Участие адапторных белков RIL и TRIP6 в организации актинового цитоскелета и злокачественной трансформации

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Слова особой признательности хотела бы высказать в адрес Анны Саблиной, которая научила меня многим методам и без чьей поддержки эта работа не была бы выполнена так скоро. Я благодарю Романа Кондратова за критические замечания и стимулирующие дискуссии, а также Ольгу Разоренову и Александра Гаспарьяна за помощь в подготовке материалов к защите. Я благодарна членам лабораторий Е. И. Фроловой, П… Читать ещё >

Содержание

Список сокращений
I. Обзор литературы
- 1. 1. Адапторные белки
  - 1. 1. 1. Особенности LIM-доменов
  - 1. 1. 2. Характеристика PDZ-доменов
- 1. 2. Ген TRIP
- 1. 3. Ген RIL
  - 1. 3. 1. RIL — представитель семейства белков ALP/Enigma
  - 1. 3. 2. Происхождение и эволюционная консервативность семейства ALP/Enigma
  - 1. 3. 3. Геномная организация гена RIL человека
  - 1. 3. 4. Альтернативные транскрипты гена RIL человека
  - 1. 3. 5. Эволюционная консервативность RIL
  - 1. 3. 6. Анализ экспрессии RIL и других членов семейства ALP/Enigma в различных тканях
  - 1. 3. 7. Репертуар взаимодействий белка RIL
RIL взаимодействует с протеинтирозинфосфатазой PTP-BL
Краткая функциональная характеристика PTP-Bas/PTP-BL
RIL взаимодействует с LIM-доменным белком TRIP
- 1. 3. 8. Роль RIL в поддержании структуры актиновых стресс-фибрилл
Краткая характеристика а-актининов
- 1. 3. 9. Транспортная функция RIL
- 1. 3. 10. Возможное участие RIL в злокачественной трансформации
- 1. 3. 11. Данные о дифференциальной экспрессии RIL, полученные с использованием микропанелей олигонуклеотидов
- 1. 4. Лентивирусная система экспрессии
- 1. 5. РНК-интерференция
II. Материалы и методы
- II. 1. Работа с культурами эукариотических клеток
II. 1.1. Клеточные линии, использованные в работе, и их культивирование
II. 1.2. Трансфекция
II. 1.3. Упаковка лентивирусных частиц
II. 1.4. Очистка вирионов и трансдукция
II. 1.5. Определение эффективного титра вирусных частиц и множественности заражения клеток
II. 1.6. Оценка скорости клеточного деления
II. 1.7. Определение скорости миграции клеток
Метод «зарастания раны»
Оценка подвижности клеток с помощью трансмиграционных камер
II. 1.8. Измерение клеточной адгезии
II. 1.9. Колониеобразование в полужидкой среде
ПЛ. 10. Проточно-цитометрический анализ
- II. 2. Работа с плазмидной ДНК и клонирование
  - 11. 2. 1. Получение химически компетентных клеток E. col
  - 11. 2. 2. Трансформация химически компетентных клеток E. col
  - 11. 2. 3. Препаративное и аналитическое выделение плазмидной ДНК
  - 11. 2. 4. Обработка ДНК эндонуклеазами рестрикции
  - 11. 2. 5. Фракционирование и извлечение ДНК из агарозных гелей
И.2.6. Лигирование ДНК
II. 2.7. Векторы и плазмидные конструкции, использованные в работе
II. 2.8. Получение конструкций, экспрессирующих немеченые белки и белки, слитые с эпитопами Flag, НА, GFP
- 11. 2. 9. Получение конструкций для экспрессии РНК-шпилек для РНК-иитерференции
- 11. 2. 10. Получение репортерных конструкций
- 11. 3. Выделение и анализ РНК
- 11. 3. 1. Выделение РНК, фракционирование и перенос на мембраны
- 11. 3. 2. Нозерн-блот анализ
- 11. 3. 3. ОТ-ПЦР
- 11. 3. 4. Выделение и анализ мРНК, связанной полисомами
- 11. 4. Методы выделения и анализа белков
- 11. 4. 1. Получение тотальных клеточных лизатов
- 11. 4. 2. Получение Triton Х-100-растворимой и нерастворимой фракций
- 11. 4. 3. Фракционирование белков, перенос на мембрану и иммунодетекция
- 11. 4. 4. Иммунопреципитация
- 11. 4. 5. Иммунофлюоресценция
- 11. 4. 6. Определение соотношения полимеризованного и неполимеризованного актина с помощью конфокальной микроскопии
- 11. 4. 6. Колориметрическое измерение активности р-галактозидазы (ONPG-окрашивание)
- 11. 4. 7. Измерение активности люциферазы
- 11. 4. 8. Оценка времени полужизни белка
III. Результаты и обсуждение
- III. 1. Оптимизация некоторых методов
III. 1.1. Оптимизация упаковки псевдовирусных частиц
III. 1.2. Оптимизация структуры РНК-шпильки для РНК-интерференции
- 111. 2. Влияние измененного уровня экспрессии TR1P6 и RIL на морфологию и физиологию клеток карцином
  - 111. 2. 1. Тестирование конструкций для экспрессии shPHK, специфичных генам TRIP6 и RIL
  - 111. 2. 2. Подавление экспрессии гена TRIP6 приводит к изменению морфологии клеток
  - 111. 2. 3. Изменение уровня экспрессии гена RIL влияет на морфологию клеток
  - 111. 2. 4. Влияние изменения уровней экспрессии TRIP6 и RIL на скорость миграции клеток
  - 111. 2. 5. Экспрессия TRIP6 и RIL и скорость пролиферации клеток
  - 111. 2. 6. Экспрессия TRIP6 и RIL по-разному влияет на способность клеток к росту в условиях анойкиса
  - 111. 2. 7. Гиперэкспрессия RIL усиливает адгезию клеток
  - 111. 2. 8. Возможные механизмы эффектов, наблюдаемых при подавлении экспрессии TRIP
- 111. 3. Возможная роль RIL при раке молочной железы
  - 111. 3. 1. Анализ экспрессии мРНК RIL в опухолях человека
  - 111. 3. 2. Экспрессия RIL в культурах клеток рака молочной железы человека
  - 111. 3. 3. Статус RIL обратно коррелирует с экспрессией эпителиального маркера Е-кадгерина в культурах клеток рака молочной железы
  - 111. 3. 4. Изучение механизмов регуляции экспрессии RIL и Е-кадгерина при раке молочной железы
- 111. 4. Роль альтернативных изоформ RIL в реорганизации актинового цитоскелета
  - 111. 4. 1. Изучение взаимодействия RIL с а-актинином
  - 111. 4. 2. Альтернативные варианты RIL имеют различную локализацию в клетке
  - 111. 4. 3. Изоформы RIL меняют распределение а-актинина-1 между цитоскелет-ассоциированным состоянием и цитозолем
  - 111. 4. 4. RIL повышает степень полимеризации актина за счет своего LIM домена
  - 111. 4. 5. LIM домен RIL ингибирует разборку актиновых волокон
- III. 5. Карбокситерминальный пептид альтернативных форм RIL является сигналом протеасомной деградации
  - 111. 5. 1. Выявление короткоживущих форм RIL
  - 111. 5. 2. Альтернативный С-концевой пептид RIL дестабилизирует гетерологичные белки
  - 111. 5. 3. Альтернативный С-концевой пептид RIL содержит PEST-мотив — сигнал протеасомной деградации
Выводы
Благодарности

