Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Разработка средств молекулярно-генетической идентификации вируса геморрагической болезни кроликов

Диссертация: Разработка средств молекулярно-генетической идентификации вируса геморрагической болезни кроликов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Методические рекомендации по выявлению РНК возбудителя вирусной геморрагической болезни кроликов методом полимеразной цепной реакции", «Методические рекомендации по выявлению РНК вируса геморрагической болезни кроликов методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени», которые утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M., предлагаются для… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы
    • 1. 2. Степень разработанности проблемы. ю
    • 1. 3. Цели и задачи исследования. Ю
    • 1. 4. Научная новизна исследований
    • 1. 5. Практическая значимость работы
    • 1. 6. Соответствие диссертации паспорту научной специальности
    • 1. 7. Апробация результатов работы
    • 1. 8. Публикации научных исследований
    • 1. 9. Основные положения, выносимые на защиту
    • 1. 10. Структура и объем диссертации
    • 1. 11. Личный вклад соискателя
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Распространение вирусной геморрагической болезни кроликов в мире. Эпизоотическая ситуация
    • 2. 2. Характеристика вируса геморрагической болезни кроликов
      • 2. 2. 1. Таксономия вируса геморрагической болезни кроликов
      • 2. 2. 2. Физико-химические характеристики вируса геморрагической болезни кроликов
      • 2. 2. 3. Функциональная организация генома вируса геморрагической болезни кроликов
      • 2. 2. 4. Биологические свойства вируса геморрагической болезни кроликов
    • 2. 3. Цикл репродукции вируса геморрагической болезни кроликов
    • 2. 4. Клинические признаки и гистопатологические изменения
    • 2. 5. Пути передачи вирусной геморрагической болезни кроликов
    • 2. 6. Профилактика, вакцинация и лечение
    • 2. 7. Диагностика
      • 2. 7. 1. Эпизоотологическая и клиническая диагностика
      • 2. 7. 2. Патоморфологическая диагностика
      • 2. 7. 3. Лабораторная диагностика
    • 2. 8. Генетическое разнообразие и эволюция калицивирусов кроликов
      • 2. 8. 1. Патогенные калицивирусы кроликов
      • 2. 8. 2. Непатогенные калицивирусы кроликов

Разработка средств молекулярно-генетической идентификации вируса геморрагической болезни кроликов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Вирусная геморрагическая болезнь кроликов (ВГБК) остропротекающая высококонтагиозная болезнь, характеризующаяся явлениями геморрагического диатеза во всех органах, в особенности в легких и печени. Заболеваемость при ВГБК может достигать 70−80%, а летальность -90−100% [12].

Возбудителем заболевания является вирус семейства СаНстпс1ае рода Lagovirus. Геном вируса геморрагической болезни кроликов (ГБК) представлен линейной одноцепочечной инфекционной плюс-РНК [153].

Большой экономический ущерб от ВГБК обусловлен массовой и внезапной гибелью почти всего поголовья невакцинированных животных. В ряде европейских стран и в Австралии вирус ГБК постоянно циркулирует в популяциях диких кроликов, в связи с чем полная ликвидация болезни в настоящее время невозможна.

На территорию нашей страны ВГБК была занесена в 1987 г. Благодаря разработке отечественными исследователями вакцинных препаратов [25] и проведению массовых профилактических мероприятий, к 2000 г. заболевание удалось практически полностью ликвидировать [12]. Однако за последние несколько лет число вспышек болезни в Российской Федерации резко увеличилось. С 2007 по 2012 гг. вспышки ВГБК были отмечены в 30 регионах России.

Поскольку клинические признаки болезни, как правило, отсутствуют, а патологоанатомическая картина зачастую бывает нечеткой, лабораторные методы играют основную роль при постановке диагноза. Необходимость разработки тест-систем на основе метода ПЦР для диагностики ВГБК связана, прежде всего, с ограниченностью применения серологических тестов при различных формах течения болезни. Несмотря на сложную эпизоотическую обстановку и большой экономический ущерб от данного заболевания, в России не разработано средств генодиагностики ВГБК.

Для определения эффективности диагностических тест-систем и вакцинных препаратов, применяемых на территории России, представляется актуальным изучение генетического разнообразия и биологических свойств изолятов вируса ГБК, выделенных в нашей стране. Определение молекулярно-генетических характеристик полевых изолятов вируса ГБК, выделенных при вспышках болезни в Российской Федерации, является необходимым аспектом в изучении молекулярной эпизоотологии и эволюции вируса.

