Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Эколого-биохимические закономерности биологической очистки воды активным илом и иммобилизованными микроорганизмами

Диссертация: Эколого-биохимические закономерности биологической очистки воды активным илом и иммобилизованными микроорганизмами
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Основные положения диссертации доложены на 2-ой международной научной конференции «Экология и здоровье человека» (Самара, 1995), на конференции биохимиков Урала, Поволжья и Западной Сибири (Челябинск, 1999), на международной научно-практической конференции «Экология и жизнь» (Пенза, 1999), на международной научно-практической конференции «Хозяйственно-питьевая и сточные воды: проблемы очистки… Читать ещё >

Содержание

  • Часть 1. Обзор литературы
  • Глава 1. Оценка функционального состояния модельных и природных 12 гидроэкосистем
    • 1. 1. Показатели разнообразия и стабильности гидроэкосистем
    • 1. 2. Биотестирование токсичности, тест-объекты и биологические 15 показатели
    • 1. 3. Методы оценки функционального состояния активных илов 22 и иммобилизованных временных сообществ микроорганизмов в процессе очистки сточных вод
    • 1. 4. Перспективы энзимоиндикации в системе биологического контроля
    • 1. 5. Иммобилизация микроорганизмов — деструкторов на синтети- 30 ческих носителях. Новые химико-экологические процессы
    • 1. 6. Технологические параметры и эффективность работы сооружений 34 биологической очистки сточных вод иммобилизованными микроорганизмами
  • Часть 2. Собственные исследования
  • Глава 2. Материал и методы исследования
    • 2. 1. Дезинтеграция клеток активного ила и иммобилизованных микроорганизмов. Подготовка ферментных образцов
    • 2. 2. Электрофорез. Оборудование и реактивы
    • 2. 3. Методы выявления изомерных форм ферментов. Определение 43 общей активности ферментов и относительной активности изоферментов. Денситометрия
  • Глава 3. Технологический контроль процессов биологической очистки сточных вод по изменению активности изоферментов малатдегидрогеназы активных илов и иммобилизованных микроорганизмов

Глава 4. Структурные особенности и динамика активности изофер- 67 ментов L-глутаматдегидрогеназы активного ила и иммобилизованных микроорганизмов на действующих сооружениях биологической очистки сточных вод

Глава 5. Активность каталазы и ее изоферментов в процессе очистки 85 сточных вод активным илом и иммобилизованными микроорганизмами

Глава 6. Биомониторинг активных илов и иммобилизованных микроорганизмов. Функциональная взаимосвязь дегидроге-наз и каталазы микросообществ модельных гидроэкосистем. Обсуждение результатов

ВЫВОДЫ

Эколого-биохимические закономерности биологической очистки воды активным илом и иммобилизованными микроорганизмами (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

АКТУАЛЬНОСТЬ. Неуклонное увеличение использования водных ресурсов сопровождается возрастающим влиянием антропогенных факторов на режим водоемов и водные экосистемы. Прогнозы интенсивности водопо-требления показывают, что антропогенный пресс на гидроэкосистемы будет продолжаться и в отдаленной перспективе может привести к непредвиденным последствиям. Биологическая очистка городских и промышленных сточных вод практически во всех странах мира на 90% производится в аэро-тенках. Городские станции аэрации и сооружения биологической очистки сточных вод промышленных производств в середине прошлого столетия были единственной преградой глобального загрязнения внешних и внутренних водоемов планеты. Однако уже через 20—30 лет интенсивной эксплуатации аэротенков возникли серьезные проблемы, касающиеся утилизации избыточного активного ила. Огромные площади земли изъяты из оборота в связи с шламированием отработанного активного ила, который зачастую содержит недоокисленные адсорбированные соединения органического и неорганического характера с различной степенью токсичности. Проблема усугубляется проникновением недоокисленных соединений в верхние горизонты подземных вод и угрозой попадания в скважинные воды.

В настоящее время в лабораторных, опытно-промышленных и промышленных испытаниях показана возможность и перспективность биологической очистки городских и промышленных сточных вод иммобилизованной на синтетических волокнах микрофлорой в анаэробно-аэробных условиях [24, 76, 77, 125]. Разработанные методы внедряются в различных регионах России, в том числе и в Поволжье. Перспективность метода заключается в том, что снимается основная проблема биологической очистки в аэротен-кахотсутствие избыточного активного ила и исключение шламирования илов. Иммобилизованное на синтетических волокнах временное сообщество микроорганизмов в итоге представляет собой смешанную популяцию бактерий, простейших, грибов, коловраток и водорослей, образующих пищевую цепь. Во временном сообществе образуется несколько трофических уровней: первый представлен гетеротрофными бактериями, высокая окислительная способность которых обуславливает их ведущую роль в биодеградации загрязнителейна втором уровне находятся жгутиконосцы, ресничные инфузории и коловраткитретий уровень представлен сосущими инфузориями. Количество организмов каждого трофического уровня зависит от таких факторов, как состав поступающей сточной воды, температуры, рН, концентрации кислорода и др. В зависимости от технологических параметров образуется замкнутая модельная гидроэкосистема — биореактор.

Опыт эксплуатации биореакторов в ПО «Самаранефтеоргсинтез» показал, что эффективность их работы зависит от многочисленных факторов, из которых следует выделить кислородный режим. Большинство разработанных методов биологической очистки сточных вод иммобилизованным ценозом на синтетических носителях предполагает анаэробно-аэробные условия с преобладанием анаэробных процессов окисления загрязнителей. Эксплуатация биореакторов в названных условиях не привела к успеху, поскольку зачастую вода на выходе из биореактора по многим показателям не соответствовала состоянию очищенной для сброса в водоемы.

В настоящее время принято считать, что устойчивость природных и модельных гидроэкосистем обеспечивается видовым разнообразием входящих в них сообществ гидробионтов, особенно микроорганизмов [80]. Многолетние наблюдения за гидроэкосистемами показали, что в результате кратковременного мощного антропогенного воздействия, приводящего зачастую к метаболическому шоку, гидроэкосистемы в течение 24−48 часов по многим параметрам достигают исходного функционального состояния, при этом увеличения видового разнообразия не происходит. Эти данные приводили к мысли о том, что в экстремальных ситуациях устойчивость гидроэкосистем достигается каким-то иным путем, в частности, увеличением разнообразия эндои экзометаболитов и, как следствие, структурной реорганизацией ключевых олигомерных ферментов метаболизма. Первое предположение нашло экспериментальное подтверждение, рядом авторов показано существование прямой зависимости жизнеспособности морских и пресноводных сообществ от концентрации внеклеточных органических соединений [80, 99, 115, 119, 293]. Второе же предположение остается практически неизученным и открытым. Бесспорно, взаимодействие многочисленных факторов при формировании гидроэкосистем связано с огромным числом сложных и разнообразных биохимических метаболических реакций. На каком-то этапе дальнейшее развитие биохимической экологии будет лимитировано уровнем знаний данного вопроса.

Применяемые в настоящее время традиционные методы определения и контроля функционального состояния модельных и природных гидроэкосистем не дают исчерпывающей информации о молекулярных и субмолекулярных механизмах стабилизации последних. В связи с этим особое значение приобретают исследования, направленные на изучение состава олигомерных форм ключевых ферментов метаболизма в сообществах гидроэкосистем, их роли в реанимации при техногенных, особенно экстремальных воздействиях на водные экосистемы. До сих пор неизвестны механизмы выхода гидроэкосистем в относительно короткие промежутки времени из глубочайших стрессовых ситуаций, достигается ли при этом исходный функциональный статус или экосистемам наносится какой-то «биохимический ущерб» .

В то же время, для организации непрерывного биомониторинга природных и модельных гидроэкосистем, в частности, процессов биологической очистки воды в аэротенках и биореакторах, требуются надежные, информативные способы оценки функционального состояния водных сообществ, характеризующие процессы метаболизма и окислительную мощность сооружений биологической очистки в целом.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ. Исследовать эколого-биохимичес кие страте^ гии ответных реакций микроорганизмов активного ила и иммобилизованной микрофлоры на воздействие техногенных загрязнений в различных технологических режимах и* роль в этих процессах молекулярных форм оксидоре-дуктаз.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ.

1. Изучить структурно-функциональные особенности малатдегидрогена-зы (МДГ, К.Ф. 1.1.1.37) активного ила и иммобилизованной микрофлоры при различных режимах биологической очистки коммунально-бытовых и техногенных сточных вод.

2. Изучить структурно-функциональные особенности глутаматдегидроге-назы (ГДГ, К.Ф. 1.4.1.2) активного ила и иммобилизованной микрофлоры при различных режимах биологической очистки коммунально-бытовых и техногенных сточных вод.

3. Изучить структурно-функциональные особенности каталазы (К.Ф. 1.11.1.6) активного ила и иммобилизованной микрофлоры при различных режимах биологической очистки коммунально-бытовых и техногенных сточных вод.

4. Разработать способы биомониторинга очистки сточных вод в аэротен-ках и биореакторах по динамике активности и составу изомерных форм исследуемых ферментов, характеризующих функциональное состояние активных илов и иммобилизованных временных сообществ микроорганизмов.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

1. При воздействии загрязнителей различного состава одним из факторов стабилизации временных сообществ активного ила и иммобилизованной микрофлоры в фазе лог-роста и стационарной фазе развития является увеличение количества олигомерных ферментов окислительного метаболизма. Обнаружение каталитически активных протомеров и субъединиц оксидоредуктаз в водной среде обусловлены нарастанием разнообразия экзометаболитов как в моделях активного ила, так и на действующих сооружениях биологической очистки и направлены на усиление гомеостаза и стабилизацию временных сообществ микроорганизмов.

2. Преимущественная роль в механизмах адаптации, реанимации и стабилизации модельных временных сообществ микроорганизмов, функционирующих в нормальном технологическом режиме биологической очистки и в экстремальных условиях, принадлежит низкомолекулярным формам ключевых ферментов метаболизма гидробионтов-каталитически активным протомерам и субъединицам. Следствием залповых сбросов высокотоксичных промышленных стоков является блокирование мембранных систем энергообеспечения клеток активного ила и иммобилизованной микрофлоры. В таких условиях срабатывают механизмы компенсаторной биохимической адаптации, заключающиеся в мобилизации ферментов окислительного метаболизма и экспресс биосинтезе активных субъединиц молекулярных форм ферментов, выполняющих роль «реаниматоров» .