Участие адапторных белков RIL и TRIP6 в организации актинового цитоскелета и злокачественной трансформации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Недавнее завершение проекта «геном человека» параллельно с определением полной первичной структуры геномов многих других организмов, а также накопление большого массива данных об экспрессируемых последовательностях ставят перед исследователями принципиально новые задачи по обобщению, классификации и структурированию этой информации. Определение функций отдельных генов, поиск функциональных связей между ними, объединение их в функциональные цепочки, а затем и в функциональные сетиприоритетное направление современных молекулярной биологии и молекулярной генетики. Ключевую роль в интеграции сигнальных каскадов и тонкой регуляции их взаимодействий играют LIM-доменные цитоскелет-ассоциированные адапторные белки, представителями которых являются продукты генов RIL и TRIP6.

В свете многочисленных исследований последних лет некогда принятая точка зрения, что актиновый цитоскелет — просто статическая структура, обеспечивающая поддержание формы клеток, выглядит чрезмерным упрощением. Состояние актинового цитоскелета модулирует активность многих сигнальных каскадовего интактность — необходимое условие внутриклеточного транспорта органелл. Реорганизация актинового цитоскелета играет основную роль в процессах адгезии и миграции клеток, а также при их злокачественной трансформации. В связи с этим выявление конкретных механизмов регуляции состояния цитоскелета, а также поиск и всестороннее изучение белков, вовлеченных в эти процессы, является одним из приоритетных направлений современной молекулярной и клеточной биологии. Изучение функциональных особенностей цитоскелет-ассоциированных белков RIL и TRIP6 может пролить свет на многие аспекты клеточной физиологии и опухолевой прогрессии, открывает широкие перспективы для детального реконструирования механизмов их участия в реорганизации актинового цитоскелета в норме и патологии и закладывает основы для разработки в будущем новых подходов к диагностике и лечению рака.

Основной целью данной работы явилось исследование функциональных особенностей цитоскелет-ассоциированных LIM-доменных белков TRIP6 и RIL, их влияния на реорганизацию актинового цитоскелета, на морфологию и физиологию клеток, а также их возможное влияние на инвазивные свойства опухолевых клеток.

В ходе исследования были поставлены следующие задачи:

1. Изучение влияния уровня экспрессии TRIP6 на морфологические и функциональные особенности клеток линий карцином.

2. Изучение морфологических и функциональных особенностей клеток линий карцином с измененным уровнем экспрессии RIL.

3. Анализ уровня экспрессии RIL в опухолях различного гистогенеза, в частности при раке молочной железы.

4. Выявление роли доменов белка RIL при его взаимодействии с альфа-актинином, и их влияние на состояние актинового цитоскелета.

5. Определение функционального мотива белка RIL, влияющего на стабильность белка RIL, и исследование механизма его деградации.

В методической части работы были поставлены задачи по оптимизации упаковки лентивирусных частиц для повышения эффективности трансдукции экспрессионных кассет в клетки-мишени и по совершентствованию структуры РНК-шпильки для наиболее эффективной РНК-интерференции в рамках лентивирусной экспрессии.

I. Обзор литературы 1.1. Адапторные белки.

Основная отличительная черта адапторных белков — наличие нескольких доменов, обеспечивающих белок-белковые взаимодействия. Белки этого класса служат основой для образования крупных сигнальных комплексов, отвечая за правильное проведение сигнала. Они диктуют специфичность межмолекулярных взаимодействий, внутриклеточную локализацию отдельных белков и целых комплексов и могут модулировать активность своих белков-партнеров [1].

