Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Формирование и изучение коллекции озимых линий мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Tausch

Диссертация: Формирование и изучение коллекции озимых линий мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Tausch
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Теоретической основой создания генетических коллекций послужило учение Вавилова Н. И. об исходном материале для селекции (Вавилов Н.И., 1935). При формированиии генетико-селекционных коллекций работа ведется с практически важными признаками, и главное внимание уделяется поиску доноров, несущих наиболее ценные в селекционном отношении идентифицированные гены. Необходимым условием успешного… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Генетический потенциал и свойства вида Aegilops speltoides Tausch и его использование в улучшении мягкой пшеницы (обзор литературы)
    • 1. 1. Систематика вида Aegilops speltoides Tausch и его филогенетические связи с родом Triticum L
    • 1. 2. Кариотип Aegilops speltoides Tausch
    • 1. 3. Частная генетика Aegilops speltoides Tausch
      • 1. 3. 1. Гены, детерминирующие спаривание хромосом в мейозе
      • 1. 3. 2. Гаметоцидные гены
      • 1. 3. 3. Особенности качества зерна
      • 1. 3. 4. Устойчивость к фитопатогенам и неблагоприятным абиотическим факторам среды
      • 1. 3. 5. Молекулярно-генетические маркеры Aegilops speltoides Tausch
    • 1. 4. Успехи в освоении генетического потенциала вида Aegilops speltoides
  • Tausch
  • Глава 2. Условия, материал и методика исследований
    • 2. 1. Условия проведения полевых опытов
    • 2. 2. Материал и методика
  • Глава 3. Характеристика коллекции озимых линий мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Tausch по качественным и количественным признакам (экспериментальная часть)
    • 3. 1. Морфологические маркерные признаки и структура коллекции
    • 3. 2. Особенности 42-хромосомных генотипов
      • 3. 2. 1. Линии, несущие эффективные гены устойчивости к фитопатогенам
      • 3. 2. 2. Линии с морфотипом Triticum spelta L
      • 3. 2. 3. Линии с высоким уровнем зимостойкости
      • 3. 2. 4. Линии с другими признаками и свойствами
    • 3. 3. Особенности генотипов мягкой пшеницы с чужеродными дополненными хромосомами
      • 3. 3. 1. Характеристика дисомнодополненных линий (2п=44)
      • 3. 3. 2. Характеристика линий с двойным дисомным дополнением (2п=46)

      Глава 4. Определение цитогенетической структуры выделенных линий на основании анализа характера конъюгации хромосом в мейозе и с использованием методики дифференциального С-окрашивания хромосом в митозе.

      4.1. Выделение замещенных и дополненных линий с помощью конъюгативного теста.

      4.2. Идентификация чужеродных хромосом и транслокаций с использованием методики дифференциального окрашивания хромосом.

      Глава 5. Поиск генотипов мягкой пшеницы с инрогрессированной системой рй-подобных генов Aegilops speltoides Tausch.

      Глава 6. Каталог линий мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Tausch, рекомендуемых для использования в селекционно-генетических исследованиях.

      Глава 7. Использование коллекционных образцов для улучшения мягкой пшеницы.

      Выводы.

      Рекомендации для селекционно-генетической практики.

Формирование и изучение коллекции озимых линий мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Tausch (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

На современном этапе отечественной и зарубежной селекции мягкой пшеницы наблюдается тенденция сужения генофонда в результате использования в качестве исходных форм узкого круга сортов. При этом все острее ощущается нехватка доноров устойчивости к основным болезням пшеницы (мунистой росе, различным видам ржавчины, твердой головне, фузариозу и другим), так как сопряженная эволюция хозяина и паразита приводит к быстрому преодолению устойчивости сортов, широко используемых в селекционных программах. О темпах этих процессов можно судить на примере устойчивости мягкой пшеницы к бурой ржавчине.

В 1988 году на территории бывшего СССР были эффективными десять генов устойчивости к бурой ржавчине (Lr9, Lrl8, Lrl9, Lr29, Lr24, Lr38, LrH, LrTtj, LrTt2, LrM2), из них 8 — были получены от диких сородичей (Одинцова И.Г. с соавторами, 1988). В то же время, возделываемые сорта пшеницы в лучшем случае несли один-два гена устойчивости к бурой ржавчине. Сайн с сотрудниками (Singh R.P. et al, 1995) исследовали наиболее распространенные сорта мягкой пшеницы, возделываемые в восьми регионах бывшего СССР. Было выявлено 8 или 9 генов устойчивости к бурой ржавчине. Но из 55 протестированных сортов, только семь — несли по два гена устойчивости, и только пять — проявляли полную устойчивость ко всем расам патогена: устойчивость четырех сортов (Самсар, ППГ-596, JI-503, Лютесценс 101) была обусловлена геном Lrl9, и одного сорта (Эритроспермум 59) — одним из трех генов (Lr9, Lrl9, Lr25).

В настоящее время, по данным Афанасенко О. С. (1999), на территории России эффективными остаются всего три гена Lr9, Lrl9. Lr24. Сотрудники ВНИИ фитопатологии Жемчужина А. И. и Коваленко Е. Д. (1999) отмечали, что ген Lrl9 в ряде случаев оказывался преодоленным. По их данным эффективность сохраняют гены Lr9, Lr24, Lr29, Lr38. Все вышеперечисленные Lr-гены были интрогрессированы в геном мягкой пшеницы от других видов. По результатам исследований лаборатории генетики и цитологии НИИСХ ЦРНЗ в период с 1996 по 1998 год на территории Московской области сохраняли свою эффективность три Lr-гена (Lr9, Lr24, Lr27+Lr31). В 1998 году была преодолена устойчивость изогенных линий с генами.

Ьг19 и Ьг23. Как видно из этих данных, темпы потери эффективности генов устойчивости значительно опережают интрогрессию новых генов.

Возникает острая необходимость пополнения генофонда мягкой пшеницы за счет других видов и родов, обладающих длительной устойчивостью к бурой ржавчине, мучнистой росе и другим заболеваниям. Однако прямое использование в селекции диких злаков нецелесообразно, так как для преодоления существующих барьеров несовместимости нужны довольно сложные методы и длительный отбор. Селекционерам же нужен такой исходный материал, который позволял бы получить ожидаемые результаты с наименьшими затратами труда и времени, т. е. генетически протестированные доноры. В связи с этим, перспективными источниками для селекции оказываются созданные с участием диких видов ценные линии культурного типа с хозяйственно-ценными признаками, входящие в генетические коллекции.

Теоретической основой создания генетических коллекций послужило учение Вавилова Н. И. об исходном материале для селекции (Вавилов Н.И., 1935). При формированиии генетико-селекционных коллекций работа ведется с практически важными признаками, и главное внимание уделяется поиску доноров, несущих наиболее ценные в селекционном отношении идентифицированные гены. Необходимым условием успешного использования генетических коллекций с чужеродным генетическим материалом в селекции и частной генетике пшеницы является знание ее генетического потенциала, цитогенетической структуры, положительных и, сопутствующих им, отрицательных свойств линий — доноров.

Однако кромё прикладных задач селекции, создаваемые генетические коллекции используются и для решения ряда других проблем. Они играют большую роль в изучении внутривидового разнообразия с/х растений, их используют в качестве эталонов, они вносят значительный вклад в изучение частной генетики и цитогенетики пшеницы и ее диких сородичей, в развитие фундаментальных исследований различных разделов генетики растений и смежных с ней наук. Поэтому, при создании генетических коллекций, нужно ясно представлять ее назначение и характер дальнейшего использования: от решения конкретных прикладных задач до глобальных проблем сохранения генофонда в виде генотипов мягкой пшеницы с различной величиной чужеродного генома. В большинстве случаев, предпочтение должно быть отдано универсальности формируемых коллекций, так как создание коллекции для решения какой-либо одной задачи может сделать проблематичным ее последующее использование для решения новых вопросов.

В связи с этим, формирование генетической коллекции мягкой пшеницы с чужеродным материалом дикорастущих сородичей пшеницы, в том числе с видом Aegilops speltoides является актуальной. Создание такой коллекции оставалось до настоящего времени проблематичным, так как большинство попыток исследователей выделить константный материал наталкивалось на явление гибридного дисгенезиса, связанного в свою очередь с наличием гаметоцидных генов у вида Aegilops speltoides.

В случае создания такой коллекции, селекционеры получают ценный исходный материал, использование которого в селекционном процессе снимает такие проблемы, как нескрещиваемость родительских форм, стерильность гибридов, наличие нежелательных признаков «дикаря». А при хорошей генетической проработанности донорских признаков, возможна спланированная эффективная передача чужеродных генов в геном других сортов пшеницы, в первую очередь генов устойчивости к фитопатогенам.

Цель и задачи исследований.

Основная цель проведенных исследований заключалась в формировании и изучении селекционно-генетической коллекции озимых линий мягкой пшеницы с чужеродным материалом Aegilops speltoides Tausch. В связи с этим ставились следующие задачи:

• Провести комплексную оценку исходной популяции, состоящей из 530 озимых семей F7M7 [Родина х Aegilops speltoides (10 кР)] по хозяйственно-ценным признакам, наличию морфологических маркеров и числу хромосом и выделить константные генотипы.

• Установить цитогенетическую структуру линий с использованием коныогативных тестов и методики дифференциального С-окрашивания хромосом.

• Осуществить поиск генотипов с /^-подобными генами вида Aegilops speltoides.

• Сформировать селекционно-генетическую коллекцию линий с определенной цитогенетической структурой.

• Оценить линии коллекции на возможность их использования в улучшении озимой мягкой пшеницы по некоторым хозяйственно-ценным признакам.