6. выводы.

1. Разработана «Тест-система для выявления генома вируса геморрагической болезни кроликов методом ОТ-ПЦР» с аналитической о чувствительностью 3,16−31,62 ИЕ/см .

2. Разработан внутренний контроль выделения РНК для диагностических тест-систем на основе ОТ-ПЦР в режиме реального времени.

3. Создана «Тест-система для выявления генома вируса геморрагической болезни кроликов (ГБК) методом ОТ-ПЦР в режиме о реального времени», позволяющая выявлять 0,32 ИЕ/см или (13+5) копий РНК вируса геморрагической болезни кроликов.

4. Показана возможность использования разработанных тест-систем для лабораторной диагностики вирусной геморрагической болезни кроликов.

5. Изучены биологические и молекулярно-генетические свойства девяти изолятов вируса геморрагической болезни кроликов, выделенных в Российской Федерации с 2003 по 2012 гг. На основе данных нуклеотидного секвенирования полноразмерного гена УР60 установлена высокая степень гомологии (98,6−100%) аминокислотных последовательностей исследованных изолятов и определены их филогенетические отношения.

6. Анализ нуклеотидных последовательностей гена УР60 показал, что производственный штамм Воронежский-87 относится к «классическому» подтипу вируса геморрагической болезни кроликов. Штаммы Белгородский-03, Манихино-09 и все исследованные изоляты относятся к подтипу «ЯНОУа». Степень гомологии аминокислотных последовательностей штамма Воронежский-87 и штаммов и изолятов, выделенных на территории России с 2003 по 2012 гг., составляет 95,2−95,8%.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Рекомендуется включить в схему лабораторной диагностики ВГБК «Тест-систему для выявления генома вируса геморрагической болезни кроликов методом ОТ-ПЦР» и «Тест-систему для выявления генома вируса геморрагической болезни кроликов (ГБК) методом ОТ-ПЦР в режиме реального времени».

Предлагается средство дифференциации изолятов вируса ГБК на основе ПЦР и нуклеотидного секвенирования амплифицированных фрагментов кДНК для паспортизации штаммов данного вируса.

Нуклеотидные последовательности структурных генов исследованных штаммов и изолятов вируса ГБК, депонированные в международную базу данных GenBank, могут быть использованы для изучения молекулярной эпизоотологии и эволюции вируса ГБК, подробной характеристики его генома и проведения филогенетического анализа.

Методические рекомендации по выявлению РНК возбудителя вирусной геморрагической болезни кроликов методом полимеразной цепной реакции", «Методические рекомендации по выявлению РНК вируса геморрагической болезни кроликов методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени», которые утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M., предлагаются для практического использования научно-исследовательскими учреждениями.

Полученные нуклеотидные последовательности гена VP60 использованы для характеристики штаммов вируса ГБК, депонированных в музее микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии.

