Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Структурно-функциональные изменения лизосом печени при стимуляции и депрессии системы мононуклеарных фагоцитов

Диссертация: Структурно-функциональные изменения лизосом печени при стимуляции и депрессии системы мононуклеарных фагоцитов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Основные положения диссертации были доложены и обсуждены на Молодежной научной конференции СО РАМН «Фундаментальные и прикладные проблемы современной медицины», (Новосибирск, 2000) — на Рабочем совещании «Лизосомные болезни, модели, терапии» (с международным участием) (Новосибирск, 2000) — на V Сибирском физиологическом съезде (Томск, 2005) — на Всероссийской научно-практической Конференции «Дни… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Система мононуклеарных фагоцитов
      • 1. 1. 1. Структурно-функциональные особенности клеток системы мононуклеарных фагоцитов
      • 1. 1. 2. Активация системы мононуклеарных фагоцитов
    • 1. 2. Роль ферментов лизосом в развитии иммунных реакций
    • 1. 3. Модификаторы биологического ответа — гликаны
    • 1. 4. Характеристика клеток печени при депрессии макрофагов. печени
  • Глава 2. Материалы и методы исследования
    • 2. 1. Лабораторные животные
    • 2. 2. Схема введения исследуемых веществ
    • 2. 3. Препаративные процедуры
    • 2. 4. Цитоморфологическое исследование периферической крови
    • 2. 5. Определение поглотительной активности макрофагов
    • 2. 6. Модель селективной депрессии макрофагов печени in vivo
    • 2. 7. Изучение физико-химических свойств лизосом печени мышей
    • 2. 8. Методы определения активности ферментов и содержания белка
    • 2. 9. Определение активности ФНО-а
    • 2. 10. Морфологические методы исследования
    • 2. 11. Статистические методы обработки результатов
  • Глава 3. Результаты собственных исследований
    • 3. 1. Оценка функциональной активности системы мононукулеарных фагоцитов при стимуляции гликанами
      • 3. 1. 1. Масса печени и селезенки
    • 3. 12. Показатели лейкоцитов периферической крови и данные исследования костного мозга.,.&bdquo-,&trade-,&bdquo-,
    • 3. 1,4, ФНО-а при воздействии различных стимуляторов макрофагов зимозан, КМ Г, ХитоКМГ)
    • 3. 1,4.Морфометричсское электронномнкроскопическое исследование"**
  • 3,8,1 Активность ферментов лизосом (свободная и удельная активность кислой фосфаты в гомогемате печени- активность хитотрнотидазы сыворотки крови).SO
    • 3. 2. Оценка функциональной активности системы мононуклеарных фагоцитов печени при введении хлористого гадолиния.&bdquo-—-——.,-,&bdquo
    • 3. 2,1. Динамика накопления гадолиния в ткани печени при внутривенном введении мышам хлористого гадолиния
  • 3,2−2, Электронномнкроскопическое исследование и показатели периферической крови при введении хлористого гадолиния

3.2.3. Определение активности ферментов лизосом { свободная н удельная активность кислой фосфатазы в гомогенате печени, повреждаемость лизосом в гипотонической среде in vi (rot активность хитотриозидазы, глюкуронидазы, р-галактозкдазы, p-D- гексозаминидазы в сыворотке кропи как показателей секреци к макрофагов печени).&trade-.

3−3- Влияние предварительной стимуляции системы мононуклеарных фагоцитов гликанами при депрессии макрофагов печени, вызываемой хлористым гадолинием.

3.3.1, Морфометричсские данные.

3.3.2, Показатели периферической крови при предварительной стимуляции СМФ гликанамн при депрессии макрофагов печенн, вызываемой хлористым галолнн нем. .".

3.3.3, Определение активности ферментов лизосом клеток печени при предварительной стимуляции СМФ гликанами при депрессии макрофагов печенн, вызываемой хлористым гадолинием.

Глава 4. Обсуждение результатов.

Структурно-функциональные изменения лизосом печени при стимуляции и депрессии системы мононуклеарных фагоцитов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

Одной из важных задач в изучении активации макрофагов является оценка состояния популяции и управления их поведением. Разрабатываемые иммуномодуляторы активно используются в качестве эффективного инструмента раскрытия интимных механизмов иммуногенеза. Изменение активности СМФ после предварительной стимуляции полисахаридами дрожжевого и бактериального происхождения связано не только с активацией поглотительной и переваривающей функции макрофагов, но и секрецией макрофагами простагландинов, усиливающих микроциркуляцию, факторов стимулирующих гранулоцитои эритропоэз, синтез фибронектина, компонентов комплемента, а также факторов естественной резистентности, таких как интерлейкины 1, интерферон а, Р (Маянский Д.Н. с соавторами, 1990; Medzhitov R., et.al., 1997; Kogan et al., 2004). Показана депрессия поглотительной функции макрофагов печени и протективное действие предварительной стимуляции СМФ зимозаном. Стимуляция зимозаном открыла новые возможности для лекарственного воздействия по управлению функционирования клеток СМФ при их депрессии.

В связи с вышеизложенным представляется актуальным исследование стимуляции СМФ новыми перспективными соединениями, лишенными неблагоприятных особенностей их действия, связанных с формированием гранулематозных очагов, активацией неуправляемой пролиферации клеток, стимуляцией синдрома внутрилизосомного накопления за счет усиления захвата и подавления деградации биополимеров.

Модификаторы биологического ответа представляют большой интерес для клинической и экспериментальной медицины. Перспективно их использование в онкологии, хирургии, и других областях медицины, при лечении различных воспалительных заболеваний (инфекционной, паразитарной природы).

В течение последних лет разработана модель селективной депрессии макрофагов печени in vivo с помощью введения крысам хлористого гадолиния, обнаружено повреждающее действие хлористого гадолиния не только на макрофаги, но и на клетки печеночной паренхимы (электронно-микроскопические данные) (Hardonk M.J., et.al., 1995). Обнаружено нарушение стабильности лизосом гепатоцитов и макрофагов (по увеличению свободной активности маркерных ферментов этих клеток — катепсина L и катепсина В соответственно) (Korolenko Т.A., et.al., 1997; Короленко Т. А., Свечникова И. Г., 1998). В нашей лаборатории обнаружено, что при депрессии макрофагов печени происходит активация маркерных ферментов лизосом, макрофагов селезенки и в некоторой степени — макрофагов легких (активность Р-гексозаминидазы) (Safina A.F., et.al., 1992).

Выявлено защитное действие хлористого гадолиния на модели воспаления, вызываемого зимозаном у крыс и мышей. Обнаружены лизосомотропные свойства хлористого гадолиния, которые представлены и у других лантаноидов — соединений лантана и иттрия. Модели с введением всех указанных соединений вызывают депрессию фагоцитоза частиц углерода макрофагами печени. (Короленко Т.А., с соавторами, 2002).

Введение

всех этих соединений может быть использовано как модель депрессии фагоцитоза макрофагов клеток печени.

Цель исследования:

Изучить эффективность стимуляции макрофагов новым химически модифицированным гликаном при фармакологически обусловленной депрессии макрофагов печени, вызываемой хлористым гадолинием.

Для решения этой цели поставлены следующие задачи:

1. Изучить эффективность стимуляции СМФ хитокарбоксиметилгликаном в сравнении с карбоксиметилгликаном.

