Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Генетическая гетерогенность популяций кур, определяемая ДНК-фингерпринтингом и RAPD-анализом

Диссертация: Генетическая гетерогенность популяций кур, определяемая ДНК-фингерпринтингом и RAPD-анализом
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Домашняя курица давно является привлекательным генетическим объектом, однако организация генома кур исследована пока недостаточно. Особенно следует отметить, что практически отсутствуют сведения о генетических особенностях малочисленных пород и экспериментальных популяций. Такая ситуация зачастую приводит к тому, что генетическое разнообразие в этих популяциях оказывается далеко не оптимальным… Читать ещё >

Содержание

  • ВВЕДЕНИЕ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Некоторые особенности структуры ДНК животных и птиц
    • 1. 2. Полиморфные ДНК-маркеры
      • 1. 2. 1. Полиморфизм длин рестриктныъх фрагментов
      • 1. 2. 2. Мини — и микросателлиты. ДНК-фингерпринтинг
      • 1. 2. 3. Зонды, используемые в ДНК-фингерпринтинге животных и птиц
      • 1. 2. 4. ДНК-фингерпринтинг в изучении популяций
    • 1. 3. Полимеразная цепная реакция со случайными праймерами (RAPD-PCR)
      • 1. 3. 1. Методические особенности RAPD-PCR
      • 1. 3. 2. Использование RAPD-PCR для изучения популяций животных и птиц
    • 1. 4. Другие полиморфные маркеры
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Объект исследования
    • 4. 2. 2. Выделение ДНК
    • 2. 3. ДНК-фингерпринтинг
      • 2. 3. 1. Рестрикция образцов ДНК
      • 2. 3. 2. Электрофорез гидролизованных фрагментов ДНК
      • 2. 3. 3. Перенос ДНК с агарозного геля на фильтр
      • 2. 3. 4. Прегибридизация и гибридизация ДНК
      • 2. 3. 5. Детекция дезоксигенина на фильтрах
    • 2. 4. Полимеразная цепная реакция со случайными прайм ерами
    • 2. 5. Обработка результатов исследования
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Анализ полиморфизма ДНК у различных пород кур с помощью случайных праймеров
    • 3. 2. Анализ геномного полиморфизма в линиях кур экспериментальной популяции Русская белоснежная с помощью случайных праймеров
    • 3. 3. Анализ полиморфизма ДНК кур на основе использования фингерпринтинга. ф
    • 3. 4. Анализ результатов переноса амплифицированных ДНКфрагментов на фильтр
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ
  • ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ

Генетическая гетерогенность популяций кур, определяемая ДНК-фингерпринтингом и RAPD-анализом (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Домашняя курица давно является привлекательным генетическим объектом, однако организация генома кур исследована пока недостаточно. Особенно следует отметить, что практически отсутствуют сведения о генетических особенностях малочисленных пород и экспериментальных популяций. Такая ситуация зачастую приводит к тому, что генетическое разнообразие в этих популяциях оказывается далеко не оптимальным. Слишком низкая вариабельность может вызвать повышение коэффициента инбридинга, вследствие чего возникает инбредная депрессия. Высокий уровень генетического разнообразия в популяции может привести к потере уникальных свойств или признаков, характерных для этой популяции. Селекция в таких группах птицы не дает ожидаемого эффекта. Поэтому контроль генетического разнообразия является существенным фактором в селекции.

В значительной мере решить проблему изучения генома домашней курицы позволяют методы, основанные на анализе полиморфизма ДНК. К ним, в частности, относятся полимеразная цепная реакция со случайными праймерами и мультилокусный ДНК-фингерпринтинг. Совместное использование этих методов особенно перспективно, поскольку позволяет сочетать их достоинства и сводить к минимуму недостатки.

Цель и задачи исследований. Основной целью нашей работы является оценка генетического разнообразия в породах и экспериментальных популяциях кур с помощью полиморфных ДНК-маркеров.

В конкретные задачи работы входило:

• провести подбор оптимальных праймеров, способных выявлять при помощи полимеразной цепной реакции (RAPD-PCR) различия по полиморфизму между породами и экспериментальными популяциями кур;

• определить возможность использования RAPD-PCR для обнаружения различий между линиями кур;

• выявить возможности молекулярного зонда (ГТГ)5 для обнаружения маркерных рестрикционных фрагментов ДНК у кур отдельных пород и экспериментальных популяций;

• сравнить значения основных генетических параметров, полученные с помощью RAPD-PCR и с помощью фингерпринтинга;

• определить наличие (ГТГ) — повторов в структуре ДНК-фрагментов, синтезирующихся в ходе RAPD-PCR.

