Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Механизмы резистентности к диметоату в двух географически удаленных популяциях обыкновенного паутинного клеща: Tetranychus urticae Koch

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Паутинные клещи являются наиболее опасными вредителями многих сельскохозяйственных культур. Одним из наиболее эффективных методов борьбы с ними является химический, основанный на использовании широкого ассортимента акарицидов. Однако паутинные клещи, как поливольтинные виды с высоким биотическим потенциалом быстро формируют резистентные популяции к применяемым препаратам. В настоящее время… Читать ещё >

Содержание

  • ПЕРЕЧЕНЬ СОКРАЩЕНИЙ, СИМВОЛОВ И СПЕЦИАЛЬНЫХ ТЕРМИНОВ, ИСПОЛЬЗУЕМЫХ В ДИССЕРТАЦИИ
  • Глава 1. МЕХАНИЗМЫ РЕЗИСТЕНТНОСТИ К ПЕСТИЦИДАМ И ЕЕ НАСЛЕДОВАНИЕ В ПОПУЛЯЦИЯХ РАСТИТЕЛЬНОЯДНЫХ КЛЕЩЕЙ (обзор литературы).В
    • 1. 1. Резистентность паутинных клещей к акарицидам
    • 1. 2. Закономерности развития резистентности в популяциях членистоногих
    • 1. 3. Генетические и физиолого-биохимические механизмы, определяющие резистентность клещей к пестицидам
    • 1. 4. Генетика резистентности паутинных клещей к пгестицидам
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Характеристика объекта исследований
    • 2. 2. Токсикологическое изучение резистентности
    • 2. 3. Методика генетического анализа наследования резистентности к диметоату у обыкновенного паутинного клеща
    • 2. 4. Методы изучения биохимических механизмов резистентности
  • Глава 3. ТОКСИКОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ РЕЗИСТЕНТНОСТИ К
  • ДИМЕТОАТУ ЛИНИЙ ОБЫКНОВЕННОГО ПАУТИННОГО КЛЕЩА
    • 3. 1. История совершенствования ассортимента акарицидов
    • 3. 2. Токсичность акарицидов из различных химических классов для отселек-тированных диметоатом линий обыкновенного паутинного клеща
    • 3. 3. Токсикологическая идентификация предполагаемого механизма резистентности к ФОС в отселектированных линиях вредителя
  • Глава 4. ГЕНЕТИЧЕСКИЕ МЕХАНИЗМЫ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОБЫКНОВЕННОГО ПАУТИННОГО КЛЕЩА К ДИМЕТОАТУ
    • 4. 1. Оценка генетической гетерогенности популяций клеща из Таджикистана по признаку резистентности к диметоату и выделение резистентных линий
    • 4. 2. Характер наследования признака резистентности в отселектированных диметоатом линиях обыкновенного паутинного клеща
    • 4. 3. Сходство наследственной детерминации резистентности в линиях клеща разного происхождения
  • Глава 5. БИОХИМИЧЕСКИЕ МЕХАНИЗМЫ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОБЫКНОВЕННОГО ПАУТИННОГО КЛЕЩА К ДИМЕТОАТУ
    • 5. 1. Роль эстераз как фактора резистентности членистоногих к ФОС
    • 5. 2. Сравнительная активность и спектры множественных молекулярных форм эстераз у паутинного клеща чувствительной и резистентных к диметоату линий
  • ВЫВОДЫ
  • РЕКОМЕНДАЦИИ

Механизмы резистентности к диметоату в двух географически удаленных популяциях обыкновенного паутинного клеща: Tetranychus urticae Koch (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Паутинные клещи являются наиболее опасными вредителями многих сельскохозяйственных культур. Одним из наиболее эффективных методов борьбы с ними является химический, основанный на использовании широкого ассортимента акарицидов. Однако паутинные клещи, как поливольтинные виды с высоким биотическим потенциалом быстро формируют резистентные популяции к применяемым препаратам. В настоящее время известны, например, популяции обыкновенного паутинного клеща T. urticae, устойчивые одновременно к 19 акарицидам из разных химических групп (Cranham, Helle, 1985). Однако наибольшее распространение в мире на различных сельскохозяйственных культурах получили резистентные к фосфорорганическим соединениям (ФОС) популяции клещей.

Для борьбы с резистентными к ФОС клещами в нашей стране были разработаны схемы чередования специфических акарицидов, которые позволяли успешно бороться с потерями, вызываемыми ими в защищенном грунте (Смирнова, 1991), в плодовых садах Крыма и Азербайджана (Галетенко, Ларищев, 1975; Пархоменко, 1975), на хлопчатнике в Узбекистане и Таджикистане (Манина, 1972; Смирнова и др., 1972), цитрусовых в Грузии (Новицкая, Абзианидзе, 1972; Абзианидзе, 1975) и других культурах.

Недостатком разработанных систем являлось то обстоятельство, что они были основаны либо на эмпирическом подборе токсикантов, либо строились, например, на хлопчатнике, с учетом данных генетического анализа устойчивых к ФОС линий обыкновенного паутинного клеща, выделенных из его московской популяции. Полученные результаты автоматически переносились на популяции, обитающие на хлопчатнике в разных зонах хлопкосеяния.

Информация по наследованию резистентности обыкновенного паутинного клеща к ФОС в географически удаленных популяциях весьма противоречива. Наиболее изучена детерминация признака резистентности, контролируемая доминантным или полудоминантным геном, включающая гены модификаторы (Schulten, 1968). Главный ген ответственен за синтез мутантной холинэстеразы (ХЭ) со сниженной чувствительностью к ФОС. Эта мутация обнаружена в голландских, немецких и новозеландских популяциях (Smissaert, 1964; Helle, 1965; Ong, Ballantyne, 1974; Oppenoorth, 1985; Richter, 1992).

Считается, что второй тип резистентности характеризуется повышенной способностью к гидролизу ФОС и также контролируется одним доминантным геном (Matsumura, Voss, 1964; Herne, Brown, 1969). Этот тип резистентности распространен в американских популяциях (Ballantyne, Harrison, 1967; Plapp, Wang, 1983).

В работах Зильберминц (1975, 1979, 1991) отмечается рецессивный характер наследования устойчивости к большинству применяемых ФОС и перекрестная резистентность к карбаматам.

Поскольку тактика применения акарицидов в борьбе с резистентными к ФОС популяциями клеща зависит от того, какими генетическими и биохимическими механизмами она контролируется, целесообразно изучение этих механизмов в конкретных популяциях к конкретным акарицидам. цель и задачи исследований. Целью работы явилось изучение генетических и биохимических механизмов резистентности обыкновенного паутинного клеща к диметоату на примере линий, выделенных из двух географически удаленных популяций (таджикской и московской).

В задачи исследований входило:

— выделение из таджикской популяции резистентной к диметоату линии;

— определение токсикологических характеристик чувствительной и резистентных к диметоату линий клеща;

— изучение генетической детерминации признака резистентности к диметоату в линиях вредителя;

— выявление биохимических механизмов, ответственных за проявление резистентности данного вида клеща к диметоату.

Исследования проводили в течение 1992 — 1995 гг. при прохождении аспирантской подготовки в лаборатории экотоксикологии ВИЗР. Полученные данные по перечисленным выше направлениям были положены в основу настоящей диссертации.

За руководство работой сердечно благодарю моих научных руководителей доктора сельскохозяйственных наук Г. И. Сухорученко и доктора биологических наук А. И. Анисимова. Большую признательность выражаю кандидату биологических наук О. В. Сундукову за постоянные консультации и помощь в проведении биохимических исследований.

выводы.

1. Популяция обыкновенного паутинного клеща Tetranychus urticae Koch из Пархар-ского района Таджикистана генетически гетерогенна по устойчивости к диметоа-ту. Она, в основном, представлена резистентными особями с незначительной примесью чувствительных клещей.

2. Высокорезистентные к диметоату линии обыкновенного паутинного клеща, отсе-лектированные из географически удаленных популяций (пархарской и московской) проявляют толерантность к фосфорорганическим (формотиону, малатиону) и серосодержащим (пропаргиту, пиридабену) соединениям, микробиологическому препарату абамектину и чувствительность к другим изученным акарицидам. В связи с этим галоиди оловосодержащие соединения, производные тиомочевины, глицинамидов, хиназолинов и пиретроиды могут быть использованы в борьбе с резистентностью вредителя к ФОС.

