Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Клеточные механизмы поведения у животных с простой нервной системой: сравнительный нейрофизиологический анализ

Диссертация: Клеточные механизмы поведения у животных с простой нервной системой: сравнительный нейрофизиологический анализ
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые описаны нейронные сети, контролирующие движение уникальных структур буккального аппарата гимносомат — крючков. Описаны нейронные механизмы, лежащие в основе фазовозависимой координации активности крючков и радулы во время пищевого поведения. Clione. В работе был применен принципиально новый подход, заключающийся в том, что, используя данные об организации мотонейронной сети, иннервирующей… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. НЕЙРОННЫЕ МЕХАНИЗМЫ ПИЩЕВОГО ПОВЕДЕНИЯ БРЮХОНОГИХ МОЛЛЮСКОВ
      • 1. 1. 1. Объекты исследований
      • 1. 1. 2. Пии^евое поведение моллюсков
      • 1. 1. 3. Нейронные механизмы аппетитивной фазы пгщевого поведения
      • 1. 1. 4. Нейронные механизмы консуматорной фазы пищевого поведения
      • 1. 1. 5. Модуляция пищевого поведения
    • 1. 2. НЕЙРОННАЯ РЕГУЛЯЦИЯ АКТИВНОСТИ СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТОЙ СИСТЕМЫ У БРЮХОНОГИХ МОЛЛЮСКОВ
      • 1. 2. 1. Роль сердечно-сосудистой системы в поведении моллюсков
      • 1. 2. 2. Особенности строения сердечно-сосудистой системы моллюсков
      • 1. 2. 3. Нейронные механизмы регуляции активности сердечно-сосудистой системы у Aplysia
      • 1. 2. 4. Нейронная и гормональная интеграция функции сердечно-сосудистой системы у Aplysia
      • 1. 2. 5. Нейронные механизмы регуляции активности сердца у Clione
    • 1. 3. НЕЙРОННЫЙ КОНТРОЛЬ ОБОРОНИТЕЛЬНОГО ПОВЕДЕНИЯ БРЮХОНОГИХ МОЛЛЮСКОВ
      • 1. 3. 1. Стратегии оборонительного поведения
      • 1. 3. 2. Нейронные механизмы пасатного оборонительного поведения Aplysia
      • 1. 3. 3. Пластичность оборонительного поведения Aplysia и его нейронные механизмы
      • 1. 3. 4. Отдергивание жабры у Aplysia: простой оборонительный рефлекс или сложное поведение, управляемое распределенной нейронной сетью?
      • 1. 3. 5. Нейронные механизмы оборонительного поведения Clione
      • 1. 3. 6. Нейронные механизмы пассивного оборонительного поведения Helix lucorum
      • 1. 3. 7. Нейронный контроль колумеллярной системы у легочных моллюсков
  • Глава 2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты исследования и основные электрофизиологические эксперименты
    • 2. 2. Иммунохимическое окрашивание препаратов и эксперименты с двойным мечением нейронов
    • 2. 3. Регистрация активности ресничного эпителия
    • 2. 4. Оптическая регистрация изменений внутриклеточной концентрации ионов кальция
    • 5. Блокада экспрессии генов при помощи инъекции антисмысловых морфолино олигонуклеотидов
      • 2. 6. Эксперименты с нейроналъной культурой
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ПРЕДВАРИТЕЛЬНОЕ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. НЕЙРОННЫЕ МЕХАНИЗМЫ ПИЩЕВОГО ПОВЕДЕНИЯ
      • 3. 1. 1. Нейронные основы фазово-зависимой координации активности буккалхх"ного аппарата Clione
        • 3. 1. 1. 1. Координация движений крючков и радулы в процессе пищевого поведения
        • 3. 1. 1. 2. Идентификация мотонейрнов крючков и радулы
        • 3. 1. 1. 3. Ритмическая активность мотонейронов при фиктивном пищевом поведенъг-г^г
        • 3. 1. 1. 4. Взаимодействие между мотонейронами разных групп
  • Предварительное обсуждение результатов раздела 3
    • 31. 1. 5. Функциональная роль фазово-зависимой координации движений кр7с>ч^7со& и радулы
      • 3. 1. 1. 6. Нейронные механизмы координации двиэ/сений крючков и радулы
      • 3. 1. 2. Регуляция и координация активности нейронов сети пищевого поведения Clione церебрально-буккальным интернейроном Цр-БМ
      • 3. 1. 2. 1. Морфология интернейрона Цр-БМ и его влияние на активность буквального аппарата Clione
      • 3. 1. 2. 2. Моносинаптические связи Цр-БМ с мотонейронами буккального ганглия: активация одних групп клеток и торможение других
      • 3. 1. 2. 3. Доказательство ГАМК-ергичности Цр-БМ
      • 3. 1. 2. 4. Дополнительные постсинаптические эффекты Цр-БМ интернейронов
  • Предварительное обсуждение результатов раздела 3
    • 3. 1. 2. 5. Роль Цр-БМ интернейрона в координации активности трех глсг&ных пищедобывающих структур Clione и контролирующих их нейронных сетей
      • 3. 1. 2. 6. Активирующая роль ГАМКв пищевом поведении
      • 3. 1. 2. 7. Церебро-буккалъные интернейроны у брюхоногих моллюсков
      • 3. 1. 3. Роль гигантского церебрального серотонинового нейрона Ц1 в peryjx5iUHH активности нейронов буккального ганглия Clione
      • 3. 1. 3. 1. Серотонин-подобная гшмунореактивность Ц1 Clione
      • 3. 1. 3. 2. Влияние ЦІ на буккальные мотонейроны крючков и радулы
      • 3. 1. 3. 3. Роль серотонина в опосредовании эффектов Ц1 на буккальные мотонейроны.91 Предварительное обсуждение результатов раздела 3
      • 3. 1. 3. 4. Синаптические связи Ц1 с нейронами буккальных ганглиев
      • 3. 1. 3. 5. Роль ритмической активности ЦІ в нейронных механизмах пищевого поведения
      • 3. 1. 4. Коактивация функционально антагонистических групп мотоненронов' во время пищевого поведения Clione
      • 3. 1. 4. 1. Изменение паттерна активности пищедобывателъных структур Clione (крючков, радулы и буккальных щупалец) в процессе пищевого поведения
      • 3. 1. 4. 2. Два паттерна нейронной активности мотонейронов протракцгш и ретракции буккальных щупалец антагонистический и синергический
      • 3. 1. 4. 3. Синаптические связи между Цр-БМ и Цр-Б клетками
      • 3. 1. 4. 4. Роль интернейрона Цр-Аант в механизмах коактивации мотонейронов протракции и ретракции буккальных щупалец
      • 3. 1. 4. 5. Синхронная ритмическая активность в буккальных и церебральных мотонейронах
  • Предварительное обсуждение результатов раздела 3
    • 3. 1. 4. 6. Функциональная роль смены паттерна активности пищедобывателъных структур Clione во время пищевого поведения. И
      • 3. 1. 4. 7. Нейронные механизмы переключения между разными паттернами активности' Цр-А и Цр-Б сетей
      • 3. 1. 5. Нервный контроль активности ресничного эпителия в пищеводе Clione
      • 3. 1. 5. 1. Буккальные нейроны, влияющие на активность ресничного эпителия
      • 3. 1. 5. 1. 1. CNP-подобная иммунореактивность у Clione
      • 3. 1. 5. 1. 2. Буккальные нейроны пищевода и их влияние на активность ресничного эпителия пищевода
      • 3. 1. 5. 1. 3. Роль CNP пептидов в опосредовании эффектов Бк-ПИ нейронов
      • 3. 1. 5. 2. Роль ЦІ в регуляции активности ресничного эпителия пищевода
      • 3. 1. 5. 2. 1. Паттерн ветвления отростков Ц
      • 3. 1. 5. 2. 2. Влияние стимуляции Ц1 на активность ресничного эпителия пищевода
      • 3. 1. 5. 2. 3. Эффект аппликации серотонина на активность ресничного эпителия пищевода Clione
      • 3. 1. 5. 2. 4. Взаимодействие между Ц1 и Бк-ПИ нейронами. Предварительное обсуждение результатов раздела 3
      • 3. 1. 5. 3. Нервный контроль активности ресничного эпителия у моллюсков
      • 3. 1. 5. 4. Роль CNP-пептидов в нервном контроле ресничного эпителия пищевода
      • 3. 1. 5. 5. CNP-подобные пептиды у беспозвоночных
      • 3. 1. 5. 6. Буккалъные нейроны, иннервирующие пищевод, у брюхоногих моллюсков
      • 3. 1. 5. 7. Роль Бк-ПИ нейронов в птцевом поведении Clione
      • 3. 1. 5. 8. Влияние серотонина на активность ресничного эпителия у моллюсков
      • 3. 1. 5. 9. Функциональное значение сетевых взаимодействий Ц1 и Бк-ПИ нейронами
      • 3. 1. 5. 10. Гомология Ц1 у брюхоногих моллюсков и контроль активности ресничного эпителия в пищеводе
      • 3. 1. 6. Роль ГАМК в нейронных механизмах пищевого поведения Helix lucorum
    • 3. 2. НЕЙРОННАЯ РЕГУЛЯЦИЯ АКТИВНОСТИ СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТОЙ СИСТЕМЫ CLIONE
      • 3. 2. 1. Активность сердца Clione на полуинтактном препарате и на целом животном
      • 3. 2. 2. Кардиоактивирующие нейроны интестинальных ганглиев
      • 3. 2. 3. Влияние педального серотонинергического кардиоактивного нейрона на активность сердца
      • 3. 2. 4. Эффекты аппликации серотонина и педального пептида на активность сердца Clione
      • 3. 2. 5. Распределение волокон, иммунореактивных к серотонину и педальному пептиду, в тканях сердца
      • 3. 2. 6. Постсинаптические потенциалы, вызываемые кардиоактивными нейронами Clione в тканях миокарда
      • 3. 2. 7. Z-клетка интестинального ганглия: третья кардиоактивирующая система Clione. Л
      • 3. 2. 8. Медиаторная специфичность Z-клетки
      • 3. 2. 9. Активность кардиоактивных нейронов Clione при реализации двух функционально противоположных типов поведения
      • 3. 2. 10. Активность предсердия и желудочка Clione при разных типах поведения
  • Предварительное обсуждение результатов раздела
    • 3. 2. 11. Четыре типа кардиорегуляторных нейронов с разными эффектами на активность желудочка и предсердия
    • 3. 2. 12. Нейротрансмиттеры в системе нервного контроля активности сердечно-сосудистой системы Clione
    • 3. 2. 13. Паттерны активности кардиорегуляторных нейронов Clione при разных формах поведения
    • 3. 2. 14. Функциональное значение раздельной активности предсердия и желудочка
    • 3. 3. НЕЙРОННЫЕ МЕХАНИЗМЫ ОБОРОНИТЕЛЬНОГО ПОВЕДЕНИЯ НАЗЕМНОГО МОЛЛЮСКА HELLXLUCORUM
    • 3. 3. 1. Нейронная сеть оборонительного поведения Helix
      • 3. 3. 1. 1. Идентификация механосенсорных нейронов плеврального ганглия- морфология вентролатеральных нейронов (ПлВЛ)
      • 3. 3. 1. 2. Электрофизиологические свойства и сенсорная модальность ПлВЛ нейронов
      • 3. 3. 1. 3. Моносинаптическая связь ПлВЛ клеток с командными нейронами оборонительного поведения
      • 3. 3. 1. 4. Медиаторная специфичность ПлВЛ нейронов
      • 3. 3. 1. 5. Роль эндоканнабиноидной системы в пластических свойствах нейронной сети оборонительного поведения
      • 3. 3. 1. 6. Эфаптическая обратная связь в синапсах между ПлВЛ и командными нейронами
      • 3. 3. 1. 7. Прямая регистрация увеличения уровня кальция, входягцего во время потенциала действия в пресинаптическое окончание, под действием серотонина
      • 3. 3. 1. 8. Реконструкция синаптической связи между ПлВЛ и командными нейронами в культуре
      • 3. 31. 9. Плевральные нейроны, вызывающие высокоамплитудную медленную деполяризацию в командных нейронах Плі
  • Предварительное обсуждение результатов раздела 3
    • 3. 3. 1. 10. Сравнение ПлВЛ клеток с механоафферентными нейронами, идентифицированными у других брюхоногих моллюсков
      • 3. 3. 1. 11. Функциональная роль ПлВЛ нейронов
      • 3. 3. 1. 12. Внутрисинаптическая эфаптическая обратная связь
      • 3. 3. 2. Роль продуктов гена HCS2 в функции командных нейронов
      • 3. 3. 2. 1. Роль нейропептида CNP4, кодируемого геном HCS2, в регуляции активности мотонейронов дыхальца
      • 3. 3. 2. 2. Экспрессия гена HCS2 в культивируемых командных нейронах
      • 3. 3. 2. 3. Селективная блокада экспрессии гена HCS2 в командных нейронах оборонительного поведения при помощи морфолино олигонуклеотидов
      • 3. 3. 2. 4. Изучение роли плевральных НС82-позитивных нейронов
  • Предварительное обсуждение результатов раздела
    • 3. 3. 2. 4. Возможная роль CNP пептидов в функции командных нейронов
    • 3. 3. 3. Кальциевые сигналы, вызываемые высокоамплитудными ВПСП в командных нейронах
  • Глава 4. ОБЩЕЕ ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
    • 4. 1. Вопрос об эволюционном происхождении крючков у Clione: доводы нейрофизиологии
    • 4. 2. Преобладание командных или модуляторных свойств гомологичного нейрона у разных видов моллюсков, возможно, зависит от особенностей контролируемого им поведения
    • 4. 3. Сравнение консервативности функции нейропептидов и «классических» медиаторов в нейронных механизмах поведения у родственных видов моллюсков
    • 4. 4. Распределенная или специализированная сеть?
    • 4. 5. Роль дендро-соматического выброса медиатора в межнейронной коммуникации
  • ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ОСНОВНЫХ СТАТЕЙ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