2. Исследовать захват гадолиния клетками печени мышей при внутривенном введении соединения и влияние на функциональную активность лизосом клеток печени.

3. Выявить эффективность стимуляции макрофагов печени хитокарбоксиметилгликаном и карбоксиметилгликаном при депрессии макрофагов печени, вызываемой введением хлористого гадолиния.

4. Исследовать активность лизосомных ферментов и ультраструктурные изменения клеток печени при введении гликанов, хлористого гадолиния и их совместном использовании.

Научная новизна.

Впервые проведено сравнительное исследование новой группы модификаторов биологического ответа — химически модифицированных гликанов как стимуляторов макрофагов. Показано, что гликаны увеличивали содержание лейкоцитов периферической крови мышей, увеличивая содержание нейтрофилов, очевидно, влияя на костный мозг. Обнаружено, что исследованные гликаны оказывали защитное действие при депрессии макрофагов печени.

Научно-практическая ценность.

Полученные данные могут служить основой для разработки основ применения новых иммуномодуляторов — модификаторов биологического ответа.

Положения, выносимые на защиту:

1.

Введение

P-1.3-D гликанов вызывает стимуляцию СМФ, увеличивает количество макрофагов периферической крови, повышает поглотительную способность макрофагов.

2. Предварительное введение 0−1,3-D гликанов при введении хлористого гадолиния оказывает протективное действие, связанное с восстановлением числа макрофагов печени, активности их маркерного фермента хитотриозидазы и предотвращением возникновения ультраструктурных нарушений клеток печени.

3. Усиление фагоцитоза при стимуляции гликанами сопровождается увеличением числа первичных лизосом в макрофагах печени, повышением секреции кислых гидролаз и маркерных ферментов макрофагов, что может быть одним из механизмов повышения неспецифической резистентности организма.

Апробация работы.

Основные положения диссертации были доложены и обсуждены на Молодежной научной конференции СО РАМН «Фундаментальные и прикладные проблемы современной медицины», (Новосибирск, 2000) — на Рабочем совещании «Лизосомные болезни, модели, терапии» (с международным участием) (Новосибирск, 2000) — на V Сибирском физиологическом съезде (Томск, 2005) — на Всероссийской научно-практической Конференции «Дни иммунологии в Сибири» (Красноярск, 2005) — на I съезде терапевтов Сибири и Дальнего Востока (Новосибирск, 2005), межлабораторном семинаре ГУ НИИ физиологии СО РАМН (2006).

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 16 печатных работ, из них -6 статей.

Объем и структура диссертации.

Выводы.

1, Морфологически стимуляция Мф гликанами характеризовалась: увеличением числа макрофагов печени и численной плотности вторичных лизосом по данным морфометрнчсского электрон номнкроскопнческого исследования.

2, Выявлено увеличение числа моноцитов периферической кровиповышение функциональной активности макрофагов по данным теста клиренса углерода.

3, Биохимически — исследуемые гликаны увеличивали выработку ФНО-аповышали активность свободной кислой фосфатазы в гомогенатах печениувеличивали активность хитотриозидазы сыворотки крови.

4. Более выраженные признаки стимуляции Мф отмечены прн использовании ХитоКМГ по сравнению с КМГ, а внутривенный способ введения более эффективен, чем нкутрибрюшинный.

5. На модели депрессии макрофагов показано, что максимальное накопление гадолиния происходит через I сутки с постепенным выведением соединения через 37 суток, что указывает на л наосом отрогаше свойства гадолиния. Прн накоплении гадолиния огмечена повышенная секреция ферментов лизосом.