3. Резистентные к диметоату линии клеща, несмотря на тщательный непрерывный отбор дискриминационной концентрацией и длительное инбредное разведение, проявляют генетическую гетерогенность по признаку резистентности, в них периодически выщепляются чувствительные особи.

4. Резистентность к диметоату в обеих, независимо выделенных линиях обыкновенного паутинного клеща наследуется по доминантному типу и обусловлена изменением одного и того же гена (возможно, одного и того же блока генов, близко локализованных в одной хромосоме).

5. Наследование признака резистентности в обеих линиях клеща не соответствует менделевским закономерностям ни для одного доминантного гена, ни для двух независимых или комплементарно взаимодействующих доминантных генов.

6. Использование специфических ингибиторов эстераз — ТБТФ и БД-5 показало, что биохимическим механизмом, ответственным за резистентность обыкновенного паутинного клеща к диметоату, может быть повышенная активность эстераз.

7. Результаты электрофоретических и спектрофотометрических исследований подтвердили, что отбор резистентных к диметоату особей обыкновенного паутинного клеща связан с увеличением активности всего набора множественных молекулярных форм карбоксилэстераз и холинэстеразы.

8. Закономерности наследования признака резистентности к диметоату, его сохранение в выделенных линиях клеща, а также данные биохимических исследований соответствуют механизму амплификации гена (или блока генов), которая приводит к большему синтезу ферментов, ослабляющих токсическое воздействие акарицида.

9. Резистентность паутинного клеща к диметоату в исследованных линиях, независимо выделенных из разных географически удаленных популяций, обусловлена одинаковыми генетическими и биохимическими механизмами, что свидетельствует об однотипности ее возникновения.

РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Биохимические и генетические исследования резистентности тетраниховых клещей к акарицидам необходимо проводить на однородных по признаку резистентных линиях, полученных путем постоянной выбраковки выщепляющихся чувствительных особей при инбредном разведении и тестировании отдельных семей дискриминационными концентрациями токсикантов в ряду поколений.

2. Характер наследования резистентности тетраниховых клещей к акарицидам можно изучать и на генетически неоднородных линиях путем гибридологического анализа с индивидуальным (посемейным) тестированием при обязательном анализе третьего поколения.

