Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Биоритмы барьерной функции печени у больных с гнойно-воспалительными заболеваниями

Диссертация: Биоритмы барьерной функции печени у больных с гнойно-воспалительными заболеваниями
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Актуальность проблемы гнойно-воспалительных заболеваний (ГВЗ) в интенсивной терапии обусловлена ростом таких осложнений как сепсис, полиорганная недостаточность (ПОН) и инфекционно-токсический шок (ИТИ1). Несмотря на увеличивающийся арсенал антисептических препаратов и совершенствование лечебных технологий, летальность при этих осложнениях достигает 60−80% (Гельфанд Б.Р. и др., 2000, 2003; Руднов… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Патогенез эндогенной интоксикации при гнойно- 10 воспалительных заболеваниях
    • 1. 2. Функция печени при ГВЗ
    • 1. 3. Роль печени в формировании циркадианного ритма 20 обмена железа
  • ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Организация исследований
    • 2. 2. Определение содержания МСМ2бо и МСМ28о в 33 сыворотке крови, моче и эритроцитах
    • 2. 3. Определение концентрации малонового диальдегида в сыворотке крови и в моче
    • 2. 4. Определение концентрации общего железа в 34 сыворотке крови и моче
    • 2. 5. Определение общей железосвязывающей способности 35 сыворотки и коэффициента насыщения трансферрина
    • 2. 6. Определение концентрации двухвалентного и 36 трехвалентного железа в сыворотке крови и моче
    • 2. 7. Определение кровотока в а. hepatica и v. portae
    • 2. 8. Расчет дозы тиопентала натрия при интубационном 37 наркозе
    • 2. 9. Методы статистического анализа 37 2.10 Методы биоритмологии
  • ГЛАВА III. ПРОСТРАНСТВЕННО-ВРЕМЕННАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ 39 БАРЬЕРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ У ЗДОРОВЫХ МУЖЧИН
    • 3. 1. Суточная динамика показателей метаболизма железа у 39 здоровых мужчин
    • 3. 2. Суточная динамика активности перекисного окисления 42 липидов у здоровых мужчин
    • 3. 3. Минутный объем кровообращения печени и скорость 43 метаболизма тиопентала натрия у здоровых мужчин
    • 3. 4. Суточная динамика МСМ2б0 и МСМ280 в плазме крови 45 и в эритроцитах у здоровых мужчин
    • 3. 5. Суточная динамика экскреции двухвалентного железа 47 и малонового диальдегида с мочой у здоровых мужчин
    • 3. 6. Суточная динамика содержания МСМ2бо и МСМ28о в 48 моче у здоровых мужчин
    • 3. 7. Циркадианная организация барьерной функции печени 49 у здоровых мужчин
  • ГЛАВА IV. ОСОБЕННОСТИ ЦИРКАДНАННОЙ ОРГАНИЗАЦИИ 54 БАРЬЕРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ У БОЛЬНЫХ С ГНОЙНО-ВОСПАЛИТЕЛЬНЫМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ
    • 4. 1. Суточная динамика показателей обмена железа у 54 больных ГВЗ
    • 4. 2. Временная организация активности ПОЛ и обмена 58 железа у больных с ГВЗ
    • 4. 3. Минутный объем кровообращения печени и скорость 60 метаболизма тиопентала натрия
    • 4. 4. Суточная динамика МСМгео и МСМ28о в сыворотке 62 крови, в эритроцитах и моче
    • 4. 5. Суточная динамика экскреции железа и МДА с мочой 64 у больных с ГВЗ
    • 4. 6. Циркадианная организация барьерной функции печени 67 при ГВЗ
  • ГЛАВА V. ОСОБЕННОСТИ ЦИРКАДИАННОЙ ОРГАНИЗАЦИИ 72 БАРЬЕРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ ПРИ СЕПСИСЕ
    • 5. 1. Суточная динамика барьерной функции печени при 72 сепсисе
      • 5. 1. 1. Биоритмы обмена железа и ПОЛ
      • 5. 1. 2. Суточная динамика экскреции двухвалентного 76 железа и малонового диальдегида с мочой
      • 5. 1. 3. Суточная динамика МСМ2бо и МСМ28о
    • 5. 2. 5.2.1. Особенности суточной динамики обмена железа 80 при неблагоприятном течении сепсиса
      • 5. 2. 2. Суточная динамика экскреции двухвалентного 82 железа и малонового диальдегида с мочой при неблагоприятном течении сепсиса
      • 5. 2. 3. Суточная динамика МСМ260 и МСМ280 при 83 неблагоприятном течении сепсиса
    • 5. 3. Минутный объем кровообращения печени и скорость 84 метаболизма тиопентала натрия как показатель антитоксической функции печени при сепсисе
  • 5−4. Циркадианная организация барьерной функции печени 86 при сепсисе
  • ГЛАВА VI. ОСОБЕННОСТИ ЦИРКАДИАННОЙ ОРГАНИЗАЦИИ 92 БАРЬЕРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ ПРИ ТЯЖЕЛОМ СЕПСИСЕ С ПОЛИОРГАННОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТЬЮ
    • 6. 1. Суточная динамика показателей обмена железа в 93 сыворотке крови

    6.2. Суточная динамика активности перекисного окисления 95 липидов и процентного соотношения концентраций двух- и трехвалентного железа в структуре сидеремии при сепсисе с полиорганной недостаточностью

    6.3. Минутный объем кровообращения печени и скорость 96 метаболизма тиопентала

    6.4. Суточная динамика МСМ2бо и МСМ28о

    6.5. Суточная динамика экскреции двухвалентного железа 101 и МДА с мочой

    6.6. Циркадианная организация барьерной функции печени 103 при тяжелом сепсисе с полиорганной недостаточностью

Биоритмы барьерной функции печени у больных с гнойно-воспалительными заболеваниями (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы гнойно-воспалительных заболеваний (ГВЗ) в интенсивной терапии обусловлена ростом таких осложнений как сепсис, полиорганная недостаточность (ПОН) и инфекционно-токсический шок (ИТИ1). Несмотря на увеличивающийся арсенал антисептических препаратов и совершенствование лечебных технологий, летальность при этих осложнениях достигает 60−80% (Гельфанд Б.Р. и др., 2000, 2003; Руднов В. А., 2000; Wanner G. et al., 2000; Reinhart К. et al., 2001). He вызывает сомнений тот факт, что высокие показатели смертности от сепсиса во многом обусловлены его поздней диагностикой и неэффективным мониторингом проводимого лечения. С этих позиций особый интерес представляет поиск надежных маркеров системной воспалительной реакции и эндогенной интоксикации (Руднов В.А., 2000; Гринев М. Н., 2001; Гельфанд Б. Р. и др., 2003; Meisner М., 2000).

Установлено, что исход ГВЗ находится в зависимости от функционального состояния печени, обеспечивающей фагоцитарный клиренс микроорганизмов, токсинов, ксенобиотиков и метаболитов (Ерюхин И.А., Шашков Б. В., 1995; Coupade С. et al., 2001; Ono S. et al., 2003; Tsukada S. et al., 2003). Данное обстоятельство определяет актуальность углубленного изучения барьерной функции печени в патогенезе сепсиса, системного эндотоксикоза, манифестации ПОН, а также дальнейшего совершенствования методов ранней диагностики и терапии повреждения печени у больных с ГВЗ (Гельфанд Б.Р., 1997, 2000; Sarfen J., 1982).

Экспериментальные и клинические доказательства участия клеток Купфера в регуляции пространственно-временной организации обмена железа позволили разработать информативные биоритмологические тесты для ранней диагностики токсического гепатоза (Баркова Э.Н. и др 1990, 1991; Чесноков Е. В., 1991; Коркин A.JI., 1992). Если принять во внимание, что 90% всех фиксированных макрофагов приходится на печень, а их способность поглощать, депонировать и освобождать железо определяет его суточные колебания в сыворотке крови (Чесноков Е.В., 1991), то становится очевидным, что метаболическая перестройка в системе мононуклеарных фагоцитов при воспалении способна реорганизовать и циркадианную организацию антитоксической функции гепатоцитов (Баркова Э.Н. и др., 1995; Ерюхин И. А. и др., 1995).

