Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Устойчивость и адаптация к тепловому шоку культур клеток Arabidopsis thaliana и Thellungiella salsuginea при действии фторида натрия

Диссертация: Устойчивость и адаптация к тепловому шоку культур клеток Arabidopsis thaliana и Thellungiella salsuginea при действии фторида натрия
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Фторид натрия в концентрации 20 мМ вызывает гибель культур клеток А. th.alia.na и Т. заЬщтеа и проростков А. ЖаИапа. Гибель суспензионных культур клеток не развивается во времени и не сопровождается активацией генов метакаспаз. Показано, что атмосферное загрязнение фтором может приводить к повышению чувствительности растений к повышенной температуре (Wiebe, Poovaiah, 1973). Механизм такого… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Антропогенное загрязнение окружающей среды фтором
      • 1. 1. 2. Естественные источники поступления фтора в окружающую среду
      • 1. 1. 3. Антропогенное поступление фтора в окружающую среду
      • 1. 1. 4. Влияние фтора на окружающую среду
        • 1. 1. 4. 1. Атмосферное загрязнение
        • 1. 1. 4. 2. Загрязнение водных объектов
        • 1. 1. 4. 3. Загрязнение почв
    • 1. 2. Экологические последствия загрязнения фтором
      • 1. 2. 1. Влияние фтора на здоровье человека
      • 1. 2. 2. Экологические последствия влияния фтора на растения
    • 1. 3. Механизмы токсичного действия фтора на растения
      • 1. 3. 1. Проникновение фтора в растение и его аккумуляция
        • 1. 3. 1. 1. Проникновение фтора из атмосферы
        • 1. 3. 1. 2. Поступление фтора из почвы
        • 1. 3. 1. 3. Аккумуляция фтора растениями
      • 1. 3. 2. Поступление и накопление фтора в клетке
      • 1. 3. 3. Основы токсичности фтора
    • 1. 4. Влияние фтора на растения
      • 1. 4. 1. Влияние фтора на рост растений
      • 1. 4. 2. Влияние фтора на жизнеспособность растений
      • 1. 4. 3. Видимые повреждения, вызываемые действием фтора
      • 1. 4. 4. Клеточные и структурные изменения при действии фтора
      • 1. 4. 5. Влияние фтора на ферментативную активность
      • 1. 4. 6. Влияние фтора на фотосинтез
      • 1. 4. 7. Влияние фтора на дыхание
      • 1. 4. 8. Влияние фтора на другие процессы
      • 1. 4. 10. Программированная клеточная смерть
      • 1. 4. 9. Влияние фтора на восприятие растениями действия биотических и абиотических факторов
        • 1. 4. 9. 1. Свет
        • 1. 4. 9. 3. Дефицит воды
        • 1. 4. 9. 4. Другие элементы и токсиканты
        • 1. 4. 9. 5. Биотические взаимодействия
        • 1. 4. 9. 2. Температура
    • 1. 5. Стрессовые белки и адаптация к действию высоких температур
      • 1. 5. 1. Явление индуцированной термотолерантности
      • 1. 5. 2. Белки теплового шока
        • 1. 5. 2. 1. Семейство БТШ 100 (С1р/№р100)
        • 1. 5. 2. 2. Регуляция экспрессии БТШ
      • 1. 5. 3. Роль митохондрий в синтезе БТШ
    • 1. 6. Обоснование выбора объекта исследования
      • 1. 6. 1. Лгаб/с/орзгя &-аНапа
      • 1. 6. 2. Тке11и^ие11а ваЬщтеа
    • 1. 7. Выводы из обзора литературы
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Объект исследования
    • 2. 2. Температурные обработки
    • 2. 3. Обработка клеток фторидом натрия, ингибиторами и разобщителями ЭТЦ
    • 2. 4. Оценка ростовой активности культур клеток
    • 2. 5. Определение жизнеспособности клеток
    • 2. 6. Изучение развития индуцированной термотолерантности
    • 2. 7. Выделение тотального белка
    • 2. 8. Электрофорез в ПААГе с ДДС-Ыа
    • 2. 9. Вестерн-блоттинг
    • 2. 10. Использованные антитела
    • 2. 11. ОТ-ПЦР-анализ
      • 2. 11. 1. Выделение РНК
      • 2. 11. 2. Денатурирующий РНК электрофорез
      • 2. 11. 3. Синтез кДНК
    • 2. 12. Определение дыхательной активности
    • 2. 13. Микроскопические методы (флуоресцентная и световая микроскопия)
    • 2. 14. Статистическая обработка данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ
    • 3. 1. Влияние хлорида натрия на рост культур А. ЛаНапа и Т. заЬщтеа
    • 3. 2. Влияние обработки фторидом натрия нарост культур клеток, А ЛаИапа и Т. яа1 $щ1пеа
    • 3. 3. Влияние фторида натрия на жизнеспособность культур клеток ЛаЫапа и Т. $аЫи%теа и проростков А. МаИапа
      • 3. 3. 1. Влияние фторида натрия на жизнеспособность культур клеток А. ЛаНапа и Т. 8аЬщ1пеа
      • 3. 3. 2. Влияние фторида натрия на жизнеспособность проростков А. 1каИапа
    • 3. 4. Изучение параметров развития гибели культур клеток при обработке фторидом натрия
    • 3. 5. Влияние фторида натрия на индуцированную термотолерантность и экспрессию БТШ в культурах клеток, А ЛаНапа и Т. заЬщгпеа при мягком тепловом стрессе
      • 3. 5. 1. Влияние кратковременной обработки фторидом натрия на жизнеспособность культур клеток
      • 3. 5. 2. Влияние фторида натрия на развитие индуцированной термотолерантности
      • 3. 5. 3. Влияние фторида натрия на синтез БТШ
      • 3. 5. 4. Действие фторида натрия на экспрессию генов БТШ при мягком тепловом стрессе культуры клеток А. ЛаНапа
    • 3. 6. Влияние фторида натрия на функции митохондрий культур клеток, А гкаНапа и Т. БаЬщтеа
    • 3. 6. Влияние фторида натрия на функции митохондрий культур клеток, А ЛаЫапа и Т. закщгпеа
      • 3. 6. 1. Изменение интенсивности поглощения кислорода в присутствии фторида натрия
      • 3. 6. 2. Влияние фторида натрия на изменение потенциала внутренней митохондриальной мембраны культуры клеток, А гкаИапа при мягком тепловом стрессе
    • 3. 7. Влияние конститутивной экспрессии ШР101 на устойчивость культуры клеток, А ЛаЫапа к действию фторида натрия
  • 4. ОБСУЖДЕНИЕ
    • 4. 1. Культура клеток Т. яак^гпеа не отличается от культуры клеток, А МаНапа по устойчивости к хлориду натрия и фториду натрия
    • 4. 2. Сравнение влияния фторида натрия на рост и жизнеспособность культур клеток Т. яаЬщтеа и А. гкаИапа и проростков, А ЖаИапа
    • 4. 3. Параметры гибели культур клеток при обработке фторидом натрия
    • 4. 4. Фторид натрия ингибирует развитие индуцированной термотолерантности и синтез БТШ в клеточных культурах при мягком тепловом стрессе
      • 4. 1. 5. Влияние конститутивной экспрессии НБРЮ! на устойчивость к фториду натрия
  • ВЫВОДЫ.