На защиту выносятся положения:

1) Описание структуры сформированной коллекции линий мягкой пшеницы с генетическим материалом вида Aegilops зреио1с1ез и озимым образом жизни.

2) Селекционно-генетическая характеристика генотипов с 2п=42, 2п=44, 2п=46, входящих в коллекцию.

3) Цитогенетическая структура линий коллекции, установленная на основании конъюгативных тестов и дифференциальной С-окраски хромосом.

4) Результаты поиска генотипов со способностью к индукции гомеологичной конъюгации хромосом.

5) Исследования по доступности чужеродного генетического материала пшенично-эгилопсных линий для улучшения озимой мягкой пшеницы.

Научная новизна результатов исследования.

Завершена работа по формированию селекционно-генетической коллекции константных генотипов с 2п=42, 44, 46 с генетическим материалом Aegilops speltoid. es и озимым образом жизни, начатая в лаборатории генетики и цитологии в предыдущие годы.

Выделены линии с генами устойчивости к мучнистой росе, бурой ржавчине, стеблевой ржавчине, высокого содержания белка в зерне, зимостойкости, продуктивности и способности к индукции гомеологичной конъюгации хромосом.

С использованием методики дифференциального С-окрашивания хромосом идентифицировано 7А/78- замещение у двух гексаплоидных линий и выдвинуто предположение, что с этим замещением связана повышенная способность к гомеологичной конъюгации.

Показана возможность передачи чужеродных хозяйственно-ценных генов из генома гексаплоидной и дисомнодополненных линий при скрещивании с озимым сортом мягкой пшеницы Инна и его улучшения по признакам устойчивости к мучнистой росе, бурой ржавчине и числу колосков в колосе.

Получено два патента на изобретение способа создания исходного материала для селекции озимых мягких пшениц: гексаплоидных линий с повышенным числом колосков в колосе (2п=42) и дисомнодополненных линий (2п-44), устойчивых к мучнистой росе и бурой ржавчине. Патенты № 2 150 821 и № 2 150 822.

Практическая ценность и реализация результатов исследования.

Создана оригинальная селекционно-генетическая коллекция озимых линий мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Tausch. Линии коллекции цитогенетически константны, несут морфологические маркеры и новообразования. Чужеродный материал присутствует в этих генотипах в виде дисомных замещений, дисомных и двойных дисомных дополнений, рекомбинаций и детерминирует такие признаки, как озимый образ жизни, устойчивость к фигопатогенам, высокое содержание белка в зерне и другие хозяйственно-ценные свойства. Линии с повышенным числом колосков в колосе обладают зимостойкостью и продуктивностью на уровне стандартного сорта.

С использованием линий коллекции, несущих небольшую часть генома эгилопса, возможна спланированная передача генов хозяйственно-ценных признаков в геном существующих сортов мягкой пшеницы за сравнительно короткий промежуток времени без потерь в продуктивности и качестве зерна.

Линии коллекции со способностью к индукции гомеологичной конъюгации хромосом можно использовать в отдаленной гибридизации для активизации рекомбинационных процессов, а также для изучения генетических систем регуляции мейоза у мягкой пшеницы и вида Aegilops speltoides. Способность к гомеологичной конъюгации хромосом может существенно облегчить использование таких генотипов и в качестве доноров устойчивости к бурой ржавчине и мучнистой росе.

Линии коллекции могут служить объектом исследований частной генетики пшеницы и ее диких сородичей. Они могут стать источниками новых молекулярно-генетических маркеров.

Гексаплоидная замещенная линия 119/96w с устойчивостью к мучнистой росе передана в ГНЦ РФ ВИР, и ей присвоен номер по каталогу ВИР к-63 171.

Апробация работы и публикации результатов исследований.

Основные положения диссертационной работы были представлены на международных конференциях «Молекулярно-генетические маркеры растений» (Киев, 1996), «Методологические основы формирования, ведения и использования коллекций генетических ресурсов растений» (Харьков, 1996), «Sustanable Agriculture for Food, Energy and Tndustry» (Braunschweig, 1997), «Проблемы интродукции растений и отдаленной гибридизации» (Москва, 1998), на научной конференции молодых ученых и специалистов (Москва, 1999) и на ТТ съезде ВОГИС (Санкт-Петербург, 2000).

По теме диссертации опубликовано 8 работ.

Получено два патента (решение о выдаче патентов от 19.01.2000., авторы Лапочкина И. Ф., Кызласов В. Г., Власова Е. В., Ячевская Г. Л., Иорданская И.В.) на изобретение способа создания исходного материала для селекции озимых мягких пшениц: устойчивых к поражению болезнями дисомнодополненных линий (2п=44) (заявка № 99 103 810/13 (3 490)) с озимым образом жизни и озимых гексаплоидных линий (2п=42) с повышенным числом колосков в колосе (заявка № 99 103 811/13 (3 492)). Патенты № 2 150 821 и № 2 150 822.

Работа выполнена в рамках научно-тематических программ РАСХН (раздел 01.02.01.) «Разработать и усовершенствовать научные основы и методы селекции зерновых колосовых культур, генетические и физиологобиохимические закономерности и методы повышения устойчивости растений к экстремальным условиям среды (высокая и низкая температура, почвенная и воздушная засуха, зимостойкость, повышенное содержание солей и высокая кислотность почвы и др.) генетические основы иммунитета для эффективного использования их в селекции сортов на устойчивость в сочетании с повышенными урожайностью и качеством зерна» (1996;1997) и «Усовершенствовать генетические методы создания и оценки исходного материала для эффективного использования их в селекции сортов озимой и яровой пшеницы и ячменя» (1998;1999) и частично финансировалась Министерством науки и технологий РФ по пректу «Рекомбинантные генотипы злаков» (1997;1999г.) (шифр 01.02.04.).

Структура диссертации.

Диссертация состоит из введения, 7 глав, выводов, практических рекомендаций и приложения. Объем диссертации составляет 158 страниц машинописного текста, включая 44 таблицы (в том числе 7 в приложении) и 20 рисунков. Список использованной литературы содержит 311 источников, в том числе 232 на иностранных языках.

Выводы.

1. На основе популяции Р7М7 [Родина х Aegilops 5реио1йе$ (10 кР)] завершено формирование коллекции линий мягкой пшеницы с генетическим материалом вида Aegilops 8реШйе& и озимым образом жизни, которая удовлетворительно зимует в условиях Подмосковья. Коллекция насчитывает 44 генотипа с числом хромосом 2п=42 (27 линий,), 2п=44 (15 линий), 2п=46 (2 линии), в которых чужеродный генетический материал представлен в виде рекомбинаций, а также замещенных и дополненных хромосом.

2. Коллекция оценена по комплексу хозяйственно-ценных и маркерных морфологических признаков и составлен каталог потенциальных доноров высокоэффективных генов устойчивости к бурой и стеблевой ржавчинам, мучнистой росе, высокого содержания белка в зерне, продуктивности и других признаков.

3. По результатам тестирования гибридов полученных от скрещивания 25 образцов (2п=42) с рожью, выделено 7 генотипов (179/98™, 229/98™, 232/98™, 44/98™, 32/98™, 67/98™, 236/98™) с повышенной способностью к гомеологичной конъюгации хромосом. Их рекомендуется использовать в межвидовой и межродовой гибридизации мягкой пшеницы для индукции гомеологичного спаривания хромосом в мейозе.

4. С использованием анализа конъюгации хромосом в метафазе I мейоза и дифференциального С-окрашивания хромосом в митозе установлено наличие замещения хромосомами Aegilops вре1Шйез (у 5 линий), дисомного дополнения (у 15 линий), двойного дисомного дополнения (у 2 линий). Выявлено, что высокая устойчивость ДДЛ к бурой ржавчине и мучнистой росе связана с наличием дополненных хромосом Aegilops 8ре1Шйез, несущих доминантные гены устойчивости к этим заболеваниям. Замещенная линия 119/95™, с морфотипом Т. яреШ и устойчивостью к мучнистой росе пополнила генетическую коллекцию ВИР (каталожный номер к-63 171).

5. Методом дифференциального С-окрашивания хромосом изучено распределение гетерохроматиновых сегментов в митотических хромосомах у исходного образца Aegilops зре1Шёе8 (к-389), двух гексаплоидных линий (32/98™ и 53/98™) и одной ДДЛ (141/97™). Идентифицировано наличие замещения 7А/78* у двух гексаплоидных линий коллекции, несущих эффективные гены устойчивости к бурой ржавчине и обладающих маркерными признаками красной окраски колоса и.

130 отсутствия воскового налета на колосе. Выявлена морфоструктура чужеродных рекомбинантных хромосом у озимой ДДЛ (141/97у), которые детерминируют высокую устойчивость к бурой ржавчине. Показано их сходство с дополненными хромосомами яровой ДДЛ, относящейся к I кластеру.

6. Продемонстрирована эффективность использования ДДЛ (2п=44) с высокой устойчивостью к бурой ржавчине (19/95у) и мучнистой росе (106/96у), а также гексаплоидной многоколосковой линии 28/95у в улучшении озимого сорта мягкой пшеницы Инна по этим признакам.

Рекомендации для селекционно-генетической практики.

1. Линии коллекции рекомендуется использовать в селекции в качестве новых источников эффективных генов устойчивости к фитопатогенам, высокого содержания белка в зерне, зимостойкости, продуктивности, короткостебельности.

2. Генотипы, обладающие способностью к гомеологичной конъюгации (179/98?, 229/98у, 232/98ш, 44/98у, 32/98у, 67/98?, 236/98ш), предлагается использовать в качестве стимуляторов хромосомных рекомбинаций в отдаленной гибридизации и при изучении генетических систем регуляций мейоза у мягкой пшеницы и вида Aegilops spehoides.

