, при наличии прилежащей к побегу или его части листовой пластинки, отзывчивость эксплантов уже проявляется, но только на уровне сортовой специфики. Иначе дело обстоит на этапе адаптации пробирочных растений к нестерильным условиям и их доращивания. Здесь отмечена высокая пластичность растений по отношению к условиям освещения: наблюдается существенное изменение площади листовой поверхности и количества листьев, растяжение междоузлий, увеличение высоты мериклонов. То есть, вышеизложенное позволяет утверждать о значительном влиянии архитектуры эксплантов и степени дифференциации тканей на. отзывчивость морфологических показателей по отношению к световым условиям.

Несмотря на то, что иногда ожидаемый эффект в соответствии с поставленными задачами и не был достигнут, положительные аспекты были выявлены по каждому из обозначенных направлений исследования. В соответствии с полученными результатами диссертационного исследования можно сделать следующие научные выводы:

1. Доказано, что при облучении эксплантов светом различной интенсивности, качества и продолжительности проявляется влияние на морфогенез винограда in vitro биологических особенностей сорта, которое выражается в различной степени отзывчивости и требований к условиям освещения;

2. Наименьшей интенсивностью излучения, необходимой для оптимального развития эксплантов сорта Кристалл на этапе ввода в культуру, является освещённость 1800−2000 лк. На этапе микрочеренкования побегов при сохранении апикального доминирования минимальным порогом интенсивности лучистой энергии является 2900−3200 лк для сортов Дружба, Цимлянский чёрный и Рихтер-110, а для сорта Цветочный — 1600−1700 лк. Увеличение или уменьшение интенсивности влечёт за собой снижение показателей ростовых характеристик этого сорта;

3. Установлено наличие адаптационной способности к условиям слабой интенсивности освещения у растений сортов Феркаль и Каберне северный на этапе перевода в нестерильные условия и доращивания. Для них лучшей является интенсивность 1600−1700, допустимой — 900−1000 лк. При увеличении её до 2800−3100 лк ухудшается качество регенерированных растений;

4. Предложена замена традиционного длиннодневного фотопериода 16 на более короткий 14 ч для сортов Цимлянский чёрный и Феркаль. При структуре фотопериода 16−1 ч наблюдается наибольшее количество отбракованных растений. Продолжительность освещения в течение 12 ч может задерживать развитие микроклонов;

5. Синергетический эффект интенсивности освещения и эмистима в предельно малых дозах усиливает ростовые процессы и повышает общий иммунитет мериклонов. Его влияние проявляется на этапе микрочеренкования, однако отсутствует на этапах ввода в культуру и укоренения. При этом влияние интенсивности излучения и взаимодействия факторов на вариабельность изучаемого признака более значимо, нежели влияние концентрации эмистима. Для оптимального развития сортов Цимлянский чёрный и Цветочный лучшими являются условия 22 002 400 лк + ЭМ 10~12 и Ю~10%;

6. Возможно использовать освещение низкой интенсивности (2×40 Вт) с преобладанием лучей, максимум которых находится в оранжевой спектральной области (611 нм) для усиления роста побегов на этапах микрочеренкования и адаптации к нестерильным условиям. Освещение эксплантов и адаптированных растений лучами синего спектрального состава (450 нм) не оказывает статистически значимых различий по сравнению с освещением, близким по качеству к естественному. Качественный состав света не оказал существенного влияния на регенерацию меристем;

7. Установлена возможность депонирования винограда in vitro при слабой интенсивности излучения (400−500 лк) на питательной среде для длительного хранения в течение 210−240 дней без пассирования и понижения температурного оптимума культивирования (25−27 °С);

8. Получены данные относительно стимулирующего рост действия осмотического ингибитора маннит. Данное явление имеет место при интенсивности излучения 800−900 и 1600−1700 лк и концентрации маннита 2, 4 и 6 мг/л. Наибольшая стимуляция наблюдается при 1600−1700 лк + 6 мг/л маннита;

9. Проверка качества полученных мериклонов в целом показала высокую степень надёжности метода оздоровления растений винограда от вирусных инфекций через культуру апикальных меристем, регенерации из них растений и дальнейшее клональное микроразмножение в условиях изолированной культуры. В результате морфологической оценки растений-регенерантов изучаемых сортов в настоящее время не выявлено каких-либо эпигенетических нарушений;

10. При надлежащем фитосанитарном контроле, для оздоровленных клонов винограда характерно стабильное увеличение силы роста и способности к вегетативному размножению;

11. Производство оздоровленного посадочного материала винограда данным методом обеспечивает рентабельность на уровне 87%.

На основании изложенных выводов можно дать следующие рекомендации по практическому использованию разработанных приёмов научно-исследовательским: учреждениям и производственным биотехнологическим центрам, специализирующихся на производстве оздоровленного посадочного материала винограда:

1. С учётом сортовой специфики, возможно использовать при культивировании растений в условиях in vitro освещение интенсивностью 16 003 200, а на этапе адаптации и доращивания растений — 900−1700 лк;

2. С целью сбережения расходуемой на освещение электроэнергии применять фотопериод продолжительностью 14 ч;

3. Для повышения иммунитета и усиления ростовых процессов применять фиторегулятор роста эмистим в концентрациях 10 ~12- Ю-10% при интенсивности лучевого потока 2200−2400 лк. При освещении 16 001 700 лк для стимуляции ростовых процессов использовать маннит в концентрации 6 мг/л.

4. При создании генобанков оздоровленных растений винограда замедлять ростовые процессы при помощи освещения интенсивностью 400 500 лк и питательной среды для длительного хранения, не понижая температурного режима культивирования.

Таким образом, проведённые исследования показали, что моделируя условия освещения, возможно существенно повысить эффективность микроклонального размножения. Однако эти исследования необходимо продолжать. При этом необходимо больше обращать внимание на архитектуру эксплантов. Интересным представляется сочетание разнокачественного освещения с предельно низкой интенсивностью, структурой и продолжительностью фотопериода, изменение газового состава атмосферы в изолированной культуре, использование определённых химических компонентов в составе питательных сред, повышающих фотосинтетическую активность и так далее.

В завершении данной работы, наверное, будет уместно снова привести высказывание великого физиолога растений 19−20 вв. К. А. Тимирязева1: «.Когда человек когда-нибудь успеет увеличить производительность самых интенсивных своих культур раз в пять, то, вероятно, будет вправе сказать, что получил всё физически возможное, всё, что даёт ему солнце «.

Тимирязев К. А. Земледелие и физиология растений. Растение и солнце//М.: Сельхозгиз, 1937.-С.86.

Список используемых терминов и сокращений1:

Анеуплоид — ядро, клетка, организм с числом хромосом, отклоняющимися от основного числа хромосом X и от чисел, кратных X.

Апикальное доминирование — явление коррелятивного подавления роста боковых почек побега в присутствии терминальной.

Ауксины — фитогормоны, преимущественно индольной природы, активирующие рост отрезков колеоптилей, стеблей листьев и корней, вызывающие тропические изгибы, а также стимулирующие образование корней у черенков растений.

Гиббереллины— фитогормоны, преимущественно производные флуоренового ряда, индуцирующие или активирующие рост растений, вызывающие прорастание семян и образование партенокарпических плодов, нарушающие период покоя у многих растений, индуцирующие цветение растений дл иннодневных видов.

Дифференциация — процесс возникновения различий между однородными клетками и тканями, приводящий к их специализации.

Клон— 1) генетически однородное потомство растения или животного, образовавшееся путём бесполого (преимущественно вегетативного) размножения- 2) в культуре ткани — совокупность клеток, возникшая путём митотического деления (митоза) — 3) в селекции растений К. — потомство одного растения, размноженного отводками, черенками, клубнями, луковицами, корневищами и т. п. его частями.