3. Поскольку резистентность к фосфорорганическим препаратам моногенна (или обусловлена блоком сцепленных генов), в системах борьбы с высокорезистентными к этим токсикантам популяциями обыкновенного паутинного клеща, наряду с галоиди оловоорганическими препаратами можно использовать новые акарици-ды фосглицин, феназахин, акринарин, бифентрин, диафентиурон, к которым отсе-лектированные линии высоко чувствительны.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.В. Изучение развития устойчивости красного цитрусового волосатого клещика к препарату рогору. // Субтропические культуры. 1975. — № 2. -С.85 -87.
  2. А.Е. Химия и применение фосфорорганических соединений // Труды второй конференции. М., 1962. — 631с.
  3. .А. Пути развития химии фосфорорганических соединений // Химия и применение фосфорорганических соединений. Изд-во АН СССР. М., 1962. — С. 5 — 23.
  4. К.Б. Сравнительное изучение методов очистки и свойств холинэсте-раз. // Бюллетень ВОЗ. Международная конференция по новым инсектицидам, предназначенным для борьбы с переносчиками. Атланта, США, 1972. — Т.44, 4.1, № 1−3. — С. 81−90.
  5. М.Л. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. // Изд. АН Латв. ССР: Рига, 1959. — С.64 — 67.
  6. М.Л. Генетика устойчивости насекомых к инсектицидам. // Устойчивость насекомых к инсектицидам. М., 1960. — С.206 — 227.
  7. Н.Г. Изменение физиологической устойчивости кольчатого шелкопряда к действию ДДТ при многократном его применении // Устойчивость членистоногих к инсектоакарицидам. М., 1960. — С. 123 — 131.
  8. . В.А., Певзнер JI.3. Изоферменты нервной ткани // Успехи совр. биол. -1972. Т.74. — С. 13 — 17.
  9. . В.А., Певзнер JI.3. Нейрохимия изоферментов. Л.: Наука, 1975. — 123 с.
  10. И.В. Вредители хлопчатника «Хлопковое дело». 1924. — Т.85. — С.92 — 97.
  11. Т.Н., Кормилицин Б. И., Розенгарт В. И. и др. О некоторых свойствах ацетиленовых аминов потенциальных синергистов инсектоакарицидов // Экологические основы применения инсектоакарицидов: Сб. науч. тр. ВИЗР. — Л., 1991. — С.26 — 30.
  12. ВОЗ Резистентность к инсектицидам и борьба с переносчиками //13 докл. ком-та экспертов ВОЗ по инсектицидам: Серия техн. докл. № 265. Женева, 1964. — С.5 — 14.
  13. ВОЗ Резистентность переносчиков и резервуаров инфекции к пестицидам//10 докл. ком-та экспертов ВОЗ по биологии переносчиков и борьбе с ними: Серия техн. докл. № 737. Женева, 1988. -С.8, 32.
  14. А.Н. Устойчивость клеща Tetranychus telarius L., повреждающего тепличную культуру огурцов в Киевской области к фосфорорганическим акарицидам // Тез. докл. 3 совещ. по резистентности вредителей к хим. сред. защ. раст.-Л., 1972. -С.27−28.
  15. С.М. Красный плодовый клещ (Panonychus ulmi Koch.) и борьба с ним в садах Крыма // Резист. вредит, возбуд. болезн. к хим. средств, защ. раст. М., 1975.-С. 18- 19.
  16. С.М., Ларищев В. Г. Борьба с боярышниковым клещем (Tetranychus vienensis Zacher), устойчивым к ротору и кельтану // Резист. вредит, возбуд. болезн. к хим. средств, защ. раст. М., 1975. — С.20 — 21.
  17. Гар. К. А. Методы испытания токсичности и эффективности инсектицидов. М.: С-хлит., 1963.-288с.
  18. Н.С. О приобретении устойчивости постельных клопов к инсихлорану // Мед. параз. и параз. биол. 1952. — Вып.1. — С.54 — 56.
  19. В.Н. Механизмы взаимодействия пестицидов с липидным бислоем клеточных мембран // Успехи хим. 1993. — Т.62. — С.726 — 734.
  20. РФ. Методические рекомендации по оценке степени опасности пестицидов (гигиеническая классификация) // Гигиена и санитария. -1997. -№ 6.-С. 1−12.
  21. Де-Милло А. П. Еще один вид паутинных клещей на хлопчатнике в Средней Азии // Изв. отд. биол. наук АН Тадж. ССР. 1977. — С. З — 5.
  22. Де-Милло А. П. Эколого биологические особенности вредоносности паутинных клещей на хлопчатнике в Таджикистане П Труды ВНИИ защиты растений. — 1979. -№ 57. — С.55 — 66.
  23. И.В. К методике генетического анализа резистентности паутинных клещей к акарицидам // Тез. докл. 3 совещ. по резистентности вредителей к хим. сред. защ. раст. Л., 1972. — С.37 — 41.
  24. И.В. Генетические механизмы резистентности паутинных клещей к акарицидам // Материалы 7 съезда Всес. энтомол. общ. Л., 1974. — 4.2. — С.65 — 66.
  25. И.В. Популяционно-генетические изменения в процессе развития и утраты резистентности к пестицидам // 8-ой Межд. конгр. защ. раст. М., 1975. -Т.2.-С.91 -97.
  26. И.В. Корреляция устойчивости к пестицидам с биологическими показателями особи и селективная ценность мутаций резистентности: сб. ст. // Устойчивость вредителей к химическим средствам защиты растений. М., 1979. -С. 107- 116.
  27. И.В., Гуревич В. И. Начальный анализ генетической структуры в развитии устойчивости к пестицидам // 7 Межд. конгр. по защ. раст. Париж, 1970.-С.821−822.
  28. И.В., Журавлева Л. М. Резистентность обыкновенного паутинного клеща к акарицидам современного ассортимента // Агрохимия. 1988. — № 5. -С.111 — 116.
  29. И.В., Журавлева Л. М., Сухорученко Г. И. Определение резистентности вредителей сельскохозяйственных культур и зоофагов к пестицидам // Метод, указания ВАСХНИЛ. М., 1990. — С. 17 — 24.
  30. И.В., Петрушов А. З. Онтогенетические изменения реакции на воздействие пестицидов в чувствительных и устойчивых расах паутинного клеща Tetranychus urticae Koch. // Онтогенез. 1975. — Т.6. — С.602 — 607.
  31. И.В., Петрушов А. З. Биологические и токсикологические исследования популяции Tetranychus urticae (Acariformis, Tetranychidae, резистентностных к овицидам) // Зоол. ж. 1976. — Т.4. — С.982 — 988.
  32. И.В., Фадеев Ю. Н., Журавлева Л. М. О наследовании устойчивости к кельтану у паутинного клеща // С.-х. биол. 1968. — Т.З. — С. 125 — 132.
  33. И.В., Фадеев Ю. Н., Журавлева Л. М. Изучение генетической устойчивости паутинного клеща (Tetranychus urticae Koch.) к акарицидам // Генетика. 1969. — Т.5, № 12. — С.96 — 106.
  34. Т.Б., Рославцева С. А. О роли микросомальных энзимов в механизме резистентности комнатных мух к фталофосу и неопинамину // Химия в с.-х. — 1981. Т.19. — С.44 — 46.
  35. H.A., Корнилов В. Г. О привыкании паутинного клеща на хлопчатнике к меркаптофосу // Труды ВНИИ защ. раст. 1964. — Вып.20. — С. 12 — 17.
  36. E.H. Опытно-производственное применение фозалона и дидиала и санитарно-гигиенические оценки условий их применения // Тез. докл. гос. исп. инсектиц. и акариц. М., 1968. — С. З — 31.
  37. E.H. Итоги и перспективы применения препаратов внутрирастительного действия для защиты хлопчатника от сосущих вредителей // Хим. и применен, фосфорорг. соед. М., 1957. — С.459 — 463.
  38. E.H., Смирнова A.A., Стативкин В. Г. Препараты октаметил и меркапгофос для защиты хлопчатника от вредителей // Хлопководство. 1955. — № 10. — С.38 -40.
  39. В.Г., Зыкина A.B. Изменение чувствительности Tetranychus urticae Koch, к пестицидам в тепличных хозяйствах Ленинградской области // Тез. докл. 4 совещ. по резистентности вредителей к хим. сред. защ. раст. М., 1975. — С.39 — 40.
  40. Д. Генетика устойчивости насекомых к ядам // Приобретенная насекомыми устойчивость к ядам. -М.: Ин.лит., 1959. С. 153 — 178.
  41. H.H., Слынько Н. М. Применение токсикологических методов в изучении механизмов резистентности к инсектициду у насекомых // Агрохимия. 1988. -№ 8. -С. 130- 140.
  42. Е.М. Двигательная активность насекомых как фактор поведенческой устойчивости к инсектицидам // Исследования по генетике. Л., 1964а. — Т.2. -С.37−45.
  43. Е.М. Сохранность поведенческой резистентности к синтетическим инсектицидам без отбора // Вестн. Лен. универс. Л., 19 646. — № 4. — С. 130 — 135.
  44. Е.М. О роли поведения в формирован&trade- резистентности насекомых к инсектицидам // Тез. докл. X съезда Всес. физиол. общ. им. И. П. Павлова. Ереван, 1964 В. — Вып.2, Т.2.