3. Линии коллекции рекомендуется использовать в качестве источников генетических маркеров Aegilops ъреХШйеь, имеющих широкий спектр применения в селекции, генетике и молекулярной биологии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.З., Терновская Т. К. Изоферменты бета и альфа-амилазы для идентификации чужеродного генетического материала трех видов Aegilops, включенного в геном мягкой пшеницы./ЛДитология и генетика.-1995.-Т.29.-№ 2.-С.З-17.
  2. Э.А. Роль эгилопса в становлении зимостойкости пшеницы.//1 Международный симпозиум «Новые нетрадиционные растения и перспективы их практического использования». Тезисы докладов. Пущино.-1995.-С. 423.
  3. Э.А. Адаптивность видов пшеницы и эгилопса к низким температурам.//Дисс.на соискание ученой степени д.б.н. в форме научного доклада. -Санкт-Петербург.-1993.-50 с.
  4. М.Д., Губарева Н. К., Конарев A.B. Изучение вида T.persicum по белкам зерна.//Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции.-1979.-Т.63.-Вып, 3.-С.32−36.
  5. Р.Л., Одинцова И. Г., Пеуша Х. О., Абдуллаев K.M. Амфидиплоиды и редкие формы пшеницы как источники устойчивости к бурой ржавчине.//Сборник научных трудов по прикладной ботанике гененетике и селекции. ВИР.-1987.-Т. 110.-С.32.
  6. ., Куновски Ж., Ганева Г. Род Aegilops L. как источник устойчивости к грибным болезням для селекции пшениц.//Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции.-1982.-Т.73.-Вып, 3.-С.111−120.
  7. Д.Д., Коровина О. Н., Дикие сородичи культурных растений флоры СССР.-Л: Колос,-1981.-С.78−79.
  8. Н.И. Иммунитет растений к инфекционным заболеваниям. Изд-во «Наука». 1986 г.-С.423−424.
  9. Н.И. Теоретические основы селекции растений. (1935 г.). Изд-во «Наука». 1986 г.-С.93−141.
  10. Вавилов Н И. Научное наследие в письмах. Международная переписка. Том П. 1927−1930, — Москва, «Наука»,-1997.-С.224.
  11. В.А., Гималов Ф. Р. Полиморфизм длины повторяющихся единиц генов 5SpPHK в геномах разных видов пшениц и эгилопсов.//Генетика.-1988.-Т24.-№ 10.-С. 1850−1856.
  12. Гагкаева, Наврузбеков. Предварительная оценка некоторых видов рода Aegilops L. на устойчивость к Fusarium ^гатшеае,//Научно-технический бюллютень ВИР.-1991,-Вып.216.-С.91−94.
  13. П. А. Определитель пшеницы, эгилопса, ржи, и ячменя (определительные и справочные таблицы видов и разновидностей). Изд-во АН Армянской ССР, 1980.-С. 186−207.
  14. З.В. Динамика накопления белка у представителей рода ТгШсеае.//Материалы съезда грузинского о-ва генетиков и селекционеров. Тбилиси. 1820 ноября, 1981.-1981.-С.55−56.
  15. Р.О. Передача генов устойчивости к листовой ржавчине от T.militinae и Ae. speltoides в геном мягкой пшеницы. Автореферат на соискание ученой степени кандидата биологических наук. 1993.-24с.
  16. В.Ф., Мигушева Э. Ф. Популяции эгилопсов в Закавказье.//Труды по прикладной ботанике, генетике иселекции.-1973.-Т.50.-Вып1.-с.205−215.
  17. .А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки материалов исследований). Изд-е 4-е, перераб. и доп.- М.: Колос-1979.-416с.
  18. Е.Г. Новые амфидиплоиды от скрещивания Aegilops sharonensis и Aegilops speltoides с диплоидными видами пшеницы./АГруды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1980, т.69, вып. 1, с. 139-
  19. Е.Г. Геномы пшеницы: исследования и перестройка.//Автореф. диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук, Киев, 1989−32с
  20. Е.Г., Терновская Т. К., Иванов Г. И. Геномно-замещенные формы пшеницы.//В сб.: Генетика и селекция пшеницы. Краснодар, 1985, с.84−102-
  21. Е.Г., Терновская Т. К. Геномная инженерия у пшеницы.//Вестник с.-х. науки.-1984.-№ 10.-С.58−66.
  22. П.М. Критико-систематический обзор видов рода Aegilops ¿-.//Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции.-1928.-Т. 18.-вып. 1.-С.417−609.
  23. П.М. Культурные рстения и их сородичи. Систематика, география, цитогенетика, иммунитет, экология, происхождение, использование. Изд. Третье.-JI: Из-во Колос.-1971.-с.123−130.
  24. H.H., Михайличенко Б. П., Ивашута C.B., Шаденков A.A. Перспективы использования молекулярных маркеров в селекции кормовых культур. Сельскохозяйственная биология.-1997.-№ 3.-С.68−74.
  25. A.B. Дифференциация первых геномов полиплоидных пшениц по данным иммунохимического анализа спиртовой фракции белка зерна.-Бюл. ВИР.-1975,-Вып.47.-С.8−11.
  26. В.Г. Н И. Вавилов, ВИР и современная биология в решении проблем генофонда растений для селекции.// Аграрная наука.-1996.-№ 2.-С.15−16.
  27. В.Г., Губарева Н. К., Гавридюк И. П. Белковые маркеры геномов пшениц и их диких сородичей. III. Специфичность глиадина по данным иммунохимического анализа. Вестник с-х науки, — 1970, № 9.-С.91−97.
  28. В.Г., Губарева Н. К., Гавридюк И. П. Белковые маркеры геномов пшениц и их диких сородичей. III. Иммунохимический анализ растворимых белков зерна пшениц и эгилопсов.//Вестник с-х науки. 1970, № 8.-С. 100−108.
  29. В.Г., Гавридюк И. П., Губарева Н. К., Пенева Т. И., Хакимова А. Г. Геномный анализ пшеницы и родственных ей злаков.//Молекулярно-биологические аспекты прикладной ботаники, генетики и селекции. Том 1. М.: Колос.-1993.-С.95−136.
  30. Е.М., Айзатулина Х. С. Изучение локализации гетерохроматина в хромосомах пшеницы сорта Чайниз Спринг и его дителоцентрическихлиний.//Цитология и генетика, 1988.-Т.22.-№ 1.-С.36−40.
  31. И.Ф., Волкова Г. А. Создание коллекций замещеных и дополненных хромосомами Aegilops speltoides Tausch, линий яровой мягкой пшеницы.//Генетика. -1994,-т.ЗО, прил.-С.86−87.
  32. И.Ф., Соломатин Д. А., Сережкина Г. В., Гришина Е. Е., Вишнякова Х. С., Пухальский В. А. Линии мягкой пшеницы с генетическим материалом Aegilops speltoides Ташс11.//Генетика.-1996.-№ 12.-С. 1651−1656.
  33. Н.Ф., Соломатин Д. А., Сорокина Г. К. Дикие злаки как исходный материал для селекции пшеницы на иммунитет к ржавчине. В книге: Труды 5-го Всесоюзного совещания по иммунитету растений. 1969.-Киев.-2(2).
  34. . Гены: Пер. с англ. -М: Мир, 1987.-544с.
  35. А.К. Изучение биологических взаимоотношений между родами Triticum L. и Aegilops L. (пшениц и эгилопсов). Автореферат канд. дисс., Баку.-1965.
  36. А.Ф. Проблема доноров в селекции растений. С-Пб: ВИР, 1994.-С. 14−17.
  37. Методические рекомендации по оценке качества зерна. М.: Агропромиздат.-1987.-207 с.
  38. Э.Ф., Григорьева О. Г. Устойчивость эгилопсов к бурой ржавчине.//Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. -1973.-Т.50.-Вып.1,-С.111−117.
  39. Э.Ф., Суханбердина Э. Х., Кривченко В. И. Устойчивость эгилопсов к мучнистой росе./ЛГруды по прикладной ботанике, генетике и селекции.-1980,-Т68.-Вып.1.-С.111−117.
  40. О.П. Единая генетическая коллекция вида Triticum aestivum L. (принципы создания). В: Генетические коллекции растений. Вып.1.-Новосибирск.-1993,-С.39−53.
  41. И. Д. Изучение биологических взаимоотношений между видамипшениц, эгилопсов и ржи в межвидовой и межродовой гибридизации./Ютдаленная гибридизация растений, 1970.-С.78−90.
  42. Э.Д. Проблема исходного материала на современном этапе селекции зерновых культур.//Вестник сельскохозяйственной науки,-1982.-№ 6.-С. 20−25.
  43. H.H. Связь между составом белков и технологическими свойствами зерна мягкой пшеницы.//Известия ТСХА.-1998.-№ 2.-С.38−39.
  44. И.Г., Макарова H.A., Крупнов В. А. Сорта зерновых культур с известными генами устойчивости к болезням. Каталог мировой коллекции ВИР. Л: 1988,-С. 12−21.
  45. Т.И., Мигушова Э. Ф. Структура генома S (В) эгилопсов группы Sitopsis по данным электрофоретического и иммунохимического анализа глиадинов.//Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, 1973.-Т.52.-Вып.1.-С.178−192.
  46. H.A. Биометрия.-II изд-е. М: МГУ.-1970.-367с.
  47. Практикум по селекции и семеноводству полевых культур. Под ред. Проф. А. П. Горина. Изд-е 4-е, перераб и дополнен. М., «Колос», 1976.-367 с.
  48. В.А., Лапочкина И.Ф. Влияние генотипа Aegilops speltoides Tausch на характер конъюгации хромосом у гибридов, полученных с участием Triticum aestivum
  49. Цитология и генетика.-1989.-Т.24.-№ 23.-С.24−29.