На основании данных нуклеотидного секвенирования гена VP60 и результатов ранее проведенных исследований Николаева A.B. по изучению биологических свойств производственных штаммов вируса ГБК [20] рекомендуется использовать штаммы Манихино-09 и Белгородский-03 из музея микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии для производства вакцинных препаратов против ВГБК.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , С.А. Патоморфодиагностика и патогенез ВГБКУ С.А. Аверин // Ветеринария. 1995. — № 3. — С. 47−54.
  2. Антивирусная активность соединений, содержащих адамантильный радикал/ Н. И. Митин, H.A. Лагуткин, М. М. Зубаиров, Т. К. Петрачева // Антивирусные вещества: материалы V Международного симпозиума Рига, 1982. — С. 42−44.
  3. , З.С. Геморрагические заболевания и синдромы/ З. С. Баркаган. М: Медицина, 1988. — 480 с.
  4. Вирус геморрагической болезни кроликов: физические и структурные характеристики/ В. В. Макаров, И. Ф. Вишняков, H.A. Власов, М. С. Малахова // Вестник Российской Академии Сельскохозяйственных Наук. 1992. — № 4. — С. 49−52.
  5. Вирус геморрагической болезни кроликов: физические и структурные характеристики/ М. С. Малахова, H.A. Власов, И. Ф. Вишняков, В. В. Макаров // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: тез. докл. науч. конф. Покров, 1992. — С. 79−81.
  6. Вирусная геморрагическая болезнь кроликов / A.A. Шевченко, И. Ф. Вишняков, И. А. Бакулов, Т. А. Власова // Ветеринария.- 1994. № 1. — С. 22−23.
  7. Вирусная геморрагическая болезнь кроликов / И. А. Бакулов, И. Ф. Вишняков, Т. А. Власова, A.A. Шевченко. М.: Центр научно-технической информации, пропаганды и рекламы, 1994. 38 с.
  8. Вирусная геморрагическая болезнь кроликов и синдром коричневой печени европейских зайцев. / И. А. Бакулов, И. Ф. Вишняков, А. Л. Семенихин, Д. И. Козлова // II Meeting Desease of Hares. 1988. — С. 45−48.
  9. Вирусология / под ред. Б. Филдса, Д. Найпа- пер. с англ. М.: Мир, 1989.-Т 1.-494 с.
  10. , H.A. Вирус геморрагической болезни кроликов/ H.A. Власов // Общая эпизоотология, иммунологические, экологические и126методологические проблемы: материалы международной научно-практической конференции Харьков, 1995. — С.322−325.
  11. , H.A. Геморрагическая болезни кроликов/ H.A. Власов // Ветеринарная газета. 1994. — № 3. — С. 2.
  12. , H.A. Физико-химические свойства и антигенная структура вируса геморрагической болезни кроликов: дис. .док. биол. наук: 03.00.06/ Власов Николай Анатольевич. Покров, 1998. — 351 с.
  13. Методы вирусологии и молекулярной биологии / пер. с англ. и предисл. Л. Б. Меклера. М.: Мир, 1972. — 444 с.
  14. Опыт ликвидации очагов вирусной геморрагической болезни кроликов / A.A. Шевченко, H.A. Бакулов, В. П. Князев, Ф. А. Бадаев // Доклады Российской Академии Сельскохозяйственных Наук. 1994. — № 3. — С. 39−41.
  15. Санитарный кодекс наземных животных / МЭБ. 13-е изд. — М.- Париж, 2004. — С. 207−208.
  16. , В.А. Вирусные вакцины / В. А. Сергеев. Киев: Урожай, 1 271 993.-368 с.
  17. , A.A. Новая Ассоциированная вакцина/ A.A. Шевченко // Доклады Российской Академии Сельскохозяйственных Наук. 1995. — № 3. -С. 41−42.
  18. , A.A. Основные свойства новой инактивированной вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов/ A.A. Шевченко // Кролиководство и Звероводство. 1994. — № 2. С. 24−27.
  19. , A.A. Специфическая профилактика инфекционных болезней кроликов: вирусной геморрагической болезни, миксоматоза и пастереллеза: дис. .док. вет. наук. Покров, 1994. — 285 с.
  20. , A.A. Сыворотка против вирусной геморрагической болезни кроликов эффективное лечебно-профилактическое средство/ A.A. Шевченко // Вестник Российской Академии Сельскохозяйственных Наук. -1995.- № 7. -С. 52−55.