Клеточные механизмы поведения у животных с простой нервной системой: сравнительный нейрофизиологический анализ (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Известно, что даже небольшие изменения в организации нейронной сети могут приводить к значительным изменениям в поведении животного (Katz and Harris-Warrick, 1999). Изучая то, как у таксономически близких видов организованы нейронные сети, контролирующие одни и те же виды поведения, и сравнивая между собой различия в функционировании этих сетей, можно понять общие принципы строения и эволюции нервной системы (Arbas et al., 1991; Katz, 1991; Paul, 1991; Katz and Harris-Warrick, 1999). В свое время сравнительная, анатомия обеспечила колоссальный вклад в развитие теоретической и эволюционной биологии. Сравнительная нейроэтология в наше время помогает понять, каким образом в процессе эволюции осуществлялось развитие тех или иных нейронных механизмов, приведших в итоге к возникновению сознания.

Одной из основ сравнительной нейробиологии является понятие о гомологичных нейронах (Сахаров, 1974; Weiss and Kupfermann, 1976; Granzow and Rowell, 1981; Pentreath et al., 1982; Croll, 1987). Вообще, гомологичными называются структуры, связанные общностью происхождения, т. е. восходящие к одной и той же предковой структуре (Сахаров, 1974). Однако, несмотря на наличие, множества общих признаков у гомологичных нейронов беспозвоночных, детали их функционирования зачастую различаются, что отражает эволюционные приспособления, поведения к разным условиям существования. Таким образом, сравнивая между собой гомологичные нейронные сети не только у представителей одной таксономической группы, но и у животных, находящихся на разных ступенях эволюционного развития, мы можем проследить, как эволюционный процесс «апробирует» разные модели организации нейронной сети и затем закрепляет наиболее удачные схемы.

Неоднократно подчеркивалось, что моллюски являются прекрасным объектом для' изучения нейронных механизмов поведения. Главными достоинствами этого объекта являютсяе сравнительно просто устроенная нервная система и наличие стереотипных, четко различимых между собой типов поведения. Все это дает уникальную возможность проследить, как изменения" в функционировании нейронов (в том числе на клеточном и молекулярно-генетических уровнях) отражаются в поведении целого животного. Подобная задача до сих пор трудно реализуема на позвоночных животных. Другим, неоправданно редко упоминаемым достоинством моллюсков как. объекта нейробиологических исследований является возможность работы на так называемом полуинтактном препарате. Полуинтактный препарат представляет собой зачастую целое животное, в необходимой степени зафиксированное и отпрепарированное таким образом, чтобы обеспечить доступ к ЦНС. С одной стороны, такой препарат предоставляет исследователю прекрасную возможность внутриклеточной регистрации и стимуляции нейронов, а с другой, позволяет наблюдать элементы целостного поведения и проводить адекватную сенсорную стимуляцию животного.

Одним из основных постулатов, лежащих в основе исследований нервной системы беспозвоночных животных, является тезис о том, что фундаментальные механизмы развития и функционирования нервной системы остаются схожими от вида к виду в процессе эволюции. Как пишут С. Куффлер и Дж. Николлс в предисловии к первому изданию своей книги «От нейрона к мозгу», «. в мозге всех исследованных животных существует четкое единообразие принципов нейронной организации. Таким образом, при известном везении примеры из лобстера или пиявки будут иметь отношение к нашей собственной нервной системе» (Kuffler andNicholls, 1976).

В то же время, как справедливо замечает Николлс в последнем издании своей книги, «не все работы, выполняемые на ЦНО беспозвоночных, непременно имеют цель понять механизмы работы мозга человека» (Николлс и др., 2008). Понять то, каким образом сравнительно простая нервная система контролирует зачастую очень сложное поведение, обеспечивающее выживание особи в непростых условиях окружающей среды, само по себе является чрезвычайно интересной и важной задачей. Цели и задачи исследования.

Целью настоящей работы было изучение не описанных ранее нейронных механизмов поведения крылоногого моллюска Clione limacina L., наземной улитки Helix lucorum L. и проведение сравнительного нейрофизиологического анализа найденных механизмов путем сопоставления с уже известными нервными механизмами аналогичных типов поведения* у других брюхоногих моллюсков. Согласно вышеопределенной цели исследования были сформулированы следующие задачи:

1! Изучить нейронные механизмы скоординированнойактивности трех различных структур, вовлеченных в пищевое поведение Clione limacina.

2. Изучить принципы нейронной регуляции активности сердечно-сосудистой системы Clione при разных типах поведения, требующих разнонаправленных изменений в работе сердечно-сосудистой системы.

3. Провести анализ нейронной сети, лежащей в основе пассивно-оборонительного поведения виноградной улитки.

Научная новизна исследования.

Впервые описаны нейронные сети, контролирующие движение уникальных структур буккального аппарата гимносомат — крючков. Описаны нейронные механизмы, лежащие в основе фазовозависимой координации активности крючков и радулы во время пищевого поведения. Clione. В работе был применен принципиально новый подход, заключающийся в том, что, используя данные об организации мотонейронной сети, иннервирующей исследуемую анатомическую структуру, можно сделать вывод об эволюционном происхождении этой структуры. Полученные поведенческие и нейрофизиологические данные об активности радулы и крючков у Clione в сравнении с соответствующими данными об активности радулы и челюстей у родственных видов моллюсков указывают на то, что более вероятным эволюционным сценарием является происхождение крючков у Clione от маргинальных зубов радулы, нежели от челюстей, причем этом вывод совпадает с результатами сравнительно-морфологических исследований.

Впервые описан новый элемент нейронных механизмов пищевого поведения моллюсков, представленный активацией ресничного эпителия в пищеводе Clione идентифицированными нами пептидергическими буккальными нейронами. Описана новая функция для гигантских церебральных серотониновых клеток (существующих у всех изученных видов брюхоногих) — серотонинергическая регуляция активности ресничного эпителия в пищеводе Clione.

В плевральных ганглиях виноградной улитки были впервые идентифицированы первично-сенсорные нейроны, опосредующие передачу тактильной информации в нейронной сети оборонительного поведения виноградной улитки, что долгие годы являлось недостающим звеном при исследовании нейронных механизмов пластичности оборонительного поведения на этом объекте.

Впервые показано, что амплитуда кальциевых сигналов, сопровождающих высокоамплитудные ВПСП в командных нейронах виноградной улитки, линейно зависит от силы синаптической стимуляции, в то время как динамика изменения амплитуды самих ВПСП при увеличении силы стимуляции демонстрирует выраженное насыщение. Научно-теоретическое и практическое значение работы.

Внастоящей работе предложен новый метод определения* эволюционного происхождения анатомических структуроснованный на анализе иннервирующих их нейронных сетей и сопоставлении с данными о структурах соответствующих нейронных сетей, полученных на родственных видах животных.

Виноградная улитка Helix lucorum является широко используемым объектом для изучения нейронных механизмов поведения-и, в-особенности, механизмов пластичности поведения.- Идентифицированные в настоящей работе нейроны исинаптические связи в цепи оборонительного поведения виноградной улитки в настоящее время' широко используются исследователями в качестве модели для изучения нейронных механизмов обучения и памяти.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Используя данные об организации нейронной сети, иннервирующей данную анатомическую структуру, можно сделать вывод о ее эволюционном происхождении. Собрав вместе поведенческие и нейрофизиологические данные о механизмах контроля активности радулы и крючков у Clione и сравнивая их с. соответствующими данными об активности радулы и челюстей у аплизии, мы склоняемся к выводу, что более вероятным эволюционным сценарием является происхождение крючков у Clione от маргинальных зубов радулы, нежели от челюстей.

2. Один и тот же гомологичный идентифицирумый нейрон у эволюционно близких видов демонстрирует командный или модуляторный принцип управления нейронной сетью в зависимости от степени стереотипности поведения, в контроль которого он вовлечен.

3. Один и тот же нейропептид может быть задействован в нейронных механизмах совершенно разных и зачастую функционально противоположных типов поведения у разных представителей одной и той же таксономической группы животных, в то время как роль «классических» медиаторов в нервном контроле поведения более консервативна.

ВЫВОДЫ.

1. Во время пищевого поведения: CZione движения крючков четко скоординированы с движениями радулы: протракции крюков всегда соответствует ретракция радулы и наоборот. На нейронном уровне такая координация обеспечивается, во-первых, наличием электрических связей между мотонейронами, работающими в одну фазу, но иннервирующими разные структуры Одежду протракторами крючков и ретракторами радулы), и во-вторых, наличием рецкгхтрокных тормозных полисинаптических связей между нейронамиработающими в противоположные фазы и иннервирующими разные структуры (между протракторами крючков и протракторами радулы).

2. Мотонейронные сети крючков и радулы имеют, по всей' видимости, общий центральный генератор паттернов, Поскольку даже при неподвижных крючках, но активной радуле мотонейроны крючков получают ритмичные подпороговые входы, скоординированные по фазе с разрядами в мотонейронах радулы.

3. Пачечная активность мотонейгроыа ретракции крючков во время пищевого ритма смещена по фазе относительно i остальных буккальных мотонейроновчто приводит к возникновению небольшого периода, коакгивации функциональноантагонистических мотонейронов протракции и ретракции крючков. Этот период коактивации обеспечивает, по всей видимости, более резкий И СИЛЬНЫЙ выброс крючка во время пищевого поведения Clione.

4. Описанный нами ГАМК-ергический церебральный интернейрон Цр-БМ осуществляет координацию нескольких структур, вовлеченных в пищевое поведение Clione: крючков, радулы, складок кожи, закрывающих ротовое отверстие, и буккальных щупалец. При этом данный интернейрон выполняет командную функцию по отношению к пищевому поведению Clione.

5. Во время пищевого поведения Clione существуют два четко различимых сменяющих друг друга паттерна двигательной активности буккальных щупалец: полная протракция во время первой фазы поведения и ритмическая активность в частично втянутом состоянии во время второй фазы. Клеточным механизмом, лежащим в основе смены паттерна двигательной активности буккальных щупалец, является реконфигурация активности церебральных мотонейронов протракции и ретракции буккальных щупалец: переход от антагонистического к синергическому паттерну активности этих двух групп мотонейронов. ¦ Триггерным механизмом, обеспечивающим реконфигурацию сети мотонейронов буккальных щупалецво время пищевого поведения, является изменение возбудимости ГАМК-ергического церебрального интернейрона Цр-Аннт.

6. Ц1 у СНопе образуют моносинаптические серотонинергические связи с мотонейронами буккальных ганглиев, причем ответы в мотонейронах Бк-ПР и Бк-РР на потенциалы действия в Ц1 представляют собой двухфазные изменения Мембранного потенциала: деполяризацию, за которой следует гиперполяризация. Подобный тип ответов на стимуляцию Ц1 у моллюсков описывается впервые. Как следствие наличия выраженной гиперполяризационной фазы ответов' в буккальных мотонейронах на стимуляцию Ц1 у СНопе, эти клетки, помимо общей для всех брюхоногих моллюсков функции активации буккальной моторной программы, имеют функцию фазово-зависимой координации активности мотонейронных сетей крючков и радулы.