  50. В.А., Иорданская И. В., Бадаева Е. Д., Лапочкина И. Ф., Билинская E.H. Генетический анализ признака «отсутствие воскового налета на колосе» у линии мягкой пшеницы.//Генетика.-1999.-Т.35.-№ 9.-С. 1223−1228.
  51. Е.А., Песцова Е. Г., Вершинин A.B. «Spelt-Г'- новое семейство тандемных повторов злаков.//Генетика.-1997.-Т.ЗЗ.-№ 4.-С. 437−442.
  52. Селянинова-Корчагина М. Кариосистематическое исследование рода Aegilopsy/Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции.-ВИР.-Л.: 1932,-Сер.2,№ 1.-С.1−90.
  53. Л.В., Мигушова Э. Ф., Девяткина Э. П. Качество зерна сородича пшеницы-эгилопса./ЛГруды по прикладной ботанике, генетике и селекции.-1973.-Том 50.-Вып.1.-С.216−226.
  54. A.C. Генетический анализ. М. Наука, 1970−372с.
  55. Смирнов В. Г, Соснихина С. П. Генетические кололекции растений и их использование.//Итоги науки и техники. Серия: Общие проблемы биологии. Том 2. Модели и объекты биологических исследований: Генетические коллекции растений.-М.: ВИНИТИ.-1983.-С.З-27.
  56. Т.А., Созинов A.A. Генетический контроль морфологических признаков колоса и взаимосвязь аллельной изменчивости маркерных локусов хромосом 1А и 1 В озимой мягкой пшеницы.//Цитология и генетика.-1993.-Т.27.-№ 5.-С.15−23.
  57. А. А. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции.-М.:Наука, 1985.-271 с.
  58. О.Н. Гибридизация эгилопсов с пшеницей.//Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, 1934.-Т.23.-Вып.4.-С.22.
  59. Стельмах А. Ф Наследование и генетическая роль различий по типу и скорости развития у мягкой пшеницы: Автореферат диссертации на соискание ученой степени д.б.н.-Москва.-1987.-34с.
  60. В.Д., Шелепина Г. А., Кишмария Я.Ш, Лушникова A.A. Кариотипы некоторых видов пшеницы и эгилопсов.//Селекция и семеноводство,-1985.-№ 2.-С. 19−22.
  61. A.A., Богуславский Р. Л. О селекционной ценности пшеничных амфидиплоидов.//Сборник научных трудов по прикладной ботанике генетике и селекции. ВИР.-1991 .-Т.142.-С.32−34.
  62. Е.В. Рестрикционный полиморфизм ДНК эгилопсов сукции 67/о/гш. //Научно-тех н и ческий бюллютень ВНИИ растениеводства.-1993.-№ 230.-С. 17−18.
  63. JI.В. Использование геномно-замещенной формы Авродес как промотора конъюгации гомеологичных хромосом у пшеницы./ЯДитология и генетика. 1993.-Т.27,-№ 1.-С.45−48.
  64. Л.В. Генетическая система Aegilops speltoides Tausch, контролирующая конъюгацию гомеологичных хромосом у его гибридов с Triticum aestivum L. //Автореф. дисс. на соискание учен, степени, канд. биол. наук.-С-Петербург, 1992.-24с.
  65. Л.В., Бессараб КС., Конюшая Е. А. Идентификация генов гомеологичной конъюгации хромосом у линий Triticum aestivum L. //Генетика.-1996.-Т.32, №.8.-С. 10 881 092.
  66. П.Н. Качество зерна пырея и пшенично-пырейных гибридов.//Селекция и семеноводство 1936.-№ 6.-С.46−51.
  67. Т.М. Изменчивость мейоза при внутривидовой и межвидовой гибридизации пшеницы. //Автореф. Дисс. на соискание ученой степени доктора биол. наук, Киев.-1989.-43с.
  68. А.И., Кравцова Л. А. Цитогенетика пшенично-ржаных гибридов. Новосибирск: Наука, 1990.-С. 15−22.
  69. Ahmad Magbool, Arain М.А., Siddiqui К.A. Screening of Aegilops, Triticum, and Hordeum species for grain weight, protein, and lysine content.//Wheat Information Service.1997.-№ 85.-P.7−13.
  70. Anamthawat-Jonsson K., Heslop-Harrison J.S. Isolation and characterization of genome-specific DNA sequences in Triticeae species.//Mol. Gen. Genet.-1993. -V.240.-P. 151−158.
  71. Aniol A. A. seriological investigation of wheat evolution.//Zeitschrift fur Pflanzenzuchtimg.-l 974.-V.73.-P. 194−203.
  72. Badaev N.S., Badaeva E.D., Bolsheva N.U. Cytogenetics analysis of forms produced by crossing of hexaploid Triticale with common wheat.// Theor. and Appl. Genet.-1985.-V.70, № 5.-P.536−541.
  73. Badaeva E.D., Friebe B., Gill B.S. Genome differintiation in Aegilops. 1. Distribution of highly repetitive DNA sequences on chromosomes of diploid species.//Genome.-1996.-V.39.-P.293−306.
  74. Badaeva E.D., Friebe B., Zoshchuk S.A., Zelenin A.V., Gill B.S. Genome differintiation in diploid and polyploid Aegilops species./ZProc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.1.-P.61−64.
  75. Badaeva E.D., Schutina F.M., Bogdevich I.N., Badaev N.S. Comparative study of Triticum aestivum and T. timopheevi genomes using C-banding technique.//Plant Syst. and Evolution.-1986.-V. 154, № 3−4.p. 183−194.
  76. Bahrman N., Zivy M., Thiellement H. Genetic relationships in the Sitopsis section of Triticum and the origin of the B genome of polyploid wheats.//Heredity.-1988.-V.61.-P.473−480.
  77. Bennett Fiona G.A. Resistance to powdery mildew in wheat: a review of its use in agriculture and breeding programmes./ZPlant Pathology.-1984.-V.33.-P.292.
  78. Bijral J.S., Singh K., Sharma T.R. Morpho-cytogenetics of Triticum aestivum L. x Aegilops speltoides Tausch hybrids.//Wheat Information Service.-1997.-№ 84.-P.51−52.
  79. Blake N.K., Lehfeldt B.R. A., Hemphill X. Shan L .E., Talbert. DNA sequence analysis suggests a monophyletic origin of the wheat B genome.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.2.-P. 14−16.
  80. Bowden W.M. The taxonomy and nomenclature of the wheats, barleys, and ryes and their wild relatives.//Can. J. ofBot.-1959.-V.37.-P.657−684.
  81. Ceoloni C., Strauss I., Feldman M. Effect of different doses of group-2 on homoeologous pairing in intergeneric wheat hybrids.//Can. J. of Genet, and Cytol.-1986.-V.28,-P.240−246.
  82. Chen K.S., Dvorak J. The inheritance of genetic variation in Triticum speltoides affecting heterogenetic chromosome pairing in hybrids with Triticum aestivum.// Can. J. of Genet, and Cytol.-1984.-V.26,№.3.-P.279−287.
  83. Chen P., Sun W., Liu W., Yuan J., Liu Z., Wang S., Liu D. Development of wheat-Leymus racemosus translocation lines with scarb resistance.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.2.-P.32−34.
  84. Chen P.D., Tsujimoto H., Gill B.S. Transfer of Ph1 genes promoting homoeologous pairing from Triticum speltoides to common wheat.//Theor. and Appl. Genet.-1994.-V.88,-P.97−101.
  85. Chennaveeraiah M. S Karyomorphologic and cytotaxonomic studies in Aegilops. llAda Horti Goteburgensis.-l 960.-V.23 .-P. 85−178.
  86. Cuadrado C., Romero C., Lacadena J.R. Effect of different wheat chromosome arms of homoeologous group 3 and 5.//Genome.-1991.-V.34, №.l.-P.72−75.
  87. Daud H.M., Gustafson J.P. Molecular evidence for Triticum speltoides as J5-genome progenitor of wheat (Triticum ae5tfvww).//Genome.-1996.-V.39.-P.543−548.
  88. Davoyan R.O., Bessarab K.S., Bebyakina I.V., Konyshiy E. Use of synthetic forms for wheat improvement.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.2.-P.193−195.
  89. Davoyan R.O., Ternovskaya T.K. Use of synthetic hexaploid Triticum migushovae for transfer of leaf rust resistance to common wheat.//Euphytica.-1996.-V.89.-P.99−102.
  90. Dinev N.S., Stanislavova L., Stancheva I. Seed protein copntent and Amino Acid Composition in Species of Tribe Triticeae.HBulg. Journal of Agric. Sci.-1995.-V.l.-P.95−99.
  91. Dover J.A., Riley R. Variation at two loci affecting homoelogous meiotic chromosome pairing in Triticum aestivum x Aegilops mutica hybrids.//Nature New Biol.-1972.-V.235, № 54,-P.61−62.
  92. D’Ovidio R, Tanzarella O.A., Porceddu E. Isolation of alpha-type gliadin gene from Triticum durum Desf. and genetic polymorphism at the Gli-2 loci.//J. of Genet, and Breed.-1992.-V.46.-№l.-P.41−48.
  93. Dvorak J. Genetic variability in Aegilops speltoides affecting homoelogous pairing in wheat.// Can. J. of Genet, and Cytol.-1972.-V.14, № 2.-P.371−380.
  94. Dvorak J. Transfer of leaf rust resistance from Aegilops speltoides to Triticum aestivum.UCm. J. of Genet, and Cytol.-1977.-V.19.-P.133−141.
  95. Dvorak J. Genome analysis in the Triticum-Aegilops alliance.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.1.-P.8−11.
  96. Dvorak J., Appels R. Chromosome and nucleotide sequence differentiation in genomestof polyploid Triticum species.//Theor. and Appl. Genet.-1982.-V.63 .-P.349−360.
