Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Оценка эффективности различных методов диагностики инфекции вируса лейкоза крупного рогатого скота

Диссертация: Оценка эффективности различных методов диагностики инфекции вируса лейкоза крупного рогатого скота
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Ретроспективный анализ по числу неблагополучных пунктов и количеству выявленных больных животных по Российской Федерации за сорокалетний период (1966;2003 гг.) показал, что в структуре инфекционной патологии крупного рогатого скота на лейкоз приходится 57% от всех инфекционных болезней. Представленные данные свидетельствуют об усилении эпизоотической напряженности по лейкозу как в целом… Читать ещё >

Содержание

  • 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Структурная, морфологическая, генотипическая и иммунологическая характеристика ВЛКРС
    • 1. 2. Методы диагностики лейкоза крупного рогатого скота
      • 1. 2. 1. Серологические методы диагностики
        • 1. 2. 1. 1. Реакция иммунодиффузии в геле агара
        • 1. 2. 1. 2. Иммуноферментный анализ, как альтернатива РИД
        • 1. 2. 1. 3. Иммуноблотинг
        • 1. 2. 1. 4. Причины выпадения серологических реакций
      • 1. 2. 2. Молекулярные методы диагностики
        • 1. 2. 2. 1. Полимеразная цепная реакция
        • 1. 2. 2. 2. Способы оптимизации и особенности проведения ПЦР

Оценка эффективности различных методов диагностики инфекции вируса лейкоза крупного рогатого скота (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Распространение BJIKPC представляет угрозу скотоводству во всем мире. С внедрением в 70-х годах прошлого столетия в диагностику лейкоза КРС серологических методов было установлено, что степень распространения инфекции и количество инфицированного крупного рогатого скота намного выше, чем предполагалось ранее. В последнее время, все больше поступает сообщений о вновь выявленных очагах его распространения в тех странах, где раньше его не регистрировали. На сегодня известно, что JIKPC распространен более чем в трети всех стран мира (R.F. DiGiacomo, 1992; W. Wittmann, 1993; J.L.F. Cordeiro et al, 1994; H.T. Kaura and O.J.B. Hubschle, 1994; K. Losieczka and S. Klimentowski, 1994; J. Meszaros et al., 1994; E.H. Birgel et al., 1995; R.M. Jacobs et al., 1995; A. Kurdi et al., 1999; S. Meas et al., 2000, 2002; K.G. Trono et al., 2001; A. Zaghawa et al., 2002).

Ретроспективный анализ по числу неблагополучных пунктов и количеству выявленных больных животных по Российской Федерации за сорокалетний период (1966;2003 гг.) показал, что в структуре инфекционной патологии крупного рогатого скота на лейкоз приходится 57% от всех инфекционных болезней. Представленные данные свидетельствуют об усилении эпизоотической напряженности по лейкозу как в целом по стране, так и большинству территорий. Количество вновь объявленных неблагополучных пунктов, превышает число оздоровленных. К числу наиболее неблагополучных субъектов следует отнести Ростовскую, Волгоградскую, Воронежскую, Саратовскую, Псковскую области, Краснодарский, Ставропольский края, Республику Марий Эл и другие территории, где уровень зараженности крупного рогатого скота вирусом лейкоза составляет от 20 до 45%. В отдельных хозяйствах, среди взрослых животных, инфицированность ВЛКРС превышает 80 и более процентов. Вместе с тем, анализируя сведения о проведенных лабораторных исследованиях на лейкоз, можно сделать вывод, что официальные статистические сведения по лейкозу в ряде субъектов являются явно заниженными и не отражают истинных масштабов распространения, как заболеваемости, так и инфицированности животных ВЛКРС.

Полученные данные свидетельствуют о том, что при примерно одинаковом количестве гематологических исследований за 1991;2003 гг. по РФ выявлено значительно больше больных животных (133,4 тыс.) при этом процент выявленных больных животных увеличился с 1,8% до 2,64%, а уровень зараженности ВЛКРС за этот же период практически не изменился и составил соответственно 14,2 и 13,1% (В.А. Апалькин и соавт., 2005).

Каждый год появляется все больше сообщений о новых особенностях течения лейкозной инфекции, ее этиологическом агенте (ВЛКРС). Например, стало известно, что некоторые телята, рожденные от инфицированных коров, являются толерантными к ВЛКРС и не синтезируют антитела, оставаясь при этом источником инфекции (В.А. Крикун, 2002). Расширяется и набор методологических средств применяемых для изучения лейкоза. Используемая сегодня в России, и ряде других стран для серологической диагностики РИД не отвечает современному уровню знаний о ЛКРС. При неоспоримой простоте постановки реакции, она значительно уступает в чувствительности другим, более современным методам, например, таким как ИФА и иммуноблотинг (О.А. Верховский и соавт., 2002; K.G. Trono et al., 2001). Невозможность автоматизации делает РИД не удобной при массовых исследованиях и вносит долю субъективизма в оценку результатов.

Однако все животные-вирусоносители не могут быть выявлены ни одним из серологических методов. Это связано с тем, что они регистрируют только ответную иммунологическую реакцию организма на патологического агента в форме наработки антител, в то время как некоторые инфицированные животные имеют слишком низкие для детекции титры антител или не синтезируют их совсем. Также, содержание антител в крови может меняться в зависимости от физиологического состояния. Такие животные, в дальнейшем, могут служить источником новых вспышек инфекции в оздоровленных стадах (М.И. Гулюкин и соавт., 2002; В .А. Крикун, 2002; D. Beier et al., 1998).

В подобных случаях актуальным является примененение генно-молекулярных методов диагностики, таких как молекулярная гибридизация и ПНР. ПЦР позволяет выявлять, по разным данным, на 10−42% больше инфицированных ВЛКРС животных, чем РИД или ИФА (Н.В. Кузнецова и соавт., 1997; Л. Б. Прохватилова и соавт., 1998; В. А. Бусол и соавт., 1999; Н. Т. Джапаралиев и соавт., 2000; В. А. Апалькин и соавт., 2005; К.В. Mullis et al., 1986; Н.М. Naif et al., 1990; A. Popov et al., 1993; H. Poon et al., 1993; H. Fechner et al., 1996aU. Czarnik et al., 2000; S.E. Gutierrez et al., 2001; M. Rola and J. Kuzmak, 2002; D.W. Nagy et al., 2003; C.J. Kuckleburg et al., 2003). Также, при помощи ПЦР возможно отличить инфицированных телят от телят с колостральными антителами (A. Agresti et al., 1993; F.W. Eaves al., 1994).

Однако в связи с тем, что все перечисленные методы имеют недостатки, актуальными являются исследования по оптимизации регламента для каждого метода в системе оздоровительно-профилактических мероприятий при лейкозе.

Обобщая сведения о распространении лейкоза в нашей стране, а также данные лабораторных исследований следует сделать вывод, что в целом продолжает иметь место негативная динамика усиления напряженности по лейкозу, а во многих субъектах РФ лейкоз приобрел характер эпизоотии. Это требует принятия более радикальных и эффективных мер борьбы с лейкозом, принятие специальной государственной программы и внесения дополнений в существующие «Правила по профилактике и борьбе с лейкозом» 1999 года (В.А. Апалькин и соавт., 2005).

Цель работы: провести сравнительное изучение эффективности существующих методов диагностики BJIKPC-инфекции (РИД, ИФА и ПЦР) и оптимизировать регламент их применения в системе оздоровления крупного рогатого скота от лейкоза.

Задачи исследований:

1. Провести сравнительный анализ диагностической эффективности методов РИД и ИФА в сопоставлении с результатами ПЦР на крупном рогатом скоте неблагополучных по лейкозу хозяйств.

2. Оптимизировать регламент применения методов РИД, ИФА и ПЦР в системе оздоровления крупного рогатого скота от лейкоза.