Известно, что при повреждении паренхимы печени в системном кровотоке возрастает концентрация двухвалентного железа (Fe2+) (Риль О.Ю., 1989; Коркин A. JL, 1992; Gutteridge J., 1994). Способность ферроионов катализировать липопероксидацию (Владимиров Ю.А., 1972;.Козлов A.B., 1987) определяет целесообразность сравнительного исследования уровней двухвалентного железа в сыворотке крови и моче как инициатора активности перекисного окисления липидов (ПОЛ), организующего каскад цитолитических и протеолитических процессов, — важнейшее звено в патогенезе эндотоксикоза при ГВЗ (Оболенский С.В., Малахова М. Я., 1991).

Исследование пространственно-временной организации функциональной системы как методологической основы для оценки ее состояния в норме и патологии заняло прочные позиции в экспериментальной и клинической медицине в аспекте разработки новых способов хронодиагностики и хронотерапии (Комаров Ф.И., 2000; Романов Ю. А., 2000). В свете этих представлений изучение ритмической организации барьерной функции печени мотивировано отсутствием данных об особенностях ее хроноструктуры при ГВЗ. Необходимость хронобиологического подхода продиктована высокой чувствительностью циркадианной организации функционального состояния печени при системных эндотоксикозах (ГубинГ.Д., Герловин Е. Ш., 1980; Комаров Ф. И., 2000). Исследования биоритмов барьерной функции печени позволили бы выявить информативные ритмометрические критерии для разработки способов хронодиагностики и прогнозирования течения ГВЗ.

Цель работы — определить особенности пространственно-временной организации барьерной функции печени при ГВЗ и обосновать информативные биоритмологические критерии для прогнозирования исхода гнойно-септических осложнений. Задачи:

1. Определить закономерности временной организации барьерной функции печени у здоровых мужчин на основе ритмометрической характеристики обмена железа, активности ПОЛ, биосинтетической и антитоксической функции органа (по данным содержания МСМ в сыворотке крови, моче и эритроцитах, продолжительности тиопенталового наркоза).

2. Выявить особенности циркадианной организации обмена железа, активности ПОЛ, уровня МСМ в сыворотке крови, моче и эритроцитах у больных с ГВЗ различной степени тяжести.

3. Установить особенности кровоснабжения печени по данным допплерографии объемного кровотока в печеночной артерии и воротной вене, а также скорости инактивации барбитуратов в печени у здоровых людей и при ГВЗ различной степени тяжести.

4. Разработать информативные критерии диагностики и прогнозирования осложнений и исхода ГВЗ на основе анализа пространственно-временной организации обмена железа и показателей барьерной функции печени.

Научная новизна. Впервые определены ведущие механизмы формирования циркадианной организации барьерной функции печени у здоровых мужчин.

Установлено, что физиологическая модуляция обмена железа на протяжении суток находится в зависимости от состояния антитоксической и протеинсинтезирующей способности печени, а также циклических изменений ПОЛ и АОС.

Впервые определена закономерная последовательность в расположениях акрофаз для концентрации ферроионов, продуктов ПОЛ, содержания МСМ в сыворотке крови и моче на суточной шкале времени.

Впервые обнаружено, что степень повышения концентрации общего железа в раннем послеоперационном периоде у больных с ГВЗ является прогностическим показателем развития сепсиса.

Показано, что начальные этапы сепсиса сопровождаются усилением антитоксической способности гепатоцитов, повышением притока крови к печени и многократным увеличением сидерурии.

Установлено, что прогрессирующее течение сепсиса у больных с ГВЗ без полиорганной недостаточности приводит к инверсии циркадианного ритма барьерной функции печени и синхронизации ритмов МСМ сыворотки крови и эритроцитов.

Впервые показано, что прогрессирование полиорганной недостаточности при ГВЗ сопровождается увеличением доли двухвалентного железа в структуре сидеремии на фоне снижения ОЖСС и PET.

Впервые установлено, что десинхроноз барьерной функции печени прогрессирует по мере роста тяжести заболевания, достигая нивелирования ритмов у больных с неблагоприятным исходом (смерть).

Научно-практическая значимость. На основе ритмометрического анализа показателей барьерной функции печени разработаны способы ранней экспресс-диагностики сепсиса, а также определены факторы риска и прогностические критерии развития сепсиса в послеоперационном периоде у больных с гнойновоспалительными заболеваниями. Аргументирована информативная значимость способа прогнозирования ПОН у больных с сепсисом, основанная на двукратном определении концентрации двухвалентного железа в сыворотке крови с последующим расчетом интегрального показателя динамики. Определены пороговые значения ИПД, позволяющие прогнозировать исход сепсиса и развитие ПОН.

Установлено, что у больных с тяжелым сепсисом десинхроноз барьерной функции печени сопровождается падением резервной емкости трансферрина и развитием синдрома перегрузки железом. Для прогнозирования исхода сепсиса, осложненного ПОН (выздоровление или смерть), рекомендуется определять PET, а также процентное соотношение концентраций двухи трехвалентного железа в структуре общей сидеремии.

Разработанные критерии течения и прогнозирования исходов ГВЗ позволяют своевременно определять тактику интенсивной терапии (дополнительная хирургическая санация очага, смена антибиотика, усиление антиоксидантной терапии). Выявленные особенности пространственно-временной организации барьерной функции печени при ГВЗ дают возможность с наибольшей эффективностью протезировать ее антитоксическую функцию экстракорпоральными методами детоксикации.

ВЫВОДЫ.

1. Барьерная функция печени у здоровых мужчин подвержена закономерным суточным колебаниям, показатели ее антитоксической функции находятся в противофазе с ритмичностью концентраций двухвалентного железа, малонового диальдегида, молекул средней массы в сыворотке крови и продолжительностью гипногенного эффекта тиопентала натрия.

2. Ранний послеоперационный период у больных с гнойно-воспалительными заболеваниями без сепсиса сопровождается повышением сидеремии, уровень которой является прогностическим признаком течения заболевания.

3. Развитие сепсиса сопровождается усилением антитоксической функции печени и двукратным повышением суточной экскреции микроэлемента.

4. Неблагоприятное течение сепсиса с последующим развитием полиорганной недостаточности сопровождается десинхронозом барьерной функции печени и циркадианных ритмов для сидеремии, концентрации двухвалентного железа, малонового диальдегида и молекул средней массы в сыворотке крови.

5. Развитие полиорганной недостаточности у больных с ГВЗ сопровождается нивелированием циркадианных ритмов для показателей обмена железа, ПОЛ, МСМ и снижением потенциала антитоксической способности печени.

6. При благоприятном течении сепсиса, осложненного полиорганной недостаточностью, минимальные значения антитоксической функции печени в ночное время коррелируют с максимальными показателями гипногенного эффекта тиопентала натрия на фоне повышения концентраций двухвалентного железа, малонового диальдегида и молекул средней массы в сыворотке крови.

7. При сепсисе с полиорганной недостаточностью резкое снижение общей железосвязывающей способности сыворотки крови и резервной емкости трансферрина коррелирует с увеличением концентрации двухвалентного железа, рост которой является неблагоприятным признаком течения и исхода сепсиса.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. В качестве прогностического критерия развития сепсиса в послеоперационном периоде у больных с гнойно-воспалительными заболеваниями рекомендуется способ, основанный на двукратном определении концентрации общего железа в сыворотке крови — в дооперационном периоде и через 4−6 ч после операции, с последующим расчетом интегрального показателя динамики. При значениях ИПД более 30 или при повышении концентрации общего железа в сыворотке крови более, чем на 10 мкмоль/л, можно прогнозировать развитие сепсиса.

2. Информативным критерием прогнозирования сепсиса у больных с ГВЗ служит увеличение суточной экскреции железа с мочой свыше 8 мкмоль.

3. Способ прогнозирования полиорганной недостаточности у больных с сепсисом основан на двукратном определении концентрации двухвалентного железа в плазме крови в 14.00±-4ч и в 01.00±-5ч с последующим расчетом интегрального показателя динамики. Значения ИПД больше нуля позволяют прогнозировать развитие полиорганной недостаточности.

