Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Участие ферментов окислительного метаболизма моноаминов в гипоталамической регуляции репродуктивной функции самок крыс

Диссертация: Участие ферментов окислительного метаболизма моноаминов в гипоталамической регуляции репродуктивной функции самок крыс
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Полученные данные о влиянии ДМГ, мелатонина и пептидных препаратов эпифиза на активность МАО в МПО могут указывать на то, что уже известные ранее эффекты ДМГ, регуляторных пептидов и гормона эпифиза на репродуктивную функцию осуществляются через изменения активности МАО в МПО под действием данных соединений. Влияние исследованных соединений на активность МАО и функционирование репродуктивной… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Современные представления о циркадианной системе млекопитающих
    • 1. 2. Современные представления о механизме обеспечения репродуктивной 16 цикличности женского организма
    • 1. 3. Роль мелатонина в регуляции репродуктивной функции
    • 1. 4. Влияние пептидов эпифиза на репродуктивную функцию
    • 1. 5. Влияние нейротропных ксенобиотиков на репродуктивную функцию
    • 1. 6. Биохимическая характеристика аминоксидаз
    • 1. 7. Возможная связь глутатионпероксидаз с действием аминоксидаз и механизмами регуляции репродукции
    • 1. 8. Биохимическая характеристика глутатионпероксидаз
    • 1. 9. Методы определения моноаминоксидазной и глутатионпероксидазной 59 активностей
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Оптимизация способов определения активности ферментов для работы с микроструктурами головного мозга крыс
    • 2. 2. Изучение распределения активности моноаминоксидазы среди анатомических структур
    • 2. 3. Изучение суточной динамики активности моноаминоксидазы в медиальной преоптической области, срединном возвышении и обонятельных бугорках
    • 2. 4. Изучение возрастной динамики активности моноаминоксидазы в анатомических структурах
    • 2. 5. Изучение влияния мелатонина, эпиталамина, эпиталона и 1,2-диметилгидразина на активность моноаминоксидазы во фронтальной части медиальной преоптической области
    • 2. 6. Исследование отношений между активностями моноаминоксидазы и глутатионпероксидазы
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Характеристики разработанных методов определения активности ферментов
    • 3. 2. Распределение активности моноаминоксидазы среди структур мозга
    • 3. 3. Исследование суточной динамики моноаминоксидазной активности в медиальной преоптической области, срединном возвышении и обонятельных бугорках
    • 3. 4. Изучение возрастной динамики активности моноаминоксидазы в анатомических структурах
    • 3. 5. Влияние 1,2-диметилгидразина, мелатонина, эпиталамина и эпиталона на общую моноаминоксидазную активность в медиальной преоптической области
    • 3. 6. Исследования связи моноаминоксидазной и глутатионпероксидазной активностей

Участие ферментов окислительного метаболизма моноаминов в гипоталамической регуляции репродуктивной функции самок крыс (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

АКТУАЛЬНОСТЬ ПРОБЛЕМЫ.

Проблема регуляции репродуктивной функции женского организма является одной из сложнейших в функциональной биохимии. Особого внимания заслуживает функционирование сложно организованной гипоталамической системы, обеспечивающей синтез и секрецию ключевого регулятора половой цикличности — гонадолиберина (LHRH), рилизинг-гормона, стимулирующего выработку гонадотропинов гипофиза.

Установлено, что максимальный уровень LHRH в крови самок млекопитающих приурочен к определенному времени репродуктивного цикла, а именно, к периоду, предшествующему овуляции. У самок крыс пик секреции LHRH происходит в вечернее время на стадии проэструса. Одним из условий формирования данного пика является повышение в крови содержания половых стероидов. Другое условие, связанное с первым — ежедневно поступающий сигнал от внутреннего таймера, локализованного в супрахиазматических ядрах (SCN) гипоталамусапри этом функция SCN также модулируется стероидами (Kennaway, 2005).

Перикарионы специализированных гонадолиберинергических нейронов в головном мозгу крыс локализованы преимущественно в медиальной преоптической области (МПО) — большая часть терминален данных нейронов проецируется в срединное возвышение (СВ) гипоталамуса, откуда происходит секреция LHRH в кровь (Rivest, Rivier, 1995). Процессы синтеза и секреции LHRH находятся под контролем многочисленных нейромедиаторных систем, среди которых основная роль отводится пептидергическим и моноаминергическим системам (Бабичев, 1995). В упрощенном виде представления о вкладе моноаминергических систем сводятся к следующему: норадреналин и дофамин считаются позитивными регуляторами синтеза LHRH в медиальной преоптической области (в особенности это относится к норадреналину) — что же касается секреции LHRH, то дофамин, в противоположность норадреналину, рассматривается как негативный регулятор. В отношении серотонина известно ингибирующее влияние на продукцию LHRH. Для различных моноаминов показано наличие изменений в их содержании и секреции в МПО и медиальном базальном гипоталамусе на стадии проэструса, приуроченных к вечернему времени, что связывают с осуществлением их регуляторной роли в отношении формирования пика LHRH (Thyagarajan et al., 1995; Mohankumar et al., 1995). Также неоднократно продемонстрирован факт снижения содержания биогенных аминов в гипоталамических структурах (включая СВ) при старении, что рассматривают как одну из причин развития возрастной дисфункции гипоталамического контроля работы репродуктивной системы (Simpkins et al., 1977, Cano et al., 2001).

Один из основных путей деградации данных нейромедиаторов — путь окислительного дезаминирования, катализируемого моноаминоксидазами (МАО). Ряд сведений указывает на вовлеченность МАО преоптической области самок крыс в формирование преовуляторного пика секреции LHRH (Alleva et al., 1966, Lima et al., 2007, Yamamoto et al., 1974). В частности, использование паргилина (ингибитора МАО) вызывает отмену преовуляторного пика лютеинизирующего гормона у крыс наряду с повышением содержания серотонина, норадреналина и дофамина в МПО. При этом истощение содержания серотонина путем микроинъекций 5,7-дигидрокситриптамина в МПО ведет к усилению секреции лютеинизирующего гормона у овариэктомированных крыс, обработанных эстрадиолом и прогестероном (Lima et al., 2007).

Однако, неизвестно, присутствуют ли изменения активности МАО в МПО и СВ в преовуляторный период, обуславливающие формирование обнаруженных ранее ритмов содержания моноаминов в данных областях. В связи с этим актуальной является задача исследования динамики активности МАО в МПО и СВ во второй половине дневной фазы экспериментальных суток на различных стадиях эстрального цикла.

К настоящему времени известно, что во многих областях головного мозга крыс, в частности, в целом гипоталамусе, при старении наблюдается повышение активности МАО (Bhaskaran, Radha, 1983, Meites, 1992). Поскольку в отдельных областях гипоталамуса при старении наблюдается снижение содержания моноаминов, регулирующих репродуктивную функцию, актуальной является задача изучения возрастной динамики активности МАО в МПО и СВ, которая до настоящего момента остается неизвестной. Данные о возрастных изменениях активности МАО в МПО и СВ будут способствовать пониманию роли данного фермента в возрастном становлении и угасании репродуктивной функции.