Устойчивость и адаптация к тепловому шоку культур клеток Arabidopsis thaliana и Thellungiella salsuginea при действии фторида натрия (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Фтор является одним из основных компонентов атмосферных выбросов промышленных предприятий. На расстоянии 200 м от промышленных предприятий уровень фтора в листьях пшеницы может составлять 500 частей на миллион в расчете на сухую массу или около 3 мМ в расчете на сырую. При этом его концентрация в цитоплазме может превышать 75 мМ. Газообразный фтор в виде HF, как правило, проникает в растения через устьица. По мере их контакта с HF накопление фтора идет почти с линейной скоростью. HF при физиологических значениях рН находится в диссоциированной и недиссоциированной форме. Диссоциированные в водной фазе ионы фтора посредством транспирационных токов транспортируются по апопласту мезофильных клеток в верхушку и края листа (Miller, 1993). Поэтому поражения фтором часто характеризируются появлением апикальных некрозов (Михайлова и др., 2006). С другой стороны, HF лучше проникает через липидные мембраны, чем ионы фтора, и подвергается диссоциации в клеточных компартмен-тах, где наблюдается градиент рН. Поэтому F" в клетке, как правило, концентрируется в митохондриях и хлоропластах, где значение рН составляет соответственно 7.8 и 8.0 (Miller, 1993). Фтор может подавлять рост, не вызывая видимых симптомов повреждения. Подавление роста фтором может достигаться за счет его воздействия на различные физиологические процессы, такие как: фотосинтез, дыхание, метаболизм углеводородов и липидов (Miller, 1993) и водный транспорт (Kamalud-din, Zwiazek, 2003). В результате растительность, подверженная влиянию фторсо-держащих выбросов, характеризуется снижением темпов роста, урожайности, мор-фоструктурными изменениями ассимилирующей фитомассы, в том числе уменьшением массы, длины, объема и поверхности побегов, увеличением дефолиации крон деревьев и развитием апикальных некрозов (Михайлова и др., 2006).

Показано, что атмосферное загрязнение фтором может приводить к повышению чувствительности растений к повышенной температуре (Wiebe, Poovaiah, 1973). Механизм такого действия фтора остается неизвестным.

В ответ на постепенное повышение температуры, а также другие абиотические и биотические воздействия в клетках растений синтезируются белки теплового шока (БТШ) (Kotak et al., 2007; Maimbo et al., 2007). Искусственное изменение уровня БТШ влияет на устойчивость растений не только к повреждающему тепловому шоку, но и к засолению и осмотическому стрессу (Ogawa et al., 2007), а также к инфекции патогенными микроорганизмами (Kanzaki et al., 2003). Вероятно, в регуляции экспрессии БТШ существенную роль играет функциональное состояние митохондрий. Ранее было показано, что тепловая обработка при 37 °C клеток Arabidopsis thaliana вызывает повышение потенциала на внутренней митохондри-альной мембране (mtA|/) (Rikhvanov et al., 2007). Гиперполяризация сопровождалась активацией синтеза HsplOl и Hspl7.6 и развитием индуцированной термотолерантности к жесткому тепловому шоку при 50 °C, а присутствие митохондриаль-ных ингибиторов и разобщителей, способных подавлять повышение mtA|/, блокировало синтез БТШ и снижало развитие индуцированной термотолерантности. Это дает основание предполагать, что митохондрии, посредством изменения mtAi|/, участвуют в регуляции экспрессии БТШ (Rikhvanov et al., 2007).

Поскольку отрицательное действие фтора заключается в том числе, и в его способности влиять на энергетический метаболизм растений (Miller, 1993), представляет интерес выяснить, как фтор может повлиять на способность растений синтезировать стрессовые белки и адаптироваться к экстремальным изменениям температуры.

Удобной моделью для изучения механизмов действия абиотических факторов на растения является культура клеток Arabidopsis thaliana (Hunter, Bomblies, 2010; Bomblies, Weigel, 2010). Во-первых, A. thaliana является наиболее изученным растительным объектом. Геном A. thaliana полностью рашифрован, разработаны молекулярно-биологические, генетические и биохимические методы для анализа экспрессии генов и физиологических реакций на внешнее воздействие. Во-вторых, использование культуры клеток позволяет получить в короткий срок относительно гомогенную биомассу клеток, что исключительно важно для воспроизводимости экспериментов. Однако, А. thaliana, как объект исследования, относительно чувствителен к внешнему воздействию, хотя широко используются генетические способы повышения его устойчивости. Близким родственником А. thaliana является Thel-lungiella salsuginea. Не смотря на высокую степень идентичности геномов (Inan et al., 2004), Т. salsuginea отличается гораздо большей устойчивостью к засолению и ряду других стрессовых воздействий (Amtmann, 2009). Приняв во внимание высокую степень родства двух видов А. thaliana и Т. salsuginea и повышенную устойчивость рода Thellungiella к стрессовым факторам, предполагалось, что имеющаяся в нашем распоряжении культура клеток Т. salsuginea будет отличаться по устойчивости к фтору в сравнении с А. thaliana.

выводы.

1. Использованная в работе культура клеток Т. яаЬщтеа не обладает повышенной устойчивостью к засолению, по сравнению с культурой клеток А. МаИапа.

2. Фторид натрия в концентрации 10 мМ полностью подавляет рост культур клеток А. ЛаИапа и Т. БаЬи&пеа.

3. Фторид натрия в концентрации 20 мМ вызывает гибель культур клеток А. th.alia.na и Т. заЬщтеа и проростков А. ЖаИапа. Гибель суспензионных культур клеток не развивается во времени и не сопровождается активацией генов метакаспаз.

4. Фторид натрия подавляет адаптивную реакцию культуры клеток на повреждающий тепловой шок, что выражается в ингибировании повышения потенциала на внутренней митохондриальной мембране, синтеза белков теплового шока и развития индуцированной термотолерантности.

5. Конститутивная экспрессия ШРЮ! повышает устойчивость культуры клеток А. ЛаИапа к действию фторида натрия.

6. Негативное действие фторида натрия проявляется не только в непосредственном угнетении роста и жизнеспособности, но и в подавлении адаптивного механизма к тепловому шоку.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.Я., Кислюк И. М. (1994) Реакция клетки на тепловой шок:
  2. Физиологический аспект. Цитология, 1, 5−59.
  3. И.С., Градобоева H.A. (1996) Фтор в почве и сопредельных средах в зоне влияния Саянского Алюминиевого завода (результаты наблюдений за 1989−1995 гг. в таблицах и пояснениях). Абакан: ГСАС «Хакасская», 67−70.
  4. O.A. (1997) Выяснение уровней водорастворимого фтора в почве на урожай и качество пшеницы. Химия в сельском хозяйстве, 2, 32−33.
  5. Л.И. (2000) Биоиндикация промышленных токсикантов древесными растениями. Воронеж: Из-во Воронежской государственной лесотехнической академии. 93 с.
  6. Т.И. (1997) Фтор в почвах и растениях в связи с эндомическим флюрозом. Почвоведение, 8, 55−63.
  7. А. И., Кузнецова Ю. А., Мензянова Н. Г. (2009) Влияние фтористого натрия на пограничные клетки корневого апекса однодневных проростков пшеницы. Физиология растений, 4, 530−538.
  8. Г. И. (1988) Синтез белка в условиях стресса. Успехи совр. биол., 103, 340−353.
  9. H.H. (1971) Дыхание растущих и стареющих колеоптилей кукурузы. Дисс. канд. биол. наук, Иркутск, 187 с.
  10. П.А. (1969) Биологические элементы в жизнедеятельности растений. Киев: Наукова думка, 516 с.