Научная новизна работы. Установлено, что относительное содержание антител к BJIKPC в сыворотке крови коров выше, чем у молодняка крупного рогатого скота. Так, у взрослых животных этот показатель, по результатам ИФА, составил 42,29 о.е. (для отрицательных в РИД), 75,46 о.е. (для слабоположительных в РИД, титр антител от 1:1 до 1:4) и 85,45 о.е. (для положительных в РИД, титр антител свыше 1:8), у телок случного возраста — 35,59 о.е., 49,23 о.е. и 78,25 о.е. соответственно.

Проведенный на репрезентативном поголовье сравнительный анализ эффективности методов РИД, ИФА и ПЦР при диагностике ВЛКРС-инфекции показал, что ни один из этих методов не позволяет полностью выявить всех животных-вирусоносителей. Так эффективность РИД составила 76,1%, ИФА — 83,3%, ПЦР — от 58,3 до 72,6%.

Научно обоснован регламент использования ИФА и ПЦР в хозяйствах с разной эпизоотической ситуацией по BJTKPC-инфекции.

Практическое значение работы. Инструментальный вариант учета результатов ИФА в сопоставлении с визуальным, позволяет дополнительно выявлять до 2% инфицированных животных, так как пробы сыворотки крови, дающие сигнал менее 30 о.е. при инструментальном учете, при визуальном оцениваются как сомнительные.

Предложен вариант применения ИФА в системе общепринятых методов диагностики инфекции BJIKPC, который предусматривает регламент исследований животных в зависимости от напряженности эпизоотической ситуации по лейкозу. С целью рационального использования ИФА рекомендуется применять данный тест при первичном разделении неблагополучного стада и на завершающей стадии оздоровления.

Оптимизирован регламент применения тест-систем РИД, ИФА и ПЦР при диагностике ВЛКРС-инфекции.

Результаты исследований использованы при разработке методических рекомендаций.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Результаты сравнительного изучения эффективности тест-систем РИД и ИФА в сопоставлении с ПЦР при диагностике ВЛКРС-инфекции.

2. Оптимизированный регламент применения РИД, ИФА и ПЦР в системе оздоровительно-профилактических мероприятий при ВЛКРС-инфекции.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на заседаниях ученого совета ГНУ ИЭВСиДВ СО Россельхозакадемии (2002;2004 гг.) — научно-практической конференции, посвященной 70-летию Иркутской НИВС (Иркутск, 2002) — международной научно-практической конференции «Современные проблемы эпизоотологии» (Новосибирск, 2004) — международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы ветеринарной медицины» (Новосибирск, 2005) — Сибирской Межрегиональной научно-практической конференции (Новосибирск, 2008).

Публикации. По теме диссертации опубликованы 8 научных работ, в том числе одна — в журнале «Сибирский вестник сельскохозяйственной науки», рекомендованном ВАК РФ.

Структура и объем диссертации

Диссертационная работа изложена на 125 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводов, практических предложений, списка литературы и приложения. Работа иллюстрирована 15 таблицами и 4 рисунками. Список использованной литературы включает 245 источников.

4. ВЫВОДЫ.

1. ИФА позволяет дополнительно к РИД выявлять до 15,3% животных в зависимости от эпизоотической ситуации по инфекции ВЛКРС.

Для получения более объективных результатов сыворотка животных, показавших сомнительную в РИД реакцию, подлежит дополнительному исследованию в ИФА, так как 71% сомнительных в РИД проб по результатам ИФА содержит антитела к ВЛКРС.

Инструментальная оценка результатов ИФА более объективна (достоверна) в сопоставлении с визуальной. До 2% реагирующих в ИФА проб по результатам инструментальной оценки остаются неучтенными при визуальной. Сигнал, ниже 30 о.е., регистрируемый при инструментальном учете, при визуальном оценивается как сомнительный.

2. Слабоположительные реакции в РИД (титры антител до 1:4) чаще (33%) регистрируются у коров и значительно реже (12%) у телок случного возраста. Уровень относительного содержания антител к ВЛКРС, регистрируемый в ИФА, выше у коров, чем у телок. У коров, слабоположительных в РИД, относительное количество антител составило -75,4б±-4,57 о.е., тогда как у телок — 49,23±6,29 о.е. (Р<0,001).

При более низком уровне инфицированности ВЛКРС (15,4%) коров, в сопоставлении с телками случного возраста (19,4%), случаи дополнительного выявления в ИФА среди взрослых животных были выше и составили 4,4% против 1,5% у телок.

3. Из двух тест-систем на основе ПЦР «nested"-ITUP более чувствительная в сравнении с коммерческой ПЦР тест-системой «Лагис», что, по-видимому, связано с использованием в «nested"-nUP двух пар праймеров. Из 120 исследованных проб в ПЦР] («Лагис») дополнительно было выявлено — 5 проб, а в ПЦР2 («nested"-fIIJP) — 12 проб.

4. Соотношение всех реагирующих животных, выявленных разными методами, составляет: РИД — 76,1%, ИФА — 83,3%, ПЦР] («Лагис»).

58,3%, ПЦР2 («nested"-nLIP) — 72,6%. Таким образом, для максимального выявления всех инфицированных BJIKPC животных необходимо комбинированное использование серологических и молекулярных методов.

У гематологически больных лейкозом животных наличие BJIKPC было подтверждено РИД, ИФА и ПЦР методами в 100% случаев.

5. Регламент применения ИФА и ПЦР в сельскохозяйственных предприятиях обусловлен особенностями эпизоотической ситуации по ВЛКРС-инфекции. С целью рационального применения ИФА возможно использование данного теста при первичном разделении неблагополучного стада и на завершающей стадии оздоровления хозяйств от инфекции.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Для реализации в условиях ветеринарной практики разработаны методические рекомендации:

1. «Иммуноферментный анализ при диагностике инфекции вируса лейкоза крупного рогатого скота» (утв. подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока», прот. № 2 от 29.06.2007 г.).

2. «Комплексная система оздоровления и профилактики лейкоза крупного рогатого скота в Новосибирской области на 2007;2011 гг. (теоретические и практические аспекты)» (утв. подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока», прот. № 14 от 5.10.2007 г.).