Актуальным является поиск ответа на вопрос о вовлеченности МАО в механизмы воздействия соединений, обладающих гонадотропным эффектом. Экспериментальные исследования показали, что при воздействии антигонадотропного соединения 1,2-диметилгидразина и гормона эпифиза мелатонина, обладающего прогонадотропным эффектом у половозрелых животных, наблюдаются изменения содержания моноаминов в гипоталамических структурах (Анисимов и др., 1976, Керкешко и др., 2001). Однако, неизвестно, как влияют данные соединения на активность МАО в данных областях. Также получены сведения о том, что пептидный препарат эпифиза эпиталамин способен восстанавливать циклическую активность яичников и фертильность у стареющих самок крыс (Анисимов, 2003, Khavinson, 2000). В то же время, неизвестно, что происходит с активностью МАО в гипоталамических структурах, ответственных за продукцию LHRH, при воздействии эпиталамина, а также его структурно-функционального аналога эпиталона.

Начиная с 1980;х годов появились сведения о том, что функционирование МАО тесно связано с активностью глутатионпероксидаз (ГПО) — основных ферментов, метаболизирующих пероксид водорода в головном мозгу, являющийся одним из продуктов моноаминоксидазной реакции (Maker et al., 1981, Cohen et al., 1997). Можно предположить наличие корреляционной связи между активностями МАО и ГПО. Экспериментальная проверка данного предположения является актуальной, поскольку в случае наличия высокодостоверной корреляционной связи в исследуемых областях активность ГПО будет являться дополнительным показателем потенциально возможной скорости окислительного метаболизма моноаминов, ответственных за регуляцию продукции LHRH.

Однако, к настоящему времени, отсутствуют адекватные методы определения МАО и ГПО в микроструктурах головного мозга (в связи с чем понятно отсутствие сведений по изложенным вопросам в литературе).

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

Целью представляемого исследования являлось изучение в экспериментах на самках крыс роли моноаминоксидаз в регуляции репродуктивной функции женского организма на уровне гипоталамических структур, участвующих в продукции гонадолиберина.

В соответствии с целью были поставлены задачи: I Оптимизировать условия определения активности моноаминоксидазы и глутатионпероксидазы для работы с микроанатомическими структурами головного мозга;

2)исследовать суточную динамику моноаминоксидазной активности в медиальной преоптической области и срединном возвышении гипоталамуса самок крыс в преовуляторный период;

3)исследовать возрастную динамику активности моноаминоксидазы в медиальной преоптической области и срединном возвышении гипоталамуса самок крыс;

4)изучить.влияние 1,2-диметилгидразина, мелатонина, эпиталамина* и эпиталона на активность моноаминоксидазы в ответственных за регуляцию репродукции областях гипоталамуса: самок крыс;

5)оценить связь между активностями глутатионпероксидазы и моноаминоксидазы в ткани головного мозга, в том числе в областях, отвечающих за продукцию гонадолиберина.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ. 1. Оптимизированные способы определения моноаминоксидазной и глутатионпероксидазной активностей позволяют корректно исследовать активности данных ферментов в микроструктурах головного мозга и могут быть использованы для оценки потенциально возможной скорости окислительного метаболизма моноаминов.

2.Становление и угасание репродуктивной функции сопряжено с изменениями активности моноаминоксидазы в микроструктурах гипоталамуса, ответственных за продукцию гонадолиберина.

3.Соединения, обладающие гонадотропным эффектом, влияют на моноаминоксидазную активность в медиальной преоптической области: соединение с антигонадотропными свойствами (1,2-диметилгидразин) снижает активность ферментавещества с прогонадотропным эффектом повышают (мелатонин) или оказывают протекторный эффект (эпиталамин) на активность моноаминоксидазы.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА РАБОТЫ. Представлен новый способ определения моноаминоксидазной активности, основанный на реакции окисления кинурамина с детекцией увеличения концентрации продукта реакции 4-гидроксихинолина при 327 нм. Данный метод позволяет определять активность моноаминоксидазы в микроанатомических структурах головного мозга, в том числе ответственных за регуляцию репродуктивной функции. Описан новый подход для определения селензависимой глутатионпероксидазной активности, сочетающий использование пероксида водорода и 5,5'-дитиобис (2-нитробензойной кислоты), и применен для изучения глутатионпероксидазной активности ткани головного мозга, в том числе в микроанатомических образованиях.

Впервые описано распределение моноаминоксидазной активности в ткани головного мозга крыс с применением разработанного и представленного в настоящей диссертации метода определения активности МАО.

Описана неизвестная ранее возрастная динамика моноаминоксидазной активности в структурах, отвечающих за синтез и высвобождение гонадолиберина.

Впервые изучено воздействие обладающего нейротоксическими свойствами энтеротропного канцерогена 1,2-диметилгидразина на уровень активности моноаминоксидазы в преоптической области гипоталамуса самок крыс. При этом* обнаружен ингибирующий эффект однократной внутрибрюшинной инъекции данного соединения на активность фермента.

Впервые обнаружено, что внутрибрюшинное введение мелатонина приводит к сильно выраженному повышению активности моноаминоксидазы в ткани преоптической области гипоталамуса.

Обнаружен неизвестный ранее протекторный эффект инъекций эпиталамина на активность моноаминоксидазы в медиальной преоптической области у крыс, направленный против ингибирующего действия 1,2-диметилгидразина.

Впервые выявлена высокодостоверная обратная зависимость между активностями малоизученной немитохондриальной моноаминоксидазы и селеновой митохондриальной глутатионпероксидазы в ткани головного мозга. Выявлена отрицательная корреляционная связь между активностями глутатионпероксидазы и моноаминоксидазы срединного возвышения.

ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ И ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ РАБОТЫ. Представленные микрометоды определения моноаминоксидазной и глутатионпероксидазной активностей расширяют возможности дальнейшего исследования данных ферментов. Методы характеризуются простотой воспроизведения и использованием недорогих реактивов, пригодны для работы с микроанатомическими стуктурами головного мозга, с отдельными субклеточными фракциями и позволяют решать многие исследовательские задачи. Всего этого зачастую нельзя сказать о многих альтернативных методах. Предложенный способ определения активности глутатионпероксидазы характеризуется более высокой селективностью в отношении селеновых изоформ фермента, чем широко используемые методы с применением органических перекисей, что позволяет более корректно судить о селензависимой глутатионпероксидазной активности.

Проведеные исследования способствуют большей детализации представлений о центральной регуляции репродуктивной функции женского организма и дают основание для суждений о значимости моноаминоксидазного компонента в системе гипотапамического звена регуляции данной функции. Полученные данные об эффекте воздействия ксенобиотика 1,2-диметилгидразина могут быть учтены при оценке влияния антропогенных экологических факторов, включающих наличие в окружающей среде соединений сходной химической природы. Результаты изучения эффекта воздействия инъекций мелатонина указывают на необходимость глубокого изучения влияния потребления данного соединения на гипоталамические механизмы контроля функции репродукции. Обнаруженный в данном исследовании эффект, выражающийся в существенном повышении активности моноаминоксидазы в преоптической области должен быть учтен при разработке клинических подходов применения^ гормона эпифиза. Выявленное протекторное действие эпиталамина на* активность моноаминоксидазы подтверждает уже известный нормализующий эффект данного препарата в отношении репродуктивной функции, что может указывать на адекватность применения эпиталамина в клинической практике для коррекции нарушений в гипоталамической регуляции работы репродуктивной системы. Обнаруженная высокодостоверная зависимость между активностями немитохондриальной моноаминоксидазы и митохондриальной глутатионпероксидазы позволяет далее рассмотреть последнюю как дополнительный параметр, отражающий потенциально возможную скорость окислительной деградации моноаминов в ткани головного мозга.