  97. Dvorak J., Knott D.R. Cromosome location of two leaf rust resistance genes transferredfrom Triticum speltoides to Triticum aestivum.// Can. J. of Genet, and Cytol.-1980.-V.22,-P.381−389.
  98. Dvorak J., Knott D.R. Location of a Triticum speltoides cromosome segment confering resistance to leaf rust in Triticum aestivum.//Genome.-1990.-V.33, № 6.-P.892−897.
  99. Dvorak J., McGuire P. Nonstructural chromosome differentiation among wheat cultivars, with special reference to differentation of chromosomes in related species.//Genetics.-1981.-V.97.-P.391−414.
  100. Dvorak J., Zhang H.B. Reconstruction of the phylogeny of the genus Triticum from variation in repeated nucleotide sequences.//Theor. and Appl. Genet.-1992.-V.84.-P.419 429.
  101. Dvorak J., Lassner M.W., Kota R.S., Chen K.C. The distribution of the ribosomal RNA genes in the Triticum speltoides and Elytrigia elongata genomes.//Can. J. of Genet, and Cytol.-1984.-V.26.-P.628−632.
  102. Eig A. Notes sur le Genre Aegilops .//Bull, de la Soc. Bot. de Geneve.-l 928.-V. 19.-P. 1 -12.
  103. Eig A. Monographisch-kritische Obersicht der Gattung Aegilops.//Report, spec. nov. reg. veg., Beih.-l 929.-V.55.-P. 1 -228.
  104. Endo T.R. Selective gametocidal action of a chromosome of Aegilops cylindrica in a cultivar of common wheat.//Wheat Information Service.- 1979a.-№ 50.-P.24−28.
  105. Endo T.R. On the Aegilops chromosome having gametocidal action on common wheat.//Proc. of the 5th Int. Wheat Genetics Symp., New Delhi, 1979b.-P.306−314.
  106. Endo T.R. Gametocidal chromosomes of three Aegilops species m common wheat.//Can. J. of Genet, and Cytol.-1982.-V.24, № 2.-P.201−206.
  107. Endo T. R Two types of gametocidal chromosomes of Aegilops sharonensis and Aegilops longissima.HJap. J. of Genet.-1986a.-V.60.-P.125−135.
  108. Endo T. R An Aegilops longissima chromosome causing chromsome aberrations in common wheat./AVheat Information Service.-1986b.-№ 60.-P.29.
  109. Endo T.R. Induction of chromosome structural changes by a chromosome of Aegilops cylindrical, in common wheat.//! of Heredity-1988a.-V.79.-366−370.
  110. Endo T.R. Allocation of a gametocidal chromosome of Aegilops cylindrica to wheat homoelogous group 2.//Genes Genet Syst.-1996.-V.71.-P.243−246.
  111. Endo T.R., Gill B.S. The deletion Stocks of Common Wheat.//! of Heredity.-1996,-V.87.-P.295−307.
  112. Endo T. R, Katayama Y. Selective retention of an alien chromosome in common wheat.//Cytol. Inform. Service.-1978a.-V.25.-P.l 1−13.
  113. Endo TR, Katayama Y. Finding a selectively retained chromosome of Aegilops caudata L. in common wheat. //Wheat Information Service.-1978b.-V.47−48.-P.32−35.
  114. Endo T.R., Tsunewaki K. Sterility of common wheat with Aegilops triuncialis cytoplasm.//! of Heredity.-1975.-V.66-P. 13−18.
  115. Endo T.R., Shi F., Tsvetkov K.S. Genetic induction of chromosomal structural changes of alien chromosomes in common wheat.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.2.-P.40−43.
  116. Eser V. Characterisation of powdery mildew resistant lines derived from crosses between Triticum aestivum and Aegilops speltoides and mwrica.//Euphytica.-1998.-V. 100.-P.269−272.
  117. Fedak G. Procedures for transferring agronomic traits from alien species to crop plants.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V. 1 .-P.5.
  118. Feldman M. Identification of unpaired chromosomes in Fi, hybrids involving Triticum aestivum and T. timopheeviiJ/Cm. J. of Genet, and Cytol.-1966.-V.8.-P.144−151.
  119. R.A., Miller T.E., Bennet M.D. «Cuckoo» Aegilops addition chromosome in wheat ensures its transmission by causing chromosome breaks in meiospores lacking it.//Chromosoma. 1984.-V.90,№ 1.-P.84−88.
  120. Frauenstein K., Hammer K. Prufrmg von Aegilops-Arten auf Resistenz gegen Echten Mehltau, Erysiphe graminis DC., Braunrost, Puccinia recondita Rob. Ex Desm., und Spelzenbraune, Septoria nodorum 5
  121. Friebe B., Gill B S. C-band polymorphism and structural rearrangements detected in common wheat (Triticum aestivum) JIExxyhytico. A994.-V.78.-№l -2.-P. 1 -5.
  122. Friebe B., Gill B.S. Chromosome banding and genome analysis in diploid and polyploid cultivated wheat. /Methods of genome analysis in plants. Edited by P.P. Jauhar. CRC Press, Boca Raton, Fla. 1996.-P.39−60.
  123. Friebe B., Jiang J., Gill B.S. Detection of 5S rDNA loci and other repetitive DNA sequences on supernumerary B chromosomes of Triticum species.//Plant Syst. and Evol.-1995a.-V.196.-P. 131−139.
  124. Friebe B., Jiang J., Raupp W.J., Mcintosh R.A., Gill B.S. Characterization of wheat-alien translocations conferring resistance to diseases and pests: current status.//Euphytica.-1996.-V.91.-P.59−87.
  125. Friebe B., Mukai Y., Gill B.S. C-banding polymorphisms in several accessions of Triticum tauschii (Aegilops squamosa).!IGsnome,.-1992a.-V.35.-P. 192−199.
  126. Friebe B., Tuleen N., Jiang J., Gill, B.S. Standard karyotype ofTriticum longissimum and its cytogenetic relationship with T. aesft’vwm.//Genome.-1993.-V.36.-P.731 -742.
  127. Friebe B., Tuleen N.A., Gill B.S. Standard karyotype of Triticum searsii and its relationship with other S genome species.//Theor. and Appl. Genet.- 1995c.-V.91.-P.248−255.
  128. Gill B.S. Molecular cytogenetic analysis in wheat.//Crop Sci.-1993.-V.33.-P.902−908.
  129. Gill B.S., Chen P.D. Role of cytoplasmic-specific introgression in the evolution of the polyploid wheat.//Proc. Nat. Acad. Sci. USA.-1987.-V.84.-P.6800−6804.
  130. Gill B.S., Kimber G. Giemsa C-Banding and the evolution of wheat.//Proc. Nat. Acad. Sci. USA.-1974.-V.71, № 10.-P.4086−4090.
  131. Gill B.S., Waines J.G. Paternal regulation of Seed Development in Wheat Hybrids.// Theor. and Appl. Genet.-1978.-V.51.-P.265−270.
  132. Gill B.S., Friebe B., Endo T.R. Standard karyotype and nomenclature system for description of chromosome bands and structural aberrations in wheat (Triticum aestivum).//Ge nome.-1991.-V.34.-P.830−839.
  133. Gill K.S., Gill B.S., Endo T. R, Boyko E.V. Identification of high-density mapping of gene-rich regions in chromosome group 5 ofwheat.//Genetics.-1996a-V.143.-P.1001−1012.
  134. Gill K.S., Gill B.S., Endo T.R., Taylor T. Identification of high-density mapping of gene-rich regions in chromosome group 1 ofwheat.//Genetics.-1996b.-V.144.-P.1883−1891.
  135. Giorgi B, Barbera F. Use of mutants that affect homoeologous pairing for introducing alien variations in both durum and common wheat.//Tool plant Res. Proc. Int. Symp., Vienna, 9−13 Marth, 1981.-P.3747.
  136. Giorgi D., D’Ovidio, Tanzarella O.A., Ceoloni C., Porceddu E. Isolation and characterization of genome-specific sequences from Aegilops species of the Sitopsis section.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.3.-P.8−10.
  137. Gupta P.K., Baum B.R. Nomenclature and related taxonomic issues in wheats, Triticales and some other wild relatives.//Taxon.-1986.-V.35.-P. 144−149.
  138. Gupta V., Ranjekar P.K., Rao V.S.P., Gill B, Tamhankar S.A., Lagu M.D., Gill K., Tiwari R. Molekular marker assisted wheat improvement in India: A progress report.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.1.-P.99−102.
  139. Hammer K. Vorarbeiten zur, monographischen Darstellung von Wildpflanzensortimenten: Aegilops L.//Kulturpflanze.-1980.-V.28.-S.33−180.
  140. Hammer K. Vorarbeiten zur monographischen Darstellung von Wildpflanzensortimenten: Aegilops L.-Resistenzuntersuchungen.//Kulturpflanze-1985a.-V.33.-S.123−131.
  141. Hammer K. Resistenzmerkmale in der Gattung Aegilops L. und neuere Ergebnisse aus der Gaterslebener yiegi7ops-Kollektion.//Tag.-Ber., Akad. Landwirtsch.-Wiss. DDR, Berlin.-1985b.-V.237.-S.79−82.
  142. Hammer K. Resistenzmerkmale und Reproduktionssystem als Indikatoren fur evolutionare Tendenzen in der Gattung Aegilops LJ/Biol Zent. Bl. -1987.-B.106.-S.273−282.