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Т.А. Эколого-иммунологическая характеристика крупного рогатого скота разных территорий Сибири с учетом оздоровления стад от лейкоза: автореф. дис. канд. вет. наук / Т. А. Агаркова. Новосибирск, 2000.-24с.
  2. , В.А. Лейкоз крупного рогатого скота. / В. А. Апалькин, М. И. Гулюкин, Н. И. Петров // Петролазер. Санкт- Петербург. 2005. -106 с.
  3. , Л.Г. Диагностика лейкозов сельскохозяйственных животных. / Л. Г. Бурба, А. А. Кунаков //М.: Колос. 1983. — С. 31−34.
  4. , В.А. Тест-система для выявления ВЛКРС полимеразной цепной реакцией. / В. А. Бусол, О. Ю. Лиманская, А. П. Лиманский, В. И. Цымбал // Ветеринария. 1999. — № 6. — С. 27−30.
  5. , М. Обнаружение гликолипидных антигенов с помощью моноклональных антител. / М. Брокхаус // Иммунологические методы исследований: пер. с англ. под ред. И, Лефковитса, Б. Перниса. М.: Мир, 1988.-С. 159−172.
  6. , Н.Т. Лейкозы сельскохозяйственных животных. / Н. Т. Васильев, Н. В. Румянцев // М.: Колос. 1975. — С. 158−161.
  7. , О.А. Иммуноферментный анализ в диагностике лейкоза крупного рогатого скота. / О. А. Верховский, В. В. Цибезов, М. В. Баландина, И. В. Непоклонова // Ветеринария. 2002. — № 12. — С. 810.
  8. , М.И. Разработка эффективных мероприятий против лейкоза крупного рогатого скота. / М. И. Гулюкин, Л. А. Иванова, Н. В. Замараева, Н. В. Баркова, К. П. Грек, В. В. Храмцов, А. С. Донченко // Ветеринария. -2002. -№ 12.-С. 3−8.
  9. , Е.В. Инфекционные болезни северных оленей. / Е. В. Гусева, Т. А. Сатина. //Владимир: ОКНИИиМС, 2000. — С. 101−112.
  10. , В. Л. Применение метода иммунофлуоресценции для обнаружения специфического антигена при лейкозе крупного рогатого скота. // Лейкоз крупного рогатого скота. Рига: Зинатне. — 1974. С. 109 112.
  11. , А.И. Диагностическая ценность РИД с полипептидным (р24) антигеном ВЛКРС в выявлении больного лейкозом крупного рогатого скота: дис. канд. вет. наук / А. И. Испуллаев. — Новосибирск, 1993, — 139с.
  12. , В.А. Лейкоз крупного рогатого скота и иммунологическая толерантность. / В. А. Крикун // Ветеринария. 2002. -№ 6. — С. 7−9.
  13. , Н.В. Использование полимеразной цепной реакции для выявления инфицированных вирусом лейкоза крупного рогатого скота. / Н. В. Кузнецова, Н. В. Кузнецов, Г. А. Симонян // Ветеринария. 1997. -№ 5.-С. 12−15.
  14. , Р.А. Вирус лейкоза крупного рогатого скота. / Р. А. Кукайн и др. // под ред. Р. А. Кукайн, Л. И. Нагаевой. Рига: Зинатне. — 1982. -175 с.
  15. , В.Т. Реакция связывания комплемента при лейкозе крупного рогатого скота. / В. Т. Кумков, В. А. Крикун // Теоретические и практические вопросы ветеринарии. Лейкозы. Тарту, 1979. — Т.2. — С. 8893.
  16. , А.Т. Методические аспекты серологической диагностики лейкоза крупного рогатого скота. / А. Т. Левашев // Диагностика и" профилактика заразных болезней сельскохозяйственных животных. — Новосибирск. 1992. — С. 67−73.
  17. , В.М. Лейкоз крупного рогатого скота. / В. М. Лемеш и др. -Мн.: Ураджай, 1987. 224 с.
  18. , А.П. Молекулярно-генетические методы — основа программ по искоренению лейкоза крупного рогатого скота. / А. П. Лиманский, О. Ю. Лиманская // Биотехнология. — 2001. № 3. — С. 4050.
  19. , В.Ю. Классификация и номенклатура вирусов позвоночных: учебное пособие. / В. Ю. Луговцев, Д. А. Васильев. Ульяновск, — 2002. -С. 65−77.
  20. , С.А. Роль моноклональных антител в диагностике лейкоза крупного рогатого скота. / С. А. Малоголовкин // Ветеринария. — 1997.-№ 4.-С. 16−19.
  21. , Н.А. Лабораторная диагностика и специфическая профилактика лейкоза крупного рогатого скота. / Н. А. Мальцева // Новочеркасск, 2002. — 81с.
  22. , Т. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. / Т. Маниатис, Э. Фрич, Дж. Сэмбрук. М.: Мир, — 1984. -480 с.
  23. , Н.Г. Диагностическая эффективность серологических исследований при лейкозе крупного рогатого скота. / Н. Г. Мацакова,
  24. В.Ф. Островская, В. М. Велик // Лейкозы крупного рогатого скота, сборник научных трудов. MB А, 1985. — С. 20−23.
  25. , Р.С. Сывороточные и колостральные анти-ВЛКРС-антитела у больных лейкозом коров. / Р. С. Москалик // Лейкозы крупного рогатого скота, сборник научных трудов. МВА, 1985. — С. 33−36.
  26. , Р.С. Диагностическое преимущество использования молозива для обнаружения анти-ВЛКРС антител. / Р. С. Москалик,
  27. A.M. Сандросян // Проблемы адаптации с.-х. животных. Новосибирск, -1997.-С. 167−168.
  28. Нго, Т. Иммуноферментный анализ. / Т. Нго и Г. Ленхофф. М.: Мир, -1988. — 446 с.
  29. , Б.Г. Классификация ретровирусов и характеристика вируса лейкоза крупного рогатого скота. / Б. Г. Орлянкин, М. И. Гулюкин, Н. В. Замараева, К. Ю. Кунаков // Ветеринария. 2000. — № 5. — С. 17−19.
  30. , Ю.Г. Биометрическая обработка результатов научно-производственных опытов при оформлении курсовых и выпускных работ: учебно-методическое пособие / Ю. Г. Попов и др. Новосиб. гос. аграр. ун-т. — Новосибирск, 2000. — 24 с.
  31. , Л.Б. Диагностика лейкоза КРС методом полимеразной цепной реакции. / Л. Б. Прохватилова, А. И. Ломакин, С. Н. Колосов,
  32. B.В. Дрыгин, С. С. Рыбаков, А. А. Гусев // Вестник РАСХН. 1998. -№ 5.-С. 65−68.
  33. , Л.Б. Применение ПЦР для раннего обнаружения провируса лейкоза крупного рогатого скота у экспериментально инфицированных животных. / Л. Б. Прохватилова, С. Н. Колосов,
  34. A.И. Ломакин, В. В. Дрыгин, А. А. Гусев // Ветеринария. 2001. — № 8. -С. 17−21.
  35. , В.А. Структура и биология вирусов животных. / В. А. Сергеев, Б. Г. Орлянкин. М.: Колос, — 1983. — С. 296−313.
  36. , П.Н. Диагностика лейкоза крупного рогатого скота: Рекомендации / П. Н. Смирнов, В. В. Смирнова, А. Т. Левашев,
  37. B.В. Храмцов, А. С. Опанасюк, И. В. Фирсов, А. Г. Незавитин // ВАСХНИЛ. Сиб. отд-ние. ИЭВСиДВ. Новосибирск, 1989. — 48 с.
  38. , П.Н. Проблемы лейкоза животных. / П. Н. Смирнов, А. Г. Незавитин, В. В. Смирнова, В. В. Храмцов // под ред. П. Н. Смирнова. -Новосибирск, 1992. — С. 3−211.
  39. , К. Анализ генома / К. Смит, Ф. Коллинз, Ч.Кантор. М., 1990. -58с.
  40. , В.Н. Вирусные болезни животных. / В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко, Б. В. Соловьев, Н. В. Фомина. М.: ВНИТИБП, — 1998.1. C. 383−406.
  41. , Р.З. Иммуноферментная тест-система для выявления инфицированных вирусом лейкоза животных. / Р. З. Файзулин, В. М. Чекишев, Н. В. Попова, В. В. Храмцов, З. Ф. Богаутдинов,
  42. A.И. Кабанцев // Эпизоотология, диагностика, профилактика и меры борьбы с болезнями животных. Новосибирск, 1997. — С. 96−100.