Метаболизм — процесс обмена веществ в организме, совокупность процессов ассимиляции и диссимиляции.

1 В кн.:

Дудка И. А., Вассер С. П. и др. Словарь ботанических терминов, — Киев: Наук, думка, 1984.-308с.;

Реймерс Н. Ф. Популярный биологический словарь.-М.: Наука, 1990. 544с.- —Муромцев Г. С., Бутенко Р. Г., Тихоненко Т. И., Прокофьев М. И. Основы сельскохозяйственной биотехнологии.—М.: Агропромиздат, 1990;383с.

Полиплоид — ядро, клетка, организм, характеризующиеся умноженным основным числом хромосом (символы ЗХ, 4Х и т. д.).

Примордиальные листья — первичные листья, зачатки листьев, возникающие из наружного слоя промеристемы конуса нарастания почек в виде недифференцированных бугорков.

Пролиферация — образование какого-либо органа растения из другого органа, рост и развитие которого закончились. Обусловлена активизацией меристемы. Регенерация— восстановление организмом утраченных частей тела. Регенерант — орган или его ¦ часть, восстановленная после хирургического вмешательства.

Репарация — самовосстановление повреждённых или изреженных тканей тела и состава популяций.

Ретардант — химическое вещество, вызывающее замедление роста растений в высоту без нарушения срока созревания урожая.

Синергизм — усиление действия одного фактора другим (другими), характеризующееся тем, что совместное действие значительно превышает эффект каждого из компонентов в отдельности и их простой суммы.

Субкулътивирование — перенос инокулюма (трансплантата) в другой культу-ральный сосуд на свежую питательную среду.

Тотипотентностъ —способность отделённых от растений клеток, частей и тканей при последовательном делении восстанавливать целый растительный организм со всеми его свойствами.

Фотоморфогенез — ростовые и формативные изменения растений, возникающие в результате воздействия на них света различного спектрального состава, интенсивности и длительности.

Фототаксис — двигательная реакция подвижных организмов в ответ на световое раздражение.

Цитокинины — фитогормоны, преимущественно производные пуринов, активирующие деление клеток и прорастание семян, а также способствующие дифференцировке и вызывающие омоложение пожелтевших листьев, их зеленение и восстановление метаболической активности.

Эксплант — фрагмент ткани или органа, инкубируемый на питательной среде самостоятельно или используемый для получения первичного каллуса. Эпигенетические вариации — фенотипическое выражение дифференциальной активности генов. От мутаций и самоклональных вариаций отличаются тем, что не сохраняются в цикле клетка—> растение—* клетка.

Этиоляция — аномальный рост растений или их отдельных надземных органов при недостаточном освещении или непрерывной темноте. Этиолированные растения лишены хлорофилла, у них происходит интенсивное вытягивание стебля, тормозится образование листовых пластинок, наблюдается слабое развитие клеточных оболочек.

БС, ОС, СС— свет белого, оранжевого и синего качества.

ГКз— гиббереллиновая кислота. fi-ИУК— Р-индолил-З-уксусная кислота.

ЛД— люминесцентная лампа дневного света.

ДРЛ— дуговая ртутная лампа.

К— контроль.

СУВР— стеллаж ускоренного выращивания растений. ФАР— фотосинтетически активная радиация. ЭМ— эмистим.