3. Активность олигомерных форм исследуемых ферментов в большей мере подвержена ингибированию при нарушениях технологического режима и действии токсичных сточных вод и их компонентов.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА. Впервые получены сведения о структурной организации малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы активных илов и иммобилизованных на синтетических волокнах временных сообществ микроорганизмов, используемых для биологической очистки промышленных и коммунально-бытовых стоков.

Установлена зависимость набора олигомеров и пртомеров исследуемых ферментов от режима процессов биологической очистки.

Определено, что структурная организация и динамика активности изоэнзимов исследуемых ферментов в процессе очистки бытовых и промышленных сточных вод является результирующим окислительно-восстановительных реакций, характеризующих потребность экосистемы в субстратах.

Впервые установлено увеличение числа изоферментов и молекулярных форм исследуемых ферментов в условиях лимитирования процессов биологической очистки кислородом.

Впервые показана перспективность метода диск-электрофореза в гидробиологии, позволившего разработать систему экспрессных, высокоинформативных, интегральных способов биомониторинга модельных гйдроэкоси-стем по динамике изменения активности и набора изоферментов и каталитически активных протомеров некоторых ключевых ферментов окислительного метаболизма.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ. Полученные результаты позволяют пересмотреть подходы к практической реализации биологической очистки сточных вод промышленных производств активным илом и иммобилизованными временными сообществами микроорганизмов. Информация о структурной организации и динамике активности изоферментов исследуемых оксидоредуктаз дает возможность оперативно управлять процессами биологической очистки в аэротенках и биореакторах на всех стадиях.

Полученные данные позволяют провести коррекцию технологии очистки воды в биореакторах, функционирующих в режиме анаэробно-аэробного метаболизма. Коррекция технологии очистки, предполагающая преобладание аэробных процессов метаболизма над анаэробными приводит к стабилизации гидроэкосистемы и, в целом, к значительному улучшению показателей работы биореакторов.

Разработаны и предлагаются к практическому использованию способы биомониторинга модельных гидроэкосистем по изменению активности и набора изоферментов малатдегидрогеназы и глутаматдегидрогеназы иммобилизованных микроорганизмов. Способы отличаются экспрессностью (в модифицированном варианте 2 часа), точностью и воспроизводимостью, могут быть использованы в практике охраны окружающей среды службами биомониторинга.

Материалы диссертационного исследования используются в учебном процессе при проведении практических занятий со студентами и клиническими интернами на кафедре общей гигиены, кафедре клинической фармакологии и профессиональной патологии, кафедре химии фармацевтического факультета в курсе токсикологической химии, кафедре общей, бионеорганической и биоорганической химии Самарского государственного медицинского университетана кафедре водоснабжения и канализации Самарской строительной академии.

Основные положения диссертации доложены на 2-ой международной научной конференции «Экология и здоровье человека» (Самара, 1995), на конференции биохимиков Урала, Поволжья и Западной Сибири (Челябинск, 1999), на международной научно-практической конференции «Экология и жизнь» (Пенза, 1999), на международной научно-практической конференции «Хозяйственно-питьевая и сточные воды: проблемы очистки и использования» (Пенза 2000), на VII Всероссийском конгрессе «Экология и здоровье человека (Самара, 2001), на Всероссийской конференции «Компенсаторно-приспособительные процессы, фундаментальные и клинические аспекты» (Сибирское отделение РАМН, Новосибирск, 2002).

По материалам диссертации опубликовано 8 работ.

выводы.

1. Для модельных временных сообществ активного ила и иммобилизованных микроорганизмов очистных сооружений показано наличие изомерных форм малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы.

2. Изменение набора и активности изомерных форм ферментов сообществ техногенных гидроэкосистем является одним из способов регуляции и коррекции метаболизма.

3. В соответствии со стадиями развития модельных сообществ активного ила установлены изменения в соотношениях между набором изомерных форм и активностью малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы.

4. Индукция, синтез и выход в водную среду изоферментов каталазы активного ила в моделях и на действующих сооружениях биологической очистки обусловлены нарастанием концентрации перекисных соединений и направлены на достижение гомеостаза и стабилизацию временных сообществ активного ила.

5. Лимитирование временных сообществ микроорганизмов кислородом приводит к изменению активности изомерных форм исследуемых ферментов. В относительно анаэробных условиях наблюдается: увеличение активности ГДГ-5 и уменьшение таковой у МДГ-3 и К-2. Аэробные условия характеризуются увеличением активности МДГ-3 и К-2, активность ГДГ-5 уменьшается.

6. При залповых сбросах сточных вод нефтехимических производств и их компонентов мембраносвязанные формы ферментов активного ила подвержены ингибированию в большей мере, чем цитоплазматические.

7. Реанимация и аэробная стабилизация временных сообществ активного ила, подвергшихся действию высокотоксичных сточных вод и их компонентов, сопровождается выявлением множества каталитически активных форм малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы .

8. Впервые показана перспективность метода диск-электрофореза в гидробиологии, позволяющего разработать систему экспрессных, высокоинформативных, интегральных способов биомониторинга модельных гидроэкосистем по динамике изменения активности и количества изомерных форм некоторых ключевых ферментов окислительного метаболизма.