  45. Е.М. О поведенческой резистентности к синтетическим инсектицидам: сб. тр. // Химия в естественных науках. Л, ЛГУ, 1965а.
  46. Е.М. Поведенческая резистентность насекомых к синтетическим инсектицидам, ее изменчивость и наследование: Автореф. дис.. канд. биол. наук. Л., 19 656. — 16с.
  47. Е.М. Характер генотипического определения уровня общей двигательной активности Drosophila melanogaster // Генетика. 1966. — № 5. — С.36 — 46.
  48. Л.И. Условия образования устойчивых к ядам популяций паутинного клеща // Тез. докл. совещ. по резистентности клещей к акарицидам Л., 1968. — С.29 — 30.
  49. JI.И. Развитие устойчивости к фосфорорганическим препаратам у паутинного клеща в Узбекистане И Тез. докл. 2 совещ. по резистентности вредителей к хим. сред. защ. раст. Л., 1970. — С.63 — 67.
  50. Л.И. К вопросу о преодалении развития ядоустойчивости паутинного клеща // Тез. докл. 3 совещ. по резистентности вредителей к хим. сред. защ. раст. -Л&bdquo- 1972. — С.52 54.
  51. Г. Диск Электрофорез // Акад. наук. — М., 1971. — С.60 — 69.
  52. Т.А., Шипов А. Э., Горбенко Э. Б. и др., Новый тип фосфорорганических соединений, действующих на вредных насекомых и клещей // Труды ВИЗР. Л., 1972. — Вып.35. — С.77 — 97.
  53. H.H., Новожилов К. В., Пылова Т. Н. Химические средства защиты растений (пестициды). Справочник. М.: Химия, 1980. — 287с.
  54. П.И. Дитиофос высокоэффективное средство борьбы с вредителями субтропических культур. // Хим. и примен. фосфорорг. соед. — М., 1962. — С.593 — 596.
  55. В.И., Стрункова З. И., Лившиц И. З. Определитель тетраниховых клещей фауны СССР и сопредельных стран. Душанбе: Дониш, 1987. — 222с.
  56. С.Н., Майзель Е. Б. Измерение каталитической активности холинэстераз методом Эллмана // Биохимические методы исследования в энтомологии. Сб. науч. тр. ВИЗР. Л., 1986. — С.63 — 67.
  57. Номенклатура ферментов. / М.: ВИНИТИ, 1979. 320 с.
  58. О Брайн Токсические эфиры кислот фосфора. М.: Мир, 1964. — 631с.
  59. A.A. Устойчивость боярышникового клеща (Tetranychus vienensis Zacher) к фосфоророганическим пестицидам в Азербайджане И Резист. вредит, и возбудит, болезней к хим. сред. защ. раст. М., 1975. — С.48 — 50.
  60. В.И. Обзор вредных насекомых Туркестана с указанием способов борьбы // Туркест. с.-х. 1911. — № 11. — С.20.
  61. С.Я. Растительноядные клещи в защищенном грунте // Защита растений. -1988. № 1.
  62. Рейдор К, Тейлор К. Изоферменты. М.: Мир, 1983. — 107с.
  63. С.А. Резистентность членистоногих к пестицидам // Агрохимия. 1983.- № 6. С. 104 — 108.
  64. С. А. Иванова Г. Б., Спирина Т. А. и др. Резистентность комнатных мух к гардоне // Химия в с.-х. 1979. — Т. 17, № 1. — С.52 — 55.
  65. П. В. Козлова E.H. Использование пестицидов в защите растений с сохранением полезных организмов // Тез. докл. СЭВ: Токсические исследования средств защиты, сохранения с.-х. животных и полезных природных организмов. Л., 1970. С. 48 — 52.
  66. И.Н., Новожилов К. В., Брик И. Л., Андреева H.A. Холинэстераза гороховой тли Acyrthosiphon pisi Kalt // Биохимия. 1972. — Т.37, № 3. — С.579 — 584.
  67. А. П. Митрофанов П.И. Фосфорорганические аэрозоли для борьбы с вредителями сельскохозяйственных растений // Химия и примен. фосфорорг. соед.- М., 1962. С. 597 — 600.
  68. JI.A., Зайнутдинова K.M. Устойчивость паутинного клеща как результат многократного применения акарицидов // Тез. докл. совещ. по резист. клещей к акариц. Л., 1968. — С. 19 — 20.
  69. A.A. Паутинный клещ на хлопчатнике // Труды ВИЗР. Л., 1966. Вып.28. С. 191 — 193.
  70. A.A. Состояние вопроса об устойчивости паутинного клеща на хлопчатнике к фосфорорганическим акарицидам // Тез. докл. совещ. по резистентности клещей к акарицидам Л., 1968. — С. З — 6.
  71. A.A. Современное состояние исследований резистентности вредных организмов к пестицидам // Резистентность вредителей с.-х. культур к пестицидам и ее преодаление. М., 1991. № 1. С. З — 7.
  72. A.A., Капитан А. И. Итоги гос. испыт. инсектиц. и акариц. в 1976 г. М., 1977. — С.39 — 44.
  73. A.A., Корнилов В. Г. Испытание акрекса, мильбекса, галекрона, неорона, хлорэтанола и коллоидной серы в различных схемах чередования в борьбе с растительноядными клещами // Итоги гос. испыт. инсектиц. и акариц. в 1971 г. -М., 19 726. С. 1 — 14.
  74. A.A., Сухорученко Г. И. Оценка неорона в качестве акарицида // Итоги гос. испыт. инсектиц. и акариц. в 1969 г. М., 1970. — С.95 — 99.
  75. И.Д. Применение программируемых калькуляторов «Электроника МК-61» для обработки результатов с.-х. экспериментов // С.-х. биология. 1987. — № 9. — С. 112 -120.
  76. Г. И., Зверев A.A., Капитан А. И. Реакция на применяемые соединения против хлопковой совки и паутинного клеща в Таджикистане // Тез. докл. 5 совещ. по резистентности вредителей к хим. сред. защ. раст. Л., 1980. -С.29 -31.
  77. Г. И., Ниязов О. Д., Алексеев Ю.А.Действие современных пестицидов на полезную и вредную энзимофауну хлопчатнока // Энтомол. обозр. 1977. — Т.56, Вып. 1. — С. З — 14.
  78. Л.А., Аншелевич Л. Л., Кириллова М. Н., Дроздова Т. Н. Инсектициды и акарициды// Итоги гос. испыт. инсектиц. и биопрепар. в 1980 г. М., 1981. — С.1 — 29.
  79. Л.А., Аншелевич Л. Л., Кириллова М. Н., Дроздова Т. Н. Инсектициды и акарициды // Итоги гос. испыт. биопрепар. и регуляторов роста растений в 1983 г. -М&bdquo- 1984. С. З — 19.
  80. И.А. Исследование биохимических механизмов резистентности с помощью синергистов // Сб. трудов ГАУ: Защита растений и окружающая среда. -СПб., 1995. -С.531.
  81. Дж. Изоферменты. М.: Мир, 1968. — 220с.
  82. Урбах. Биометрические методы (Статистическая обработка опытных данных в биологии, сельском хозяйстве и медицине. М.: Наука, 1964. С. 82 — 86.
  83. Ю.Б., Коничев A.C. Множественные формы ферментов насекомых и проблемы сельскохозяйственной энтомологии. М.: Наука, 1987. 166с.
  84. М.Б. Особенности действия современных химических и биологических средств защиты на обыкновенного паутинного клеща: Автореф. дис.. канд. биол. наук: 06.01.11. Л.: Пушкин, 1990. — 17 с.
  85. У.М., Гордон Г. Т. Устойчивость членистоногих к ядам // Совр. пробл. энтомол. 1960. — Т.1. — С. 105 — 139.
  86. М.П. Фосфамид // Итоги испыт. пестиц. в 1965 г. М., 1965. — № 6. — С.9 — 18.
  87. М.П., Ефимова Л. Ф. Результаты испытаний препарата М-81 в борьбе с сосущими вредителями плодовых и декоративных культур // Химия и примен. фосфорорг. соед. М.: Акад., 1962. — С.614 — 628.
  88. А.Э., Генкина Г. К., Жданова Г. В. и др. Исследование механизма действия тиофосфорорганических инсектицидов, содержащих ферменты N-карбалкоксили-рованных аминокислот // Биоорганическая химия. 1995. — Т.21, № 3. — С.235 — 239.
  89. В.И. Изоферменты//Успехи биол. химии. 1968. — Т.9. — С.55 — 64.
  90. Abdel-Fattah S.A., El-Bahrawi A., Dabbas A. Pesticidal effeciency of different insecticidal groups against cotton boll-landbouwwetensch // Rijksunniv. Gent, 1977. — Vol.42, N2. -P.937−942.
  91. Abo Elghar M.R., Bondreaus H.B. Comparative reaponses of five apecies of spider mites to four acoricides. // J. Econ. Entomol. 1958. — Vol.sp. N 4. — P.518 — 522.
  92. Abo Elghar M.R., M.M.Abdel-Hafez, M.A.El-Molla. Cholinesterase, aliestesterase and nonspecific esterase activity in relation to insecticide resistanse. // Z. Pflanzenkrankn und Pflanzenschutz. 1984. — Bd.91. — S.476 — 482.
  93. Agosin M. Pole of microsomal oxidations and insecticide degradation// Compreh. Insect. Physiol. Biochem. Pharm. N.Y.: Pergamon, 1985. — Vol.12. — P.647 — 712.
  94. Ahmad S. Larval and adult housefly carboxylesterase, isozymec composition and tessue pattern. // Insect. Biochem. 1976. — Vol.6. — P.541 — 547.