  21. , A.A. Эффективность термоинактивированной вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов/ A.A. Шевченко // Вестник Российской Академии Сельскохозяйственных Наук. 1994. — № 4. -С. 53−55.
  22. A competition ELISA for the detection of antibodies to rabbit haemorrhagic disease virus/ B.J. Collins, J.R. White, C. Lenghaus, V. Boyd, H.A. Westbury // Vet Microbiol. 1995. — № 43. — P. 85−96.
  23. A DNA-launched reverse genetics system for rabbit hemorrhagic disease virus reveals that the VP2 protein is not essential for virus infectivity/ G.1.u, Z. Ni, T. Yun, B. Yu, L. Chen, W. Zhao, J. Hua, J. Chen // J Gen Virol. -2008. № 89. — P. 3080−3085.
  24. A further step in the evolution of rabbit hemorrhagic disease virus: the appearance of the first consistent antigenic variant/ L. Capucci, F. Fallacara, S. Grazioli, A. Lavazza, M.L. Pacciarini, E. Brocchi // Virus Res. 1998. — № 58. -P. 115−126.
  25. A new viral disease in rabbit/ S.J. Liu, H.P. Xue, B.Q. Pu, N.H. Qian // Anim Husb Vet Med. 1984. — № 16. — P. 253−255.
  26. A recombinant canarypox virus protects rabbits against a lethal rabbit hemorrhagic disease virus (RHDV) challenge/ L. Fischer, F.X. Le Gros, P.W. Mason, E. Paoletti // Vaccine. 1997. — № 15. — P. 90−96.
  27. A single dose immunization with rabbit haemorrhagic disease virus major capsid protein produced in Saccharomyces cerevisiae induces protection/ J.A. Boga, J.M. Martin Alonso, R. Casais, F. Parra // J Gen Viro. 1997. — № 78. -P. 2315−2318.
  28. Abrantes, J. Evidence for recombination in the major capsid gene VP60 of the rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV)/ J. Abrantes, P.J. Esteves, W. van der Loo // Arch Virol. 2008. — № 153. — P. 329−335.
  29. Abrantes, J. Not-so-novel michigan rabbit calicivirus/ J. Abrantes, P.J. Esteves//Emerg Infect Dis.-2010.-№ 16.-P. 1331−1332.
  30. An outbreak of viral haemorrhagic pneumonia (tentative name) of rabbits in Korea/ N.Y. Park, C.Y. Chong, J.H. Kim, S.M. Cho, Y.H. Cha, B.T. Jung, D.S. Kim, J.B. Yoon // J Korean Vet Med Assoc. 1987. — № 23. — P. 603 610.
  31. Antibodies against rabbit hemorrhagic disease virus in free-ranging red foxes from Germany/ K. Frolich, F. Klima, J. Dedek // J Wildl Dis. 1998. -№ 34. — P. 436−442.
  32. Antigenic structure of the capsid protein of rabbit haemorrhagic disease virus/ J.L. Martinez-Torrecuadrada, E. Cortes, C. Vela, J.P. Langeveld, R.H. Meloen, K. Dalsgaard, W.D. Hamilton, J.I. Casal // J Gen Virol. 1998. — № 79.-P. 1901−1909.
  33. Antigenicity of the rabbit hemorrhagic disease virus studied by its reactivity with monoclonal antibodies/ L. Capucci, G. Frigoli, L. Ronshold, A. Lavazza, E. Brocchi, C. Rossi // Virus Res. 1995. — № 37. — P. 221−238.
  34. Antiviral strategies to control calicivirus infections/ J. Rohayem, M. Bergmann, J. Gebhardt, E. Gould, P. Tucker, A. Mattevi, T. Unge, R. Hilgenfeld, J. Neyts // Antiviral Res. 2010. — № 87. — P. 162−178.
  35. Apoptosis in rabbit haemorrhagic disease/ J.Y. Jung, B.J. Lee, J.H. Tai, J.H. Park, Y.S. Lee // J Comp Pathol. 2000. — № 123. — P. 135−140.
  36. Arguello Villares, J.L. Viral haemorrhagic disease of rabbits: vaccination and immune response/ J.L. Arguello Villares // Rev Sci Tech. 1991. -№ 10.-P. 471−480.
  37. Asgari, S. Sequence analysis of rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV) in Australia: alterations after its release/ S. Asgari, J.R. Hardy, B.D. Cooke // Arch Virol. 1999. — № 144. — P. 135−145.