Показать весь текст

Список литературы

  1. П. Мозаика по нерватуропа на листата на лозата в Българие // Гра-динска и лозарска наука.-1979.-№ 4.-С.87−90.
  2. Л. В., Высоцкий В. А. Влияние спектрального состава света на процесс ризогенеза у эксплантов земляники нейтральнодневных и ремонтантных сортов // Плодоводство и ягодоводство России — М., 2000—Т.VII — С.73−81.
  3. Ампелография СССР / Частная ампелография. Стандартные и перспективные сорта винограда // М., 1956.-T.VII.-C. 180−191.
  4. Ампелография СССР. Справочный том.— М.: Пищевая промышленность, 1970.-С.51−52,264.
  5. Ампелография СССР. Отечественные сорта винограда.— М.: Лёгкая и пищевая промышленность, 1984.-С.160−162, 437−438.
  6. Антивирусное действие препарата гипорамин / Ю. Н. Приходько, Л. В. Цубе-ра, Д. В. Редин и др. // Промышленное производство оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур.— М., 2001.-С.84−86.
  7. С. Н. и др. Эффективность радиооблучения и изменчивость клонов яблони и груши/ С. Н. Артюх, Л. И. Дутова, Е. К. Киртбая // Радиационный мутагенез вегетативно размножаемых растений.— М., 1985.-С.60−62.
  8. С. Н., Алёхина Е. М. Эффективность действия на черешню гамма-излучений и химических мутагенов // Радиационный мутагенез вегетативно размножаемых растений М., 1985.-С.54−59.
  9. Г. П. и др. Рекомендации по производству оздоровленного посадочного материала земляники / Г. П. Атрощенко, В. В. Костицын, А. Л. На-делюев // Санкт-Петербург: Литера, 2001 .-С.2−9.
  10. С. и др. Лечение вишни, заражённой ILAR-вирусами методом термо-и химиотерапии / С. Ахмет, Ю. Вертеши, Д. Бея // Технология выращиваниябезвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда, — Кишинёв, 1977.-С.37−42.
  11. В. Термотерапия поражённых вирусами растений земляники и малины // Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда-Кишинёв, 1977.-С.49−54.
  12. М. А. Использование гамма-радиации в селекции клематиса// Радиационный мутагенез вегетативно размножаемых растений.-М., 1985 — С.66−69.
  13. Биология развития культурных растений / Ф. М. Куперман, Е. И. Ржанова,
  14. B. В. Мурашев и др. // М.: Высшая школа, 1982.-343с.
  15. Биотехнология растений: культура клеток / Пер. с англ. В. И. Негрука. Под ред. Р. Г. Бутенко.- М.: ВО Агропромиздат, 1989.-280с.
  16. В. В., Маринеску В. Г. Получение безвирусных клонов винограда путём отбора // Вирусные, микоплазменные и бактериальные болезни плодовых культур и винограда в Молдавии Кишинёв, 1980.-С.78−93.
  17. В. Г. Факторы, влияющие на развитие меристем картофеля in vitro // Культура клеток растений и биотехнология — Кишинёв, 1983.—С. 135.
  18. Г. С., Артёменко В. И. Овощному конвейеру — научное обеспечение // Елементи регуляци в рослиництвь- Кшв, 1998.-С.62−68.
  19. Р. Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений.— М.: Наука, 1964.-272с.
  20. Р. Г. Использование культуры тканей растений в сельскохозяйственной науке и практике // Сельскохозяйственная биология-1979—№ 3 —1. C.306−315.
  21. Быстрое клональное размножение виноградного растения / А. Б. Бургутин, Р. Г. Бутенко, Н. В. Катаева и др. // Сельскохозяйственная биология-1983-№ 7.-С.48−50.
  22. В. В. и др. Результаты испытаний эмистима на капусте белока-чанной, картофеле, яблоне зимних сотров, рисе и сахарной свекле / В. В. Вакуленко, Э. Г. Гашников, М. М. Янина // Агарная Россия.- М., 1999.-№ 1(2).-С.27−35.
  23. А., Калашникова Е. А. Влияние условий культивирования микрочеренков перуанских сортов картофеля на образование микроклубней in vitro // Сельскохозяйственная биотехнология М., 2000.-С.71−73.
  24. Т. Д. Научные основы производства безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда // Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда.— Кишинёв, 1977.-С.5−19.
  25. Т. Д., Маринеску В. Г. Вирусные и микоплазменные заболевания плодовых культур и винограда — Кишинёв: ШТИИНЦА, 1985.-С. 14.
  26. Взаимное влияние света и гормонов на регуляцию морфогенетических процессов в культуре in vitro / Т. Н. Константинова, Н. П. Аксёнова, JI. И. Сергеева и др. // Физиология растений.—1987.-т.34.-№ 4.-С.795−802.
  27. Виноград: перспективные и новые сорта с элементами агротехники / И. А. Кострикин, JI. Ф. Мелешко, Е. П. Чебаненко и др.—Ростов на/Д.: СКНЦ ВШ.-2004.—232с.
  28. Виноградарство / К. В. Смирнов, JI. М. Малтабар, А. К. Раджабов и др.— М.: МСХА, 1998.-510с.
  29. Влияние ауксина и красного света на корнеобразование у побегов берёзы in vitro / X. Гёринг, К. Цоглауер, Б. Гоффман и др. // Культура клеток растений и биотехнология.- М., 1986.-С. 106−110.
  30. Влияние обработки посевов сахарной свеклы регуляторами роста на метаболизм сахарозы и продуктивность культуры / С. П. Пономаренко, В. Д. Сакало, В. М. Курчий и др. // Елементи регуляци в рослиництвь-Кшв, 1998 — С.51−61.
  31. Влияние препаратов росторегулирующего действия на симбиотическую азотфиксацию у сои / В. Ф. Патыка, Н. 3. Толкачёв, А. В. Князев и др. // Елементи регуляци в рослиництвь— Кшв, 1998.-С.85−92.
  32. В. П. Высокоэффективные регуляторы роста на культуре риса // Нетрадиционное растениводство, экология и здоровье: Мат. 7-ой Междунар. науч.-практ. конф.-Симферополь, 1998.-С.575−576.
  33. Вплив регулятор1 В росту на врожайшсть i яюсть озимо! пшеницд та змен-шення пестицидного навантаження на упддя / Г. С. Боровикова, М. В. Драга, Н. Ю. Таран и др. // Елементи регуляци в рослиництвь- Кшв, 1998.-С.41−45.
  34. Выращивание здорового посадочного материала / С. А. Алексеева, В. А. Бондарев, Г. В. Ерёмин и др. // Садоводство России.-Тверь, 1994.-С.52−54.
  35. О. Н. Длительное сохранение in vitro коллекции растений земляники // Физиология растений.-1994.-т.41.-№ 6.-С. 18−21.
  36. В. А. Клональное микроразмножение растений // Культура клеток растений и биотехнология.—Кишинёв, 1983.-С.6.
  37. В. А. Клональное микроразмножение растений// Культура клеток растений и биотехнология —М., 1986.-С.91−101.
  38. В. А. О генетической стабильности при микроклональном размножении плодовых и ягодных культур // Сельскохозяйственная биология-1995.-№ 5 .-С .57−63.
  39. В. А. и др. Использование препаратов эмистим и экост 1/3 в технологиях микроклонального размножения ежевики / В. А. Высоцкий, О. В. Карпова, М. М. Янина // Аграрная Россия 1999.-№ 1(2).-С.44−46.
  40. В. А. Возможности создания коллекций ценных форм плодовых и ягодных растений in vitro // Плодоводство и ягодоводство России.-М., 2000.-T.VII.-C.56−61.
  41. В. А., Шипунова А. А. Выращивание посадочного материала IN VITRO в производственных условиях // Промышленное производство оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур.- М., 2001.-С.75−76.
  42. . С. и др. Размножение и улучшение плодовых растений прививкой. Учебное пособие / Б. С. Гегечкори, А. А. Кладь, С. П. Коваленко-Краснодар, 2002 213с.
  43. Т. С. Способ повышения жизнеспособности растений Solanum tuberosum L. в условиях in vitro // Физиология раст—наука 3-го тысячелетия — М., 1999.-t.2- С. 553.