6. Предварительное введение р — 1,3 — D — гликанов (за 24 часа) мышам ускоряло процесс захвата гадолиния клетками печенн, увеличивая концентрацию гадолиния в ткани нечени.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Авдонин ГШ, Ткачук В. А. Рецепторы и внутриклеточный кальций -Москва: Наука. — 1994. — С.288.
  2. Автанднлов Г. Г, медицинская морфомстрия Москва: Медицина. — 1990, -С J 83,
  3. Бабаева А, Г., Белан Е. И. Лнмфоцитарно-макрофагальная регуляция рспаратнвного эритропоэза // Вести. АМН СССР. 1990. — Т.2 — С.27−30.
  4. Бала ЮМ-, Сидельникова В. И., Лнфшнц ВМ, Механизмы тканеспецифической регуляции гранулоцнтопоэза при воспалении // Патол. Физиология и экспер. терапия. 1991.- № 4- С, 60−61.
  5. А.Дж., Хит М, Лизосомы: методы нсслсдовання. Под. Ред. Дж. Дингла: пер. с анг Мм t980.- С.25−156.
  6. Гончарова И. А,., Жанасаа С. Я., Левина О. А., Фаламесва OJ3. t Короленко Т. А. Изменение функции печени при стимуляции и депрессии макрофагов у крыс вистар с токсическим гепатитом // Бюл. СО РАМН. 2004. — № 4 (114). -С.84−87.
  7. Гольдберг ЕД, Дыгай А, М-, Щахоа В. Л. Методы культуры ткани в гематологии Томск. — J992. — С.264.
  8. Гольдберг Е, Д" Дыгай А. М-, Жданов R.B. Роль гемоноэзиндуцируюшего микроокружения в регуляции кроветворения при цитостатичсскнх миелосупресснях -Томск.- 1999 -С.114.
  9. Т.А., Пулышев А. Б., Малыгин А. Е. Снижение скорости протеолнза и лабилизаиня лизосом печени крыс при введении сурамнна //Бюл. экспернм. биол. и медицины. 1980. — Т.90, № 12. — С, 686 -688,
  10. Т.А. Структурно-функциональные изменения лизосом при повреждении печени и воздействии лизосомотропных препаратов: Автореф. Дне. Док. Мед. Наук. 1983. — 403 С.
  11. Н.Короленко Т. А. Лнзосомотропные препараты //Успехи современной биологии 1984.-Т.97.-Вып. Ь С. 101−115.
  12. Короленко «Г. А. Пупышсв А.Б., Малыгин А. Е., Гаврилова Н. И., Курушсва Н И- Оценка структурных и функциональных нарушений лизосом печени при токсическом гепатите // Бюл. экспернм. биол. и медицины. 1985. -ТЛ00.Ш.- С 169−172.
  13. Т.А. Катаболизм белка в лизосомах. Новосибирск: Наука -1990.-185 С.
  14. Т.А., Свечннкова И.Г, Регуляция цистсиновых протсиназ лизосом клеток печени при стимуляции и депрессии макрофагов // Вестник РАМН. 1998. -№ 10. — С. 26−29.
  15. ТА. Цистеиновые протеиназы лизосом и развитие опухолей И Фундаментальные и прикладные аспекты современной биохимии. Труды науч. конф. С-Петербург. — 1998. — Т. I, С, 179−187.
  16. Т.А., Урюгаянеа К. Ш., Верещагин ЕЛ- и др. Механизм защитного действия лизосомотропных соединений стимуляторов макрофагов — при хроническом гепатите //Патогенез хронического воспаления — 2002.-№ 3.- С- 132−136
  17. Г. Ф. Биометрия. Москва- Высшая школа, 1990. -С.352.
  18. Е. А, Беляева Т.Н., Моженок Т. П. Функциональная роль лизосомного аппарата в эндоцнтозе и трансфекцнн ДНК в клетках эукарнот //Бюллетень СО РАМН 2001, — Jfe L — С 46−49.
  19. Манько В. М-, Петров Р. В., Хаитов P.M. Пммуномодуляция: история, тенденции развития, современное состояние и перспективы //Иммунология, 2002. — № 3.- С. 132−136.
  20. Д.Н. Актуальные аспекты изучения купфсровскнх клеток печени //Успехи современной биологин 1979. — Т. 82, вып. 3, № 6. — С. 410−427.
  21. Д.Н. Клетка Купфера и система мононуклеарных фагоцитов -Новосибирск- Наука, 1981- 172 с.
  22. Д.Н., Маянский А. Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. -Новосибирск: Наука. Снб, Отделение. 1989. -341 С.
  23. Д.Н., Цырсндоржиев Д. Д. Активация макрофагов И Успехи соврем, Биологии. 1990 -Т. 109, вып.З. — С- 352−368.-
  24. Д.Н. Хроническое воспаление. М.: Медицина, 1991. — 270 С.
  25. Маянский Д Н. Иммунологические свойства сннусондных клеток // Успехи соврем. Биологии,-1992. -ТД12 вып. I. С Л 00−114,
  26. Д.Н., Висе Э&bdquo- Декер К. Новые рубежи гепатологии -Новосибирск- Наука, Снб, Отделение, 1992, — С. 254,
  27. Маянский ДЛ, Урсов ИТ. Лекции по клинической патологии Новосибирск. ¦ 1997.-с. 249.
  28. Н.Н., Краснова Е. И., Маян екая СД., Ефремов А. В., Пирожкова Н. И., Ванюнина В. В., Рычкова RA., Вохминцева Л. В., Яшанина HJ1 Клинические аспекты структурно-функциональных изменений лизосом //БюллетеньСО РАМН. 2001.- № I. — С. 41−46.
  29. ЗбгМеньшиков В, В, Делекторская Л. Н., Золотнникая Р, П, Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник. //Под ред. В. В. Меныиикова.-М.: Медицина, 1987. С. 368 .
  30. Панин Л. Е, Маянская RH, Лнзосомы- роль в адаптации и восстановлении. -Новосибирск: Наука, 1987. 200 С,
  31. А.А., Тутельян В, А. Лнзосомы. М.: Наука, 1976. -382 С
  32. Покровский А. А, Тутельян В. А., Кравченко Л. В. К вопросу об оценкестабильности мембран лизосом //Биохимия. ¦ 1975. Т, 40, вып.З. С. 545 -553.
  33. А.А., Крыстев Л. П. Печень, лиэосомы и питание. София: Болгарская академия наук. — 1977, — 207 С.
  34. Тыльки-Шнманска А., Чарторыска Б., Луговска А, Определение активности хиторнозндазы в сыворотке как селективный скрининг для некоторых лизосомных болезней накопления //Бюллетень СО РАМН, 2001. — № 1,-С.6−16,
  35. И.С. Ключевая позиция макрофагов в цитокиновой регуляториой сети //Иммунология, -1995, № 3, — С- 44−48,
  36. Фрейдлнн И. С. Система моиоиуклеарных фагоцит08.-М.:Мелнцина. 1984. — С- 272.
  37. Й., Коган Г., Маслер Л. Структура и некоторые характеристики р-D-гликанов II Вопросы мед. химии. 1990. Том 36, выпуск 6. С. 39−42.
  38. Хантов Р. М» Пинегин Б. В, Современные подходы к оценке основных этапов фагоцитарного процесса //Иммунология. * 1995. С. 3−8.
  39. О., Czop J. К. Stimulation of human monocyte p-glucan receptors by glucan particles induces production of TNF-a and IL-lp //Int. J. Immimopharmacot. 1992.- Vol. 14, — P. 1363−1373.
  40. Abel G., Szolkwi J, Chihara G, Fachet J. Effect of lentinan on pinocytosis in mouse peritonea. macrophages and the murine macrophage cell line C4M phi Ln vitro //Int. J. Immunopharrnacol 1986. — Vol, 8. — P 919−924.
  41. Akira S-, Takeda K., Kaisho T. Toll-like receptors: critical proteins linking in nate and acquired immunity //Nat. Immunol 2001, — Vol. 2. — P, 675−680.
  42. Alban S., Franz G, Partial synthetic glucan sulfates as potential new antithrombotics^ review //Biomacromolcculcs. 2001. — Vol. 2 (2). — P. 354 361*