  143. Hanusova R, Holubec V. Rust and powdery mildew resistance of Aegilops collection. Polnohospodarstvo.//Agriculture.-1993 -R.39, № 7.-S.533−539.
  144. Hohmann U., Lagudah E.S. Progress in genome mapping of wheat and related species./ZProc. of the 3th Public Workshop of the Int. Triticeae Mapping Initiative. 22−26 Sept. 1992.-CIMMIT.-Mexico.-l 993.-P.23−25.
  145. Holubec V., Hanusova R, Kostkanova E. The Aegilops collection in the Praha-Ruzyne (Chechoslovakia) Gene Bank: collecting, evaluation and documentation.//Hereditas.-1992.-V.116.-P.271−276.
  146. Holubec V., Havlickova H. Interspecific differences in cereal aphid infestation of 20 Aegilops.//Genet. Siecht.-1994.-R30,c.2.-S.81 -87.
  147. Ichikawa S., Sparrow A.H. Nuclear and interphase chromosome volumes of four Triticum species and of eight species from related genera.//Wheat Information Service-Kyoto Univ. 1967.-№ 23−24.-P. 18−20.
  148. Jaaska J.A. Aspartate aminotransferase-isoenzymes in the polyploid wheats and theirdiploid relatives. On the origin of tetraploid wheats./ZBiochem. Physiol. Pflanzen.-1976.-V.170.-P.159−171.
  149. Jaaska J.A. NADP-dependent aromatic alcohol dehydrogenase in polyploid wheats and their relatives. On the origin and phylogeny of polyploid wheats.//Theor. and Appl. Genet.-1978.-V.53 .-P.209−217.
  150. Jaaska J.A. Electrophoretic survey of seedling esterases in wheats in relation to their phylogeny.//Theor. and Appl. Genet.-1980.-V.56.-P.273−284.
  151. Jaaska J.A. NADP-dependent aromatic alcohol dehydrogenase in polyploid wheats (Triticum L.) and goatgrasses (Aegilops L.): evolutionery genetics./Afheor. and Appl. Genet.-1984.-V.67.-P.535−540.
  152. Jia Ji-Zeng, Miller T.E., Reader S.M., Gale M.D. RFLP-tagging of a gene Pm 12 for powdery mildew resistance in wheat (Triticum aestivum L.).HSci. in China. Ser.B.-1994.-V.37, Jfc5.-P.531−537.
  153. Jiang J., Gill B.S. New 18S-26S ribosomal RNA gene loci: chromosomal landmarks for the evolution of polyploid wheats.//Chromosoma.-1994a.-V. 103, № 3.-P. 179−185.
  154. Jiang J., Gill B.S. Different species-specific chromosome translocations in Triticum timopheevii and T. turgidum support the diphyletic origin of polyploid wheats.//Chromosome Res.-1994b.-V.2.-P.59−64.
  155. Johnson B.L. Identification of the apparent 2?-genome donor of wheat.// Can. J. of Genet, and Cytol.-l 975.-V. 17.-P.21 -39.
  156. Johnston C.O. Some species of Triticum and Related Grasses as Hosts for the leaf Rust of wheat Puccinia triticina? n'Axs.//Transactions of the Kansas Academy of Science.-1940,-Vol 43.
  157. Jones J.K., Majusu B.N. The homoeology of Aegilops mutica chromosomes.//Can. J. of Genet, and Cytol.-l 968.-V.1-P.620−626.
  158. Jonotan I.O., McGuuire. Induced chromosome pairing.//California Agriculture.-1982,-V.36.-P.26
  159. Kerber E.R., Dyck P.L. Transfer to hexaploid wheat of linked genes for adult plant leaf rust and seedling stem rust resistance from amphiploid of Aegilops speltoides x Triticum monococcum. //Genome .-1990.- V.33, № 4 .-P.530−537.
  160. Kerby K., Kuspira J. The phylogeny of the polyploid wheats Triticum aestivum (bread wheat) and Triticum turgidum (macaroni wheat).//Genome.-1987.-V.29, № 5.-P.722−734.
  161. Kerber E. R, Tipples K.H. Effect of the D genome on milling and laking properties of wheat. //Canadian Journal of Plant Science-1969.-V.49.
  162. Keskin S., Eser V., Gosmen B., Erisen S. Biochemical variation in Ae. speltoides spel. and Ae. speltoides lig. Populations./ZProc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.2.-P.53−55.
  163. Kibirige-Sebunya I., Knott D.R. Transfer of stem rust resistance to wheat from an Agropyron chromosome having a gametocidal effect.// Can. J. of Genet, and Cytol.-1983.-V.25.-P.215−221.
  164. Kiecana I., Prazak R. Fusarium of the ears in goatgrass (Aegilops L.). Fuzarioza klosow koziencow {Aegilops L).//Howla Roslin, Aklityzacja i Nasiennictuo.-1995.-V.39.-№ 6.-P.l 11 121.
  165. Kihara H. Verwandschaft der Aegilops-Arten im Lichte der Genomenalyse.//Ein Uberblick, Zuchter.-l 940.-V. 12.-P.49−62.
  166. Kihara H. Discovery of the DD analyser, one of the ancestors of T. vulgare. //Agric. Hortic. 1944.-V.19.-P.13−14.
  167. Kihara H. Genomanalyse bei Triticum und Aegilops. IX. Systematischer Aufbau der Gattung Aegilops auf genome-analytischer Grundlage.//Cytologia.-1949.-V. 14.-P. 135−144.
  168. Kihara H. Consideration on the evolution and distribution of Aegilops species based on the analyser method.//Cytologia.-1954.-V.19.-P.336−357.
  169. Kihara H. Interspecific relationships in Triticum and Aegilops.//Seiken Ziho.-1963 -V.15.-P.1−12.
  170. Kihara H., Tsunewaki K. Genetic principles applied to the breeding of crop plants. //In: Heritage from Mendel. Edited by R. A. Brink and E.D. Styles. Wisconsin Press. Madison, 1967.-P.405−418
  171. Kihara H., Yamashita K. Wheats and its relatives.//Wheat Information Service.-1956.-№ 4.-P. 16−24.
  172. Kimber G. Estimate of the number of genes involved in the genetic suppression of the cytological diploidization of wheat.//Nature.-l 966.-V.212, № 5059-P.317−318.
  173. Kimber G. The B genome of wheat: the present status./In: Cytogenetics of crop plants. Edited by M.S. Swaminathan, P.K. Gupta, and U. Singh. MacMillan, India, 1983.-P.214−224.
  174. Kimber G., Athwal R.S. A reassessment of the course of evolution of wheat.//Proc. Nat. Acad. Sei. USA.-1972.-V.69, № 4.-P.912.-915.
  175. Kimber G., Feldman M. Wild wheat: an introduction. College of Agriculture, University of Missouri, Columbia, Mo.-1987, — Special report No.353.
  176. Kimber G., Sears E.R. Assignment of genome symbols in the Triticeae. il Proc. of the 6th Int. Wheat Genetics Symp. Kyoto, Japan.-1983.-1195−1196.
  177. Kimber G., Alonso L.C., Sallee P.J. The analysis of meiosis in hybrids. I. Aneuploid hybnds.//Can. J. of Genet, and Cytol.-1981.-V.23.-P.209−219.
  178. Knott D.R. The effect of transfers of allien genes for leaf rust resistance on the agronomic and quality characteristics of wheat.//Euphytica.-1989.-V.44, №l-2.-P.65−72.
  179. Knott D.R., Dvorak J. Agronomic and quality characteristics of wheat lines with leaf rust resistance derived from Triticum speltoides. l/Cm. J. of Genet, and Cytol.-1981.-V.23, № 3.-P.475−480.
  180. Kuckuck H. Neuere Arbeiten zur Entstehung der hexaploiden Kulturweizen. //Zeitsch. f. Pflanzenzucht, 41, 1959
  181. Kushnir U., Halloran G.M. Evidence of Aegilops sharonensis Eig as the donor of the B genome of wheat.//Genetica.-1982a.-№ 99.-p.495−512.
  182. Kushnir U., Halloran G.M. Quantative studies of the amphidiploid (Aegilops sharonensis x Triticum monococcum) and the B genome of wheat.//Wheat Information Service.-1982b.-№ 54.-P. 12−16.
  183. Kynast R.G., Friebe B.R., Gill B.S. Rye chromosome alterations induced by Gc gene of Aegilops cylindrica Host.llProc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 1998.-V.2.-p.61−63.
  184. Law C.N., Snape J.W., Worland A.J. Chromocome manipulation and its exploitation in the genetics and breeding of wheat.//Stader Genetics Symposium. 1984.-V. 15.-P.5−23.
  185. Lhaloui S., El Bouhssini M., Nachit M.M., Nsarellah N., Amri A. New sourses of resistance to Hessian fly in wheat in Morocco.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.3.-P.287−289.
  186. Lilienfeld F.A. Kihara: genome-analysis in Triticum and Aegilops. X. Concluding review.//Cytologia (Tokyo).-1951 .-V. 16.-P. 101 -123.
  187. Liu D-C, Yen C., Yang J-L. C-banding analysis of D-genome chromosomes in Chinese landrase of Triticum tauschii (Coss.) Schmalh and Triticum aestivum L. cv. Chinese Spring./AVheat Information Service.-1997.-№ 84.-P.33−39.
  188. Liu X., Wang R. R-C., Jia J., Dong Y. Genome relationship amjng Sitopsis Species of Aegilops and the B/G genome of Triticum assessed by RAPD markers.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 1998.-V.2.-P.79−81.
  189. Love A. Generic evolution in the wheat grasses.//Biol. Zentralbl.-1982.-V. 101 .-P. 199 212.