  43. , Н.А. Полимеразная цепная реакция (ПЦР). — Методическое пособие для начинающих. / Н. А. Федоров, Ю. С. Суханов, А. Х. Асади Мобархан, М. И. Артемьев. М., — 1996. — 33 с.
  44. , В.М. Перспективы использования достижений биотехнологии в диагностике инфекционных болезней животных /
  45. B.М. Чекишев // Эпизоотические и инфекционные процессы / РАСХН. Сиб. отд-ние. ИЭВСиДВ. Новосибирск, 1992. — С. 53−56.
  46. , В.П. Лейкозы и злокачественные опухоли животных. / Л. Г Бурба, А. Ф. Валихов, В. А. Горбатов и др. // под ред. В. П. Шишкова, Л. Г Бурбы. М.: Агропромиздат, 1988. -400 с.
  47. , А. А. Сравнительная характеристика иммунологических методов диагностики инфекции ВЛКРС в системе противолейкозных мероприятий: автореф. дис. канд. вет. наук. / А. А. Шукель. Барнаул, 1998.- 18 с.
  48. Aida, Y. Monoclonal antibodies define antigenic regions on the major internal protein p24 of bovine leukemia virus (BLV). / Y. Aida, M. Onuma, K. Tsukiyama, Y. Ogawa, T. Fujieda, T. Mikami, H. Izawa // Arch. Virol. -1987a. -V. 94.-P. 315−321.
  49. Aida, Y. Use of viable-cell ELISA for detection of monoclonal antibodies recognizing tumour-associated antigens on bovine lymphosarcoma cells. /
  50. Y. Aida, M. Onuma, N. Kasai, H. Izawa // Am. J. Vet. Res. 1987b. — V. 48. -P. 1319−1324.
  51. Andersen, M. Indirect hemagglutination test for detection of antibody against bovine leukemia virus. / M. Andersen // Ann. Rech. Vet. 1978. -V. 9. — P. 675−682.
  52. Asfaw, Y. Distribution and superinfection of bovine leukaemia virus genotypes in Japan / Y. Asfaw, S. Tsuduku, M. Konishi, K. Murakami, T. Tsuboi, D. Wu, H. Sentsui // Arch. Virol. 2004. — V. 111. — P. 109−120.
  53. Batmaz, H. Serological and haematological diagnosis of enzootic bovine leukosis in cattle in turkey. / H. Batmaz, K.T. Carli, M. Kahraman, C. Cetin, E. Kennerman // Vet. Rec. 1995. — V. 136. — P. 42−44.
  54. Baumgartener, L.E. Survey for antibodies to leukemia (C-type) virus in cattle. / L.E. Baumgartener, C. Olson, J.M. Miller, M.J. Van der Maaten // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1975. — V. 166. — P. 249−251.
  55. Beier, D. Blutserologische, pathologischhistologische und hamatologische Untersuchungen an mit bovinem Leukosevirus infizierten tumorosen Rindern. / D. Beier, E. Starick, W. Wittmann, B. Nitschke // Arch. Exper. Vet. Med. -1987. -V. 41.-P. 763−766.
  56. Bembridge, G.P. Cd45Ro expression on bovine T-cells-relation to biological function. / G.P. Bembridge, N.D. Machugh, D. Mckeever, E. Awino, P. Soop,
  57. R.A. Collins, K.I. Gelder, С J. Howard // Immunology. 1995. — V. 86. -P. 537−544.
  58. Birgel, E.H. Prevalence of the infection by the bovine leukosis virus in jersey dairy-cattle, raised in the state of Sao Paulo Pesquisa. / E.H. Birgel, J. Dangelino, F.J. Benesi //Vet. Brasileira. 1995. — V. 15. — P. 93−99.
  59. Brandon, R.B. Early detection of bovine leukosis virus DNA in infected sheep using the polymerase chain reaction. / R.B. Brandon, H. Naif, R.C.W. Daniel, M.F. Lavin // Res. Vet. Sci. 1991. — V. 50. — P. 89−94.
  60. Bruck, C. Topographical analysis by monoclonal antibodies of BLV-gp51 epitopes involved in viral functions. / C. Bruck, D. Portetelle, A. Burny, J. Zavada // Virology. 1982b. — V. 122. — P. 353−362.
  61. Bruck, C. Epitopes of bovine leukemia virus glycoprotein gp51 recognized by sera of infected cattle and sheep. / C. Bruck, D. Portetelle, M. Mammerickx, S. Mathot, A. Burny // Leuk. Res. 1984b. — V. 8. — P. 315−321.
  62. Buehring, G.C. Evidence for bovine leukemia-virus in mammary epithelial-cells of infected cows. / G.C. Buehring, P.M. Kramme, R.D. Schultz // Lab. Invest. 1994. — V. 71. — P. 359−365.
  63. Bunger, I. Detection of antibodies against the enzootic bovine leukemia-virus in milk and serum samples by immunoblotting. / Bunger I., H. Khalaf, C. Cripe, M. Rimpler // Dtsch. Tierarztl. Wschr. 1994. — V. 101. — P. 402 405.
  64. Bunger, I. Pmfung von Anitgenpraparationen des vims der enzootischen Rinderleukose auf Eignung im Immunblot. / I. Bunger, H. Khalaf, M. Rimpler // Dtsch. Tierarztl. Wschr. 1996. — V. 103. — P. 516−519.
  65. Burridge, M.J. Duration of colostral antibodies to bovine leukemia virus by two serologic tests. / M.J. Burridge, M.C. Thurmond, J.M. Miller, M.J.F. Schmerr, M.J. Van der Maaten // Am. J. Vet. Res. 1982. — V. 43. -P. 1866−1867.
  66. Calafat, J. Structure of C-type virus particles in lymphocyte cultures of bovine origin. / J. Calafat, P.C. Hageman, A.A. Ressang // J. Natl. Cancer Inst. 1974. — V. 52. — P. 507−519.
  67. Carli, K.T. Comparison of serum, milk and urine as sampels in an enzyme-immunoassay for bovine leukemia-virus. / K.T. Carli, H. Batzmaz, A. Sen, A. Mibay // Res. Vet. Sci. 1993. — V. 55. — P. 394−395.
  68. Carli, K.T. Detection of IgG antibody to Bovine Leukaemia Virus in urine and serum by two enzyme immunoassays. / K.T. Carli, A. Sen, H. Batzmaz, E. Kennerman // Letters in Applied Microbiology. 1999. — V. 28. — P. 416 418.
  69. Cheng-Mayer, C. Host range, replicative, and cytopathic properties of human immunodeficiency virus type 1 are determined by very few amino acid changes in tat and gpl20. / C. Cheng-Mayer, T. Shioda, J.A. Levy // J. Virol. -1991.-V. 65.-P. 6931−6941.
  70. Cheng, S. Effective amplification of long targets from cloned inserts and human genomic DNA. / S. Cheng, C. Fockler, W. Barnes, R. Higuchi // Proc. Natl. Acad. Sci. 1994. — V. 91. — P. 5695−5699.
  71. Chiba, T. Immunohistologic studies on subpopulations of lymphocytes in cattle with enzootic bovine leukosis. / T. Chiba, M. Hiraga, Y. Aida, T. Ajito, M. Asahina, D. Wu // Vet. Path. 1995. — V. 32. — P. 513−520.
  72. Cockerell, G.L. The correlation between the direct and indirect detection of bovine leukemia virus infection in cattle. / G.L. Cockerell, J. Rovnak // Leuk. Res. 1988. — V. 12. — P. 465−469.
  73. Cordeiro, J.L.F. Identification and control of bovine leukosis in a daiiy herd. / J.L.F. Cordeiro, F. Descyhamps, E. Martins, V.M.V. Martins // Pesquisa Agropecuaria Brasileira. 1994. — V. 29. — P. 1287−1292.
  74. Czarnik, U. Modified procedure for PCR detection of proviral DNA of bovine leukaemia virus. / U. Czarnik, S. Kaminski, J. Rulka, K. Walawski // Bull. Veter. Inst, in Pulawy. 2000. — V. 44. № 2. — P. 143−146.
  75. Derse, D. Nucleotide sequence and structure of integrated bovine leukemia virus long terminal repeats. / D. Derse, A.J. Diniak, J.W. Casey, P.L. Deininger //Virology. 1985.-V. 141.-P. 162−166.