4. У больных с тяжелым сепсисом для прогнозирования исхода заболевания (выздоровление или смерть) рекомендуется определять процентное соотношение концентраций двухи трехвалентного железа в структуре общей сидеремии. Значения Ре ниже 50% ассоциированы с благоприятным течением ПОН (выздоровление), а более 75% - с неблагоприятным (смерть) течением ПОН.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.И., Гуляев A.A., Иванина Т. А. и др. Острофазный ответ и белки плазмы крови при остром холецистите //Клинич. лаб. диагностика. 1997. — № 7.-С. 8−10.
  2. А.П., Левина A.A., Сеттарова Д. А. и др. Метаболизм железа при наследственном гемохроматозе //Врачебн. дело. 1989. — № 4. — С.65−69.
  3. Л.И. Печень //Структурные основы адаптации и компенсации нарушенных функций. М., 1987. — С. 249−259.
  4. З.С., Момот А. П. Сравнительный анализ нарушений гемостаза при острых и подострых ДВС-синдромах инфекционного генеза //Актуальные вопросы сепсисологии: Тез. Всесоюзн. конф. Тбилиси. -1990.-Т. 1.-С. 39−41.
  5. Э.Н., Гуров О. В. Суточная динамика продолжительности гексеналового наркоза при экспериментальном гепатозе //Бюл. эксперим. биол. и медицины. 1995. — № 5. — С. 540−543.
  6. Э.Н., Гуров О. В., Гурова О. П. Роль печени в регуляции биоритмов сидеремии у кроликов при острой алкогольной интоксикации //Бюл. эксперим. биол. и медицины. 1993. — № 7. — С. 147−149.
  7. Э.Н., Жданова Е. В., Курлович H.A. Хронофизиология и хронопатология обмена железа. Екатеринбург: Полиграфист, 2001. -239 с.
  8. Э.Н., Петров A.B., Черноглазова О. В. и др. Временная организация и механизмы адаптативных реакций эритроцитарной системы в условиях Крайнего Севера //Хронобиология и хрономедицина: Тез. докл. 2-го симпозиума СССР-ГДР. Тюмень, 1982. С. 64−65.
  9. Э.Н., Чесноков Е. В., Коркин A.JI. и др. Фундаментальные и прикладные аспекты пространственно-временной организации обмена железа. //Тез. докл. III Всесоюзн. конферен. по хронобиологии и хрономедицине. Ташкент, 1990. — С. 36.
  10. Э.Н., Чесноков Е. В., Коркин A.JI. Роль печени в регуляции циркадианного ритма сидеремии у крыс //Бюл. эксперим. биол. и медицины. 1991. — № 7. — С. 96−98.
  11. A.B., Коршунов А. Г., Борщенко И. А. и др., Иммуногистохимическое изучение апоптоза клеток спинного мозга при его экспериментальном повреждении //Архив патологии. 2002. — Т. 64, № 2.-С. 23−27.
  12. В.Б. Сепсис современная проблема клинической медицины. М., 1999. — 212 с.
  13. М.В. Ишемические и реперфузионные повреждения органов. -М.: Медицина, 1989. 367 с.
  14. Ю.И., Труфакин В. А., Летягин А. Ю. и др. Циркадные ритмы иммунной системы. Новосибирск: РИПЭЛ, 1992. — 208 с.
  15. С.З. Энтеральная детоксикация и деконтоминация при распространенном перитоните. Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1994.
  16. А.Ш., Терсенов O.A. Биохимия для врача. Екатеринбург: Уральский рабочий, 1994. — 384 с.
  17. .М., Волчегорский И. А., Пужевский A.C. и др. Среднемолекулярные пептиды крови как эндогенные регуляторы перекисного окисления липидов в норме и при термических ожогах //Вопр. мед. химии. 1991. — № 1. — С. 23−26.
  18. Ю.А. Свободно-радикальное окисление липидов и физические свойства липидного слоя биологических мембран //Биофизика. 1987. — Т.32, вып. 5, — С. 830−844.
  19. Ю.А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. — 252 с.
  20. A.C., Беляков H.A., Шугаев А. И. и др. Диагностическое значение молекул средней массы в крови при оценке тяжести эндотоксемии //Вестн. хирургии. 1986. — № 8. — С. 126−130.
  21. A.C., Левицкий Э. Р., Поддубная Л. П. и др. Средние молекулы и проблема эндогенной интоксикации при критических состояниях различной этиологии //Анестезиол. и реаниматол. 1987. — № 2. — С. 3742.
  22. И.А., Вельдман Б. М., Скобелева H.A. и др. О патогенетическом значении антиоксидантных свойств среднемолекулярных пептидов при термических ожогах //Вопр. мед. химии. 1991. — № 2. — С. 28−32.
  23. .Р. Абдоминальный сепсис: современная концепция и вопросы классификации //Анналы хирургии. 1999. — № 5. — С. 697−706.
  24. .Р., Бурневич С. З., Гиткович В. Е. и др. Абдоминальный сепсис: Современный взгляд на нестареющую проблему. Часть 1 //Вестн. интенсив, тер. 1996. — № 4. — С. 29−35.
  25. .Р., Бурневич С. З., Гиткович В. Е. и др. Абдоминальный сепсис: Современный взгляд на нестареющую проблему. Часть 2 //Вестн. интенсив, тер. 1997. — № 1−2. — С. 73−79.
  26. .Р., Матвеева Д. В., Сергеева H.A. Роль портальной бактериемии и эндотоксинэмии в патогенезе полиорганной недостаточности при перитоните //Вестн. хирургии. 1992. — Т. 148, №½/3/.-С 212−227.
  27. . Б.Р., Бурневич С. З., Филимонов М. И. Абдоминальный сепсис //Русский медицинский журнал. 1998. Т. 6., № 11. — С. 697−706.
  28. . Б.Р., Гологорский В. А., Бурневич С. З. и др. Селективная деконтоминация и детоксикация желудочно-кишечного тракта в неотложной абдоминальной хирургии и интенсивной терапии //Вестн. интенсив, тер. 1995. — № 1. — С. 8−11.
  29. .Р., Гельфанд Е. Б., Гологорский В. А. Абдоминальный сепсис: интегральная оценка тяжести состояния больных и полиорганной дисфункции //Анестезиол. и реаниматол. 2000. — № 3. — С. 29−33.
  30. .Р., Филимонов М. И., Бражник Т. Б. и др., Прокальцитонин: новый лабораторный диагностический маркер сепсиса и гнойно-септических осложнений в хирургии. Часть 1,2 //Вестн. интенсив, тер. -2003.-№ ½.-С. 12−20.
  31. С.Г. Печень и кортикостероиды //Клинич. медицина. 1977. — Т.49, № 1. — С. 9−15.
  32. С.Г. Роль печени в регуляции уровня гормонов крови //Терапевт, архив. 1977. — Т.49, № 7. — С. 144−150.
  33. Гипоксия. Адаптация, патогенез, клиника /Под ред. Ю. Л. Шевченко. СПб: ООО «ЭЛБИ-СПб», 2000. 384 с.
  34. П.П., Пахомова Г. В., Утешев Н. С. и др. Динамика содержания конечного продукта оксида азота нитрита в различных биологических жидкостях при перитоните //Вестн. интенсив, тер. 2000. — № 4. — С. 3133.
  35. М.В., Громов М. И. Сепсис. Полемические аспекты проблемы //Вестн. хирургии. 1997. — Том 156, № 4. — С. 56−59.
  36. М.В., Громов М. И., Комраков В. Е. Хирургический сепсис. СПб. -М., 2001.-315 с.
  37. Г. Д., Герловин Е. Ш. Суточные ритмы биологических процессов. -Новосибирск: Наука, 1980. 278 с.
  38. О.В. Хронобиологическое основание эффективности применения антиоксидантов при повреждении паренхимы печени: Автореф. дис. канд. мед. наук. Томск, 1994. — 28 с.
  39. В.Т. Повреждение и защита сердца при острой смертельной кровопотере //Бюл. СО РАМН. -2001. -№ 1. С. 73−81.
  40. В.Т., Гирш А. О., Гирш Я. В. и др. Предоперационная подготовка больных с синдромом диабетической стопы, осложненным гангреной //Эфферентная терапия. 2001 — Т.7 — № 2 — С. 62−66.
  41. A.JI. Диагностика стадий эндогенной интоксикации при послеоперационных осложнениях в абдоминальной хирургии //Эндогенные интоксикации. СПб.: СПбМАПО, 1994. — С.70−71.
  42. И.А., Шашков Б. В. Эндотоксикоз в хирургической клинике. -СПб.: Logos, 1995.-304 с.