7. Идентифицированные нами пептидергические буккальные нейроны Бк-ПИ обеспечивают активацию ресничного эпителия в пищеводе СНопе во время пищевого поведения, что представляет собой новый, ранее не описанный, элемент нейронных механизмов пищевого поведения моллюсков. Бк-ПИ нейроны используют пептид родственный СЫР пептидам виноградной улитки, для осуществления контроля активности ресничного эпителияв пищеводе СНопе.

8. Впервые показано, что гигантские, серотонинергические церебральные клетки описанные у всех без исключения изученных видов, брюхоногих моллюсков, принимают участие в регуляции активности ресничного эпителия пищевода СНопе, используя в качестве нейромедиатора серотоиин.

9. Идентифицированные нами интестинальные кардиостимулирующие нейроны СНопе влияют на активность сердца посредством пептида, родственного СЫР пептидам виноградной улитки.

10. Кардиоактивные нейроны СНопе влияют на активность сердца по-разному педальный серотонинергический кар дио активатор влияет только на активность желудочка, СЫР-позитивные интестинальные кардиостимуляторы активируют или только предсердие, или как желудочек, так и предсердие (в зависимости от частоты импульсации), в то время как интестинальная г-клетка активирует только работу предсердия.

И. При развитии пассивно-оборонительной реакции СНопеу «сопровождающейся общим угнетением функции сердечно-сосудистой системы, происходит отставленнаяактивация нейронов, активирующих функцию предсердия — интестинальные кардиостимуляторов и г-клетки. Это приводит к активации предсердия на фоне покоящегося желудочка, что, по всей видимости, обеспечивает кровенаполение желудочка и создает условия для последующей быстрой активации сердечно-сосудистой системы.

12. Идентифицированные нами плевральные вентролатеральные нейроны являются первично-сенсорными нейронами, опосредующими передачу тактильной информации в нейронной сети оборонительного поведения виноградной улитки.

13. Выделение С№ пептидов париетальными командными нейронами оборонительного поведения виноградной улитки приводит к отставленной активации висеральных мотонейронов дыхальца и интенсификации движений открытия-закрытия дыхальца.

14. Амплитуда кальциевых сигналов, сопровождающих высокоамплитудные ВПСП в командных нейронах, линейно зависит от силы синаптической стимуляции, в то время как динамика изменения амплитуды самих ВПСП при увеличении силы стимуляции демонстрирует выраженное насыщение. Это означает, что в определенном диапазоне изменений мембранного потенциала кальциевые сигналы более адекватно передают силу стимула, чем уровень деполяризации постсинаптического нейрона.

СПИСОК ОСНОВНЫХ СТАТЕЙ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ.

1. Malyshev A.Y., Norekian Т.Р., Willows A.O.D. Differential effects of serotonergic and peptidergic cardioexcitatory neurons on the heart activity in the pteropod mollusc, Clione limacina. J Сотр. Physiol. A, 1999, 185(6):551−560.

2. Balaban P.M., Poteryaev D.A., Zakharov I.S., Uvarov P., Malyshev A., Belyavsky A.V. Upand down-regulation of HCS2 gene expression in the nervous system of terrestrial snail, Helix lucorum., Neuroscience, 2001, 103(2):551−559.

3. Норекян Т. П., Никитин E.C., Браваренко Н. И., Малышев А. Ю., Балабан П. М. Фазозависимая координация двух моторных программ в буквальном ганглии крылоногого моллюска., 2001, Жури. высш. нервн деят., 51(6):765−771.

4. Bravarenko N.I., Ierusalimsky V.N., Korshunova Т.А., Malyshev A.Y., Zakharov I.S., Balaban P.M. Participation of GABA in establishing behavioral hierarchies in the terrestrial snail. Exp Brain Res., 2001, 141(3):340—348.

5. Malyshev A.Y., Norekian T.P. Phase-Locked Coordination between Two Rhythmically Active Feeding Structures in the Mollusk Clione limacina. I. Motor Neurons J Neurophysiol 2002, 87(6):2996−3005.

6. Malyshev A.Y., Balaban P.M. Identification of Mechanoafferent Neurons in Terrestrial Snail: Response Properties and Synaptic Connections. J Neurophysiol, 2002, 87(5):2364−2371.

7. Boguslavsky D., Ierusalimsky V., Malyshev A., Balaban P., Belyavsky A. Selective blockade of gene expression in a single identified snail neuron. Neuroscience., 2003, 119(1): 15−18.

8. Biavarenko N.I., Korshunova T.A., Malyshev A.Y., Balaban P.M. Synaptic contact between mechanosensory neuron and withdrawal interneuron in terrestrial snail is mediated by L-glutamate-like transmitter. Neurosci Lett., 2003, 341(3):237−240.

9. Balaban P., Chistiakova M., Malyshev A., Volgushev M. Dependence of calcium influx in neocortical cells on temporal structure of depolarization, number of spikes, and blockade of NMDA receptors. J Neurosci Res., 2004, 76(4):481187.

Ю.Браваренко Н. И., Малышев А. Ю., Воронин JI.JI., Балабан П. М. Эфаптическая обратная связь в идентифицированном синапсе наземного моллюска. Журн. высш. нервн. деят., 2004, 54(4):565−572.

И.Norekian Т.Р., Malyshev A.Y. Coordinated excitatory effect of GABAergic interneurons on three feeding motor programs in the mollusk Clione limacina. J Neurophysiol., 2005, 93(1): 305−315.

12.Коршунова Т. А., Малышев А. Ю., Захаров И. С., Иерусалимский В. Н., Балабан П. М. Функции пептида CNP4, кодируемого геном HCS2, в нервной системе Helix lucorum Журн. высш. нерви, деят., 2005, 55(1):91−99.

13.Norekian Т.Р., Malyshev A.Y. Neural mechanisms underlying co-activation of functionally antagonistic motoneurons during a Clione feeding behavior. J Neurophysiol., 2006, 95(4):2560−2569.

14.Ivanova J.L., Leonova O.G., Popenko Y.I., Ierusalimsky V.N., Korshunova T.A., Boguslavsky D.V., Malyshev A.Y., Balaban P.M., Belyavsky A.V. Intracellular localization of the HCS2 gene products in identified snail neurons in vivo and in vitro. Cell Мої Neurobiol, 2006, 26(2): 127−144.

15.Lemak M.S., Bravarenko N.I., Bobrov M.Y., Bezuglov V.V., Ierusalimsky V.N., Storozhuk M.V., Malyshev A.Y., Balaban P.M. Cannabinoid regulation in identified synapse of terrestrial snail. Eur JNeurosci., 2007, 26(11):3207−3214.

16.Malyshev A.Y., Norekian T.P., Balaban P.M. Neural Control of Heartbeat during Two Antagonistic Behaviors: Whole Body Withdrawal and Escape Swimming in the Mollusk Clione limacina, J. Сотр. Physiol. A, 2008, 194(10):899−906.

17.Malyshev A.Y., Balaban P.M. Buccal neurons activate ciliary beating in the foregut of the pteropod mollusk Clione limacina J. Exp. Biol, 2009 Sep-212(18):2969−2976.

18.Malyshev A.Y., Balaban P.M. Serotonergic cerebral cells control activity of cilia in the foregut of the pteropod mollusk Clione limacina J. Сотр. Physiol. A., 2011 197(1):25—32.

ДРУГИЕ ПУБЛИКАЦИИ АВТОРА.

1. Tchumatchenko Т., Malyshev A., Wolf F., Volgushev М. Ultrafast Population Encoding by Cortical Neurons. JNeurosci., 2011, 31(34):12 171−12 179.

2. Hoch Т., Volgushev S., Malyshev A., Obermayer K., Volgushev M. Modulation of the amplitude of y-band activity by stimulus phase enhances signal encoding. Eur J Neurosci., 2011,33(7):1223−1239.

3. Balaban P.M., Malyshev A.Y., Ierusalimsky V.N., Aseyev N.A., Korshunova T.A., Bravarenko N. I, Lemak M.S., Roshchin M.V., Zakharov I.S., Popova E., Boyle R. Functional Changes in the Snail Statocyst System Elicited by Microgravity. PLoS ONE., 2011,6(3):el7710.

4. Малышев А. Ю., Балабан П. М. Роль дендро-соматического выброса медиатора в межнейронной коммуникации. Росс. Физиол. Жури, им Сеченова., 2011, 11 (принято в печать).

5. Tchumatchenko Т., Malyshev A., Geisel Т., Volgushev М., Wolf F. Correlations and synchrony in threshold neuron models. Phys. Rev. Lett., 2010, 104(5):58 102.

6. Volgushev M., Malyshev A., Balaban P., Cliistiakova M., Volgushev S., Wolf F. Onset dynamics of action potentials in rat neocortical neurons and identified snail neurons: quantification of the difference. PLoS OA®., 2008, 3(4):el962.