Отсутствие у TRIP6 и RIL собственной ферментативной активности, а также наличие PDZ (у RIL) и LIM-доменов (у TRIP6 и RIL) — мотивов, ответственных за белок-белковые взаимодействия, — позволяют отнести их к классу адапторных белков. Рассмотрим структуру и функции этих двух доменов более подробно.

Выводы.

1. Подавление экспрессии гена TRIP6 в линиях клеток карцином приводит к реорганизации актинового цитоскелета и другим морфологическим и функциональным сдвигам, характерным для эпителиально-мезенхимальной транзиции.

2. Повышенная экспрессия RIL в линиях клеток карцином индуцирует мезенхимный фенотип, пролиферацию клеток и повышает скорость их миграции. При этом гиперэкспрессия RIL усиливает адгезию клеток как эпителиальной, так и неэпителиальной природы. Подавление экспрессии RIL, наоборот, приводит к появлению признаков, характерных для менее агрессивного опухолевого фенотипа.

3. При анализе экспрессии RIL в образцах злокачественных опухолей молочной железы человека и культурах клеток того же происхождения выявлена тенденция к подавлению RIL. При этом высокий уровень RIL коррелирует с более агрессивным опухолевым фенотипом.

4. При исследовании роли RIL в регуляции динамики актинового цитоскелета внутри LIM-домена RIL выявлен дополнительный сайт, обеспечивающий взаимодействие RIL с а-актинином. Показано, что LIM домен RIL рекрутирует а-актинин на актиновый цитоскелет и повышает степень полимеризации актина за счет подавления его деполимеризации.

5. В составе альтернативного С-концевого пептида двух изоформ RIL выявлен PEST-мотив, приводящий к дестабилизации этих белков посредством их протеасомной деградации.

6. В методической части работы установлено оптимальное соотношение компонентов упаковочной смеси, позволившее увеличить эффективный титр получаемых вирусных препаратов в 15−20 раз.

7. В результате масштабного тестирования различных дизайнов РНК-шпильки для осуществления подавления экспрессии генов посредством РНК-интерференции установлено, что наиболее эффективной является «классическая» структура шпильки с 22-нуклеотидным стеблем.

Благодарности.

Хочу поблагодарить своего научного руководителя Елену Ивановну Фролову за предоставление интереснейшей темы для разработки.

Свою искреннюю благодарность хочу выразить Петру Михайловичу Чумакову (лаб. Пролиферации клеток Института молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН) за моральную поддержку и ценные советы в ходе работы и за предоставленные реактивы.