  190. Maan S.S. Exclusive preferential transmission of an alien chromosome in common wheat.//Crop Sci.-1975.-V.15.-P.278−292.
  191. Maan S.S. Alien chromosome controlling sporophytic sterility in common wheat.//Crop Science.-1976.-V. 16.-P.580−583
  192. Maan S.S., Lucken K.A. Male-sterile wheat with rye cytoplasm, restoration of male fertility and plant vigor.//J. ofHeredity.-1971.-V.62.-P.353−355.
  193. Maestra B., Naranjo T. Homoelogous relationships of Aegilops speltoides chromosomes to bread wheat/ATheor. and Appl. Genet.-1998.-V.97, №l-2.-C. 181−186.
  194. Mains E.B., Jackson H.S. Physiologic specialization on the leaf rust of wheat Puccinia triticina? rcfes.//Phytopathology.-1926.-V.16, № 1.-P.89−120.
  195. Marais G.F. Preferential transmission of a chromosome segment derived from Thinopyrum distichum (Thunb) Ldve.//Pland Breed.-1990.-V. 104, № 2.-C.152−159.
  196. Marais G.F. Pretorius Z.A. Gametocidal effects and resistance to wheat leaf rust in derivatives of a Triticum turgidum ssp. Durum / Aegilops speltoides hybrid.//Euphytica.-1996.-V.88,№ 2.-P. 117−124.
  197. Masojc P., Zawistowski J., Howes N.K., Aung T., Gale M.D. Polymorphism and chromosomal location of an endogenous a-amylase inhibitor genes in common wheat.//Theor. and Appl. Genet.-l993.-V.85.-P. 1043−1048.
  198. McFadden E.S., Sears E.R. The artificial synthesis of Triticum spelta. (Abstr.)//Rec.
  199. Genet. Soc. Amer.-1944.-V.13.-P.26−27.
  200. McFadden E.S., Sears E.R. The origin of Triticun spelta and its free threshing hexaploid relatives.//! of Heredity 1946.-V.37.-P.81−89,107−116.
  201. Mcintosh R.A., Miller T.E., Chapman V. Cytogenetical studies in wheat XII. Lr28 for resistance to Puccinia reconduct and Sr34 for resistance to P. graminis tritici. ilZeitschrift fur Pflanzenzuchtung.-1982.-V.89.-P.295−306.
  202. Mcintosh R.A., Hart G.E., Devos K.M., Gale M.D., Rogers W.J. Cataloge of gene Symbiols for Wheat.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998 -V.5.-235s.
  203. McKendry A.L., Henke G.E. Evaluation of wheat wild relatives for resistance to Septoria tritici blotch.//Crop Sci.-1994.-V.34, № 4.-P. 1080−1084.
  204. Mello-Sampayo T., Viegas W.S. Chromosome engenering in hybrids involving durum wheat.// Proc. of the Symp. on Genetics and Breeding wheat. Bari. Italy.-1973.-p.79−90.
  205. Mello-Shampayo T. Promotion of homoelogous pairing in hybrids of Triticum aestivum xAegilops longissima./IGemt. Iberica.-1971.-V.23, №.l-2.-P.l-9.
  206. Mettin D., Wolf D., Bluthner H., Ingeborg S., Bucholz U., Armix R. Untersuchungen an Samenproteinen in der Gattung Aegilops.//Tag.-Ber., Akad. Landwirtsch.-Wiss DDR, Berlin.-1977.-B.158.-S.95−106.
  207. Miller T.E. Cromosome pairing in intergeneric amphiploids as a means of assessing genome relationships in the Triticeae J/Zeitschiifi fur Pflanzenzuchtung. Journal of Plant breeding.-198 l.-V.87.-№l.-P.69−78.
  208. Miller T.E., Hutchinson J., Chapman V. Investigation of a preferentially transmitted Aegilops sharonensis chromosome in wheat./ZTheor. and Appl. Genet.-1982.-V.61.-P.27−33.
  209. Miller T.E., Reader S.M. The introdaction into wheat of an alien gene for resistance to powdery midew.//AFRC Inst. Plant. Sci. Res., John Innes. Inst.-Annual report., 1988.-P.3−4.
  210. Miller T.E., Reader S.M., Gale M.D. The effect of homoeologous group 3 on chromosome pairing and crossability in Triticum aestivum. il Can. J. of Genet, and Cytol.-1983.-V.25, № 6.-P.634−641.
  211. Mori N., Ishido T., Iwami H., Takumi S., Nakamura C. Wheat genome differintation as revealed by polymorphisms in the homoelogous group 1 chromosomes.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.2.-P.92−94.
  212. Morris R., Sears E.R. The cytogenetics of wheat and its relatives. //In: Wheat and Wheat Improvement, Edited by K.S. Quisenberry and L.P. Reitz, American Society of Agronomy Monographs, Madison, Wisconsin- 1967.-P. 19−87.
  213. Mukai Y., Nakahara Y., Yamamoto M. Simultaneous discrimination of the three genomes in hexaploid wheat by multicolor fluorescence in situ hybridization using total genomic and highly repeated DNA probes.//Genome.-1993.-V.36.-P.489−494.
  214. McKey J. Species relationship in TriticumJ/Proc. of the II Int. Wheat Genetics Symp. Lund, 1963.
  215. McKey J. Relationships in the Triticinae./fProc. of the III Int. Wheat Genetics Symp., Canberra, 1968.
  216. Nasuda S., Friebe B., Gill B. Gametocidal genes induce chromosome brekage in the interphase prior to the first mitotic cell division of the male gametocphyte in wheat.//Genetics.-1998.-V.149,№ 2.-P.1115−1124.
  217. Natarajan A., Sharma N.P. Chromosome banding patterns of the B genome in wheat.//Genetical Res. Camb.-1974.-V.24, № 1.-P. 103−108.
  218. Newcomer E.H. A new cytological and histological fixing fluid.//Science.-1953.-V. 118, № 3058.-P.161.
  219. Noda K., Koulin Ge. Chromosome structural changes and their role in the tetraploid wheats.//Genome.-1989.-V.32,№ 2.-P.257−261.
  220. Okamoto M. Asynaptic effect of chromosome V.//Wheat Information Service.-1957.-№ 5,6.
  221. Ono H., Kido A., Sakai Y. Preferential transmission of the alien chromosome on a durum v/heat-Agropyron chromosome addition line.//Sci. Repts. Fac. Kobe Univ.-1983.-V. 15, № 2. P.261 -264.
  222. Pathak G.N. Studies in the cytology of cereals.//! of Genet.-1940.-V.39.-P.437−467.
  223. Payne P.I., Holt L.M., Lawrence G., Low C.N. The genetics of gliadin and glutenin, the major storage proteins of the wheat endosperm.//Qual. Plant Foods Hum. Neth.-1982.-V.31,-P.229−241.
  224. Peterson R.F., Cambell, Hannah A.E. A diagrammatic scale for estimating rust intensity of leaves and stems of cereal. //Can. J. of Research. Section C.-1948.-P.496−500.
  225. Pilch J., Kubara-Szpunar L., Glowacz E. Usefulness of some interspecific and intergeneric hybrids of Triticum aestivum L. //In: breeding for resistance to hexaploid winter wheat.//Biuletyn Inst. Hodowli i Aklimatyzacji. Roslin.-1993.-№ 187.-P.7−12.
  226. Prins R, Marais G.F., Janse B.J.H., Pretorius Z.A., Marais A.S. A physical map of the Thinopyrum-derived Lr 19 translocation.//Genome.-1996.-V.39.-P.1013−1019.
  227. Rayburn A.L., Gill B.S. Use of Violin-labeled probes to map specific DNA sequences on wheat chromosomes.//J. of Heredity.-1985.-V.76.-P.78−81.
  228. Rees H., Waltars M.R. Nuclear DNA and the evolution of wheat.//Heredity.-1965.-V.20.-P.73−82.
  229. Riley R. The evolution of wheat.//In: «Essays on crop plant evolution», Cambridge.-1965.-P. 101−122.
  230. Riley R., Chapman V. Genetic control of the cytologically diploid behaviour of hexaploid wheat.//Nature.-1958.-V.182.-№ 4637.-P.713−715.
  231. Riley R., Law C.N. Genetic variation in chromosome pairing.//Advances in genetics.-1965.-V.13.-P.57−114.
  232. Riley R, Chapman V., Belfield A.M. Induced mutation affecting the control of meiotic chromosome pairing in Triticum a&s#vwn.//Nature.-1966a.-V.211.-P.368−369.
  233. Riley R., Chapman V., Young R.M., Belfield A. M., Angela M. Control of meiotic chromosome paring by chromosomes of homoelogous group 5 of Triticum aestivumJ/NaturQ.-London. -1966c.-№ 212.-P. 1475−1477.
  234. Riley R., Chapman V., Johnson R. The incorporation of alien disease resistance in wheat by genetic interference with the regulation of meiotic chromosome synapsis.//Genetical Research, Cambridge.-1968.-V.12.-P. 199−219.
  235. Riley R., Unrau J., Chapman V. Evidence on the origin of the B genome of wheat.//J. of Heredity. -1958.-V.49,№ 3.-P.91−98.
  236. Salina E.A., Pestsova E.G., Goncharov N.P. Instability of a subtelomeric tandem repeats in wheat species.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada.-1998.-V.2.-P. 107−109.
  237. Sallee P. J., Kimber G., The meiotic analysis of the hybrid T. timopheevii var zhukovskyi x Secale cereale.//WheaX Information Service.-1975.-№ 41-№ 42.-P.9−11.