Научная новизна. Впервые с помощью полимеразной цепной реакции со случайными праймерами обнаружены последовательности ДНК, характерные для кур, подвергшихся селекции к пониженным температурам и неоплазмам.

Проведен сравнительный анализ генетических параметров, рассчитанных на основе ДНК-фингерпринтинга и RAPD-PCR в ряде пород и экспериментальных популяциях кур. Показан высокий уровень сходства между курами популяции Русская белоснежная и курами породы Белый леггорн (BS=0,91), а так же между курами экспериментальной популяции Русская белоснежная и курами породы Русская белая (BS=0,92).

Показано, что в ходе полимеразной цепной реакции со случайными праймерами амплифицируются нуютеотидные повторы (ГТГ)5.

Сравнительный анализ генетических параметров, рассчитанных на основе использования ДНК-фингерпринтинга и RAPD-PCR, в ряде пород и экспериментальных популяциях кур показал их полное совпадение. Отмечено существенное повышение достоверности показателей при одновременном использовании двух методов.

Теоретическая и практическая значимость работы. Показано, что в геноме кур могут быть выявлены последовательности ДНК, характерные для популяций, подвергшихся направленному отбору. Результаты исследований свидетельствуют об эффективности использования RAPD-PCR анализа для поиска маркерных нуклеотидных последовательностей для пород и отдельных популяций птиц. Совместное использование RAPD-PCR и ДНК-фингерпринтинга можно рекомендовать для контроля над генетическими процессами в популяциях малочисленных пород, а так же в популяциях, селектируемых на определенные признаки.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы представлены в материалах 3-ей Международной конференции «Молекулярно-генетические маркеры животных» (Киев, 1999), 2-ой Международной научной конференции «Биотехнология сельскохозяйственных животных» (Подольск, 2002), а так же докладывались и получили положительную оценку на аспирантских сессиях и отчетах лаборатории.

Положения, выносимые на защиту: возможность и степень обнаружения различий между породами и популяциями кур, выявленные с помощью RAPD-PCRразличия между линиями кур, выявленные с помощью RAPD-PCR, сопоставление основных генетических параметров, рассчитанных на основе RAPD-PCR и методом ДНК-фингерпринтингаособенности структуры фрагментов ДНК, получаемых в ходе нолимеразной цепной реакции со случайными праймерами.

ВЫВОДЫ.

1. При помощи RAPD-анализа у кур экспериментальной популяции Русская белоснежная (порода Русская белая), селектируемой в нескольких поколениях на резистентность к низким температурам и неоплазмам, обнаружен маркерный фрагмент ДНК размером 950 пн. Отмечена разница в частотах встречаемости ряда фрагментов ДНК у кур 10 и 16 линий этой популяции, различающихся по селекционируемым признакам. Наблюдается так же низкий коэффициент сходства между этими линиями (BS=0,86).

2. Методом ДНК-фингерпринтинга выявлен маркерный фрагмент ДНК размером 24 000 пн у кур экспериментальной популяции «Аврора», селектируемой в нескольких поколениях на высокий уровень потенциальных резервов надпочечников.

3. Методом RAPD-PCR показан высокий уровень сходства между курами популяции Русская белоснежная и курами породы Белый леггорн (BS=0,91), а так же между курами экспериментальной популяции Русская белоснежная и курами породы Русская белая (BS=0,92).

4. Куры Андалузской голубой породы и экспериментальной популяции «Аврора» по данным RAPD-анализа генетически наиболее удалены друг от друга (BS=0,82), несмотря на то, что обладают схожей голубой окраской оперения.

5. Наиболее высокое внутрипопуляционное генетическое разнообразие, рассчитанное по данным RAPD-анализа, установлено у кур породы Полосатый плимутрок (HR=0,122). Наименьшее геннетическое разнообразие отмечено у кур экспериментальной популяции Русская белоснежная (HR=0,050).

6. Большинство фрагментов ДНК, амплифицирующихся в ходе RAPD-PCR, содержат повторяющийся элемент (ГТГ).

7. Основные генетические параметры, рассчитанные на основе RAPD-анализа, подтверждают результаты, получаемые с помощью геномного фингерпринтинга. Поэтому особенно перспективным представляется совместное использование двух этих методов.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.