  76. Derse, D. Trans-acting regulation of bovine leukemia virus mRNA processing. / D. Derse // J. Virol. 1988. — V. 62. — P. 1115−1119.
  77. Deschamps, J. Experiments with cloned complete tumorderived bovine leukemia virus information prove that the virus is totally exogenous to its target animal species. / J. Deschamps, R. Kettmann, A. Burny // J. Virol. 1981. -V. 40.-P. 605−609.
  78. Deshayes, L. Proteins of bovine leukemia virus. I. Characterization and reactions with natural antibodies / L. Deshayes, D. Levy, A.L. Parodi, J.P. Levy // J. Virol. 1977. — V. 21. — P. 1056−1060.
  79. Devare, S.G. Bovine lymphosarcoma: development of a radioimmunologic technique for detection of the etiologic agent. / S.G. Devare, J.R. Stephenson, S. Chander, P. S. Sarma, S.A. Aaronson // Science. 1976. — V. 194. — P. 14 281 430.
  80. DiGiacomo, R.F. The epidemiology and control of bovine leukemia virus infection. / R.F. DiGiacomo // Vet. Med. 1992. — P. 248−257.
  81. Diglio, C.A. Induction of syncytia by the bovine C-type leukemia vims. / C.A. Diglio, J.F. Ferrer// Cancer. Res. 1976. — V. 36. — P. 1056−1067.
  82. Dimmock, C.K. Lymphocyte subpopulationes in sheep with lymphosarkoma resulting from experimental infection with bovine leukemia virus. Immunol. /
  83. C.K. Dimmock, W.H. Ward, K.F. Truemann // Cell. Biol. 1990. — V. 68. -P. 45−49.
  84. Dolz, G. Comparison of agar gel immunodiffusion test, enzyme-linked immunosorbent assay and western blotting for the detection of BLV antibodies. / G. Dolz, E. Moreno // Zentralbl Veterinarmed. 1999. — V. 46. -P. 551−558.
  85. Don, R.H. «Touchdown» PCR to circumvent spurious priming during gene amplification. / R.H. Don, P.T. Cox, B.J. Wainwright, K. Baker, J.S. Mattick // Nucl. Acids. Res. 1991. — V. 19. — P. 4008−4019.
  86. Eaves, F.W. A field evaluation of the polymerase chain reaction procedure for the detection of bovine leukaemia virus proviral DNA in cattle. / F.W. Eaves, J.B. Molloy, C.K. Dimmock, L.E. Eaves // Vet. Microbiol. -1994. -V. 39.-P. 313−321.
  87. Eisenstein, B.J. The polymerase chain reaction. A new method of using molecular genetics for medical diagnosis. / B.J. Eisenstein // New Engl. J. Med. 1990.-V. 322.-P. 178−183.
  88. Engelberg, N.C. Detection of microbial nucleic acid for diagnostic purposes. / N.C. Engelberg, В J. Eisenstein // Ann. Rev. Med. 1992. -V. 43.-P. 147−155.
  89. Erlich, H.A. Spezific DNA amplification. / H.A. Erlich, D.H. Gelfand, R.K. Saiki //Nature. 1988. — V. 331. — P. 461−462.
  90. Fechner, H. Evaluation of polymerase chain reaction (PCR) application in diagnosis of bovine leukaemia virus (BLV) infection in naturally infected cattle. / H. Fechner, A. Kurg, L. Geue, P. Blankenstein, G. Mewes, D. Ebner,
  91. D. Beier// Zentralbl. Veterinarmed. В. 1996a. — V. 43. — P. 621−630.
  92. Fechner, H. Direct use of cell lysates in PCR-based diagnosis of bovine leukemia virus infection. / H. Fechner, A. Kurg, P. Blankenstein, G. Mewes, L. Geue, C. Albrecht, D. Ebner // Berl. Munch. Tierarztl. Wochenschr. -1996b. -V. 109.-P. 446−450.
  93. Ferrer, J.F. Studies on the relationship between infection with bovine C-type virus, leukemia, and persistent lymphocytosis in cattle. / J.F. Ferrer, D.A. Abt, B.M. Bhatt, R.R. Marshak // Cancer. Res. 1974. — V. 34. — P. 893−900.
  94. Ferrer, J.F. Serological diagnosis of infection with the putative bovine leukemia virus. / J.F. Ferrer, D.M. Bhatt, D.A. Abt, R.R. Marshak, V.L. Baliga // Cornell Vet. 1975. — V. 65. — P. 527−542.
  95. Forschner, E. ELISA-Ablaufbestimmende Einflussparameter, deren Auswirkungen auf die Testsicherheit and praxisgerechte Prufmethoden. Tierarztl. / E. Forschner, D. Heiseke // Umschau. 1988. — V. 43. — P. 786−796.
  96. Frenzel, B. Immunofluorescence test for bovine leukosis-associated complement-fixing antibodies / B. Frenzel, M. Mussgay, L.G. Schneider, O.C. Straub // Zbl. Veterinarmed. 1975. — V. 22. — P. 519−523.
  97. Ghysdael, J. Translation of bovine leukemia virus virion RNAs in heterologous protein-synthesizing systems. / J. Ghysdael, R. Kettmann, A. Burny//J. Virol. 1979.- V. 29.-P. 1087−1098.
  98. Ghysdael, J. Bovine leukemia virus. / J. Ghysdael, C. Bruck, R. Kettmann, A. Bumy. // Cum Top. Microbiol. Immunol. 1984. — V. 112. — P. 1−19.
  99. Graves, D.C. A reverse transcriptase assay for detection of the bovine leukemia virus. / D.C. Graves, C.A. Diglio, J.F. Ferrer // Am. J. Vet. Res. -1977. -V. 38.-P. 1739−1744.
  100. Grover, Y.P. An immunoblotting procedure for detection of antibodies against bovine leukemia virus in cattle. / Y.P. Grover, B. Guillemain // J. Vet. Med. B. 1992. — V. 39. — P. 48−52.
  101. Grundboeck, M. Syncytial testing in the diagnosis of bovine leukemia-possibilities and limitationes. / M. Grundboeck, J. Kuzmak, E. Buzala // Medycyna Wet. 1994. — V. 50. — P. 205−207.
  102. Heeney, J.L. Alterations in humoral immune response to bovine leukaemia virus antigens in cattle with lymphoma. / J.L. Heeney, V.E. Valli, J. Montesanti //J. Gen. Virol. 1988. -V. 69. — P. 659−666.
  103. Heeney, J.L. Transformed phenotype of enzootic bovine lymphoma reflects differentiation-linked leukemogenesis. / J.L. Heeney, V. Valli // Lab. Invest. -1990.-V. 62.-P. 339−346.
  104. Heeney, J.L. Evidence for bovine leukemia virus infection of peripheral blood monocytes and limited antigen expression in bovine lymphoid tissue. / J.L. Heeney, PJ. S Valli, R.M. Jacobs, V.E.O. Valli // Lab. Invest. 1992. -V. 66.-P. 608−615.
  105. Hoff-Jorgensen, R. An international comparison of different laboratory tests for the diagnosis of bovine leukosis: Suggestions for international standardization / R. Hoff-Jorgensen // J. Virol. Methods. 2004. — V. 115. -№ 2.-P. 167−175.
  106. Hruskova-Heidingsfeldova, O. Proteins of bovine leukemia-virus and human T-cell leukemia viruses. / O. Hruskova-Heidingsfeldova // Fol. Biol. (Praha). -1995.-V. 41.-P. 201−212.
  107. Johnson, R. Lymphocyte colony formation by aleukemic sheep infected with bovine leukemia-virus. / R. Johnson, J.B. Kaneene, J.W. Lloyd // Сотр. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 1994. — V. 17. — P. 1−13.
  108. Kaaden, O.R. Isolation of a pi 5 polypeptide from bovine leukemia virus and detection of specific antibodies in leukemic cattle. / O.R. Kaaden, B. Frenzel, B. Dietzschold, F. Weiland, M. Mussgay. // Virology. 1977. — V. 77. — P. 501 509.