  38. Atomic resolution structural characterization of recognition of histo-blood group antigens by Norwalk virus/ J.M. Choi, A.M. Hutson, M.K. Estes, B.V. Prasad // Proc Natl Acad Sci USA. 2008. — № 105. — P. 9175−9180.
  39. ATP binding and ATPase activities associated with recombinant rabbit hemorrhagic disease virus 2C-like polypeptide/ M.S. Marin, R. Casais, J.M. Alonso, F. Parra // J Virol. 2000. — № 74. — P. 10 846−10 851.
  40. Binding of rabbit hemorrhagic disease virus to antigens of the ABH histo-blood group family/ N. Ruvoen-Clouet, J.P. Ganiere, G. Andre-Fontaine, D. Blanchard, J. Le Pendu // J Virol. 2000. — № 74. P. 11 950−11 954.
  41. Bivalent binding of a neutralising antibody to a calicivirus involves the torsional flexibility of the antibody hinge/ E. Thouvenin, S. Laurent, M.F. Madelaine, D. Rasschaert, J.F. Vautherot, E.A. Hewat // J Mol Biol. 1997. — № 270.-P. 238−246.
  42. Boilletot, E. Protection of rabbits against rabbit viral haemorrhagic disease with a vaccinia-RHDV recombinant virus/ E. Boilletot, J. Chantal, C. Boucraut-Baralon // Vaccine. 1996. — № 14. — P. 506−510.
  43. Calicivirus translation initiation requires an interaction between VPg and elF 4 E/ I. Goodfellow, Y. Chaudhry, I. Gioldasi, A. Gerondopoulos, A. Natoni, L. Labrie, J.F. Laliberte, L. Roberts // EMBO Rep. 2005. — № 6. — P. 968−972.
  44. Cancellotti, F.M. Epidemiology and current situation of viral haemorrhagic disease of rabbits and the European brown hare syndrome in Italy/ F.M. Cancellotti, M. Renzi // Rev Sci Tech. 1991. — № 10. — P. 409−422.
  45. Capucci, L. Seroconversion in an industrial unit of rabbits infected with a non-pathogenic rabbit haemorrhagic disease-like virus/ L. Capucci, A. Nardin, A. Lavazza // Vet Rec. 1997. — № 140. — P. 647−650.
  46. Capucci, L. Seroconversion in an industrial unit of rabbits infected with a non-pathogenic rabbit haemorrhagic disease-like virus/ L. Capucci, M.T. Scicluna, A. Lavazza // Rev Sci Tech. 1991. — № 10. — P. 347−370.
  47. Characterization of a rhesus monkey calicivirus representing a new genus of Caliciviridae/ T. Farkas, K. Sestak, C. Wei, X. Jiang // J Virol. 2008. -№ 82.-P. 5408−5416.
  48. Chasey, D. Possible origin of rabbit haemorrhagic disease in the United Kingdom/ D. Chasey // Vet Rec. 1994. — № 135. — P. 496−499.
  49. Chasey, D. Susceptibility of wild rabbits (Oryctolagus cuniculus) in the United Kingdom to rabbit haemorrhagic disease (RHD)/ D. Chasey, R.C. Trout, S. Edwards // Vet Res. 1997. — № 28. — P. 271−276.
  50. Chomczynski, P. Single-step method of RNA isolation by acid guanidium thiocyanate-phenol-chloroform extraction/ P. Chomczynski, N. Sacchi // Anal. Biochem.- 1987. № 162. P. 156−159.
  51. Clinical and pathological features of viral haemorrhagic disease of rabbits and the European brown hare syndrome/ P. S. Marcato, C. Benazzi, G. Vecchi, M. Galeotti, L. Delia Salda, G. Sarli, P. Lucidi // Rev Sci Tech. 1991. -№ 10.-P. 371−392.
  52. Co-circulation of widely disparate strains of rabbit haemorrhagic disease virus could explain localised epidemicity in the United Kingdom/ N.L. Forrester, B. Boag, A. Buckley, G. Moureau, E.A. Gould // Virology. 2009. — № 393.-P. 42−48.
  53. Cooke, B.D. Rabbit haemorrhagic disease and the biological control of wild rabbits, Oryctolagus cuniculus, in Australia and New Zealand/ B.D. Cooke, F. Fenner // Wildl Res. 2002. — № 29. — P. 689−706.
  54. Cooke, B.D. Rabbit haemorrhagic disease: field epidemiology and the management of wild rabbit populations/ B.D. Cooke // Rev Sci Tech. 2002. — № 21.-P. 347−358.