Рекомендуется использовать технологию ДНК-фингерпринтинга в сочетании с RAPD-анализом в программах по разведению и сохранению пород кур. С помощью этих методов можно следить за генетическим разнообразием в популяциях, что позволит предотвратить инбридинг.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ф., Кайгер Дж. Современная генетика.-М :Мир, 1988.-335с.
  2. Ю.П. Внутривидовое генетическое разнообразие: мониторинг и принципы сохранения // Генетика.-1995.-Т.31.-С.1333−1357
  3. Ю.П., Корочкин Л. И., Рычков Ю. Г. Наследственное биохимическое разнообразие в процессах эволюции и индивидуального развития // Генетика.-1996.-Т.32.-С. 1450−1473
  4. Ю.П., Сальменкова Е. А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика.-2002.-Т.38.-С.
  5. А.А., Матвеев В. А. Крамеров Д.А. Опыт использования HHTep-SINE-ПЦР в изучении филогенеза млекопитающих. II Генетика,-2002.-Т.38.-С. 853−864.
  6. Н.П., Колесник О. В., Смарагдов М. Г., Смирнов А. Ф. Использование полиморфных минисателлитных и RAPD-маркеров у кур // Селекционно-генетические методы повышения продуктивности сельхозживотных: Сб. науч. тр. / ВНИИГРЖ.-С-Пб.,-1999.-С.243−246.
  7. С.А., Мироненко Н. В. Идентификация грибов и анализ их генетической изменчивости методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с геноспецифичными и неспецифичными праймерами // Генетика.-1996.-Т.32.-С.165−183.
  8. В.А., Стекленев Е. П., Морозова Е. В., Семенова С. К. ДНК-фингерпринтинг представителей отдельных видов, межродовых и межвидовых гибридов родов Bos и Bison подсемейства Bovinae // Генетика. -2002.-Т.4.-С.515−520.
  9. А. А. Структура, организация и эволюция генома позвоночных.-М. .Наука, 1984.-294 с.
  10. Ю.Глазко В. И., Дунин И. М., Глазко Г. В., Калашникова JI.A. Введение в ДНК-технологии, — М: ФГНУ Росинформагротех, 2001.-436с.
  11. В.И. Проблемы использования ДНК-технологий у животных // С.-х. биология. -1998а.-№ 4.-С.33−42.
  12. В.И., Зеленая Л. Б. Дифференциация домашней лошади и лошади Пржевальского по различным последовательностям ДНК // Генетика.-1998 В.-Т.34.-С.996−999.
  13. Н. Сохранить генофонд кур // Птицеводство.-1991 .-Т.11 -С.6−8
  14. Н. Породы кур и их содержание в приусадебном хозяйстве.-М: Изд-во «Искусство и мода», 1993.-143с.
  15. В.В. Молекулярные маркеры ДНК в изучении филогении и систематики // Генетика.-2002.-Т.38.-С.1013−1033.
  16. С., Каммарата М., Каррильо Д. и др. Молекулярные характеристики вариабельной тандемно повторяющейся последовательности, выявленной в ходе RAPD-анализа островной иприбрежной популяции Posidonia oceanica // Генетика.-2002.-Т.38,-С.820−827.
  17. П.Дементьева Н. В. Оценка полиморфизма минисателлитных ДНК у коров, кур и осетровых рыб: Автореф. дис.канд. биол. наук.-СПб-Пушкин, 1996.-14с.
  18. В.Б. Гормональный фактор в микроэволюционном процессе и селекции животных// С.-х. биология.-2001.-Т.2.-С.18−30
  19. В.Б., Чуркина И. В., Смирнов А. Ф., Николаева Е. К. Дестабилизирующий эффект отбора кур по функциональным резервам надпочечников. // Генетика.-2001.-Т.37.-С.517−523.
  20. И.Ю., Саитбаталов Т. Ф., Гареев Ф.Т. RAPD-анализ генетического полиморфизма уток. Межпородные различия // Генетика.-2000.-Т.36.-С.682−687.
  21. И.Ю., Саитбаталов Т. Ф., Гареев Ф.Т. RAPD-анализ генетического полиморфизма уток. Межлинейные различия пекинской породы // Генетика.-2000.-Т.36.-С.805−812.
  22. Е.В. Доказательство естественной гибридизации двух видов парусников методом RAPD-PCR // Генетика.-2001.-Т.37.-С.475−484.23.3авертяев Б. П. Краткий словарь селекционно-генетических терминов в животноводстве.-М.: Россельхозиздат, 1983.-108 с.