  238. Sarkar P., Stebbins G.L. Morphological evidence concerning the origin of B genome in wheat.//Amer. J. ofBot.-1956.-V.45.-P.207−304.
  239. Scoles G.T., Kibirige-Sebunya I. Preferential abortion of gametes in wheat induced by anAgropyron chromosome.//Can. J. ofGenet. and Cytol.-1983.-V.25.-P.l-6.
  240. Sears E.R. Chromosome pairing and fertility in hybrids and amphidiploids in the TriticinaeJfUniv. Mo. Coll. Agrie. Res. Bull.-1941.-V.337.-P.l-10.
  241. Sears E.R. The B genome of TriticumJ/Wheat Information Service.- 1956.-№ 4,6, 8−10.
  242. Sears E.R. The aneuploids of common wheat.//Missouri Agric.Exptl.Stat. Res.Bull.-1954.-№ 572.-P. 1 -59.
  243. Sears E.R. Mutations in wheat that raise the level of meiotic chromosome pairing.//Gene manipulation in plant improvement: 16th Stadler Genet. Symposium-Columbia, 1984.-P.295−300.
  244. Seyfarth R., Feuillet C., Keller B. Development and characterisation of molecular markers for the adult plant leaf rust resistance genes Lrl3 and Lr35 in wheat.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symposium, Canada.-1998.-V.3.-P. 154−155.
  245. Sibikeev S.N., Sibikeeva N.A. Yu Ye, Yelesin V.A. Study of F1 hybrids of common wheat and Aegilops speltoides Tausch and Triticum mulitinae Zhuk et Migusch./fRxis. Agr. Sci.-1994.-№ 9.-P.l-4.
  246. Stakman E.C., Levine M.N. The determination of biologic forms of Puccinia graminis on Triticum s/?/?.//Minnesota.-Agrie. Res. Station. -Bull. 8. -1922.
  247. Stebbins G.L. Taxonomy and the evolution of genera, with special reference to the family Grami"eae.//Evolution.-1956.-V.10.-P.235−245.
  248. Stoilova T.S. Proteins and rotein ingibitors of trypsyn as biochemicals marcers in studiyng tetraploid wheat B genome 0rigin.//^0Kji. Eojir. AH.-1989.-V.42, № 10.-P. 119−121.
  249. Sun Q.X., Xu R.Q. Genetic control of tolerance to high temperature stress inwheat.//Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 1998.-V.1.-P.236−243.
  250. Taira T., Fujita N., Takaoka K., Wadano A., Kozaki S., Okabe S. Variation in the primary structure of waxy proteins (granule-bound starch synthase) in diploid cereals./ZBiochem. Genet.-1995.-V.33.-P.269−280.
  251. Talbert L.E., Magyar G.M., Lavin M., Blake T.K., Moylan S.L. Molecular evidence for the origin of the S-derived genomes of polyploid Triticum species.//Amer. J. Bot.-1991.-V.78,-№ 3.-P.340−349.
  252. Teoh S.B., Hutchinson J. Interspecific variation in C-banded chromosomes of diploid Aegilops species.//Theor. and Appl. Genet.- 1983a.-V.65.-P.31−40.
  253. Teoh S.B., Miller T.E., Reader S.M. Intraspecific variation in C-banded chromosomes of Aegilops comosa and Ae. speltoides.ilTheor. and Appl. Genet.-1983b.-V.65.-P.343−348.
  254. Tsatsenko L. V. The analysis of chromosome pairing in hybrids involving T. kotschyi and T.variabilis.IICereal Res. Commun.-1993.-V.21, №.4.-P.285−288.
  255. Tsugi S., Maan S.S. Differemid fertility and transmission of male and female gametes in alloplasmic wheat hybrids.//Can. J. of Genet, and Cytol.-1980.-V.23.-P.337−348.
  256. Tsujimoto H. Hybrid dysgenesis found in the course of monosomic analysis of the gametocidal genes of wheat Gel mi Gc2.//Jap. J. of Breed.-1986a.-V.36.-Suppl. 1.-P.358−359.
  257. Tsujimoto H. Hybrid dysgenesis in wheat: Relation between the suppressor of gametocidal gene. I gel and the enhancer of chromosome breakage and mutation.//Jap. J. of Breed.-l 986b.-V.36.-Suppl. 2.-P. 256−257.
  258. Tsujimoto H. Hybrid dysgenesis in wheat: its determinants and utilization for wheat genetics and breading./AVheat Infor mation Service.-1986c.-№.63.-P.48−49.
  259. Tsujimoto H. Two new sourses of gametocidal genes from Aegilops longissima and Ae.sharonensis.lfWh.Qai Information Service.-1994.-№ 79.-P.42−46.
  260. Tsujimoto H. Gametocidal genes in wheat and its relatives. IV. Functional relationships between six gametocidal genes.//Genome.-1995.-V.38.-P.283−289.
  261. Tsujimoto H., Noda K. Chromosome breakage in wheat induced by the gametocidal gene of Aegilops triuncialis L. Its utilization for wheat genetics and breeding.//Proc. of the 7th Int. Wheat Genetics Symp.-1988.-P.455−460.
  262. Tsujimoto H., Noda K. Deletion mapping by gametocidal genes in common wheat: speltoid supression (Q) and (3-amylase (b-Amy-A2) genes on chromosome 54.//Genome.-1990,-V.33, № 6.-P.850−853.
  263. Tsujimoto H., Tsunewaki K. Gametocidal genes in wheat and its relatives. I. Genetic analyses in common wheat of a gametocidal gene derived from Aegilops speltoides.UCm. J. of
  264. Genet, and Cytol.-1984a.-V.26.-P.78−84.
  265. Tsujimoto H., Tsunewaki K. Genetic analysis on a-gametocidal gene originated from Aegilops aucheri. il Proc. of the 6th Int. Wheat Genetics Symp.-1984b.-P.1077−1081.
  266. Tsujimoto H., Tsunewaki K. Hybrid dysgenesrs in common wheat caused by gametocidal genes.//Jap. J. of Genet.-1985a.-V.60,№ 6.-P, 565−578.
  267. Tsujimoto H., Tsunewaki K. Gametocidal genes in wheat and its relatives. II. Suppressor of chromosome 3C gametocidal gene of Aegilops triuncialisJ/Cm. J. of Genet, and Cytol.-1985b.-V.27, № 2.-P. 178−185.
  268. Tsujimoto H., Tsunewaki K. Gametocidal genes in wheat and its relatives. III. Chromosome location and effects of two Aegilops speltoides derived gametocidal genes in common wheat.//Genome.-1988.-V.30.-P.239−244.
  269. Tsujimoto H., Panayotov I., Tsunewaki K. Behavior of an extra chromosome carried by alloplasmic common wheat lines having Agropyron trichophorum.//Jap. J. of Genet.-1987.-V.62.-P.291−299.
  270. Tsunevaki K., Tsujimoto H. Grnetic diversity of the cytoplasm in Triticum and Aegilops./IProc. of the 6th Int. Wheat Genetics Symp.-1984.-P.l 139−1144.
  271. Valkoun J., Hammer K., Kucerova D., Bartos P. Desease resistance in the genus Aegilops L.-Stem rust, leaf rust, stripe rust, and powdery mildew.//Kulturpflanze.-1985.-V.33.-P.133−153.
  272. Yamamoto M. Distribution of ribosomal RNA genes in Aegilops and Triticum chromosomes.//Bulletin of Kansas Womens College.-1992.-V.2.-P.25−37.
  273. Yan L., Fairclough R., Bhave M. Molecular evidence supporting the origin of the В genome of Triticum turgidum from T. speltoides. I IProc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp.-1998.-V.1.-P.119−121.
  274. Yao Z. N-окрашивание хромосом по Гимза и происхождение В генома мягкой пшеницы.//Ичуань сюэбао, Acta genet sin.-1982.-V.9, № 5.-Р.363−366.-кит:рез англ.
  275. Yen Y., Kimber G. Reinvestigation of the S genome in Triticum kotschyi./IGenome-1990.-V.33, № 4.-P.521−524.
  276. Waines J.G. High temperature stress wheats in wild wheats and spring wheats.//Australian Journal of Plant Phys.-1994.-V.21.-№ 6.-P. 705−715.154
  277. Waines J.G., Barnhart D. Biosystematic research in Aegilops and Triticum.//Hereditas.-1992.-V.116, № 3.-P.207−212.
  278. Wall A.M., Riley R., Gale M.D. The position of a locus on chromosome 5B of Triticium aestivum affecting homoelogous meiotic pairing.//Genet. Res.-1971.-V.l8, № 3,-P.329−333.
  279. Winkle M.E. Cytogenetic investigation into the relationship of Triticum aestivum and Triticum timopheevii. M.S. Thesis, University of Missouri-Columbia, U.S.A. 1976.
  280. Yamamoto M. Distribution of ribosomal RNA genes in Aegilops and Triticum chromosomes./ZBulletin of Kansas Women’s College. Vol. 2. Kansas Women’s College, Osaka. 1992.-P.25−37.
  281. Yan L., Fairclough R., Bhave M. Molecular evidence supporting the origin of the B genome of Triticum turgidum from T. speltoidesJ/Proc. of the 9th Int. Wheat Genetics Symp., Canada, 2−7 Aug. 1998.-V.2.-P.119−121.
  282. Zhang H.B., Dvorak J. Characterization and distribution of an interspersed repeated nucleotide sequence from Lophopyrum elongatum and mapping of a segregation distortion factor with it.//Genome.-1990.-V.33.-P.927−936.
  283. Zohary D., Feldman M. Hybridization between amphidiploids and the evolution of polyploids in the wheat (Aegilops-Triticum) group.//Evolution.-1962.-V.16.-P.44−61.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!