СВЯЗЬ ИССЛЕДОВАНИЙ С ПЛАНОМ НАУЧНЫХ РАБОТ ИНСТИТУТА. Диссертационное исследование проведено в соответствии с планом научно-исследовательских работ Института акушерства и гинекологии им Д. О. Отта РАМН по теме: «Экспериментальное моделирование комплексного воздействия неблагоприятных факторов внешней среды малой интенсивности на репродуктивную систему» .

СПИСОК РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ.

1.Разыграев А. В. Метод определения глутатионпероксидазной активности с использованием пероксида водорода и 5,5'-дитиобис (2-нитробензойной кислоты) // Клинико-лабораторный консилиум. — 2004. — № 4. — С. 19−22.

2.Разыграев А. В., Арупонян А. В. Спектрофотометрический метод определения моноаминоксидазной активности в микроструктурах головного мозга крыс, основанный на реакции окисления кинурамина // Вестник СПбГУ. — 2006. — Сер. 3, вып. 3. — С. 114−118.

3. Разыграев А. В., Арупонян А. В. Активность моноаминоксидазы в структурах головного мозга крыс // Нейрохимия. — 2007. — Т. 24, № 3. — С. 206−210.

4. Razygraev A.V., Arutjunyan A.V. Monoamine oxidase activity in several structures of rat brain // Neurochemical Journal. — 2007. — V. 1, № 3. — P. 204−207.

Отдельные результаты были использованы для написания статьи:

5. Разыграев А. В., Арутюнян А. В. Определение глутатионпероксидазной активности в сыворотке крови человека с использованием пероксида водорода и 5,5'-дитиобис (2-нитробензойной кислоты) // Клиническая лабораторная диагностика. — 2006. —№ 6. — С. 13−16.

СТРУКТУРА И ОБЪЕМ ДИССЕРТАЦИИ

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания методов исследования, результатов собственных исследований (в том числе обсуждение полученных результатов), заключения, выводов и списка цитируемой литературы. Диссертация изложена на 138 страницах машинописного текста, содержит 4 таблицы, иллюстрирована 32 рисунками. Библиографический указатель включает 200 наименований, в числе которых 39 отечественных и 161 иностранных источников.

ВЫВОДЫ.

1. Метод определения моноаминоксидазной активности с применением кинурамина в качестве субстрата и спектрофотометрической регистрацией прироста продукта реакции (4-гидроксихинолина) и метод определения селензависимой глутатионпероксидазной активности с использованием пероксида водорода и 5,5'-дитиобис (2-нитробензойной кислоты) оптимальны для работы с микроструктурами головного мозга.

2. Моноаминоксидазная активность сохраняет постоянный уровень в медиальной преоптической области и срединном возвышении гипоталамуса самок крыс в преовуляторный период.

3. У половозрелых самок крыс активность моноаминоксидазы повышена в медиальной преоптической области и остается относительно сниженной в срединном возвышении. Угасание репродуктивной функции сопровождается повышением активности моноаминоксидазы в срединном возвышении.

4. Внутрибрюшиное введение мелатонина повышает активность моноаминоксидазы в медиальной преоптической области, однократное введение 1,2-диметилгидразина приводит к снижению активности моноаминоксидазы, эпиталамин оказывает протекторный эффект против воздействия 1,2-диметилгидразина.

5. Глутатионпероксидазная активность отрицательно коррелирует с моноаминоксидазной активностью в ткани головного мозга крыс, что может быть использовано для оценки потенциально возможной скорости окислительного метаболизма моноаминов.

ГЛАВА 4.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Нами предпринята попытка ответить на вопрос об участии МАО в регуляции репродуктивной функции на основании полученных в настоящем исследовании данных: -об уровнях активности МАО в областях головного мозга,.

— о возрастных изменениях активности МАО в МПО и СВ,.

— об эффектах ДМГ, мелатонина и пептидных препаратов эпифиза на активность МАО in vivo,.

— о связи между активностями МАО и ГПО.

Константный уровень активности МАО в МПО, служащей основной областью концентрации тел гонадолиберинергических нейронов головного мозга крыс, а также в ольфакторном бугорке, содержащем значительное количество их перикарионов, и в срединном возвышении, где преимущественно происходит накопление гонадолиберина и его квантованное высвобождение в кровь, указывает на конститутивный характер формирования активности МАО в данных областях, не подверженной значительным изменениям на протяжении второй половины дневной фазы экспериментальных суток, когда происходит образование преовуляторного пика гонадолиберина. Это означает, что на протяжении данного периода, как в фазе проэструса, так и в фазе диэструса ферментная система находится в состоянии готовности обеспечения определенной скорости метаболизма моноаминов. Ввиду вероятной ненасыщенности МАО субстратами при высвобождении последних при синаптической передаче скорость их метаболизма будет зависеть от их поступления в поле действия МАО. Таким образом, МАО, по всей видимости, не инициирует выявленные ранее изменения в высвобождении моноаминов МПО (Mohankumar, Mohankumar, 2004), и обусловливает изменения в содежании моноаминов и формирование пика гонадолиберина посредством сохранениия необходимого конститутивного уровня активности. Необходимость сохранения детерминированного уровня активности МАО для осуществления преовуляторной гиперсекреции LHRH неоднократно подтверждена зарубежными коллегами (Lima et al., 2007, Alleva et al., 1966, Yamamoto, 1974).

Выявленное повышение активности МАО в МПО, сопровождающее достижение оптимального состояния функционирования репродуктивной системы, подтверждает представление о необходимости наличия относительно высокого уровня активности МАО в МПО для обеспечения репродуктивной цикличности. Факт повышения активности МАО в СВ, сопряженного с развитием нарушения гипоталамического контроля репродуктивной функции, подтверждает важность относительно низкого уровня активности МАО в СВ для нормального состояния гипоталамической системы, ответственной за секрецию гонадолиберина. Тенденция к отрицательной корреляции между активностями МАО в МПО и СВ, выявленная у половозрелых крыс, также находит свое объяснение в предлагаемой здесь концепции о разнонаправленных изменениях активностей данного фермента в указанных областях для достижения нормального состояния гипоталамической системы, формирующей репродуктивные циклы.

Полученные данные о влиянии ДМГ, мелатонина и пептидных препаратов эпифиза на активность МАО в МПО могут указывать на то, что уже известные ранее эффекты ДМГ, регуляторных пептидов и гормона эпифиза на репродуктивную функцию осуществляются через изменения активности МАО в МПО под действием данных соединений. Влияние исследованных соединений на активность МАО и функционирование репродуктивной системы имеют одинаковую направленность: для оптимального состояния гипоталамической системы регуляции репродуктивной функции требуется относительно высокий уровень активности МАО в МПОсоединение, обладающее антигонадотропным эффектом (ДМГ), вызывает снижение активности МАО в МПОпрепарат, обладающий прогонадотропным эффектом у половозрелых самок крыс (мелатонин, стимулирующий секрецию LHRH), повышает активность МАО в МПО. Эпиталамин, при воздействии которого частично восстанавливается репродуктивная функция у старых крыс (Khavinson, 2000), по всей видимости, оказывает стабилизирующий эффект на относительно высокий уровень МАО в МПО (что необходимо для реализации репродуктивной функции).