  23. П.Л., Гуртовая С. В., Плаксин В. О. и др. Геномная «дактилоскопия» с использованием в качестве зонда бактериофага М13экспертиза вещественных доказательств и идентификация личности) // Суд. мед. эксп.-1989.-Т.4.-С.39−42
  24. А.Н., Кугуники Я., Супрунова Т. П. и др. RAPD-маркеры, сцепленные с локусом устойчивости к расе 4 возбудителя сосудистого бактериоза у Brassika rapa L // Генетика.-2000.-Т.36.-С.357−360.
  25. Инге-Вечтомов С. Г. Генетика с основами селекции.-М.: Высшая школа, 1989.-591 с.
  26. О.В., Смарагдов М. Г., Босак Н. П., Николаева Е. К., Дмитриев В. Б., Смирнов А. Ф. Использование RAPD-маркеров для оценки дивергенции геномов у кур при разнонаправленной селекции // Сборник научных трудов ВНИИГРЖ.-2001.-С.173−176
  27. А.В. Использование молекулярныъх маркеров в работе с генетическими ресурсами растений // С.-х. биология.-1998.-Т.5.-С.3−24.
  28. М.В., Удина ИМ.Г., Зайцев A.M., Храброва J1.A. и др. Днк-технологии для оценки генетического разнообразия пород лошадей отечественной селекции// С.-х. биология.2001.-№ 6.-С.29−34.
  29. Е.З., Рыжова Н. Н., Храпалова И. А., Пухалъский В. А. Использование метода RAPD-анализа в определении генетического полиморфизма и филогенетических связей у представителей рода Lycopersicon (Tourn.) Mill. // Генетика.-2002.-Т.38.-С. 1298−1303.
  30. А.А., Филипенко M.J1., Адаричев В. А. и др. Анализ косегрегации полиморфных ДНК-маркеров с величиной артериальногодавления у крыс гипертензивной линии НИСАГ // Генетика.-1999.-Т.35.-С.164−169.
  31. И.В., Челомина Г. Н., Журавлев Ю.Н. RAPD-PCR анализ генетического разнообразия маньчжурского фазаана // Генетика.-2002, — ^ Т.38.-С.836−841.
  32. И.А., Рысков А. П., Петросян В. Г., Аракелян М. С. и др. Изменчивость мини- и микросателлитных маркеров ДНК в популяциях партеногенетической скальной ящерицы Darevskia rostombekovi. // Генетика.-2002.-Т.38.-С. 828−835.
  33. И.А., Кан Н.Г., Петросян В. Г., Малышева Д. Н. и др. Фингерпринтный анализ выриабельности мини- и микросателлитных повторов ДНК у партеногенетических ящериц Darevskia armeniakai. // Генетика.-2003.-Т. 39.-С.215−222.
  34. М.Н., Гречко В. В., Медников Б. М. Исследование полиморфизма и дивергенции геномной ДНК на видовом и популяционном уровнях (на примере ДНК пород домашних овец и диких баранов) // Генетика.-1995.-Т.31.-С.1180−1131.
  35. И.Г., Банникова JI.B., Алтухов Ю. П. Состояние птицеводства в России: генетический мониторинг // Междунар. С.-х. журн.-1993.-Т.5−6.-С.66−69
  36. И.Г. Генетические ресурсы куроводства в России Птицеводство.-1995.-Т. 5.-С. 12−15
  37. И.Г. и Лисичкина М.Г. Происхождение и эволюция домашних кур // Природа.-1996.-Т.5.-С.88−96
  38. И.Г., Лисичкина М. Г., Никифоров А. А. История куроводства в России // Природа.-1997а.-Т. 1 .-С.71 -80
  39. И.Г. и Лисичкина М.Г. Домашние куры: мифология, традиции, обычаи, народное творчество // Друг.-1997 В.-Т. 1 -С.22−25
  40. Е.В., Рысков А. П., Семенова С.К. RAPD-изменчивость двух видов трематод из популяции крупного рогатого скота. // Генетика,-2002.-Т.38.-С.1155−1162.
  41. А.А., Моисеева И. Г., Захаров И. А. Место русских пород кур в разнообразии пород Евразии // Генетика.-1998.-Т.34.-С.850−851
  42. В.Г., Токарская О. Н., Кашенцева Т. А., Корочкина Л. И. и др. Оценка подразделенности популяций на основе данных ДНК-фингерпринтинга и модифицированной Fgt-статистики Райта. // Генетика.-2003.-Т.39.-С.229−235.
  43. В.Л., Эрнст Л. К., Гудилин И. И. и др. Генетические основы селекции животных.-М.:Агропромиздат, 1989.-273с.