  43. Alban S.(Schauerte A. A. Franz G. Anticoagulant sulfated polysaccharides:
  44. Part 1. Sythesis and structure-activity relationships of new pullulan sulfates
  45. Carbohydr. Polym. 2002. — Vol. 47 (3), — P 267−276.
  46. Andus Т., Bauer J., Geroc W. Effects of cytokines on the liver//Hepatol. 1991. — Vol. 13, — № 12 — P, 364−375.
  47. Armstrong L., Jordan, Miller A, Interlcukin 10 (11−10) regulation of tumor necrosis factor -a (TNF-a) from human alveolar macrophages and peripheral blood monocytes //Thorax. 1996, — Vol. 51, 2. — P. I43t48.
  48. Babmcova M. Macho va F., Kogan G Carboxymethylated glucan inhibits lipid peroxidation in liposomes//Z. Naturforsch. t999. — Vo!, 54, — P, 1084−1088,
  49. Baccino F, M., Zuretti M.F. Permeability of ral liver lysosome membranes //Panmincrwa Medica. 1976. — Vol. 18, № 11. — P.472−491.
  50. Badger D., Kuestcr R., Souer J. J & Sipcs L Gadolinium chloride reduccs cytochrome P 450: Relevance to chemical-induced hepatotoxiciiv //Taxicology. -1997. Vol, 12l. — P 143−153.
  51. Baranski T. J., Faust P.L., Komefeld S., Generation of lysosomal enzyme targeting signal in the secretory protein pepsinogen //Cell. 1990. — Vol.1. — P. 263−272.
  52. Ban-anger J.A., Brady R. A, et al. Molecular basis of lysosomal storage disorders. //In: Proc. Of the conf. on the molcc. Basis of lysosomal storage disordes. Ed, by -Orlando A.O. 1984, — Vol.19. — P. 502.
  53. Barrett A.J. Lysosomal enzymes //In Lysosomers a laboratory handbook. J. T. Dingle ed. Amsterdam London. North Holland. — 1972. — P. 46−135.
  54. Bell S., Goldman V, M" Arnold A.H.T Ostrof G., Forse R. A Effect of ?-giucan from oats and yest on senim lipids //Critical Rev, in Food Sciens and Nutrition 1999.- Vol. 39 (2). P. 189−202,
  55. Bell S, Kaesbauer J, Kraus J-, Franz G. Pythium aphanidermatum: culture cell wall composition and isolation and structure of antitumour storage and solubilised cell wall (W3), (l-«6)-JJ D-glucans //Carbohydr. Res. 1992. — Vol, 23 L — P. 293−307.
  56. Bcrthiaume E. P, Medina C., Swanson J-A molecular size-fractionation during endocytosis in macrophages //J.Cell.Biol. 1995. — Vol, 129. — P. 989−998.
  57. Bij G, J» Oosterling S.J., Meijer S., Beelen R.H.J., Egmond M. The role of macrophages in tumor development. //Cell. Oncology. 2005. — Vol.27. — P. 203 213.
  58. Bohn J. AM ВеМШег J, N. {1—+3) — p-D-glucans as biological response modifiers- A review of structure-functional activity relationships //Carbohydr. Polymerss. -1995.- Vol. 28 (1}.- P. 3−14
  59. Boot R.G., Bussink A.P., Verhoek M., et. al. Marked difference in tissue-specific expresssion ofchitinases in mouse and man //J, Histochem. Cytochem. 2005. -Vol. 53 (10) — P 1283 -1292.
  60. А. Т., Keen C. L, Gershwin M.E. Minirevicw-mushroom, tumors, and immunity: an update //Experimental Biology and Medicine. 2004. — Vol, 229 (5), — P. 393−406.
  61. Browder W" Williams D" Pretus H" Olivero G. Enri-chens E, Mao P., Franchello A. Beneficial effect of enhanced macrophage function in trauma patient //Ann. Surg. 1990. — Vol. 211 — P. 605−613.
  62. Browder W. Williams D, Sherwood E., McNamee R, Jones E., Di Luzio Synergistic cffccl of nonspecific immunostimulation and antibiotics in experimental peritonitis//Surgery. 1987. -Vol. 102(2) — P. 206−214.
  63. Brown G. D., Gordon S. Immune recognition: a new receptor for beta-glucans //Nature. 2001. — Vol. 413. — P. 36−37.
  64. Brown G, D, Gordon S. Immune recognition of fungal glucans //Cellular Microbiology- 2005. — Vol. 7 (4), — P. 471−479.
  65. Brown G.D., Taylor P R., Reid D M., Willment, J. A, Williams, D. L, Pomares-Martinez L, Wong S. Y. C., Gordon S. Dcctirv-1 is a major p-glucan receptor on macrophages //J. Exp. Med- 2002, — Vol, 196. — P 407−412.
  66. Chihara G-, Maeda Y., Hamuro J., Sasaki Т., Fukuoka F. Inhibition of mouse sarcoma 180 by polysaccharides from Lentinus cdodes //Nature, 1969. — Vol. 222, — P. 637−638,
  67. Chuah С. T. Sarko A., Deslandes Y., Marchessault R. H. Packing analysis of carbohydrates and polysaccharides. Part 14, Triple helical crystalline structure ofcurdlan and paramylon hydrates //Macromolecules. 1983, — Vol, 16 (8). — P, 1375−1382.
  68. Cui T.X., Iwai M. Yamauchi Т., Shimazu Г. Aggravating action о Г zymosan on acute liver damage in perfused liver of rats treated with D-galactosamine //Amer. J. Physiol. Gastroiniest Liver Phisiol. 1998. — Vol. 275 (6). — P. 1361- 1366.
  69. Свдр J. K. The rote of jl-glucan receptors on blood and tissue leukocytes in phagocytosis and metabolic-activation //Pathology and Immunopathology Research -1986, Vol 5 (3−5). — P. 286−296.
  70. Садр J. K., Austen K. F. Beta-glucan inhibitable receptor on human monocytes: its identity with the phagocytic receptor for particulate activators of the alternative complement pathway //J. Immunol, -1985. Vol. 134. — P. 2588−2593,
  71. Fcbbraio M." Hajjar D, P. t Silverstcin R.L. CD36: a class В scavenger receptor involved in angiogencsis, atherosclerosis, inflammation, and lipid metabolism, It}. Clin. Invest. 2001. — Vol. 108. — P 785−91.
  72. Feng I., Zhao L., Yu Q. Receptor-mediated stimulatory effect of oligochitosan in macrophages //Biochem. Btophys. Res. Commun. 2004, ¦ VoL 317.1. P. 414−420,
  73. Ногу С, М, Jones М L, Miller В F, Warren, J S. Regulator) roles of tumor necrosis factor a and interlcukin-l p in monocyte chemoaitractant protein I mediated pulmonary granuloma formation in the rat //Am, J. Path- ¦ 1994. -Vol.146 P. 450−462.
  74. Flory С. M., Jones M, L., Warren J S. Pulmonary granuloma formation in the rat is partially dependant on monocyte chemoattractant protein //J. Lab. Invest. -1993. Vol. 69. — P. 396−404.
  75. Foucar 1С, Foucar E, The Mononuclear Phagocyte and Immunorcgulatory Effector (M-Pire) System: Evolving concepts //Semm. Diagnostic pathol. 1990. -Vol. 7, — P 4−18.
  76. Franc NC, Dimarcq J.L., Lagucux M, Hoffmann J" Exckowit* R.A. Croquemort, a novel Drosophila hemocyte/macrophage receptor that recognizes apoptotic eel Is//Immunity. 1996. — Vol. 4, — P, 431−443,
  77. Fukumoto T. y Torigoe N., et. al. Peptide mimics of stimulate T- cell proliferation//Nat. Biotechnol 1998. — Vol. 16- P. 267−270.