  11. ВОЗ (1989) Фтор и фториды. Гигиенические критерии состояния окружающей среды. Женева, 114 с.
  12. П.Войников В. К., Иванова Г. Г., Гудиковский A.B. (1984) Белки теплового шока растений. Физиология растений, 31, 970−979.
  13. В.К., Иванова Г. Г., Корытов М. В. (1986) Синтез белков в растениях при действии низких температур. Физиология и биохимия культурных растений, 18, 211−222.
  14. Гигиенические нормативы 2.1.5.1315 (2003) «Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в воде водных объектов хозяйственнопитьевого и культурно-бытового водопользования». Минздрав России, Москва.
  15. Гигиенические нормативы 2.2.5.2100 (2006) «Гигиенические нормативы. Предельно допустимые концентрации (ПДК) вредных веществ в воздухе рабочей зоны (дополнение № 2 к ГН 2.2.5.1313−03)». Минздрав России, Москва.
  16. В.И. (1991) Техногенное рассеивание фтора в окружающей среде и его последствия. Агрохимия, 11, 84−87.
  17. Государственный доклад (2000) О состоянии окружающей природной среды Иркутской области в 1999 году. Иркутск: Министерство природных ресурсов и экологии Иркутской области, 320 с.
  18. Государственный доклад (2009) Об охране окружающей среды в Иркутской области в 2008 г. Иркутск: Министерство природных ресурсов и экологии Иркутской области, 411с.
  19. Государственный доклад (2010) О состоянии и об охране окружающей среды Иркутской области в 2009 году. Иркутск: Министерство природных ресурсов и экологии Иркутской области, 410 с.
  20. А.Г., Высоцкая Е. Ф., Леонова Л. А., Гамбург К. З. (1995) Об использовании 2,3,5-трифенилтетразолий хлорида для оценки жизнеспособности культур растительных клеток. Физиология растений, 42, 423−426.
  21. Г. М. (1971) Газоустойчивость растений. Киев: Наукова думка, 135 с.
  22. Г. М. (1978) Загрязненность атмосферы и растения. Киев: Наукова думка, 247 с.
  23. Г. М., Юдин Ю. Н., Кустовский С. Е. (1983) Сорбция полярных газов листьями древесных растений. Физиология и биохимия древесных растений, 15,482−487.
  24. Кабата-Пендиас А., Пендиас X. (1989) Микроэлементы в почвах и растениях. М.: Мир, 439 с.
  25. Н.И. (2009) Токсикологическая химия. Метаболизм и анализ токсикантов. М.: ГЭОТАР Медиа, 907−911.
  26. Ю.Е., Карпец Ю. В., Акинина Г. Е. Влияние салициловой кислоты и перекиси водорода на содержание пролина в колеоптилях пшеницы при тепловом и солевом стрессах (2005) Bich. Харкгв. нацюн. аграрн. ун-ту. Сер. Бюлог1я, 6, 51−56.
  27. Г. А. (2008) Галогены в природных объектах юга Западной Сибири: Автореф. дисс. докт. биол. наук, Новосибирск, 33 с.
  28. И.В. (2008) Стрессовые белки растений. Киев: Институт ботаники, 154 с.
  29. Л.Г., Помазкина Л. В., Репина О. В., Прокофьев А. Ю. (2002) Минеральное питание и продуктивность яровой пшеницы на серых лесныхпочвах, загрязненных фторидами. Агрохимия, 12, 31−36
  30. , Г. Ф. (1973) Биометрия. М.: Высшая школа, 343 с.
  31. Г. В., Шмаков В. Н., Константинов Ю. М., Белоголова Г. А. (2005) Влияние экологических факторов на накопление фтора лиственницами (Larix gmelinii (Rupr.) Rupr. и L. sibirica Ledeb.) в Восточной Сибири. Экология, 6, 434−437.
  32. С.С. (2004) Физиология растений. СПб.: Изд-во С.-Петерб. Ун-та, 336 с.
  33. А.Г., Аринбасарова А. Ю., Акименко В. К. (1999) Регуляция и физиологическая роль цианидрезистентной оксидазы у грибов и растений. Биохимия, 64, 1457−1472.
  34. Э.Э., Ротанова Т. В. (2010) Молекулярные шапероны. Биоорганическая химия, 1, 5−14.
  35. Т.А., Бережная Н. С., Игнатьева О. В. (2006) Элементный состав хвои и морфофизиологические параметры сосны обыкновенной в условиях техногенного загрязнения. Иркутск: Изд-во Института географии СО РАН, 134 с.
  36. Т.А., Бережная Н. С., Афанасьева JI.B., Игнатьева О. В., Шер-гина О.В. (2005) Воздействие фторсодержащих соединений на состояние хвойных лесов Предбайкалья. Лесоведение, 2, 38−45.
  37. В.Я. (1982) К механизму мутагенного действия фтора. Цитология и генетика, 6, 40−41.
  38. В.А., Воронин В. И. (2003) Репродуктивный процесс сосны обыкновенной в Верхнем Приангарье при техногенном загрязнении. Иркутск: Изд-во Иркутского Госуниверситета. 137 с.
  39. E.JI. (2010) Роль салициловой кислоты в регуляции стрессовых ответов в культуре клеток Arabidopsis thaliana. Дисс. канд. биол. наук, Иркутск, 152 с.
  40. О.Г., Микевич Н. В. (1991) Охрана окружающей среды на предприятиях цветной металлургии. М.: Металлургия, 32−47.
  41. Т.П., Колесничеико A.B., Грабельных О. И. (2004) Методы изучения митохондрий растений. Полярография и электрофорез. Методическое пособие. М.: «НПК «Промэкобезопасность», 98 с.
  42. JI.B., Лубнина Е. В. (2002) Мониторинг загрязнения пахотных почв и полевых культур в зоне выбросов Иркутского алюминиевого завода. Агрорхимия, 2, 59−65.
  43. JI.B., Зорина С. Ю., Засухина Т. В., Петрова И. Г. (2005) Качественный состав гумуса серых лесных пахотных загрязненных фторидами почв Прибайкалья. Почвоведеьнъе, 5, 550−555.
  44. Ю.А., Копаева М. Н. (1978) Поступление фтора из удобрений в растения и влияние его на урожай. Химия в сельском хозяйстве, 9, 40−42.
  45. Рихванов Е. Г, Варакина H.H., Русалева Т. М., Раченко Е. И., Войников В. К. (2003) Отсутствие прямой зависимости между способностью дрожжейрасти при повышении температуры и их выживаемостью после летального теплового шока. Микробиология, 4, 1−6.
  46. Е.Г., Войников В. К. (2005) Функции Hspl04 в развитии индуцированной термотолерантности и прионном наследовании у дрожжей Saccharomyces cerevisiae. Успехи современной биологии, 1, 115−128.
  47. A.C., Массель Г. И. (1982) Смолистые вещества хвойных и насеко-мые-ксилофаги. Новосибирск: Наука, 148 с.
  48. A.C., Михайлова Т. А. (1989) Действие фторсодержащих эмиссий на хвойные деревья. Новосибирск: Наука, 159 с.
  49. У.Х. (1988) Поглощение загрязняющих веществ растениями. Загрязнение воздуха и жизнь растений. Л.: Гидрометеоиздат, 461−499.
  50. Л. А., Шевякова Н. И., Ракитин В. Ю., Кузнецов Вл. В. (2011) Пролин защищает растения Atropa belladonna от токсического действия солей никеля. Физиология растений, 2, 275−282
  51. В.В. (1964) Влияние дымо-газовых выделений промышленных предприятий Урала на растительность. Растения и промышленная среда. -Свердловск, С. 5−69.