  43. М.М., Каралкин А. В., Баширов А. Д. и др. Фагоцитарная система печени у больных перитонитом //Хирургия. 1988. — № 2. — С. 8892.
  44. М.М., Матвеет Д. В., Мишнев О. Д. и др. Печеночная недостаточность у больных перитонитом //Вестн. хирургии. 1989. -№ 8. — С.24−27.
  45. Е.В. Ритмическая структура резистентности у женщин репродуктивного возраста //Циклы природы и общества: Материалы VI Международной конф. Ставрополь, 1999. — С. 135−136.
  46. Е.В. Хронобиологические аспекты прогнозирования дефицита железа у женщин репродуктивного возраста: Автореф. дис. докт. мед. наук. Томск, 2002. 24 с.
  47. А.Ш., Чурилов Л. П., Основы общей патологии. Часть 2. Основы патохимии. СПб: ЭЛБИ. — 2000. — 688 с.
  48. Э.М., Абдуллаев Г. М. Перекисное окисление липидов и антиоксиданты крови у больных циррозом печени //Гематол. и трансфузиология. 1985. — № 9. — С. 15−18.
  49. Н.К., Ланкин В. З., Меньшикова Е. Б. Окислительный стресс. Биохимические и патофизиологические аспекты. М.: Наука/Интерпериодика, 2001. — 343 с.
  50. M. Синдром реперфузии кишечника //Освежающий курс лекций Выпуск № 7 /Под ред. Э. В. Недашковского. Архангельск. — 2002. -С.125−131.
  51. А.П. Медицина критических состояний: общие проблемы. -Петрозаводск: Изд-во ПГУ, 1995, — Т.1. 360с.
  52. А.Н., Гирш А. О. Роль эндотоксемии в формировании постреанимационной кардиодепрессии //Медицинский академический журнал. 2003. — Т. З — № 3. — С. 130−131.
  53. Д.Е., Пучиньян Д. М. Нарушения функции печени при травматическом стрессе //Биохим. журн. 1998. — Т.29, № 1. — С. 58−70.
  54. В.П., Катинас Г. С. Опыт и перспективы использования математических и вычислительных методов в хронобиологических исследованиях /Хронобиология и хрономедицина. Под ред. Ф. И. Комарова, С. И. Рапопорта. -М.: Триада Х- 2000. — С. 168−194.
  55. В.И. Объективные методы оценки тяжести состояния больных и пострадавших. М.: НИИСП им. Н. В. Склифосовского, 1999. -36 с.
  56. А.Х., Грачев C.B., Елтсеева C.B., и др. Свойства углекислого газа ингибировать генерацию супероксидного анион-радикала клетками и его биомедицинское значение //Вопр. мед. химии. 1996. — Т. 42, вып.З. -С. 193−202.
  57. A.B., Вдовин A.B., Азизова O.A., Владимиров Ю. А. Перекисное окисление липидов и свободное Fe++ при ишемии и реоксигенации печени //Бюл. эксперим. биол. и медицины. 1987. — № 8. — С. 165−167.
  58. Ф.И. Хронобиология и хрономедицина. М.: Медицина, 1989. -399 с.
  59. Ф.И., Рапопорт С. И., Малиновская Н. К. и др. Язвопротективный эффект мелатонина при искусственно смоделированном десинхронозе у крыс //Вестник РАМН. 2000. — № 8. — С.21−25.
  60. A.JI. Особенности суточной динамики экскреции железа с мочой при повреждении паренхимы печени: Автореф. дис. канд. мед. наук. Томск, 1992.-24 с.
  61. Костюченко A. JL, Бельских А. Н., Тулупов А. Н. Интенсивная терапия послеоперационной раневой инфекции и сепсиса. СПб: Фолиант, 2000. -448 с.
  62. Костюченко A. JL, Дьяченко П. К. Внутривенный наркоз и антинаркотики. СПб: «Деан», 1998. — 240 с.
  63. М.И., Костюченок Б. М. Раны и раневая инфекция. М.- Медицина, 1990. — 592 с.
  64. Л.А., Родоман Г. В., Луканин Д. В. Среднемолекулярные соединения биологических жидкостей в оценке развития эндотоксикоза при распространенном перитоните. В кн.: Современные проблемы практической хирургии. — М.: РГМУ, 2000. — С.67−78.
  65. А.Л., Прудков М. И., Коркин О. В. и др. Шкала оценки полиорганной дисфункции у хирургических больных //Анестезиол. и реаниматол. 2000. -№ 3. — С. 26−28.
  66. И.Н. Синдром полиорганной недостаточности. Метаболические основы /Лекция. Часть 1 //Вестн. интенсив, тер 1999. -№ 2.-С. 8−13.
  67. A.C., Блок Ю. Е. Хронические гепатиты и циррозы печени. М.: медицина, 1987. -272 с.
  68. A.C., Матюшин Б. Н. Цитотоксическое действие активных форм кислорода и механизмы развития хронического процесса в печени при ее патологии //Патологич. физиология и эксперим. терапия. 1996. — № 4. -С. 3−5.
  69. С.А. Структура и функции моноцитов и макрофагов //Клинич. лаб. диагностика. 1997. — № 9. — С.10−16.
  70. М., Деби Дюпон Д. Анестезиологам об оксидантном стрессе, апоптозе и нейротрансмиссии //Освежающий курс лекций /Под ред. Э. В. Недашковского. Архангельск, 2002. — С. 32−44.
  71. И.В., Саперов В. Н., Григорьев В. Л. и др., Интегративный показатель для оценки динамики клинико-лабораторных показателей в медицине //Вестник Чувашского университета. Чебоксары. — 1995. -№ 2.-С. 81−86.
  72. X., Аканке Т. Оксид азота и кислородные радикалы при инфекции, воспалении и раке //Биохимия. 1998. — Т. 63, Вып. 7. — С. 1007−1019.
  73. В.П., Кост И. В., Щурин М. Р. Система дендритных клеток в индукции иммунитета и в патогенезе инфекционных, аутоиммунных и онкологических заболеваний //Иммунология. 2002. — Т. 23, № 2. — С. 68−76.
  74. Н.П., Коничева И. Н. Синдром эндогенной интоксикации при сепсисе //Анестезиол. и реаниматол. 1995. — № 6. — С. 4−8.
  75. М.Я. Методы регистрации эндогенной интоксикации. СПб: СПбМАПО, 1995.-35с.
  76. М.Я., Зубаткина О. В., Совершаева С. Л. Оценка эндогенной интоксикации у населения, проживающего в различных экологических условиях Севера и Северо-Запада России //Эфферентная терапия. 1998. -Т. 4, № 2.-С. 50−56.
  77. М.Я., Соломенников A.B., Беляков H.A. и др. Определение фракций молекул средней массы в сыворотке крови осаждением белков ТХУ //Лаб. дело. 1987. — № 6. — С. 224−227.
  78. В.Д., Потапов А. Ф., Трепилец В. Е. и др. Нарушение процессов перекисного окисления липидов у хирургических больных на этапах лечения //Анестезиол. и реаниматол. 1995. — № 5. — С. 53−58.
  79. В.В., Савченко Т. М. Пространственно-временная организация метаболической и пролиферативной системы печени //Тез. докл. III Всесоюзной конференции по хронобиологии и хрономедицине. -Ташкент, 1990. С. 218.
  80. Х.М. Окись азота в физиологии и патологии почек //Вестн. РАМН. 1996. — № 7. — С. 73−78.
  81. А.Н., Маянский Д. Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. -Новосибирск, 1989. 344 с.
  82. А.Н., Пикуза О. И. Клинические аспекты фагоцитоза. Казань, 1993.
  83. Д.Н. Клетки Купфера и патология печени //Патол. физиология и эксперим. терапия. 1985. — № 4. — С. 80−86.
  84. Д.Н., Воронина А. Ю., Воронин Н. П. Макрофаги как индукторы резистентности гепатоцитов к CCI 4 //Патол. физиология и эксперим. терапия. 1988. — Вып.2. — С. 41−44.
  85. Медицинская лабораторная диагностика (программы и алгоритмы). Справочник /Под ред. А. И. Карпищенко. СПб: Интермедика, 2001. -544 с.
  86. Медицинские лабораторные технологии и диагностика: Справочник. Медицинские лабораторные технологии. Т.2 /Под ред. А. И. Карпищенко.- СПб: Интермедика, 1999. 656 с.
  87. Е.Б., Зенков Н. К., Шергин С. М. Биохимия окислительного стресса. Оксиданты и антиоксиданты. Новосибирск: Сибирс. отд. РАМН, 1994.-203 с.