  55. Cryo-electron microscopy reconstructions of two types of wild rabbit hemorrhagic disease viruses characterized the structural features of Lagovirus/ Z. Hu, X. Tian, Y. Zhai, W. Xu, D. Zheng, F. Sun // Protein Cell. 2010. — № 1. — P. 48−58.
  56. Daughenbaugh, K.F. VPg of murine norovirus binds translation initiation factors in infected cells/ K.F. Daughenbaugh, C.E. Wobus, M.E. Hardy // Virol J. -2006. № 3. — P. 33.
  57. Detection and preliminary characterization of a new rabbit calicivirus related to rabbit hemorrhagic disease virus but nonpathogenic/ L. Capucci, P. Fusi, A. Lavazza, M.L. Pacciarini, C. Rossi // J Virol. 1996. — № 70. — P. 8614−8623.
  58. Detection of positive selection in the major capsid protein VP60 of the rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV)/ P.J. Esteves, J. Abrantes, M. Carneiro, A. Muller, G. Thompson, W. van der Loo // Virus Res. 2008. — № 137. — P. 253 256.
  59. Detection of rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV) by in situ hybridisation with a digoxigenin labelled RNA probe/ D. Gelmetti, V. Grieco, C. Rossi, L. Capucci, A. Lavazza // J Virol Methods. 1998. — № 72. — P. 219−226.
  60. Detection of RNA of rabbit haemorrhagic disease virus from New Zealand wild rabbits/ T. Zheng, A.M. Napier, J.P. Parkes, J.S. O’Keefe, P.H. Atkinson // Wildl Res. 2002. — № 29. P. 683−688.
  61. Development of a diagnostic approach to the identification of rabbit haemorrhagic disease/ D. Chasey, M. Lucas, D. Westcott, G. Sharp, A. Kitching, S.K. Hughes // Vet Rec. 1995. — № 137. — P. 158−160.
  62. Development of a low-cost, insect larvae-derived recombinant subunit vaccine against RHDV/ D.M. Perez-Filgueira, P. Resino-Talavan, C. Cubillos, I.
  63. Angulo, M.G. Barderas, J. Barcena, J.M. Escribano // Virology. 2007. — № 364. -P. 422−430.
  64. Development of an RT-PCR for rabbit hemorrhagic disease virus (RHDV) and the epidemiology of RHDV in three eastern provinces of China/ L. Yang, F. Wang, B. Hu, J. Xue, Y. Hu, B. Zhou, D. Wang, W. Xu // J Virol Methods. 2008. — № 151. P. 24−29.
  65. Disseminated intravascular coagulation (DIC) in rabbit haemorrhagic disease/ K. Ueda, J.H. Park, K. Ochiai, C. Itakura // Jpn J Vet Res. 1992. — № 40. -P. 133−141.
  66. Distribution of rabbit haemorrhagic disease virus RNA in experimentally infected rabbits/ T. Kimura, I. Mitsui, Y. Okada, T. Furuya, K. Ochiai, T. Umemura, C. Itakura // J Comp Pathol. 2001. — № 124. — P. 134−141.
  67. Early acute depletion of lymphocytes in calicivirus-infected adult rabbits/ R.M. Marques, E. Costa, A.P. Aguas, L. Teixeira, P.G. Ferreira // Vet Res Commun. 2010. — № 34. — P. 659−668.
  68. Effects of vaccination against viral haemorrhagic disease and myxomatosis on long-term mortality rates of European wild rabbits/ C. Calvete, R. Estrada, J. Lucientes, J.J. Osacar, R. Villafuerte // Vet Rec. 2004. — № 155. — P. 388−392.
  69. Electron and immunoelectron microscopy of rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV)/ L. Valicek, B. Smid, L. Rodak, J. Kudrna // Arch Virol. -1990.-№ 112.-P. 271−275.
  70. Electron-and immunoelectron-microscopic investigation on the rabbit haemorrhagic disease virus/ M. Alexandrov, R. Peshev, S. Bozhkov, I. Yanchev, L. Doumanova // Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 1993. — № 16. — P. 21−27.
  71. Enzyme-linked immunosorbent assay of antibodies to rabbit haemorrhagic disease virus and determination of its major structural proteins/ L. Rodak, B. Smid, L. Valicek, T. Vesely, J. Stepanek, J. Hampl, E. Jurak // J Gen Virol.-1990.-№ 71.-P. 1075−1080.
  72. Estes, M.K. Rotavirus gene structure and function/ M.K. Estes, J. Cohen // Microbiol Rev. 1989. — № 53. — P. 410−449.