  52. М.Д. (1962) Влияние загрязнения атмосферного воздуха на растения. Загрязнение атмосферного воздуха. Женева. 251−306.
  53. Т.Н., Васильева Л. С. (2009) Общие вопросы токсического действия фтора. Сибирский медицинский журнал, 5, 5−9.
  54. О.В., Потатуева Ю. А. (2003) Агроэкологическое значение фтора. Агрохимия, 9, 78−87.
  55. В.Н. (2005) Изучение меж- и внутривидовых различий по устойчивости к действию фтора у сибирских видов лиственниц методом культуры in vitro. Дисс. канд. биол. наук, Иркутск, 172 с.
  56. , А.А. (2003) Апоптоз и его роль в целостном организме. Глаукома, 2, 46−54.
  57. G., Duncan Н. (2001) Development of a sensitive and rapid method for the measurement of total microbial activity using fluorescein diacetate (FDA) in a range of soils. Soil Biology and Biochemistry, 33, 943−951.
  58. Adamek E., Pawlowska-Goral K., Bober K. (2005) In vitro and in vivo effects of fluoride ions on enzyme activity. Annales Academiae Medicae Stetinensis, 51, 6985.
  59. Agarwal M., Katiyar-Agarwal S., Grover A. (2002) Plant HSP100 proteins: structure, function and regulation. Plant Science, 163, 397−405.
  60. Agarwal R., Mumtaz H., Ali N. (2009) Role of inositol polyphosphates in programmed cell death. Mol Cell Biochem., 328, 155−65.
  61. Alia H., Hayashi A., Sakamoto (1998). Enhancement of the tolerance of Arabi-dopsis to high temperatures by genetic engineering of the synthesis of glycinebe-tainq. Plant J., 16, 155−161.
  62. A. (2009) Learning from evolution: Thellungiella generates new knowledge on essential and critical components of abiotic stress tolerance in plants. Molecular Plant., 2, 3−12.
  63. C.D., Kanno S., Hirano S. (2001) Oxidative damage to mitochondria is a preliminary step to caspase-3 activation in fluoride-induced apoptosis in HL-60 cells. Free Radie. Biol. Med., 31, 367−373.
  64. M., Bonner J.J. (1979) The induction of gene activity in Drosophilla by heat shock. Cell, 17, 241−251.
  65. Balogh G., Horvath I., Nagy E., Hoyk Z., Benko S., Bensaude O., Vigh, L. (2005) The hyperfluidization of mammalian cell membranes acts as a signal to initiate the heat shock protein response. FEBSJ., 272, 6077−6086.
  66. BaniwaI S.K., Bharti K., Chan K.Y., Fauth M., Ganguli A., Kotak S. et al. (2004) Heat stress response in plants: a complex game with chaperones and more than twenty heat stress transcription factors. Journal of Biosciences, 29, 471−487.
  67. Banzet N. Richaud C, Deveaux Y. (1998) Accumulation of small heat shock proteins, including mitochondrial Hsp 22, induced by oxidative stress and adaptive response in tomato cells. Plant J., 13, 519−527.
  68. Barbier O., Arreola-Mendoza L., Del Razo L.M. (2010) Molecular mechanisms of fluoride toxicity. Chemico-Biological Interactions, 188, 319−333.
  69. M.J., Alones V., Wang K.X., Phan L., Swerdlow R.H. (2004) Mitochondria-derived oxidative stress induces a heat shock protein response. JNeurosci Res, 78, 420139.
  70. H. (2004) 'The stress of dying': the role of heat shock proteins in the regulation of apoptosis. J Cell Sci., 117,2641−2651.
  71. Benedict H.M., Ross J.M. and Wade R.W. (1965) Some responses of vegetation to atmospheric fluorides. Journal of the Air Pollution Control Association, 15, 253−255.
  72. G., Guha M., Avadhani N.G. (2005) Mitochondria-to-nucleus stress signaling in mammalian cells: nature of nuclear gene targets, transcription regulation, and induced resistance to apoptosis. Gene, 18, 132−139.
  73. K., Weigel D. (2010). Arabidopsis and relatives as models for the study of genetic and genomic incompatibilities. Phil. Trans. R. Soc. B., 365, 1815−1823.
  74. Bonneau L., Ge Y., Drury G.E., Gallois P. (2008) What happened to plant cas-pases? Journal of Experimental Botany, 59, 491 -499.
  75. B., Grimminger V., Walter S. (2006) The molecular chaperone Hspl04-A molecular machine for protein disaggregation. J. Struct. Biol., 156,139−148.
  76. Bressan R.A., Zhang C., Zhang H., Hasegawa P.M., Bohnert H.J., Zhu J.K.2001) Learning from the Arabidopsis experience: the next gene search paradigm. Plant Physiol, 127, 1354−1360.
  77. Breusegem V.F., Dat J.F. (2006) Reactive oxygen species in plant cell death. Plant Physiol, 141, 384−90.
  78. H. (1986) Induction of a heat shock puff by hypoxia in polytene foot pad chromosomes of Sarcophaga bullata. Chromosoma, 93, 358−66.
  79. W., Wunderlich M., Schoffl F. (2005) Identification of novel heat shock factor-dependent genes and biochemical pathways in Arabidopsis thaliana. Plant Journal, 41, 1−14.
  80. Calvo-Polanco M., Zwiazek J.J., Jones M.D., MacKinnon M.D. (2009) Effects of NaCl on responses of ectomycorrhizal black spruce (Picea mariana), white spruce (Picea glauca) and jack pine (Pinus banksiana) to fluoride. Physiologia Plantarum, 135, 51−61.
  81. A.J. (2003) Fluoride toxicity to aquatic organisms: a review. Chemosphere, 50, 251−264
  82. Cheng T.J., Chen T.M., Chen C.H., Lai Y.K. (1998) Induction of stress response and differential expression of 70 kDa stress proteins by sodium fluoride in HeLa and rat brain tumor 9L cells. J Cell Biochem., 69, 221 -31.
  83. Chichkova N.V., Kim S.H., Titova E.S., Kalkum M., Morozov V.S., Rubtsov Y.P., Kalinina N.O., Taliansky M.E., Vartapetian A.B. (2004) A Plant Caspase-Like Protease Activated during the Hypersensitive Response. Plant Cell, 16, 157 171.
  84. W.C., Wolpert T.J., (2004). Purification and characterization of serine proteases that exhibit caspase-like activity and are associated with programmed cell death in Avena sativa. Plant Cell, 16, 857−873.
  85. S.J., Manoharan V., Hedley M.J., Loganathan P. (2000) Fluoride: A review of its fate, bioavailability, and risks of fluorosis in grazed-pasture systems in New Zealand. New Zealand Journal of Agricultural Research, 43, 295−321.
  86. A., Weinstein L.W. (1998) The effects of fluorides on plants. Earth Island J., 13, 257−64.
  87. Desikan R., A-H-Mackerness S., Hancock J.T., Neill S.J. (2001) Regulation of the Arabidopsis transcriptome by oxidative stress. Plant Physiol, 127, 159−172.
  88. D., Hill R. J., Riese R.H. (2004) Environmental Fluoride in Australasia: Ecological Effects, Regulation and Management. Clean Air and Environmental Quality, 38, 35−55.