Установленная связь между моноаминоксидазной и глутатионпероксидазной активностями говорит о возможности использования данных об активности ГПО для суждения о потенциально возможной скорости метаболизма нейромедиаторов-моноаминов МАО-опосредованным путем. Это позволит косвенно судить о вовлеченности метаболизма моноаминов в регуляцию репродуктивной функции на уровне гипоталамических структур.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.К. Новые молекулярные критерии оценки токсического действия производных гидразина. Активные формы кислорода как ключевые соединения в механизме токсичности. // Фармак. токсикол. — 1990. — Т.53, № 1. — С.70−73.
  2. Н.А., Радыш И. В., Краюшкин С. И. // Хроноструктура репродуктивной функции. -М.: «Крук», 1998. 248с.
  3. В.Н. Молекулярные и физиологические механизмы старения. СПб.: Наука, 2003. — 468 с.
  4. В.Н., Забежинский М. А., Попович И. Г. Мелатонин угнетает канцерогенез толстой кишки, индуцируемый 1,2-диметилгидразином у крыс: эффекты и возможные механизмы // Вопросы онкологии. 2000. — Т.46,№−2. — С. 136−148.
  5. В.Н., Поздеев В. К., Дмитриевская А. Ю., Грачева Г. М., Ильин А. П., Дильман В. М. Влияние энтеротропного канцерогена 1,2-диметилгидразина на уровень биогенных аминов в гипоталамусе крыс // Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 1976. -Т. 82,№ 11. — С.1359−1361.
  6. А.В., Дубинина Е. Е., Зыбина И. И. // Методы оценки свободнорадикального окисления и антиоксидантной системы организма. СПб: ИКФ «Фолиант», 2000. С. 29−30.
  7. А.В., Керкешко Г. О., Анисимов В. Н., Степанов М. Г., Поздеев Н. В. Нарушение циркадианных ритмов биогенных аминов в гипоталамусе крыс при введении 1,2-диметилгидразина. // Вопросы онкологии. 2001. Т.47. — № 5. — С.608−615.
  8. Ю.Арутюнян А. В., Степанов М. Г., Кореневский А. В. Нарушение нейромедиаторного звена гипоталамической регуляции репродуктивной функции под влиянием нейротоксических ксенобиотиков//Нейрохимия.- 1998.-Т. 15.-№ 4.- С. 264−270.
  9. И.Арутюнян А. В., Степанов М. Г., Кореневский А. В., Прокопенко В. М., Опарина Т. И., Бурмистров С. О. Влияние экологически неблагоприятных факторов на репродуктивную систему//Вестник Рос. асс. акушеров-гинекологов. 1997. — № 4. — С.28−31.
  10. Арушанян Э. Б, Бейер Э. В. Супрахиазматические ядра гипоталамуса и организация суточного периодизма // Комаров Ф. И., Рапопорт С. И., ред. Хронобиология и хрономедицина. М.: «Триада-Х», 2000 — С. 50−64.
  11. Арушанян Э-Б. Комплексное взаимодействие супрахиазматических ядер гипоталамуса, с эпифизом и полосатым телом функционально единая система регуляциихуточных колебаний поведения // Журн. высш. нерв, деят.- 1996.- Т. 46.- № 1.- С. 15−22.
  12. В.Н. Нейроэндокринная регуляция репродуктивной системы. Пущино: ОНТИ ПНЦ РАН, 1995.-227 с.
  13. В. Н. Нейроэндокринология пола. М.: Наука, 1981.
  14. Л.В., Горкин В. З., Желязков Д. К., Китросский Н. А., Леонтьева Г. А., Северина И. С. Новый спектрофотометрический метод определения моноаминоксидазной активности в гомогенатах печени // Вопр. Мед. Хим. 1964 — Т. 10. — С.83−89.
  15. Н.Н. Моноаминоксидаза мозга мышей А/Не // Нейрохимия. 2002. Т. 19. N. 3. С. 182.186.
  16. Н.Н., Барыкина Н. Н., Колпаков В. Г. Моноаминоксидаза мозга у генетически предрасположенных к маятникообразным движениям крыс в позднем онтогенезе // Вопросы медицинской химии. 1999. N. 3.
  17. П. А. Эндокринология пола. М.: Наука, 1980.
  18. В.З. Аминооксидазы и их значение в медицине. М.: Медицина, 1981. — 335 с.
  19. Р.Ф., Горкин В. З. Определение моноаминоксидазной активности в сыворотке крови человека // Лаб. дело. 1979 — Т.9. — С.534−536.
  20. Г. О. Влияние нейротоксических соединений и мелатонина на гипоталамическую регуляцию репродуктивной системы: диссертация на соискание ученой степени канд. биол. наук.-СПб, 2002. 118 с.
  21. Г. О., Степанов М. Г., Кореневский А. В., Прокопенко В. М., Арутюнян А. В. Влияние мелатонина на гипоталамическую регуляцию репродуктивной функции крыс при хроническом воздействии ксенобиотиков // Нейрохимия 2001. — Т. 18 — No. 1 — С. 67 — 74.
  22. Л.С., Манторова Н. С., Шапиро Л. А. Исследование регуляции катехоламинами и сАМР ферментов обмена тиолов и дисульфидов // Биохимия. Т.52, Вып. 5. — С.743−749.
  23. Л.С., Кулинский В. И. Глутатионтрансферазы // Успехи современной биологии. 1989. — Т. 107. Вып. 2. — С. 192−196.
  24. Л.С., Кулинский В. И. Физиологическое значение регуляции катехоламинами, вторыми посредниками и индукторами ферментов метаболизма глутатиона // Физиологический журнал СССР им. И. М. Сеченова. 1990. — T.76/N.10. — С. 1418 — 1425.
  25. В.И., Колесниченко Л. С. Обмен глутатиона. // Успехи биол. химии. 1990. — Т. 31. -С. 157−179.
  26. , В.И., Колесниченко, Л.С. Структура, свойства, биологическая роль и регуляция глутатионпероксидазы//Успехи современной биологии- 1993.-Т.113.-Вып.1. —С. 107−122.
  27. Г. Ф. Биометрия. М. 1980. 293 с.
  28. А.Я. Молекулярно-биологические основы тканеспецифического канцерогенного действия диметилгидразина. // Эксперим. онкол. 1980. — Т.2, № 6. — С.3−7.
  29. В.Б. Элементы статистической обработки результатов, биохимического эксперимента. Л. 1990: 130 с.
  30. Моин В: М. Простой и специфический метод определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах. // Лабораторное дело. 1986. — № 12. — С. 724−727.
  31. Т.А., Медведев А. Е. Исследование цитозольной моноаминоксидазы печени крысы // Вопросы медицинской химии 2000 — Т.46 — N. 1 — С.48−51.
  32. Д., Теппермен X. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. М.: Мир, 1989.-653 с.
  33. Alleva, J. J., Overpeck, J. G., Umberger, E. J. Effect of tranylcypromine and iproniazid on brain amine levels and ovulation in the golden hamster // Life Sci. 1966. V. 5. N. 17. P. 1557−1561.
  34. Anisimov V.N. Melatonin and colon carcinogenesis // In: Bartsch, C., Bartsch, H., Blask, D.E. et al. (eds.) The pineal gland and cancer. Neuroimmunoendocrine mechanisms in malignancy. Berlin: Springer, 2001. P. 240−258.
  35. Andersen H.R., Nielsen J., Nielsen P., Grandjean P. Antioxidative enzyme activities in humanerythrocytes / Clinical Chemistry. 1997. — V. 43. — P. 562−568.