  95. Anber H.A.J., Opennoorth J. J.A. Mutant esterase degrading organophosphates in a resistant strain of the predacides mite Amblysuius Potentillae (Garman). // Pestic. Biochem. Phisiol. 1989. Vol.33. — P.283.
  96. Anber H.A.J., Overmeer W.P.J. Resistance to organophosphates and carbamates in the predacious mite Amblysuius Potentillae (Garman) due to insenvsitive acetylcholinesterase. // Pestic. Biochem. Phisiol. 1988. — Vol.31. — P.91.
  97. Andres L.A., Reynolds H.T. Laboratory determination of organophosphorus insecticide resistance in three species of Tetranichus on cotton. // J. Econ. Entomol. 1958. -Vol.51. -P.285 -287.
  98. Asperen K.Van. A stady of housefly esterases by means of a sensitive colorimetric method. // J. Insect. Physiol. 1962. Vol.8. — P.401 — 406.
  99. Asperen K.Van. Biochemistry and genetica et esterases in houseflies (Musca domestica) with special reference to the development of resistance to organophosphorous compounds. // Entomol. exp. et appl. 1964. — Vol.7. — P.205 — 215.
  100. Attia F.L., Hamilton I.T. Insecticidal resistance in Muzus persicae in Australia // J. Econ. Entomol. 1978. — Vol.71, N6. — P.851 — 853.
  101. Attia F.L., Shananan G.S., Ship E. Synergism studies with organophosphorus resistant strains of the Indian meal moth. // J. Econ. Entomol. 1980. — Vol.73. — P. 184 — 185.
  102. Augustinsson K.B. Multiple forms of esterase in vertebrate blood plasma. // Annals of New York Academy of Seines. 1961. — Vol.94. — P.844
  103. Ayad, Georghiou G.P. Resistance to organophosphates and carbametes in Anopheles albimanus based on redices sensitivity of acetylcholinesterase. // J. Econ. Entomol. -1975. Vol.68. — P.295−297.
  104. Babers F.H., Pratt I.I. Resistance of insects to insecticides: the metabolism of injected DDT // J. Econ. Entomol. 1953. — Vol.46, N6. -P.977 — 982.
  105. Ballantyne C. H, Harrison R.A. Genetic and biochemical comparisons of organophosphate resistance between strains of spider mites (Tetranychus species Acari). //Entomol.exp.et appl. 1967. -Vol.10. — P.231 — 239.
  106. Beeman R.W., Schmidt B.A. Biochemical and geneticas pects of malathion specific resistance in the indiamneal moth (Lepidoptera: Pyralidae). // J. Econ. Entomol. — 1982. -Vol.75.-P.945 — 949.
  107. Beers E.H., Dundley J.E., Riedl H. Resistance to abamectin and roversion to susceptibility to fenbutatin oxide in spider mite (Acari: Tetranychidae) populations in the Pacific Northwest // J. Econ. Entomol. 1998. — Vol.91, N2. -P.352 — 360.
  108. Brattsten L.B.A. Insecticide resistance: Research and managment. // Pesticid Science an international journal of research and technology on crop protection and pestcontrol. -1989. Vol.26. -P.329−332.
  109. Brattsten L.B.A., Holyoke C.W., Leeper J.R., RaffaK.F. Insecticide resistance: challenge to pest, managment and basic research. // Science. 1986. — Vol.231. — P. 1255 — 1260.
  110. Brodie B.B., Gilette J.R., Jagu B.N. Ensymalie metabolism of drugs and other foreign conponds. //Am. Row. Biochem. 1958. — Vol.27. — P.427 — 454.
  111. Brown A.W.A., Kimura T. DDT dehydrochlorinase in Aedes aegypti. // J. Econ. Entomol. — 1964. — Vol.57. — P.710 — 716.
  112. Bull D.L., Metabolism of di-system by insects, isolated cotton leaves and rat. // J. Econ. Entomol. 1965. — Vol.58. — P.249 — 254.
  113. Bull D.L. Factors that oniluence tobacco budworm resistance to organophosphorus insecticides. //Bull. Entomol. Sos. Amer. 1981. — Vol.27. P. 193 — 197.
  114. Bull D.L., Adkisson P.L. Absorption and metabolism of C14-labeled DDT by DDT-susceptible and DDT-resistant pink bullworm adults.// J. Econ. Entomol. 1963. -Vol.56. -P.641 -643.
  115. Bull D.L., Whitten C.J. Factors enflueneing organophosphorus insecticide resistance to tobacco budworms. // J.Agr. and Food chem. 1972. Vol.20. — P.561 — 564.
  116. Busvine J.R. Detection and measurement of insecticide resistance in arthropods of agricultural or veterinary impotance. // World. Rev. Pest. Contr. 1968a. — Vol.7.- P.27 — 41.
  117. Busvine J.R. Resistance to organophosphorus insecticides in insect // Model Rijksfas. land bouwwetemsh. Gent 1968b. — Vol.33, N3. — P.605 — 628.
  118. Busvine J.R., Shanahan G.I. The resistance spectrum of a dieldrin resistant strain of blowfly, Liciliacuprina (Wild)//Entomol. exp. ci appl. — 1961. — Vol.4. — P. l — 6.
  119. Casida J.E. Novel aspects of metabolism of pyrethroids. // Proc. Y-th Intern. Congr. Pestic. Chem. Kyoto, 1982. — Vol.2. — P. 187 — 192.
  120. Chadwick P.R., Invest J.F., Bowron M.I. An exemple of cross-resistance to pyrethroids in DDT resistant Aedes aegypty. // J. Pestic. Sci. — 1977. — Vol.8. — P.618 — 624.
  121. Chang S.C., Kearns C.W. Metabolism in vivo of CI4-labelled pyrethrin J and cenerin I by hoise flies with special reference to the synergistic mechanism. // J. Econ. Entomol. -1964. Vol.57. — P.397 — 404.
  122. Comins H.N. The development of Insecticide Resistance in the presence of migration. // J. Theor. Biol. 1977. — Vol.64. — P. 177 — 197.
  123. Comins H.N. Analytic methods for the management of pesticide resistance. // J. Theor. Biol. 1979. — Vol.77 .- P. 171 — 188.
  124. Cowan C.B., Parencia C.R., Davis Y.W. Field tests with some of the new insecticides for control of the bool worm and a spider mite. // J. Econ. Entomol. 1958. — Vol.51. -P.6456 — 6470.
  125. Cranham J.E. Resistance to organophosphates in red spider mite, Tetranychus urticae, from English hop gardens //Ann. Oppl. Biol. 1974. — Vol.78. — P.99 — 111.
  126. Cranham J.E., Helle W. Pesticide resistance in Tetranychidae. Spider mites Biol // Natur. Enemies. Amsterdam, 1985. — Vol. IB. — P.405 — 421.
  127. Dauterman W.C. Insect metabolism: Extramicrosomal // Comprch. Insect. Physiol. Biochem. Pharm. -N.Y.: Pergamon, 1985. Vol.12. — P.713 — 730
  128. Davidson G. Insecticide resistance in Anopheles sundaicus. // Nature. 1957. — Vol.180. -P. 1333 — 1335.
  129. Devonshire A. L. Studies of the acetylcholinesterase from houseflies (Musca domestica L.) resistant and susceptible to organophosphorus insecticides. // Biochem. J, 1975. -Vol.165.-P. 149−463
  130. Devonshire A.L., Moores G.D. A carboxylesterase with broad substrate specificity causes organophosphoras, carbamate and pyrethroid resistance in the peach-potato aphids (Muzus persicae) // Pestecide Bioch. and Phys. 1982. — Vol. 18. — P.235 — 246.
  131. Devonshire A. L., Sawacki R.M. The role of the carboxylesterase E4 in resistance of Muzus persicae. II Proc. XVIth Intern. Congr. Entomol. Kyoto. 1985. — P.395.
  132. Devonshire M. L., Searle L.M., Moores G.D. Quantitative and qualitative variation in the m PNA for carboxylesterase in insecticide susceptible and resistant Myzus persicae (Sulz). // Insect. Biochem. — 1986. — Vol. 16. — N 4.
  133. Dittrich V. Chlorphenamidine hegatively correlated with OP resistance in strain of two-spotted spider mite. // J. Econ. Entomol. 1969. — Vol.62. — P.44 — 46.
  134. Dittrich V., Ghobrial A. Introduction and monitoring of mite resistance in cotton. // Proc. IVth Intern. Congr. Acarology. Saalfelden. 1974. Budapest. — 1979. — P. 193 — 200.
  135. Dittrich V., Luetkemeier N., Voss G. OP resistance in Spodoptera littoralis: in heritance, larval and imagiiial expression, and conseguences for control. // J. Econ. Entomol. -1980. Vol.73. — P.356 — 362.
  136. Eldefrowi M.E., Hoskins W.M. Relation of the rate of penetration and metabolism to the toxicity of sevin to three insect species. // J. Econ. Entomol. -1961. Vol.54. — P.401 — 405.
  137. Eldefrowi M.E., Miskus R., Suther V. Methylenedioxyphenyl derivatives as synergists for carbamate insecticides on susceptible, DDT and parathion — resistant house flies. // J. Econ. Entomol. — 1960. — Vol.53. — P.231 — 234.