  44. П. Я. и др. Технология ускоренного размножения сортов винограда с применением культуры изолированной ткани / П. Я. Голодрига, В. А. Зленко и др. // Сельскохозяйственная биология—1985 —№ 3.-С.62−66.
  45. Гормональный и световой контроль патогенеза у мутантных растений томата / О. Б. Вайшля, В. И. Шатило, Н. Н. Балашова и др. // Регуляторы роста и развития растений. Четвёртая междунар. конф. (24−26 июня, 1977).— М., 1997.-С.383.
  46. С. Ж. Влияние продолжительности освещения на рост и развитие некоторых сортов винограда в «ин витро» // Актуальные проблемы возделывания и переработки винограда —Ялта, 1990.-С.241.
  47. Е. Н., Губина Л. Е. Оптические свойства листьев винограда и содержание пигментов в них // Виноград и вино России.-1993.-№ 3.-С.19−22.
  48. Действие красного и синего света на поглощение и конъюгирование S-14C-ИУК растениями картофеля в культуре in vitro / Н. П. Аксёнова, С. А. Голя-новская, Т. Н. Константинова и др.// Физиология растений-1990.—37 ,№ 5 — С.981−986.
  49. В. И., Крючкова В. А. Роль этиоляции при микроклональном размножении растений // Докл. ТСХА.-2001.-№ 273, Ч.2.-С.298−301.
  50. М. И. Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур: Автореф. дис. к.с.-х.н.-Мичуринск, 2003.-С. 10−14.
  51. В. К. Оптимизиране на условията за клонално микроразмножа-ване на лозата: Автореферат на дисертация за присъждане на образователна и научна степен «ДОКТОР».- София, 1998.-С.8.
  52. В., Наков 3. Регенеративен потенциал на експлантите в зависи-мост от расположението им по дължината на леторасъла при клоналното микроразмножаване на лозата // Растениевъдни науки-2000, № 1.-С.44−49.
  53. Длительное хранение in vitro вегетативно размножаемых растений в институте растениводства им. Н. И. Вавилова / С. Е. Дунаева, Э. В. Трускинов, О. Ю. Антонова и др. // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology.— Saratov, 2003.-C.88−89.
  54. H. В. и др. Стабильность состава полиморфных белков растений картофеля, полученных из меристем после криогенного хранения / Н. В. Донец, С. М. Мусин, А. С. Попов // Сельскохозяйственная биология—1991—№ 3 — С.76−83.
  55. Донорно-акцепторные отношения у растений редиса на синем и красном свету / И. С. Дроздова, В. В. Бондарь, Е. А. Егорова и др. // Физиол. раст — наука 3-го тысячелетия — М., 1999.-С.121.
  56. Н. П. и др. Способ адаптации растений к нестерильным условиям / Н. П. Дорошенко, И. А. Кострикин, В. П. Ячменева.- Патент SU 1 792 269.-1990.
  57. Н. П. Клональное микроразмножение и оздоровление посадочного материала винограда для создания из него сортовых маточников интенсивного типа—М., 1991.-23с.
  58. Н. П., Пойманов В. Е. Создание сортовых маточников интенсивного типа в Ростовской области // Садоводство и виноградарство.-1991.— № 6.-С.14−16.
  59. Н. П., Полещук А. Ф. Создание маточника перспективных сортов винограда в совхозе «Россия» // Виноград и вино России-1992.-№ 3.— С.21−22.
  60. Н. П., Хохлова М. А. Способ создания коллекции генофонда «ин витро» // Виноград и вино России.-1993 -№ 6.-С. 18−21.
  61. Н. П. Оптимизация физических условий культивирования винограда in vitro // Виноград и вино России.-1994-№ 6.-С. 14−16.
  62. Н. П. Диагностика вирусных болезней винограда с помощью метода травянистых индикаторов // Виноград и вино России.-1997.-№ 3.-С.2−4.
  63. Н. П., Музыченко Б. АЛрименение растительной добавки для оптимизации клонального микроразмножения и длительного хранения винограда «ин витро» // Регуляторы роста и развития растений.-М., 1997.-С.290.
  64. Н. П., Соколова Г. В. Способы создания коллекции генофонда винограда // Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда.-М., 1997.-С.521−522.
  65. Н. П., Соколова Г. В: Длительное сохранение in vitro растений винограда//Progresul tehnico-stiintific in viticultura.-Chisinau, 1998.-C.33−34.
  66. H. П. Метод апикальных меристем в борьбе против вирусной инфекции винограда // Виноград и вино России.—1999.-№ 2.-С.6−9.
  67. Н. П. Биотехнологические методы ускоренного размножения и оздоровления, селекции бессемянных сортов и создания коллекций генофонда винограда: Автореф. дис. д.с.-х.н.—Новочеркасск, 1999.-59с.
  68. Н. П. Перспективы выращивания оздоровленного посадочного материала в культуре «IN VITRO» // Перспективы производства привитого посадочного материала винограда — Новочеркасск, 2001.-С.25−29.
  69. Т. Н. Плодоводство с основами экологии.- Краснодар, 2002.-С.61−83.
  70. Г. П. и др. Мутагенез у ячменя под влиянием красного света различной природы / Г. П. Дудин, О. С. Кривошеина, Д. А. Логинов // Аграрная наука.-1997.-№ 2.-С.22−23.
  71. Г. В. Сохранение и использование генофонда в селекции плодовых культур // Сохранение и использование генофонда в селекции овощных и плодово-ягодных культур на юге России.- Крымск, 2000.-С.88.
  72. Е. А., Вайшля О. Б. Влияние света разного спектрального состава на уровень ИУК в мутантных растениях кукурузы // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях.— М., 2001.-С.344.
  73. А. А. Адаптивный потенциал культурных растений (эколого-генетические основы).—Кишинёв: ШТИИНЦА, 1988.-С.253−260.
  74. С. Коллекции плодовых растений для производственных и селекционных целей // Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда — Кишинёв, 1977.-С.23−28.
  75. Н. М., Неборачко В. В. Оздоровление и защита картофеля от вирусных болезней с помощью биотехнологических методов // Нетрадиционное растениеводство, экология и здоровье Симферополь, 1998.-С.415−416.
  76. Застоування регулятор1 В росту при вирощуванш овочевих та баштанних культур / Л. А. Ашшина, С. П. Пономаренка, М. М. Сторчака и др. // Елемен-ти регуляцп в рослиництвь— Кшв, 1998.-С.327−334.
  77. В. А. и др. Методические указания по регенерации растений винограда в жидкой среде / В. А. Зленко, Л. П. Трошин, Б. А. Левенко М., 1990— С.4−9.
  78. В. А. Диагностика хозяйственно ценных признаков и клональное микроразмножение винограда in vitro: Автореф. на соиск. уч. ст. к.с.-х.н.— Ялта, 1991.-€.7.
  79. В. А. и др. Размножение винограда методами IN VITRO. Часть 2. Развитие растений in vitro и их адаптация к условиям in vivo / В. А. Зленко, Л. П. Трошин, И. В. Котиков // Виноград и вино России-1998.-№ 5.-С.26−30.
  80. В. А. и др. Методы in vitro для размножения оздоровленного посадочного материала винограда / В. А. Зленко, И. В. Котиков, Л. П. Трошин // Виноделие и виноградарство.-2003.-№ 3.-С.38−39.
  81. Д. В. О некоторых результатах применения препарата эмистим во Вьетнаме // Аграрная Россия-1999.-№ 1(2).-С.47.
  82. Каталог сортов винограда, выведенных во ВНИИВиВ им. Я. И. Потапенко и интродуцированных в результате международного сотрудничества/ И. А. Ко-стрикин, Л. В. Кравченко, А. М. Алиев и др.— Ростов н/Д., 2003.-С.16, 18, 72.
  83. Р. М., Клейн Д. Т. Методы исследования растений.— М.: — Колос, 1974.-С.111−161.
  84. В. М., Янина М. М. Методологические принципы и способы применения росторегулирующих препаратов нового поколения в растениеводстве // Аграрная Россия.-1999.-№ 1(2).-С.9−12.
  85. В. М. Технологии будущего в растениеводстве// Сельскохозяйственная биотехнология.— М.: «Евразия +». -2000.-С.228−240.