  36. Arai, Y., Kinemuchi, H. Differences between monoamine oxidase concentrations in striatum and forebrain of aged and young rats // Journal of Neural Transmission. 1988. V. 72. N. 2. P. 99−105.
  37. Bhaskaran D., Radha E. Circadian variations in the monoamine levels and monoamine oxidase activity in different regions of the rat brain as a function of age. // Exp. Gerontol. 1984. — V.19, № 3. -P.153−170.
  38. Bhaskaran, D., Radha, E. Monoamine levels and monoamine oxidase activity in different regions of rat brain as a function of age // Mech. Ageing Dev. 1983. — Vol. 23, №. 2. — P. 151−160.
  39. Binda, C., Newton-Vinson, P., Hubalek, F., Edmondson, D. E., Mattevi, A. Structure of Human Monoamine Oxidase В linked to a membrane lipid double layer // Nature Structural Biology. 2002. V.9. P.22−26.
  40. Brigelius-Flohe, R. Tissue-specific functions of individual glutathione peroxidases // Free Rad. Biol. Med. 1999.-Vol.27.-P.951−965.
  41. Brown R.M., Kehr W., Carlsson A. Functional and biochemical aspects of catecholamines metabolism in brain under hypoxia // Brain Res. 1975. — Vol. 85. — P.491−509.
  42. Cahill A.L., Ehret C.F. Circadian variations in the activity of tyrosine hydroxylase, tyrosine aminotransferase, and tryptophan hydroxylase: relationship to catecholamine metabolism. // Neurochem.- 1981. Vol.37,№ 5.-P. 1109−1115.
  43. Carmagnol F, Sinet PM, Jerome H. Selenium-dependent and non-selenium-dependent glutathione peroxidases in human tissue extracts // Biochim Biophys Acta. 1983. — V.759 N. l-2. — P. 49−57.
  44. Cassone V.M., Warren W.S., Brooks D.S., Lu J. Melatonin, the pineal gland, and circadian rhythms. // J. Biol. Rhythms. 1993. — Vol.8. (SuppI). — P. S73−81.
  45. Cassone V.M. Melatonin’s role in vertebrate circadian rhythms. // Chronobiol. Int. 1998. — Vol.15, № 5. — P.457−457.
  46. Chambers I, Frampton J, Goldfarb P, Affara N, McBain W, Harrison PR. The structure of the mouse glutathione peroxidase gene: the selenocysteine in the active site is encoded by the 'termination' codon, TGA. // EMBO J. 1986. — V.5 N.6. — P. 1221−1227.
  47. Ghang C.-P., PanS.-P, Lin M.-T. A nitric. oxide dopamine Iink. pathway in organum vasculosum- laminae terminalis of rat brain exerts control over blood pressure // British Journal of Pharmacology. 2001. V. 132: P. 1524−1530.
  48. Chevillard C., Barden N., Saavedra J.M. Twenty-four hour rhythm in monoamine oxidase activity in specific areas of the rat brain stem. // Brain Res. 1981. — Vol.223, № 1. — P.205−209.
  49. Chiba A., Akema Т., Toyoda J. Effects of pinealectomy and melatonin on the timing of the proestrous luteinizing hormone surge in the rat. // Neuroendocrinology. 1994. — Vol.59, № 2. — P.163−168.
  50. Choudhary G., Hansen H. Human health perspective on environmental exposure to hydrazines: a review. // Chemosphere. 1998. — Vol.37, № 5. — P.801−843.
  51. Christ W., Rakow D., Fernandes M., Magour S. A simple and sensitive spectrophotometric determination of monoamine oxidase activity // Z. Klin. Chem. Klin. Biochem. 1973 — V.11,N.9 -367−370.
  52. A.S., Miller J.H. |i-l Opioid receptor stimulation decreases body temperature in conscious, unstrained neonatal rats.// Experimental Biology and Medicine. 2002. — V. 227. — P. 377 -381.
  53. Colombo J.A., Baldwin D.M., Sawyer C.H. Timing of the estrogen-induced release of LH in ovariectomized rats under an altered lighting schedule. // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1974. — V.145, № 3.-P.l 125−1127.
  54. Cohen G., Farooqui, R., Kesler, N. Parkinson disease: a new link between monoamine oxidase and mitochondrial electron flow // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997 -V.94 — P. 4890−4894.
  55. Crumeyrolle-Arias, M., Medvedev, A., Cardona, A., Barritault, D., Glover, V. In situ imaging if specific binding of 3H. isatin in rat brain // Journal of Neurochemistry 2003 — V.84. — P.618−620.
  56. Curzon G. The turnover of 5-hydroxytryptamine // Pycock C.J., Taberner P.V. (Eds.) Central neurotransmitter turnover. Baltimore: Univ. Park Press, 1981. — P.59−80.
  57. Daiguji M., Mikuni M., Okada F., Yamashita I. The diurnal variations of dopamine-beta-hydroxylase activity in the hypothalamus and locus coeruleus of the rat. // Brain Res. 1978. — Vol.155.- P.409−412.
  58. Davies MH, Bozigian HP, Merrick BA, Birt DF, Schnell RC. Circadian variations in glutathione-S-transferase and glutathione peroxidase activities in the mouse // Toxicol. Lett. 1983. — V.19. N. l-2. -P. 23−27.
  59. Deitrich R.A., Erwin V.G. A convenient spectrophotometric assay for monoamine oxidase // Anal. Biochem. 1969 — V.30,N.3 — P.395−402.
  60. Diaz E., Fernandez C., Castrillon P.O., Esquifino A.I., Marin В., Diaz Lopez B. Effect of exogenous melatonin on neuroendocrine-reproductive function of middle-aged female rats. // J. Reprod. Fertil. -1999. Vol.117, № 2. — P.331−337.
  61. DonneIly, C., Murphy, D.L. Substrate- and inhibitor-related characteristics of human platelet monoamine oxidase // Biochem. Pharm. 1977 -N.26. — P.853−858.
  62. Everett J. W., Sawyer С. H. A 24- hour periodicity in the «LH- release apparatus» of female rat, disclosed by barbiturate sedation. // Endocrinology. 1950. — V.47. — P. 198- 218.
  63. Finley J., Kincaid R. Effect of sex and time of sampling on selenium and glutathione peroxidase activity in tissues of mature rats // Biol. Trace Elem. Res. 1991. — V.29. N.3. — P. 181−191.
  64. Flatmark T. Catecholamine biosynthesis and physiological regulation in neuroendocrine cells. // Acta. Physiol. Scand. 2000. — Vol.168, № 1. — P. l-17.
  65. Gauer F., Masson-Pevet M., Stehle J., Pevet P. Daily variations in melatonin receptor density of rat pars tuberalis and suprachiasmatic nuclei are distinctly regulated. // Brain Res. 1994. — Vol.641, №.1.- P.92−98.
  66. Gillette M.U., McArthur A.J. Circadian actions of melatonin at the suprachiasmatic nucleus // Behav. Brain Res. 1996.- Vol.73. — P. 135−139.