  73. European brown hare syndrome in the U.K.- a calicivirus related to but distinct from that of viral haemorrhagic disease in rabbits/ D. Chasey, M. Lucas, D. Westcott, M. Williams // Arch Virol. 1992. — № 124. — P. 363−370.
  74. European brown hare syndrome virus: relationship to rabbit hemorrhagic disease virus and other caliciviruses/ C. Wirblich, G. Meyers, V. Ohlinger, L. Capucci, U. Eskens, B. Haas, H. J. Thiel // J Virol. 1994. — № 68. -P. 5164−5173.
  75. Evolutionary history and molecular epidemiology of rabbit haemorrhagic disease virus in the Iberian Peninsula and Western Europe/ F. Alda, T. Gaitero, M. Suarez, T. Merchan, G. Rocha, I. Doadrio // BMC Evol Biol. -2010.-№ 10.-P. 347.
  76. Expression in animal cells and characterization of the hepatitis E virus structural proteins/ S. Jameel, M. Zafrullah, M.H. Ozdener, S.K. Panda // J Virol. -1996.-№ 70.-P. 207−216.
  77. Expression of enzymatically active rabbit hemorrhagic disease virus RNA-dependent RNA polymerase in Escherichia coli/ A. Lopez Vazquez, J.M. Martin Alonso, R. Casais, J.A. Boga, F. Parra // J Virol. 1998. — № 72. — P. 29 993 004.
  78. Fenner, F. Deliberate introduction of the European rabbit, Oryctolagus cuniculus, into Australia/ F. Fenner // Rev Sci Tech. 2010. — № 29. — P. 103−111.
  79. Field evidence for mechanical transmission of rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV) by flies (Diptera:Calliphoridae) among wild rabbits in Australia/ S. Asgari, J.R. Hardy, R.G. Sinclair, B.D. Cooke // Virus Res. 1998. -№ 54. -P. 123−132.
  80. Forrester, N.L. Benign circulation of rabbit haemorrhagic disease virus on Lambay Island, Eire/ N.L. Forrester, S.L. Turner, E.A. Gould // Virology. -2007.-№ 358,-P. 18−22.
  81. Fuchs, A. Comparative histopathological study of rabbit haemorrhagic disease (RHD) and European brown hare syndrome (EBHS)/ A. Fuchs, H. Weissenbock // J Comp Pathol. 1992. — № 107. — P. 103−113.
  82. Functional differences between precursor and mature forms of the RNA-dependent RNA polymerase from rabbit hemorrhagic disease virus/ A. Machin, J.M. Martin Alonso, K.P. Dalton, F. Parra // J Gen Virol. 2009. — № 90. -P. 2114−2118.
  83. Gavier-Widen, D. Descriptive epizootiological study of European brown hare syndrome in Sweden/ D. Gavier-Widen, T. Morner // J Wildl Dis. -1993.-№ 29.-P. 15−20.
  84. Genetic classification of «Sapporo-like viruses"/ I. Schuffenecker, T. Ando, D. Thouvenot, B. Lina, M. Aymard // Arch Virol. 2001. — № 146. — P. 2115−2132.
  85. Genetic diversity and histo-blood group antigen interactions of rhesus enteric caliciviruses/ T. Farkas, R.W. Cross, E. Hargitt, N.W. Lerche, A.L. Morrow, K. Sestak // J Virol. 2010. — № 84. — P. 8617−8625.
  86. Genetic variability of Czech and German RHD virus strains/ B. Hukowska-Szematowicz, M. Pawlikowska, W. Deptula // Pol J Microbiol. 2009. — № 58.-P. 237−245.
  87. Genogroup II noroviruses efficiently bind to heparan sulfate proteoglycan associated with the cellular membrane/ M. Tamura, K. Natori, M. Kobayashi, T. Miyamura, N. Takeda // J Virol. 2004. — № 78. — P. 3817−3826.
  88. Genomic 3' terminal sequence comparison of three isolates of rabbit haemorrhagic disease virus/ I.D. Milton, R. Vlasak, N. Nowotny, L. Rodak, M.J. Carter // FEMS Microbiol Lett. 1992. — № 72. — P. 37−42.
  89. Genomic characterization of swine caliciviruses representing a new genus of Caliciviridae Y. L’Homme, R. Sansregret, E. Plante-Fortier, A.M. Lamontagne, M. Ouardani, G. Lacroix, C. Simard // Virus Genes. 2009. — № 39. -P. 66−75.