  109. Kaaden, O.R. Eine Methode zum Direktnachweis des Rinderleukosevirus. / O.R. Kaaden, B. Frenzel // Fortschr. Vet. 1980. — V. 30. — P. 184−187.
  110. Kaura, H.T. The occurrence of enzootic bovine leukosis (EBL) in Namibia. / H.T. Kaura, O.J.B. Hubschle // Dtsch. Tierarztl. Wschr. 1994. — V. 101. -P. 66−67.
  111. Kenyon, SJ. Properties of density gradient-fractionated peripheral blood leukocytes from cattle with bovine leukemia virus. / S.J. Kenyon, C.E. Piper // Infect. Immun. 1977. — V. 16. — P. 898−903.
  112. Kettmann, R. Integration of bovine leukemia virus DNA in the bovine genome. / R. Kettmann, M. Meunier-Rotival, J. Cortadas, G. Cuny, J. Ghysdael, M. Mammerickx, A. Burny, G. Bernardi // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1979. — V. 76. — P. 4822−4826.
  113. Kettmann, R. Chromosome integration domain for bovine leukemia provims in tumors. / R. Kettmann, J. Deschamps, Y. Cleuter, D. Couez, J.J. Claustriaux, R. Palm, A. Burny // J. Virol. 1983. — V. 47. — P. 146−156.
  114. Klintevall, K. Evaluation of an indirect ELISA for the detection of antibodies to bovine leukaemia virus in milk and serum. / K. Klintevall, K. Nasland, G. Svedland, L. Hajdu, N. Linde, B. Klingeborn // J. Virol. Methods. 1991. — V. 33. — P. 319−333.
  115. Klintevall, K. Bovine leukemia virus: rapid detection of proviral DNA by nested PCR in blood and organs of experimentally infected calves. / K. Klintevall, A. Ballagi-Pordany, K. Naslund, S. Belak // Vet. Microbiol. -1994. -V. 42.-P. 191−204.
  116. Kuckleburg, C.J. Detection of bovine leukemia virus in blood and milk by nested and real-time polymerase chain reactions. / C.J. Kuckleburg,
  117. C.C. Chase, E.A. Nelson, S.A. Marras, M.A. Dammen, J. J Christopher-Hennings // Vet. Diagn. Invest. 2003. — V. 15. — P. 72−76.
  118. Kurdi, A. Serologic and virologic investigations on the presence of BLV infection in a dairy herd in Syria. / A. Kurdi, P. Blankenstein, O. Marquardt,
  119. D. Ebner // Berl. Munch. Tierarztl. Wochenschr. 1999. — V. 112. — P. 18−23.
  120. Kuzmak, J. Detection of the bovine leukaemia virus by the polymerase chain reaction. / J. Kuzmak, A. Moussa, J. Grundboeck-Jusko // Acta. Biochim. Pol. 1991.-V. 38.-P. 107−110.
  121. Kuzmak, J. Application of nonradioactive method of DNA detection in the diagnosis of bovine leukemia virus infection. / J. Kuzmak, A. Skorupska, A. Moussa, J. Grandboeck // Bui. Vet. Inst. Pulway. 1993a. — V. 37. — P. 3−8.
  122. Kwok, S. Avoiding false positives with PCR. / S. Kwok, R. Higuchi // Nature. 1989. — V. 339. — P. 237−238.
  123. Lagarias, D.M. Transkriptional activation of bovine leukemia virus in blood cells from experimentally infected, asymptomatic sheep with latent infections. / D.M. Lagarias, K. Radke // J. Virol. 1989. — V. 63. — P. 2099−2107.
  124. Lefebvre, L. Subcellular localization of the bovine leukemia virus R3 and G4 accessory proteins. / L. Lefebvre, V. Ciminale, A. Vanderplasschen, D. D’Agostino, A. Burny, L. Willems, R. Kettmann // J. Virol. 2002a. -V. 76. № 15.-P. 7843−7854.
  125. Levkut, M. Expression and quantification of IgG and IgM molecules on the surface of lymphocytes of cattle infected with bovine leukemia-virus. / M. Levkut, W. Ponti, D. Soligo, N. Quirici, M. Rocchi // Res. Vet. Sci. -1995.-V. 59.-P. 45−49.
  126. Licursi, M. Genetic heterogeneiti among bovine leukemia virus genotypes and its relation to humoral responses in hosts. / M. Licursi, Y. Inoshima, D. Wu, T. Yokoyama, E. Gonzalez, H. Sentsui. // Virus Research. 2002. -V. 86.-P. 101−110.
  127. Losieczka, K. Epizootiological analysis of the occurrence of enzootic bovine leukemia in individual farms. / K. Losieczka, S. Klimentowski // Medycyna Wet. 1994.- V. 50.-P. 118−121.
  128. Mammerickx, M. Comparative study of four diagnostic methods of enzootic bovine leukosis / M. Mammerickx, A. Burny, D. Dekegel, J. Ghysdael, R. Kettmann, D. Portetelle // Zbl. Vet. Med.- 1977a. V.24. — P. 733−740.
  129. Mammerickx, M. Study on the diagnosis of enzootic bovine leukosis by complement-fixation. / M. Mammerickx, D. Portetelle, A. Bumy // Zbl. Vet. Med. 1977b. — V. 24. — P. 349−357.
  130. Mammerickx, M. Eradication of enzootic bovine leukosis based on the detection of the disease by gp immunodiffusion test. / M. Mammerickx, A. Cormann, A. Bumy, D. Dekegel, D. Portetelle // Ann. Rech. Vet. 1978. -V. 9.-P. 885−894.
  131. Mamoun, R.Z. Bovine lymphosarkoma: expression of BLV-related proteins in cultured cells. / R.Z. Mamoun, T. Astier, B. Guillemain, J.F. Duplan // J. Gen. Virol. 1983.-V. 64.-P. 2791−2795.
  132. McDonald, H.C. Detection, quantitation and characterization of the major internal virion antigen of the bovine leukemia virus by radioimmunoassay. / H.C. McDonald, J.F. Ferrer // J. Natl. Cancer Inst. 1976. — V. 57. — P. 875 882.
  133. Meas, S. Seroprevalence of bovine immunodeficiency virus and bovine leukemia virus in draught animals in Cambodia. / S. Meas, K. Ohashi, S. Turn, M. Chhin, К. Те, К. Miura, С. Sugimoto, M. Onuma // J. Vet. Med. Sci. -2000.-V. 62. № 7.-P. 779−781.
  134. Meas, S. Seroprevalence and molecular evidence for the presence of bovine immunodeficiency virus in Brazilian cattle. / S. Meas, FJ. Ruas, T. Usui,
  135. Y. Teraoka, A. Mulenga, K.S. Chang, A. Masuda, C.R. Madruga, K. Ohashi, M. Onuma // Jpn. J. Vet. Res. 2002. — V. 50. № 1. — P. 9−16.
  136. Menard, A. Bovine leukemia virus: purification and charakterization of the aspartic protease. / A. Menard, R.Z. Mamoun, S. Geoffre, M. Castraviejo, S. Raymond, G. Precigoux, M. Hospital, B. Guillemain // Virology. 1993. -V. 68.-P. 494−499.
  137. Meszaros, J. Eradication of bovine leukosis from a heavily infected herd by the use of own offspring. / J. Meszaros, T. Antal, A.T. Polner, L. Sumeghy, I. Szabo // Acta V. Hung. 1994. — V. 42. — P. 421−432.
  138. Miller, J.M. Virus-like particles in phytohemagglutinin-stimmulating lymphocyte cultures with reference to bovine lymphosarcoma / J.M. Miller, L.D. Miller, C. Olson, K.G. Gillette // J. Natl. Cancer Inst. 1969. — V. 43. -P.1297- 1305.
  139. Miller, J.M. Brief communication: Precipitating antibody to an internal antigen of the C-type virus associated with bovine lymphosarcoma. / J.M. Miller, C. Olson // J. Natl. Cancer Inst. 1972. — V. 49. — P. 1459−1462.
  140. Miller, J.M. A complement-fixation test for the bovine leukemia (C-type) virus. / J.M. Miller, M.J. Van der Maaten // J. Nat. Cancer Inst. 1974. -V. 53.-№ 6.-P. 1699−1702.