  67. Glover, V., Halket, J.M., Watkins, P.J., Clow, A., Goodwin, B.L., Sandier, M. Isatin: identity with purified endogenous monoamine oxidase inhibitor tribulin // Journal of Neurochemistry. 1988. — V.51. -P.656.
  68. Gouaze V., Mirault M.-E., Carpentier S., Salvayre R., Levade Т., Andrieu-Abadie N. Glutathione Peroxidase-1 Overexpression Prevents Ceramide Production and Partially Inhibits Apoptosis in
  69. Grantyn, V.A., Ivanova, G.V. Changes in monoamine concentration and monoamine oxidase activity in the arcuate nucleus of the hypothalamus during the estrous cycle // Bull. Exp. Biol. Med. 1974. -V.78, N.3. — P.1066−1068.
  70. Gunnet J.W., Lookingland K.J., Moor K.E. Effects of gonadal steroids on tuberoinfiindibular and tuberohypophyseal dopaminergic neural activity in male and female rats // Proc. Soc. Biol. Med. -1986.-Vol. 183. № 1. — P.48−53.
  71. НП1, M.F.- Pawan, K. Singal, PhD. Right and Left Myocardial Antioxidant Responses During Heart Failure Subsequent to Myocardial Infarction // Circulation. 1997. — V.96. — P. 2414−2420.
  72. Hoffmann J.C. Effects of light deprivation on the rat estrous cycle. // Neuroendocrinology. 1967. -Vol.2.-P. 1−10.
  73. Horvath T.L., Cela V., van der Веек E.M. Gender-specific apposition between vasoactive intestinal peptide-containing axons and gonadotrophin-releasing hormone-producing neurons in the rat. // Brain Res. 1998. — Vol. 795. -P.277−281.
  74. Horvath T.L. Suprachiasmatic efferents avoid phenestrated capillaries but innervate neuroendocrine cells, including those producing dopamine. // Endocrinology. 1997. — Vol.138, № 3. — P. 1312−1320
  75. Jamali K.A., Tramu G. Control of rat hypothalamic pro-opiomelanocortin neurons by a circadian clock that is entrained by the daily light-off signal. // Neuroscience. 1999. — Vol.93, № 3- - P.1051−1061.
  76. Jameson R., B. Carlson, Mi Butz, K. Esser, D. Hatfield A. M. Diamond. Selenium Influences the Turnover of Selenocysteine tRNASer. Sec in Chinese Hamster Ovary Cells // J. Nutr. 2002. — V.132. -P. 1830−1835.
  77. Jurjens, H., Pratt, J., Woldring, M. Radioimmunoassay of plasma estradiol without extraction and chromatography // J. Clin. Endocrinology and Metabolism. 1975. — V.40. — P.19−25.
  78. Kalra S.P., Horvath Т., Naftolin F., Xu В., Pu S., Kalra P. S. The interactive language of the hypothalamus for the gonadotropin releasing hormone (GNRH) system. // J Neuroendocrinol. 1997. -Vol.9, № 8. — P.569−576.
  79. Kalra S.P. Mandatory neuropeptide-steroid signaling for the preovulatory luteinizing hormone-releasing hormone discharge. // Endocr. Rev. 1993. — Vol.14, № 5. — P.507−538.
  80. Kamberi' I.A., Kobayashi Y. Monoamine oxidase activity in the hypothalamus and various other brain areas and in some endocrine glands of the rat during the estrous cycle // J. Neurochem. 1970. V. 17. P. 261−268.
  81. Karbownik M., Reiter R.J., Garcia J.J., Tan D.-X. Melatonin reduces phenylhydrazine-induced oxidative damage to cellular membranes: evidence for the involvement of iron. // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2000. — V.32 — P. 1045−1054.
  82. Kawakami M., Arita J., Yoshioka E. Loss of estrogen-induced daily surges of prolactin and gonadotropins by suprachiasmatic nucleus lesions in ovariectomized rats. // Endocrinology. 1980. -Vol. 106, № 4. — P. 1087−1092.
  83. Kennaway D.J. The role of circadian rhythmicity in reproduction // Human Reproduction Update. -2005. V. 11. N. 1. — P. 91−101.
  84. Khan, I. A., Thomas, P. Disruption of neuroendocrine control of luteinizing hormone secretion by Arochlor 1254 involves inhibition of hypothalamic tryptophan hydroxilase activity // Biology of Reproduction. 2001. V. 64. P. 955 964.
  85. Khavinson V. Kh. Peptides and ageing // Endocrinology Letters. 2000. — Vol. 23. Special Issue.
  86. Knappen M., Zusterzeel P., Peters W., Steegers E. Glutathione and glutathione-related enzymes in reproduction. A review./ European J. Of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology. 1999. — V. 82.-P. 171−184.
  87. K6chli H., Von Wartburg J.P. A sensitive photometric assay for monoamine oxidase // Anal. Biochem. 1978 — V.84.N.1 — P. 127−135.
  88. Krajl M. A rapid microfluorimetric determination of monoamine oxidase // Biochem. Pharmacol. -1965 V.14,N.l 1 — P.1684−1686.
  89. Kroon, M.C., Veldstra, H. Multiple forms of rat brain mitochondrial monoamine oxidase. Subcellular localization. FEBS Letters 1972-N. 24.-P. 173−176.
  90. Lang U., Rivest R.W., Schlaepfer L.V., Bradtke J.C., Aubert M.L., Sizonenko P.C. Diurnal rhythm of melatonin action on sexual maturation of male rats. // Neuroendocrinology. 1984. — Vol.38, № 4. -P.261−268.
  91. Lapenna D, De Giola S, Mezzetti A, Porreca E, Ciofani G, Marzio L, Capani F, Di Ilio C, Cuccurulo F. Circadian variations in antioxidant defences and lipid peroxidation in the rat heart // Free Radic. Res. Commun. -1992. V.17. N.3. — P. 187−194.
  92. Lee S.S., LeeJ.J., CheongMJ., Kim Y.H., Kim Y., Yun Y.P., Lee C.K., LeeM.K. Inhibitory effects of ethaverine, a homologue of papaverine, on monoamine oxidase activity in mouse brain // Biol. Pharm. Bull. 2001. — V. 24. N. 7. — P. 838−840.
  93. Levitt M., Spector S., Sjordsma A. et al. Elucidation of the rate-limitting step in norepinephrine biosynthesis in perfused guinea pig heart // J. Pharmacol. 1965. — Vol. 148. — № 1.
  94. Levitt P., Pintar, J.E., Breakefield, X.O. Immunocytochemical demonstration of monoamine oxidase В in’brain astrocytes and serotonergic neurons // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 19 821 — V.79. -P.6385−6389.
  95. Li S., Givalois L., Pelletier G. Effects of aging and melatonin administration on gonadotropin-releasing hormones (GnRH) gene expression in the male and female rat.// Peptides.- 1997.- VI8.-P. 1023−1028.
  96. Li X., Borjigin J., Snyder S.H. Molecular rhythms in the pineal gland. // Curr Opin Neurobiol. -1998. Vol.8, № 5. — P.648−651.
  97. Lippmann, W. Relationship between hypothalamic norepinephrine and serotonin and gonadotrophin secretion in the hamster//Nature. 1968. V. 218. P. 173−174.
