Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Исследование роли рибосомных белков L5 и L25 в формировании функционально-активной бактериальной рибосомы

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые показано, что рибосомный белок L5 Е. coli строго необходим для встраивания 5S рРНК-белкового комплекса, а также белков L16, L27, L30 и L33 в большую субчастицу рибосомы in vivo. Из полученных данных следует, что белок L5 прямо или опосредованно влияет на формирование целого структурно-функционального домена (центрального протуберанца) бактериальной рибосомы. Доказано, что немногочисленные… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. Ю
    • 1. Рибосомные белки: свойства, структура и эволюция
      • 1. 1. Рибосомные белки трех доменов жизни: разнообразие, сходство и различия
      • 1. 2. Структурные особенности рибосомных белков, отражающие их свойства
    • 2. Роль белков в сборке функционально-активной рибосомы
      • 2. 1. Сборка малой субчастицы рибосомы
      • 2. 2. Сборка большой субчастицы рибосомы
      • 2. 3. Участие белков в ассоциации рибосомных субчастиц
    • 3. Участие белков в формировании функциональных центров рибосомы
      • 3. 1. Элонгационный цикл и функциональные центры рибосомы
      • 3. 2. Связывание мРНК
      • 3. 3. Декодирующий центр
      • 3. 4. Пептидилтрансферазный центр
      • 3. 5. тРНК-связывагцие участки
        • 3. 5. 1. А-участок
        • 3. 5. 2. Р-участок
        • 3. 2. 3. Е-участок
    • 3. б. Участок связывания белковых факторов трансляции
  • ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
    • 1. Материалы и приборы
      • 1. 1. Химические реактивы и ферменты
      • 1. 2. Микробиологические среды
      • 1. 3. Штаммы и плазмиды
      • 1. 4. Буферы
      • 1. 5. Принадлежности
      • 1. 6. Приборы.<
    • 2. Методы генной инженерии, молекулярной генетики и микробиологии
      • 2. 1. Общие методы
        • 2. 1. 1. Выделение хромосомной ДНК
        • 2. 1. 2. Полимеразная цепная реакция
        • 2. 1. 3. Обработка ДНК сайт-специфическими эндонуклеазами
        • 2. 1. 4. Дотирование ДНК
        • 2. 1. 5. Получение компетентных клеток Е. coli и их трансформация методом теплового шока
        • 2. 1. 6. Анализ бактериальных колоний на наличие рекомбинантной плазмиды
        • 2. 1. 7. Выделение плазмидной ДНК
        • 2. 1. 8. Осуществление замен в хромосомной ДНК Е. coli с помощью метода «recombineering»
        • 2. 1. 9. Общая трансдукция бактериофагом PI
        • 2. 1. 10. Определение времени удвоения клеток Е. col
        • 2. 1. 11. ß--галактозидазный тест
      • 2. 2. Клонирование и секвенирование генов исследуемых РНК, белков и их мутантных форм.76>