  141. Miller, J.M. Serological detection of bovine leukemia virus infection. / J.M. Miller, M.J. Van der Maaten // Vet. Microbiol. 1976. — V. 1. — P. 195 202.
  142. Miller, J.M. Use of glycoprotein in the immunodiffusion test for bovine leukemia virus antibodies. / J.M. Miller, M.J. Van der Maaten // Europ. J. Cancer. 1977. — V. 13. — P. 1369−1375.
  143. Miller, J.M. Studies of a glycoprotein associated with bovine leukemia virus. / J.M. Miller, M.J. Van der Maaten, M. Phillips // Comm. Europ. Commun. Luxembourg. 1977. — P. 69−82.
  144. Miller, L.D. Export testing for enzootic bovine leukosis. / L.D. Miller // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1980. — V. 177. — P. 620−622.
  145. Molteni, E. Molecular characterization of a variant of proviral bovine leukaemia virus (BLV). / E. Molteni, A. Agresti, R. Meneveri, A. Marozzi, M. Malcovati, L. Bonizzi, G. Poli, E. Genelli. // J. Vet. Med. B. 1996. -V. 43.-P. 201−211.
  146. Mullis, K.B. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: The polymerase chain reaction. / K.B. Mullis, F.A. Faloona, S.J. Scharf, R.K. Saiki, G.T. Horn, H.A. Erlich // Cold Spring Habor Symp. Quant. Biol. 1986. -V. 51.-P. 263−273.
  147. Mullis, K.B. Specific synthesis of DNA in vitro via a polymerasecatalysed chain reaction. / K.B. Mullis, F.A. Faloona // Methods Enzymol. 1987. -V. 155.-P. 335−350.
  148. Murtaugh, M.P. Detection of bovine leukemia virus in cattle by the polymerase chain reaction. / M.P. Murtaugh, G.F. Lin, D.L. Haggard, A.F. Weber, J.C. Meiske // J. Virol. Methods. 1991. — V. 33. — P. 73−85.
  149. Nagy, D.W. Use of a polymerase chain reaction assay to detect bovine leukosis virus in dairy cattle. / D.W. Nagy, J.W. Tyler, S.B. Kleiboeker, A. Stoker//J. Am. Vet. Med. Assoc. -2003. V. 222. — № 7. — P. 983−985.
  150. Naif, H.M. Bovine leukemia proviral DNA detection in cattle using the polymerase chain reaction., / H.M. Naif, R.B. Brandon, R.C.W. Daniel, M.F. Lavin // Vet. Microbiol. 1990.'- V. 25. — P. 117−129.
  151. Nguyen, V.K. Evaluation of an enzymo linked immunosorbent assay for detection of antibodies to bovine leukemia virus in serum and milk. / V.K. Nguyen, R.F. Maes // J. Clin. Microbiol. 1993. — V. 31. — P. 979−981.
  152. Okada, K. In situ hybridization for the demonstration of bovine leukemia virus transcripts in lymphosarcoma cells using biotinylated probes. / K. Okada, Y. Hosokawa, Y. Aida- K.-I. Ohshima // J. Vet. Med. 1991. — V. 38. — P. 707 713.
  153. Onuma, M. An ether-sensitive antigen associated with bovine leukemia virus infection / M. Onuma, C. Olson, L.E. Baumgartener, L.D. Pearson // J. Nat. Cancer Inst. 1975. — V. 54. — P. 1199- 1202.
  154. Onuma, M. Studies on the sporadic and enzootic forms of bovine leukosis. / M. Onuma, T. Honma, T. Mikami, S, Ichijo, T. Konishi // J. Сотр. Path. — 1979.-V. 89.-P. 159−167.
  155. Onuma, Mi. Integration of bovine leukemia virus DNA in the genomes of bovine lymphosarcoma cells. / M. Onuma, N. Sagata, K. Okada, Y. Ogawa, Y. Ikawa, K. Oshima // Microbiol. Immunol. 1982. — V. 26. — P. 813−820.
  156. Oroskar, A.A. Detection of immobilized amplicons by ELISA-like techniques. / A.A. Oroskar, S.E. Rasmussen, H.N. Rasmussen, S.R. Rasmussen, B.M. Sullivan, A. Johansson // Clin. Chem. 1996. -V. 42. -P. 1547−1555.
  157. Oroszlan, S. Primary structure analysis of the major internal protein p24 of human type С Tcell leukemia virus. / S. Oroszlan, M.G. Sarngadharan,
  158. T.D. Copeland, V.S. Kalranaraman, R.V. Gilden, R.C. Gallo // Proc. Natl. Acad. Sci. 1982. — V. 79. — P. 1291−1294.
  159. Paul, P. S. Evidence for the replication of bovine leukemia virus in В lymphocytes. / P. S. Paul, K.A. Pomeroy, D.W. Johnson, C.C. Muscoplat, P. S. Handwerger, F.F. Soper, D.K. Sorensen // Am. J. Vet. Res. 1977a. -V. 38.-P. 873−876.
  160. Paul, P. S. Detection of bovine leukemia virus in B-lymphocytes by the syncytia induction assay. / P. S. Paul, K.A. Pomeroy, A.E. Castro, D.W. Johnson, C.C. Muscoplat, D.K. Sorensen // J. Natl. Cancer Inst. -1977b. -V. 59.-P. 1269−1272.
  161. Poon, H. Detection of bovine leukemia virus RNA in serum using the polymerase chain reaction. / H. Poon, E. Jimenez, R.M. Jacobs, Z. Song, B. Jefferson//J. Virol. Methods. 1993. — V. 41. — P. 101−112.
  162. Popov, A. Detection of bovine leukemia provirus by polymerase chain-reaction followed by nonradioactive blot hybridization. / A. Popov, V.A. Adarichev, S.M. Kalachikov, E.S. Mishina, G.M. Dymshits // Voprosy Virusologii. 1993. — V. 38. — P. 113−116.
  163. Portetelle, D. Detection of complement-dependent lytic antibodies in sera from bovine leukemia virusinfected animals. / D. Portetelle, C. Bruck, A. Burny, D, Dekegel, M. Mammerickx, J. Urbain // Ann. Rech. Vet. 1978. -V. 9.-P. 667−674.
  164. Portetelle, D. Use of two monoclonal antibodies in an ELISA test for the detection of antibodies to bovine leukaemia virus envelope protein gp51. / D. Portetelle, M. Mammerickx, A. Burny // J. Virol. Methods. 1989c. — V. 23. -P. 211−222.
  165. Quirke, P. The molekular revolution coming your way soon. / P. Quirke // Gut. — 1992. -V. 33.-P. 1−3.
  166. Ressang, A.A. Studies of bovine leukosis VII: Further experience with an ELISA for the detecction of antibodies to bovine leukosis virus. / A.A. Ressang, A.L.J. Gielkens, N. Mastenbroek, J. Quak // Vet. Quarterly. -1981.-V. 3.-P. 31−33.
  167. Rice, N.R. The nucleotide sequence of the env gene and post-env region of bovine leukemia virus. / N.R. Rice, R.M. Stephens, D. Couez, J. Deschamps, R. Kettmann, A. Burny, R.V. Gilden // Virology. 1984. — V. 138. — P. 82−93.
  168. Rice, N.R. The gag and pol genes of bovine leukemia vims: nucleotide sequence and analysis. / N.R. Rice, R.M. Stephens, A. Burny, R.V. Gilden // Virology. 1985. — V. 142. — P. 357−377.
  169. Rola, M. The detection of bovine leukemia vims proviral DNA by PCR-ELISA. / M. Rola, J. Kuzmak // J. Virol. Methods. 2002. — V. 99. — P. 33−40.
  170. Rossler, H. Ein verbeserter Test zum Nachweis der reversen Transkriptase des Rinderleukosevirus. / H. Rossler, O. Werner, B. Brescher, W. Wittmann, P. Venker, S. Rosenthal // Arch, exper. Vet. med. 1980. — V. 34. — P. 595 615.
  171. Rosen, C.A. The 3. region of bovine leukemia virus genome encodes a transactivator protein. / C.A. Rosen, J.G. Sodroski, L. Willems, R. Kettmann, K. Camobell, R. Zaya, A. Burny, W.A. Haseltine // EMBO J. 1986. — V. 5. -P. 2585−2589.