  44. С.Г., Токарская О. Н., Семенова С. К., Данилкин А. А., Марков Г. Г., Рысков А. П. Диагностические возможности мультилокусных маркеров ДНК в систематике диких копытных животных (Artiodactyla) // Генетика.-1997.-Т.33.-С.961−966
  45. А.П. Мультилокусный ДНК-фингерпринтинг в генетико-популяционных исследованиях биоразнообразия // Молекулярная биология. 1999.-Т.ЗЗ.-С.997−1011.
  46. И.А., Гречко В. В., Чобану Д. Г. и др. Вариабельность сайтов рестрикции сателлитной ДНК как молекулярная основа метода таксонопринта (на примере скальной ящерицы Кавказа) // Генетика. -2002.-Т.38.-С.1110−1114.
  47. H.JI., Гречко В. В., Даревский И. С. Полиморфизм ДНК популяций ящериц семейства Lacertidae, определяемый методом RAPD // Генетика.-1998.-Т.34.-С. 1661−1667.
  48. А. Анализ генома. М.- Мир. 1992.
  49. С.А. Совершенствование методов сохранения генофонда малочисленных пород кур в условиях коллекционария «Канд. дисс., СПб-Пушкин.-1992.-124с.
  50. С.К., Филенко А. Л., Васильев В. А., Просняк М. И., Севастьянов А. А., Рысков А. П. Использование полиморфных маркеров ДНК для идентификации пород кур различного происхождения П Генетика.-1996.-Т.32.-С.795−803.
  51. С.К., Илларионова Н. А., Васильев В. А. и др. Генетический анализ и оценка генетического разнообразия восточноевропейских пород борзых собак (Canis familiaris L.) по данным RAPD-маркирования генома // Генетика.-2002а.-Т.38.-С.842−852.
  52. С.К., Моисеева И. Г., Васильев В. А. и др. Генетический полиморфизм русских, европейских и азиатских пород кур, выявляемыйс помощью ДНК и белковых маркеров // Генетика.-2002 В.-Т.38.-С.1304−1308.
  53. А.С. Генетика кур.
  54. Ю.М., Календарь Р. Н., Чеботарь С. В. Исследование генетического полиморфизма злаковых растений при помощи ПЦР с произвольными праймерами // Цитология и генетика.-1994.-Т.28.-С.54−61.
  55. А.П., Березовская О. П., Созинов А. А. Оценка генетического полиморфизма в популяции колорадского жука по RAPD-маркерам // Генетика.-2000.-Т.36.-С.651−656.
  56. А.Н. Генетико-селекционные методы создания популяции кур с повышенной устойчивостью к неоплазмам: Автореф. дис.докт. с.-х. наук.-СПб-Пушкин, 1999.-56с.
  57. Г. Е., Удина И. Г., Шайхаев Г. О., Захаров И. А. Полиморфизм ДНК в гене BoLA-DRB3 у крупного рогатого скота в связи с устойчивостью и чувствительностью к лейкозу // Генетика.-1995.-Т.31 .-С.1294−1299
  58. Г. Е. ДНК-маркеры в оценке молочной продуктивности и резистентности крупного рогатого скота // Материалы III Международной конференции «Актуальные проблемы биологии в животноводстве». -Боровск.-2000.-С.29
  59. Суходолец Популяционные волны как условие для повышения экологической устойчивости организмов в процессе вертикальной эволюции // Генетика.-2002.-Т.38.-С.881−893.
  60. В.П. Молекулярно-генетические методы анализа генетической изменчивости в популяциях животных // Международный Аграрный Журнал, — 1998.-Т.4.-С.38−40.
  61. О.Н., Зуев А. В., Сорокин Ф. Г. и др. Геномная дактилоскопия журавлей: новый подход для генотипирования видов // Генетика,-1990,-Т.26.-С.599−606
  62. В.И. Анализ генетического разнообразия в породах и экспериментальных популяциях кур методом ДНК-фингерпринтинга. Дис.канд. биол. наук. Санкт-Петербург.-2002.
  63. В.И., Дементьева Н. В., Терлецкий В. П. и др. Оценка генетического разнообразия кур на основе геномной дактилоскопии // С.-х. биология.-2002.-№ 6.-С.43−47.
  64. И.Г., Туркова С. О., Костюченко М. В., Лебедева JI.A., Сулимова Г. Е. Полиморфизм гена пролактина (микросателлиты, ПЦР-ПДРФ) у крупного рогатого скота // Генетика.-2001.-Т.37.-С.511−516