        • 2. 2. 1. Секвенирование фрагмента хромосомной ДНК A. aeolicus
        • 2. 2. 2. Клонирование гена 5S рРНК и его фрагментов
        • 2. 2. 3. Клонирование генов белков СТС А. aeolicus, E. faecalis и Nostoc sp
        • 2. 2. 4. Направленный мутагенез N-концевого домена белка TL5 Т. thermophilic
        • 2. 2. 5. Направленный мутагенез белков L5 и L25 Е. col
      • 2. 3. Экспрессия генов исследуемых белков в клетках Е. col
      • 2. 4. Создание штаммов Е. coli для исследований и работа с ними
        • 2. 4. 1. Создание штаммов Е. coli, содержащих в хромосоме мутантную форму гена исследуемого белка
        • 2. 4. 2. Получение клеток Е. coli, дефицитных по рибосомному белку L
    • 3. Биохимические методы
      • 3. 1. Электрофоретические методы анализа нуклеиновых кислот, белков и РНКбелковых комплексов
      • 3. 2. Выделение и очистка исследуемых белков из штаммов-продуцентов Е. col
      • 3. 3. Получение препаратов исследуемых РНК
        • 3. 3. 1. Выделение 5S рРНК Е. col
        • 3. 3. 2. Синтез 5S рРНК и ее фрагментов транскрипцией in vitro и их очистка
        • 3. 3. 3. Подготовка образцов РНК к экспериментам
        • 3. 3. 4. Фракционирование клеточных РЕК Е. col
      • 3. 4. Методы исследования РНК-белковых комплексов
      • 3. 5. Выделение и анализ препаратов рибосом и рибосомных субчастгщ
        • 3. 5. 1. Выделение рибосом и рибосомных субчастиц из клетбк Е. col
        • 3. 5. 2. Анализ препаратов рибосом и рибосомных субчастиц центрифугированием в градиенте плотности сахарозы
      • 3. 6. Методы исследования функциональной активности рибосом in vitro
        • 3. 6. 1. Получение тотальной ферментной фракции из клеток Е. col
        • 3. 6. 2. Трансляция полиуридиловой матрицы
        • 3. 6. 3. Трансляция мРНК лзоциферазы в бесклеточной системе из Е. col
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 1. Изучение специфического взаимодействия рибосомного белка L25 Escherichia coli и его гомологов (белков семейства СТС) с 5S рРНК
      • 1. 1. Белок СТС Aquifex aeolicus не является исключением среди белков семейства
      • 1. 2. Роль отдельных аминокислотных остатков белков L25 и TL5 в формировании и стабилизации их комплекса с 5SpPHK
      • 1. 3. РНК-связывающие свойства белков СТС с природными заменами в их 5SрРНКсвязывающем модуле
    • 2. Необходимость взаимодействия бежа L25 с 5S рРНК для его встраивания в рибосому in vivo
    • 3. Исследование роли рибосомного белка L5 в сборке и функционировании рибосомы Escherichia col
      • 3. 1. Получение и характеристика больших рибосомных субчастгщ, собранных in vivo в отсутствие белка L
      • 3. 2. Влияние мутаций в петле ?2-?3 белка L5 на синтез рибосомами полипептида. in vivo и in vitro
  • ВЫВОДЫ