Показать весь текст

Список литературы

  1. С.А. и др. Каталазная активность штамма Pseudomonas putida, окисляющего мышьяк // Микробиология.-1982.- 51, N 1.- С. 34−37.
  2. И.А. и др. АТФазная активность как показатель функционального состояния активного ила// Вестник ЛГУ.- 1983.- N 9.- С. 121−124.
  3. А.И., Андреева Н. М., Владимирский С. С. Определение активности некоторых ферментов в морской взвеси и осадках // Методы исследования органического вещества в океане.- М., 1980. С. 234−243.
  4. Ю.П., Маркова Е. В., Грановский Ю. В. Планирование эксперимента при поиске оптимальных условий.- М.:Наука, 1976.- 297 с.
  5. А.Ю., Кощеенко К. А. Ковалентное связывание клеток с активированным силикагелем // Прикл. биохимия и микробиология.-1980.-Т.16, вып. 6.- С. 854−961.
  6. Г. П. Протозойный биоценоз очистных сооружений // Наземные и водные экосистемы.- Горький, 1988.- С. 112−121.
  7. И.А. Экспресс-метод оценки структуры и активности микробного ценоза в экосистеме очистных сооружений // Лимитирование и ингибирование роста микроорганизмов: Тез. докл. Всес. конф., Пущино, 12−14 дек. 1989 г.- Пущино: Б.и., 1989.-С. 125.
  8. М.Б. Частичная очистка дезаминирующих изоферментов аланинглутаматдегидрогеназы у дрожжей Candida quilliermonolii ВКМУ-42 // Биол. ж. Армении.- 1989.- 42, N 5.- С. 518.
  9. B.C. Ферментные методы анализа,— М.: Наука, 1969.- 740 с.
  10. А.В., Маркелова Н. Ю. Очистка загрязненных вод иммобилизованными на волокнистом носителе бделловибрионами // Химия и технология воды. 1997. — Т. 19. — № 2. — С. 203−206.
  11. А.Э., Стом Д. И., Казаринова Т. Ф. Способ биоиндикации токсичности сточных вод // А.с. 1 578 650 СССР,. МКИ G 01 N 33/18. Открытия. Изобретения.- 1990.-N26.
  12. А.В. Микроорганизмы в загрязненной среде.- Фрунзе: Илим, 1990.- 127 с.
  13. Н.Н., Суханова К. М. Саркодовые активного ила // Протозоология.- Л., 1983.- N 8.- С. 55−75.
  14. В.В., Гребенко А. И. Т-каталаза негемовая каталаза экстремально-термофильной бактерии Thermus thermophilus НВ 8 //Докл. АН СССР.- 1986.- 286, N 2.- С. 461−464.
  15. Н.М. Изменение биохимических характеристик гидроида Obelia loveni при биоиндикации активного хлора в морской воде // Всесоюз. школа по техническим средствам и методам исследований Мирового океана: Тез. докл.- М., 1991.- С. 144.
  16. Л.В. Развитие икринок морского карася в сточных водах городского коллектора // Актуальные вопросы экологии и охраны природы экосистемы Черноморского побережья: Сб. матер, научн. конфер., Кубанский гос. ун-т.- Краснодар, 1991. С. 138−141.18.
  17. Л.П. Комплексные критерии устойчивости водных экологических систем // Оценка и классификация качества поверхностных вод для водопользования: Тез. сообщ. Всес. конфер., Харьков, 1979.-Харьков: Б.и., 1979.- С. 7−11.
  18. М.Д., Данильченко О.П. Hydra attenuate, в качестве тест-объекта при оценке загрязненности сточных и природных вод // Методы биоиндикации и биотестирования природных вод.- Л., 1987.- N 1.- С. 71−76.
  19. Н.С., Данильченко О. П. Использование физиолого-биохимических показателей гидробиоитов. для определения степени токсичности компонентов сточных вод / / Проблемы охраны природы: Тез. докл конф., Байкальск, 1984, — С. 39−41.
  20. И.В. Биотическая функциональная нагрузка как тест в водной токсикологии // Проблемы водной токсикологии.- Петрозаводск, 1988.-С. 7−13.
  21. М.И., Дислер Е. Н., Кощеенко К. А. Иммобилизация культуры Pseudomonas putida, образующей 2-кето-Д-глюконовую кислоту // Биотех-нология.-1985.-№ 5.- С. 43−47.
  22. Э., Медьеши Г., Верецкеи Л. Электрофорез в разделении биологических макромолекул.- Мл Мир, 1982.- 448 с.
  23. П.И. Микробиология и биотехнология очистки воды: quo vadis? // Химия и технология воды.- 1989.-Т.11.- № 9.- С. 854−858.
  24. П.И. Перспективы использования электроудерживания для иммобилизации биологически активных частиц // Иммобилизованные клетки микроорганизмов. Пущино: Изд-во Науч. Центра биол. Исследований АН СССР, 1978.- С.80−84.
  25. П.И., Дмитренко Г. Н., Куликов Н. И. Очистка промышленных сточных вод прикрепленными микроорганизмами // Химия и технология воды.-1985.-Т.7.- № 1.- С. 64−68.
  26. Г. А., Шахова Т. В., Балаян А. Э. Биолюминесцентный метод экспрессной оценки токсичности фенолов в промышленных сточных водах // Анализ окружающей природной среды.- Горький, 1987.- С. 5561.
  27. Ф.Н., Радомская В. М. Транспорт восстановленных эквивалентов в миокарде при действии холестерина // Митохондрии. Аккумуляция энергии и регуляция ферментативных процессов.- М.: Наука, 1977.- С. 46−49.
  28. Л.И. Влияние физико-химических свойств микроорганизмов на эффективность их удаления из воды // Химия и технология воды.-1985.-Т.7.1. Л.-СЛЗ-78.
  29. Н.П., и др. Реакции трансдезаминирования у бактерий С/. sporogenes и С/, sticklandii // Микробиология.-1983.- 52, N 2.- С. 181−186.
  30. Э.Г. Использование функции сократительной вакуоли парамеций для биологического тестирования // Материалы по сравнительной физиологии и адаптации животных к абиотическим факторам внешней среды, Ярославль, 1983. С. 46−50.
  31. ГорбаньН.С. ссоавт. (1988)
  32. Интенсификация биотехнологии очистки высококонцентрированных сточных вод / Горбань Н. С, Тамарин Г. Л., Бацула Л. И., Поволоцкая В. А. // Экол. и технол. аспекты обезвреживания пром. отходов: Тез. докл. семин., Донецк, дек., 1988.- Черкассы, 1988.-С. 8−9.
  33. С.А. и др. Некоторые эколого-биохимические показатели устойчивости моллюсков к загрязнению // Гидробиол. ж.-1987.- 23, N 1.-С. 61−66.
  34. Л.В. и др. Исследование субъединичной структуры каталазы Penicillium vitale // Укр. биохим. ж.- 1985.- 57, N 4.-С. 29−33.
  35. В.Б., Светлаков А. В., Попова Л. Ю., Шендеров А. Н. Контроль синтеза глутамата у Vibrio harveyi И Микробиология.- 1986.- 55, N 1.- С. 77−80.
  36. Л.И. Некоторые микробиологические и биохимические закономерности процесса биологической очистки сточных вод // Ж. ВХО им. Д. И. Менделеева.- 1972.- 17, N2.- С. 150−156.
  37. Л.И., Шаталаев И. Ф. К предупреждению загрязнения водоемов сточными водами нефтехимических производств // Водные ресурсы.-1986.- N2.- С. 135−143.
  38. Л.И. с соавт. (1999)
  39. Получение иммобилизованного селекционированного биоценоза активного ила для биотехнологического процесса очистки воды от несимметричного диметилгидразина / Демьяненко Л. И., Ласкин Б. М., Повеликина Л. Н.,
  40. JI.В. // Журнал прикладной химии. 1999.- Т. 72. — № 12. — С. 20 532 059.
  41. В.Г. Проблема устойчивости озерных экосистем в условиях антропогенного воздействия // Антропогенные изменения экосистем малых озер: Матер. Всесоюз. совещ., Ленинград, 27−29 мар. 1990 г.- С-Петербург.- 1991.- С. 13−17.
  42. Н.Ю. Оценка физиологического состояния рыб, подверженных влиянию тяжелых металлов // Химические и биологические методы в охране окружающей среды: Тез. докл. Всес. конф., Усть-Каменогорск, 1821 сент. 1990 г.- М., 1990.- С. 43.
  43. Г. А. и др. Тестирование качества воды с помощью иммобилизованной холинэстеразы // Тр. Гос. НИИ озерного и речного рыбного хозяйства, — 1990.- N 313.- С. 122−135.
  44. В.В., Крайнюкова А. Н. Двустворчатые моллюски как индикаторы наличия токсикантов в сточных водах // Проблемы охраны природы: Тез. докл. конф., Байкальск, 1984.- С. 71−73.
  45. Г. П., Баздеркина С. А., Зуй Н.В. Ферментативная активность бактериофлоры Запорожского водохранилища. Деп. в ВИНИТИ 26.08.91., N 3570-В 91.-17 С.
  46. Е.Е., Романова А. К., Котелев В. В. Препарат малатдегидрогеназы из термофильной водородной бактерии Pseudomonas thermophilici II Прикладная биохимия и м икробиология.- 1982.- 18, N 2.- С. 221−224.
  47. Н.Б. с соавт. (1990)
  48. Микробиологическая очистка надсмольных сточных вод / Загорная Н. Б., Денис А. Д., Гвоздяк П. И., Никоненко В. У., Чеховская Т.П.'// Биотехнология. 1990. 2. — С. 51−53.
  49. В.А. Токсикологический биотест на уровне сообщества // 5 Всесоюз. конф. по водной токсикологии: Тез. докл., Одесса, 18−22 апр. 1988 г.- М., 1988.- 184 с.
  50. О.Б., Александрова Е. Н., Черепнева. И. Е. Исследование суммарной мутагенной активности воды природных водоемов г. Казани // Эколого-токсикологическая оценка урбанизированных и сопредельных территорий.-Казань, 1990.- С. 125−131.
  51. А.Н. Микробиологические превращения металлов. // Алма-Ата: Наука, 1984.- 268 с.
  52. В.П. Водные растения как тест-организмы на загрязнения тяжелыми металлами.- Вильнюс, 1985.- 18 е.- Рукопись деп. в ВИНИТИ, N4822−85.
  53. .И. Использование метода определения функционального состояния гаммарид для биотестирования вод // Гидрохимические материалы.- 1984.- 89.- С. 8−11.
  54. .И., Карпович Т. А., Маклаков В. В. Биологический метод оценки токсичности промышленных сточных вод // Гидрохимические материалы.- 1984.- 89.- С. 11 -14.
  55. О.Б. с соавт. (1989)
  56. Биохимическое окисление сточных вод производства волокна нитрон / Константинова О. Б., Федосова Н. Ф., Потапова Т. В., Макарова В. И. // Тез. докл. 3 Всес. науч.-тех. конф, поев. 70-летию Моск. текст, ин-та, Москва, 14−16 нояб, 1989,-М., 1989.-С.151.