  65. А.Н., Гречко В. В., Слобянюк СЛ., Фёдорова JI.B., Тимохина Г. И. Таксономический анализ повторяющихся последовательностей ДНК // Мол. Биол.-1992.-Т.26.-С.464−469
  66. Г. Н., Спиридонова JI.H., Козыренко М. М. и др. Использование ПП-ПЦР анализа клеточной ДНК для оценки генетического полиморфизма и подвидовой диагностики дальневосточного леопарда. // Генетика.-1999.-Т.35.-С.681−687.
  67. И.В. Полиморфизм ТГ-обогащенной микросателлитной ДНК домашней курицы (Gallus domesticus): Диссертация.канд. биол. наук, СПб-Пушкин, 1999а.-137с.
  68. Е.В., Тарская Л. А., Микулич А. И., Аболмасов Н И. и др. Дифференциация близкородственных и отдаленных популяций человека на основе данных мультилокусного ДНК-фингерпринтинга. // Генетика.-2003.-Т.39.-С.236−243.
  69. М.Ю. и Букаров Н.Г. Молекулярно-генетические аспекты выявления QTL маркеров на 6 хромосоме крупного рогатого скота // Материалы III Международной конференции «Актуальные проблемы биологии в животноводстве». -Боровск.-2000.-С.29
  70. Л.К., Дмитриев Н. Г., Паронян И. А. и др. Генетические ресурсы сельскохозяйственных животных в России и сопредельных странах.-СПб.: ФАО/ЮНЕП и РАСХН, 1994.-472
  71. Botstein D., White R.L., Skolnick M. et al. Construkction off genetic map m using restriction fragment polymorphism // Am. J. Hum. Genet.-1980.-V.32,-P.314−331.
  72. Bruford M.W., Burke T. Hypervariable DNA markers and their applications in the chicken// In: DNA fingerprinting approaches and applications.-Basel, 1991,-Birkhouser Verlag.- P.230−240
  73. Bednarczyk M., Siwek M., Vazanowski A., Czekalski P. DNA polymorphism in various goose by RAPD-PCR // Theor. Appl. Genetics.-2002.-V.5.-P.234−237.
  74. Carlson J.E., Tulsieram L.K., Glaubitz J.C. et al. Segregation of random amplified DNA markers in F1 progeny of conifers // Theor. Appl. Genetics. -1991.-V.83.-P. 194−200.
  75. Cepica S., Wolf J., Hojny J., Vackova I., Schroffel J Jr. Relations between genetic distance of parental pig breeds and heterozygosity of their F1 crosses measured by genetic markers // Anim. Genet.-1995.-V.26.-P. 135−140
  76. Caetano-Anolles G., Bassam B.J., Gresshoff P.M. DNA amplification fingerprinting using very short arbitrary oligonucleotide primers // Bio Technology.-199 l.-V.9.-P. 553−557.
  77. Ellegren H., Chowdhary В., Johansson M. et al. A primary linkage map of the porcine genome reveals a low rate of genetic recombination // Genetics.-1994.-V.137.-P.1089
  78. Fang D.Q., Roose M.L. Identification of closely related citrus cultivars with inter-simple sequense repeats markers // Theor. Appl. Genet.-1997.-V.95,-P.408−417.
  79. Gavora J.S., Fairfull R.W., Benkel B.F. DNA fingerprints as predictors of heterosis //Proceedings 42nd National breeders Rountable, St.Louis.-1993,-P.62−76
  80. Gavora J.S., Fairfull R.W., Benkel B.F., Cantwell W.J., Chambers J.R. Prediction of heterosis from DNA fingerprints in chickens // Genetics.-1996,-V. 144.-P.777−784
  81. Gillet E.M. GSED Genetic Structures from Electroforesis Date. User’s Manual. Version 1.0, Gottingen, 1994. 49 p.
  82. Gregorius H.-R. A diversity-independent measure of evenness // Amer. Natur.-1990.-V.136.-P.701−711.
  83. Goldstein D.B., Linares A.R., Cavelli-Sforsa L.L. An evaluation of genetic distanses for use with mikrosatellite loci // Genetics.-1995.-V.139.-P.463−471.
  84. Howlet R. DNA forensics and the FBI (news) //Nature.-1989.-V.341.-P.182−183.
  85. Haberfeld A., Dunnington E.A., Siegel P.B., Hillel J. Heterosis and DNA fingerprinting in chickens II Poultry Science.- 1996.-V.75.-P.951 -953