  89. D.J., Pigoso A.A., Mingatto F.E., Rodrigues T., Pestana C.R., Uyemura S.A., Santos A.C., Curti C. (2008) Antioxidant activity of flavonoids in isolated mitochondria. Phytother Res., 22, 1213−8.
  90. Elloumi N., Abdallah F.B., Mezghani I., Rhouma A., Boukhris M., Tunisia S.2005) Effect of fluoride on almond seedling in culture solution. Fluoride, 38, 193 198.
  91. Fa?anha A.R., Meis L. (1995) Inhibition of Maize Root H±ATPase by Fluoride and Fluoroaluminate Complexes. Plant Physiology, 108, 241−246.
  92. Y.W., Ogura N., Feng Z.W., Zhang F.Z., Shimizu H. (2003) The concentrations and sources of fluoride in atmospheric depositions in Beijing, China. Water, Air, and Soil Pollution, 145, 95−107.
  93. Garcia-Montalvo E.A., Reyes-Perez H., Del Razo L.M. (2009) Fluoride exposure impairs glucose tolerance via decreased insulin expression and oxidative stress. Toxicology, 263, 75−83.
  94. J.L., Pushnik J.C., Briskin D.P., Miller G.W. (1987) Fluoride effects on the plasma membrane ATPase of sugarbeet. Plant Set, 53, 39−44.
  95. S.J., Sebolt A.M., Salazar M.P., Everard J.D., Thomashow M.F. (2001) Overexpression of the Arabidopsis CBF3 transcriptional activator mimics multiple biochemical changes associated with cold acclimation. Plant Physiol., 24, 1854−1865.
  96. W.F., Frieden M., Malli R. (2007) Mitochondria and Ca2+ signaling: old guests, new functions. Pflugers Archiv European Journal of Physiology, 3, 375 396.
  97. Griffith M., Timonin M., Wong A.C.E., Gray G.R., Akhter S.R., Saldanha M., Rogers M.A., Weretilnyk E.A., Moffatt B. (2007) Thellungiella: an Arabidopsis-related model plant adapted to cold temperatures. Plant Cell Env., 30, 529 538.
  98. J., Walter A. (1981) A hydrofluoric and nitric acid transport through lipid bilayer membranes, Biochimica et Biophysica Acta., 644, 153−156.
  99. Hahn J.S., Hu Z., Thiele D.J., Iyer V.R. (2004) Genome-wide analysis of the biology of stress responses through heat shock transcription factor. Molecular and Cellular Biology, 24, 5249−5256.
  100. M., Miess A., Stromer T. (2005) Disassembling protein aggregates in the yeast cytosol: The cooperation of Hsp26 with Ssal and Hspl04. J. Biol. Chem., 280, 23 861−23 868.
  101. , A.S. (1973) Interactions between air pollutants and plant parasites. Annual Review of Phytopathology, 11, 365−388.
  102. He L.F., Chen J.G. (2006) DNA damage, apoptosis and cell cycle changes induced by fluoride in rat oral mucosal cells and hepatocytes. World J Gastroenterol., 12, 1144−1148.
  103. He R., Drury G.E., Rotari V.I., Gordon A., Wilier M., Farzaneh T., Wolter-ing E.J., Gallois P. (2008) Metacaspase-8 Modulates Programmed Cell Death Induced by Ultraviolet Light and H202 in Arabidopsis. J. Biol. Chem., 283, 774−783.
  104. S.W., Vierling E. (2000) Mutants of Arabidopsis thaliana defective in the acquisition of tolerance to high temperature stress. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 97, 4392−4397.
  105. Hong S.W., U. Lee, Vierling E. (2003) Arabidopsis hot mutants define multiple functions required for acclimation to high temperatures. Plant Physiol., 132, 757 767.
  106. B., Bomblies K. (2010) Progress and Promise in Using Arabidopsis to Study Adaptation, Divergence, and Speciation. The Arabidopsis Book 8: eO 138. (in print), http^/www.bioone.org/doi/abs/l 0.1199/tab.013 8
  107. C.J. (1991) Molecular responses of plants to an increased incidence of heat shock. Plant Cell Environ., 14, 831−841.
  108. Huang B., Xu C. (2008) Identification and characterization of proteins associated with plant tolerance to heat stress. J. Integr. Plant. Biol., 50, 1230−1237.
  109. Izquierdo-Vega J.A., Sanchez-Gutierrez M., Del Razo L.M. (2008) Decreased in vitro fertility in male rats exposed to fluoride-induced oxidative stress damage and mitochondrial transmembrane potential lloss. Toxicol. Appl. Pharmacol., 230, 352−357.
  110. M., Zwiazek J.J. (2003) Fluoride inhibits root water transport and affects leaf expansion and gas exchange in aspen (Populus tremuloides) seedlings. Physiol Plant., 117, 368−375.
  111. H., Nishitai G., Inageda K., Kurosu H., Matsuoka M. (2009) NaF activates MAPKs and induces apoptosis in odontoblast-like cells. J Dent Res., 88, 461−465.
  112. Katiyar-Agarwal S., Agarwal M., Gallie D.R., Grover A. (2001) Search for the cellular functions of plant Hspl00/Clp family proteins. Crit Rev Plant Sei., 20, 277−295.
  113. , J.F., Wyllie A.H., Currie A.R. (1972) Apoptosis: a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. Br. J. Cancer, 26, 239 257.
  114. Kimpel J.A., Key J.L. (1985) Heat shock in plants. Trends in Biochem. Sei., 10, 353−357.
  115. A., Klumpp G., Domingos M., Silva M.D. (1996) Fluoride impact on native tree species of the Atlantic Forest near Cubatao, Brazil. Water Air Soil Poll, 78, 57−71.
  116. Kotak S., Larkindale J., Lee U., von Koskull-Doring P., Vierling E., Scharf
  117. K.D. (2007) Complexity of the Heat Stress Response in Plants. Curr. Opin. Plant Biol, 10,310−316.
  118. K.C. (2002) Heat shock proteins: modifying factors in physiological stress responses and acquired thermotolerance. J. Appl. Physiol. 92. 2177−2186.
  119. S. (2007) Caspase function in programmed cell death. Cell Death Differ., 14, 32−43.
  120. Kumar M., Busch W., Birke H., Kemmerling B., Nurnberger T., Schoffl F.2009) Heat Shock Factors HsfBl and HsfB2b Are Involved in the Regulation of Pdf 1.2 Expression and Pathogen Resistance in Arabidopsis. Molecular Plant, 1, 152−165.
  121. Kuroyanagi M., Yamada K., Hatsugai N., Kondo M., Nishimura M., Hara-Nishimura I. (2005) Vacuolar processing enzyme is essential for mycotoxin-induced cell death in Arabidopsis thaliana. J Biol Chem., 280, 32 914−32 920.
  122. E.V., Karpova O.V., Elthon T.E., Newton K.J. (2004) Mitochondrial respiratory deficiencies signal up-regulation of genes for heat shock proteins. J. Biol. Chem., 279, 20 672−20 677.
  123. U.K. (1970) Cleavage of structural proteins during the assemble of the head bacteriophage T4. Nature, 5259, 680−685.
  124. , J., Knight M.R. (2002) Protection against heat stress-induced oxidative damage in Arabidopsis involves calcium, abscisic acid, ethylene, and salicylic acid. Plant Physiol, 128, 682−695.
  125. J., Hall J.D., Knight M.R., Vierling E. (2005) Heat stress pheno-types of Arabidopsis mutants implicate multiple signaling pathways in the acquisition of thermotolerance. Plant Physiol., 138, 882−897.