  86. И. Ю., Кушнаренко С. В. Сохранение генотипов плодовых и ягодных культур в Казахстане // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology- Saratov, 2003.-С. 152−153.
  87. Л. H. и др. Испытания биопрепаратов эмистим и экост 1/3 на хлопчатнике в условиях Таджикистана / Л. Н. Козлова, Э. Г. Гашников, В. И. Богомаз // Аграрная Россия — 1999—№ 1(2).-С. 17−22.
  88. Л. А. Рост изолированных апексов томата на кальций-дефицитных средах в зависимости от качества света, использованного при развитии проростков // Физиология растений.-1994—т.41 .-№ 6.
  89. С. А. Дискуссионные вопросы клонального микроразмножения// Плодоводство и ягодоводство России.- М., 2000.-Т.7.-С.62−66.
  90. М. С. Получение оздоровленной малины при сочетании методов• *термотерапии и культуры апексов // Культура клеток растений и биотехнология. Кишинёв, 1983.-С. 121.
  91. К. О. Размножение пробирочных растений картофеля in vitro // Культура клеток растений и биотехнология — Кишинёв, 1983 — С. 140.
  92. Л. В., Дорошенко Н. П. Инновационные процессы в питомнико-водстве винограда // Виноделие и виноградарство.-2002.-№ 5.-С.12−13.
  93. Н. В., Степаненко В. И. Проникают ли вирусы в апикальную меристему растений? // Тр. / Биолого-почвенный институт.— М., 1971 .-С.4.
  94. Е. Д. и др. Теория и практика применения лазеров и светоизлу-чающих диодов в агротехнологиях растениеводства / Е. Д. Кузнецов, В. Ф. Василенко, В. Я. Заславский М.: МГТУ, 1997.-С.169−176.• s
  95. Н. В. и др. Клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур как элемент выделения базовых растений / Н. В. Кухарчик, С. Э. Се-менас, Е. В. Колбанова // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology-Saratov, 2003- C. 162−163.
  96. А. И., Кузьменко А. П. Культура клеток, тканей и органов винограда in vitro (обзор) // Селекция устойчивых сортов винограда.- Кишинёв, 1982.-С.116−139.
  97. П. П., Корчинский А. А. Проблемы системных исследований и информационного обеспечения селекции, генетики и изучения генетическихресурсов растений // Нетрадиционное растениеводство, экология и здоровье.— Симферополь, 1998.-С.250−253.
  98. А. Л., Карначук Р. А. Роль красного света в регуляции морфогенеза и активности фитогормонов юкки слоновой в процессе культивирования IN VITRO // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях.— М., 2001.-С.344.
  99. Л. А. Биотехнология высших растений — СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2003−228с.
  100. Г. В. и др. Вивчення ефективности ди бюстимулятор1 В на донорно-акцепторш в1дносини у рослин / Г. В. Мазильников, О. I. Шевченко, Б. М. Черемха // Елементи регуляци в рослиництвь— Кшв, 1998.-С.32−37.
  101. А. М., Калашникова Е. А. Клональное микроразмножение ценных гибридов лилий// Сельскохозяйственная биотехнология —М., 2000.-С.99−105.
  102. А. Н. Сорт винограда Кристалл на севере промышленного виноградарства // Виноделие и виноградарство.-2002.-№ 2.-С.44−45, 52.
  103. Н. А. Краткий курс физиологии растений М.: Госсельхозиздат, 1948.-496с.
  104. А. Е. и др. Биотехнология и равновесие в экосистемах / А. Е. Мамчур, Ю. А. Дмитрук, Н. А. Погорилько // Нетрадиционное растениеводство, экология и здоровье.-Симферополь, 1998.-С.99−100.
  105. В. Г., Косаровская О. И. Методы диагностики вирусных заболеваний винограда // Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда Кишинёв, 1977.-С.85−95.
  106. В. Г., Бондарчук В. В. Методы изучения хронических болезней винограда. Получение здорового посадочного материала // Новые методы фитопатологических и иммунологических исследований в виноградарстве.— Кишинёв, 1985.-С.91−109.
  107. Э. М., Земшман А. Я. Основы планирования эксперимента с элементами математической статистики в исследованиях по виноградарству— Кишинёв: ШТИИНЦА, 1986.-238с.
  108. К. В. Вирусные и вирусоподобные болезни косточковых пород и пути оздоровления от них насаждений // Промышленное производство оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур — М., 2001.-С.77−78.
  109. Методы и результаты оздоровления селекционного материала винограда от хронических болезней / В: Г. Маринеску, Н. Б. Леманова, В. В. Бондарчук и др. И Селекция устойчивых сортов винограда.— Кишинёв, 1982.-С.93−99.
  110. Методические рекомендации по клональному микроразмножению винограда / П. Я. Голодрига, В. А. Зленко, Л. А. Чекмарёв и др. Ялта, 1986.-С.26−66.
  111. Микроклонирование винограда / Н. И. Гузун, А. И. Литвак, А. П. Кузьмен-ко и др. // Культура клеток растений и биотехнология.- Кишинёв, 1983.-С.117−118.
  112. И. В. Минимализация роста декоративных растений под воздействием химических факторов в культуре in vitro // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology Saratov, 2003.-C.202−203.
  113. О. Б., Бургутин А. Б. Почки винограда от побегов разного возраста как исходный материал для микроклонального размножения // Культура клеток растений и биотехнология — Кишинёв, 1983.-С.119.
  114. О. И. и др. Сохранение генофонда ценных растений с помощью культуры тканей / О. И. Молканова, Е. М. Ветчинина, Н. К. Сучкова // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology Saratov, 2003.-C.210−211.
  115. Г. Ф. и др. Влияние эмистима С на функционирование протонной помпы корневой системы кукурузы / Г. Ф. Насырова, Н. В. Беляева, С. П. Пономаренко // Елементи регуляцп в рослиництвь— Кшв, 1998.-С.46−50.
  116. Н. М. Действие рентгеновского излучения на апикальные меристемы чёрной смородины в культуре in vitro // Культура клеток растений и биотехнология.- Кишинёв, 1983.-С.122−123.
  117. А. М. Виноградарство и виноделие.- М.: Колос, 1968.-512с.
  118. П. Н. Выступление на координационном совещании по виноградарству в г.Ялта // Виноградарство и виноделие.-1991.-№ 4.-С.32−35.
  119. О сопоставлении медленного и сверхбыстрого замораживания клеток и меристем растений для их криосохранения / А. С. Попов, Д. Н. Федоровский, С. М. Адуева и др. // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology — Saratov, 2003.-C.256−257.
  120. Обезвирусен посадъчен материал по метода на тканните культури / С. Панделиев, С. Кръстанова, В. Ковачев и др. // Лозарство и винарство.— 1988.-№ 6.-С.4−7.
  121. Общие сведения о размножении плодовых культур. Способы размножения/ С. А. Алексеева, В. А. Бондарев, Г. В. Ерёмин и др. // Садоводство России — Тверь, 1994.-С.31−32.
  122. Особенности режима глубокого замораживания клеток растений и биотехнология / А. С. Попов, JI. А. Волкова, Б. Дитрих и др. // Культура клеток растений и биотехнология.- Кишинёв, 1983.-С.208−209.
  123. Основы сельскохозяйственной биотехнологии / Г. С. Муромцев, Р. Г. Бутенко, Т. И. Тихоненко и др. — М.: Агропромиздат, 1990.-383с.
  124. Н. А. Совершенствование системы производства оздоровленного посадочного материала земляники в условиях Северного Кавказа: Автореф. дис. К.С.-Х.Н.-Краснодар, 2001.—27с.
  125. А. Д., Упадышев М. Т. Хемотерапия и размножение садовых культур на питательных средах с фенолкарбоновыми кислотами // Плодоводство и ягодоводство России.- М., 2000.-Т.7.-С.67−72.