  138. Ellman G.L., Courtney K.D., Anders V., Fegtherstone R.M. A nev and raped colorimetric determination of acetylcholinesterase activity. // Biochem. Pharmacol. -1961,-Vol.7. -P.88- 95.
  139. Farmham A.W. Changes in cross-resistance patterns of houseflies selected with natural pyrethrins or resmethrin (5-benzyl-3furyl-methyl (+)-cis-trans chrisonthemate). // J. Pestic. Sci. 1971. — Vol.2. — P. 138 — 143.
  140. Farmham A.W. Genetics of resistance of puretroid selected houseflies, Musca domestica L. // J. Pestic. Sci. — 1973. -Vol.4. — P.513 — 520.
  141. Farmham A.W., Lord K.A., Sawicki R.M. Study of some of the mechanisms connected with resistance to diazinon resistant strain of houseflies. // J. Insect. Physiol. 1965. -Vol.11. — P. 1475 — 1488.
  142. Farmham A.W., Sawicki R.M. Development of resistance to pyrethroids in insect resistant to other insecticides. // J. Pestic. Sci. 1976. — Vol.7. — P.278 — 282.
  143. Ferrari J.A., Georghiou G.P. Effects of insecticidal selection and treatment on reproductive potential of resistant, susceptible and heterozygous strains of the southern house mosguito. // J. Econ. Entomol. 1981. — Vol.74. — P.323 — 327.
  144. Field L.M., Devonshire A.L., Insecticide resistance by gene amplification in Muzus persicae // Arhiv. Dev. Comb. Pestic. Resist. London, 1991. — P.240 — 250.
  145. Field L.M., Devonshire A.L., Ffrench-Constant R.H., Forde B.G. Changes in DNA methylation are associated with loss of insecticide resistance in the peach-potato aphid Muzus persicae (Sulz.) // FEBS Letters. 1988. — Vol.243, N2. — P.323 — 327.
  146. Field L.M., Williamson M.S., Moores G.D., Devonshire A.L. Choning and analysis of the esterase genes conferring insecticide resistance in the peach potato aphid, Muzus persicae (Sulz.) // Biochem. J. 1993. — Vol.294. — P.569 — 574.
  147. Fine B.C. Pattern of purethrinresistance in houseflies. // Nature. 1961. — Vol.191. -P.884 — 885.
  148. Forgash A. L, Cook B.I., Riley R.S. Mechanism of resistance in diuzinon selected multi resistant Musca domestica. // J. Econ. Entomol. — 1962. — Vol.55. — P.544 — 551.
  149. Fukuto T.R., Metcalf R.L., Vinton M.I., Roberts P.A. The synergism of substituted phenyl N-methylcarbamates by piperonyl butoxide. // J. Econ. Entomol. 1962. — Vol.55. — P.341 — 345.
  150. Georghiou G.P. Development and characterization of resistance to o-isopropoxyphenyl methylcarbamate in the mosguito Culex pipiens guinguefasciatus Say. // Nature. 1965. — Vol.207. — P.883 — 884.
  151. Georghiou G.P., Ariaratrmn V., Pasternak M.E., Lin S.C. Organophosphorus multiresistance in Culex pipiens guinguefasciatus in California. // J. Econ. Entomol. -1975. Vol.68. -P.461 -467.
  152. Georghiou G.P., Garber M.I. Studies on the inheritance of carbamate resistance in the house fly. /Musca domestica L./ II Bull. World Health. Organ. — 1965. — N 32, — P. 181 — 186.
  153. Georghiou G.P., Mellon R.B. Pesticide resistance in time and space. // Proc. US-Japan coop. Sci. Progr. Seminar. California, 1979, N. Y.: Plenum press, 1983. — P. l — 46.
  154. Georghiou G.P., Metcalf R.L. The absorbtion and metabolism of 3-isopropylphenyl-N-methylcarbamate selected strains of house flies. // J. Econ. Entomol. — 1961. — Vol.54. -P.231 -233.
  155. Georghiou G.P., Teylor Ch.E. Genetic and biogical influences in the evolution of insecticide resistance. II J. Econ. Entomol. 1977a. Vol.70. — P.319 — 323.
  156. Georghiou G.P., Teylor Ch.E. Operational influences in the evolution of insecticide resistance. IIS. Econ. Entomol. 1977b. Vol.70. — P.653 — 658.
  157. Ghabrial A., Dittrich V., Hafer M., Attian H., Voss G. Population analyses of resistance patterns in spider mites of the Tetranychus telarius complex (red and green forms). Occuring in Egypt. II J. Econ. Entomol. 1969. — N 62. — P. 1262 — 1268.
  158. Gil L., Fine B.C., Dinumarca M.L., Balozi J., Biykine J.R., Agosin M. Biochemical studies of insecticide resistance in M. domestica. // Entomol. exp. et appl. 1968. — Vol.11. -P. 15 -29.
  159. Graves J.B., Roussel J.S. Status of boll weevil resistance to insecticides in Louisiana during 1961 // J. Econ. Entomol. 1962. — Vol.55, N6. -P.938 — 940.
  160. Hama H. Resistance to insecticides due to reduced sensitivity of acetylcholinesterase // Pest, resistance to pesticides. Plenum press: N.Y., 1983. — P.299 — 365.
  161. Hartree E.F. Determination of protein: a modification of the lonwry method that gives a linear photometric response // Anal. Biochem. 1972. — Vol.48. — P.422 — 427.
  162. Helle W. Geneties of resistance to organophosphorous compauns and its relation to diapansein T. urticae Koch (Acari). // Tifdsohr. planten zickten. 1962a. — Vol.68. P. 155.
  163. Helle W. Ponylatic-genetsche. Bischowingen bei spintmiiten. // Mededel. Landbouw. Opz. Gent. 1962b. — Vol. XXVII.
  164. Helle W. Resistance inne Acarina. // Mites Advances Acarology. 1965. N 11. — P.71.
  165. Helle W., Overmeer W.P.J Variability in tetranychid mites // Annu. Rev. Entomol. -1973. Vol.19. — P.97 — 120.
  166. Heme O.N., Brown A.W.A. In heritunce and biochemistry of OP-resistance in a New York strain of the two spotted spider mitte. // J. Econ. Entomol. 1969. — Vol.62. — P.205 — 209.
  167. Hodgson E., Tate L.G., Kulkarni A.P., Plapp F.W. Microsomal cytochrome P-450- Characterization and possible rote in insecticide resistance in Musca domestica // J. Agr. Food Chem. 1974. — Vol.22. — P.360 — 366.
  168. Hollingwonth R.M. New insecticides new heodes of action: an overvionv abst Xllth Intern, Plant. // Protect, congress. — 1999. — P.61
  169. Hollingwonth R.M., Metcalf R.L., Fucuto T.R. Selectivity of sumithion compared with methyl parathion metabolism in susceptible and resistant houseflies. // J. Agr. and Food Chem. 1967. — Vol.15. — P.250 — 255.
  170. Hoyer R.F., Plapp F.W. A. Gross genetic analysis of two DDT-resistant house fly strains. // J. Econ. Entomol. 1966. — Vol.59. — P.495 — 501.
  171. Huffaker C.B., M. Vrue van de, Mc Murtry J.A. The ecology of tetranychid mites and their natural control // Annu. Rev. Entomol. 1969. — Vol.14. — P. 125 — 174.
  172. Ivy E.E. Control of insects and spider Mites by Translocated Compounds. // Doctoral thesis, A.M.College of Texas, College Station Tex. 1951. — P. 142.
  173. Ivy E.E., Scales A.L. Are cotton insects beciming resistant to insecticides. // J. Econ. Entomol. 1954. — Vol.47. — P.981 — 984.
  174. Iwata T., Hama H. Insentivity of cholinesterase in Nephotettix cincticeps resistant to carbamate and organophosporus insecticides. // J. Econ. Entomol. 1972. — Vol.65. — P.643 — 644.
  175. Karnovsky M.G. A «direct-coloring thiocholine method bor cholinesterases.» J. Hesto-Cytochin, 1964. — Vol.12. — P.219 — 221.
  176. Keena M.A., Granett J. Genetical analysis of resistance of pacific spider mites and fwospotied spides mites (Acari, Tetranychidae) // J. Econ. Entomol. 1990. — P.655 — 661.
  177. Keiding J.D. Development of resistance to pyrethroides in field populations of danish houseflies. // Pestic. Sci. 1976. — Vol.7. — P.283 — 291.
  178. Kerr R.W. Resistance to control chemicals in australian arthropodpest. // J. Austral. Entomol. Soc. 1977. — Vol.16. — P.327 — 334.
  179. Khan M.A.Q. Some biochemical characteristics of the microsomal cyclodiencepoxidase system and its inheritance in the housefly. // J. Econ. Entomol. 1969. — Vol.62. — P.388 — 392.
  180. Ku Te-Yen, Bishop J.L. Penetration, exeretion and metabolism of carbanyl in susceptible and resistant. German cockraaches. // J. Econ. Entomol. 1967. — Vol.60. — P. 1328 — 1332.