  126. Lee U., Wie C., Escobar M. et al. (2005) Genetic analysis reveals domain interactions of Arabidopsis HsplOO/ClpB and cooperation with the small heat shock protein chaperone system. Plant Cell, 2, 559−571.
  127. Lee U., Rioflorido I., Hong S.W., Larkindale J., Waters E.R., Vierling E. (2007) The Arabidopsis ClpB/HsplOO family of proteins: chaperones for stress and chloroplast development. Plant J., 49, 115−127.
  128. Leo S., Bianchi K., Brini M., Rizzuto R. (2005) Mitochondrial calcium signalling in cell death. FEBS J., 272, 4013−22.
  129. Less L.N., McGregor A., Jones L.H.P., Cowling D.W., Leafe E.L. (1975) Fluoride uptake by gas from aluminium smelter fume. International Journal of Environmental Studies, 7, 153−160.
  130. Li S., Fu Q., Huang W., Yu D. (2009) Functional Analysis of an Arabidopsis Transcription Factor WRKY25 in Heat Stress. Plant Cell Rep., 28, 683−693.
  131. Lim C.J., Yang K.A., Hong J.K., Choi J.S., Yun D.J., Hong J.C., Chung W.S., Lee S.Y., Cho M.J., Lim C.O. (2006) Gene expression profiles during heat acclimation in Arabidopsis thaliana suspension-culture cells. Plant Res., 119, 373 383.
  132. S. (1986) The heat shock response. Annu. Rev. Biochem., 45, 39−72.
  133. S., Craig E.A. (1988) The heat shock proteins. Annu. Rev. Genet., 22, 631−677.
  134. D., Knight M. (2003) Mitochondrial and cytosolic calcium dynamics are differentially regulated in plants. Plant Physiol., 133, 21−24.
  135. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L. et al. (1957) Protein measurement with the folin phenol reagent. J. Biol. Chem., 193, 265−275.
  136. E., Troiano L., Ferraresi R., Roat E., Prada N., Nasi M., Pinti M., Cooper E.L., Cossarizza A. (2005) Characterization of cells with different mitochondrial membrane potential during apoptosis. Cytometry A., 68, 28−35.
  137. F., Frohlich E., Ligr M., Grey M., Sigrist S.J., Wolf D.H., Frohlich K.U. (1999) Oxygen stress: a regulator of apoptosis in yeast. J Cell Biol, 145, 757 767.
  138. M., Ohnishi K., Hikichi Y., Yoshioka H., Kiba A. (2007) Induction of a Small Heat Shock Protein and its Functional Roles in Nicotiana Plants in the Defense Response Against Ralstonia solanacearum. Plant Physiol, 145, 1588−99.
  139. M.P. (2010) Gymnastics of molecular chaperones. Mol Cell, 3, 321−331.
  140. McCabe P.F., Leaver C.J. (2000) Programmed cell death in cell cultures. Plant Mol Biol, 44, 359−68.
  141. McLaughlin S.B., Barnes R.L. (1975) Effects of fluoride on photosynthesis and respiration of some south-east American forest trees. Environmental Pollution, 8, 93−96.
  142. McNulty B., Newman D.W. (1961) Mechanism (s) of fluoride induced chlorosis. Plant physiology, 36, 385 388.
  143. GW. (1993) The Effect of Fluoride on Higher Plants with Special Emphasis on Early Physiological and Biochemical Disorders. Fluoride, 26, 3−22.
  144. J.E., Miller G.W. (1974) Effects of fluoride in fluoride on mitochondrial activity in higher plants. Physiologia Plantarum, 32, 115−121.
  145. G., Mittler R. (2006) Could Heat Shock Transcription Factors Function as Hydrogen Peroxide Sensors in Plants? Ann Bot., 98, 279−288.
  146. Mittler R., Tel-Or E. (1991) Oxidative stress responses and shock proteins in the unicellular cyanobacterium Synechococcus R2 (PCC-7942). Arch Microbiol., 155, 125−130.
  147. R.S., Bratton S.B. (2006) Heat shock induces apoptosis independently of any known initiator caspase-activating complex. J Biol Chem., 25, 16 991−7000.
  148. A.N. (1970) Chromosomal changes in maize induced by hydrogen fluoride gas. Can. J. Genet. Cytology, 12, 241−244.
  149. T., Skoog F. (1962) A revised medium for rapid growth and bioas-says with tobacco tissue cultures. Physiol. Plantarum, 15, 473−479.
  150. A.J., Hoover J.C. (1992) Ingibition of the Na, K-ATPase by Fluoride. The Journal of Biological Chemistry, 24, 16 995−17 000.
  151. L., Bharti K., Doring P., Mishra S.K., Ganguli A., Scharf K.D. (2001) Arabidopsis and the heat stress transcription factor world: how many heat stress transcription factors do we need? Cell Stress Chaperones, 6, 177−189.
  152. Ogawa D., Yamaguchi K., Nishiuchi T. (2007) High-Level Overexpression of the Arabidopsis HsfA2 Gene Confers not Only Increased Themotolerance but Also
  153. Salt/Osmotic Stress Tolerance and Enhanced Callus Growth. J. Exp. Bot, 58, 33 733 383.
  154. Otsuki S., Morshed S.R., Chowdhury S.A., Takayama F., Satoh Т., Hashimoto K., Sugiyama K., Amano O., Yasui Т., Yokote Y., Akahane K., Sakagami
  155. H. (2005) Possible link between glycolysis and apoptosis induced by sodium fluoride. J Dent Res., 84, 919−23.
  156. Pallepati P., Averill-Bates D. (2010) Mild thermotolerance induced at 40 degrees С increases antioxidants and protects HeLa cells against mitochondrial apoptosis induced by hydrogen peroxide: Role of p53. Arch Biochem Biophys., 495, 97−111.
  157. S., Pant P., Bhiravamurthy P.V. (2008) Effects of fluoride on early root and shoot growth of typical crop plants of India. Research report Fluoride, 1, 5760.
  158. A., Schmitt E., Gurbuhani S. (2003) Hsp27 is a ubiquitin-binding protein involved in I-kappaBalpha proteasomal degradation. Mol. Cell Biol., 23, 5790−5802.
  159. D.A., Kowal A.S., Singer M.A. (1994) Protein disaggregation mediated by heat-shock protein Hspl04. Nature, 372, 475−478.
  160. I.I., Grishko V.N. (2000) Estimation of plant cuticle water retention in ecotoxicological analysis. Доп. Нац. АН Украши, 9, 185−190.
  161. P.W. (1993) Molecular events associated with acquisition of heat tolerance by the yeast Saccharomyces cerevisiae. FEMSMicrobiol. Rev., 11, 339−355.
  162. M.V., Workman P. (2007) Inhibitors of the heat shock response: biology and pharmacology. FEBSLett., 581, 3758−69.
  163. Pozniakovsky A.I., Knorre D.A., Markova O.V. et al. (2005) Role of mitochondria in the pheromone- and amiodarone-induced programmed death of yeast. J. Cell Biol, 168, 257−269.
  164. C., Hong E., Vierling S. (2000) Lindquist Heat shock protein 101 plays a crucial role in thermotolerance in Arabidopsis. Plant Cell, 12, 479−492.
  165. K.J., Zwiazek J.J. (1992) Early effects of hydrogen fluoride on water relations, photosynthesis and membrane integrity in eastern white pine (Pinus stro-bus) seedlings. Environmental and Experimental Botany, 33, 377−382.