  172. Rovnak, J. Assessment of Bovine Leukemia Virus Transcripts In Vivo. / J. Rovnak, J.W. Casey // J. Virol. 1999. — V. 73. № 10. — P. 8890−8897.
  173. Rulka, J. TI diagnostic values of 2 antigens in the immunodiffusion test -containing only bovine leukemia (BLV) and comprising BLV plusparainfluenza virus. / J. Rulka, B. Kozaczynska, M. Reichert, E. Buzala // Medycyna Wet. 1994a. — V. 50. — P. 144.
  174. Rulka, J. Immunogenicity of enzootic bovine leukemia virus in calves infected with FLK cells and lymphocytes from leucemic cattle. / J. Rulka, J. Stec, B. Kozaczynska, S. Klimentowski // Medycyna Wet. 1994b. -V. 50.-P. 79−81.
  175. Sagata, N. Molecular cloning of bovine leukemia virus DNA integrated into the bovine tumor cell genome. / N. Sagata, Y. Ogawa, J. Kawamura, M. Onuma, H. Izawa, Y. Ikawa // Gene. 1983. — V. 26. — P. 1−10.
  176. Saiki, R.K. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA-polymerase. / R.K. Saiki, D.H. Gelfand, S. Stoffel, S.J. Scharf, R. Higuchi, G.T. Horn, K.B. Mullis, H.A. Erlich // Science. 1988. -V. 239.-P. 487−491.
  177. Sambrook, J. Molekular cloning: A laboratory manual, 2nd ed. / J. Sambrook, E.F. Fritsch, T. Maniatis // Cold Spring Habor Laboratory Press: New York, 1989.
  178. Schramm, G. Fallstudie uber den Einflu. von Leukose und Leukosebekampfungsma. nahmen auf die Produktions- und Reproduktionsleistungen einer Milchviehherde in Cost Rica. / G. Schramm, A. Aragon // Tierarztl. Umschau. 1994. — V. 49. — P. 26−31.
  179. Schwartz, I. Pathobiology of bovine leukemia-virus. /1. Schwartz, D. Levy // Vet. Res. 1994. — V. 25. — P. 521−536.
  180. Stott, M.L. Integrated bovine leukosis proviral DNA in T helper and T cytotoxic/supressor lymphocytes. / M.L. Stott, M.C. Thurmond, StJ. Dunn, B.I. Osburn, J.L. Stott // J. Gen. Virol. 1991. — V. 72. — P. 307−315.
  181. Straub, O.C. Horizontal transmission studies on enzootic bovine leukosis. / O.C. Straub // Ann. Rech. Vet. 1978. — V. 9. — P. 809−813.
  182. Tajima, S. Complete bovine leukemia virus (BLV) provirus is conserved in BLV-infected cattle throughout the course of B-cell lymphosarcoma development. / S. Tajima, Y. Ikawa, Y. Aida. // Journal of Virology. -1998. -V. 72.-№ 9.-P. 7569−7576.
  183. Tajima, S. Mutant tax protein from bovine leukemia virus with enhanced ability to activate the expression of c-fos. / S. Tajima, Y. Aida // J. Virol. -2002. V. 76. — P. 2557−2562.
  184. Thurmond, M.C. Decay of colostral antibodies to bovine leukemia vims with application to detection of calfhood infection. / M.C. Thurmond, R.L. Carter, D.M. Puhr, M.J. Burridge // Am. J. Vet. Res. 1982. — V. 43. -P. 1152−1155.
  185. Uckert, W. Proteins of bovine leukemia virus: pi5 is the major phosphoprotein. / W. Uckert, V. Wunderlich // Acta biol. med. germ. 1979. -V. 38.-P. 35−42.
  186. Ulrich, R. Synthesis of Bovine Leukemia-Virus Antigens in Escherichia-Coli. / R. Ulrich, H. Siakkou, C. Platzer et al. // Arch, exper. Vet. med. -1990. V. 44, № 6. — P. 909−916.
  187. Ulrich, R. Expression of Bovine Leukemia-Virus Antigens Fused to Ms2 Polymerase in Escherichia-Coli. / R. Ulrich, S. Bahring, H. Siakkou, S. Rosenthal // Acta virologica. 1991. — V. 35, № 4. — P. 391−395.
  188. Walker, P.J. A protein immunoblot test for detection of bovine leukemia virus p24 antibody in cattle and experimentally infected sheep. / P.J. Walker, J.B. Molloy, B.J. Rodwell // J. Virol. Methods. 1987. — V. 15. — P. 201−211.
  189. Wang, H. Analysis of bovine leukemia virus gag membrane targeting and late domain function. / H. Wang, K.M. Norris, L.M. Mansky // J. Virol. -2002. V. 76. № 16. — P. 8485−8493.
  190. Weber, R. PCR in der Diagnostik. In: M. Wink und H. Wehrle (eds.): PCR im medizinischen and biologischen Labor. / R. Weber and H. Wehrle // GIT: Darmstadt, 1. Aufl. 1994. — P. 97−136.
  191. Willems, L. The bovine leukemia virus p34 is a transactivator protein. / L. Willems, A. Gegonne, G. Chen, A. Burny, R. Kettmann, J. Ghysdael // EMBO J. 1987. — V. 6. — P. 3385−3389.
  192. Willems, L. In vivo transfection of bovine leukemia provirus into sheep. / L. Willems, D. Portetelle, P. Kerkhofs, G. Chen, A. Burny, M. Mammerickx, R. Kettmann//Virology. 1992. — V. 189. — P. 775−777.
  193. Willems, L. In vivo infection of sheep by bovine leukemia-virus mutants. / L. Willems, R. Kettmann, F. Dequiedt, D. Portetelle, V. Voneche, I. Cornil, P. Kerkhofs, A. Burny, M. Mammerickx // J. Virol. 1993a. — V. 67. -P. 4078−4085.
  194. Willems, L. Bovine leukemia virus, an animal model for the study of intrastrain variability. / L. Willems, E. Thienpont, P. Kerkhofs, A. Burny, M. Mammerickx, R. Kettmann // J. Virol. 1993b. — V. 67. — P. 1086−1089.
  195. Willems, L. Attenuation of bovine leukemia-virus by deletion of R3 and G4 open reading frames. / L. Willems, P. Kerkhofs, F. Dequiedt, D. Portetelle // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1994. — V. 91.-P. 11 532−11 536.
  196. Williams, D.L. Enumeration of T and В lymphocytes in bovine leukemia virus infected cattle, using monoclonal antibodies. / D.L. Williams, G.F. Amborski, W.C. Davis // Am. J. Vet. Res. 1988a. — V. 49. — P. 10 981 103.
  197. Williams, D.L. Molecular studies of T-lymphocytes from cattle infected with bovine leukemia virus. / D.L. Williams, O. Barta, G. Amborski // Vet. Immunol. Immunopathol. 1988b. — V. 19. — P. 307−323.
  198. Wittmann, W. Leukosen der Wiederkauer. / W. Wittmann // Gustav Fischer Verlag, Jena Stuttgart. 1993. — P. 1−259.
  199. Wyatt, C.R. Persistent infection of rabbits with bovine leukemia virus associated with development of immune dysfunction. / C.R. Wyatt, D. Wingett,
  200. J.S. White, C.D. Buck, D. Knowles, R. Reeves, N.S. Magnuson // J. Virol. -1989.-V. 63.-P. 4498−4506.
  201. Yoshinaka, Y. Bovine leukemia virus postenvelope gene coded protein: Evidence for expression in natural infection. / Y. Yoshinaka, S. Oroszlan // Biochem. Biophys. Res. Com. 1985. — P. 131, 347−354.
  202. Yoshinaka, Y. Bovine leukemia virus protease: purification, chemical analysis and in vitro processing of gag precursor polyproteins. / Y. Yoshinaka, I. Katoh, T. Copeland, G.W. Smythers, S. Oroszlan // J. Virol. 1986. -V. 57.-P. 826−832.
  203. Zabransky, A. Study of the Proteinase from bovine leukemia virus. / A. Zabransky // Fol. biol. (Praha). 1993. — V. 41. — P. 201−212.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!