  57. А.И. К вопросу о связи каталазной активности с процессами-формирования качества воды в водоемах интенсивного комплексного использования // Водные ресурсы. 1989.- N 5.- С. 186−189.
  58. П.И., Гвоздарев А. Ю., Предеина JI.M. К вопросу создания экспресс-методов энзимодиагностики функционального состояния жизнедеятельности организмов природных популяций // Гидрохимические материалы.- J1., 1981.- 82, — С. 64−77.
  59. П.И., Дехта В. А. Усовершенствованный прибор для вертикального электрофореза // Гидрохим. материалы.- Л., 1981.- 82.- С. 87−99.
  60. Л.И., Серов О. Л., Пудовкин А. И. Генетика изоферментов.- М.: Наука, 1977.-275 с.
  61. К.А. Биосинтез и трансформация органических соединений иммобилизованными клетками // Биотехнология. -1985.- № 2.- С. 113−122.
  62. .И., Любарев А. Е. Принципы организации и функционирования микрокомпартмента метаболона // Биохимия.- 1989.- 54, N 5.- С. 716−718.
  63. С.Н., Бахчевникова И. А., Стрелец Н. Н. Современное состояние и перспективы развития биологических методов очистки промышленных сточных вод // Изв. вузов. Сев.- Кавк. регион. Техн. н. 1998.-№ З.-С. 61−64.
  64. Н.Ф., Сычев А. А., Рубец В. И. Исследование токсичности доочищенных городских сточных вод на гидробионтах // Гигиена населенных мест.- 1990.-N29.- С. 10−12.
  65. В.Н., Нагель X., Остроумов С. А. Биотестирование вод, загрязненных сульфонолом//Водные ресурсы.- 1988.-N 1.-С. 165−168.
  66. А.Г. Регулярность в структуре сети реакций метаболизма // Биохимия.- 1989.- 54, N 6.- С. 883−894.
  67. А.П. и др. Использование экспресс-теста на токсичность при очистке сточых вод производства органического синтеза // Химия и технология воды.- 1987.- 9, N 3.- С. 263−265.
  68. . В.И. Один из методов биотестирования токсичности сточных вод промышленных предприятий // Биол. аспекты изуч. и рацион, использ. животн. и растит, мира: Тез. докл. конф.- Рига, 1981. С. 137.
  69. В.И., Машкевич О. Л., Полевич О. В. Возможности метода рентгеновского флуоресцентного анализа для экологического мониторинга // Проблемы охраны природы: Тез.докл. конф., Байкальск, 1984.-С. 22−24.
  70. П.Ч., Вилу P.O., Лакт Т. И. Зависимость синтеза внеклеточных протеаз от фазы роста у Pseudomonas fluorescens // Микробиология.- 1982.- 51, N 2.- С. 212−215.
  71. Г. Е. Характер связи между сложностью и надежностью климаксных экологических сообществ // Проблемы экологии Прибайкалья: Тез. докл. респ. совещ., Иркутск, 1979.- Иркутск: Б.и., 1979.- С. 156.
  72. Д.М. Биохимия клеточного дыхания. М.: Изд-во Академии наук СССР, 1960 .- 446 с.
  73. Монцевичуте-Ерингене. Упрощенные математико-статистические методы в медицинской исследовательской работе // Патологическаяфизиология и экспериментальная терапия.- 1964.- Т.8^- N 4.- С. 71−78.
  74. Л.И., Кофанов В. И., Невинная Л. В. Исследование возможности микробной деструкции гексогена в многосекционном лабораторном биореакторе // Химия и технология воды. 2000. Т.22.- № 1.- С. 96−103.
  75. Г. Н. Адгезионная иммобилизация микроорганизмов в очистке воды // Химия и технология воды. 1989. — Т. 11. — № 2. — С. 158−169.
  76. Г. Н. с соавт. (1990) С Иммобилизация деструктора алкилбензолсульфонатов Pseudomonas alca-ligenes TR на синтетических волокнах / Никовская Г. Н., Гвоздяк П. И., Шамолина И. И., Ставская С. С., Лобова А. Б. // Биотехнология.- 1990. № 2.- С. 53−56.
  77. Г. Н., Гордиенко А. С., Глоба Л. И. Сорбция микроорганизмов волокнистыми материалами в зависимости от заряда клеток и волокон // Микробиология. 1986. — Т.55. — № 4.- С. 691−694.
  78. А.С., Геворкян Ж. С., Бабаян М. А. К механизму регуляции активности глутаматдегидрогеназы // Биол. ж. Армении.- 1989.- 42, N 2.-С. 156−158.
  79. Ю. Основы экологии.- М.: Мир, 1975.- 740 с.
  80. Л.А. Значение тиолов в проявлении каталитической активности NADP-малик фермента из листьев кукурузы (Zea Mays) И Биохимия.-1990.-55, N2.- С. 2 32−239.
  81. Г. В. Гидробионты в биологической очистке сточных вод // Регион, семинар-совещание по проблемам охраны окруж. среды Поволжья и Средней Азии: Тез. докл., Оренбург, 14−15 июня 1990 г.- М., 1990.-С. 45−46.
  82. С.В. Характеристика изоферментных спектров некоторыхдегидрогеназ и аспартатаминотрансферазы мышечной ткани при гиперхолестеринэмии и общем вибрационном воздействии: Автореферат дис. канд.биол. наук.- Куйбышев, 1981.- 24 с.
  83. А.В., Мамат У. О ферментативных реакциях с участием перекиси водорода в бесклеточных препаратах Anabaena variabilis И Микробиология.- 1982.- 53, N 3.- С. 373−378.
  84. ГТ.И. О стабильности модельных экосистем // Использование и охрана ресурсов флоры и фауны СССР: Докл. МОИП, 1985, Зоол. и ботан.- М., 1987. С. 64−67.
  85. А.В., Шелемотов С. А. Использование экспресс-биотестирования для оценки антропоэкологической ситуации // Дефектоскопия.-1992.- N4.- С. 88−90.
  86. О.Л. Четвертичная структура ферментов // Успехи биологической химии.- М.: Наука, 1967.- N 8.- С. 34−60.
  87. Н.А., Королевская Т. В. Использование микробиологических тестов для токсикологического контроля загрязненных вод.- Киев, 1986.12 е.- Рукопись деп. в ВИНИТИ, N 2146−86.
  88. Л.М., Федорова Л. С. Активность ферментов сестона в биоиндикации качества природных вод суши // 8 Симп. по пробл. качества воды водоемов: Тез.докл., Таллин, 23−25 окт. 1990 г.- Таллин: Б.и., 1990.- С. 69−71.
  89. В.Н., Афанасьева А. Ф., Ловцов А. Е. Биологическая очистка сточных вод в аэротенках с прикрепленной микрофлорой // Водоснабжение и санитарная техн.-1990.- № 5.-С. 26−27.
  90. Э.Г. с соавт. (1997)
  91. Ф.Е., Прозоровский В. Н., Андриянова Л. Е. Выделение из Micrococcus sp. гомогенных гемсодержащей каталазы и кристаллического белка, обладающего каталазной активностью // Биохимия.- 1983. 48, N 12.- С. 2023−2027.
  92. М.Н., Гвоздяк П. И., Ставская С. С. Микробиология очистки воды.- Киев: Наукова думка, 1978. 268 с.
  93. С.М., Валовская Н. А. Активность малатдегидрогеназы мидий разного возраста в связи с антропогенным загрязнением // Экология моря.- 1987.- N 25.- С. 89−91.
  94. А.Н., Моисеева В. П., Тикка Г. А. Биотестирование сточных вод сульфат-целлюлозного производства // Изучение и освоение водоемов Прибалтики и Белорусии: Тез. докл. 20-й научн. конф., Рига, 1979 г.- Рига: Б. и, 1979.-С. 116−118.
  95. В.П. Простейшие как объекты биотестирования вод, содержащих стоки целлюлозно-бумажной промышленности // Вопросы сравнительной физиологии и разработка теоретических основ биотестирования.- Ярославль, 1986.- С. 36−40.
  96. А.Г., Спирин А. С. Организация ферментов на внутриклеточных структурах. Эстафета у поверхности // Биохимия.- 1989.- Т.54. N.5.- С. 709−715.
  97. А.И., Осипов А. Ф. Взаимосвязь между темпами прироста водорослевой массы и концентрации внеклеточных органических соединений // Гидробиологический журнал.- 1983.- Т. 19. N 5.- С. 71−74.
  98. И.Н. с соавт. (1998)
  99. Селективность микробного биосенсора при различных способах иммобилизации бактерий-деструкторов / Семенчук И. Н., Таранова Л. А., Ильясов
  100. П.В., Решетилов А. Н. // Химия и техн. воды.-1998.-Т.20.-№ 6.- С. 649−655.
  101. В.А., Иголкина Е. Д. Энзимоиндикация загрязнения водных экосистем // Проблемы экологического мониторинга и моделирования экосистем.- Л., 1983.- № 6.- С. 137−145.
  102. B.C. Перспективы использования биохимического тестирования в водной токсикологии // 5 Всес. конф. по вод. токсикологии: Тез. докл., Одесса, 18−22 апр. 1988 г.- М., 1988.- С. 72−73.
  103. Ю.Г. Изменения состава микрофауны активного ила при воздействии токсических веществ // Гидробиологический журнал.- 1985.21, N4.-С. 70−78.104.
  104. Ю.Г. Межклеточные взаимодействия в культурах простейших и их значение для биотестирования токсичности водной среды // 5 съезд Всесоюз. гидробиол. об-ва: Тез. докл., Тольятти, 15−19 сент. 1986 г.-Куйбышев: Б.и., 1986.- Ч. 2.- С. 216−21 .
  105. Ю.Г., Жукова Н. А. Контроль за содержанием токсикантов в водной среде по чувствительным периодам онтогенеза у гидробионтов.-М., 1983.- 10 е.- Рукопись деп. в ЦНИИТЭИРХ, N 580−84.
  106. А.Н. Опыт использования биосигнализаторов для контроля токсичности сточных вод // 5 съезд Всес. гидробиол. общества: Тез. докл., Тольятти, 15−19 сент. 1986 г.- Куйбышев: Б.и., 1986.- Ч. 2.- С. 217−218.
  107. Н.Н. Исследование токсичности дунайских вод на Vallisneria spiralis.- Киев, 1989.- С. 42−47.- Рукопись деп в ВИНИТИ, N 210-В89.
  108. В.А. Изменения зоопланктона Вилюя в условиях антропогенного воздействия // Вопросы регион, гигиены, сан. и эпидемиологии.: Тез. докл. конф. 20−21 ноя б. 1990 г. Якутск: Б.и., 1990.-С. 229−230.
  109. А.В., Диденко Т. Г. Молекулярные формы глутаматдегидро-геназы и глутаминсинтетазы симбиотической азотфиксирующей ассоциации Azolla-Anabaena П Биохимия. 1990.- 55, N 4.- С. 634−644.
  110. С.С. Биологическое разрушение анионных ПАВ.- Киев: Наукова С думка, 1981.- 116 с.
  111. С.С. с соавт. (1991)