  166. K.J., Zwiazek J.J., Sumner M.J. (1995) Hydrogen fluoride effects on plasma membrane composition, ATPase activity and cell structure in needles of eastern white pine (Pinus strobus) seedlings. Trees, 9, 190−194.
  167. Reape T.J., McCabe P.F. (2008) Apoptotic-like programmed cell death in plants. New Phytol., 180, 13−26.
  168. Reape T.J., Molony E.M., McCabe P.F. (2008) Programmed cell death in plants: distinguishing between different modes. Journal of Experimental Botany, 3,435−444.
  169. Reape T.J., McCabe P.F. (2010) Apoptotic-like regulation of programmed cell death in plants. Apoptosis, 15, 249−56.
  170. M.P., Kaur M. (2008) Sodium Fluoride Induced Growth and Metabolic Changes in Salicornia brachiata roxb. Water Air and Soil Pollution, 188, 171−179.
  171. K. L., Laurence J. A. (1988) Effects of Hydrogen Fluoride on Growth, Common Blight Development, and the Accumulation of Fluoride in Field-Grown Red Kidney Beans. Phytopathology, 78, 1168−1173.
  172. C., Nicoletti I. (2006) Analysis of apoptosis by propidium iodide staining and flow cytometry. Nature Protocols, 1, 1458 1461.
  173. K., Haslbeck M., Buchner J. (2010) The heat shock response: life on the verge of death. Molecular Cell, 2, 253−266.
  174. E.G., Varakina N.N., Rusaleva T.M., Rachenko E.I., Knorre D.A., Voinikov V.K. (2005) Do Mitochondria Regulate the Heat-Shock Response in Saccharomyces cerevisiae? Curr. Genet., 48, 44−59.
  175. F. (1962) A new puffing pattern induced by heat shock and DNP in Dro-sophila. Experientia, 18, 571−573.
  176. L., Davletova S., Liang H., Mittler R. (2004) The zinc finger protein Zatl2 is required for cytosolic ascorbate peroxidase 1 expression during oxidative stress in Arabidopsis. Journal of Biological Chemistry, 279, 11 736−11 743.
  177. A.S., Mikhailova T.A. (1993) The effects of fluorine-containing emissions on conifers. Berlin, Heidelberg: Springer- Verlag, 143 p.
  178. Y., Finka A., Goloubinoff P. (2011) Heat perception and signalling in plants: a tortuous path to thermotolerance. New Phytologist, 3, 556−565.
  179. K., Tashiro K., Kuhara S., Mihara K. (2003) Response of genes associated with mitochondrial function to mild heat stress in yeast Saccharomyces ce-revisiae. J. Biochem., 134, 373−384.
  180. M., Jaroszewski L., Raikhel N.V., Rojo E. (2005) Caspases. Regulating death since the origin of life. Plant Physiol., 137, 841- 847.
  181. E.C., Lindquist S., Vierling E. (1994) An Arabidopsis heat shock protein complements a thermotolerance defect in yeast. Plant Cell, 12, 1899−1909.
  182. E.C., Glover J.R., Singer M.A. (1996) HSPlOO/Clp proteins: a common mechanism explains diverse functions. Trends Biochem. Sci., 8, 289−296.
  183. S. (2009) Salinity and programmed cell death: unravelling mechanisms for ion specific signalling. J Exp Bot., 60, 709−712.
  184. S.S. (1979) Fluoride levels in air, vegetation and soil in the vicinity of a phosphorus plant. Journal of the Air Pollution Control Association, 29, 1069−1072.
  185. M., Bulbul A. (2004) The effect of acute fluoride poisoning on nitric oxide and methemoglobin formation in the Guinea pig. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 28, 591−595.
  186. S., Traina S., Verma D.P., Sayre R.T. (2002) Molecular mechanisms of proline-mediated tolerance to toxic heavy metals in transgenic micro-algae. Plant Cell., 14, 2837−2847.
  187. , B.L. (1994) Water chemistry in areas with high deposition of fluoride. Sci. Total Environ. 152, 105−112.
  188. V.P. (2006) Bioenergetic aspects of apoptosis, necrosis and mitopto-sis. Apoptosis, 11, 473−485.
  189. Stevens D. P.- McLaughlin M. J.- Aston A. M. (1998) Phytotoxicity of Fluoride Ion and its Uptake from Solution Culture by Avena sativa and Lycopersicon escu-lentum. Plant and Soil, 200, 119−129.
  190. P. S., Lundin V.F., Leroux M.R. (2003) Getting a grip on non-native proteins. EMBORep., 4, 565−570.
  191. Sung D.Y., Kaplan F., Lee K.J., Guy C.L. (2003) Acquired Tolerance to Temperature Extremes. Trends Plant Sci., 8, 179−187.
  192. Sun Z.Y., Zhang X. J., Li F.Z. (2007) Phylogenetic relationship between Arabi-dopsis and Thellungiella (Cruciferae): evidence from leaf epidermal features and chloroplast sequence analysis. Botanica Yunnanica. 29. 632−638.
  193. Sweetlove L.J., Heazlewood J.L., Herald V., Holtzapffel R., Day D.A., Leaver C. J., Millar A.H. (2002) The impact of oxidative stress on Arabidopsis mitochondria. Plant J., 32, 891−904.
  194. Swidzinski J.A., Sweetlove L.J.,. Leaver C.J. (2002) A custom microarray analysis of gene expression during programmed cell death in Arabidopsis thaliana. Plant J., 30, 431−446.
  195. H., Sakai K., Morida K., Nakamori S. (2000) Proline accumulation by mutation or disruption of the proline oxidase gene improves resistance to freezing and desiccation stresses in Saccharomyces cerevisiae. FEMS Microbiol Lett, 184, 103−108.
  196. Y. Z., Dobbs F. C. (2007) Green autofluorescence in dinoflagellates, diatoms, and other microalgae and its implications for vital staining and morphological studies. Appl. Environ. Microbiol., 73, 2306−2313.
  197. TenHouten J.G. (1974) Air pollution and horticulture. Proc. XIX Internat. Horticultural Congr., 2, 57−71.
  198. J.D., Osipiuk J., Pinkau T. (1990) Acquired thermotolerance and heat shock in the extremely thermophilic archaebacterium Sulfolobus sp. strain B12. J. Bacteriol., 172, 1478−1484.
  199. Van Norman J.M., Benfey P.N. (2009) Arabidopsis thaliana as a Model Organism in Systems Biology. Wiley Interdiscip Rev Syst Biol Med., 1, 372−379.
  200. G.C., Mcintosh L. (1997) Alternative oxidase: from gene to function. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 48, 703−734.
  201. Vercammen D., Declercq W., Vandenabeele P., Van Breusegem F. (2007) Are metacaspases caspases? The Journal of Cell Biology, 179, 375−380.
  202. E. (1991) The roles of heat shock proteins in plants. Plant Mol. Biol., 42, 579−620.
  203. E., Habjorg A. (1995) Variation in fluoride content and leaf injury on plants associated with three fluoride smelters in Norway. The Science of the Total Environment, 163, 25−34.
  204. D., Voet J.G. (1995) Glycolytic reaction, I. Enolase. In: Biochemistry. 2nd ed. Hoboken, NJ, USA: Chapter, 16.
  205. V., Wang B., Dominy P.J., Fricke W., Amtmann A. (2004) Thellun-giella halophila, a salt-tolerant relative of Arabidopsis thaliana, possesses effective mechanisms to discriminate between potassium and sodium. Plant Cell Env., 27, 1−14.