  88. П.И., Руднов В. А. Проблемы и перспективные направления коррекции медиаторного ответа при сепсисе //Анестезиол. и реаниматол.- 1999.-№ 3,-С. 54−59.
  89. В.В., Кудин Г. Б., Нефедова Н. А. Состояние процессов перекисного окисления липидов и антиоксидантной системы в динамике экспериментальной синегнойной интоксикации //Анестезиол. и реаниматол. 2000. — № 3. — С. 41−43.
  90. .С., Габрилович М. И. Значение определения средних молекул в плазме крови при инфекционных заболеваниях вирусной и бактериальной этиологии //Клинич. лаб. диагностика. 2000. — № 1. — С. 9−11.
  91. ЮО.Нанглер Л. Г., Макарова О. В., Замчук Л. А. и др. Супероксиддисмутаза при ишемии печени //Биохимия. 1991. — Т.56, вып.4. — С. 674−679.
  92. Э.В., Киров М. Ю., Егорина Е. М. и др. SAPS II опыт применения для оценки тяжести состояния больных с септическим шоком //Вестн. интенсив, тер. — 1999. — № 2. — С. 3−7.
  93. A.M. Морфологическая диагностика ДВС-синдрома. Шоковая печень //Анестезиол. и реаниматол. 1997. — № 6. — С. 27−31.
  94. C.B., Малахова М. Я. Ершов А.Л. Метаболический статус организма, методы регистрации и интерпретации результатов //Экстремальные состояния и постреанимационная патология. -Новосибирск, 1989. С.79−86.
  95. C.B., Малахова М. Я., Ершов A.M. Диагностика стадии эндогенной интоксикации и дифференцированное применение методов эфферентной терапии //Вестн. хирургии. 1991. — Т. 146, № 3. — С.95−100.
  96. Г. А., Чернядьева И. Ф., Ситина В. К. Средние молекулы -маркер эндогенной интоксикации //Врачебн. дело. 1987. — № 4. — С.72−75.
  97. Т.С., Шестопалов А. Е., Тамазашвили Т. Ш., Лейдерман И. Н. Нутритивная поддержка больных в критических состояниях М.: ООО «Издат. дом «М-Вести», 2002. — 320 с.
  98. О.Ю., Емельянов А. Г., Иванов И. Б. Обмен железа при вирусном гепатите, А и пути коррекции гиперферментемических состояний //Мед. жур. Узбек, 1989. -№ 2. -С. 11−13.
  99. Е.В., Дементьева И. И., Азизова O.A. и др. Изменение реологических свойств крови и осмотической резистентности эритроцитов при активации свободнорадикальных процессов //Клинич. лаб. диагностика. № 3. — 2001. — С. 42−43.
  100. Ю.А., Маркина В. В., Савченко Т. В. Пространственно-временная организация клеточных систем в норме и при патологии //Вестн. Академии мед. наук СССР. 1990. — № 2. — С. 27−33.
  101. Ш. Романов Ю. А. От хронобиологии к хронотопобиологии //Вестник РАМН. 2000. — № 8. С.8−11.
  102. Ю.А. Экологическая патофизиология как основа понимания экозависимых болезней и состояний организма //Тез. докл. II Российского Конгресса по патофизиологии «Патофизиология органов и систем. Типовые патологические процессы. М., 2000. С. 240.
  103. В.А. Сепсис на пороге XXI века: основные итоги, новые проблемы и ближайшие задачи //VII Всерос. съезд реаниматологов и анестезиологов. Лекции и программные доклады. СПб., 2000. — С. 8387.
  104. В.А. Сепсис. Терминология, патогенез, оценка тяжести и интенсивная терапия. Часть 1 //Вестн. интенсив, тер 1997. — № 3. — С. 3345.
  105. Пб.Руднов В. А., Беляев С. В., Николаев Э. К. Оценка тяжести состояния при сепсисе и септическом шоке //Анестезиол. и реаниматол 1995. — № 6. -С.9−12.
  106. B.C., Болдин Б. В., Гельфанд Б. Р. и др. Влияние зондовой декомпрессии кишечника на портальную и системную бактериемию у больных перитонитом //Хирургия. 1993. — № 10. — С. 25−29.
  107. И.С. Оксид азота. Роль растворимой гуанилатциклазы в механизмах его физиологических эффектов //Вопр. мед. химии. 2002. -Т. 48, № 1.-С. 3−31.
  108. В.В., Степанов С. С., Алексеева Г. В. Постаноксическая энцефалопатия. Омск: ООТ. — 1999. — 448 с.
  109. В.В., Лапиш К. Морфологическая диагностика заболеваний печени. М.: Медицина. — 1989. — 336 с.
  110. И.Д., Гаришвили Т. Г. Методы определения малонового диальдегида и диеновых коньюгатов //Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1977. — С. 63−68.
  111. М.К., Гавалова С. М. Синдром перегрузки железом у больных с тяжелыми бактериально-воспалительными заболеваниями и реконвалесцентов //Гематол. и трансфузиология. 1993. — Т. 38, № 3. -С. 21−24.
  112. A.C. Системная эндотоксинемия при хронических вирусных гепатитах //Бюл. эксперим. биол. и медицины. 2002. — Т. 133, № 2. -С. 183−185.
  113. Д.И., Котов А. Ю., Симбирцев A.C. и др. Сравнение цитокинов по способности влиять на уровень секреции ИЛ-8 эндотелиальными клетками //Иммунология. 2002. — Т. 23, № 1. — С. 32−38.
  114. C.B., Бурлев В. А., Ковалев В. Ф. и др. Компьютерный мониторинг, отражающий взаимосвязь показателей доставки кислорода и перекисного окисления липидов //Анестезиол. и реаниматол. 2003. -№ 3. — С.37−40.
  115. П.Г., Сторожук А. П. Образование и устранение реактивных оксигенных радикалов в эритроцитах и их биологическая роль //Вестн. интенсивной терапии. 1998. — № 4. — С. 17−21.
  116. М.С., Цума В. Г., Щербина В. И. и др. Оценка интоксикации организма по уровню молекул средней массы и активности калликреина плазмы крови при разлитом гнойном перитоните у детей //Клинич. лаб. диагностика 2000. — № 11. — С. 4−5.
  117. Е.Д., Федорова Н. В., Бармина А. А. Значение среднемолекулярных пептидов в крови и реакции бласттрансформации лимфоцитов у больных с механической травмой в остром периоде //Клинич. лаб. диагностика 1997. — № 6. — С. 55.
  118. А.Б., Долгих В. Т., Рейс Б.А и др. Использование плазмафереза для коррекции метаболических нарушений у больных с хирургическим сепсисом //Анестезиол. и реаниматол. 2001. — № 2. — С. 51−55.
  119. В.А., Шурлыгина А. В. Проблемы гистофизиологии иммунной системы //Иммунология. 2002. — Т. 23, № 1. — С. 4−8.
  120. З.А. Антиоксидантная активность различных фракций средних молекул и их элиминация при гемосорбции у обожженных //Эфферент. терапия. 1997. — Т. 3, № 1. — С. 53−56.
  121. В.А., Кравченко И. В., Васильева Л. А. и др. Цитотоксическое действие макрофагов на трансформированные клетки мезотелия крысы //Бюл. эксперим. биол. и медицины. 2002. — Т. 133, № 1. — С. 84−86.
  122. М. Влияние высокого внутригрудного давления на функции мозга и печени //Актуальные проблемы анестезиологии и реаниматологии. Освежающий курс лекций /Под ред. Э.В. Недашковского- Архангельск. 1997. — С.219−222.
  123. Н.Г., Ломов Ю. М., Бардахчьян Э. А. Синдром печеночно-почечной недостаточности при эндотоксиновом шоке //Анестезиол. и реаниматол. 1993. — № 2. — С. 24−27.
  124. В.В., Кутушев Ф. К. Эндогенная интоксикация в хирургии //Вестник хирургии. 1990. — Т. 144, № 4. — С.3−8.
  125. Е.В. Особенности суточной динамики обмена железа при поражении паренхимы печени //Дис. канд. мед. наук. Томск. — 1991. -153 с.
  126. Ю.А., Григорьев Е. В., Шерстобитов А. В. и др. Характеристика некоторых компонентов системной воспалительной реакции у больных с распространенным перитонитом //Анестезиол. и реаниматол. 2003. -№ 2.-С. 31−33.
  127. Шварц Я. Ш, Кутина С. Н., Цырендоржиев Д. Д. Функциональная активность мононуклеарных фагоцитов при СС1 4- гепатозе у крыс //Механизмы патологических реакций. Омск, 1988. — С. 89−92.