  78. Gantner B, N., Simmons R. M-, Canavera S. J. t Akira S. t Underbill D. M. Collaborative induction of inflammatory responses by Dectin-1 and toll-like receptor 2 //J. Exp, Med 2003, — Vol Л 97. — P. 1107−1117.
  79. Gomaa K., Kraus J" Rosskopf E, Roper H. t Franz, G. Antitumour and immunological activity of a рЧ'^З/l—*6) glucan from Glomercllacingulata //J. Cancer Res. Clin. Oncol. -1992, Vol.118 (2). — P 136−140.
  80. Gordon M, Guralnik M" Kaneko Y., Mimura Т., Baker M, Lang W. A phase I study of curdlan sulfate—an HIV inhibitor. Tolerance, pharmacokinetics and effects on coagulation and on CD4 lymphocytes //Journal of Medicine. 1994. -Vol, 25. — P. 163−179.
  81. П2. Gordon M-, Guralnik M. Kaneko, Y-, Mimura T-f Goodgame J., Lang W. Further clinical studies of curdlan sulfate (CRDS)—-an anti-HIV agent //J, Med. -1995. Vol, 26 (3−4). — P 97−131.
  82. Gordon S. Alternative activation of macrophages //Nat. Rev. Immunol. -VoL3. P. 23−35.
  83. Gou Y., He W. Boer A.M. et al. Elevated plasma chititriosidase activity in various lysosomal strage disorders //J. Inherit. Metab. Dis. 1995. — Vol. 18. -P. 717−722.
  84. Hardonk M.J., Dijkhuis F.W., Hulstacrt C.E., Koudstaal J. Heterogeneity of rat liver and spleen macrophages in gadolinium chloride-induced elimination and repopulation //J. of Leukocyte Biology, 1992. — Vol.52. — P 296−302.
  85. Hardonk MJ-, et-al. //In: Cells of the Hepatic Sinusoid, Eds. Wissc E., Knook D.L., Wake K. Kupffer Cell Foundation, 1995. — VoL5. — P. 29−35.
  86. Hashimoto T" Ohno N, et- al- Nitric oxide synthesis in murine peritoneal macrophages by fungal p-glucans//Biol, Pharm. Bull. -1997. Vol. 20. -P. 1006−1009,
  87. Have 11 E. A. Evidence that tumor necrosis factor has an important role in antibacterial resistance Ш, Immunol. 1989. — Vol. 143. — P. 2894−2899.
  88. Heidelberger M. Cross-reactions of various microbial, fungal, mold, and yeast polysaccharides in antipneumococcal and other antisera //Journal of the American Chemical Society. 1993. — Vol. Ш (7). — P. 2558−2564.
  89. Hernanz Falcon PJA, Rora-Novarro P., E, Fernandez — Ruiz E. Clooning of human dcctin — I, a novel С — type lection-like receptor gene expressed on dentritic cells //Immunogenelics. — 2001. — Vol. 53. — P. 288−295.
  90. Herre L, Gordon S., Brown G, D. Dectin-1 and its role in the recognition of glucans by macrophages //Mol. Immunol. 2004. — Vol. 40. — P. 869−876,
  91. Hofer M., Pospisi I M. t Viklicka, S" Pipalova I., Hola J., Netikova J, Sandula J, Effects of postirradiation carboxymethyl-glucan administration in mice //lnL J. Immunopharrnacol 1995. — Vol. 17 (3). — P I67−174.
  92. Hofer M. Pospisil M., Pipalova L, Hola J, Sandula, J. Haemopoiesis-enhancing effects of repeatedly administered carboxymethylglucan in miceexposed to fractionated irradiation //Folia Biol, (Praha). 3995. — Vol.41 (5). -P. 249−256,
  93. Horvathova M, Mislovicova D., Soltes L, Tuzar Z, Gemeincr P., Zubor. V. Preparation and molecular characterization of earboxymethylglucan fractions //Carbohydrate Polymers.-1991- Vol.15 (I).- P. 79−87,
  94. Horvathova M. t Soltes L., Lutonska H., Sandula J, t Mislovicova D. Study of water soluble (J-U-glucan denaturation with dimethylsulfoxide using gel permeation chromatography //J. Appl. Polym. Sci. 1991. — Vol- 48. — P. 33−38.
  95. Ishibashi К. Miura N. N. Adachi Y. t Tamura H., Tanaka S., Ohno N. TTie solubilization and biological activities of Aspergillus p-(l—*3)-D-glucan //FEMS Immunol. Med. Microbiol 2004. — Vol.42 (2). — P. 155−166.
  96. Ishibashi K., Yoshida M. Nakabayashi L, Shinohara П., Miura N. N., Adachi Y-, Ohno N. Role of anti-pl-glucan antibody in host defense against fungi //FEMS Immunology and Medical Microbiology. 2005. — Vol.44 (1). — P. 99−109,
  97. Jamas S., Davidson E. D., OstrofTG. R-. Glucan preparation //Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Disease. 1998. — Vol.21 (I), — P. 12.
  98. Jamas S" Easson D, D" OstrofTG, R, t Onderdonk A, B. PGG-Glucans. A novel class of rnacrophage-activaling immunomodulators //ACS Symp Scr. -1991 Vol. 469.- P. 44−51,
  99. Janeway C.A. Jr, Medzhitov R Innate immune recognition //Annu. Rev. Immunol.-2002. Vol.20. — P. 197−216.
  100. Janusz M. J" Austen K. F" Czop J. K. Isolation of soluble yeast p-glucans that inhibit human monocyte phagocytosis mediated by-glucan receptors //J. Immunol. 1986.-Vol Л 37 (10), — P. 3270−3276.
  101. Janusz M.J., Austen K. F" Czop J, K. Isolation of a yeast heptaglucoside that inhibits monocyte phagocytosis of zymosan panicles //J. Immunol. (989. -Vol.142 (3).- P. 959−965.
  102. Johnson K, J., Glovsky M, Schrier D, Pulmonary granulomatous vasculitis. Pulmonary granulomatous vasculitis induced in rats by treatment with glucan //Am.J.Pathol.- 1984.- Vot. ll4(3). P, 515−516.
  103. Kim Y T, Kim E. H., Cheong C, Williams D. L., Kim C, W., Lim, S, I. Structural characterization of p-D-(l—"3t l-+6)-linked glucans using NMR spectroscopy //Carbohydr. Res, 2000. — Vol, 328(3). — P. 331−341.
  104. Kishida E, Sone Y, Misaki A. Effects of branch distribution and chemical modifications of antitumor (I ~"3)-|3-D-glucans //Carbohydrate Polymers. 1992. -VotJ7(2), — P 89−95,
  105. G. (1 —*3, I -*6)-J3-D-Glucan3 of yeasts and fungi and their biological activity. In: Studies in Natural Products Chemistry, Bioactive Natural Products (Part D) (Atta-ur-Rahman, ed.), Elsevier, Amsterdam, 2000, — Vol, 23, — P, 107 152.
  106. Kogan G- Studies in Natural Products Chemistry, //Elsevier. Amsterdam-Lausanne-New York-Ox ford-Shannon-Singapore-Tokyo, 2000, — Vol. 23. — P. 143.
  107. Kogan G., Alfoldi I., Mas lei L. Carbon-13 NMR spectroscopic investigation of two yeast cell wall p-D-glucans //Biopolymers. 1988 Vol. 27. — P. 1055−1063.
  108. Kojima Т., Tabata K., Hi rata A., Sugawara 1. Biological activity of sulfated schizophyllan //Agric. Biol. Chem, 1986. — Vol. 50. — P. 16 354 636.
  109. Kojima T. t Tabata K" Itoh W., Yanaki T. Molecular weight dependence of the antitumor activity of schizophyllan //Agric. Biol, Chem, -1986. Vol.50 (I).1. P 231−232,