Исследование роли рибосомных белков L5 и L25 в формировании функционально-активной бактериальной рибосомы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В клетках всех живых организмов белки синтезируются на рибосоме. ' Исследование структуры, функции и эволюции рибосомы интенсивно ведутся с 50* гг. XX века. За этот период накоплен огромный экспериментальный материал о структуре рибосомы и ее компонентов, а также о принципах ее функционирования. Однако, несмотря на это, остается еще много нерешенньгс вопросов относительно деталей протекания отдельных стадий трансляции и роли компонентов рибосомы в этом процессе. Кроме того, несмотря на недавние успехи в определении пространственной структуры рибосомы, далеко не все ясно относительно принципов специфического взаимодействия РНК и белков, лежащих в основе ее структурной организации. Об этом свидетельствует то, что количество работ, посвященных рибосоме, только возрастает. Кроме того, большая часть имеющихся на сегодняшний день данных получена в экспериментах in vitro, которые далеко не всегда могут адекватно отражать процессы, происходящие в клетке.

Рибосомы ныне живущих организмов состоят из двух неравных субьединиц (малой и большой). Одной из самых характерных морфологических особенностей большой рибосомной субчастицы любого организма является центральный протуберанец. Известно, что центральный протуберанец участвует в ассоциации рибосомных субчастиц (Lake, 1976), а у его основания расположены пептидилтрансферазный центр и тРШС-связывающие участки рибосомы (Barta et al., 1984; Moazed & Noller, 1989; Yusupov et al., 2001; Nissen et al, 2000; Selmer et al., 2006). Большую часть этого структурного элемента рибосомы формирует комплекс 5S рРНК и нескольких специфически связывающихся с ней рибосомных белков. В экспериментах in vitro было показано, что в отсутствие 5S рРНК-белкового комплекса собирается функционально неактивная большая субчастица рибосомы (Erdmann et al., 1971; Dohtne & Nierhaus, 1976b). Однако прямых данных о том, для чего нужен этот комплекс в рибосоме, до сих пор нет. Количество белков, специфически связывающихся с 5S рРНК, варьирует в разных организмах. В Escherichia coli — это три белка, L5, L18 и L25. Белки L5 и L18 обнаружены в рибосомах представителей всех доменов жизни, Бактерий, Архей и Эукариот (Gasteiger et al., 2003; Benson et al., 2008). В то же время, рибосомный белок L25 является особенностью бактерий — ген этого белка не обнаружен в известных геномах архей и эукариот. Недавно было продемонстрировано, что белки L5 и LI8 строго необходимы для выживания бактериальной клетки Е. coli (Korepanov et al., 2007). В то же время, при нокауте гена белка L25 клетки выживали, но росли медленнее, чем клетки исходного штамма, а Ь25-дефицитные рибосомы отличались сниженной эффективностью в синтезе природных полипептидов. Таким образом, все имеющиеся данные указывали на то, что 5S рРНК-связывающиеся белки чрезвычайно важны для функционирования бактериальной рибосомы. Однако их конкретная роль в формировании рибосомы в клетке оставалась невыясненной. В связи с этим, в рамках данной работы были проведены исследования, посвященные выяснению роли рибосомных белков L5 и L25 в сборке и функционировании рибосомы Е. coli.

В первой части работы были проведены детальные исследования особенностей взаимодействия 5S рРНК с белком L25 Е. coli и его гомологом, рибосомным белком TL5 Thermus thermophilic. Для этого был осуществлен направленный мутагенез аминокислотных остатков этих белков, образующих водородные связи с РНК в комплексе. Было установлено, что пять идентичных остатков в белках L25 и TL5, формирующих их 5S рРНК-связывающий модуль, чрезвычайно важны для стабилизации уже сформированного РНК-белкового комплекса. Выявленные принципы взаимодействия этих белков с изолированной 5S рРНК позволили перейти к изучению данного взаимодействия в системе in vivo. Для этого был создан ряд штаммов Е. coli, содержащих мутантную форму белка L25, лишенную способности связываться с 5S рРНК in vitro. Были изучены ростовые характеристики клеток указанных штаммов, а также эффективность встраивания мутантной формы белка L25 в рибосому in vivo. Полученные данные впервые демонстрируют необходимость образования прочного контакта между белком L25 и 5S рРНК для удержания данного белка в рибосоме, а таюке для стабильной ассоциации рибосомных субчастиц.

Во второй части работы было проверено, какой эффект на сборку большой рибосомной субчастицы оказывает отсутствие жизненно важного рибосомного белка L5 в клетках Е. coli. Впервые были получены и охарактеризованы большие рибосомные субчастицы, собранные in vivo в отсутствие этого белка. Установлено, что такие субчастицы лишены большей части компонентов ее центрального протуберанца. Кроме того, в данной работе было исследовано влияние мутаций в контактирующей с тРНК в петле ?2-?3 белка L5 на функциональные свойства рибосом. Было показано, что в отличие от замены отдельных аминокислотных остатков делеция сразу нескольких остатков в указанной петле белка приводит к снижению эффективности функционирования рибосомы Е. coli и, как следствие, замедлению роста клеток этой бактерии.

Полученные результаты и методы, изложенные в работе, могут быть использованы не только при изучении рибосомы и ее компонентов, но и в других областях молекулярной биологии при структурно-функциональных исследованиях комплексов нуклеиновых кислот с белками.

ВЫВОДЫ.