  112. Иммобилизация бактерий деструкторов на искусственных волокнах для очистки воды от анион-активных ПАВ / Ставская С. С., Шамолина И. И., Никовская Г. Н. // Химия и технология воды.- 1991.- Т.13. № 6.- С. 548 554.
  113. Д.И., Балаян А. Э., Кобжицкая Н. З., Кожова О. М. Обездвиживание клеток Dunaliella salina как критерий токсического действия // Гидробиологический журнал. 1984.- Т.20. — N 5, — С. 42−45.
  114. Н.Е., Дмитриев В. В., Фихте Б. А. Электронно-цитохимическое обнаружение каталазы у метанотрофных бактерий Methylocystis echinoides II Микробиология.- 1982. -T.51 -N 5. С. 806−808.
  115. О.В. Динамика молекулярных форм гексокиназы, лактат- и малатдегидрогеназ на разных фазах развития популяции Escherichia coli 11 Факторы развития бактериальных популяций.- Свердловск, 1980. С. 99 105.
  116. А.Х. Экзометаболиты и внеклеточные продукты водорослей как регулирующий фактор водных экосистем // Разработка и внедрение комплексных фоновых статистических методов биологического мониторинга.- Рига, 1983. С. 152−159.
  117. В.А. Каталазная активность у основных видов обрастателей// Биология моря.- 1983.- N 6.- С. 49−55.
  118. Р.С. Генетически детерминированные формы НАД-зависимой МДГ и использование их при биохимической паспортизации инбредных линий сахарной свеклы // Генетика, — 1987.- Т.23. N 9.- С. 1630−1636.
  119. Т.Н., Дубова М. С. Дегидрогеназная активность бактерий, выделенных из сточных вод и активного ила // Наземные и водные экосистемы.- Горький, 1984.- N 4.- С. 29−33.
  120. М.М., Остроумов С. А. Введение в проблемы биохимической экологии.- М.: Наука, 1990.- 288 с.
  121. С.С. Активность окислительных ферментов как биотест для оценки токсичности природных и сточных вод / Методы биоиндикации и биотестирования природных вод.- Л.: 1987.- N 1.- С. 76−84.
  122. С.С. Энзимоиндикация качества очистки сточных вод в аэротенках // Химия и технология воды.- 1987. Т.9 — N 5.- С. 445−448.
  123. С.С., Кобжицкая Н. З. Окислительно-восстановительные ферменты активных илов предприятий целлюлозно-бумажной промышленности. Иркутск, 1982.- 82 с.
  124. Н.Д. Сравнительная характеристика оксидоредуктаз водорослей // Хемотаксономическое изучение споров растений и грибов: Тез. докл. Всес. совещ., Киев, 16−18 мая 1990 г. Киев, 1990.- С. 98−101.
  125. Д.В., Ионец И. Г. Анаэробная обработка сточных вод с помощью С прикрепленной микрофлоры // Биотехнология. 1990.- № 2.- С. 48−50.
  126. А.С., Талипова И. В. Использование иммобилизованных пурпурных бактерий для очистки сточных вод и получения водорода // 2 Откр. гор. науч. конф. мол. ученых г. Пущино, Пущино, 23−25 апр., 1997: Сб. тр. Пущино, 1997. — с. 145−152.
  127. Ю.А. Развитие теоретических основ технологии очистки водыиммобилизованными на подвижных носителях биоценозами // Изв. Вузов. Стр-во и архитек. 1997. — № 6.- С. 101−105.
  128. В.Н. с соавт. (2000)
  129. .А., Гуревич Г. А. Дезинтеграторы клеток. М.: Наука, 1988. — 224 с.
  130. В.М., Шапиро С. Г., Лопухин А. С., Сысоев А. А. Контроль биомассы и состояния активного ила по концентрации АТФ // Химия и технология воды.- 1983.- Т.5. N 5.- С. 468−469.
  131. Т.К., Симонян А. А. Множественные молекулярные формы NAD-зависимой малатдегидрогеназы в онтогенезе .- Ереван, 1986.- 13 с.-Рукопись деп. в ВИНИТИ, N 8150-В 86.
  132. Т.А. Перспективы использования биохимических тест-функций в биомониторинге природных вод // Гидробиол. ж. 1989.- Т.25. -N 5. С. 47−52.
  133. П., Сомеро Д. Стратегия биохимической адаптации.- М.: Мир, 1977.-398 с.
  134. М.Л., Пруидзе Г. Н. Множественные формы каталазы в листьях чайного растения // Субтропические культуры, — 1990.- N 3.- С. 46−49.
  135. Цветанов Методи, Петрова-Трайкова Анетта, Коновски Петър. Электрохимическое определение скорости потребления кислорода активным илом с помощью установки АРК -1.- Тр. водоснабд., канализ. и сан. техн.- 1980.- T.15.-N2.- С. 134−141.
  136. Т.А. и др. Иммобилизованная уреаза для биотестирования тяжелых металлов // Проблемы взаимодействия человека и биосферы.1. М.: 1989.- С. 76−79.
  137. Ю.И. Биологическое разнообразие: сущность и проблемы // Успехи современой биологии.- 1991.-Т.111. N 4.- С. 499−507.
  138. М.К., Котова Л. И., Березкина Е. В. Способ биотестирования токсичности сточных вод / А.с. N 1 573 376 СССР, МКИ G 01 N 33/18 // Открытия. Изобретения.- 1990.- N 23.
  139. И.И. с соавт. (1990)
  140. В.Н., Морозова К. М., Петрова Л. А. Применение анализа кинетики ферментативных реакций для выбора схемы и параметров процесса биологической очистки сточных вод // Сооружения механической и биологической очистки сточных вод. М.: 1983.- С. 142−152.
  141. С.М., Мишуков В. Г., Архипченко И. А. ДНК микроорганизмов активного ила для оценки его функционального состояния // Водоснабжение и санитарная техника. 1980. — N 3.- С. 8−9.
  142. В.М. Электроальгологический способ контроля загрязнения природных вод // Методы биоиндикации и биотестирования природных вод.- 1989.-N1.- С. 63−70.
  143. Е.М. Новые критерии оценки действия химических загрязнений на водные микроорганизмы // Оценка и классификация качества поверхностных вод для водопользования: Тез. сообщ. Всесоюз. конф.,
  144. Харьков, 1979.- С. 190−193.
  145. С.В. с соавт. (1985)
  146. Биологическая очистка производственных сточных вод / Яковлев С. В., Скирдов И. В., Швецов В. Н. с соавт.- М.: Стройиздат, 1985.- 208 с.
  147. Ahn Young-Ho Physiochemical and microbial aspects of anaerobic granular biopellets // J. Environ. Sci. and Health. A.- 2000.- V.35.- No. 9.- P. 1617−1635.
  148. AmbramsJ.J., WebsterD.A. Purification, partial characterization and possible role of catalase in the bacterium Vitreoscilla II Arch. Biochem. and Bio-phys. 1990. — V.279. — N 1.- P. 54−59.
  149. Bakterien reinigen Abluft von Formaldehyd. / Galvanotechnik. — 2000. V. 91. -No. 12.-P. 3462.
  150. Balogh Katalin V. Comparison of mussels and crustacean plancton to monitor heavy metal polution // Water, Air and Soil Pollut.- 1988.- V.37/ N 3−4. — p. 281−292.
  151. Baquene Gilles, Galgani Francois, Truquet Philippe. Characterization and assay conditions for use of AChE activity from several marine species in pollution monitoring // Mar. Environ. Res.- 1990. V.30. — N 2.- p. 75−89.
  152. Basaglia Fulvia. Some aspects of isozymes of lactate dehydrogenase, malate dehydrogenase and glucosephosphate isomerase in fish // Сотр. Biochem. and Physiol. В.- 1989.- V.92. N 2. — p. 213−226.
  153. Beeckmans Sonia, Kanarek Louis. Clustering of sequential enzymes in the glycolytic and the citric acid cycle pathways // J. Cell. Biochem.- 1989.- Suppl 13E.-p.266.
  154. Ben-Shlemo Rachel, Nevo Eviatar. Isozyme polymorphism as monitoring of marine environments: The interactive effect of cadmium and mercury pollution on the hrimp Palaemon elegan //Mar. Pollut. Bull. 1988. — V.19. — N 7.- p. 314−317.
  155. Bernie Heele D., Stowers Mark D. Hiperoxide dismutase and catalase in Frankia //Can.J. Microbiol. 1986. — V.32. — N 5 p. 409−413.
  156. Beyer Wayne F., Fridovich Irvin. Pseudocatalase from Lactobacillus plantarumi evidence for a homopentameric structure containing two atoms of manganese per subunit // Biochemistry.- 1985.- V.24. N 23.- p. 6460−6467.
  157. Bischoff T.W., Garraway M.O. Effects of glucose on NADP and NAD gluta-mate dehydrogenase activities and their relation to ammonium and pH levels in cultures of Bipolar is maydis race T // Mycopatologia.- 1987.- V/98. N 3. — p. 141−148.
  158. Biswas R., Shrotri R., Soman S. Activity levels of lactate dehydrogenase and succinic dehydrogenase under thiodan stress in the crab, Scylla serrata (For-skal) // Nat. Acad. Sci. Lett.- 1990.-V.13.-N 3.-p. 101−102.
  159. Blackstock J. et al. Environmental and biochemical investigation of some effects of organic pollution in Inner Oslofjord, Norway // Mar. Biol.- 1983. -V.73. N 2.- p. 155−163.
  160. Blanc Francois, Kerambrun Pierre, Leveau Michel. L’indicateur biologique aspects autecologiques et synecologiques // Rapp. et pros.- Verb. reun. Com-mis. int. explor. sci. Mer. mediterr. Monaco.- 1979.-V.25−26. N 8.-p. 109 113.
  161. Bonete Maria Jose, Camacho Monica Z., Cadenas Eduardo. Purification and some properties of NAD dependent glutamate dehydrogenase from Halobacte-rium halobium И Int. J. Biochem.- 1986.- V.18. N 9.- p. 785−789.
  162. Buikema Arthur Z., Rutherford Charles Z., Cairns John Ir. Screening sediments for potential toxicity bi in vitro enzyme inhibition // Contam and Sediments. Vol 1. Ann. Arbor, Mich.- 1980.- p. 463−476.
  163. Burton G., Allen Ir. Stream impact assessments using sediment microbial activity tests // Chem. and Biol. Charact. Munic. Sludges. Symp., Cincinnati, 2022 May 1986.-Philadelphia, 1988.-p. 300−310.
  164. Buschini A.M. et al. Glucose and nitrogen catabolite regulation of NAD-glutamate dehydrogenase and NADP-glutamate dehydrogenase in Kluyveromy-ces lactis И Atti Assoc. genet, ital.- 1988.- 34.- p. 45−46.
  165. Chen N., Dojle LP-, Gaafar H.A. Isolation and identification of Neisseria gonorrhoeae catalase // Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1980.- 139.-p.382−391.