  98. Lovvry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenolreagent // J. Biol. Chem. 1951. — Vol. 193. — № 2. — P.265−275.
  99. Maker, H.S., Weiss, C., Silides, D.J., Cohen, G. Coupling of dopamine oxidation (monoamine oxidase activity) to glutathione oxidation via the generation of hydrogen peroxide in rat brain homogenates // J. Neurochem. 1981. — V.36, N.2. — P.589−593.
  100. Manesh V.B., Brann D.W. Regulation of the preovulatory gonadotropin surge by endogenous steroids. // Steroids. 1998. — Vol. 63. — P.616−629.
  101. Marcondes, F. K., Bianchi, F. J. Tanno, A. P. Determination of the estrous cycle phases of rats: some helpful considerations// Brazilian Journal of Biology. 2002. — V.62. N.4a. — P.609−614.
  102. Maser R., Magenheimer В., Calvet J. Mouse plasma glutathione peroxidase // J. Biol. Chem. -1994. V.269. N.43. — P. 27 066−27 073.
  103. McCormack C.E., Sridaran R. Timing of ovulation in rats during exposure to continuous light: evidence for a circadian rhythm of luteinizing hormone secretion. // J. Endocrinol. 1978. — Vol.76, № 1.-P.135−144.
  104. Medvedev, A.E., Glover, V. Tribulin and endogenous MAO-inhibitory regulation in vivo // Neurotoxicology. 2004. — V.25. — P. 185−192.
  105. Meites, J. Remembrance: neuroendocrinology and aging. A perspective // Endocrinology. 1992. — Vol. 130. — No.6 — P.3107−3108.
  106. Merchenthaler, I., Gores, G., Setalo, P., Petrusz, P. Gonadotropin-releasing hormone (GnRH) neurons and pathways in the rat brain // Cell and tissue research 1984 — V.237 -N.l — P. 15−29.
  107. Mohankumar P. S., Thyagarajan S., Quadri S.K. Cyclic and age-related changes in norepinephrine concentrations in the medial preoptic area and arcuate nucleus. // Brain Res. Bull. 1995. — Vol.38, № 6. -P.561−564.
  108. Mohankumar P. S., Thyagarajan S., Quadri S.K. Cyclic changes in the release of norepinephrine and dopamine in the medial basal hypothalamus // Brain Res. 1995. — V.689. — P. 122−128.
  109. Mohankumar S.M.J., Mohankumar P. S. Aging alters norepinephrine release in the madial preoptic area in response to steroid priming in ovariectomized rats // Brain Research. 2004. V. 1023. P.24−30.
  110. Moloney S.J., Prough R.A. Biochemical toxicology of hydrazines. // Hodgeson E., Bend J.R., Philpot R.M. (Eds.). Reviews Biochemical Toxicology. Vol. 5. New York: Elsevier, 1983. — P.313−346.
  111. Morin L.P., Fitzgerald K.M., Rusak В., Zucker I. Circadian organization and neural mediation of hamster reproductive rhythms. // Psychoneuroendocrinology. 1977. — Vol.2, № 1. — P.73−98.
  112. Naoi, M., Nagatsu, T. Inhibition of type A monoamine oxidase by methylquinolines and structurally related compounds // J. Neurochem. 1988. — V.50. — P. 1105−1110.
  113. Nappi R.E., Rivest S. Effect of immune and metabolic challenges on the luteinizing hormone-releasing hormone neuronal system in cycling female rats: an evaluation at the transcriptional level // Endocrinology. 1997. — V.138. N.4. — P.1374−1384.
  114. Journal of Endocrinology. 2003. — V.177. — P.3−6.
  115. Palm I.F., van der Beek E.M., Wiegant V.M., Buijs R.M., Kaisbeek A. The stimulatory effect of vasopressin on the luteinizing hormone surge in ovariectomized, estradiol-treated rats is time-dependent. // Brain Res. 2001. — Vol.901, № 1−2. — P. 109−116.
  116. Palm I.F., van der Beek E.M., Wiegant V.M., Buijs R.M., Kaisbeek A. Vasopressin induces a luteinizing hormone surge in ovariectomized, estradiol-treated rats with lesions of the suprachiasmatic nucleus. //Neuroscience. 1999. — Vol.93, № 2. — P.659−666.
  117. Pang S.F., Li L., Ayre E.A. et al. Neuroendocrinology of melatonin in reproduction: recent developments. //J. Chem. Neuroanat. 1998. — Vol.14, № 3−4. — P. 157−166.
  118. Paxinos, G., Watson, C. The rat brain in stereotaxic coordinates. Academic Press, San Diego. 1982.
  119. Ramos Martinez J. I., Launay J.-M., Dreux C. A sensitive fluorimetric microassay for determination of glutathione peroxidase activity. Application to human blood platelets. // Anal. Biochem. 1979. V.98. P. 154−159.
  120. Rasmussen D.D. Diurnal modulation of rat hypothalamic gonadotropin-releasing hormone release by melatonin in vitro. // J. Endocrinol. Invest. 1993. — Vol.16, № 1. — P. 1−7.
  121. Rasmussen D.D. The interaction between mediobasohypothalamic dopaminergic and endorphinergic neuronal systems as a key regulator of reproduction: an hypothesis. // J. Endocrinol. Invest. 1991. — Vol.14, № 4. — P.323−352.
  122. Redman J.R. Circadian entrainment and phase shifting in mammals with melatonin. // J. Biol. Rhythms. 1997. — Vol.12, № 6. — P.581−587.
  123. Reiter R.J. Pineal function during aging: attenuation of the melatonin rhythm and its neurobiological consequences. // Acta Neurobiol. Exp. 1994. — Vol.54 (Suppl.). — P.31−39.
  124. Ren, В., Huang W., Akesson, B. & Ladenstein R. (1997) The Crystal Structure of Seleno-Glutathione Peroxidase from Human Plasma at 2.9 A Resolution // J. Mol. Biol. V.268. — P. 869−885.
  125. Reuss S. Components and connections of the circadian timing system in animals // Cell Tissue Res. 1996. — Vol.285. — P.353−378.
  126. Rivest, S., Rivier, C. The role of corticotropin-releasing factor and interleukin-1 in the regulation of neurons controlling reproductive functions // Endocrine Reviews. 1995. V. 16. N. 2. P. 177−199.
  127. Simerly R.B., Chang C., Muramatsu M., Swanson L.W. Distribution of androgen and estrogen receptor mRNA-containing cells in the rat brain: an in situ hybridization study. // J. Сотр. Neurol. -1990. Vol.294, № 1. — P.76−95.
  128. Simpkins, J.W., Mueller, G.P., Huang H.H., Meites, J. Evidence for depressed catecholamine and enhanced serotonin metabolism in aging male rats: possible relation to gonadotropin secretion // Endocrinology 1977. — Vol. 100 — P. 1672−1678.
  129. Singh A., Shichi H. A novel glutathione peroxidase in bovine eye // J. Biol. Chem.- 1992. V.123. N.40.-P. 26 171−26 178.
  130. Slotten H.A., Pitrovsky В., Pevet P. Influence of the mode of daily melatonin administration onentrainment of rat circadian rhythms. // J. Biol. Rhythm. 1999. — Vol.14, № 5. — P. 347−353.