  126. Е. JI. Длительное хранение растений ежевики в условиях in vitro // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology Saratov, 2003.-C.250−251.
  127. О. А. Теоретическое обоснование и приёмы использования методов биотехнологии в селекции сахарной свеклы: Автореф. дис.. д.с.-х.н.— Воронеж, 2003.-С.26−28.
  128. А. В. Влияние красного света на содержание фитогормонов в проростках кукурузы при деэтиоляции // Вестн. С.-Петрбург. ун-та. Сер. З — 1999.-№ 1 .-С.61 -65.
  129. В. В. Физиология растений.— М.: Высшая школа, 1989.-464с.
  130. С. П. Украшсью регулятори росту рослин // Елементи регу-ляци в рослинищш.- Кшв, 1998.-С. 10−16.
  131. С. П., Боровикова Г. С. Регуляторы роста растений — путь к экологизации сельскохозяйственного производства // Нетрадиционное расте-ниводство, экология и здоровье Симферополь, 1998.-С.94−95.
  132. С. П., Гашников Э. Г. Определение типа физиологической активности эмистима с использованием специфических биотестов // Аграрная Россия.-l 999.-№ 1 (2).-С. 15−16.
  133. А. С. и др. Криобанк клеток и тканей растений: программа замораживания и некоторые методы подготовки и рекультивирования / А. С. Попов, JI. А. Волкова, Н. Д. Черняк // Культура клеток растений и биотехнология.— Москва, 1986.-С.219−222.
  134. А. С. Криоконсервация клеток растений // Методы культивирования клеток.-Л., 1988.-С.70−77.
  135. А. С. Физиология криоустойчивости и криосохранения культивируемых in vitro клеточных штаммов растений: Автореф. дис.. д.б.н.- М., 1998—50с.
  136. А. С. Криобанк клеточных, меристемных культур и семян растений для биотехнологии и сохранения генофонда // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology Saratov, 2003.-C.254−255.
  137. Ю. Г. Культура in vitro меристематических верхушек как метод оздоровления и размножения растений // Биологические науки-1976—№ 6 — С.13−24.
  138. Применение метода хемилюминесценции для изучения иммуностимулирующего действия экоста и эмистима / В. М. Муштакова, В. А. Фомина, В. В. Роговин и др. //Аграрная Россия.-1999.-№ 1(2).-С.13−15.
  139. Ю. Н. и др. Совершенствование технологии оздоровления яблони от латентных вирусов / Ю. Н. Приходько, Д. Н. Редин, В. И. Кашин // Плодоводство и ягодоводство России.-М., 2000.-Т.7.-С.89.
  140. JI. Д. и др. Использование эмистима, эпибрассинолида и унико-назола для преодоления разнокачественности плодов гречихи /Л. Д. Прусакова, М. Н. Ежов, А. И. Сальников // Аграрная Россия.-1999.-№ 1(2).-С.41 -44.
  141. Размножение ежевики (Rubus fructicosus L.) в культуре in vitro / Н. В. Ку-харчик, С. Э. Семенас, Е. В. Колбанова и др. // Плодоводство — Самохвалови-чи.-2002.-Т. 14.-С.95−98.
  142. Регуляторы роста растений в сельском хозяйстве / В. С. Шевелуха, В. М. Ковалёв, Л. Т. Груздев и др. // Вестник с.-х. науки.-1985.-№ 9.-С.57−65.
  143. В. Р. Факторы, влияющие на регенерацию растений картофеля из меристемы // Культура клеток растений и биотехнология.— Кишинёв, 1983.-С.139−140.
  144. Р. Приложение на светлина с различен интензитет за установеване влиянието и върху растежните процеси на лоза в in vitro условия // Лозарство и винарство.-1999.-№ 3 .-€.28−30.
  145. Р. Роля на фотопериода за развитие на стъеблени експланти от лоза в культура in vitro // Лозарство и винарство.-1999.-№ 1.-С.14−17.
  146. Т. Н., Маурина X. А. Получение растений огурца в культуре in vitro / Культура клеток растений и биотехнология.- М., 1986.—С.120−123.
  147. А. П. Развитие теории сохраняющих реакций живых систем и её подтверждение при электромагнитной обработке органов размножения растений // Плодоводство и ягодоводство России.—М., 2000.—T.VII.-C.110−118.
  148. В. Д. и др. Регуляция эмистимом С и бетастимулином метаболизма сахарозы и продуктивности сахарной свеклы / В. Д. Сакало, С. П. Пономаренко, В. М. Курчий// Агрохимия—2001 .-№ 10.-С.49−55.
  149. В. А. Питомниководство в Беларуси // Промышленное производство оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур.-М., 2001.-С.29−34.
  150. В. А. и др. Предварительные результаты инициации культуры in vitro районированных подвоев яблони / В. А. Самусь, С. Э. Семенас, А. П. Коноплева // Плодоводство.-Самохваловичи, 2002—Т.14.-С.22−28.
  151. Сельскохозяйственная биотехнология / В. С. Шевелуха, Е. В. Калашникова, С. В. Дегтярев и др.- М.: Высш. шк., 1998.—416с.
  152. М. Д., Вольвач П. В. К вопросу о диапазоне эффективного функционирования эмистима С // Нетрадиционное растениеводство, экология и здоровье.- Симферополь, 1998.-С.440.
  153. Система и технология производства сертифицированных черенков винограда / Л. М. Малтабар, Д. М. Козаченко, И. Н. Василевский и др. — Краснодар, 2001.-125с.
  154. В. А. Биотехнология, генофонд винограда и его восстановление// Нетрадиционное растениеводство, экология и здоровье.-Симферополь, 1998.-С.420−421.
  155. А. П. Фотосинтез и поглощение 14С-сахарозы фотогетеротрофной культурой ткани Ruta Graveolens // Культура клеток растений и биотехнология.- М., 1986.-С.44−46.
  156. А. С. Влияние химических препаратов и формировок кустов на зимостойкость винограда//Автореф. дис.. к.с.-х.н.-Ереван, 1977—27с.
  157. Е. В., Дудин Г. П. Облучение семян сорта Биос-1 лазерным и дальним красным светом // Вестн. Вят. пед. ун-та.-2000.-№ 3−4.-С.22.
  158. К. Д. Физиологические основы виноградарства. Часть 1 / София.— Изд-во Болгарской акад. наук, 1971.-С.35−36.
  159. С. А., Тулаева М. И. Размножение клонов сорта мускат белый в культуре in vitro // Виноградарство и виноделие СССР.-1990.-№ 5.-С.26−27.
  160. В. М. и др. Зависимость накопления фотосинтетических пигментов в листьях растений от спектрального состава и интенсивности света// Хлорофилл-Минск, 1974.-С.340−348.
  161. Технологический процесс получения безвирусного посадочного материала плодовых и ягодных культур (методические указания) / В. И. Кашин, А. А. Борисова, Ю. Н. Приходько и др.- М.: ВСТИСП, 2001.-С.92.
  162. JI. П. VI Международный симпозиум по селекции винограда// Виноградарство и виноделие—1995.-№ 1.-С.5−12.
  163. Э. В. Хранение оздоровленной коллекции картофеля in vitro // Культура клеток растений и биотехнология.- Кишинёв, 1983.-С.207−208.
  164. Э. В., Рогозина Е. В. Оздоровление клоновой коллекции картофеля в культуре ткани // Физиология растений-1997.-т.44.-№ 3.-С.432−439.
  165. Э. В. и др. Изменчивость меристемного картофеля в культуре IN VITRO и IN VIVO / Э. В. Трускинов, Д. В. Фролова, О. Ю. Антонова // The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology-Saratov, 2003- C.324−325.
  166. В. В. Культивирование каллусных тканей на твёрдых питательных средах // Методы культивирования клеток.— Л., 1988.-С.232−241.
  167. Устойчивые сорта винограда генофонда СНГ / И. А. Кострикин, Л. Ф. Ме-лешко, А. Д. Лянной и др.— Новочеркасск.-Одесса-Запорожье, 2002.-С.42−43.
  168. Физиологические аспекты микроклонального размножения эфиромаслич-ных роз / Е. Б. Кириченко, Ш. С. Фернандо, Т. А. Красильникова и др. // Сельскохозяйственная биотехнология — М., 2000.-С. 105−113.