Показать весь текст

Список литературы

Flynn D.C. 2001. Adaptor proteins. Oncogene. 20, 6270−6272.
Kadrmas J.L., Beckerle M.C. 2004. The LIM domain: from the cytoskeleton to the nucleus. Nat. Rex. Mol. Cell Biol. 5, 920−931.
Dawid I.B., Breen J.J., Toyama R. 1998. LIM domains: multiple roles as adapters and functional modifiers in protein interactions. Trends Genet. 14,156−162.
Wang Y., Gilmore T.D. 2001. LIM domain protein Trip6 has a conserved nuclear export signal, nuclear targeting sequences, and multiple transactivation domains. Biochim. Biophys. Acta. 1538,260−272.
Tanaka Т., Soriano M.A., Grusby M.J. 2005. SLIM is a nuclear ubiquitin E3 ligase that negatively regulates STAT signaling. Immunity. 22,729−736.
Ungureanu D., Silvennoinen O. 2005. SLIM trims STATs: Ubiquitin E3 ligases provide insights in the regulation of cytokine signaling. Science’s STKE, 304, pe49.
Capilli A.D., Schultz D.C., Rauscher III F.J., Borden K.L. 2001. Solution structure of the PHD domain from the KAP-1 corepressor: structural determinants for PHD, RING and LIM zinc-binding domains. EMBOJ. 20,165−177.
Pawson Т., Nash P. 2003. Assembly of cell regulatory systems through protein interaction domains. Science. 300,445−452.
Fanning A.S., Anderson J.M. 1999. PDZ domains: fundamental building blocks in the organization of protein complexes at the plasma membrane. J. Clin. Invest. 103,767−772.
Pallen M.J., Ponting C.P. 1997. PDZ domains in bacterial proteins. Mol. Microbiol. 26,411 413.
Ponting C.P. 1997. Evidence for PDZ domains in bacteria, yeast, and plants. Protein Sci. 6, 464−468.
Harris B.Z., Lim W.A. 2001. Mechanism and role of PDZ domains in signaling complex assembly. J. CellSci. 114, 3219−3231.
Fan J.-S., Zhang M. 2002. Signaling complex organization by PDZ domain proteins. Neurosignals. 11,315−321.
Hung A.Y., Sheng M. 2002. PDZ domains: structural modules for protein complex assembly. J. Biol. Chem. 277,5699−5702.
Besprozvanny I., Maximov A. 2001. Classification of PDZ domains. FEBS Lett. 509, 457 462.
Songyang Z., Fanning A.S., Fu C., Xu J., Marfatia S.M., Chishti A.H., Crompton A., Chan A.C., Anderson J.M., Cantley L.C. 1997. Recognition of unique carboxyl-terminal motifs by distinct PDZ domains. Science (Washington D.C.) 275, 73−77.
Van den Berk L.C.J., van Ham M.A., te Lindert M.M., Walma Т., Aelen J., Vuister G.W., Hendriks W.J.A.J. 2004. The interaction of PTP-BL PDZ domains with RIL: an enigmatic role for the RIL LIM domain. Mol. Biol. Rep. 31, 203−215.
Ponting C.P., Phillips C., Davies K.E., Blake D.J. 1997. PDZ domains: targeting signaling molecules to sub-membranous sites. Bioessays. 19,469−479.
Nourry C., Grant S.G.N., Borg J.-P. 2003. PDZ Domain Proteins: Plug and Play! Science’s STKE. re7.
Jelen F., Oleksy A., Smietana K., Otlewski J. 2003. PDZ domains common players in the cell signaling. Acta Biochim. Pol. 50, 985−1017.
Yi J., Beckerle M.C. 1998. The human TRIP6 gene encodes a LIM domain protein and maps to chromosome 7q22, a region associated with tumorigenesis. Genomics. 49, 314−316.
Murthy K.K., Clark K., Fortin Y., Shen S.-H., Banville D. 1999. ZRP-1, a zyxin related protein, interacts with the second PDZ domain of the cytosolic protein tyrosine phosphatase hPTPlE. J. Biol. Chem. 274,20 679−20 687.
Wang Y., Gilmore T.D. 2001. LIM domain protein Trip6 has a conserved nuclear export signal, nuclear targeting sequences, and multiple transactivation domains. Biochim. Biophys. Acta. 1538,260−272.
Yi J., Kloeker S., Jensen C.C., Bockholt S., Honda H., Hirai H., Beckerle M.C. 2002. Members of the zyxin family of LIM proteins interact with members of the pl30Cas family of signal transducers. J. Biol. Chem. 277, 9580−9589.
Sanz-Rodriguez F., Guerrero-Esteo M., Botella L.-M., Banville D, Vary C.P.H., Bernabeu C. 2004. Endoglin regulates cytoskeletal organization through binding to ZRP-1, a member of the LIM family of proteins. J. Biol. Chem. 279, 32 858−32 868.
Lai Y.-J., Chen C.-S., Lin W.-C., Lin F.-T. 2005. c-Src-mediated phosphorylation of TRIP6 regulates its function in lysophosphatidic acid-induced cell migration. Mol. Cell. Biol. 25, 5859−5868.
Lee J.W., Choi H.-S., Gyuris J., Brent R., Moore D.D. 1995. Two classes of proteins dependent on either the presence or absence of thyroid hormone for interaction with the thyroid hormone receptor. Endocrinology. 9,243−254.
Li L., Bin L.H., Liu Y., Chen D., Zhai Z., Shu H.B. 2005. TRIP6 is RIP2-associated common signaling component of multiple NF-кВ activation pathways. J. Cell Sci. 118, 555 563.
Kiess M., Scharm В., Aguzzi A., Hajnal A., Klemez R., Schwarte-Waldhoff I., Schafer R. 1995. Expression of ril, a novel LIM domain gene, is down-regulated in HRAS-transformed cells and restored inphenotypic revertants. Oncogene. 10, 61−68.
Cuppen E., Gerrits H., Pepers В., Wieringa В., Hendriks W. 1998. PDZ motifs in PTP-BL and RIL bind to internal protein segments in the LIM domain protein RIL. Mol. Biol. Cell. 9, 671−683.