  131. Snyder S.H., Hendley E.D. A simple and sensitive fluorescence assay for monoamine oxidase and diamine oxidase // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1968 — V. 163 — P.386−392.
  132. Suzuki O., Noguchi E., Yagi K. A simple fluorometric assay for type В monoamine oxidase activity in rat tissues//J. Biochem. 1976-V.79,N.6-P. 1297−1299.
  133. Tabor C.W., Tabor H., Rosenthal S.M. Purification of amine oxidase from beef plasma // J. Biol. Chem. 1954 — V.208,N.2 — 645−661.
  134. Takahashi H., Takahara S. A sensitive fluorometric assay for monamine oxidase based on the formation of 4,6-quinolinediol from 5-hydroxykynurenamine // J. Biochem. 1968 -V.64,N.l -P.7−11.
  135. Terasawa E. Davis GA. The LHRH neuronal system in female rats: relation to the medial preoptic nucleus. // Endocrinol. Jpn. 1983. — Vol.30, № 3. — P.405−417.
  136. Thyagarajan S., Mohankumar P. S., Quadri S.K. Cyclic changes in the release of norepinephrine and dopamine in the medial basal hypothalamus: effects of aging // Brain Research. 1995. V.689. P. 122−128.
  137. Thyagarajan, S., Meites, J., Quadri, S. K. Deprenyl reinitiates estrous cycles, reduces serum prolactin, and decreases the incidence of mammary and pituitary tumors in old acyclic rats // Endocrinology. 1995. V.136. N.3. P. 1103−1110.
  138. Tipton K.F. A sensitive fluorometric assay for monoamine oxidase // Anal. Biochem. 1969 V.28,N.l-P.318−325.
  139. Toth B. A review of the natural occurrence, synthetic production and use of carcinogenic hydrazines and related chemicals. // In Vivo. 2000. — Vol.14, № 2. — P.299−319.
  140. Toth B. Toxicities of hydrazines: a review. // In Vivo. 1988. — Vol.2, № 3−4. — P.209−242.
  141. Trentini G.P., Genazzani A.R., Criscuolo M. et al. Melatonin treatment delays reproductive aging of female rat via the opiatergic system. //Neuroendocrinology. 1992. — Vol.56, № 3. — P.364−370.
  142. Ucar, G. Semicarbazide-sensitive amine oxidase: biochemical and physiological properties // Turk. J. Biochem. 2004. — V.29. — N.3. — P.247−254.
  143. Van der Веек E.M. Circadian control of reproduction in the female rat. // Prog. Brain Res. 1996. -Vol. 111.- P.295−320.
  144. Vanecek J., Illnerova H. Effect of short and long photoperiods on pineal N-acetyltransferase rhythm and on growth of testes and brown adipose tissue in developing rats. // Neuroendocrinology. -1985. Vol.41, № 3.-P.186−191.
  145. Vanecek J. Cellular mechanisms of melatonin action. // Physiol. Rev.- 1998.- Vol. 78.- P. 687−721.
  146. Vera J. C. Measurement of microgram quantities of protein by a generally applicable turbidimetric procedure//Analyt. Biochem. 1988. Vol.174. P.187- 196.
  147. Veiyovkina I.V., Samed M.M., Gorkin V.Z. Mitochondrial monoamine oxidase of rat liver: reversible qualitative alterations in catalytic properties // Biochim. Biophys. Acta. 1972 — V.258,N.l — P.56−70.
  148. Von Harsdorf, R. M. D., Pei-Pheng Li, PfiT"" D., Rainer Dietz, M. D. Signaling pathways in reactive oxygen species-induced cardiomyocyte apoptosis // Circulation. 1999. — V. 99. — P. 2934 — 2941.
  149. Walker R.F. Melatonin: serotonin interaction during termination of the LH surge in rats. // Prog. Clin. Biol. Res. 1982. — Vol.92. — P. 167−176.
  150. Warren W.S., Hodges D.B., Cassone V.M. Pinealectomized rat entrain and phase-shift to melatonin injections in dose-dependent manner. // J. Biol. Rhythms. 1993. Vol. 8. — P. 233−245.
  151. Weetman D.F., Sweetman A.J. Realistic estimations of kinetic constants for the oxidation of naturally occurring monoamines by monoamine oxidase // Anal Biochem. 1971 — V.41,N.2 — P.517−521.
  152. Weissbach, H., Smith, E., Daly, J. W., Witkop, В., Udenfriend, S. A rapid spectrophotometric assay of monoamine oxidase based on the rate of disappearance of kynuramine // J. Biol. Chem. 1960. Vol. 235, NAP .1160−1163.
  153. Wendel A. Glutathione peroxidase // Methods in enzymology. -1981. V. 77. — P. 325−332.
  154. Willoughby, J., Glover, V., Sandler, M. Histochemical localisation of monoamine oxidase A and В in rat brain // Journal of Neural Transmission. 1988. V. 74. N. 1. P. 29−42.
  155. Witkin J.W., Paden C.M., Silverman A.J. The luteinizing hormone-releasing hormone (LHRH) systems in the rat brain //Neuroendocrinology. 1982. — V.35. N.6. — P.429−438.
  156. Wuttke W., Jarry H., Feleder C., Moguilevsky J., Leonhardt S., Seong J.Y., Kim K. The neurochemistry of the GnRH pulse generator. // Acta Neurobiol. Exp. 1996. — Vol.56, № 3. — P.707−713.
  157. Yamamoto, S., Satoh, Т., Saito, R. Blockade of spontaneous ovulation by isocarboxazid (MAO-inhibitor) in rats // Endocrinol Jpn. 1974. V. 21. N. 1. P. 9−12.
  158. Ying W., Sh.-K. Han, J. W. Miller, R. A. Swanson. Acidosis Potentiates Oxidative Neuronal Death by Multiple Mechanisms // Journal of Neurochemistry. 1999. — V.73. No.4. — P.1549−1556.
  159. , M. В. H. Variation in monoamine oxidase activity in rat brain crude mitochondrial fractions prepared by rate zonal centrifugation // Journal of Neural Transmission. 1976. V. 38. N. 1. P. 15−29.
  160. Young M.W., Kay S.A. Time zones: a comparative genetics of circadian clocks. // Nat. Rev. Genet. 2001. — Vol.2, № 9. — P.702−715.
  161. Yu, A. Studies on the pargyline-binding site of different types of monoamine oxidase // Can. J. Biochem.-1981 -N. 59.- P.30−37.
  162. Zeller V., Ramachander G., Zeller E.A. Amine oxidases. XXI. A rapid method for the determination of the activity of monoamine oxidase and monoamine oxidase inhibitors // J. Med. Chem. 1965 — V.8, V.4 — P.440−443.
  163. Zisapel N., Egozi Y., Laudon M. Circadian variations in the inhibition of dopamine release from adult and newborn rat hypothalamus by melatonin. // Neuroendocrinology. 1985. — Vol.40, № 2. -P. 102−108.
  164. Zolovick A.J., Pearse, R., Boehlke, K.W., Eleftheriou, B.E. Monoamine oxidase activity in various parts of the rat brain during estrous cycle // Science 1966. -Vol. 154. — N.3749. — P.649.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!