  181. Lewis G.A., Mengle D.C. Esterase activity and associated insecticide resistance in the damson-hop aphid, Phorodon humuli. Schrank. (Hemiptera: Aphididae) // Bull. Entomol. Rees. 1984. — Vol.74. — P.227 — 238.
  182. Lewis J.B. Detoxification of diasinon by sub-celluler fractions of diasinon resistance and susceptible houseflies. //Nature. 1969. Vol.224. — P.917 — 918.
  183. Lewis J.B., Sawicky R.M. Characterization of the resistance mechanisms to diazinon, parathion and diazinon in the organophosporus resistant SKA strain of houseflies. (Musca domestica L.) // Pestic. Biochem. and Physiol. 1971. — Vol.1. — P.275 — 285.
  184. Lin M.Y., Treng I.I., Sun C.W. Diamondback moth resistance to several synthetic pyrethroids. // J. Econ. Entomol. 1981. Vol.174. — P.393 — 396.
  185. Lloyd C, I., Rudzkowski G.E. The cross-resistance to purethrins and eight synthetic pyrethroids of an organophosporus resistant strain of the rust-red flour beetle Tribolium constaneum. /Herbst./ // J. Pestic. Sci. 1980. — Vol.11. — P.331 — 340.
  186. Mac Donald R.S., Solomon K.R., Surgeoner G.A., Harris Ch.R. Laboratory studies on the mechanisms of resistance to permethrin in a field-selected strain of house flies. // Pestic. Sci. 1985. Vol.16. — P. 10 — 16.
  187. Matsumura F., Brown A.W.A. Biochemistry of malathion resistance in Culex tarsales. // J. Econ. Entomol. 1961. — Vol.54. — P. 1176 — 1185.
  188. Matsumura F., Brown A.W.A. Studies on organophosporus-tolerance in Aedes algypti. // Mosg. News. 1963. -N 23. — P.26 — 31.
  189. Matsumura F., Voss G. Mechanism of malathion and parathion resistance in the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae. // J. Econ. Entomol. 1964. — Vol.57. -P.911 — 917.
  190. Mengle D.C., O’Brien R.D. The spontanious and induced recovery of flybrain Cholinesterase ofter inhibition by organophosphates. // Biochem. J. 1960. — N.75. — P.201.
  191. Metealf R.L. Organic Insecticides chemistry and Mode of action Interscince Fublischers Inc. New York, N. Y., 1955. P.392
  192. Metcalf R.L. Mode of action of insecticide synergiste // Annu. Rev. Entomol. 1967. -Vol.12. -P.229−256.
  193. Metcalf R.L. Changing role of insecticides in crop protectien. // Annu. Rev. Entomol. -1980.-Vol.25.-P.219−256.
  194. Metcalf R.L. Implications and prognosis of resistance insecticides. // Pest resistance to pesticides: Proc. US-Japan Coop. Sei. Progr. Seminar. California, 1979. N.Y.: Plenum Press. 1983.-P.703 -733.
  195. Metcalf R.L., Osman M.F., Fukuto T.R. Metabolism of C14-labeled carbamate insecticides to C1402 in the housefly. // J. Econ. Entomol. 1967. — Vol.60. — P.445 — 450.
  196. Miller S., Perry A.S. Insect metabolism of insecticides: separation and purification of DDT-degrading enzymes from the human body louse. II J. Agr. and Food Chem. 1964. -Vol.12. — P. 167- 169.
  197. Miller T.A., Salgado V.L., Irving S.N. The Kdr factor in pyrethroid resistance. // Pest Resistance to pesticides: Proc. US-Japan Coop. Sei. Progr. Seminar. California, 1979. N.Y.: Plenum Press, 1983. — P.353 — 365.
  198. Mistric W.J. Control of spider mites on cotton. // J. Econ. Entomol. 1964. — Vol.57.-P.855 — 857.
  199. Muggleton J. Relative fitness of malathion resistant phenotypes of Oryzaephilus surinamensis L. /Coleoptera: Silvanidae/. //J. App. Ecol. — 1983. — Vol.20. — P.245 — 254.
  200. Ogita Z. A new type insecticide. // Nature. 1958. — Vol.128.- P. 1529 — 1530.
  201. Ogita Z. Genetical relationship beween ali-esterase activity and insecticide resistance in Drosophila melanogaster // Botyu-Kagaku. — 1961. — Vol. 26, N3. — P.93 — 97.
  202. Ong S.H. Ballantyne G.H. Acaricidae resistance and genetic affiniteis of some twospotted spider mite populations in New Zealand. // N.Y. J. Zool. 1974. — N 4.-P.523 — 530.
  203. Oppenoorth F.J. Biochemistry of insecticide resistance // Pestic. Biochem. and Physiol. -1984. Vol.22. — P. 187- 193.
  204. Oppenoorth F.J. Biochemistry and genetics of insecticide resistance. // Compen. Insect. Physiol. Biochem. Pharm. 1985. — Vol.12. — P.731 — 774.
  205. Oppenoorth F.J., Houx N.W.H. DDT resistance in the housefly caused by microsomol degradation. // Entomol. exp. et appl. 1968. — Vol. 11. — P.81 — 93.
  206. Oppenoorth F.J., Kupes V., El-Bacher S., HouxN.W.H., Voerman S. Glutatheone-dependent degradation of parathion and its significans for resistance in the housefly. // Pestic. Biochem. and Physiol. 1972. — Vol.2.- P.262 — 269.
  207. Ozaki K., Kassai T. Cross resistance pattern in malathion and fenitrothion resistant strains of the rice brown planthopper, Nilaparvata lugens Stal. // J. Pestic. Sci. — 1984. -Vol.9. -P.151 — 154.
  208. Pate T.L., Vinson S.B. Evidence of a nonspecific type ressistance to insecticides by a resistant strain of the tobacco budworm. // J. Econ. Entomol. 1968. — Vol.61.- P. 1135 — 1137.
  209. Perry A. S. Insecticide resistance in insect and its ecological and economic thrust // Suw. Toxic. Environ. N.Y., 1974. — P.399 — 445.
  210. Perry A.S. Hoskins W.T. Synergistic action with DDT toward resistant house flies // J. Econ. Entomol. 1951. — Vol.44, N6. — P.839 — 850(a).
  211. Perry A.S., Sactor B. Detoxification of DDT in relation to cytochrome oxidase activity in resistant and susceptible houseflies. // Ann. Entomol. Sos. Amer. 1955. — Vol.48. -P.329 — 333.
  212. Pillani M.K.K., Brown A.W.A. Physiological and genetical studies on resistance to DDT substitutes in Aedes algyptu. // J. Econ. Entomol. 1965. — Vol.58. — P.255 — 256.
  213. Plapp F. W. On the modular byology of insecticide resistance. // Biochemical toxicology of insecticides. N.Y. London- Acad, press. — 1970. — P. 179 — 192.
  214. Plapp F.W. Chlordimeform as a synergist for insecticides against the tobacco budworm. // J. Econ. Entomol. 1976a. — Vol.69. — P.91 — 92.
  215. Plapp F.W. Biochemical genetics of insecticides resistance // Annu. Rev. Entomol. -1976b. Vol.21. — P. 179−197.
  216. Plapp F.W. Ways and means of avoiding or ameliorating resistance to insecticides. // Proc. IXth Intern. Congr. Plant Protect. Washington. 1979. — Vol. 1. — P.244−249.
  217. Plapp F.W., Casida J.S. Genetic control of house fly NaDPH-dependent oxidases: relation of insecticide chemical metabolism and resistance. II J. Econ. Entomol. 1969. -Vol.62. — P. 1174- 1179.
  218. Plapp F.W., Hoyer R.F. Insecticidae resistance in the housefly- decreased rate of absorption as the mechanism of action of a genethatacts as an intensifier of resistance. // J. Econ. Entomol. 1968. Vol.61. — P. 1298 — 1303.
  219. Plapp F.W., Vinson S.B. Juvenile hormon analogs: toxicity and cross-resistant in the housefly. // Pestic. Biochem. and Physiol. 1973. Vol.3. — P.131 — 136.
  220. Plapp F.W., Wang T.C. Genetic origins of insecticide resistance. // Pest resistance to pesticides: Proc. US-Japan Coop. Sei. Progr. Seminar. California, 1979. N.Y.: Plenum Press, 1983. P.47 — 70.
  221. Prester T.M., Georghiou G.P. Induction of hoigh resistence to permetrin in Culex Pipiens guinguefasciatus. // J. Econ. Entomol. 1978. Vol.71. — P. 197 — 200.
  222. Qiao Ch-L., Raymond M. The some esterase B1 haplotype is amplified in insecticide resistant mosquitoes of the Culex pipiens comlex from the American and China // Heredity. — 1995. — Vol.74. — P.339 — 345.
  223. Reed W.T. Heliothis larvae: variations in mixed function oxidase activity as related to inseticide tolerance // J. Econ. Entomol. 1974. — Vol.67, N2. — P. 105 — 152.
  224. Riskallah M.R. Reduced sensitu of cholinesterase as a faktor of resistance in leptophos selekcted strain of the A. Aegypti an cotton leafworm. // J. Environ. Sci. and Health. -1980. Vol. 15, № 2 — P. 181 — 182.