1. Из результатов комплексных исследований 5S рРНК-связывающих свойств рибосомного белка L25 Escherichia coli и его гомолога, белка TL5 Thermus thermophilus, следует, что:

• пять аминокислотных остатков — R10/9, R19/21, Y29/31, Н85/88, D87/90 в TL5/L25, формирующих РНК-связывающий модуль этих белков, чрезвычайно важны для стабилизации их комплекса с изолированной 5S рРНК;

• формирование прочного контакта между белком L25 и 5S рРНК не является обязательным условием для встраивания этого белка в рибосому in vivo. В то же время, этот межмолекулярный контакт необходим для прочного удержания белка L25 в рибосоме и стабильной ассоциации рибосомных субчастиц.

2. Доказано, что немногочисленные случаи одновременных природных изменений в контактирующих областях белка семейства СТС и 5S рРНК представителей класса Bacilli и типа Cyanobacteria имеют компенсаторный характер и направлены на сохранение этими молекулами способности формировать стабильный комплекс.

3. Установлено, что белок СТС Aquifex aeolicus обладает полноразмерным 5S рРНК-связывающим доменом и, таким образом, не является исключением среди белков данного семейства.

4. Впервые показано, что рибосомный белок L5 Е. coli строго необходим для встраивания 5S рРНК-белкового комплекса, а также белков L16, L27, L30 и L33 в большую субчастицу рибосомы in vivo. Из полученных данных следует, что белок L5 прямо или опосредованно влияет на формирование целого структурно-функционального домена (центрального протуберанца) бактериальной рибосомы.