Автор выражает свою искреннюю благодарность Тиграну Норекяну и Павлу Милославовичу Балабану, без которых эта работа никогда не была бы выполнена и написана. А также коллегам, вместе с которыми выполнены некоторые части данной работы: М. М. Беспалову, Д. В. Богуславскому, Н. И. Браваренко, И. С. Захарову. Я благодарю также всех сотрудников нашей лаборатории за их дружеское участие и неизменный интерес к моей работе.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.И., Гамкрелидзе Г. Н., Орловский Г. Н., Панчин Ю. В., Попова Л. Б. (1991) Роль гамма-аминомасляной кислоты в организации пищевого поведения крылоногого моллюскка Clione limacina. Докл. АН СССР. 317:1500−1 503.
  2. Ю.И., Гельфанд И. М., Делягина Т. Г., Орловский Г. Н., Попова Л. Б. (1988) Координация работы локомоторной, пищевой и сердечно-сосудистой систем при разных формах поведения крылоногого моллюска Clione limacina. Докл АН СССР. 302:999−1002.
  3. Ю.И., Делягина Т. Г., Мейзеров Е. С., Орловский Г. Н., Павлова Г. А., Панчин Ю. В., Попова Л. Б. (1989) Нервная регуляция работы сердца у крылоногого моллюскка Clione limacina. Нейрофизиология. 21(2):185−192.
  4. Ю.И., Делягина Т. Г., Мейзеров Е. С., Орловский Г. Н., Панчин Ю. В. (1988) Нейронные механизмы генерации пищевого ритма в буккальных ганглиях крылоногого моллюскка. Нейрофизиология 20(2):258−62.
  5. Ю.И., Орловский Г. Н., Панчин Ю. В. (1991) Электрофизиологическое исследование серотонинергического нейрона С1 у крылоногого моллюска Clione. Нейрофшиология, Т. 23, № 1 с. 18−25.
  6. П.М. (1981) Взаимоотношения между идентифицированными нейронами оборонительного и респираторного рефлексов виноградной улитки. Журн высш нерв. деят. Т. 31. № 2. С. 315322.
  7. П.М., Браваренко Н. И., Воронин Л. Л., Гусев П. В. (1996) Длительная потенциация в центральной нервной системе виноградно улитки после внутриклеточной тетанизации. Докл. РАН. Т. 343. № 4. С. 563−56б.
  8. П.М., Захаров И. С. (1992) Обучение и развитие. Общая-основа двух явлений. М.: Наука, 150 с.
  9. П.М., Литвинов Е. Г. (1977) Командные нейроны в дуге безусловного рефлекса виноградной улитки. Журн. высш. нерв. деят. Т. 27. № 3. С. 538−544.
  10. Воронин Л Л. (1999) Внутрисинаптическая эфаптическая обратная связь в центральных синапсах. Рос. физиол. журн. им Сеченова, 85: б (563 -566).
  11. Л.Л. Внутрисинаптическая эфаптическая обратная связь в центральных синапсах (1999) Рос. Физиол. Журн. Им И. М. Сеченова Т.85. № 6. С. 729−742.
  12. Л.Л., Волгушев М. А., Соколов М. В., Касьянов A.C., Чистякова М. В. (1999) Эффекты постсинаптической гиперполяризации подтверждают существование внутрисинаптической эфаптической обратной связи в центральных синапсах. Докл. РАН, 369(1): 126 129.
  13. В. А. (1981) Зоология беспозвоночных. Москва. «Высшая школа».
  14. И.С. Оборонительное поведение виноградной улитки (1992). Журн выем, нерв деят. 42(6): 1156−1169.
  15. И.С., Мац В.Н., Балабан П. М. (1982) Участие гигантского нейрона церебрального ганглия в управлении оборонительным поведением виноградной улитки. Нейрофизиология. Т. 14 № 4, с 353 358.
  16. Е.А., Сахаров Д. А. (1990) Нейрональные корреляты серотонин-зависимого поведения крылоногого моллюска клиона. Журн. высш. нервн. деят., 40: 739−753.
  17. Т. А. Малышев А.Ю., Захаров И. С., Иерусалимский В. Н., Балабан П. М. (2005) Функциональная роль нейропептида CNP4, кодируемого геном HCS2, в нервной системе Helix lucorum Журн. высш. нервн. деят. 55(1):91−99.
  18. А.Л. Идентифицированный мотонейрон закрытия пневмостомы как ' компонента оборонительной реакции виноградной улитки. (1983) Журн. высш. нервн деят. 33(1):54—61.
  19. Кульчицкий С В., Максимов В. В., Максимов П. В., Лемак М. С., Воронин Л. Л. (2003) Корреляция между парными ответами подтверждает наличие положительной обратной связи в центральных синапсах. Докл. РАН, 389(3):1 -3.
  20. Э. (1980) Клеточные основы поведения. М.: Мир.
  21. Н.М., Орловский Г. Н. (1985) Пищевое поведение крылоногого моллюска Clione limacina. Бюл. МОИП отд. биол., 90: 4, с. (73 77).
  22. Д.Б., Балабан П. М. (1978) Моносннаптическая связь между идентифицированными нейронами виноградной улитки. (1978) Докл. АН СССР. 240(1):237−241.
  23. Максимова OA, Балабан ПМ (1983) Нейронные механизмы пластичности поведения. М, Наука
  24. Т.П., Саттерли Р. А. (1991) Neuronal analysis of hunting behavior of Clione limacina mollusc. Журн высш. нервн деят. 4 1:982−997.
  25. Т.А., Маракуева И. В., Аракелов Г. Г. (1992)Моно- иполисинаптические связи между идентифицированными нейронами в системе пассивно-оборонительного рефлекса виноградной улитки. Журн высш. нервн. деят 42(6): 1170−1180.
  26. Ф.И., Карпенко Л. Д. (1980) Локализация нейронов, иннервирующих коллюмелярные виноградной улитки. Нейрофизиология 12(б):637−641,
  27. Д.А. Генеалогия нейронов. М.: Наука, 1974. 184 с.
  28. Д.А. (1990) Множественность нейротрансмиттеров: функциональное значение. Журн. эвол. биох. и физиол. 26:733−741
  29. Д.А., Каботянский Е. А. (1986) Интеграция поведения крылоногого моллюска дофамином и серотонпном. Журн. Общ Биол. 97(2):234−245.
  30. А.В. (2004) Диффузная внесинаптическая нейропередача посредством глутамата и ГАМК. Журн. высш. нервн. деят. 54(1): 68−84.
  31. Тер-Маркарян А.Г., Палихова T.A., Соколов Е. Н. Действие атропина и d-тубокурарина на моносинаптические связи между идентифицированными нейронами в центральной нервной системе виноградной улитки. (1990) Журн. высш. нервн деят. 40(1): 183—184.
  32. И. А., Сахаров Д. А. (2001) Несинаптическая интеграция клеточных тел нейронов в ЦНС улитки. Рос. физиол. журн. им. И. М. Сеченова., 87(11): 1540−1547.
  33. И.А., Сахаров Д. А. (2007) Изолированный нейрон как биосенсор, реагирующий на высвобождение нейроактивных веществ. Росс, физиол. о/сурн. им. И. М Сеченова. 93(10): 12 101 213.
  34. Acosta-Urquidi, J. and Chase, R. (1975) The effects of delta 9-tetrahydrocannabinol on action potentials in the mollusc Aplysia. Can. J. Physiol. Pharmacol., 53, 793−798.
  35. Alevizos A, Bailey CH, Chen M, Koester J. (1989) Innervation of vascular and cardiac muscle of Aplysia by multimodal motoneuron L7. JNeurophysiol 61:1053−1063.
  36. Arch S., and Smock, T. (1977) Egg-laying behavior in Aplysia califbmica. Behav. Biol. 19:45- 54.
  37. Arshavsky Y.I., Orlovsky G.N., Panchin Y.V., Roberts A., and Soffe S.R. (1993c) Neuronal control of swimming locomotion: analysis of the pteropod mollusk Clione and embiyos of the amphibian Xenopus. Trends Neurosci. 16:227−233.
  38. Arshavsky YI, Deliagina TG, Okshtein IL, Orlovsky GN, Panchin YV, Popova LB. (1994a) Defense reaction in the pond snail Planorbis corneus. III. Response to input from statocysts. J Neurophysiol. Mar-71(3):898−903.
  39. Arshavsky YI, Deliagina TG, Okshtein IL, Orlovsky GN, Panchin YV, Popova LB. (1994b) Defense reaction in the pond snail Planorbis corneus. II. Central pattern generator. J Neurophysiol. Mar-71(3):891−7.
  40. Arshavsky YI, Deliagina TG, Okshtein IL, Orlovsky GN, Panchin YV, Popova LB. (1994c) Defense reaction in the pond snail Planorbis corneus. I. Activity of the shell-moving and respiratory systems. J Neurophysiol. Mar-71(3):882−90.
  41. Arshavsky Yu, I., Beloozerova, I. N., Orlovsky, G. N., Panchin Yu, V. And Pavlova, G. A. (1985a). Control of locomotion in marine mollusc Clione limacina. I. Efferent activity during actual and fictitious swimming. Expl Brain Res. 58,255−262.
  42. Arshavsky Yu, I., Beloozerova, I. N., Orlovsky, G. N., Panchin Yu, V. And Pavlova, G. A. (1985b). Control of locomotion in marine mollusc Clione limacina. II. Rhythmic neurons of pedal ganglia. Expl Brain Res. 58,263−272.
  43. Arshavsky Yu, I., Beloozerova, I. N., Orlovsky, G. N., Panchin Yu, V. And Pavlova, G. A. (1985c). Control of locomotion in marine mollusc Clione limacina. Ill, On the origin of locomotory rhythm. Expl Brain Res. 58, 273−284.
  44. Arshavsky Yu, I., Beloozerova, I. N., Orlovsky, G. N., Panchin Yu, V. And Pavlova, G. A. (1985d). Control of locomotion in marine mollusc Clione limacina. IV. Role of type 12 interneuions. Expl Brain Res. 58, 285−293.
  45. Yu.I., Deliagina T.G., Orlovsky G.N., Panchin Yu.V. (1989) Control of feeding movements in the pteropod mollusc, Clione limacina. Exp Brain Res. 78(2):387−397.
  46. Arshavsky Yul, Orlovsky GN, Panchin YuV, Pavlova GA. (1989) Control of locomotion in marine mollusc Clione limacina. VII Reexamination of type 12 interneurons. Exp Brain Res.-78(2):39S-406.
  47. Aseyev N., lerusalimsky V., Boguslavsky D., Balaban, P. (2005) Snail peptide expression pattern in the nervous system of the medicinal leech. Brain Res Mol Brain Res. 140(l-2):99−105.
  48. N., Zakharov I.S., Balaban P.M. (2010) Morphology of neuropeptide CNP2 modulation of heart activity in terrestrial snail. Peptides. 31(7):1301−1308-
  49. G. (1978). Central neuronal control of cilia in Tritonia diamedia. Nature. 272(5653): 541 -543.
  50. Audesirk G., McCaman R.E., Willows, A.O. (1979) The role of serotonin in the control of pedal ciliary activity by identified neurons in Tritonia diomedea. Comp Biochem Physiol С 62C (l):87−91.
  51. Т.Е. (1975) Chemoreception in Aplysia californica. I. Behavioral localization of distance chemoreceptors used in food-finding. Behav. Biol. 15:45−55.
  52. Т.Е., Audesirk G.J. (1979) Oral mechanoreceptors in Tritonia diomedea. II. Role of feeding. J Comp Physiol. 130:79−86.
  53. D.A., Patel V.C., Susswein A.J., Byrne J.H. (1997) Computational model of a multifunctional central pattern generator (CPG) that underlies consummatory feeding behavior in Aplysia. Abstr Soc Neurosci. 23:1044.
  54. S.P., Langley D.J., Edwards D.H. (1990) Inhibition of escape tailflipin crayfish during backward walking and the defense posture. J Exp Biol. 152:577−582.
  55. Beg A.A., Jorgensen E.M. (2003) EXP-1 is an-excitatory GABA-gated cation channel. Nat Neurosci. 6:1145−1152.
  56. N., Rossokhin A.V., Cherubini E., Astrelin A.V., Voronin L.L. (1999)-Long-term synaptic changes induced by intracellular tetanization of CA3 pyramidal neurones in the hippocampal slices from juvenile rats //Neuroscience. V. 93. P. 469177.
  57. M.S., Pentreath V.W. (1976) Properties of a symmetric pair of serotonin-containing neurons in the cerebral ganglia of Planorbis. J. exp. Biol. 65:361−380.
  58. Bicker G., Davis W.J., Matera E.M., Kovac M.P., StormoGipson D. J. (1982) Chemoreception and mechanoreception in the gastropod mollusk Pleurobranchaea californica. I. Extracellular analysis of afferent pathways. J. Сотр. Physiol. A 149:221−234.
  59. Bliss Т. V. P. and Collingridge G. (1993) «A synaptic model of memory: long-term potentiation in the hippocampus,» Nature, 361, 31−39.
  60. Bliss T.V.P., Collingridge G. (1993) A synaptic model of memory: long-term potentiation in the hippocampus // Nature. V. 361. P. 31−39.
  61. D.M., Christie A.E., Coleman M.J., Norris B.J., Marder E., Nusbaum M.P. (1999) Different proctolin neurons elicit distinct motor patterns from a multifunctional neuronal network. JNeurosci. 19:5449−5463.
  62. D.M., Nusbaum M.P. (1997) Motor pattern selection via inhibition of parallel pathways. J Neurosci. 17:4965975.
  63. Bogdanov Yu.D., Ovchinnikov D.A., Balaban P.M., Belyavsky A.V. Novel gene HCS1 is specifically expressed in the giant interneurons of the terrestrial snail // Neuroreport. 1994. V. 5. P. 589−592.
  64. , R.V. (1968) Responses to food in lymnaeid snails. Physiol. Zool. 41:412−424.
  65. N.I., Gusev P.V., Balaban P.M., Voronin L.L. (1995) Postsynaptic induction of long-term synaptic facilitation in snail central neurons //Neuroreport. V. 6. < 8. P. 1182−1186.