  128. Н.Г. Лабораторная диагностика нарушений обмена железа //Клинич. лаб. диагностика. 1997. — № 4. — С. 25−31.
  129. Н. М. Котеров А.Н., Конь И. Я. Влияние степени сиалирования трансферрина на его антиоксидантную активность //Биоантиоксидант: Тез. докл. V международной конференции. -М., 1998. С. 189−190.
  130. Шоки: учебно-методическое пособие /Под ред. Д. Н. Маянского -Новосибирск: СибНПЦМК МЗ РФ, 1997. 50 с.
  131. К.Б., Панкин В. З., Руге Э. К. и др. Механизм ингибирования свободнорадикального окисления (З-каротина S-нитрозо-глютатионом и динитрозильными комплексами железа //Докл. РАН. 2001. — Т.379, № 5. — С. 702−704.
  132. .К., Кригер А. Г., Горский В. А. и др. Гнойный перитонит. -М.: Медицина. 1993, — 158 с.
  133. Adam P. S., Chau L.A. Hepatic ferritin uptake and hepatic iron //Hepatology. -1990,-Vol. 11.-P. 805−808.
  134. Afeltra A., Caccavo D., Ferri G.M. et al. Expression of lactoferrin on human granulocytes: analysis with polyclonal and monoclonal antibodies //Clin. Exp. Imunol. 1997. — V.109, № 2. — P. 279−285.
  135. Bacon B.R., Tavill A.S. Role of the liver in normal iron metabolism //Semin. Liver Dis. 1984. — Vol. 4, № 3. — P. 181−192.
  136. Balla, J., H. S. Jacob, G. Balla et al. Endothelial cell heme oxygenase and ferritin induction by heme proteins: a possible mechanism limiting shock damage //Trans. Assoc. Am. Physicians. 1992. — Vol.105. — P.1−6.
  137. Balla J., Nath K. A., Balla G. et al. Endothelial cell heme oxygenase and ferritin induction in rat lung by hemoglobin in vivo //Am. J. Physiol. 1995. -Vol.268, № 2 (Part 1). -P. 321−327.
  138. Basett M.L., Halliday J.W., Powell L.W. Value of hepatic iron mtfsurements in early hemachromatosis and determination of the critical iron level associated with fibrosis //Hepatology. 1986. — Vol. 6. — P. 24−29.
  139. Bauer G. Reactive oxygen and nitrogen species: efficient selective, and interactive signals during intercellular induction of apoptosis //Anticancer Res. -2000. Vol. 20. — P. 4115−4139.
  140. Baynes R.D. Friedman B.M. The effect of ferrous and ferric chelators on transferrin-iron-macrophage interactions //Am. J. Hematol. 1988. — Vol. 29, № 1. — P. 27−44.
  141. Bistrian B.R., Khaodhiar L. The systemic inflammatory response and its impact on iron nutriture in end-stage renal disease //Am. J. Kidney Dis. -1999. Vol. 34, № 4. — P. 35−39.
  142. Bitkover C.Y., Hansson L.O., Valen G. Effects of cardiac surgery on some clinically used inflammation markers and procalcitonin //Scand. Cardiovasc. J. 2000. — Vol. 34, № 3. — P. 307−314.
  143. Bone R.C. The pathogenesis of sepsis //Ann. Intern. Med. 1991. — Vol. 115.-P. 457−468.
  144. Bone R.C., Balk R.A., Cerra F.B. Definition for sepsis and organ failure and guidelines for the use of Innovative the therapy in sepsis //Crit. Care end. -1992,-Vol.20. P. 864−874.
  145. Bone R.C., Grodzin C.J., Balk R.A. Sepsis: a new hypothesis for pathogenesis of the disease process //Chest. 1997, — Vol. 112, — P. 235−243.
  146. Borch-Johnes B., Myhre K., Norheim G. Hypoxia and deposition of iron in liver and spleen of mice given iron supplement //Eur. J. Hematol. 1990. -Vol. 44.-P. 56−62.
  147. Bounous G. The intestinal factor in MOF and shock //Surgery. 1990. — Vol. 107, № 1. — P. 118−119.
  148. Breuer W., Ermers M.J., Pootrakul P. et al. Desferrioxamine-chelatable iron, a component of serum none-transferrin-bound iron used for assessing chelation therapy //Blood. 2001. — Vol. 97. — P. 792−798.
  149. Cadenas E., Davies K.J. Mitochondrial free radical generation, oxidative stress, and aging //Free Radic. Biol. Med. 2000. — Vol. 29. — P. 222−236.
  150. Carmena H.O. Variaciones Diurnas del metabolismo del hierro en humanos normales y en hemopatias //Rev. Esp. Fisiol. 1967. — Vol. 23. — P. 211−214.
  151. Cerra F. Hypermetabolism, organ failure and metabolic support //Surgery.1987.-V. 101.-P. 1−14.
  152. Chang S.W., Fedderms C.O., Henson P.M. et al. Platelet activating factor mediates hemodinamic changes and lung injury in endotoxin treated rats //J. Clin. Invest. — 1987. — Vol. 79. -P.1498−1509.
  153. Connelly K. G., Moss M., Parsons P. E. et al. Serum ferritin as a predictor of the acute respiratory distress syndrome //Am. J. Respir. Crit. Care Med. -1997,-Vol.155.-P.21−25.
  154. Coupade C., Ajuebor M.N., Russo-Marie F., Perretti M., Solito E. Cytokine modulation of liver annexin 1 expression during experimental endotoxemia //Am. J. Pathol. 2001. — Vol. 159, № 4. -P.1435−43.
  155. Cuzzocrea C., Riley D.P., Caputi A.P. et al. Antioxidant therapy: a new pharmacological approach in shock, inflammation, and ischemia/reperfusion injury //Pharmacol. Rev. 2001. — Vol. 53. — P. 135−159.
  156. Damiens E., Mazurier J., el Yazidi I. et al. Effects of human lactofferin on NK cell cytotoxicity against haematopoietic and epithelial tumour cells //Biochim. Biophys. Acta. 1998. — Vol. 24, № 3. — P. 498−502.
  157. Das U.N. Free radicals, cytokines and nitric oxide in cardiac failure and myocardial infarction //Mol. Cell. Biochem. 2000. — Vol.215. — P. 145−152.
  158. Davies N.A., Cooper C.E., Stidwill R. et al. Inhibition of mitochondrial respiration during early stage sepsis //Adv. Exp. Med. Biol. 2003. — Vol. 530. -P 725−736.
  159. Decamp M.M., Demling R.H. Multiple organ system failure //J. Trauma.1988.-№ 10.-P. 803−809.
  160. Deitch E.A. The role of intestinal barrier failure and bacterial translocation in the development of systemic infection and multiple organ failure //Arch. Surg. 1990. — Vol.125, № 3. — P. 403−493.
  161. Deitch E.A. Gut Failure: Its role in the multiple organ failure Syndrome. In Multiple organ failure: pathophysiology and basic concepts of therapy /Ed. by Deitch E. Stuttgart — New York: Georg Thieme Verlag. — 1990. — P 123−145.
  162. Deitch E.A., Bridges W.M. et al. Obstructed intestine as a reservoir for systemic infection //Am. J. Surg. 1990. — Vol. 159, № 2. — P. 394−401.
  163. Devies M.G., Fulton G.J., Hagen P.O. Clinical biology of nitric oxide //Br. J. Surgery. 1995. — Vol. 82. — P. 1598−1610.
  164. Dinarello C., Mier J. Lymphokines: Current concepts //New Engl. J. Med. -1987.-№ 317.-P. 940−945.
  165. Dolloz F., Maupoil V., Lecour S. et al. In vitro studies of unteractions of NO» donor drugs with superoxide and hydroxyl radicals //Cell. Biochem. 1997. -Vol. 177.-P. 193−200.
  166. Donnelly S. C., Stricter R. M., Kunkel S. L. et al. Interleukin 8 (IL-8) and the development of the adult respiratory distress syndrome (ARDS) in at-risk patient groups //Lancet. 1993. — Vol. 341 — P. 643−647.
  167. Eisenstein R.S. Iron regulatory protein and the molecular control of mammalian iron metabolism //Annu. Rev. Nutr. 2001. — Vol. 20. — P. 627 662.
  168. Festa M., Mumby S., Nadel S. et al. Antioxidant protection against iron in children with meningococcal sepsis //Crit. Care Med. 2002. — Vol. 30, № 7. -P. 1623−1629.