  86. Jeffreys A.J., Wilson V., Thein S.L. Hypervariable minisatellite region in human DNA // Nature.-1985a.-V.314.-P.67−73
  87. Jeffreys A.J., Wilson V., Thein S.L. Individual-specific «fingerprints» of human DNA // Nature.-1985b.-V.316.-P.76−78
  88. Jin L., Chakraborty R. Estimation of genetic distance and coefficient of gene diversity from single-probe multilocus DNA fingerprinting data // Mol. Biol. Evol.-1994.-V. 11.-P. 120−127
  89. Jones C.J., Edwards K.J., Castiglione S. et al. Reproducibility testing of RAPD, AFLP and SSR markers in plants by a network of European laboratories // Mol. Breeding.-1997
  90. Kashi Y., Lipkin E., Darvasi A., Nave A., Gruenbaum Y., Beckmann J. S., Soller M. Parentage identification in the bovine using DNA fingerprints // Dairy Sci.-1990.-V.73.-P.3306−3311
  91. Khandka D.K., Tuna M., Tal M., Nejidat A., Golan-Goldhirsh A. Variability in the pattern of random amplified polymorphic DNA // Electrophoresis.-1997.-V.18.-P.2852−2856
  92. Kuhnlein U., Dawe Y., Zadvorny D., Gavora J.S. DNA fingerprinting: a tool for determining genetic distances between strains of poultry // Theor. Appl. Genet.-1989.-V.77.-P.669−672
  93. Kuhnlein U., Zadvorny D., Gavora J.S. Faithful identification of markers associated with quantitative trait loci in chickens by DNA fingerprinting // In: DNA fingerprinting approaches and applications.-Basel, 1991,-Birkhouser Verlag.- P.274−282
  94. Lagoda P. J. L, Seitz G., Epplen L.T. et al. Increased detectability of somatic chenges in the DNA from homan tumors after probing with «synthetic» and genome-derived hypervariable multilocus probes // Human Genetics.-1989.-V.84.-P. 35−40.
  95. Levin I., Crittenden L.B., Dodgson J.B. Mapping DNA polymorphisms using PCR primers derived from the sequence of an avian CRI element // J.Heredity.-1994b.-V.85.-P.73−78.
  96. Lynch M., Milligan B.G. Analysis of population structure with RAPD markers //Mol. Ecjl.-1994.-V.3.-P.91−99.
  97. Lynch M. Analysis of population genetic structure by DNA fingerprinting // In: «DNA fingerprinting: approaches and applications"-Basel, 1991-Birkhauser Verlag.-P. 113−126
  98. Mathur P.K., Ponsuksili S., Groen A.F., Horst P. Estimation of genetic variability within and between populations using DNA fingerprints !! Proceedings 5th World Congress on Genetics Applied to Livestock Production.-Guelph.-l 994.-P.528−531
  99. Meng A., Gong G., Chen D., Zhang H., Qi S., Tang H., Gao Z. DNA fingerprint variability within and among parental lines and its correlation with performance of F-l laying hens // Theor. Appl. Genetics.-1996.-V.92,-P.769−776
  100. Nakamura Y., Leppert M., O’Connel P. Variable number of tandem repeat (VNTR) markers for human gene mapping // Science.-1987.-V.135,-P.1616−1622
  101. Okada N., Hamada M., Ogiwara I., Ohshima K. SINEs and LINEs share common 3' sequences: a review // Gene.- 1997.-V.205.-P.229−243
  102. Plotsky Y., Kaiser M. G., Lamont S.J. Genetic characterization of highly inbred chicken lines by two DNA methods: DNA fingerprinting and polymerase chain reaction using arbitrary primers //
  103. Ponsuksili S., Wimmers K., Horst. Evaluation of variation within and between different chicken lines by DNA fingerprinting // Journal of heredity.-1998.-V.89.-P. 17−23.
  104. Rogstad S.H., Pelican S. GELSTATS: a computer program for population genetics analysis using VNTR multilocus probe data // BioTechniques.-1996.-V.-21.-P.1128−1131
  105. Sharma D., Appa Rao K.B., Singh R.V., Totey S.M. Genetic diversity among chicken breeds estimated through randomly amplified polymorphic DNA// Anim. Biotechnol.-2001.-V.2.-P.l 11−120