  206. A., Gelani S., Ashraf M., Foolad M.R. (2007) Heat tolerance in plants: An overview. Environmental and Experimental Botany, 61, 199−223.
  207. Wang P.C., Du Y.Y., An G. Y, Zhou Y., Miao C., Song C.P. (2006) Analysis of Global Expression Profiles of Arabidopsis Genes Under Abscisic Acid and H202 Applications. Journal of Integrative Plant Biology, 48, 62−74.
  208. P.D. (1992) Lower Kitimat River and Kitimat Arm: water quality assessment and objectives. Ministry of Environment and Parks, BC, Canada.
  209. Watanabe N., Lam E. (2005) Two Arabidopsis metacaspases AtMCPlb and AtMCP2b are arginine/lysine-specific cysteine proteases and activate apoptosis-like cell death in yeast. Journal of Biological Chemistry, 280, 14 691−14 699.
  210. , R.D., Bapat K., Newnam G.P. (2001) Mechanism of prion loss after Hspl04 inactivation in yeast. Mol. Cell Biol, 21, 4656−4669.
  211. Wei L.L. (1972) Effect of hydrogen fluoride on ultrastructure of soybean leaf cells. Dissertation, Utah State University, p. 166.
  212. J., Schlieker C., Tessarz P. (2005) Novel insights into the mechanism of chaperone-assisted protein disaggregation. Biol Chem., 386, 739−744.
  213. L.H., Davison A. (2004) Fluorides in the Environment. Effects on Plants and Animals. CAB International, Wallingford. P. 287
  214. G.M., Pashley D.H., Garman R.H. (1997) Effects of fluoride on structure and function of canine gastric mucosa, Dig. Dis. Sci., 42, 2146−2155.
  215. H.H., Poovaiah B.W. (1973) Influence of Moisture, Heat, and Light Stress on Hydrogen Fluoride Fumigation Injury to Soybeans. Plant Physiol, 52, 542−545.
  216. Woltering E.J., van der Bent A., Hoeberichts F.A. (2002) Do plant caspases exist? Plant Physiol, 130, 1764−1769.
  217. P.D. (1992) Lower Kitimat River and Kitimat Arm: water quality assessment and objectives. Ministry of Environment and Parks, BC, Canada.
  218. Yang J.Y., Sun Y., Sun A.Q. (2006) The involvement of chloroplast HSPlOO/ClpB in the acquired thermotolerance in tomato. Plant Mol. Biol., 62, 385 395.
  219. Yao N., Eisfelder B.J., Marvin J. et al. (2004) The mitochondrion an organelle commonly involved in programmed cell death in Arabidopsis thaliana. Plant J., 40, 596−610.
  220. Yu M.-H., Miller G.W. (1967) Effect of fluoride on the respiration of leaves from higher plants. Plant Cell Physiology, 8, 483−493.
  221. Zhu J.K. (2001) Plant salt tolerance. Trends Plant Sci., 6, 66−71.
  222. J.J., Shay J.M. (1988) The effects of sodium fluoride on cytoplasmic leakage and the lipid and fatty acid composition of jack pine (Pinus banksiana) seedlings. CanJBot., 66, 535−541.
  223. Использованные ПЦР праймеры
  224. Название гена AGI л о кус Длина ожидаемых ПЦР-продуктов, п.H. Последоватальности ПЦР-праймеров
  225. HSP101 at3g74310 1497 F 5' GAATGCAGGACATGCTCAAT — 3'
  226. КЬ'-СААСЫ I 1 IUGIGAGCAICA-3'
  227. HSP60 at3g23990 890 F 5' AGGGTGTTGAAGATCTTGCTG -3'
  228. R 5' ATTC ATG CCA AG CTCGTCTGT — 3'
  229. HSP17.6CI atlg53540 652 F 5' AAAACAGAGCAAACGCAAAG — 3'
  230. R 5' CACGAGACAAAGCACACTCTT — 3'
  231. HSP17.6 Cil at5gl2020 325 F 5' GTGCTTGTGGTGAGTGGAGA — 3'
  232. R 5' ACACCATATCCCTCACGCAT — 3'
  233. MCI atlg02170 378 F 5' CTCCTCCG С A ACCTTCCT — 3'
  234. R 5' CATCAACTTCATCACCGTTGT — 3'
  235. МС2 at4g25110 682 F 5' ACATTAGCGGATAAGCTTAAAGTCG- 3'
  236. R 5' CATAAGAATGCAAGATTCAGGGAAT — 3'
  237. МСЗ at5g64240 1000 F 5' AAAACCAAAACAAAGCTCAA — 3'
  238. R 5' ATAAGTC ATG G CTCCTGTGT — 3'
  239. МС4 atlg79340 814 F 5' GAGAACATCACCGTTCTCAT — 3'
  240. R 5' TAGCGGGTTTCACATAGTCT — 3'
  241. МС7 atlg79310 550 F 5' -TAAGGAACAGATCGGAGAGA 3'
  242. R 5' GACATCCACTCAACAGAA — 3'
  243. МС9 at5g04200 978 F 5' ATGGATCAACAAGGGATGGTC — 3'
  244. R 5' TCAAGGTTGAGAAAGGAACGTC — 3'
  245. АСТ2 at3gl8780 420 F 5' TTCCTCATGCCATCCTCCGTCTT — 3'
  246. R 5' CAGCGATACCTGAGAACATAGTGG — 3'
  247. Влияние №С1 на сухую массу культур клеток А. ФаНапа и Т. яакщтеа
  248. Культура Концентрация ИаС!, мМклеток 0 10 25 50 100 200
  249. А. Сухая 70 75 71 64 38 11гкаИапа масса, мг 66 83 68 69 39 780 85 75 71 49 10
  250. Среднее 179,6 165,3 141,3 111,5 54,5 22значение от 100 90,7 78,6 62,1 30,3 13,6контроля
  251. Т. Сухая 248 185 153 114 99 29масса, мг 200 166 143 116 115 40 187 155 107 155 107 33
  252. Среднее 211,6 168,6 134,3 128,3 107 34значение от 100 79,6 63,5 60,6 50,5 16,1контроля
  253. Влияние на сухую массу культур клеток А. ИгаИапа и Т. заЬщтеа
  254. Культура Концентрация ЫаР, мМклеток 0 1 2,5 5 7,5 10
  255. А. Сухая 72 60 52 44 29 101каНапа масса, 76 65 50 34 27 14 мг 91 63 54 34 26 22
  256. Среднее значение 79,6 62,6 52 39 28 15,3от контроля 100 78,4 65,3 48,9 35,1 15,1
  257. Т. Сухая 181 161 144 115 58 29
  258. БаЬщтеа масса, 175 165 141 108 51 20 мг 183 170 139 93 55 17
  259. Среднее значение 179,6 165,3 141,3 111,5 54,5 22от контроля 100 90,7 78,6 62,1 30,3 13,6л1. Благодарности
  260. Автор выражает благодарность всем, кто помогал, и без чьей помощи данная работа не вышла бы в свет.
  261. Отдельную благодарность автор выражает всему коллективу лаборатории фитоиммунологии за помощь в редакционной правке рукописи диссертации, ценные замечания и постоянный интерес к работе, а также за теплое отношение.
  262. Хочется также поблагодарить коллектив лаборатории физиологической генетики за дружелюбное отношение и отзывчивость.
  263. Также отдельное спасибо тем людям, кто проверял данную работу за ценные советы, внимательное прочтение и объективную критику.1. Пуляевская Мария?
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!