  169. Fiddian-Green R.G. Splanchnic ischemia and multiple organ failure in the critically ill //Ann. R.- Coll. Surg. Engl. 1988. — Vol. 70, № 3. — P. 128−134.
  170. Filkins J.P. Monokines and the metabolic patophysiology of septic shock //Fed. Proc. 1985. — № 44. — P. 300−304.
  171. Finch C.A. Huebers H. Perspectives in iron metabolism //New Engl. J. Med. -1982. Vol. 306, № 25. — P. 1520−1528.
  172. Folbergrova J., Kiyota Y., Pahlmark K. et al. Does ischemia with reperfusion lead to oxidative damage to proteins in the brain? //J. Cereb. Blood Flow Metab. 1993. — V.13. — P. 145−152.
  173. Fong Y. Lowry S. Tumor necrosis factor in the pathophysiology of infection and sepsis //Clin. Immunol. Immunopathol. 1990. — Vol. 55. — P. 157−170.
  174. Fry D.E. Multiple system organ failure //Surg. Clin. North Amer. 1988. -Vol. 68.-P. 107−122.
  175. Fujii H., Yoshikawa K., Berliner L.J. In vivo fate of superparamagnetic iron oxides during sepsis //Magn. Reson. Imaging. 2002. — Vol. 20, № 3. -P. 271−276.
  176. Gaitzsch A., Lefering R., Weber D. et al. Early recognition of sepsis using IL-6,TNF, elastase and CRP //Inf. Care Med. 1994. — № 1. — P. 428.
  177. Giroir B.P. Mediators of sepsic shok- interrupting the endogenous inflammatory //Med. 1993. — Vol. 2. — P. 780−889.
  178. Goris R.J.A. Mediator multiple organ failure //Int. Care Med. 1990. -Vol.16.-P. 192−196.
  179. Gullo A. Sepsis and organ dysfunction failure. An overview //Minerva Anestesiol. 1999. — Vol. 65. — P. 529−540.
  180. Guo H., Wei J., Kuo P.C. et al. Nitric oxide inhibits expression of cytochrome B in endotoxin-stimulated murine macrophages //Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. — Vol. 289, № 5. — P. 993−997.
  181. Halliwell B., Gutteridge J.M.C., Cross C.E. Free radicals, antioxidants and human disease: Where are we now? //J. Lab. Clin. Med. 1992. — Vol. 119. -P. 598−620.
  182. Hirayama, M., Y. Kohgo, H. Kondo, et al. 1993. Regulation of iron metabolism in HepG2 cells: a possible role for cytokines in the hepatic deposition of iron //Hepatology. Vol.18. — P. 874−880.
  183. Hoen B., Paul-Dauphin A., Kessler M. Intravenous iron administration does not significantly increase the risk of bacteremia in chronic hemodialysis patients //Clin. Nephrol. 2002. — Vol. 57, № 6. — P. 457−461.
  184. Iscra F., Bone R.C., Balk R.A., Cerra F.B. Definition for sepsis and organ failure and guidelines for the use of Innovative the therapy in sepsis //Crit. Care Med. — 1992. — Vol.20. — P. 864−874.
  185. Jean G. Incidence and risk factors for infections from hemodialysis catheters //Nephrologie. 2001. — Vol. 22, № 8. — P. 443−448.
  186. Johnson R.B.Jr. Monocytes and macrophages //N. Engl. J. Med. 1988. -Vol. 318.-P. 747−452.
  187. Jung M., Drapier J.C., Weidenbach H. et al. Effects of hepatocellular iron imbalance on nitric oxide and reactive oxygen intermediates production in a model of sepsis // J. Hepatol. 2000. — Vol. 33, № 3. — P. 387−394.
  188. KandaN., Tsuchida T., Tamaki K. et al. Testosterone inhibits immunoglobulin production by human peripheral blood mononuclear cells //Clin. Exp. Immunol. 1996. — V. 106, № 2. — P. 410−415.
  189. Kim H., Lee T.H., Park E.S. et al. Role of peroxiredoxins in regulating intracellular hydrogen peroxide and hydrogen peroxide-induced apoptosis in thyroid cells //J. Biol. Chem. 2000. — Vol. 275. — P. 18 266−18 270.
  190. Knaus W.A., Wagner D.P., Draper E.A. et al. APACSE II: A severity of disease classification system //Crit. Care Med. 1985. — Vol. 13. — P 818−829.
  191. Kobune, M., Kohgo Y., Kato J. et al. Interleukin-6 enhances hepatic transferrin uptake and ferritin expression in rats //Hepatology. 1994. -Vol. 19.-P. 1468−1475.
  192. Konukoglu D., Ercan M., Ziylan E. Trace element levels in the experimental peritonitis //Trace Elem. Med. Biol. 2001. — Vol. 15, № 2−3. — P. 115−118.
  193. Kruzel M.L., Harari Y., Mailman D. Differential effects of prophylactic, concurrent and therapeutic lactoferrin treatment on LPS-induced inflammatory responses in mice //Clin. Exp. Immunol. 2002. — Vol. 130, № 1. — P. 25−31.
  194. Kuhn E., Brodan V. Changes in the circadian rhythm of serum iron induced by a 5-day sleep derivation //Eur. J. Appl. Physiol. 1982. — Vol. 9. — P. 215−222.
  195. Lankin V.Z., Tikhaze A.K., Konovalova G.G. et al. HMG-CoA, reductaseinhibitors induced the LDL oxidation //J. Mol. Cell. Cardiol. 2001. -Vol. 33.-P. 65.
  196. Levin J.J., Fettei M.J., Valderrama E. Nitric oxide and inflammatory bowel disease: evidence for local intestinal production in children with active colonic disease //J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 1998. — Vol.26. — P. 34−38.
  197. Loria R.M., Padqett D.A., Huynh P.N. Requlation of the immune response by dehydroepiandrosterone and its metabolites: Pap. Int. Symp. DHEA Transform. Tarqet Tissues, Quebec, 1995 //J. Endocrinol. 1996. — Vol. 150. -P. 209−220.
  198. Martinez M.A., Pena J.M., Fernsndez A. et al. Time cource and prognostic significance of hemostatic changes in sepsis% relation to tumor necrosis factor-alpha //Crit. Care Med. 1999. — Vol.27, № 7. — P. 162−166.
  199. Marx J.J. Iron and infection: competition between host and microbes for a precious element //Best Pract. Res. Clin. Haematol. 2002. — Vol. 15, № 2. -P. 411−426.
  200. McLachian J.A., Serein C.D., Bakouche O. Dehydroepiandrosterone modulation of lipopolysaccharide-stimulated monocyte cytotoxicity //J. Immunol. 1996. — Vol. 156, № 1. -P. 328−335.
  201. Meakins J.L., Marchall T. The gastrointestinal tract: the «motor» of MSOF //Arch. Surg. 1986. — Vol.121, № 2. — P. 197−201.
  202. Meisner M., Brunkhorst F.M., Reith H.B. et al. Clinical experiences with a new semi-quantitative solid phase immunoassay for rapid measurement of procalcitonin //Clin. Chem. Lab. Med. 2000. — Vol. 38, № 10. — P.989−95.
  203. Messaris E., Antonakis P.T., Memos N. et al. Deferoxamine administration in septic animals: improved survival and altered apoptotic gene expression //Int. Immunopharmacol. 2004. — Vol. 4, № 3. — P. 455−459.
  204. Miller A.H., Spencer R.L., Pearce B.D. et al. Glucocorticoid receptors are differentially expressed in the cells and tissues of the immune system //Cell. Immunol. 1998, — Vol. 186, № 1. — P. 45−54.
  205. Morgan E.H., Baker E. Iron uptake and metabolism by hepatocytes //Fed. Proc. 1986. — Vol. 45. — P. 2810−2816.
  206. Morris C. J., Earl J. R., Trenam C. W., Blake D. R. Reactive oxygen species and iron: a dangerous partnership in inflammation //Int. J. Biochem. Cell Biol. 1995.-Vol. 27.-P. 109−122.
  207. Mowat A.P. Coagulation disturbances and fulminant liver failure //Arch. Dis. Child. 1985. — Vol. 60, № 7. — P. 686.