  106. Singh R.V., Sharma D. Within- and betweenstrain genetic variability in White Leghorn population detected through RAPD markers // Br Poult. Sci-V.43.-P.33−37.
  107. Smith E.J., Jones C.P., Bartlett J., Nestor K.E. Use of randomly amplified polymorfic DNA markers for the genetic analysis of relatednes and diversity in chickens and turkeys // Poult. Sci.-1996.-V.75.-P.579−584
  108. Sreekumar G.P., Smyth J.R.Jr., Ponce de Leon F.A. Molecular characterization of the Smyth chicken sublines and their parental controls by RFLP and DNA fingerprint analysis // Poult.Sci.-2000.-V.l .-P. 1−5
  109. Stephens J.C., Gilbert D.A., Yuhki N., O’Brien S.J. Estimation of heterozygosity for single-probe multilocus DNA fingerprints // Mol. Biol. Evol.-1992.-V.9.-P.729−743
  110. Tautz D. Hypervariability of simple sequense as a general sourse for polymorfic DNA markers // Nucl. Acids Res.-1989.-V.17.-P.6463−6471.
  111. Washio K., Misawa S., Ueda S. Probe walking: development of novel probes for DNA fingerprinting // Hum. Genet.-1989.-V.83.-P.223−226.
  112. Wei R., Dentine M.R., Bitgood JJ. Random ampliefied polymorphic DNA markers in crosses between inbred lines of Rhode Island red and White Leghorn chikens // Anim. Genet.-1997.-V.28.-P.291−294.
  113. Wells R.A., Wonke В., Thein S. L/ Prediction of consanguinity using human DNA fingerprints // J. of Mtd. Genet.-1988.-V.25.-P.660−662.
  114. Welsh J. and McCleland G.M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers // Nucl. Acids Res.-1990.-V.18.-P.7213−7218
  115. Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers //Nucl. AcidRes.-1990.-V.18.-P.6531−6535
  116. Wu K.-S., Jones R., Danneberger L. et al. Detection of microsatellite polymorphism without cloning // Nukl. Acids Res.-1994.-V.22.-P.3257−3258.
  117. Yeh F.C., Yang R.-C., Boyle T. PORGENE. Quick User Guide. version 1.0., 1997.1−27.
  118. Ye X., Zhu J., Velleman S.G., Nestor K.E. Genetic diversity of commercial turkey primary breeding lines as estimated by DNA fingerprinting // Poult. Sci.-1998a.-V.77.-P.802−807
  119. Ye X., Zhu J., Velleman S.G., Bacon W.L., Nestor K.E. Measurement of genetic variation within and between Japanese quail lines using DNA fingerprinting // Poult. Sci.-1998b.-V.77.-P.1755−1758
  120. Zhu J., Nestor K.E., Moritsu Y. Relationship between band sharing levels of DNA fingerprints and inbreeding coefficients and estimation of true inbreeding in turkey lines // Poult. Sci.-1996.-V.75.-P.25−28
  121. Zhivotovsky L. A., Feldman M.W. Microsatellite variability and genetic distance//Proc. Natl. Acad. Sci.-1995.-V.92.-P.l 1549−11 552.
  122. Zhang X., McDaniel G.R., Gismbrone J.J. Random amplified polymorphic DNA comparisons among broiler lines selekted for incidense of tibial dyschondroplasia // Poul. Sci.-1995.-V.74.-P.1253−1258
  123. Zhang X., Leung F.C., Chan D.K., Chen Y., Wu C. Comparative analysis of allosyme, random amplified polymorphic DNA and microsatellite polymorphism on Chinese native chickens // Poult. Sci.-2002a.~V.81,-P.1093−1098.
  124. Zhang X., Leung F.C., Chan D.K., Yang G, Wu C. Genetic diversity of Chinese native chicken breeds based on protein polymorphism, random amplified polymorphic DNA and microsatellite polymorphism // Poult. Sci.-2002a.-V.81.-P. 1463−1472.
  125. Zietkiewicz E., Rafalski A., Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification // Genetics.-1994.-V.20.-P. 176−183.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!