  169. Физиология винограда и основы его возделывания. Том первый. Эколого-почвенные предпосылки роста и развития виноградной лозы. Питание виноградного растения / Под ред. К. Д. Стоева — София: Изд-во Болгарской академии наук, 1981.-331с.
  170. Фотосинтез и дыхание растений выращенных на красном и белом свету / С. А. Ушакова, А. А. Тихомиров, Э. К. Волкова и др. // Физиология расте-ний.-1997.-Т.44.-№ 3.-С.367−372.
  171. Фотосинтетический аппарат у проростков ячменя, выращенных на красном и синем свету низкой интенсивности/ В. В. Макарова, Н. Т. Бутов, В. В. Бон-дар и др. // Физиол. раст- наука 3-го тысячелетия М., 1999.-С.72.
  172. Л. В. Оптимизация технологии микроклонального размножения вишни и оценка влияния ионов тяжёлых металлов в культуре in vitro: Автореф. диск.с.-х.н.- Орёл, 2003−24с.
  173. С. А. и др. Продуктивность растений земляники, выращенной методом in vitro / С. А. Хапова, Н. Демидова, Н. Пеплова // Современные проблемы биологии и химии.- Ярославль, 1998.-С.79−82.
  174. Хранение коллекции винограда «ин витро» при пониженной температуре / Н. П. Дорошенко, М. А. Хохлова, О. Н. Высоцкая и др. // Виноград и вино России.-1994.-№ 3 .-С.24−27.
  175. Л. И. Фиторегуляторы и их влияние на геном растений // Сельскохозяйственная биотехнология М., 2000.-Т.1.-С.158−169.
  176. У. Вирусные и вирусоподобные болезни винограда // Вирусные болезни ягодных культур и винограда — М., 1975.-С.264−266.
  177. И. Г. Методы терапии винограда от вирусных заболеваний // Селекция устойчивых сортов винограда.- Кишинёв, 1982.-С.99−108.
  178. . М., Пономаренко С. П. Стимуляция нектаровьщеления у цветков клевера лугового // Елементи регуляцп в рослиництв1.- Кшв, 1998.-С.81−84.
  179. Н. Д. и др. Хранение клеток растений при сверхнизких температурах и некоторые способы их подготовки и рекультивирования / Н: Д. Черняк, А. С. Попов, Р. Г. Бутенко // Культура клеток растений и биотехнология.— Кишинёв, 1983.-С.212.
  180. А. А., Василенко В. Ф. Фотоэнергетика инфракрасного излучения и урожай // Аграрная наука.-1998.-№ 3.-С.16−17.
  181. А. А. Световая биотехнология в растениеводстве и селекции // Актуальные проблемы биотехнологии в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии—М., 1996.-С.103.
  182. В. С. Проблемы, приоритеты и масштабы сельскохозяйственной биотехнологии в XXI веке // Сельскохозяйственная биотехнология— М., 2000.-С.З-14.
  183. А. О., Ашшина JI. А. Деяки результата виробничих випробувань нових рютрегулятор1 В при вирощуванш озимо! пшенищ // Елементи регуляци в рослиництвь- Кшв, 1998.-С.38−40.
  184. А. X. и др. Оздоровление и размножение хризантем меристем-ным методом / А. X. Шилинып, И. Я. Жола, В. Р. Вановска // Культура клеток растений и биотехнология —Кишинёв, 1983 .-С. 124.
  185. X. Опыт, накопленный при термообработке клонов яблони для инактивации латентных вирусов яблони // Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда — Кишинёв, 1977.-С.43−49.
  186. А. А., Высоцкий В. А. Влияние некоторых факторов культивирования на клональное микроразмножение плодовых и ягодных растений // Плодоводство и ягодоводство России.-М., 2002.-9.-С. 193−200,469.
  187. С. и др. Обратимость эффект действия УФ-радиации на уровень ПУК и АБК в листьях ячменя / С. Шомансуров, М. Наврузбекова, А. Рустамбекова // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях.— М., 2001.-С.344.
  188. Эмистим индуктор устойчивости к вирусным болезням паслёновых / Н. А. Рожнова, Г. А. Геращенков, М. М. Янина и др. // Аграрная Россия.-1999.-№ 1 (2).-С.З 5−38.
  189. Энциклопедия виноградарства.-Кишинёв: Молд. Сов. Энциклопедии, 1987.-Т.З. Пыльца-Ярус.-С.398.
  190. Т. П. и др. Влияние света различного спектрального состава на резистентность проростков пшеницы при засолении / Т. П. Якушенкова, Н. JI. Лосева, А. Ю. Алябьев // Физиол. раст.— наука 3-го тысячелетия — М., 1999.-С.505−506.
  191. Т. П. и др. Свет различного спектрального состава и резистентность проростков пшеницы при действии супероптимальной температуры / Т. П. Якушенкова, Н. Л. Лосева, А. Ю. Алябьев // Вестн. Башк. ун-та — 2001 -№ 2.-С.94−96.
  192. С. Г., Шабаева Э. В. Клональное микроразмножение некоторых охраняемых видов лилейных с целью получения материалов для криоконсерва-ции // Цитология.-l999.-41 ,№ 3−4.-C.331.
  193. A photoperiod-insensitive barley line contains a light-labile phytochrom В / M. Hanumappa, H. Pratt Lee, M.-M. Cordonnier-Pratt et al. // Plant Physiol.-1999 — 119, № 3.-P.1033−1039.
  194. Allen W. P., Van Schagen I. G., Eveleigh E. S. Can. I. Plant Pathol.-1982.-4.1.
  195. Alleweldt G., Harst-Langenbucher M. Der Einflus von Wachstunisinhibitoren auf die Langzeitlagerund von in-vitro-kulturen der Rebe.-Vitis.-1987.-26,2.-P.57−64.
  196. Barkiwska В., Michalczuk L. Effect of monochromatic light on growth of in vitro end ex vitro plants // Biol. Plant.-1994.-V.36.-P.59.
  197. Bunning E., Welte H. Photoperiodishe Reaktion und pflanz-lichen Gewebekul-turen // Physiol. Plantarum.-1954.-7.-P. 197−203.
  198. Calero N. Actions de radiations rouges et bleues sur l’embryogenese L. en culf ¦ture in vitro et sur sa teneur en leucoanthocyanes // Cr. Soc. Boil.-1989 — 183 ,№ 4.-P.307−313.
  199. Chee R. In vitro culture of Vitis: the effects of light spectrum manganese and potassium iodide on morphogenesis // Plant. Cell, Tissue and Organ Culture-1986—№ 7.-P. 121−134.
  200. Chee R, Pool R. M. Morphogenic Responses to Propagule Trimming, Spectral Irradiance, and photoperiod of Grapevine Shoots Recultured in vitro // Journal of the American society for horticultural science.-No.2.~1989.Vol.114.-P.350−354.
  201. Conion M. London conference discusses the future of biotechnology in agricul• ture // Ag. Exporter -2001 .-13,№ 11 -P.9.
  202. Cryopreservation of apple shoot tips by encasulation-dehydration: Effect of pre-culture, dehydration and freezing procedure on shoot regeneration / Z. Yanhua, W. Yongji, E. Florent et al // Cryo-Lett.-1999.-20,№ 2.-P.103−108.
  203. Cryopreservation of apple in vitro shoot tips by the droplet freezing methods / Z. Yanhua, W. Yongji, E. Florent et al. // Cryo-Lett.-l999−20,№ 2.-P. 109−112.
  204. Cryopreservation of apple shoot tipe: Importance of cryopreservation technicue and of condinioning of donor plants / W. Yongji, E. Florent, Z. Yanhua et al // Cryo-Lett.-l999.-20,№ 2.-P. 121−130.
  205. Cryopreservation of axillary buds of grape (Vitis vinifera) in vitro plantlets /• •
  206. Z. Yanhua, W. Yongji, E. Florent et al // Cryo-Lett.-2001.-22,№ 5.-P.321−328.
  207. Cryopreservation of citrus apices using the encapsulation-dehydration technigue/ M. T. Gonzalez-Amao, E. Florent, U. Caridad et al. // Cryo-Lett.-l998.-193 -P.177−182.
  208. Effect of light intensity on in vitro multiple shoot induction and regeneration of cotton (Gossypium hirsutum L. cv Khandawa-2) / K. Gupta Shiv, K. Singh Prad-hyumna, V. Sawant Samir et al. // Indian J. Exp. Biol.-2000.-38,№ 4.-P.399−401.