  110. Kokoshis P. L. t Williams L, t Cook D. L., et. al. Increased resistance to Staphylococcus aureus infection and enhancement in scrum lysozyme activity by Ji-glucan//Science. -1988. Vol. 199. — P. 1340−1342.
  111. Korolenko Т., Svechnikova L, Urazgalicv K" et. al. Liver cysteine proteinases in macrophages depression induced by gadolinium chloride. //Adv. Exp, Med, Biol -1997 VoL 421. — P. 315−321.
  112. Korolenko ТА, Djanaeva S.J., Falamccva O.V. cl. al, Chititriosidase as a new marker of macrophage stimulation in a tumor model treated with ciclophosphamide and Ukraine //Drugs Exptl. Clin. Res, 2000, — Vol. 27. — P. 279−283.
  113. Kougias P" Wei D., Rice P, J" Ensley H. E-, Kalblleisch У, Williams
  114. D. L, Browder I. W. Normal Human fibroblasts express pattern recognitionreceptors for fungal (I—*3)-jJ-D-Glucans //Infection and Immunity, 2001, — Vol. 696. P. 3933−3938.
  115. Koumoto K., Umeda M., Numata M" Matsumoto Т., Sakurai K., Kunitake Т., Shinkai S. Low MW suifated curdlan with improved water solubility forms macromolecular complexes with polycytidylic acid //Carbohydr, Res. 2004. -Vol. 339(1).- P, 161−167.
  116. Kramer E., Stark R. E., Natder F, Alagramam K., Becker J. M. Direct observation of cell wall glucans in whole cells of Saccharomyces cerevisiae by magic-angle-spinning C-I3-NMR //Biopolymcrs. 1994. — Vol. 34 (12), — P. 1627−1635.
  117. Kraus J., Franz G. Immunomodulating effects of polysaccharides from medicinal plants //Adv. Exp. Med Biol, 1992, — Vol, 319, — P, 299−308.
  118. Kricgcr M- The oier side of scavenger receptors- pattern recognition for host defense //Curr.Opin. Lipidol. 1997 — Vol. 8. — P. 275−280.
  119. Kubala L. Ruzickova J., Nickova K., Sandula J., Ciz, M, .Lojek A, The effect of (I—*3)-Jl-D-glucans, carboxymethylglucan and schizophyllan an human leukocytes in vitro //Carbohydr. Res. 2003. — VoL 338 (24). — P, 2835−2840,
  120. Lowman D., Ensley H., Williams D. Identification of phosphate substitution sites by NMR spectroscopy in a water-soluble phosphorylated (1—*3)-p-D-glucan //Carbohydr. Res. 1998. — Vol, 306 (4). — P. 559−562.
  121. Lowry O., Roscnbrought H-, Farr A" Randcll R. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J.Biol.Chem. 1951. -Vol.193, N 1. — P.265−275.
  122. Luongo C., Imperatore F., Cuzzocrea S., Filippelh A., Scafuro M. A., Mangoni G., Portolano F-, Rossi, F. Effects of hyperbaric oxygen exposure on a zymosan-induced shock model //Crit Care Med- 1998. — Vol. 26 (12), — P. 1972−1976.
  123. Machova E., Kogan G.+ Alfoldi J. Soltes L., Sandula J. Enzymatic and ultrasonic depolymerization of carboxymethylated Ji-13-D-glucans derived from Saccharomyces ccrcvisiae, HI. Appl, Polym, Sci. 1995. — Vol, 55. — P. 699−704,
  124. Machova E-, Kogan G. T Soltes L-, Kvapilova K., Sandula J. Ultrasonic depolymerization of the chitin-glucan isolated from Aspergillus niger //React. Funct, Polym 1999. — Vol. 42. — P. 265−271,
  125. Macda Y. Y, Watanabe S. Т., Chihara C" Rokutanda M Denaturation and renaturation of a beta-l, 6-l, 3-glucan, lentinan, associated with expression of T-cell-mediated responses //Canccr Res. 1988 — Vol. 48. — P 671−675.
  126. Majtan J., Kogan G-, Kovacova E. Bilikova K., Simuth J. Stimulation of TNF a release by fungal cell wall polysaccharides // Z, Naturforsch, — 2005, -Vol.60.-P. 921−926,
  127. Mayanski D.N., Schwartz Y, S., Kutina S.N., Zubakhin A.A., Mayanskava N.N., Tsyrendorjiev D, D, Mononuclear phagocyte sysnem responsiveness in CCL 4-induced liver cirrhosis // Int. J. Exp. Pathol 1993. — Vol. 74 (3) — P. 229−236.
  128. Medzhitov R. Janeway C, A. Innate immunity impact on the adaptive immune response //Сшг. Opin, Immunol, 1997. — Vol. 9. — P. 4−9.
  129. Miura N, M. Adachi Y., Yadomac Т., Tamura H-, Tanaka Sh. T Ohno N, Structure and biological activities of p-glucans from yeast and mycelial forms of Candida albicans//Microbiol. Immunol, 2003. — Vol. 47 (3). — P. 173−182.
  130. Miura N, N. Ohno N., Adach, Y., Aketagawa J., Tamura H., Tanaka S., Yadomac T Comparison of the blood clearance of triple-helical and single-helical schizophyllan in mice//Biol, Pharm. Bull. -1995. Vol. 18 (1).- РЛ85−189.
  131. Miura Т., Ohno N. Miura N. et. al. Antigen specific response of murine immune system toward a yeast p- glucan preparation, zymosan // FEMS Immunol. Med Microbiol — 1999 — Vol 24, — P. 131- 139.
  132. Morikawa K-, Taceda R., Yamazaki M., et. al. Induction of tumoricidal activity of polymorphonuclear leukocytes by liner P-1,3-D- glucan and other
  133. Nicolosi R., Bell S. J., Bistrian B, R, Greenberg L, Forse R. A" Blackbum G. L- Plasma lipid changes after supplementation with P-glucan fiber from yeast //American Journal of Clinical Nutrition. -1999. Vol. 70 (2), — P. 208−23 2.
  134. Mnimrichtcr L., Rodrigues M., Rodrigues E, G., Travassos L. The multitude of targets for the immune system and drug therapy in the fungal cell wall //Microbes and Infection. 2005. — Vol. 7 (4). — P. 789−798.
  135. Norisuyc 'Г. Triple-standard helical structure of schizophy I Ian and its antitumor activity of aqueous solution //Macromnol. Chem. 1985. — Vol. 14. — P. ?05−108.
  136. Nosheen A., Gardner E, J, Yurkow J., ct, al, Inhibition of macrophages with gadolinium chloride alters intercellular adhesion molecule-1 expression in the liver during acute endotoxemia in rats //Hepatology, 2003 — Vol. 3 — P. 728−736.
  137. Ohno N., Adachi Y., Oh saw a M., Sato K-, Oikawa S-, Yadomae, T. Conformational changes of two different contomi-ers of grifolan in sodium hydroxide, urea or dimethyl sulfoxide solution //Chem, Pharm, Bull. 1987, -Vol. 35, — P 2108−2113.
  138. Ohno N, Asada N., Adachi Y, Yadomae T. Enhancement of LPS triggered TNF-a (Tumor Necrosis Factor-a) production by (1—*3)-p-r>-gIucan in mice //Biol. Pharm. Bull. — 1995. Vol. 18.- P. 126−133,
  139. Ohno N" Emori Y., Yadomae T, Saito K, Masuda A" Oikawa S., Reactivity of Limulus amoebocyie lysate towards (l-*3)-P-D-glueans //Carbohydr. Res. -1990.-Vol. 207.- P, 311−318.
  140. Ohno N. Kurachi, K., Yadomae T. Physiochemical properties and antitumoractivities of carboxymethylated derivatives of glucan from Sderotima sclerotiorum//Chem, Phaim, Bull.-1988. Vol. 36(3).- P, 1016−1025.