Xia H., Winokur S.T., Kuo W.L., Altherr M.R., Bredt D.S. 1997. Actinin-associated LIM protein: identification of a domain interaction between PDZ and spectrin-like repeat. J. Cell Biol 139,507−515.
Wang H., Harrison-Shostak D.C., Lemasters J.J., Herman B. 1995. Cloning of a rat cDNA encoding a novel LIM domain protein with high homology to rat RIL. Gene. 165,267−71.
Kotaka M., Ngai S.M., Garcia-Barcelo M., Tsui S.K., Fung K.P., Lee C.Y., Waye M.M. 1999. Characterization of the human 36-kDa carboxyl terminal LIM domain protein (hCLIMl). J. CellBiochem. 72,279−285.
Bashirova A.A., Markelov M.L., Shlykova T.V., Levshenkova E.V., Alibaeva R.A., Frolova E.I. 1998. The human RIL gene: mapping to human chromosome 5q31.1, genomic organization and alternative transcripts. Gene. 210, 239−245.
Torrado M., Senatorov V.V., Trivedi R., Fariss R.N., Tomarev S.I. 2004. Pdlim2, a novel PDZ-LIM domain protein, interacts with a-actinins and filamin A. Invest. Ophlh. Vis. Sci. 45, 3955−3963.
Kang S., Xu H., Duan X., Liu J.-J., He Z., Yu F., Zhou S., Meng X.-Q., Cao M., Kennedy G.C. 2000. PCD1, a novel gene containing PDZ and LIM domains, is overexpressed in several human cancers. Cancer Res. 60, 5296−5302.
Wu R.Y., Gill G.N. 1994. LIM domain recognition of a tyrosine-containing tight turn. J. Biol. Chem. 269,25 085−25 090.
Boden S.D., Liu Y., Hair G.A., Helms J.A., Hu D., Racine M., Nanes M.S., Titus L. 1998. LMP-1, a LIM-domain protein, mediates BMP-6 effect on bone formation. Endocrinology. 139,5125−5134.
Kuroda S., Tokunaga C., Kiyohara Y., Higuchi O., Konishi H., Mizuno K., Gill G.N., Kikkawa U. 1996. Protein-protein interaction of zinc finger LIM domains with PKC. J. Biol. Chem. 271,31 029−31 032.
Zhou Q., Ruiz-Lozano P., Martone M.E., Chen J. 1999. Cypher, a striated muscle-restricted PDZ and LIM domain-containing protein, binds to alpha-actinin-2 and protein kinase C. J. Biol. Chem. 214,19 807−19 813.
Faulkner G., Pallavicini A., Formentin E., Comelli A., Ievolella C., Trevisan S., Bortoletto G., Scannapieco P., Salamon M., Mouly V., Valle G., Lanfranchi G. 1999. ZASP: a new Z-band alternatively spliced PDZ-motif protein. J. Cell Biol. 146,465−475.
Passier R., Richardson J.A., Olson E.N. 2000. Oracle, a novel PDZ-LIM domain protein expressed in heart and skeletal muscle. Mech. Develop. 92,277−284.
Vallenius Т., Scharm В., Vesikansa A., Luukko K., Schafer R., Makela T.P. 2004. The PDZ-LIM protein RIL modulated actin stress fiber turnover and enhances the association of alpha-actinin with F-actin. Exp. Cell Res. 293,117−128.
Andersen O., Ostbye Т.К., Gabestad I., Nielsen C., Bardal T. 2004. Molecular characterization of a PDZ-LIM protein in Atlantic salmon (Salmo salar): a fish ortholog of the alpha-actinin-associated LIM-protein (ALP). J. Muscle Res. Cell Motil. 25, 61.
Szpirer C., Szpirer J., Riviere M., Hagnal A., Kiess M., Scharm В., Schafer R. 1996. Chromosomal assignment of three rat and human U-rev genes, putative tumor suppressors, down-regulated in malignantly #&4S-transfonned cells. Mamm. Genome. 7, 701−703.
Venter J.C., Adams M.D., Myers E.W., et al. 2001. The sequence of the human genome. Science. 291,1304−1351.
Lander E.S., Linton L.M., Birren В., et al. 2001. Initial sequencing and analysis of the human genome. Nature. 409, 860−921.
Subramanian G., Adams M.D., Venter J.C., Broder S. 2001. Implications of the human genome for understanding human biology and medicine. J. Am. Med. Assn. 286,2296−2307.
Modrek В., Lee С. 2002. A genomic view of alternative splicing. Nat. Genet. 30,13−19.
Kopelman N.M., Lancet D., Yanai I. 2005. Alternative splicing and gene duplication are inversely correlated evolutionary mechanisms. Nat. Genet. 37,588−589.
Huang C., Zhou Q., Liang P., Hollander M.S., Sheikh F., Li X., Greaser M., Shelton G.D., Evans S., Chen J. 2003. Characterization and in vivo analysis of splice variants of Cypher. J. Biol. Chem. 278,7360−7365.
Niederlander N., Fayein N.A., Auffray C., Pomies P. 2004. Characterization of a new human isoform of the enigma homolog family specifically expressed in skeletal muscle. Biochem. Biophys. Res. Co. 325,1304−1311.
Pomies P., Macalma Т., Beckerle M.C. 1999. Purification and characterization of an alpha-actinin-binding PDZ-LIM protein that is up-regulated during muscle differentiation. J. Biol. Chem. 274,29 242−29 250.
Zhou Q., Chu P.-H., Huang C., Cheng C.-F., Martone M.E., Knoll G., Shelton G.D., Evans S., Chen J. 2001. Ablation of Cypher, a PDZ-LIM domain Z-line protein, causes a severe form of congenital myopathy. J. Cell Biol. 155,605−612.
Lasorella A., Iavarone A. 2006. The protein ENH is a cytoplasmic sequestration factor for Id2 in normal and tumor cells from the nervous system. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 103, 4976−4981.
Ueki N., Seki N., Yano K., Masuho Y., Saito Т., Muramatsu M.-a. 1999. Isolation, tissue expression, and chromosomal assignment of a human LIM protein gene, showing homology to rat Enigma homologue (ENH). J. Hum. Genet. 44,256−260.
Jo K., Rutten В., Bunn R.C., Bredt D.S. 2001. Actinin-associated LIM protein-deficient mice maintain normal development and structure of skeletal muscle. Mol. Cell. Biol. 21, 1682−1687.