  209. Effect of UV-radiation on some root plants productivity / N. Kasharava, L. Gamkrelidze, N. Datiashvili et al.// Bull. Georg. Acad. Sci.-1999.-159,№ 3-P.470−472.
  210. Fannizo G., Ricardi L. The response of a range of Vitis vinifera to sequential shoot tip cultures at high temperatures // Euphytica.-1988.-№ 39/l.-P.19−23.
  211. Flood R. G. et al. The influence of photoperiod on barley development / R. G. Flood, D. B. Moody, R. J. Cawood // Cereal Res. Commun.-2000 -28,№ 4.-P.371−378.
  212. Fouget R., Ottenwaelden M. Fercal: nowelle variete de porte-greffe resistante a la chlorose caicaire.-Progres agricole et Viticole.-1983.-100,8:200.-P.225.
  213. Fuerukranz H. A. et al. Light effects on in vitro adventitous root formation in axillary shoots of mature Prunus serotina / H. A. Fuerukranz, C. A. Nowak, C. A. Maynard // Physiol. Plant. 1990.-80,№ 3.-P.337−341.
  214. Galzy R. La culture in vitro des apex de Vitis rupestris. Compt. rend. Acad. Sc.—1972.—Vol.274.
  215. Ghosh Ashok K. et al. Photoperiodic effects on plant morphology and flowering in determinate soybeans / K. Ghosh Ashok, K. Asanuma, A. Kusutani // Kagawa daigaku nogakubu gakjutsu hokoku/ Techn. Bull. Fac. Agr. Kagawa Univ.-2000.— 52,№ 105.-P.l-4.
  216. Gilmer E. M., Kelts 1.1. Phytopath.-1968.-58/3-P.277−278.
  217. Gorling H., Radke G. Biol. Rdsch.-1980.-Bd.l8.-S.233−234:
  218. Gotz R. Rosige Zeiten oder der Volf in Schafspelz? // Dtsch. Weinmag-2001-№l.-C.81−84.
  219. Griffin R. GMOs, biosofety and invasive species Global activities: EPPO Council Colloquium on plant Health and the Environment, Dublin, 21 Sept., 2001 // Bull. OEPP.-2001 -№ 2.-P. 122.
  220. Hokanson S. C. Collection, utilization and preservation of fruit crop genetic resources — some case studies: Introduction to the workshop // Hort Science — 2001 .-36,№ 2.-P.207−208.
  221. Iako N. Elimination of leafrool-disease at Pinot noir and Merlot using apex• >cultures / Cannaissance de la Vigne et du Vin.-1986.-20.-P.77−86.
  222. Influencia do acido indolbutirco, kloroglucinol elur no enzaizamento in vitro do maciera cv Fred Hough / A. Q. Centellas, G. R. de L. Fortes, I. B. Da Yilva et al // Univ. fed Vicoso.-l 998.^45,№ 261 -P.409−418.
  223. Jun Yi. Liaoning shifan daxue xuebao. Ziran kexue ban / J. Liaoning Norm. Natur. Sci.-2000.-23,№l.-P.86−88.
  224. Kefeli L., Lozhnikova V. Light as factor of stress of the Federation of European Societies of Plant Physiology, Varna, 7−11 Sept., 1998 / Bulg. J. Plant Physiol.1998-Spec. Issue.-P.337.
  225. Koetje D. S. Biotechnology and sustainable agriculture: Annual Meetings of the
  226. Michigan Academy. Deabrom. Mich., March 9, 2001 / Mich. Acad.—2001.— 33,№ 1.-P.14.
  227. Kohler К. H. et al. Wechselwirkultur von Licht und Phytohormonen bei der Gewebekultur / К. H. Kohler, L. T. Binh, M. Kahl // Potsdam. Forsch. B.-1988-№ 57.-P.128−132.
  228. Kryszczuk A. Termoterapia i kultura merystemow jako jedna metod uzyskim-wania roslin ziemniaka wolnych od wirusow / Biul. Inst. hod. i aklim. rosl.—1999—№ 212.-C. 151−157.
  229. Letouze R., Beauchesne G. Action declairements monochromatiques sur la•rhizogenese de tissues de topinambur // Compt. Rend. Acad. Sci.-1969.-V.269 — P.1528−1531.
  230. Mantell S. H., Smith H. Plant biotechnology // Cambridge University press — 1983.-№ 5 .-P. 10−15.
  231. Martin C. et al. Vignes et techniques de cultures «in vitro». Quelques resultats d’une collaboration entre recherche publiques et entrefris privel // Bulletin de L, O.I.V.-1987.-675−676.-P.447−458.
  232. Martinez M. C., Mantilla I. L. Morphological and Yield Comparison between Vitis vinifera L. ev Albarino Grown from cuttis and from in vitro propagation //0, American Journal of Enology and Viticulture.-l 995.-46/2.-P. 195−203.
  233. Metz M. What goods agricultural biotechnology? // J. New Seeds-2000 — 2,№ 4—P.59−71.
  234. Micropropagation of the Grapevine: Results of 10 Years of Experiments in the First Vinification / A. Deloire, M. Charpentier, G. Berlios et al. // American Journal of Enology and Viticulture.-l 995.-46/4.-P.571 -578.
  235. Morgan W. M. Plant tissue culture // World Agriculture-1993-P. 19−21.
  236. Mullins M. G. Applications of tissue culture to the genetic improvement of grapevines / Proceedings of the 5th International Symposium on Grape Breeding // Vitis—Special Issue.-1990.-P.403−404.
  237. Murashige Т., Iones I. B. Cell and organ culture methods in virus disease therapy // Asta Hort.-l974—№ 36.-P.207−221.
  238. Pinker I. et al. Influence of light on adventitious root formation in birch shoot cultures in vitro /1. Pinker, K. Zoglauer, H. Goring // Biol. Plant.-1989.-31,№ 4.— P.254−260.
  239. Price E., Hamburger J. Genetically engineered crops ex panol in China // Glob. Pestic. Campaigner—2001 -11,№ 3.-P.7.
  240. Sakurai T. et al. Cultural characteristics of Virus free grapevines, growth characteristics and fruit quality о bull / T. Sakurai, K. Takei, A. Harada // Yamanshi fruit three exper, Stat, Manriki, Yamanashi-shi.-1988.-7.-P.9−19.
  241. Salajova Т., Erdelsky K. Growth characteristic of norway spruce tissue cultures in dependence on light // Folia dendrol.-1989.-№ 16.-P.345−363.
  242. Seibert M. et al. The effects of light intensity and spectral quality on growth and shoot initiation in tobacco callus / M. Seibert, R. J. Wetherbee, D. D. Job // Plant Physiol.-1975.-V.56.-P. 130−139.
  243. Sheffield F. M. Presence of virus in the primordial meristem // Ann. Appl. Biol., 1942.-№ 29(1).-P.65−69.
  244. Skoog F., Miller С. O. Symp. Soc. Exp. Biol.-1957.-V.l l.-P.l 18−131.
  245. Slavtcheva Т., Diminrova V. Rates of net photosynthesis and dark respiration of in vitro vine plants during acclimatization // Vitis.-1999.-38,4.-P.183−184.
  246. Tomanek A., Krivanek V. Utilization of tissue cultures in the production of plant material for grapevine plantations//Vinohrad.-Bratislava.-1987.-№ 25.-P.249−250.
  247. Topcuoglu S. F. et al. Effect of isochronal exogenously applied synthetic-, fun-¦ gal-gibberellic acid (GA3) and light on the sheat length of second leaf: Abstr. 11th
  248. Congress of the Federation of European Societies of the Federation of Plant Physiology, Varna, 7−11 Sept., 1998/ S. F. Topcuoglu, S. Unyayar, A. Unyayar // Bulg. J. Plant. Physiol.-1998.-Spec. issue.-P.123.
  249. Uyemoto I. K. PI. Dis. Report.-1975.-59.-P.98-l01.
  250. Uyemoto I. K. et al. Isolation and identification of grapevine Bulgarian latent virus in Concord grapevine in New York State / I. K. Uemoto, E. F. Taschenberg, D. K. Hummer//PI. Dis. Report.-l977.-61.-P.949−953.
  251. U. S. EPA rejects use of Starlink corn in human food // Glob. Pestic. Cam-paigner-2001 -11 ,№ 2.-P.27.i
  252. Vanek G., Jakubec M. Osvedcena metoda rychleho ninozenia bezvirusoveho vinica vo vegetacnych PVC rukovcoch // Zahradnictvi.-l 988.-15,1.-P.37−42.
  253. Woodham I., Krake L. P. Grapevine yellow speckle disease studies on natural spreed observed in the field / Vitis.-1982.-P.33 7−345.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!