5. Показано, что рибосомы Е. coli, содержащие белок L5 с укороченной петлей р2-рЗ, менее эффективно синтезируют природные полипептиды. Сниженная функциональная активность данных рибосом не связана с увеличением частоты ошибок трансляции.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , В.Н., Окон, М.С., Гудков, А.Т., Туманова, Л.Г., Гонгадзе, Г. М. Спектры 'Н-ЯМР белков большой субчастицы рибосом Escherichia coli // Препринт. — Пущино. — 1982.-Р.1−39.
  2. , Л.П., Смолянинов, В.В. Изучение механизма транслокации в рибосомах. I. Синтез полифенилаланина в рибосомах Escherichia coli без участия гуанозин-51-трифосфата и белковых факторов трансляции // Мол. Биология. — 1971. — Т. 5. — С.883−891.
  3. , Г. М. Исследование дефицитных по белкам рибосомных 50S субчастиц Escherichia coli. Роль белков и РНК в формировании рибосомной субчастицы // Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. 1986. — Пущино.
  4. , Г. М., Корепанов, А.П., Коробейникова, А.В., Гарбер, М. Б. Бактериальные 5S рРНК-связывающие белки семейства СТС //Успехи Биолог. Химии. 2008. -Т.48.- С.105−132.
  5. , А.П., Гонгадзе, Г.М., Гарбер, М. Б. Основной стрессовый белок СТС Bacillus subtilis специфически связывается с рибосомной 5S РНК // Биохимия. — 2004.- Т.69. С.749−754.
  6. , А.В., Гонгадзе, Г.М., Корепанов, А.П., Елисеев, Б.Д., Баженова, М.В., Гарбер М. Б. 5S рРНК-узнающий модуль белков семейства СТС и его эволюция // Биохимия. 2008. — Т.73. — С. 193−201.
  7. , С.Э. Рибосомные белки Thermus thermophilus. Выделение, физико-химические свойства и кристаллизация // Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. — 1991. — Пущино.
  8. , И.Н., Агаларов, СЛ., Гонгадзе, Г. М., Гудков, А.Т., Седельникова, С.Э., Май, Р., Спирин, А.С. О форме и компактности рибосомных РНК и их комплексов с белками в растворе // Мол. Биология. — 1984. Т. 18. — С.244−261.
  9. Abdurashidova, G.G., Tsvetkova, Е.А., Budowsky, E.I. Direct tRNA-protein interactions in ribosomal complexes // Nucl. Acids Res. 1991. — V. 19. — P. 1909−1915.
  10. Adilakshmi, Т., Ramaswamy, P., Woodson, S.A. Protein-independent folding pathway of the 16S rRNA 5' domain // J. Mol. Biol. 2005. — V.351. — P.508−519.
  11. Agrawal, R.K., Penczek, P., Grassucci, R.A. Frank, J. Visualization of elongation factor G on the Escherichia coli 70S ribosome: the mechanism of translocation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. — V.95. — P.6134−6138.
  12. Al-Karadaghi, S., Kristensen, O., Liljas, A. A decade of progress in understanding the structural basis of protein synthesis // Prog. Biophys. Mol. Biol. — 2000. V.73. — P.167−193.
  13. Allers, J., Shamoo, Y. Structure-based analysis of protein-RNA interactions using the program ENTANGLE // J. Mol. Biol. 2001. — V.311. — P.75−86.
  14. Ansley, S.B., Campbell, L.L., Sypherd, P. S. Isolation and amino acid composition of ribosomal proteins from Bacillus stearothermophilus // J. Bacteriol. 1969. — V.98. — P.568−572.
  15. Arndt, E., Scholzen, T., Kromer, W., Hatakeyama, T., Kimura, M. Primary structures of ribosomal proteins from the archaebacterium Halobacterium marismortui and the eubacterium Bacillus stearothermophilus // Biochimie. — 1991. — V.73. P.657−668.
  16. Arnold, R.J., Running, W., Reilly, J.P. Analysis of methylation, acetylation, and other modifications in bacterial ribosomal proteins // Methods Mol. Biol. 2008. — V.446. — P.151−161.
  17. Arnold, R.J., Reilly, J.P. Observation of Escherichia coli ribosomal proteins and their posttranslational modifications by mass spectrometry // Anal. Biochem. 1999. — V.269. -P.105−112.
  18. Bachniann, B.J. Pedigrees of some mutant strains of Escherichia coli K-12 // Bacteriol. Rev. 1972. — T.36. — P.525−557.
  19. Ban, N., Nissen, P., Hansen, J., Moore, P.B., Steitz, T.A. The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 A resolution // Science. 2000. — V.289. — P.905−920.
  20. Barta, A., Steiner, G., Brosius, J., Noller, H.F., Kuechler, E. Identification of a site on 23S ribosomal RNA located at the peptidyl transferase center. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1984. — V.81. — P.3607−3611.
  21. Bear, D.G., Ng, R., Van Derveer, D., Johnson, N. P., Thomas, G., Schleich, T., Noller, H.F. Alteration of polynucleotide secondary structure by ribosomal protein SI // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1976. — V.73. — P. 1824−1828.
  22. Beauclerk, A.A., Cundliffe, E., Dijk, J. The binding site for ribosomal protein complex L8 within 23 s ribosomal RNA of Escherichia coli // J. Biol. Chem. 1984. — V.259. — P.6559−6563.
  23. Belitsina, N.V., Glukhova, M.A., Spirin, A.S. Translocation in ribosomes by attachment-detachment of elongation factor G without GTP cleavage: evidence from a column-bound ribosome system // FEBS Lett. 1975. — V.54. — P.35−38.
  24. Belova, L., Tenson, T., Xiong, L., McNicholas, P.M., Mankin, A.S. A novel site of antibiotic action in the ribosome: interaction of everaimicin with the large ribosomal subunit //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -2001. -V.98. P.3726−3731.
  25. Benson, D.A., Karsch-Mizrachi, I., Lipman, D.J., Ostell, J., Wheeler, D.L. GenBank. Nucl. Acids Res. 2008. — V.36. — D25-D30.29.
Заполнить форму текущей работой