Altherr M.R., Bengtsson U., Markovich R.P., Winokur S.T. 1995. Efforts toward understanding the molecular basis of fascioscapulohumeral muscular dystrophy. Muscle Nerve. 2, S32-S38.
Vallenius Т., Luukko K., Makela T.P. 2000. CLP-36 PDZ-LIM protein associates with nonmuscle alpha-actinin-1 and alpha-actinin-4. J. Biol. Chem. 275,11 100−11 105.
Kotaka M., Lau Y.-m., Cheung K.-k., Lee S.M.Y., Li H.-y., Chan W.-y., Fung K.-p., Lee C.-y., Waye M.M.Y., Tsui S.K.W. 2001. Elfin is expressed during early heart development. J. Cell. Biochem. 83,463−472.
Guy P.M., Kenny D.A., Gill G.N. 1999. The PDZ domain of the LIM protein Enigma binds to beta-tropomyosin. Mol. Biol. Cell. 10, 1973−1984.
Krause A., Zacharias W., Camarata Т., Linkhart В., Law E., Lischke A., Miljan E., Simon H.-G. 2004. Tbx5 and Tbx4 transcription factors interact with a new chicken PDZ-LIM protein in limb and heart development. Dev. Biol. 273,106−120.
Camarata Т., Bimber В., Kulisz A., Chew T.-L., Yeung J., Simon H.-G. 2006. LMP4 regulates Tbx5 protein subcellular localization and activity. J. Cell Biol. 174,339−348.
Vallenius T. 2004. Characterization of actin stress fibers: involvement of PDZ-LIM adapter proteins and the novel Clikl kinase. Academic dissertation.
Maeno-Hikichi Y., Chang S., Matsumura K., Lai M., Lin H., Nakagawa N., Kuroda S., л .
Zhang J.-f. 2003. A PKCe-ENH-channel complex specifically modulates N-type Ca channels. Nat. Neurosci. 6,468−475.
Wu R.-y., Durick K., Songyang Z., Cantley L.C., Taylor S.S., Gill G.N. 1996. Specificity of LIM domain interactions with receptor tyrosine kinases. J. Biol. Chem. 271, 15 934−15 941.
Frey N., Olson E.N. 2002. Calsarcin-3, a novel skeletal muscle-specific member of the calsarcin family, interacts with multiple Z-disc proteins. J. Biol Chem. 277,13 998−14 004.
Erdmann K.S. 2003. The protein tyrosine phosphatase PTP-Basophil/Basophil-like: interacting proteins and molecular functions. Eur. J. Biochem. 270,4789−4798.
Nelson W.J., Nusse R. 2004. Convergence of Wnt, p-catenin, and cadherin pathways. Science. 303, 1483−1487.
Hermann L., Dittmar Т., Erdmann K.S. 2003. The protein tyrosine phosphatase PTP-BL associates with the midbody and is involved in the regulation of cytokinesis. Mol. Biol. Cell. 14,230−240.
Cuppen E., van Ham M., Wansink D.G., de Leeuw A., Wieringa В., Hendriks W. 2000. The zyxin-related protein TRIP6 interacts with PDZ motifs in the adaptor protein RIL and the protein tyrosine phosphatase PTP-BL. Eur. J. Cell Biol. 79, 283−293.
Taylor K.A., Taylor D.W., Schachat F. 2000. Isoforms of a-actinin from cardiac, smooth, and skeletal muscle form polar arrays of actin filaments. J. Cell Biol. 149,635−645.
Honda K., Yamada Т., Endo R., Ino Y., Gotoh M., Tsuda H., Yamada Y., Chiba H., Hirohashi S. 1998. Actinin-4, a novel actin-bundling protein, associated with cell motility and cancer invasion. J. Cell Biol. 140,1383−1393.
Broderick M.J.F., Winder S.J. 2005. Spectrin, a-actinin, and dystrophin. Adv. Protein Chem. 70, 203−246.
Otey C.A., Carpen 0. 2004. a-Actinin revisited: a fresh look at an old player. Cell Motil. Cytoskel. 58,104−111.
Fu S.-l., Waha A., Vogt P.K. 2000. Identification and characterization of genes upregulated in cells transformed by v-Jun. Oncogene. 19,3537−3545.
Vanaja D.K., Ballman K.V., Morlan B.W., Cheville J.C., Neumann R.M., Lieber M.M., Tindall D.J., Young C.Y.F. 2006. PDLIM4 repression by hypermethylation as a potential biomarker for prostate cancer. Clin. Cancer Res. 12,1128−1136.
Welsh J.B., Sapinoso L.M., Su A.I., et al. 2001. Analysis of gene expression identifies candidate markers and pharmacological targets in prostate cancer. Cancer Res. 61, 59 745 978.
Yu Y.P., Landsittel D., Jing L., et al. 2004. Gene expression alterations in prostate cancer predicting tumor aggression and preceding development of malignancy. J. Clin. Oncol. 22, 2790−2799.
Mills J.C., Syder A.J., Hong C.V., Guruge J.L., Raaii F., Gordon J.I. 2001. A molecular profile of the mouse gastric parietal cell with and without exposure to Helicobacter pylori. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 98,13 687−13 692.
Liu C., Goshu E., Wells A., Fang C.-M. 2003. Identification of the downstream targets of SIM1 and ARNT2, a pair of transcription factors essential for neuroendocrine cell differentiation. J. Biol. Chem. 278,44 857−44 867.
Gerhardinger С., Costa МБ., Coulombe M.C., Toth I., Hoehn Т., Grosu P. 2005. Expression of acute-phase response proteins in retinal Miiller cells in diabetes. Invest. Ophth. Vis. Sci. 46,349−357.
Emi N., Friedmann Т., Yee J.K. 1991. Pseudotype formation of murine leukemia virus with the G protein of vesicular stomatitis virus. J. Virol. 65,1202−1207.
Lin S., Gaiano N., Culp P., Burns J.C., Friedmann Т., Yee J.K., Hopkins N. 1994. Integration and germ-line transmission of a pseudotyped retroviral vector in zebrafish. Science. 265,666−669.
Coffin J.M., Hughes S.H., Varmus H.E. Retroviruses. 1997. CSHL Press.