  166. Consalvi V. et al. Glutamate dehydrogenase from sulfolobus solfataricus: kinetic and physico-chemical properties // Ital. J. Biochem.- 1990.- V.39. N 5.-p. 337−339.
  167. Coperland Les, Quinnell Rosanne J., Day David A. Malic enzyme activity in bacteroids from soybean nodules // J. Jen. Microbiol.- 1989.- V.135. N 7.- p. 2005−2011.
  168. D’Souza S.F., Melo J.S. Immobilization of yeast cells by adhesion to glass surface using polyelethylenimine / // Biotechnol. Lett. 1986. — V.8. — No. 9. — P. 643−648.171. De Best J.H. etal.(2000)
  169. Dichloromethane utilization in a packed-bed reactor in the presence of various electron acceptors / De Best J.H., Ultee J., Hage A. et al. // Water Res.- 2000. -V.34. No. 2.- P. 566−574.
  170. Dhandayuthapani S., Ramalingam K. Portial purification and properties of cy-toplasmus malate dehydrogenase from the fish parasite Penetrocerhalus gana-patii (Cestoda: Pscidophyllidea) // Pros. Indian. Nat. Sci. Acad. 1989. — V.55. -N 5−6.-p. 325−334.
  171. Din Zubir В., Brooks James M. Use of adenylate enerhy change as a physiological indicator in toxicity experiments // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.-1986.- V.36.-N l.-p. 1−8.
  172. Dorward Elanne J., Barlsas B. George. Acute toxicity screening of water pollutants using a bacterial electrode // Environ. Sci. and Technol.- 1984. V. 18. — N 12.-p. 967−972.
  173. Ehmke Adelheid, Schneid Heinz-Valter, Hartmann Thomas. Glutamate dehydrogenase of Pisum sativum', heat-dependant interconversion of the multiple forms // Z. Naturforch.- 1984.- V.39. N 3−4.- p. 257−260.
  174. Eries C.R., Lee R.F. Pollutant effects on the mixed function oxygenase (MFD) and reproductive systems of the marine polychaete Nereis virens // Mar. BioL-1984.- V.79. -N2.-p. 187−193.
  175. Falkentoft C.M., Harremoes P., Mosbak H. The significance of zonation in a denitrifying, phosphorus removing biofilm // Water Res.- 1999.- V.33.- No. 15.- P. 3303−3310.
  176. Fauris C. Inhibition de la synthese d' ARN de cellules ecaryotes: une mesure extremement sensible de la toxicite des eaux // Oceanis. 1990. — V. 16. — N 4.-p. 267−276.
  177. Fiestas J.A., Martin A., Borja R. Influence of immobilization supports on the kinetic constants of anaerobic purification of olive mill waste water // Biol. Wastes. 1990. -V. 33. — No. 2. — P. 131−142.
  178. Florencio F.I., Margues S., Candau P. Identification and characterization of a glutamate dehydrogenase in the unicellular cyanobacterium Synechocystis PCC 6803.- FEBS Gett.- 1987.-V. 223. N 1.- p. 37−41.
  179. Fok Agnes K., Allen Richard D., Kaneshiro Edna S. Axenic Paramecium cau-datum. Ill Biochemical and physiologial changes with culture age // Eur. J. Cell. Biol.- 1987.-V.25. -N l.-p. 193−201.
  180. Fontigny Anne et al. Some kinetic characteristics of exproteolytic activity in coastal seawater // Estuarine, Coast and Shelf Sci.- 1987.- 25, N 1. p. 127−133.
  181. Fontvielle D., Viboud S., Fauvet G. Developpements et role des biomasses fixees en eaux courantes // Techn., sei., meth. -1999. — No. 11. P. 55−60.
  182. Friedrich P., Hajdu J. An overview of supramolecular enzyme organization // Biochem. Soc. Trans.- 1987. V.15. — N 5. — p. 973−977.
  183. Fritzsche F., Schopp W. Verhalten von Superoxiddismutase und Catalase in • * i
  184. Pseudomonas putida bei Wachstum auf n-Alkanen // Abh^ Akad. Wiss. DDR Abt. Math. Naturwiss., Techn.- 1981.- N 3. p. 251−257.
  185. Garrood A.C. et al. Elevation of glutatione transferase in molluscs in response to xenobiotics // Mar. Environ. Res.- 1989.- V.28. N 1−4, — p. 147.
  186. Gebara F. Activated sludge biofilm waste water treatment system // Water Res. -1999.-V.33.-No. 1. -P. 230−238.
  187. Gerdes-Kuhn M., Diekmann R., Hempel D.C. Tragerfixierung von Spezialkul-turen eine wirkungsvolle Methode zum Abbau persistender Abwasserin-haltsstoffe // Korrespond. Abwasser. — 1989. — V.36. — No.7. — P. 776−784.
  188. Ghavez S., Candau P. An NAD-specific glutamate dehydrogenase from Cyano-bacteria. Identification and propertits // FEBS Zett.-- 1991.--V.285. N 1.- p. 35−38.
  189. Goldberg Iris, Hochman Ayala. Three different types of catalases in Klebsiella pneumoniae H Arch. Biochem. and Biophys.- 1989.- V.268. N 1.- p. 124−128.
  190. GoldbergIris, HochmanAyala. Purificationand characterization of a novel type of catalase from the bacterium Klebsialla pneumoniae II Biochem. et biophys. acta. Gen. Subj.- 1989.- V.991. N 2.- p. 330−336.
  191. Gonzalez M.P., Maeso M. Effect of nitrate and ammoniuum on NADH-dependent glutamate dehydrogenase activity of detached roots and cotyledons of Citrullus vulgaris L.- 1987.- V.127. N 3−4. — p. 331−337.
  192. Gross Wolfgang. Membranebound malate dehydrogenase in mitochondria from the alga Cyanidium caldarium II Phytochemistry.- 1990.- V.29. N 10.- p. 3081−3085.
  193. Grossebuten Wilhelm, Hart! Thomas, Gorish Helmut, Stezowski John Y. Purification and properties of malate dehydrogenase from the thermoacidophilic ar-choebacterum Thermoplasta acidophilum I I Biol. Chem. Hoppe- Seyler.- 1986.
  194. Microscopic and enzymatic investigations on biofilms of wastewater treatment systems / Gschlobl Т., Michel I., Heiter M., Nerger C., Rehbein V. // Water Sci. and Technol. 1997. — V. 36. -No. 1. — P. 21−30.
  195. Gupta Vijay K., Singh Randhir. Properties of NADP -malate dehydrogenase from immature pod wall of Ciler arietinum // Plant Physiol, and Biochem.-1990.- V.28. N 6.- p. 671−678.
  196. Hamon Perla, Toure Bakary. Characterisation of traditional yam varieties be-londing to the Dioscorea coyensis-rotundata complex by their isozymic patterns // Euphytica. 1990.- V.46. — N 2.- p. 101−107.
  197. Harendranath C.S. et al. (1996)1.mobilization in fixed-film reactors- an ultrastructural approach. / Harendranath C.S., Anuja K., Singh A. et al. // Water Sci. And Technol. 1996.-V.33.-No. 8.- P. 7−15.
  198. Hartl Thomas et al. Crystalline NAD/NADP-dependent malate dehydrogenase- the enzyme from the thermoacidophilic archaebacterium Sulfolobus acidocal-darius II J. Biol. Chem. Hoppe-Seyler.- 1987.- V.368. N 3.- p. 259−267.
  199. Heimberger A., Eisenstark A. Compartmentalization of catalases in Esherichia coli II Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1988.- V.154. N 1.- p. 392−397.
  200. Hemmings Brian A. Purification and properties of the phospho and dephospho forms of yeast NAD-dependent Glutamate dehydrogenase // J. Biol. Chem.-1980.- V.255. N 16.- p. 7925−7932.
  201. Henze M., Harremoes P. Anaerobic treatment of waste water in fixed film re-actors.-a literature review // Water Sci. Technol.-1983.-V. 15.- No. 8/9. -P. 1101.
  202. HochmanAyala, GoldbergIris. Purificationand characterization of a catalaseperoxidase and a typical catalase from the bacterium Klebsiella И Biochem. et biophys. acta Protein Struct, and Mol. Enzymol.- 1991.- V.1077. N 3.- p. 299−307.
  203. Hornby David P., Engel Paul C. Characterization of Peptostreptococcus asac-charolyticus glutamate dehydrogenase purified by dye-ligand chromatography // J. Gen. Microbiol.- 1984.- V.130. N 9. — p. 2385−2394.
  204. Hoxha J. et al. Catalase activiti in the plants exposed to contamination with heavy metals // Acta biol. et med. exp.- (SFRJ). 1985. — V.IO. — N 2.- p. 23−26. '
  205. Huang C.Y., Rhee S.Y., Chock P.B. Subinit cooperation and enzymatic catalys // Annu Rev. Biochem. Vol. 51. Palo Alto, Calif, 1982. p. 935−971.
  206. Iuch Andrew I., Chung Che-Shengi, Lai Iiu-Kay. Purification and molecular properties of malate dehydrogenase from the marine diatom Nitzschia alba II Biochem J.- 1989.- V.258. N 1.- p. 221−228.
  207. Jana Sasadhar. Effect of heawy metals on growth population of a fecal coliform bacterium Escherichia coli И Water, Air, and Soil Pollut.- 1988.- V.38. N 34.- p. 251−254.
  208. Jeffery D., Goodenouqh P.W., Weitzman P.D. Cytrate synthase and malate dehydrogenase from tomato fruit // Phytochemistry.- 1988.- V.27. N 1.- p. 4144.
  209. Jenkins Ronald L. et al. Assocoation-dissotiation studies of boine and rat liver glutamic dehydrogenase by high-performanse liquid chromatography gel filtration // Arch. Biochem. and Biophys.- 1988.- V.266. N 1.- p. 72−82.
  210. Joannou C.L., BrownP.R.NAD-dependentglutamate dehydrogenase from Pseudomonas aeruginosa is a membrane-bound enzyme.// FEMS Microbiol. Lett. 1992. — V.90. — N 2.- p. 205−210.214. Jobbagy A. et al. (2000)
  211. Jonas Robert B. et al. Comparison of methods to measure acute metal and or-ganometal toxicity to natural aquatic microbial communities // Appl. and Environ. Microbiol.- 1984.-V.47. -N 5.-p. 1005−1011.
  212. Jouve H.M., Tessier S., Pelmont J. Purification and properties of the Proteus mirabilis catalase // Can. J. Biochem. and Cell. Biol.- 1983.- 61, N 1.- p. 8−14.