  66. N.I., Ierusalimsky V.N., Korshunova T.A., Malyshev A.Y., Zakharov I.S., Balaban P.M. (2001) Participation of GABA in establishing behavioral hierarchies in the terrestrial snail. Exp Brain Res. 141:340−348.
  67. P. H. (1992) Mechanisms of circulatory homeostasis and response in Aplysia. Experiantia 48:818−827.
  68. Buckett K. J, Peters M., Dockray G.J., Van Minnen J., Benjamin P.R. (1990b) Regulation of heartbeat in Lymnaea by motoneurons containing FMRFamide-like peptides. JNeurophysiol 63:1426−1435.
  69. K.J., Peters M., Benjamin P.R. (1990a) Excitation and inhibition of the heart of the snail, Lymnaea, by non-FMRFamidergic motoneurons. J Neurophysiol 63: 1436−1447.
  70. , W. S. (1954). Practical Invertebrate Anatomy. Macmillan & Co., Ltd., London.
  71. Byrne J. and Koester J. (1978) Respiratory pumping: neuronal control of a centrally commanded behavior in Aplysia. Brain Res. 143:87−105.
  72. Byrne, J. H., Castellucci, V. F., Carew, T. J., And Kandel, E. R. (1978a) Stimulus-response relations and stability of mechanoreceptor and motor neurons mediating defensive gill-withdrawal reflex in Aplysia. J. Neurophysiol. 41: 402−417.
  73. Byrne, J. H. Identification and initial characterization of a cluster of command and pattern-generating neurons underlying respiratory pumping in Aplysia califomica. J. Neurophysiol. 49: 491−508, 1983.
  74. Byrne, J. H., Castellucci, V. F., And Kandel, E. R. (1978b) Contribution of individual mechanoreceptor sensory neurons to defensive gill-withdrawal reflex in Aplysia. J. Neurophysiol. 41: 418−43 1.
  75. Byrne, J., Castellucci, V., Kandel, E. R. (1974) Receptive fields and response properties of mechanoreceptor neurons innervating siphon skin and mantle shelf in Aplysia. J. Neurophysiol. 37: 104 1 -1064.
  76. Byzov A. L. and Shura-Bura T. M. (1986). «Electrical feedback mechanism in the processing of signals in the outer plexiform layer of the retina,» Vision. Res., 26, 33−34
  77. T.J., Pinsker H., Rubinson K., Kandel E.R. (1974) Physiological and biochemical properties of neuromuscular transmission between identified motoneurons and gill muscle in Aplysia. J. Neurophysiol. 37:1020−1040.
  78. A. J. (1905) The rhythm produced in the resting heart of molluscs by the stimulation of the cardio-accelerator nerves. Am. J. Physiol. 12: 55−66.
  79. Carpenter D., Breese G., Schanberg S., Kopin, I. (1971) Serotoninand dopamine: distribution and accumulation in Aplysia nervous and non-nervous tissues. Int. J. Neurosci. 2:49−56.
  80. Castellucci V., Pinsker H., Kupfermann I., Kandel, E.R. (1970) Neuronal mechanisms of habituation and dishabituation of the gillwithdrawal reflex in Aplysia. Science 167:1745−1748.
  81. , V. F., & Kandel, E. R. (1974). A quantal analysis of the synaptic depression underlying habituation of the gill-withdrawal reflex in Aplysia. Proceedings of the National Academy of Sciences, 71, 5004−5008.
  82. R. (2002) Behavior and its neural control in gastropod mollusks. Oxford University Press, New York.
  83. Chase T.N., Breese G. R., Carpenter D. O., Schanberg, S.M., Kopin, I. J., (1968) Stimulation induced release ofserotonin. Adv. Pharmac 6:351−364.
  84. R., Tolloczko B. (1992) Synaptic innervation of the giant cerebral neuron in sated and hungry snails. J Comp Neurol 318: 93−102.
  85. Chesnoy-Marchais D. S. (1983) Characterization of chloride conductance activated by hyperpolarization in Aplysia neurones // J. Physiol. (London). V. 342. P." 277- 308.
  86. Chen G., Gavin P.F., Luo G., Ewing A.G. (1995) Observation and quantitation of exocytosis from the cell body of a fully developed neuron in Planorbis corneus. J Neurosci 15:7747−7755.
  87. P.J., Lloyd P.E. (1994) Activity of multiple identified motor neurons recorded intracellularly during evoked feedinglike motor programs in Aplysia. JNaurophysiol. 72:1794−1809.
  88. Cleary, L. J. And Byrne, J. H. (1993) Identification and characterization of a multifunction neuron contributing to defensive arousal in>Aplysia. J. Neurophysiol. 70: 1767- 1776.
  89. Cobbs J. S., Pinsker H.M.* (1982) Role of bag cells in egg deposition ofAplysia brasiliana. J. Comp. Physiol. 147:523−535.
  90. W.R. (1983) Organization of electrical coupling between frog lumbar motoneurons. J Neurophysiol. 49:730−744.
  91. Croll R.P.', Davis W. J: (1981) Motor program switching in Pleurobranchaea. I. Behavioural and electromyographic study of ingestion and egestion in intact specimens. J. Comp. Physiol. 145:277−287.
  92. T., Tian L.M. (2003) Intemeuronal projections to identified cilia-activating pedal neurons in Hermissenda. J Neurophysiol. 89(5):2420−2429.
  93. W.J., Kovac M.P., Croll R.P., Matera E.M. (1984). Brain oscillator (s) underlying rhythmic cerebral and buccal motor output in the mollusk, Pleurobranchaea californica. J. Exp. Biol. 110:1−15.
  94. W.J., Mpitsos G.J. (1971) Behavioral choice and habituation in the marine mollusc Pleurobranchaea californica MacFarland (Gastropoda, Opisthobranchia). Z. Vergl. Physiol. 75:207−223.
  95. W.J., Siegler M.V., Mpitsos G.J. (1973). Distributed neuronal oscillators and efference copy in the feeding system of Pleurobranchaea. J. Neurophysiol. 36:258−274.
  96. K., Gelperin A. (1990) Cerebral interneurons controlling Active feeding in Limax maximus. J Comp Physiol A. 16:297−326.
  97. T.G., Orlovsky G.N. (1990). Control of locomotion in the freshwater snail Planorbis corneus. II. Differential control of various zones of the ciliated epithelium. J Exp Biol. 152:405−423.
  98. Di Marzo, V., De Petrocellis, L., Bisogno, T. and Melck, D. (1999) Metabolism of anandamide and 2-arachidonoylglycerol: an historical overview and some recent developments. Lipids, 34, S319-S325.
  99. Diaz-Rios M., Suess E., Miller M.W. (1999) Localization of GABA-like imunoreactivity in the central nervous system ofAplysia californica. J Comp Neurol. 413: 255−270.
  100. P. (1995) Interactions among neural netwoiks for behavior. Curr Opin Neurobiol 5: 792−798.
  101. P. S., Mecsas C., Marder E. (1990) Neuropeptide fusion of two motor pattern generator circuits. Nature. 334:155−158.
  102. Diefenbach T. J., KoehnckeN. K., Goldberg, J. I. (1991). Characterization and development of rotational behavior in Helisoma embryos: role of endogenous serotonin. J. Neurobiol. 22:922−934.
  103. Dieringer N., Koester J., Weiss, K. (1978) Adaptive changes in heart rate of Aplysia californica. J. Comp Physiol. 123:11−21.
  104. D.A. (1967) Giant neurones and axon pathways in the brain ofTritonia. J. exp. Biol. 46: 137−151.
  105. Dubuc B., Castellucci, V. F. (1991) Receptive fields and properties of a new cluster of mechanoreceptor neurons innervating the mantle region and the branchial cavity of the marine mollusk Aplysia califomica. J. Exp. Biol. 156:315−334.
  106. Eberly, L. B. and Pinsker, H. M. Neuroethological studies of reflex plasticity in intact Aplysia. Behav. Neurosci. 98: 609−630, 1984.
  107. E1-Beheiry H., Puil E. (1990) Unusual features of GABA responses in layers IV-V neurons of neocortex:. Neurosci Lett. 119:83−85.
  108. C.J., Susswein A.J. (2002) Comparative neuroethology of feeding control in molluscs. J Exp Biol. 205(Pt 7):877−96
  109. Elliott C J.H., Benjamin P.R. (1985) Interactions of the slow oscillator interneuron with feeding pattern-generating interneurons in Lymnaea stagnalis. J. Neurophysiol. 54:1412−1421.
  110. I.Evans C.G., Alexeeva V., Rybak J., Karhunen T., Weiss K.R., Cropper E.C. (1999) A pair of reciprocally inhibitory histaminergic sensory neurons are activated within the same phase of ingestive motor programs in Aplysia. J Neurosci. 19:845−858.
  111. C.G., Cropper E.C. (1998) Proprioceptive input to feeding motor programs in Aplysia. J Neurosci, 18:8016−8031.
  112. C.G., Jing J., Rosen S.C., Cropper E.C. (2003) Regulation of spike initiation and propagation in an Aplysia sensory neuron: Gating-in via central depolarization. J Neurosci. 23:2920−2931.
  113. , J. R. (1991) Spinal network of the Mauthner cell. Brain Behav. Evol. 37: 298−316.
  114. Fischer, T, M. And Carew, T. J. (1995) Cutaneous activation of the inhibitory L30 interneurons provides a mechanism for regulating adaptive gain control in the siphon withdrawal reflex, of Aplysia. J. Neurosci. 15: 762−773.
  115. Fischer, T. M. And Carew, T. J. (1993) Activity-dependent potentiation of recurrent inhibition- a. mechanism for dynamic gain control in the siphon withdrawal reflex of Aplysia. J. Neurosci. 13: 1302- 13 14.
  116. Frost, W. N., Wu, L. G., And Lieb, J. (1991) Simulation of the Aplysia siphon withdrawal reflex circuit: slow components of intemeuronal synapses contribute to the mediation of reflex duration. Sot. Neurosci. Abstr. 17: 1390.
  117. Y., Kobayashi M. (1987a) Neural control of heart beat in the African giant snail, Achatina fixlica Femssac. I. Identification of the heart regulatory neurones. J. Exp. Biol. 129:279−293.
  118. Y., Kobayashi M. (1987b) Neural control of heart beat in the African giant snail, Achatina fulica Ferussac. I. Interconnections among the heart regulatory neurons. J Exp Biol 129:295−307.
  119. Fuxe K., Dahlstrom A.B., Jonsson G., Marcellino D., Guescini M., Dam M., Manger P., Agnati L. (20 10) The discovery of central monoamine neurons gave volume transmission to the wired brain. Prog Neurobiol. 90(2): 82−100.
  120. J.P., Higashi H., Nishi S. (1978) Characterization and ionic basis of GABA-induced depolarizations recorded in vitro from cat primary afferent neurons. J Physiol. 275:263−282.
  121. M.R. (1998) Neuropeptide TPep action on salivary duct ciliary beating rate in the nudibranch mollusc Tntonia diomedea. Invert Neurosci 3(4):327−333.
  122. M.R. (1998) Neuropeptide TPep action on salivary duct ciliary beating rate in the nudibranch mollusc Tritonia diomedea. Invert Neurosci. 3(4):327−333.
  123. A., Forsythe D. (1976) Neuroethological studies of learning in molluscs. In Simpler Networks and Behaviour (ed. by J. C. Fentress), pp. 230−246. Sunderland, Mass.: Sinauer Associates, Inc.
  124. P.A., Dekin M.S. (1985) Mechanisms of pattern generation underlying swimming in Tritonia. IV Gating of central pattern generator. J Neurophysiol 53:466−480.
  125. R., Davis W.J. (1977) The role of metacerebral giant neuron in the feeding behaviour of Pleurobranchaea. J. comp. Physiol. 116:129−159.
  126. R., Kovac M.P., Davis W.J. (1978) Command neurons in Pleurobranchaea receive synaptic feedback from motor networks they excite. Science 199:798−801.
  127. R., Kovac M.P., Davis W.J. (1982) Control of feeding motor output by paracerebral neurons in brain ofPleurobranchaea californica. JNeurophysiol. 47:885−908.
  128. Goldberg J.I., Koehncke N.K., Christopher K.J., Neumann C., Diefenbach, T. J. (1994). Pharmacological characterization of a serotonin receptor involved in an early embiyonic behavior of Helisoma trivolvis. J. Neurobiol. 25:1545−1557.
  129. G.V., Moss R.L. (2000) A subset of periglomerular neurons in the rat accessory olfactory bulb may be excited by GABA through a Na(+)-dependent mechanism. Brain Res 871: 7−15.
  130. Granzow B., Fraser Rowell C.H. (1981) Further observations-on the serotonergic cerebral neurones of Helisoma (mollusca, gastropoda): the case for homology with the metacerebral giant cells. J. Exp. Biol. 90:283−305.
  131. B., Kater S.B. (1977) Identified higher-order neurons controlling the feeding motor program of Helisoma. Neuroscience. 2:1049−1063.