Nguyen Т.Н., Oberholzer J., Birraux J., Majno P., Morel P., Trono D. 2002. Highly efficient lentiviral vector-mediated transduction of nondividing, fully reimplantable primary hepatocytes. Mol. Ther. 6,199−209.
Pfeifer A., Ikawa M., Dayn Y., Verma I.M. 2002. Transgenesis by lentiviral vectors: Lack of gene silencing in mammalian embryonic stem cells and preimplantation embryos. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 99,2140−2145.
Brummelkamp T.R., Bernards R., Agami R. 2002. A system for stable expression of short interfering RNAs in mammalian cells. Science. 296,550−553.
Barton G.M., Medzhitov R. 2002. Retroviral delivery of small interfering RNA into primary cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 99,14 943−14 945.
Dykxhoom D.M., Novina C.D., Sharp P.A. 2003. Killing the messenger: short RNAs that silence gene expression. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 4,457−467.
Fire A., Xu S., Montgomery M.K., Kostas S.A., Driver S.E., Mello C.C. 1998. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391,806−811.
Ngo H., Tschudi C., Gull K., Ullu E. 1998. Double-stranded RNA induces mRNA degradation in Trypanosoma brucei. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 95,14 687−92.
Yang S., Tutton S., Pierce E., Yoon K. 2001. Specific double-stranded RNA interference in undifferentiated mouse embryonic stem cells. Mol. Cell. Biol. 21, 7807−16.
Hutvagner G., McLachlan J., Pasquinelli A.E., Balint Ё., Tuschl Т., Zamore P.D. 2001. A cellular function for the RNA-interference enzyme Dicer in the maturation of the let-7 small temporal RNA. Science. 293, 834−838.
Moss E.G. 2002. MicroRNAs: hidden in the genome. Current Biology. 12, R138-R140.
Bartel D.P. 2004. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell. 116, 281−297.
Berstein E., Caudy A.A., Hammond S.M. Hannon G.J. 2001. Role for a bidentate ribonuclease in the initiation step of RNA interference. Nature. 409, 363−366.
Caplen N.J., Parrish S., Imani F., Fire A., Morgan R.A. 2001. Specific inhibition of gene expression by small double-stranded RNAs in invertebrate and vertebrate systems. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 98, 9742−9747.
Lee Y., Ahn C., Choi H., Kim J., Yim J., Lee J., Provost P., Radmark O., Kim S., Kim V.N. 2003. The nuclear Rnase III Drosha initiates microRNA processing. Nature. 425,415−419.
Hammond S.M., Bernstein E., Beach D., Hannon G.J. 2000. An RNA-directed nuclease mediates post-transcriptional gene silencing in Drosophila cells. Nature. 404,293−296.
Carmell M.A., Xuan Z., Zhang M.Q., HannonG.J. 2002. The Argonaute family: tentacles that reach into RNAi, developmental control, stem cell maintenance, and tumorigenesis. Genes Dev. 16,2733−2742.
Sledz C.A., Williams B.R.G. 2005. RNA interference in biology and disease. Blood. 106, 787−794.
Hammond S.M. 2005. Dicing and slicing: The core machinery of the RNA interference pathway. FEBS Lett. 579, 5822−5829.
Sui G., Soohoo C., El Bashir A., Gay F., Shi Y., Forrester W.C., Shi Y. 2002. A DNA vector-based RNAi technology to suppress gene expression in mammalian cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 99,5515−5520.
Paddison P.J., Caudy A.A., Bernstein E., Hannon G.J., Conclin D.S. 2002. Short hairpin RNAs (shRNAs) induce sequence-specific silencing in mammalian cells. Genes Dev. 16, 948−958.
Cullen B.R. 2005. Induction of stable RNA interference in mammalian cells. Gene Ther. 16.
Inoue H., Nojima H., Окауаша Н. 1990. High efficiency transformation of Escherichia coli with plasmids. Gene. 96,23−28.
Silva J.M., Sachidanandam R., Hannon G.J. 2003. Free energy lights the path toward more effective RNAi. Nat. Genet. 35, 303−305.
Lukyanov К.A., Chudakov D.M., Fradkov A.F., Labas Y.A., Matz M.V., Lukyanov S. 2006. Discovery and properties of GFP-like proteins from nonbioluminescent anthozoa. Method. Biochem. Analysis. 47,121−138.
Chomczynski P. 1992. One-hour downward alkaline capillary transfer for blotting of DNA and RNA. Anal. Biochem. 201,134−139.
Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis Т., Strategies for cloning in plasmid vectors, in Molecular Cloning, a Laboratory Manual, C. Nolan, Editor. 1989, Cold Spring Harbor Laboratory Press: New York. p. 1.53−51.73.
Altschul S.F., Madden T.L., Schaffer A.A., Zhang J., Zhang Z., Miller W., Lipman D.J. 1997. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucl. Acids Res. 25, 3389−3402.
Small J.V. 1981. Organization of actin in the leading edge of cultured cells: Influence of osmium tetroxide and dehydration on the ultrastructure of actin meshworks. J. Cell Biol. 91, 695−705.
Cramer L., Mitchison T.J. 1993. Moving and stationary actin filaments are involved in spreading of postmitotic PtK2 cells. J. Cell Biol. 122, 833−843.
Cramer L.P., Briggs L.J., Dawe H.R. 2002. Use of fluorescently labeled deoxyribonuclease I to spatially measure G-actin levels in migrating and non-migrating cells. Cell Motil. Cytoskeleton. 51,27−38.