  213. Itagaki Tandashi, Dry Ian В., Wiskich Joseph. Purification and proptrties of NAD-glutamate dehydrogenase from turnipm mitochondria // Phytochemis-try.- 1988.- V.27. N 11.- p. 3373−3378.
  214. Kienz Walfgang et al. Einsatz eines Biodetektors als «Kanalspion» zum Nach-wies der Schwermetallherkunft in Abwassersielen // Z. Wasser- und Abwasser-Forsch.- 1989.- Y.22. N 6.- p. 239−244.
  215. Kince Ch. M., Trelease R.N., Turley Rickie B. Purification and bioshynthesis of cottonseed catalase // Biochem. J. 1988. V.251. — N 1.- p. 147−155.
  216. Kirkman Henry N., Gaetani G.F. Catalase: A tetrameric enzyme with four tightly bound molecules of NADPH // Proc. Nat. Acad. Sci. USA Biol. Sci.-1984.-V.8L -N 14. p. 4343−4347.
  217. Kono Iasuhisa, Fridovich Irvin. Isolation and characterization of the pseudocatalase of Lactobacillus plantarum. A new manganesecontaining enzyme //J. Biol. Chem.- 1983. V.258,N 10.- p. 6015−6019.
  218. Kowalski E., Lewandowski Z. Aktywne chemiczne wypetnienie ztoz nitryfika-cyjnych // Arch. Ochr. Srodow.-1983.- No. 4/4. P. 95−112.
  219. Kristjansson Hordur, Ponnamperuta CyriL Purification and properties of malate dehydrogenase from the extreme thermophile Bacillus caldolyticus II Limits Life. Dordrecht et al.- 1980.- p. 47−54.
  220. Kuhl-C., Schreck U., Czermak P. Biologische Aufarbeitung von mineralol-haltigen Abwassern aus Kfz-Betrieben // Chem.-Ind.-Techn. 2001.-V.73.- No. 4.- P. 406−411.
  221. Kulkarni B.G., Kulkarni P.G. Effect of mercury exposure on enzymes in the clam Katelysia opima (Gmelin) // Indian J. Mar. Sci.- 1987. V. 16. — N 4.- p. 265−266.
  222. Laere Andre Y. Van. Purification and properties of NAD-dependent glutamate dehydrogenase from Phycomyces spores I I J. Jen. Microbiol.- 1988.- V.134. N 6.- p. 1597−1601.
  223. Laszlo J.A. Regeneration of azo-dye-saturated cellulosic and anion anaerobic dye reduction // J. Environ. Sci. and Technol. 2000. — V. 34. — No. 1. — P. 167−172.
  224. Ling L., Lo K.V. Brewery wastewater treatment using suspended and attached grouth sequencing batch reactors // J. Environ. Sci. and Health. A. 1999. — V. 34.-No. 2.-P. 341−355.
  225. Livingstone D.R. et al. Molecular, allular and physiologial responses of the common mussel Mytilus edulus to pollution: Uses in environmental monitoring and management // Hum. Toxicol.- 1989, — V.8. N 1.- p. 59.
  226. Lockhart W.L., Menter D.A. Oil-sensitive biomarker studies of fish from Arctic Canada // 14th Arct. and Mar. Oilspill Program Techn. Semin., Vancouver, June 12−14, 1991: Proc.- Vancouver., 1991.-p. 169−176.
  227. Loewen Peter C., Switala Jacek. Purification and characterization of catalase-1 from Bacillus subtilis II Biochem. and Cell. Biol.- 1987. -V.65, N 11.- p. 939 947.
  228. Loewen Peter C., Switala Jacek. Multiple catalases in Bacillus subtilis 11 J. Bacterid.- 1987.- V.169. N 8.- p. 3601−3607.
  229. Lu Weiping. Purification and characterization of glutamate dehydrogenase from
  230. Brevibacterium flavum IIL Fundan. Univ.- 1988.- V.27.- N 4.- p. 395−401.
  231. Mahadevan M.M. Sperm bioassay for detecting acute toxicity of chemical pollutants II Experientia.- 1986.- V.42. N 1.- p. 85−86.
  232. Mantsala Pekka. Thermophilic NAD dependent glutamate dehydrogenase from Bacillus stearothermophilic II Biochem. Int.- 1985. V.10, N 6.- p. 955−962.
  233. Marshall K.C. Bacterial Adhesion to Surfaces. London: Society of Chem. Industry, 1980.-P. 187−196.
  234. Martin-Cereceda M., Serrano S., Guinea A. Biofilm communities and operational monitoring of a rotating biological contactor system // Water, Air and Soil. Pollut. 2001. — V. 126. — No. 3−4. — P. 193−201.
  235. Maserti B.E., Ferrara R., Paterno P. Posidonia as an indicator of mercury contamination // Mar. Pollut. BulL 1988. — V.19, N 8.- p. 381−382.
  236. Masters Colin, Pegg Michael, Crane Denis. On the multiplicity of the enzyme catalase in mammalian liver // Mol. and Cell. Biochem.- 1986, — V.70, N 2.- p.
  237. Mather Mihaich Ellen, Di Gulio Richard T. Oxidant mixed-function oxidase and peroxisomal in channel catphish exposed to a bleached kraft mill effluent // Arch. Environ. Contam. and Toxicol.- 1991.- V.20. N 3, — p. 391−399.
  238. Matulova Dragica. The Application of algae as test organismus // Arch. Protis-tenk.- 1991.- V.139. -N 1−4.-p. 279−289.
  239. Mc Daniel Huly G. Glutamic dehydrogenase from rat heart mitochondria. 1: purification and physical properties including molecular weight determination // J. Mol. and Cell. Cardiol.- 1984.- V.16, N 4.- p. 295−301.
  240. Meir Efrat, Iagil Ezra. Further Characterization of the Two Catalases in Escherichia coli // Cull. Microbiol. 1985. — V.12, N 6.- p. 315−320.246. Meraz M. Et al. (1995)
  241. Studies on the dynamics of immobilisation of anaerobic-bacteria in a plastic support / Meraz M., Monroy O., Noyola A., Ilangovan К // Water Sci. and Technol.- 1995. V.32. — No. 8. — P. 243−250.
  242. Mittler Ron, Tel-Or Elicha. Oxidative stress responses and shock proteins in the113.120.unicellular cyanobacterium Syntchococcus R2 (PCC-7942) // Arch. Microbiol.-1991.- V.155, N 2.- p. 125−130.
  243. Miyatake Kazutaka et al. Purification and immunological properties of NAD-linked malate dehydrogenase isozymes from Euglena gracilus // Agr. and Biol. Chem.- 1986.- V.50, N 10.- p. 2651−2653.249. Monroy O. et al. (2000)
  244. Anaerobic digection for wastewater treatment in Mexico: state of the technology / Monroy O., Fama G.,. Meraz M., Montoya L., Macarie H. // Water Res. — 2000.-V. 34.-No. 6.-P. 1803−1816.
  245. Mozaffar Sabiha et al. Properties of catalase purified from a methanol-grown jeast Kloecera sp. 2201 // Eur. J. Biochem.- 1986.- V. 155, N 3.- p. 527−531.
  246. Mozes N., Rouxhet P.G. Metabolic activity of yeast immobilized as support monolayer // Appl. Microbiol. & Biotechnol. 1985. — V.22. — No. 2. — P. 92−97.
  247. Munoz Blano Yuan, Moyano Enrigeta, Cardenas Yacobo. Glutamate dehydrogenase isozyme of Chlamydomonas reinhardtii // FEMS Microbiol. Zett. -1989. V.61, N 3.- p. 315−318.
  248. Narbonne J.F. et al. Indicateurs biochemique de contamination de I’environne-ment marin: etude comparative en mer Mediterranee // Oceanis. 1991. — V. 17, N3.- p. 257−275.
  249. Ni Weiting, Trelease Richard N., Eising Rainer. Two temporally synthesized charge subnits interact to form five isoforms of cottonsttd catalase // Biochem. J.- 1990.- V.269, N 1.- p. 233−238.
  250. Nies Dietrich, Schlegel Hans G. Catalase from Comamonas compransoris U J.Gen. and Appl. Microbiol.- 1982.- V.28, N 4.- p. 311−319.
  251. Nikolopoulos Dimosthnis, Manetas Yiannis. Compatible solutes and in vitro stability of Salsola soda enzymes: proline ioncompatibility // Phytochemistry. -1991.-V.30-N2.-p. 411−413.
  252. Novotny James F., Perry Jerome J. Characterization of the malate dehydrogenase from Thermoleophilum album NM // Arch. Microbiol.- 1990.- V.154. N 3.- p. 304−307.258. O’Reilly К. etal. (1987)
  253. Degradation of pentachlorophenol in immobilized bacteria bioreactors / O’Reilly K., Steiert J., Kadakia R. et al. // Abtr. Pap., 194th ACS Nat. Meet. (Amer. Chem. Soc.), New Orleans, LA, Aug. 30 — Sept.4, 1987. — Washington D.C.-1987.- P. 442.
  254. Obst U., Holzapfel-Pschorn A. Biochemical testing of Groundwater // Water Sci. and Technol.- 1988. V.20, N3. — p. 101−107.
  255. Ohshima Toshihisa, Sacuraba Haruhiko. Purification and characterization of malate dehydrogenase from the phototrophic bacterium Rhodopseudomonas capsulata II Biochim. et biophys. acta Protein Struct, and Mol. Enzymol.-1986.- V.869, N 2 .- p. 171- 177.
  256. Pekkala C.M., Kooptan B. Effect of toxicants on algal sinking rates // Water, Air and Soil Pollut.- 1987.-V. 36, N 1−2.- p. 155−162.
  257. Pellerin-Massicote Jocelyne, Pelletier Emilien, Paquet Mariane. Cellular and biochemical indicators assessing the quallity of a marine environment // Hydro-biologia.- 1989.- V.188−189.- p. 587−589.
  258. Prento Poul, Prento Annette. Crystalline catalase from the earthworm Lumbri-cus terrestris (Oligochaeta Annelida): purification and properties I I Cemp. Bio-chem. and Physiol.- 1984.- V.77, N 2.- p. 325−328.
  259. Pugh Shirlej I.R., Knovles Christopher J. Synthesis of catalase by Streptococcus faecalis subsp. zymogenes // Arch. Microbiol.- 1983.- V.136, N 1.- p. 60−63.
  260. Radi Amal Ali Radeb, Matkovics B. Effects of metal ions on the antioxidant enzyme activities, protein contents and lipid peroxidation of carp tissues // Сотр. Biochem. and Physiol.- 1988.-V.90, N 1.- p. 69−72.
  261. Rao P., Rama Mohana. Cytochemistry of the ciliate Euplotes woodruff! Gaw 1938 with a note on the effect of local pollutants on the ciliate // Geobios (India).- 1989.-N6.-p. 275−278.
  262. Rasmusson Allan G., Moller Ian M. NADP-utilizing enzymes in the matrix of plant mitochondria//Plant Physiol.- 1990.-V.94, N 3.-p. 1012−1018.
  263. Ratajczak Z. et al. Glutamate dehydrogenase isoenzymes in yellous lupine rootnodules- I-Wevelopental patterns and coenzyme requirements I I Acta physiol. plant.- 1988.- V. 10, N 1. p. 41−48.