  132. Greenberg M. J, Price D.A. (1979) FMRFamide, a cardioexcitatory neuropeptide of molluscs: an agent in search of a mission. Am Zool 19:163−174.
  133. Harris-Warrick R.M., Marder E., Selverston A., Moulins M. (Editors). (1992) Dynamic Biological Netwoiks: The Stomatogastric Nervous System. Cambridge, MA: MIT Press.
  134. , R. D. (1981) Interaeurons involved in mediation and modulation of gill-withdrawal reflex in Aplysia. III. Identified facilitating neurons increase Ca2+ current in sensory neurons. J. Neurophysiol. 45: 327−339.
  135. W.J., Burrows M. (1977) The locust jump. I. The motor program. J Exp Biol. 66:203−219.
  136. C.O., Satterlie R.A. (1992) Fast-strike feeding behavior in a pteropod mollusc, Clione-limacina Phipps. Biol Bull. 182:1−7.
  137. Hickie, C. And Walters, E. T. (1990) Identified central motor neurons are necessary for directional siphon responses in Aplysia. Soc. Neurosci. Abstr. 16: 19.
  138. Hill RIB. (1964) Some effects of acetylcholine and of active amines on the isolated ventricles of Aplysia dactylomelaand Aplysia Jasciata. Pubbl. Staz. Zool. Napoli 34:75−85.
  139. Hill R.B.', Welsh J.H. (1966) Heart, circulation, and blood, cells. In: Wilbur K.M., Yonge C.M. (eds) Physiology of Mollusca, vol 2. Academic Press, New York, pp 126−174.
  140. S.L. (2005) Movement control: dedicated or distributed? Curr Biol. Nov 8−15(21):R878−80″
  141. S.L., Moulins M., Nonnotte L. (1990) Sensory input induces long-lasting changes in the output of the lobster pyloric network. J Neurophysiol. 64:1555−1573.
  142. Hooper, S.L., and DiCaprio, R.A. (2004). Crustacean motor pattern generator networks. Neurosignals 13, 50−69.
  143. , Z., & Satterlie, R. A. (1990). Neuronal mechanisms underlying behavioral switching in a pteropod mollusc. Journal of Comparative Physiology A Sensory, Neural, and Behavioral Physiology, 166(6), 875 887
  144. I., Goldstein R.S., Susswein A.J. (1994) Compartmentalization of pattern-initiation and motor functions in the B31 and B32 neurons of the buccal ganglia of Aplysia californica. J Neurophysiol. 71:1514−1527.
  145. I., Kupfermann I., Susswein A.J. (1997) Different roles of neurons B63 and B34 that are active during the protraction phase of buccal motor programs in Aplysia californica. J Neurophysiol. 78:13 051 319.
  146. I., Kupfermann I., Weiss K.R. (2003) Fast synaptic connections from CBIs to pattern-generating interneurons in Aplysia: Initiation and modification of motor programs. J Neurophysiol. 89:2120−2136.
  147. Hurwitz I., Perrins R., Xin Y., Weiss K.R., Kupfermann, I. (1999) C-PR neuron of Aplysia has differential effects on 'feeding' cerebral interneurons, including myomodulin-positive CBI-12. J. Neurophysiol. 81:521−534.
  148. I., Susswein A.J. (1996) B64, a newly identified central pattern generator element producing a phase switch from protraction to retraction in buccal motor programs of Aplysia californica. J Neurophysiol. 75:1327−1344.
  149. Janet L. Leonard and John P. Edstrom H. H. Boer and J. Joose), pp. 30−37. North Holland Publishing Co., Amsterdam.
  150. Jing J, Weiss KR. (2005) Generation of variants of a motor act in a modular and hierarchical motornetwork. Curr Biol. Oct 11−15(19): 1712−21.
  151. Jmg J., Vilim F.S., Wu J.S., Park J.H., Weiss K.R. (2003) Concerted GABAergic actions of Aplysia feeding interneurons in motor program specification. J Neurosci. 23:5283−5294.
  152. J., Weiss K.R. (2001) Neural mechanisms of motor program switching in Aplysia. J Neurosci. 21:7349−7362.
  153. J., Weiss K.R. (2002) Interneuronal basis of the generation of related but distinct motor programs in Aplysia: Implications for current neuronal models of vertebrate intralimb coordination. J Neurosci 22:6228−6238.
  154. H.D. (1983) The circulatoiy systems of gastropods and bivalves. The Mollusca. Ed. By A.S.M. Salenddin, K.M. Wilbur. New York: Acad. Press, 189−238.
  155. C.B. (1975) Comparative physiology of suspension feeding. Ann. Rev. Physiol. 37:57−79.
  156. E.R., Frazier W. Т., Waziri R., Coggeshall R. (1967) Direct and common connections among identified neurons in Aplysia. J. Neurophysiol. 30:1352−1376.
  157. E.R., Tauc L. (1966) Input organization of two symmetrical giant cells in the snail brain. J. Physiol., Lond. 183:269−286.
  158. Kanz, J. E., Eberly, L. В., Cobbs, J. S., And Pinsker, H. M. Neuronal correlates of siphon withdrawal in freely behaving Aplysia. J. Neurophysiol. 42: 1538−1556, 1979.
  159. Kasyanov A. M.,. Maximov V. V, Byzov A. L., et al., (2000). «Intrasynaptic ephaptic feedback alters amplitude-voltage relations of mossy fibre responses in rat CA3 hippocampal neurones,» Neurosci., 101, No. 2, 323−336.
  160. O.Kasyanov A.M., Maximov V.V., Byzov A.L. et al. (2000) Intrasynaptic ephaptic feedback alters amplitude-voltage relations of mossy fibre responses in rat CA3 hippocampal neurones //Neuroscience. V. 101.(2). P.323−336.
  161. S.B. (1974) Feeding in Helisoma trivolvis: the morphological and physiological basis of a fixed action pattern. Am Zool. 14:1017−1036.
  162. G., Staras K., Benjamin P. R. (2001) Multiple types of control by identified interneurons in a sensory-activated rhythmic motor pattern. J. Neurosci. 21:2903−2911.
  163. Kistler HB Jr, Hawkins RD, Koester J, Steinbusch HW, Kandel ER, Schwartz JH. (1985) Distribution of serotonin-immunoreactive cell bodies and processes in the abdominal ganglion of mature Aplysia. J Neurosci. Jan-5(l):72−80.
  164. Klein M, Camardo J, Kandel ER. (1982) Serotonin modulates a specific potassium current in the sensory neurons that show presynaptic facilitation in Aplysia. Proc Natl Acad SciU S A. Sep-79(18):57l3−7
  165. KIussmann-Kolb A., Dinapoli A. (2006) Systematic position of the pelagic Thecosomata and Gymnosomata within Opisthobranchia (Mollusca, Gastropoda) Revival of the Pteropoda. J. Zool. Syst, Evo! Res 44(2):118−129.
  166. U.T., Koester J., Weiss K. R. (1984). Neuronal mediation of cardiovascular effects of food arousal in Aplysia. J. Neurophysio! 51: 126−135.
  167. Koch U.T., Koester, J. (1982) Time shaiing of heart power: caidiovascular adaptations to food arousal in Aplysiu. J. Comp. Physiol. 149:31−42.
  168. Koester J., Dieringer N. and Mandelbaum, D.E. (1979) Cellular neuronal contiol of molluscan heart. Am. Zool. 19:103−116.
  169. J., Koch U.T. (1987) Neural control of the circulatory system of Aplysia. Experientia 43: 972−980.
  170. Koester J., Mayeri, E., Liebeswar, G., Kandel, E.R. (1974) Neural contiol of circulation in Aplysia. II. lnterneurons. J. Neurophysiol. 37:476−496.
  171. , J. (1989) Chemically and electrically coupled interneurons mediate respiratory pumping in Aplysia. J. Neurophysiol. 62: 1113- 1126.
  172. M.P., Davis W.J. (1980) Neural mechanism underlying behavioral choice in Pleurobranchaea. J Neurophysiol. 43:469−487.
  173. Krasne F.B., Lee S.C. (1988) Response-dedicated trigger neurons as control points for behavioral actions: selective inhibition of lateral giant command neurons during feeding in crayfish. J Neurosci 8:3703−3712.
  174. B.J., Divaris G.A. (1955) Contractile and pacemaker mechanisms of the heart of molluscs. Biol Rev 30:1−39.
  175. Kristan W B., Wittenberg G., Nusbaum M.P., Stern-Tomlinson W. (1988) Multifunctional interneurons in behavioral circuits of the medicinal leech. Experientia 44: 383−389.
  176. U., Kleschevnikov A.M., Voronin L.L. (1994) Long-term enhancement of synaptic transmission in the hippocampus after tetanization of single neurones by intracellular current pulses // Neurosci. Res. Commun. V. 14. P." 115−123.
  177. I. (1974) Feeding behavior in Aplysia: A simple system for the study of motivation. Behav Biol. 10:1−26.
  178. Kupfermann I., Carew T. J., Kandel, E. R. (1974). Local, reflex, and central commands controlling gill and siphon movements in Aplysia. Journal of Neurophysiology 37, 996−1019.
  179. I., Cohen J.L., Mandelbaum D.E., Schonberg M., Susswein A.J., Weiss K.R. (1979) Functional role of serotonergic neuromodulation in Aplysia. Fed Proc. 38(7):2095−102.
  180. I., Weiss K.R. (2001) Motor program selection in simple model systems. C’urr Opm Neurobiol. 11:673−677.
  181. Kupfermann I., Weiss, K.R. (1982). Activity of an identified serotonergic neuron in free moving Aplysia correlates with behavioral arousal. Brain Res. 241:334−337.
  182. Kurokavva, M., Kuwasawa, K. & Matsumura, S. (1999). Identification of an abdominal ganglion neuron antagonizing L7-driven gill contraction in Aplysia. Journal of Comparative Physiology A 185, 11−19.
  183. C.M. (1970) Structure and function of the buccal apparatus of Clione limacina (Phipps) with a review of feeding in gymnosomatous pteropods. J Exp Marine Biol Ecol 4:101−118.
  184. C.M., Gihner R.W. (1989) Pelagic Snails. The Biology of Holoplanktonic Gastropod Mollusks. Stanford, CA: Stanford Univ. Press, pp. 167−213.
  185. J.L., Edstrom J.P. (2004) Parallel processing in an identified neural circuit: the Aplysia californica gill-withdrawal response model system. Biol Rev Camb Philos Soc. 79(1): 1−59.
  186. Leonard, J. L., Edstrom, J. & Lukowiak, K. (1989). A reexamination of the ' gill-withdrawal reflex ' in Aplysia californica. Behavioral Neuroscience. 103, 585−604.
  187. Leonard, J. L., Martinez-Padron, M., Edstrom, J. P. & Lukowiak, K. (1991). Does altering gill motor neuron activity alter gill behavior in Aplysia? In Molluscan Neurobiology (eds. K. S. Kits,
  188. M., Achituv Y., Susswein A.J. (1989) Relationship between respiratory pumping and oxygen consumption in Aplysia depilans and Aplysia fasciata. J. Exp. Biol. 141:389−405
  189. Lewis, J., and Kristan, W., Jr. (1998). A neuronal network for computing population vectors in the leech. Nature391, 76−79.
  190. G., Goldman J.E., Koester J., Mayeri E. (1975) Neural control of circulation in Aplysia. III. Neurotransmitters. JNeurophysiol 38:767−779.
  191. Ligman S.H., Brownell, P. H. (1985) Differential hormonal action of the bag cell neurons on the arterial system of Aplysia. J. Comp. Physiol. 157:31−37.
  192. Lloyd P.E., Kupfermann I., Weiss, K.R. (1988) Central peptidergic neurons regulate gut motility in Aplysia. J Neurophysiol. 59(5): 1613−1626.
  193. P.E., Willows A.O. (1988) Multiple transmitter neurons in Tritonia. II. Control of gut motility. J Neurobiol. 19(l):55−67.
  194. Lockery S.R., Sejnowski «T.J. (1992) Distributed processing of sensory information in the leech. III. A dynamical network model of the local reflex. J Neurosci. 12: 3877−3895.
  195. Lockery, S., and Kristan, W., Jr. (1990a).Distributed processing of sensory information in the leech. I. Input-output relations of the local bending reflex. J.Neurosci. 10, 1811−1815.
  196. Lockery, S., and Kristan, W., Jr. (1990b). Distributed processing of sensory information in the leech. II. Identification of interneurons contributing to the local bending reflex. J. Neurosci. 10, 1816−1829.
  197. Lockeiy, S., and Sejnowski, T. (1992). Distributed processing of sensory information in the leech. III. A dynamical neural network model of the local bending reflex. J. Neurosci. 12, 3877−3895.
  198. Lukowiak K, Jacklet JW. (1972) Habituation and dishabituation: interactions between peripheral and central nervous systems in Aplysia. Science. Dec 22- 178(67): 1306−8.
  199. Mackey SL, Kandel ER, Hawkins RD. (1989)'Identified serotonergic neurons LCB1 and RCB1 in the ceiebral ganglia of Aplysia produce presynaptic facilitation of siphon sensory neurons. J Neurosci. Dec-9(12):4227−35