Yee J.K., Miyahora A., LaPorte P., Burns J.C., Friedmann T. 1994. A general method for the generation of high-titer, pantropic retroviral vectors: highly efficient infection of primary hepatocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 91,9564−9568.
Zeng Y., Wagner E.J., Cullen B.R. 2002. Both natural and designed micro RNAs can inhibit the expression of cognate mRNAs when expressed in human cells. Mol. Cell. 9,1327−1333.
Lagos-Quintana M., Rauhit R., Lendeckel W., Tuschl T. 2001 Identification of novel genes coding for small expressed RNAs. Science. 294, 853−858.
Cullen B.R. 2005. RNAi the natural way. Nat. Genets. 37,1163−1165.
Thiery J.P. 2002. Epithelial-mesenchymal transitions in tumor progression. Nat. Rev. Cancer. 2,442−454.
Bogenrieder Т., Herlyn M. 2003 Axis of evil: molecular mechanisms of cancer metastasis. Oncogene. 22, 6524−6536.
Mareel M., Leroy A. 2003. Clinical, cellular, and molecular aspects of cancer invasion. Physiol. Rev. 83,237−276.
Копнин Б.П. 2000. Мишени действия онкогенов и опухолевых супрессоров: ключ к пониманию базовых механизмов канцерогенеза. Биохимия. 65, 5−33.
Bouton A.H., Riggins R.B., Bruce-Staskal P.J. 2001. Functions of the adapter protein Cas: signal convergence and determination of cellular responses. Oncogene. 20, 6448−6458.
Yun M.-S., Kim S.-E., Jeon S.H., Lee J.-S., Choi K.-Y. 2005. Both ERK and Wnt/(3-catenin pathwys are involved in Wnt3a-induced proliferation. J. Cell Sci. 118, 313−322.
Lin A.W., Barradas M., Stone J.C., van Aelst L., Serrano M., Lowe S.W. 1998. Premature senescence involving p53 and pl6 is activated in response to constitutive MEK/MAPK mitogenic signaling. Genes Dev. 12,3008−3019.
Lin A.W., Lowe S.W. 2001. Oncogenic ras activates the ARF-p53 pathway to suppress epithelial cell transformation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 98, 5025−5030.
Brenner A.J., Paladugu A., Wang H., Olopade О. I., Dreyling M.H., Aldaz C.M. 1996. Preferential loss of expression of pl6lSK4a rather than pl94RF in breast cancer. Clin. Cancer Res. 2,1993−1998.
Foster S.A., Wong D.J., Barrett M.T., Galloway D.A. 1998. Inactivation of pl6 in human mammary epithelial cells by CpG island methylation. Mol. Cell. Biol. 18,1793−1801.
Bachelder R.E., Yoon S.-O., Franci C., Garcia de Herreros A., Mercurio A.M. 2005. Glycogen synthase kinase-3 is an endogenous inhibitor of Snail transcription- implications for the epithelial-mesenchumal transition. J. Cell Biol. 168,29−33.
Conacci-Sorell M., Simcha I., Ben-Yedidia Т., Blechman J., Savagner P., Ben-Ze'ev A. 2003. Autoregulation of E-cadherin expression by cadherin-cadherin interactions: the roles of p-catenin signaling, Slug, and МАРК. J. Cell Biol. 163, 847−857.
Yang J., Mani S.A., Donaher J.L., Ramaswamy S., Itzykson R., Come C., Savagner P., Gitelman I., Richardson A., Weinberg R.A. 2004. Twist, a master regulator of morphogenesis, plays an essential role in tumor metastasis. Cell. 117, 927−939.
Yang J., Mani S.A., Weinberg R.A. 2006. Exploring a new twist on tumor metastasis. Cancer Res. 66,4549−4552.
Yue J., Mulder K. 2001. Transforming growth factor-p signal transduction in epithelial cells. Pharmacol. Therapeut. 91,1−34.
Kaminska В., Wesolowska A., Danilkiewicz M. 2005. TGF beta signalling and its role in tumor pathogenesis. Acta Biochim. Pol. 52,329−337.
Klaavuniemi Т., Ylanne J. 2006. Zasp/Cypher internal ZM-motif containing fragments are sufficient to co-locolize with a-actinin Analysis of patient mutations. Exp. Cell Res. 312, 1299−1311.
Klaavuniemi Т., Kelloniemi A., Ylanne J. 2004. The ZASP-like motif in actinin-associated LIM protein is required for interaction with the a-actinin rod and for targeting to the muscle Z-line. J. Biol. Chem. 279,26 402−26 410.
Henderson J.R., Pomies P., Auffray C., Beckerle M.C. 2003. ALP and MLP distribution during myofibrillogenesis in cultured cardiomyocytes. Cell Motil. Cytoskel. 54,254−265.
Haugland R.P., You W., Paragas V.B., Wells K.S., DuBose D.A. 1994. Simultaneous visualization of G- and F-actin in endothelial cells. J. Histochem. Cytochem. 42, 345−350.
Pomies P., Pashmforoush M., Vegezzi C., Chien K.R., Auffray C., Beckerle M.C. 2007. The cytoskeleton-associated PDZ-LIM protein, ALP, acts on serum response factor activity to regulate muscle differentiation. Mol. Biol. Cell. 18,1723−1733.
Spector I., Braet F., Shochet N.R., Bubb M.R. 1999. New anti-actin drugs in the study of the organization of the actin cytoskeleton. Microsc. Res. Techniq. 47,18−37.
Schoenenberger C.-A., Steinmetz M.O., Stoffler D., Mandilova A., Aebi U. 1999. Structure, assembly, and dynamics of actin filaments in situ and in vitro. Microsc. Res. Techniq. 47, 38−50.
Taunton J. 2001. Actin filament nucleation by endosomes, lysosomes and secretory vesicles. Curr. Opin. Cell Biol. 13,85−91.
Spector I., Braet F., Shochet N.R., Bubb M.R. 1999. New anti-actin drugs in the study of the organization and function of the actin cytoskeleton. Microsc. Res. Techniq. 47,18−37.
Rechsteiner M., Rogers S.W. 1996. PEST sequences and regulation by proteolysis. Trends Biochem. Sci. 21,267−271

Заполнить форму текущей работой