  141. Ohno N. T Muira N. N. Chiba N" Adachi Y., Yadomae, T. Comparison of the immunophaimacological activities of triple and single-helical Schizophyllan in mice //Biol, Pharm, Bull -1995. — Vol. 18(9).- P, 1242−1247
  142. Onderdonk A. BXisneros R, L. r Hinkson P., OstroffCi, Anti-infective effect of poly-$ l-6-glucotnosyl-p 1−3-glucopyranose glucan in vivo //Infect Immun. -1992. Vol. 60 (4). — P. 1642−1647,
  143. Palasz F., Czeka J. Toxicological and cytophysiological aspects of ianthanides action Щ. Acta Biochmica Polonica. 2005. — Vol. 47.-N4.-P.1107−2001.
  144. Peluso G., Petillo O., Ranteri M" Santin M, Ambrosio L-, Calabro D" Avalone В. Balsamo G. Chitosan-mcdiated stimulation of macrophage function //Biomaterials, 1994, — VoL 15. — P. 1215−1220.
  145. Piatt N., Ha worth R., Darlcy L" Gordon S. The many roles of the class A macrophage scavenger receptor //Int. Rev. Cytol. 2002. — Vol. 212. — P. MO,
  146. H. Л. Ensley Н. E. t McNamee R. В., Jones E. L. f Browder I. W, Williams D. L. Isolation, physicochemical characterization and preclinical efficacy evaluation of soluble sclcroglucan //J, Pharmacol. Exp, Thcr 1991. — Vol, 257. — P. 500−510.
  147. Renkems G.H., Boot R.G., Muijscrs A. O, el. al, Al. Purification and characterization of human chititriosidase, a novel member of the chitinase family of proteins //J, Biol. Chem. 1995. — Vol. 270. — N 5. — P. 2198 -2202.
  148. Renkems G.H., Boot R.G., Strijland A., et. al, Synthesis, sorting, and processing into distinct isoforms of human macrophage chitotriosidase // Eur. J. Biochem. 1997. — Vol. 244 (2). — P. 279 -285.
  149. Renn D. W Purified curdlan and its hydroxyalkyl derivative: preparation, properties and applications //Carbohydrate Polymers, 1997. — Vol, 33. — P. 219 225.
  150. Rice P. J., Lockhart B. E. Barker LA., Adams E. L" Ensley H, E" Williams D, L. Pharmacokinetics of fungal (l-*3HJ-D-glucans following intravenousadministration in rats // Int, Immunopharmacol. 2004 ¦ Vol. 4 (9). — P. 12 091 215.
  151. Rice P. J., Kelley J. L^ Kogan G., Ensley H. E., Kalbfleisch J. H" Browder 1 W., Williams D, L. Human monocyte scavenger receptors are pattern recognition receptors for (I— 3)-|H>-glucan$ Hi. Leukocyte Biol. 2002. — Vol. 72. — P, 140 146.
  152. Rivera C.A. Bradford B, U" Hunt K.J., ct at, Attenution of CCI4-induced hepatic fibrosis by GdCI3 treatment or dietary glycine //Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2001. — Vol. 281 (1). — P. 200 -207.
  153. Rose M. L. t Bradford B. U-, Germolec D. R., et. al. Gadolinium chloride-induced hepatocyte proliferation is prevented by antibodies to tumor necrosis factor //Toxicology' and Applied Pharmacology'. 2001, — Vol. 170, — P- 39−45,
  154. Ross G. D" Cain J, A., Myones B. L-, Newman S. L., Lachmann P. J, Specificity of membrane complement receptor type three (CR3) for beta-glucans //Complement. 1987. — Vol. 4. — P. 61−74.
  155. Ross G. D, Vctvicka V" et, at. Therapeutic intervention with complement and P-glucan in cancer //Immunopharmacol. 1999. — Vol, 42. — P. 6t-74,
  156. Safina A.F., Korolenko T, A" Mynkina G. L, et al. Liver and serum lysosomal enzymes activity during zymozan-induced inflammation in mice //Recent Progress onkinins Proceedi ng of the international conference. Munich. 1992. -P. 370−375.
  157. Saiki I., Murata 1, Nakajima M, Tokura S., Azuma 1, Inhibition by sulfated chitin derivatives of invasion through extracellular matrix and enzymatic degradation by metastatic melanoma cells //Cancer Res. 1990. — Vol. 50. — P 3631−3637.
  158. Sandula J, Machova E., Hribalova V. Mitogcnicactivity of paniculate yeast p-(l—"3)-D-glucan and its water-soluble derivatives //International Journal of Biological Macromolecules. 1995.- Vol. 17(6). — P. 323−326.
  159. Sandula J., Kogan G., Kacurakova M, Machova E. Microbial (1—*3)-{И> glucans, their preparation, physicochcmical characterization and immunomodulatory activity //Carbohydr. Res. 1999. — Vol. 38. — P. 247−253.
  160. Schagat T. L" WofFord J.A., Wright J.R. Surfactant protein A enhances alvc olar macrophage phagocytosis of apoptotic neutrophils //Immunol, 2001. -Vol.166, — P.2727−2733.
  161. Scljclid R-. Boegwald J-, Lundwall A. Glycan stimulation of macrophages in vitro//Experimental Cell Research 1981,-Vol. 131 (1).- P. 121−129.
  162. Shellito J-, Esparsa C-, Armstrong C. Maintenance of the normal rat alveolar macrophage cell population. The roles of monocyte influx and alveolar macrophage proliferation in situ //Am, Rev. Rcspir, Dis. 1987. — Vol. — 135. — P. 78−82,
  163. Sherwood E, R, Williams D, L., McNamee R. В., Jones E. L-, Browder I, W" Di Luzio N. R, In vitro tumoricidal activity of resting and glucan-acti voted KupfTer cells //J. Leukoc. Biol, 1987. — Vol. 42 (1), — P. 69−75.
  164. Sherwood E. R., Williams D. L., McNamee R. В. Jones E, L., Browder I. W., Di Luzio, N. R. Enhancement of interlcukin-l and interleukin-2 production by soluble glucan //Int. J. Immunopharmacol, 1987. — Vol. 9 (3). — P. 261−267
  165. Sherwood E. R., Williams D. L., DiLuzio N. R. Glucan stimulates production of antitumor cytolytic/cytostatic factors) by macrophages //J. Biol. Response Modif, 1986. — Vol, 5. — P, 504−526.
  166. Smits G J., Kapteyn J. C, van den Ende H., Klis, F, M. Cell wall dynamics in yeast //Cur. Opin, Microb. 1999, — Vol- 2 (4), — P. 348−352,
  167. Soltys J, Quinn M T. Modulation of endotoxin and enterotoxin-induced cytokine release by in vivo treatment with p-(l, 6)-branched P4l3)-glucan //Infect. Immun. 1999. — Vol, 67 (1). — P. 244−252,
  168. Stashenko P., Wang C. Y" Riley E, Wu Y, OstrofT G" Niederman. R Reduction of infection-stimulated periapical bone resorption by the biological response modifier PGG glucan //J. Dent Res, 1995, — Vol. 74(I). — P. 323−330.
  169. Stiteler R, D. t Proctor J. W., Yamamura Y, Manse 11 P. W. The effect of glucan on the clearance of intravenously injected tumor cells from the lung //J. Reiiculocndothei. Soc. 1978. — Vol. 24 (6). — P 687−696
  170. Sutherland !. W Novel and established applications of microbial polysaccharides //Trends in Biotechnology. 1998. — Vol. 16. — P. 41−46.