  200. Mackie G.O., Singla C.L., Thiriot-Quievreux C. (1976) Nervous control of ciliary activity in gastropod larvae. Biol Bull. 151(1): 182−199.*
  201. A., Bravarenko N., Balaban P. (1997) Dependence of synaptic facilitation postsynaptically induced in snail neurons on season and serotonin level//Neuroreport. V. 8. < 5. P. 1179−1182.
  202. A.Y., Balaban P.M. (2002) Identification of mechanoafferent neurons in terrestrial snail: response properties and synaptic connections // J. Neurophysiol. V. 87. < 5. P. 2364−2371.
  203. Marder, E., and Calabrese, R.L. (1996). Principles of rhythmic motor pattern generation. Physiol. Rev. 76, 687−717.
  204. Martinez-Rubio C., Serrano G.E., Miller M.W. (2009) Localization of biogenic amines in the foregut of Aplysia californica: catecholaminergic and serotonergic innervation. J Comp Neurol. 514(4):329−342.
  205. Maximov V. V. and Byzov A. L. (1996). „Horizontal cell dynamics: what are the main factors?“ Vision Res., 36, 4077−4087
  206. V.V., Byzov A.L. (1996) Horizontal cell dynamics: what are the main factors? Vision Res. V. 36. P.4077—4087.
  207. Mayeri E., Brownell P., and Branton, W.D., (1979a) Multiple, prolonged actions of neuroendocrine bag cells on neurons in Aplysia. II. Effects on beating pacemaker and silent neurons. J. Neurophysiol. 42:11 851 197.
  208. Mayeri E., Brownell, P., Branton, W. D., Simon, S. B. (1979b) Multiple, prolonged actions of neuroendocrine bag cells on neurons in Aplysia. I. Effects on bursting pacemaker neurons. J. Neurophysiol. 42:1165−1184.
  209. E., Koester J., Kupfermann I., Liebeswar G., Kandel E.R. (1974) Neural control of circulation in Aplysia. I. Motoneurons. J Neurophysiol. 37:458−475.
  210. Mayeri E., Rothman B.S., Brownell P.H., Branton W.D., Padgett, L. (1985). Nonsynaptic characteristics of neurotransmission mediated by egg-laying hormone-in the abdominal ganglion of Aplysia. J. Neurosci. 5:2060−2077.
  211. McClellan A.D. (1982). Movements and motor patterns of the buccal mass of Pleurobranchaea during feeding, regurgitation and rejection. J. Exp. Biol. 98:195−211.
  212. McCrohan C. R. (1984) Initiation of feeding motor output by an identified interneurone in the snail Lymnaea stagnalis. J. Exp. Biol. 113:351−366. .
  213. McCrohan C.R., Benjamin P.R. (1980a) Patterns of activity and axonal projections of the cerebral giant cells of the snail, Lymnaea stagnalis. J. exp. Biol. 85:149−168.
  214. McCrohan C.R., Benjamin P.R. (1980b) Synaptic relationships of the cerebral giant cells with motoneurones in the feeding system of Lymnaea stagnalis. J. Exp. Biol. 85:169−186.
  215. McCrohan C.R., Kyriakides M.A. (1989) Cerebral interneurones controlling feeding motor output in the snail Lymnaea stagnalis. J Exp Biol. 147:361−374.
  216. McDearmid J.R., Brezina V., Weiss K.R., AMRP peptides modulate a novel K+ current in pleural sensory neurons of Aplysia (2002), J. Neurophysiol. 88 323- 332.
  217. P., Simmers J., Moulins M. (1994) Dynamic construction of a neural network from multiple pattern generators in the lobster stomatogastric nervous system. J Neurosci. 14:630−644.
  218. Michelson H.B., Wong R.K.S. (1991) Excitatory synaptic responses mediated by GABAa receptors in the hippocampus. Science. 253:1420−1423.
  219. P.T., Jing J., Vilim F.S., Weiss K.R. (2002) Interneuronal and peptidergic control of motor pattern switching in Aplysia. J Neurophysiol. 87:49−61.
  220. D.W., Chiel H.J. (1993a) In vivo buccal nerve activity that distinguishes ingestion from rejection can be used to predict behavioral transitions in Aplysia. J. Comp. Physiol. A 172:17−32.
  221. D.W., Chiel H.J. (1993b) The timing of activity in motor neurons that produce radula movements distinguishes ingestion from rejection in Aplysia. J. Comp. Physiol A 173:519−536.
  222. T., Narusuye K., Arai H. (1999) Synaptic modulation contributes to firing pattern generation in jaw motor neurons during rejection of seaweed in Aplysia kurodai. J. Neurophysiol. 82:2579−2589.
  223. T., Takata M. (1988) Food-induced firing patterns in motoneurons producing jaw movements in Aplysia kurodai. J Comp Physiol A. 162:729−738
  224. T., Weiss K.R., Kupfermann I. (1993) Effects of cerebral neuron C-PR on body muscles associated with a food-induced arousal state in Aplysia. J. Neurophysiol. 70:1231−1243.
  225. T., Weiss K.R., Kupfermann I. (1994) Body postural muscles active during food arousal in Aplysia are modulated by diverse neurons that receive monosynaptic excitation from the neurons C-PR. J. Neurophysiol. 72:314−325.
  226. R., Baxter D.A., Byrne J.H. (2002) Correlation between activity in neuron B52 and two features of fictive feeding in Aplysia. Neurosci Lett. 328:85−88.
  227. Nevian T., Sakmann B. Single spine Ca2+ signals evoked by coincident EPSPs and backpropagating action potentials in spiny stellate cells of layer 4 in the juvenile rat somatosensory barrel cortex. (2004) J Neurosci. 24(7): 1689−1899.
  228. T.P. (1993) Cerebral neurons underlying prey capture movements in, the pteropod mollusc, Clione limacina. II. Afterdischarges. J Comp Physiol A. 172(2):171−181.
  229. T.P. (1995) Prey capture phase of feeding behavior in the pteropod mollusk, Clione limacina: neuronal mechanisms. J Comp Physiol. 177:41−53.
  230. T.P. (1999) GABAergic excitatory synapses and electrical coupling sustain prolonged discharges in the prey capture neural network of Clione limacina. J Neurosci. 19(5):1863−1875.
  231. T.P., Satterlie R.A. (1993) Cerebral neurons underlying prey capture movements in the pteropod mollusc, Clione limacina. I. Physiology, morphology. J Comp Physiol A. 172(2): 153−169.
  232. T.P., Satterlie R.A. (1994) Small cardioactive peptide B increases the responsiveness of the neural system underlyingprey capture reactions in the pteropod mollusc, Clione limacina. J Exp Zool. 270:136−147.
  233. T.P., Satterlie R.A. (1996) Whole body withdrawal circuit and its involvement in the behavioral hierarchy of the mollusk Clione limacina. J Neurophysiol. 75:529−537.
  234. T.P., Satterlie RA. (1997) Distribution of myomodulin-like and buccalin-like immunoreactivities in the central nervous system and peripheral tissues of the mollusc, Clione limacina. J Comp Neurol. 381(l):41−52.
  235. Oku Y., Tanaka I., Ezure K. (1994) Activity of bulbar respiratory neurons during Active coughing and swallowing in the decerebrate cat .J Physiol (Lond). 480:309−324.
  236. R. (1963) Food recognition and predation on opisthobranchs by Navanax inermis. Veliger 6:1−8.
  237. Panchin Y.V., Popova L.B., Deliagina T.G., Orlovsky G.N., Arshavsky Y.I. J (1995) Control of locomotion in marine mollusk Clione limacina. VIII. Cerebropedal neurons. Neurophysiol. 73(5): 1912−1923.
  238. P. (1888) Report on the Pteropoda collected by H.M.S. Challenger during the years 1873−76. Ill Anatomy. Scient. Rep. „Challenger“, Zoology 23:1−97.
  239. V.W. (1976) Ultrastructure of the terminals of an identified 5-hydroxytryptamine-containing neurone marked by intracellular injection of radioactive 5-hydroxytryptamine. J Neurocytol. 5(1):43−61.
  240. V.W., Berry M.S., Osborne N.N. (1982) The serotonergic cerebral cells in gastropods. In N. N. Osborne (ed.), Biology of serotonergic transmission. Wiley, New York, pp 457−513.
  241. V.W., Cottrell G.A. (1974) Anatomy of an identified serotonin neurone studied by means of injection of tritiated transmitter. Nature, Lond. 350:655−658:
  242. Peretz B, Jacklet JW, Lukowiak K. (1976) Habituation of reflexes in Aplysia: contribution of the peripheral and central nervous systems. Science. Jan 30−191(4225):396−9.
  243. , A. J. (1979) Central and peripheral control of siphon withdrawal reflex in Aplysia califomica. J. Neurophysiol. 42: 510−529.
  244. R., Weiss K.R. (1996) A cerebral central pattern generator in Aplysia and its connections with buccal feeding circuitry. J. Neurosci. 16:7030−7045:
  245. R., Weiss KR. (1998) Compartmentalization of information processing in an Aplysia feeding circuit interneuron through membrane properties and synaptic interactions. J Neurosci. 18:3977−3989.
  246. Perry S.J., Straub V.A., Kemenes G., SantamaN., Worster B.M., Burke J.F., Benjamin P. R: (1998) Neural modulation of gut motility by myomodulin peptides and acetylcholine in the snail Lymnaea. J Neurophysiol 79(5):2460−2474.
  247. M., Straub V., Teyke T. (1996) Consequences of foodattraction conditioning in Helix: a behavioral and electrophysiological study. J. Comp. Physiol. A 178:317−327.
  248. M., Altrup U. (1984) Motor organization in phaiynx of Helixpomatia. J. Neurophysiol. 52:389−409.
  249. Pfeiffer-Linn C., Glantz R.M. (1989) Acetylcholine and GABA mediate opposing actions on neuronal chloride channels in crayfish. Science. 245:1249−1251.
  250. Pinsker H., Kupfermann I., Castellucci V., and Kandet, E., (1970) Habituation and dishabituation of the gill-withdrawal reflex in Aptysia. Science. 167:1740−1742.
  251. PIummer M.R., Kirk M.D. (1990) Premotor neurons B51 and B52 in the buccal ganglia of Aplysia califomica: Synaptic connections, effects on ongoing motor lhythms, and peptide modulation. J Neurophysiol. 63:539−558.
  252. I.R., Willows A.O. (1999) Sources of magnetic sensory input to identified neurons active during crawling in the marine mollusc Tritonia diomedea. J Exp Biol. 202(21):3029−3036.
  253. Prescott SA, Gill N, Chase R. (1997) Neural circuit mediating tentacle withdrawal in Helix aspersa, with specific reference to the competence of the motor neuron C3. J Neurophysiol. Dec-78(6):2951 -65.
  254. J.M. (1998) Reconfiguration of the respiratory network at the onset of locust flight J Neurophysiol. 80:3137−3147.
  255. Richmond J.E., Murphy A.D., Lukowiak K., Bulloch A.G.M. (1993) GABA regulates the buccal motor output of Helisoma by two pharmacologically distinct actions. J Comp Physiol A. 174:593−600.
  256. R.M., Benjamin P.R. (1979) The relationship of the central motor pattern to the feeding cycle of Lymnaea stagnalis. J. Exp. Biol. 80:137−163.
  257. R.M., Benjamin P.R. (1981a). Interneuronal control of feeding in the pond snail Lymnaea stagnalis I Initiation of feeding cycles by a single buccal interneurone. J. Exp. Biol. 92:187−201.
  258. R.M., Benjamin P.R. (1981b). Interneuronal control of feeding in the pond snail Lymnaea stagnalis II. The interneuronal mechanism generating feeding cycles. J. Exp. Biol. 92:203−228.
  259. S.C., Miller M.W., Evans C.G., Cropper E.C., Kupfermann I. (2000) Diverse synaptic connections between peptidergic radula mechanoafferent neurons and neurons in the feeding system of Aplysia J Neurophysiol. 83:1605−1620.
  260. S.C., Teyke T., Miller M.W., Weiss K.R., Kupfermann I. (1991) Identification and characterization of cerebral-to-buccal interneurons implicated in the control of motor programs associated with feeding in Aplysia. JNeurosci 11:3630−3655.
  261. S.C., Weiss K.R., Goldstein R.S., Kupfermann I. (1989). The role of a modulatory neuron in feeding and satiation in Aplysia effects of lesioning of the serotonergic metacerebral cells. J. Neurosci. 9:15 621 578.
  262. Ruppert E.E., Fox R.S., Barnes, R.D. (2004). Invertebrate Zoology (7 ed.). Brooks / Cole.
  263. R., Miller N., Hurwitz I., Susswein A.J. (2009) Autaptic excitation elicits persistent activity and a plateau potential in a neuron of known behavioral function. Curr Biol. 19(6):479−484
  264. R.A., Norekian T.P. (1995) Serotonergic modulation of swimming speed in the pteropod mollusc Clione limacina. III. Cerebral neurons. J Exp Biol. 198(Pt 4):917−930.