  225. Riskallah M.R., Abd-Elghafar S.F., Abo-Elghar M.R., Nassar M.E. Development of resistance and cross-resistance in fenvalerate and deltamethrin selected strains of spodoptera littoralis (Boisd) // Pectic. Sci. 1983. -Vol. 14, N5. — P.508 — 512.
  226. Roush R.T. Selection for insecticides resistance in Metaseiulus occidentalis (Nesbitt) (Acarina: Phytoseiidae): genetic impro vement of a spider mite predotor. // Ph. D. dissertation Universits of California, Berkelery. 1979. — 87p.
  227. Roush R.T. Ecological genetics of insecticide and acaricide resistance // Annu. Rev. Entomol. 1987. — Vol.32. — P.360 — 381.
  228. Roush R.T. Designing resistance management programs: How can you choose? // Pesticide science an international journal of research and technology on crop protection and pest control. Pestic. Sci. 1989 — Vol.26. — P.423 — 441.
  229. Roush R.T., Placock W.L., Hoy M.A. Dimethoate resistant spider mite predator survives field tests. // Calif. Agric. — 1980. Vol.34. — P. 12 — 13.
  230. Roush R.T., Plapp F.W. Biochemical genetics of resistance to aryl carbamate insecticides in the pridaceous mite, Metaseiulus occidentalis. // J. Econ. Entomol. 1982. — Vol.75. -P.304−307.
  231. Roux E.J., Marrison F.D. The absorption, destribution and sits of action of DDT in DDT-resistant and DDt-susceptible houseflies using cardon 14 labelled DDT. // J. Econ. Entomol. 1954. — Vol.47. — P. 1058 — 1066.
  232. Sawicki R.M., Devonshire A.L., Payni Roger, Petzing Stephanie. Stability of insecticide resistance in the Peach-Potato Aphid, Myzns perscae (Sulzer) // Pestic. Sci. 1981. -Vol.11, N1. -P.33 -42.
  233. Sawicki R.M., Devonshire A.L. Rice A.D. Detection of resistance to insecticides in Myzus perscae Sulz. // Med. Fac. Landb. Rijksh. Gent. 1977. — Vol.42, N2. — P. 1403 -1409.
  234. Schafer J.A., Terriere L.C. Enzymatic and phisical factors in heusefly resistance to naphtnolene. // J. Econ. Entomol. 1970. — Vol.63. — P.787 — 792.
  235. Schulten G.G.M. Genties of organophosphate resistance in the two-spotted spider mite (T. urticae Koch) commerication N57 of the Royal Tropical Instituts, Amsterdam.1968. -P.57 -65.
  236. Schulten G.G.M., Klashorst G., Russel V.M. Resistance of Phytoseulus persimilis an to some insecticides. // L. Angu. Entomol. 1976 — 80. — Vol.4−8. — P.337 — 341.
  237. Scott I.G., Les Susanna S.T., Shono Tos. Biochemical changes in the cytochrome P450 monooxigenases of seven insecticide resistant house fly. (Musca domestica L.). // Pestic. Biochem. and Physiol. 1990. — Vol.36. — P. 127 — 134.
  238. Shrivastova S.P., Georghiou G.P., Metcalf R.L., Fukuto T.R. Carbamate resistance in mosguitoes- the metabolism of propoxur by susceptible and resistante larvae of Culex pipiens fatigans. // Bull. World Heaeth Organ. 1970. — N 42. — P.931 — 940.
  239. Shrivastova S.P., Tsucamoto M., Casida J.E. Oxidative metabolism of C14-labeled Baygon by living houseflies and by housefly enzyme preparations. // J. Econ. Entomol.1969. Vol.62. — P.483 — 498.
  240. Smissaert H.R. Cholinesterase inhibition in spider mites susceptible and resistant to organophosphate. // Science. 1964. Vol.143. — P. 129 — 131.
  241. Sparks T.C., Hammock B.D. Insect growth regulators: resistance and the future. // Pest, resistance to pesticides: Proc. US-Japan Coop. Sci. Progr. Seminar. California, 1979. N.Y.: Plenum Press, 1983. P.615 — 668.
  242. Sparks T.C., Lockwood I. A., Byford R. L et all. The role of Behavior in insecticide resistance // Pestic. Sci. 1989. Vol.26. — P.383 — 399.
  243. Stennburg J., Kearns A.W. Degradation of DDT by resistans and susceptible strains of house flies. // Ann. Entomol. Sos. Amer. 1950. — Vol.43. — P.444 — 458.
  244. Sula J., Weyda F. Esterase polymophism in several populations of the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch. // Experiment. Birkhauser CH-4010, Basel, Switzerland, 1983. -Vol.39. -P.78- 79.
  245. Sundukov O.V., Schachmatova E.I., Parnova R.G., Natochin Y.V. Relationships between the lose of water and ions in insects due to the action of insecticides. / Tagungbericht. Insecticides mechanisms of Action and Resistance. 1989. — Vol.31. -P.274.
  246. Sutherst R.W., Comins H.N. The management of acaricide ressistance in the cattle tick, Boophilus microplus /Canestrine/ (Acari: Ixodidae), in Australia. // Bull. Entomol. Res. -1979. Vol.69. -P.519−525.
  247. Tabashnik B.E., Croft B.A. Managing pesticide resistance in crop-arthropod complexes: interactions between biological and operational factors. // Environ Entomol. 1982. -Vol.11. — P. 1137- 1144.
  248. Tahori A.S., Hoskins W.M. The absorbtion, distribution, metabolism of DDT in DDT-resistant houseflies. // J. Econ. Entomol. 1953. — Vol.46. — P.302 — 306.
  249. Teylor Ch.E., Georghiou G.P. Suppression of insecticide resistance by alteration of genedominance and migration. // J. Econ. Entomol. 1979. — Vol.72. — P. 105 — 109.
  250. Teylor Ch.E., Georghiou G.P. Influence of pesticide persistance in evolution of resistance. //Environ. Entomol. 1982. — Vol.11. — P.746 — 750.
  251. Teylor Ch.E., Headleu J.C. Insecticidae resistance and the evoluation of control strategies and insect population. //J. Canad. Entomol. 1975. — Vol.107. — P.237 — 242.
  252. Thompson M.E., Johnston A.M. Total sulphydryl content of embryos of arsenic- resistant and -sensitive strains of the blue tick, Boophilus decoloratus // Nature. 1958. — N181(4609). — P.647−648.
  253. Tsicamoto M., Casida J.E. Metabolism of methylcarbamate insecticides by the NaDPH 42 0-requiring ensyme system from houseflies. // Nature. 1967. — Vol.213.-P.49−51.
  254. Tsicamoto M., Narahashi T., Yamasaki T. Genetic control of low nerve sentivity to DDT in insecticide-resistent houseflies. //Botyu-Kagaki. 1965. — Vol.30. — P. 128 — 132.
  255. Tsicamoto M., Suzuki R. Genetic analyses of diazinon-resistance in the house fly. // Botyu-Kagaki. 1966. — Vol.31. — P. l — 14.
  256. Wachendorff U., Klingaut F. Esterasetest zur Diagnose von Insectizidresistenz bei Aphiden. // Z. Pflanzenkr. und Pflanzensch. 1978. — N.3 — 4.
  257. Wharton R.H., Roulston W.J. Resistance of ticks to chemicals. //Annu. Rev. Entomol. -1970. Vol.15. -P.381 -404.
  258. Whitten C.I. Inheritance of metyl parathion resistance in tobacco budworm larvae. // J. Econ. Entomol. 1978. — Vol.71. — P.971 — 974.
  259. Whitten C.I., Bull D.L. Resistance to organophosphorus insecticides in tobacco budworm. // J. Econ. Entomol. 1970. — Vol.63. — P. 1492 — 1495.
  260. Whitten C.I., Bull D.L. Metabolism and absorption of metyl parathion by tobacco b udworm s resistant or susceptible tp organophosphorus insecticide. // Pestic. Biochem. and Physiol. 1978. — Vol.9. — P. 196 — 202.
  261. Wilkinson Ch.F. Role of mixed-function oxidases in insekticide resistance. // Pest, resistance to pesticides. Prog. US Japan Coop. Sci. Progr. Seminar, California, 1979, N.Y.: Plenum Press. 1983. — P. 175 — 205.
  262. Wilkinson Ch.F. Biochemical nature of pesticide resistance in insects // Agric. Chem. Future. USA, Beltsville: Rowman, 1985. — Vol.8. — P.311 — 325.
  263. Whitten M.J., Foster G.G., Arnold I.T., Conowalow C. The Australian sheep blowfly Lucila cuprina 11 Handbook of genetics. N.Y.: Plenum Press. 1975. Vol.3. — P.401 -418.
  264. Wolfenbarger D.A., Harding I.A., Davis I.W. Isomers of (3-phenoxyphenyl (-metyI) +(cis-trans-3-(2,2-dichlorethenyl) 2,2-cyclopropanecarboxylate against boll weevil and tobacco budworm. // J. Econ. Entomol. 1975. — Vol.70. — P.225 — 226.
Заполнить форму текущей работой