  171. Suzuki Tr Ohno N., Adachi Y, Cirelli A. F" Covian J, A" Yadomae T, Preparation and biological activities of sulfated derivatives of (I—>3)-p-D-G!ucans til Pharmacobio-Dyn. 1991. — Vol. 14. — P. 256−266.
  172. Suzuki K" Mikami Т., Okawa Y., Tokoro А." Suzuki, M. Antitumor effect of hexa-N-acetylchito-hexaose and chitohexaose //Carbohydr. Res. 1987, — Vol. 151.- P. 403−408.
  173. Tabata К, Ito W, Kojima T, Kawabata S., Misaki, A. Ultrasonic degradation of schizophyllan, an antitumor polysaccharide produced by SchizophyUum commune Fries //Carbohydr. Res. 1981. — Vol. 89. — P 121−135.
  174. Takahashi H., Ohno N., Adachi Y, Yadomae, T. Association of immunological disorders in lethal side effect of NSAlDs on p-glucan-administered mice //FEMS Immunol. Med Microbiol. -2001, Vol. 31 {!).- P. 1−14.
  175. Taylor P. R., Brown D., Reid M-, et- al. The p- glucan receptor, decttn-1, is predominantly expressed on the surface of cells of the monocyte/macrophage and neutrophil lineages //Immunol. 2002- - Vol. 169. — P. 3876 — 3882.
  176. Taylor P. R. Martinez-Pomares L., Stacey M" Lin H-H., Brown G. D" Gordon S Macrophage receptors and immune recognition //Annu. Rev, Immunol. 2005. -Vol.23. — P. 901 -944.
  177. Thornton B P., Vetvicka V., Pitman ML, Goldman R. C, Ross G, D. Analysis of the sugar specificity and molecular location of the P-glucan-bindtng lectin site of complement receptor type 3 (CDlib/ CD 18) //J. Immunol. 1996. — Vol.156. -P. 235−1246.
  178. Tokunaka K., Ohno N. Adachi Y, Tanaka S., Tamura K., Yadomae T. Immunophamiacological and immunotoxicological activities of a water-soluble1—'3)-p-D-glucan, CSBG from Candida spp. //Int. J, Immunopharmacol. 2000. -Vol. 22. — P. 383−394,
  179. R. //Billiar. -1992.-73 P.
  180. Underbill D. M. Macrophage recognition of zymosan particles //Journal of Endotoxin Research. 2003. — Vol. 9 (3). — P. 176−180.
  181. Underbill D. M,. Ozinsky A" Hajjar A. M" Stevens A., Wilson C. B" Bassetti M," Adcrem, A, The Toll-like receptor 2 is recruited to macrophage phagosomes and discriminates between pathogens //Nature. 1999. — Vol. 401 (6755), -Р.8И-815.
  182. Vetvicka V., Hanikyrova M., Vetvickova J" Ross G.D. Regulation of CR3 (CDl lb/CD18)-dependent natural killer (NK) ccll cytotoxicity by tumour target cell MHC class I molecules. //Clin. Exp. Immunol. 3999. — Vol. 115. — P. 229 235,
  183. Usynin I. F., Kharkovsky Л. V. t Balitskaya N. I., Panin L. E. .Gadolinium chloride-induced KuplTer cell blockade increases uptake of oxidized low-density lipoproteins by rat heart and aorta //Biochemistry (Rus,), 1999, — Vol, 64.1. P. 620- 624.
  184. Wang Y, Zhang L, Li, Y, Hon X, Zeng F. Correlation of structure to antitumor activities of five derivatives of a .}-giucan from Porta cocos sclerotium //Carbohydr. Res. 2004. — Vol. 339 (15). — P. 2567−2574,
  185. Wang Y" Goldschneider L O’Rourke J, Cone R. E, Blood mononuclear cells induce regulatory NK T thymocytes in anterior chamber-associated immune devia tion //J, Lcukoc, Biol. 2001.- VoL 69 — P.741−746.
  186. Wang Y J. r Yao S. J., Guan Y X. t Wu Т. X., Kennedy J. F. Л novel process for preparation of (1—*3>p-D-glucan sulphate by a heterogeneous reaction and its structural elucidation //Carbohyd. Polym, 2005. VoL 59(1). — P. 93−99
  187. Walanabe N. t Niitsu Y. Antitumor effect of tumor necrosis factor //Biotherapy -1991, — Vol 5,-P. 1634−1643.
  188. Williams D. L. Overview of (lf3) — p-D-glucan immunobiology //Medial, Inflamm 1997. — Vol. 6 — P. 247−250.
  189. Williams D. L" Mueller A-, Browder W. Preclinical and clinical evaluation of carbohydrate immunopharmaceuttcals in the prevention of sepsis and septic sequelae //J. Endotoxin Res, 1995, — Vol. 2. — P. 203−208.
  190. Williams D, L, f McNamee R. В., Jones E. L" Pretus, H A., Ensley H. E., Browder I. W., Di Luzio, N. R. A method for the solubilization of a (I —'3H*-D-glucan isolated from Saccharomyces cerevisiae //Carbohydr Res, 1991, — Vol. 219, — P, 203−213.
  191. Williams D. L" Sherwood E. R. McNamee R В., Jones E, L. t Di Luzio N. R. Therapeutic efficacy of glucan in a murine model of hepatic metastatic disease //Hepatology. 1985. — Vol. 5 (2), — P. 198−206.
  192. Williams D. L. t Sherwood E. R, McNamee R. В., Jones E. L. t Browder I. W., Di Luzio N, R, Chcmoimmunotherapy of experimental hepatic metastases //Hepatology. 1987. — Vol. 7 (6), — P 1296−1304,
  193. Williams J. D. T Topley R Alobaidi H. M., Harber M. J. Activation of human polymorphonuclear leukocytes by particular zymosan is related to both its major carbohydrate components- gluean and mannan //Immunology1. 1986. — Vol.58. -P. 117−124,
  194. Yoshida T" Yasuda Y-, Mimura T, Kaneko Y-, Nakashima H., Yamamolo N., Uryu T- Synthesis of curdlan sulfates having inhibitory effects in vitro against AIDS viruses HIV-1 and HIV-2 //Carbohydr Res, 1995. — Vol, 276 (2).1. P. 425−436.
  195. Young S.-H-. Dong W-J" Jacobs R. R. Observation of a partially opened Iriple-hclix conformalion in (I—"3)-(J-glucan by fluorescence resonance energy Iransfer spectroscopy Hi. Biol. Chcm, 2000. — Vol, 275 (16), — P. 11 874−11 879.
  196. Zekovic D, B., Kwiatkowki S., Vrvic M.M. Natural and modified (I— 3)-p-D-glucans in health disease alleviation //Critical Rev in Biotechnology. 2005. -Vol. 25. — P. 205 — 230.
  197. Zhang, L, Li, X., Xu, X., Zheng, F. Correlation between antitumor activity, molecular weight, and conformation of lentinan //Carbohydr. Res 2005. — VoL 340. — P. 1515−1521.
  198. Zhang, L., Zhang, M, Dong, J., Guo, J., Song, Y, Cheung, P. C. Chemical structure and chain conformation of the water-insoluble glucan isolated from Plcurotus tubcrrcgium //Biopolymers, 2001, — Vol.59 (6). — P 457−464.
  199. Zhang, M., Zhang, L., Cheung, P. C. Molecular massand chain conformation of carboxymethylated derivatives of Jl-glucan from sclerotia of Pleurotus tuber-regium //Biopolymers. 2003. — Vol-68 (2). — P. 150−159.
  200. Zhang M" Cheung PC, K., Zhang L., Chiu C. M" Ooi, V. E. C. Carboxymethylated p-glucans from mushroom sclerotium of Pleurotus tuber-regium as novel water-soluble anti-tumor agent //Carbohydrate Polymers, 2004. — VoL 57. — P. 319−325,
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!