  208. Ono S., Ichikura T., Mochizuki H. The pathogenesis of the systemic inflammatory response syndrome and compensatory antiinflammatory response syndrome following surgical stress //Nippon Geka Gakkai Zasshi. -2003. Vol. 104, № 7. — P.499−505.
  209. Ono S., Mochizuki H. Mechanism of immune suppression after surgical stress and host defense against infection //Nippon Geka Gakkai Zasshi. 2003. -Vol. 104, № 12. — P.822−7.
  210. Patteril M.V., Davey-Quinn A.P., Gedney J.A. et al. Functional iron deficiency, infection and systemic inflammatory response syndrome in critical illness //Anaesth. Intensive Care. 2001. — Vol. 29, № 5. — P. 473−478.
  211. Pinsky M.R., Vincent I.L., Kahn R.I. Inflammatory mediators of septic in man //Am. Rev. Resp. Dis. 1990. — Vol. 141. -P.67.
  212. Quan S.G., Golde D.W. Identification and localization of toxic elements in normal human lung macrophages //Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1981. -Vol.167.-P. 175−181.
  213. Quinlan G.J., Chen Y., Evans T.W. Iron signalling regulated directly and through oxygen: implications for sepsis and the acute respiratory distress syndrome //Clin. Sci. (Lond). 2001. — Vol. 100, № 2. — P. 169−182.
  214. Raja K.B., Ratnayake I.D., Jayasinqhe N. et al. The role of macrophaqes in the control of intestinal iron absorption //Clin. Sci. 1996. — V. 91, № 1. — P.3.
  215. Rangel-Fausto M.S., Pittet D., Costigan M. et al. The natural history of the systemic inflamatory response (SIRS). A prospective study //JAMA. 1995. -V. 273, № 2. -P. 117−123.
  216. Reidy J.J., Ramsay G. Clinical trials of selective decontamination of the degistive tract: review //Crit. Care. Med. 1990. — Vol. 18, № 12. — P. 14 491 455.
  217. Reif, D. W. Ferritin as a source of iron for oxidative damage //Free Radic. Biol. Med. 1992. — Vol.12. — P. 417−427.
  218. Reinhart K. Diagnosis of sepsis. Novel and conventional parameters //Minerva Anestesiol. 2001. — Vol. 67, № 10. — P.675−82.
  219. Reinhart K., Karzai W. Anti-tumor necrosis factor therapy in sepsis: update on clinical trials and lessons learned //Crit. Care Med. 2001. — Vol. 29, № 7. -P.121−125.
  220. Ritter C., Andrades M.E., Reinke A. et al. Treatment with N-acetylcysteine plus deferoxamine protects rats against oxidative stress and improves survival in sepsis //Crit. Care Med. 2004. — Vol. 32, № 2. — P. 342−349.
  221. Runcie C., Ramsay G. Intraabdominal infections: pulmonare failure //World J. Surg. 1990. — Vol. 14, № 2. — P. 196−203.
  222. Sarfen J.L., Balint J.T. The clinical significance of hyperbilirubinemia following trauma //J. Trauma. 1982. — Vol. 18, № 2. — P. 58−62.
  223. Sastre J., Pallardo F.V., Vina J. Mitochondrial oxidative stress plays a key role in aging and apoptosis //Life. 2000. — Vol. 49. — P. 427−435.
  224. Schubert T., Echtenacher B., Hofstadter F. et al. TNF-independent development of transient anemia of chronic disease in a mouse model of protracted septic peritonitis //Lab. Invest. 2003. — Vol. 83, № 12. — P. 17 431 750.
  225. Sganga G., Siegal J.H., Brown G. et al. Reprioritisation of hepatic plasma protein release in trauma and sepsis //Arch. Surg. 1985. — Vol. 120, №. 2. -P. 187−199.
  226. Sharkey R.A., Donnelly S.C., Connelly K.G. et al. Initial serum ferritin levels in patients with multiple trauma and the subsequent development of Acute Respiratory Distress Syndrome //Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1999. — Vol. 159, № 5.-P. 1506−1509.
  227. Siegal J. H., Cerra F.B., Coleman B. et al. Physiological and metabolic correlations in human sepsis //Surgery. 1979. — Vol. 86, № 2. — P. 163−193.
  228. Tarquini B. Iron metabolism: clinical chronobiological aspects //Chronobiologia. 1978. — Vol. 5. — P. 314−336.
  229. Tarhelli D., Recalcati S., Basilico N. et al. Macrophage preconditioning with synthetic malaria pigment reduces cytokine production via heme iron-dependent oxidative stress //Lab. Invest. 2000. — Vol. 80. — P. 1781−1788.
  230. Teehan G.S., Bahdouch D., Ruthazer R. et al. Iron storage indices: novel predictors of bacteremia in hemodialysis patients initiating intravenous iron therapy //Clin. Infect. Dis. 2004. — Vol. 38, № 8. — P. 1090−1094.
  231. Tsokos M. Immunohistochemical detection of sepsis-induced lung injury in human autopsy material //Leg. Med. (Tokyo). 2003. — Vol. 5, №. 2. — P. 7386.
  232. Tsukada S., Enomoto N., Takei Y. et al. Dalteparin sodium prevents liver injury due to lipopolysaccharide in rat through suppression of tumor necrosis factor-alpha production by Kupffer cells //Alcohol Clin. Exp. Res. 2003. -Vol. 27, № 8-P. 7−11.
  233. Veqeto E., Pollio G., Pellicciari C. et al. Estrogen and progesterone induction of survival of monoblastoid cells undergoing TNF-alpha induced apoptosis //FASEB J. 1999. — Vol.13, № 8,. — P. 793−803.
  234. Vincent J.-L., Moreno R., Takala J. et al. The SOFA (Sepsis-related Organ Failure Assesment) score to describe organ disfunction failure //Intensive Care Med. 1996. — V. 22, N 5. — P. 707−710.
  235. Vincent J.-L. Coagulation abnormalities in sepsis: prospets for new therapeutic intervention //Int. J. Intensive Care Med. 2000. — Vol. 7, № 1. — P. 6−10.
  236. Vincet P.A., Cho E., Saba T.M. Effect of repetitive low-dose endotoxin on liver parenchymal and Kupffer cell fibronectin release //Hepatology. 1989. -Vol. 9, № 4.-P. 562−569.
  237. Vulcano M., Meiss R.P., Isturiz M.A. Deferoxamine reduces tissue injury and lethality in LPS-treated mice //Int. J. Immunopharmacol. 2000. — Vol. 22, № 8.-P. 635−644.
  238. Wanner G.A., Keel M., Steckholzer U. et al. Relationship between procalcitonin plasma levels and severity of injury, sepsis, organ failure, and mortality in injured patients //Crit. Care Med. 2000. — Vol. 28, № 4. — P. 950 957.
  239. Wardrop S.L., Richardson D.R. Interferon-(gamma) and lipopolysaccharide regulate the expression of Nramp2 and increase the uptake of iron from low relative molecular mass complexes by macrophages //Eur. J. Biochem. 2000. -Vol. 267.-P. 6586−6593.
  240. Wellhausen S.R., Watson M.S. Challenge of the mononuclear phagocytic system with colloidal carbon alters lymphocyte distribution and responsiveness //Imm. Invest. 1990. — Vol. 19, № 2. — P. 187−197.
  241. White B.C., Grossman L.I., O’Neil B.J. et al. Global brain ischemia and reperfusion //Ann. Emerg. Med. 1996. — Vol. 27, № 5. — P. 588−594.
  242. Wizorek J.J., Turnbull I.R., Buchman T.G. Iron overload before cecal ligation and puncture increases mortality //Shock. 2003. — Vol. 20, № 1. — P. 52−55.
  243. Yang H., Wang H., Bernik T.R. et al. Globin attenuates the innate immune response to endotoxin //Shock. 2002. — Vol. 17, № 6. — P. 485−490.
  244. Zager R.A., Johnson A.C., Hanson S.Y. Parenteral iron therapy exacerbates experimental sepsis. Rapid communication //Kidney Int. 2004. — Vol. 65, № 6.-P 2108−2112.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!