  264. Reddy S.Z., Venugopal N. B: In vivo effects of cadmium chloride on certain aspect of protein metabolism in tissues of a frechwater fields crab Barytelphuusa querini II Bull. Environ Contam. and Toxicol.- 1991.-V. 46, N 4.- p.583−590.
  265. Rice David W., Hornby David P., Engel Paul C. Crystallization of an NAD -dependent glutamate dehydrogenase from Clostridium cymbiosum II J. Mol. Biol.- 1985.-V.181, N 1.-p. 147−149.
  266. Rivere D., Kerambrun P. Impact d’une pollution d’origine urbaine sur les ac-tivites enzymatiques de deux copepodes planctoniques // Mar. Biol.- 1983.-V.75, N 1.- p. 25−35.
  267. Rober В., Stolle J., Reuter G. Eigenschaften der Glucose-6-phosphat-dehydrogenase aus der SCP Candida maltosa H // Z. allg. Microbiol.- 1984.-V.24, N 9.- p. 629−636.
  268. Rosenberg M. Bacterial adhesion to hydrocarbons: a useful technique for studing cell surface hydrophobicity // Ibid.-1984.-V.22.- No. 3. -P. 289−295.
  269. Rosenberg M., Gutnick D., Rosenberg E. Adherence bacteria to hydrocarbons- a simple method for measuring cell surface hydrophobicity // FEMS Microbiol. Lett.-1984.-V.9.- No. 1. -P. 29−33.
  270. Rueter John G. Alcaline phosphatase inhibition by copper: Implications to phosphorus nutrition and use as a biochemical marker of toxicity // Limnol. and Oceanogr.- 1983.- V.28, N 4.- p. 743−748.
  271. Ruis H. Heme as a regulator of catalase biosynthesis in the yeast Saccharomy-ces cerevisiae И Highlights Mod. Biochem.: Proc. 14th Int. Congr. Biochem., Praque, 10−15 juli 1988. Vol .1- Utrecht, Tokyo, 1989.- p. 339−347.
  272. Sallal A.K.G., Nimer N.A. The presence of glutamate dehydrogenase in Сhloro- gloeopsis fritschii. // FEMS Microbiol Lett.- 1990.- V.67, N l-2.-p. 215−219.
  273. Sallal A.K.Y., Nimer N.A. The presence of malate dehydrogenase in thylakoids of Anabaena cylindrica, Nostos muscorum and Chlorogloeopsis fritschii I I Z. Naturforsch. C.- 1990.- V.45, N 3−4.- p. 249−252.
  274. Sarada K.V. et al. Isolation and characterization of glutamate dehydrogenase from Mycobacterium smegmatis CDC 46 I I Biochim. et biophys. acta.- 1980.-V.615, N 2, — p. 299−308.
  275. Scaven Michael D. et al. The rapid purification of 3-hydroxybutyrate dehydrogenase and malate dehydrogenase on triazine dye affinity matricis // Biochem. J.- 1982.- V.203, N 3.- p. 699−705
  276. Schinkinder M.F., Rede В., Stoffler G. Purification and properties of an extreme thermostable glutamate dehydrogenase from the Archaebacterium sul-folobus solfataricus II Biochim et biophys. acta. Gen. Subj.- 1991.- Y.1073, N 1.- p. 142- 148.
  277. Schroder Yohannes Horst, Peters Karin. Differential courtship activity of competing guppi males as an indicator for low concentrations of aquatic pollutants // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.- 1988.- V.40, N 3.- p. 396 404.
  278. Schwegler Helmut. Stabilitatsbegriffe fur biologische Systeme // Angen. Bot.-1981.- V.55,N3−4.-p. 129−137
  279. Shien Wen K., lee Carl J. Microbial toxicity moninor for in situ continuous applications//Biotechnol. andBioeng.- 1985.- V.27,N 10.-p. 1500−1506.
  280. Shimizu Hiroshi, Kuratsu Taeko, Hirata Fumio. Purification and some properties of glutamate dehydrogenase from Protes inconstans II J. Ferment. Technol.-1979.-V.57,N 5.-p. 428−433.
  281. Sleinert S.A., Pickwell G"V. Miltiple forms of lisozyme in copper stressed mussels (Mytilus edulus) II Mar. Environ. Res.- 1985.-V.17, N 2−4.- p. 211−214.
  282. Srinivasulu Reddy M., Ramana Rao K.V. Effects of phosphamidon and lindane of the limb regeneration of panaeid prown, penaeus monodon // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.- 1989.- V.42, N 1.- p. 154−158.
  283. Srivastava D.K. et al. Direct transfer of NADH between 1-glycerol phosphate dehydrogenase and lactate dehydrogenase: fact or misinterpretation? // Proc. Nat. Acad. Sci. USA.- 1989.- 86, N. 7.- p. 6464−6468.291. Steyer J. et al. (1999)
  284. Advanced control of anaerobic digestion procecces through disturbances monitoring / Steyer J., Buffiere P., Rolland D. et al. // Water Res.- 1999. V.33. -No. 9.-P. 2059−2068.
  285. Tayeh Mahmoud A., Madigan Michael T. Malate dehydrogenases in photo-trophic purple bacteria: purification, molecular weight and qaternary structure // J. Bacterid.- 1987.- V.169, N 9.- p. 4196−4202.
  286. Telitchenko M.M. Self-purifying and full biological value by hydrobios // Fundamental research in homogeneous catalysis. N.I.: Gordon and Breach, 1986.-Vol. 3.- p. 1273−1287.
  287. Teller J.K. Kinetic properties of glutamate dehydrogenase purified from the mealworm fat body. The glutamate synthesizing direction // Сотр. Biochem. and Physiol.- 1988V. 90, N 2.- p. 329−333.
  288. Terashima Y., Ozaki H. Utilization of microorganisms immobilized with magnetic particles for wastewater treatment // Res. Activ., Civ., Eng. and Relat. Fields Kioto Univ. -1993. P. 117.
  289. Toze S. PCR and the detection of microbial pathogens in water and wastewater // Water Res. 1999. -V. 33.-No. 17. — P. 3545−3556.
  290. Tramper J., Suwinska-Borowiec G., Klapwijk A. Characterization of nitrifying bacteria immobilized in calcium alginate // Enzyme & Microbial Technology.-1985.-V.7.-No. 5.-P. 155−160.
  291. Trindale Helena, Karmali Amin, Pais Maria S. One-step purification and properties of catalase- from leaves of Zantedeschia aethiopica // Biochemie.- 1988.-V.70, N 12.-p. 1759−1764.299. Tsubone T. et al. (1998)
  292. Advanced biological water treatment using immobilization technology / Tsubone Т., Baba K., Sawada Т., Yamada H., Takeshi Т., Atsuura H. // NKK Techn.Rev. 1998. — No. 78. -P. 66−73.
  293. Valdivia E et al. Control of catalase and peroxidase biosynthesis by carbon source and oxygen in the jeast Saccharomyces cerevisiae // Can. J. Microbiol.-1983.- V.29, N 9.- p. 1200−1204.
  294. Vasseur P., Ferard J.F., Vial J., Larbaig G. Comparaison des tests Microtox et Daphnie pour 1'evaluation de la toxicite aique d' effluents industriels // Environ. Pollut.- 1984.- A .34, N 7.- p. 225−235
  295. Vienne Dominique. Relation entre la structure et les formes multiples de la glutamate deshydrogenase du pollen de Luzerne // C. r. Acad, sci.- 1981.- D 291, N 11.-p. 885−888.
  296. Vircellani P.A., Smiri R.I., Krieg N.R. Catalase activity in Campylobacter jejune: comparison of a wild-tipe strain with an aerotolerant variant // Can. J. Microbiol.- 1990.- V.36, N 6.- p. 449−451.
  297. Von den Berg L. Developments in methanogenesis for industrial waste water // Can. J. Microbiol. 1984. — No. 8. — P. 975−990.
  298. Vredenbregt L.H.J. etal.(1997)
  299. Fluid bed biological nitrification and denitrification in high salinity waste water / Vredenbregt L.H.J., Nielsen K., Potma A.A. et al. // Water Sci. And Technol.-1997.-V.36. No. 1. — P. 93−100.
  300. Warwick W.F. Morphological abnormalities in Chironomidae larvae as measures of toxic stress in freshwater ecosystems: indexing antennal deformities in
  301. Chironomus Meigen II Caru J. Fish., and Aquat. Sci.- 1985.-V.42,. N 12.- p. 1881−1914.
  302. Wedding Randolph T. Malic enzymes of higher plants: Characteristics, regulation and physiological function // Plant. Physiol.- 1989.- V.90, N 2.- p. 367−371.
  303. Weil G., Hugen R. Dieselolabbau mit in Polymeren immobilisierten Mikroor-ganismen // Korrespond. Abwasser. -1997. -V. 44. -P. 104−109.310. Werner A. etal.(1997)
  304. Biotechnologisches Verfahren zum mikrobiellen Fettabbau' in Abwassern / Werner A., Boschke E., Enkelmann U., Bley Th. // Chem. — Ing. Techn. — 1997. — V. 69. — No. 9. — P. 1296.
  305. West Sh.M., Price N.C. The unfolding and refolding of glutamate dehydrogenases from bovine liver, bakers yeast and Clostridium symbiosum I I Biochtm. J.-1988.- V.251, N 1.- p. 135−139.
  306. Willeford Kenneth O., Wedding Randolph T. Evidence for a multiple subunit composition of plant NAD malic enzyme // J. Biol. Chem.- 1987.- V.262, N 17.-p. 8423−8429.
  307. Williamson Kenneth J., Johnson Diane G. A bacterial bioassay for assessment of wastewaters toxicity // Water Res.- 1981.- V.15, N 3.- p. 383−390.
  308. Zee B.N., Picard A. Occurrence of glutamate dehydrogenase isoenzymes during growth of Oocystis alga // Biotechnol. and Bioeng.- 1983.-V.25, N 7.- p. 18 011 816.
  309. Zesson Andrea, Komuniecki Patricia R., Komuniecki Richard. Catalase activity during the development of the parasitic nematode Ascaris suum II Compan. Biochem. and Physiol. В.- 1990.- V.95, N 4.- p. 811−815.
  310. Zoeven P.C., Switala Y. Purification and characterization of catalase РН II from Eschericha coli K12 // Biochem. and Cell Biol.- 1986.-V. 64, N 7.- p. 638−646.
  311. Zoeven P.C., Switala Y. Purification and characterization of sporespecific catalase-2 from Bacillus subtilis II Biochem. and Cell Biol.- 1988.- V.66, N 7.-p. 707−714.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!