  265. R.A., Norekian T.P., Jordan S., Kazilek C.J. (1995) Serotonin modulation of swimming speed in the pteropod mollusc, Clione limacina. I. Serotonin immunoreactivity in the central nervous system and wings .J Exp Biol. 198:895−904.
  266. Satterlie RA, Norekian TP, Robertson KJ. (1997) Startle phase of escape swimming is controlled by pedal motoneurons in the pteropod mollusk Clione limacina. J Neurophysiol. Jan-77(l):272−80.
  267. RA. (1985) Reciprocal inhibition and postinhibitory rebound produce reverberation in a locomotor pattern generator. Science. Jul 26−229(4711):402−4.
  268. RA. (1993) Neuromuscular organization in the swimming system of the pteropod mollusc Clione limacina. J Exp Biol. Aug- 181:119−40
  269. Satterlie, R. A., Labarbera, M. And Spencer, A. N. (1985). Swimming in the pteropod mollusk Clione limacina. I. Behaviour and morphology. J. exp. Biol. 116, 189−204.
  270. D., Gelperin A. (1974) Comparative aspects of the morphology and physiology of a single identifiable neuron in Helix aspersa, Limax maximus and Ariolimax californica. Malacolog. Rev. 7:51−52.
  271. Sigvardt K.A., Rothman B. S., Brown R.D., Mayeri, E. (1986) The bag cells of Aplysia has a multitransmitter system, Identification of alpha-bag cell peptide as a second neurotransmitter. J. Neuronal 6:803−813.
  272. Skelton M. E, Koester J. (1992) Morphology, innervation and neural control of the anterior arterial system of Aplysia. J. Comp. Physiol. 171(2):141−55.
  273. M., Alevizos A., Koester J. (1992) Control of the cardiovascular system of Aplysia by identified neurons. Experientia. 48(9):809−17.
  274. N., Jaffe D., Johnston D. (1994) Dendritic attenuation of synaptic potentials and currents: the role of passive membrane properties//Trends Neurosci. V. 17. P. 161−166.
  275. N., Johnston D. (1992) Perforated patch-clamp analysis of the passive membrane properties of three classes of hippocampal neurons // J. Neurophysiol. V. 67. 3. P. 508−529.
  276. Stopfer M, Carew TJ. (1996) Heterosynaptic facilitation of tail sensory neuron synaptic transmission during habituation in tail-induced tail and siphon withdrawal reflexes of Aplysia. J Neurosci. Au» 15−16(16):4933−48.
  277. Susswein A.J., Achituv Y., Cappell M.S., Spray D. C., Bennett, M.V.L. (1984) Pharyngeal movements during feeding sequences in Navanax inermis: a cinematographic analysis. J. Comp. Physiol. A. 155:209 218.
  278. A.J., Byrne J.H. (1988) Identification and characterization of neurons initiating patterned neural activity in the buccal ganglia of Aplysia. JNeurosci. 8:2049−2061.
  279. N., Harrison D., Winlow W. (1988) Locomotion’in Lymnaea role of serotonergic motoneurons controlling the pedal cilia. Symp. Biol. Hung. 36:387−399.
  280. N.I., Winlow W. (1991) Coordination of locomotor and cardiorespiratory networks of Lymnaea stagnalis by a pair of identified interneurones. J Exp Biol. 158:37−62.
  281. G., Barbour B. (2007) Multiple climbing fibers signal to molecular layer interneurons exclusively via glutamate spillover. Nat Neurosci. 10(6): 735−742.
  282. K., Tazaki Y. (2000) Multiple motor patterns in the stomatogastric ganglion of the shrimp Penaeus japonicus. J Comp Physiol A. 186:105−118.
  283. Teyke T., Weiss K. R*., Kupfermann I. (1989) A subpopulation of cerebral B' cluster neurons of Aplysia californica is involved in defensive head withdrawal but not appetitive head movements J Exp. Biol. 147: 1−20.
  284. T., Weiss K. R., Kupfermann I. (1990) Appetitive feeding behavior of Aplysia: behavioral and neural analysis of directed head turning. J. Neurosci. 10:3922−3934.
  285. T., Weiss K.R., Kupfermann I. (1990a). An identified neuron (CPR) evokes neuronal responses reflecting food arousal in Aplysia. Science. 247:85−87.
  286. T., Weiss K.R., Kupfermann I. (1990b). Appetitive feeding behavior of Aplysia Behavioral and neural analysis of directed head turning. J. Neurosci 10:3922−3934.
  287. Teyke T., Xin Y., Weiss K.R., Kupfermann I. (1997) Ganglionic distribution of inputs and outputs of C-PR, a neuron involved in the generation of a food-induced arousal state in Aplysia. Invert Neurosci. 2(4): 235−244.
  288. T., Weiss K.R., Kupfermann I. (1990) An identified neuron'(CPR) evokes neuronal responses reflecting food arousal in Aplysia. Science. 247:85−87.
  289. Trueta C., Mendez B., De-Miguel F.F. (2003) Somatic exocytosis of serotonin mediated by L-type calcium channels in cultured leech neurones. J Physiol (Lond) 547 :405−416.
  290. Trudeau, L.-E. And Castellucci, V. F. (1993) Functional uncoupling of inhibitory interneurons plays an important role in short-term sensitization of Aplysia gill and siphon withdrawal reflex. J. Neurosci. 13:2126−2135.
  291. M., Voronin L.L., Chistiakova M., Singer W. (1994) Induction of LTP and LTD in visual cortex neurones by intracellular tetanization // Neuroreport. V. 5. P." 2069−2072.
  292. M., Voronin L.L., Chistiakova M., Singer W. (1997) Relations between long-term synaptic modifications and paired-pulse interactions in the rat neocortex // Eur. J.Neurosci. V. 9. P. 751−1760.
  293. Voronin L. L., Volgushev M., Sokolov M., et al. (1999). «Evidence for an ephaptic feedback in cortical synapses: postsynaptic liyperpolarization alters the number of response failures and quantal content,» Neurosci., 92, No. 2, 399−405
  294. Voronin L.L. On the quantal analysis of hippocampal long-term potentiation and related phenomena of synaptic plasticity (1993) //Neuroscience. V. 56. P. 275−304.
  295. Voronin L.L., Byzov A., Kleshevnikov A. et al. Neurophysiological analysis of long-term potentiation in mammalian brain (1995)// Behav. Brain Res. V. 66. P. 45−52.
  296. Voronin L.L., Volgushev M., Sokolov M. et al. (1999) Evidence for an ephaptic feedback in cortical synapses: postsynaptic hyperpolarization alters the number of response failures and quantal content // Neuroscience. V. 92. 2. P. 399−405.
  297. N. (1885) Die Wirbellosen des Weissen Meeres: Zoologische Forschungen an der Kuste des Solowetzkischen Meerbusens in den Sommermonaten der Jahre. Leipzig, Germany: Verlag Von Wilhelm Engelmann.
  298. E. T., Erickson M. T. (1986) Directional control and the functional organization of defensive responses in Aplysia. J Comp. Physiol. A 159:339−351.
  299. Walters ET, Byrne JH, Carew TJ, Kandel ER. 1983 Mechanoafferent neurons innervating tail of Aplysia. I. Response properties and synaptic connections. J Neurophysiol. Dec-50(6): 1522−42.
  300. Walters ET, Erickson MT. (1986) Directional control and the functional organization of defensive responses in Aplysia. J Comp Physiol A. Sep-159(3):339−51.
  301. D., Chase R. (2005) Modulation of heart activity during withdrawal reflexes in the snail Helix aspersa. J Comp Physiol A 191 (4):355−62.
  302. J.M., Meyrand P., Marder E. (1991) Neurons that form multiple pattern generators: identification and multiple activity patterns of gastric/pyloric neurons in the crab stomatogastric system. J Neurophysiol. 65:111−122.
  303. Weiss K.R., Cohen J. C., Kupfennann" I. (1978) Modulatory control of buccal musculature by a serotonergic neuron (metacerebral cell) in Aplysia. J. Neurophysiol. 41:181−203.
  304. Weiss K R., Cohen J.L., Kupfermann I. (1978) Modulatory control of buccal musculature by a serotonergic neuron (metacerebial cell) in Aplysia. J Neurophysiol. 41(1):181−203.
  305. K.R., Kupfermann I. (1976) Homology of the giant serotonergic neurons (metacerebral cells) in Aplysia and pulmonate molluscs. Biain Res. 117:33−49.
  306. Weiss K. R1., Mandelbaum D.E., Schonberg M., Kupfermann I. (1979) Modulation of buccal muscle contractility by serotonergic metacerebral cells in Aplysia: evidence for a role of cyclic adenosine monophosphate. J Neurophysiol. 42(3):791−803.
  307. A.O., Pavlova G.A., Phillips N.E. (1997) Modulation of ciliary beat frequency by neuropeptides from identified molluscan neurons. J Exp Biol. 200(10): 1433−1439.
  308. Willows A.O.D. (1967) Behavioral acts elicited by stimulation of single, identifiable brain cells. Science. Aug 4−157(788):570−4.
  309. Willows A.O.D., Pavlova G.A., Phillips N.E. (1997) Modulation of ciliary beat frequency by neuropeptides from identified molluscan neurons. J Exp Biol. 200:1433−1439.
  310. Wilson R. I. and Nicoll R. A. (2002) «Endocannabinoid signaling in the brain,» Science, 296, 678−682
  311. Wilson R.I., Nicoll R.A. Endocannabinoid signaling in the brain (2002)// Science. V. 296. P. 678−682.
  312. D.E., Stein W., Nusbaum M.P. (2000) Projection neurons with shared cotransmitters elicit different motor patterns from the same neural circuit. JNeurosci. 20:8943−8953.
  313. Wright, W. G. And Carew, T. J. (1995) A single identified interneuron gates tail-shock induced inhibition" in the siphon withdrawal reflex of Aplysia. J. Neurosci. 15: 790−797.
  314. Wu J., Jing J., Diaz-Rios M., Miller M.W., Kupfermann I., Weiss K.R. (2003) Identification of a GABA-containing cerebral-buccal interneuron-11 in Aplysia californica. Neurosci. Lett. 341:5−8.
  315. Wu J.Y., Cohen L.B., Falk C.X. (1994) Neuronal activity during different behaviors in Aplysia: a distributed organization? Science. 263:820−823.
  316. Wu JY, Cohen LB, Falk CX. (1994a) Neuronal activity during different behaviors in Aplysia: a distributed organization? Science. Feb 11−263(5148):820−3.
  317. Wu JY, Tsau Y, Hopp HP, Cohen LB, Tang AC, Falk CX. (1994b) Consistency in nervous systems: trial-to-trial and animal-to-animal variations in the responses to repeated applications of a sensory stimulus in Aplysia. JNeurosci. Mar-14(3 Pt 1): 1366−84.
  318. Xin Y, Weiss KR, Kupfermann I. (1995) Distribution in the central nervous system of Aplysia of afferent fibers arising from cell bodies located in the periphery. J Comp Neurol. Sep 4−359(4):627−43
  319. Xin Y., Hurwitz I., Perrins R'., Evans C.G., Alexeeva V., Weiss K.R., Kupfennann I. (1999) Actions of a pair of identified cerebral-buccal interneurons (CBI-8/9) in Aplysia that contain the peptide myomodulin. J Neurophysiol. 81:507−520.
  320. Xin Y., Weiss K.R., Kupfermann I. (1996) An identified interneuron contributes to aspects of six different behaviors in Aplysia. J Neurosci. 16:5266−5279.
  321. Xu Y., Cleary L.J., Byrne J.H., (1994) Identification and characterization of pleural neurons that inhibit tail sensory neurons and motor neurons in Aplysia: correlation with FMRFamide immunoreactivity, J. Neurosci. 14 3565−3577.
  322. Yeoman M.S., Kemenes G., Benjamin P.R., Elliott C.J.J (1994a) Modulatory role for the serotonergic cerebral giant cells in the feeding system of the snail, Lymnaea. II. Photoinactivation. Neurophysiol. 72(3): 1372−1382.
  323. Zecevic D, Wu JY, Cohen LB, London JA, Hopp HP, Falk CX. (1989) Hundreds of neurons in the Aplysia abdominal ganglion are active during the gill-withdrawal reflex. J Neurosci. C) ct-9(10):3681−9
  324. Zhuravlev V., Bychkov R., Kodirov S., Diakov A., Safonova T (1997) Caidioexcitatory neurons in the snail Achatina fulica. J. Brain Res. 38:279−290.
  325. V., Safonova T., Bychkov R. (1991) Neuronal control and coordination of the heartbeat in Helix pomatia. In: Sakharov, D., Winlow, W. Eds., Simpler Nervous Systems. Studies in Neuroscience, Manchester University Press, pp. 342−359.
  326. Zochowski M, Cohen LB, Fuhrmann G, Kleinfeld D. (2000) Distributed and partially separate pools of neurons are correlated with two different components of the gill-withdrawal reflex in Aplysia. J Neurosci. Nov 15−20(22):8485−92.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!