  90. Genomic characterization of the unclassified bovine enteric virus Newbury agent-1 (Newbury 1) endorses a new genus in the family Caliciviridae/ S.L. Oliver, E. Asobayire, A.M. Dastjerdi, J.C. Bridger // Virology. 2006. — № 350.-P. 240−250.
  91. Glycosylation, an important modifier of rotavirus antigenicity/ J. Caust, M.L. Dyall-Smith, I. Lazdins, I.H. Holmes // Arch Virol. 1987. — № 96. -P. 123−134.
  92. Gregg, D.A. Necrotic hepatitis of rabbits in Mexico: a parvovirus/ D.A. Gregg, C. House // Vet Rec. 1989. — № 125. — P. 603−604.
  93. Hepatic lesions in young rabbits experimentally infected with rabbit haemorrhagic disease virus/ O. Mikami, J.H. Park, T. Kimura, K. Ochiai, C. Itakura // Res Vet Sci. 1999. — № 66. — P. 237−242.
  94. Hepatitis of viral origin in Leporidae: introduction and aetiological hypotheses/ J.P. Morisse, G. Le Gall, E. Boilletot // Rev Sci Tech. 1991. — № 10. -P. 283−295.
  95. Huang, H.B. Vaccination against and immune response to viral haemorrhagic disease of rabbits: a review of research in the People’s Republic of China/ H.B. Huang // Rev Sci Tech. 1991. — № 10 — P. 481−498.
  96. Human noroviruses recognize sialyl Lewis x neoglycoprotein/ G.E. Rydell, J. Nilsson, J. Rodriguez-Diaz, N. Ruvoen-Clouet, L. Svensson, J. Le Pendu, G. Larson // Glycobiology. 2009. — № 19 — P. 309−320.
  97. Human susceptibility and resistance to Norwalk virus infection/ L. Lindesmith, C. Moe, S. Marionneau, N. Ruvoen, X. Jiang, L. Lindblad, P. Stewart, J. LePendu, R. Baric // Nat Med. 2003. — № 9.- P. 548−553.
  98. Identification and characterization of a 3C-like protease from rabbit hemorrhagic disease virus, a calicivirus/ B. Boniotti, C. Wirblich, M. Sibilia, G Meyers, H.J. Thiel, C. Rossi // J Virol. 1994. — № 68. — P. 6487−6495.
  99. Identification and characterization of the virus causing rabbit hemorrhagic disease/ V.F. Ohlinger, B. Haas, G. Meyers, F. Weiland, H.J. Thiel // J Virol. 1990. — № 64. — P. 3331−3336.
  100. Identification of the amino acid residue involved in rabbit hemorrhagic disease virus VPg uridylylation/ A. Machin, J.M. Martin Alonso, F. Parra // J Biol Chem. 2001. № 276. — P. 27 787−27 792.
  101. Immunization with potato plants expressing VP60 protein protects against rabbit hemorrhagic disease virus/ S. Castanon, M.S. Marin, J.M. Martin-Alonso, J.A. Boga, R. Casais, J.M. Humara, R.J. Ordas, F. Parra // J Virol. 1999. -№ 73.-P. 4452−4455.
  102. Incidence of viral hemorrhagic disease in wild rabbit populations in Spain/ R. Villafuerte, C. Calvete, J.C. Blanco, J. Lucientes // Mammalia. 1995. -№ 59. — P. 651−660.
  103. Kinnear, M. Capsid gene divergence in rabbit hemorrhagic disease virus/ M. Kinnear, C.C. Linde // J Gen Virol. 2010. — № 91. — P. 174−181.
  104. Konig, M. Detection of viral proteins after infection of cultured hepatocytes with rabbit hemorrhagic disease virus/ M. Konig, H.J. Thiel, G. Meyers // J Virol. 1998. — № 72. — P. 4492−4497.
  105. Liver enzymes and ultrastructure in rabbit haemorrhagic disease (RHD)/ P.G. Ferreira, E.S.A. Costa, E. Monteiro, M.J. Oliveira, A.P. Aguas // Vet Res Commun. 2006. — № 30. — P. 393−401.
  106. Macrophage tropism of rabbit hemorrhagic disease virus is associated with vascular pathology/ F. Ramiro-Ibanez, J.M. Martin-Alonso, P. Garcia Palencia, F. Parra, C. Alonso // Virus Res. 1999. — № 60. — P. 21−28.
  107. Mapping of antigenic sites involved in neutralization on the capsid protein of feline calicivirus/ Y. Tohya, N. Yokoyama, K. Maeda, Y. Kawaguchi, T. Mikami // J Gen Virol. 1997. — № 78. — P. 303−305.
  108. Meyers, G. Characterization of the sequence element directing translation reinitiation in RNA of the calicivirus rabbit hemorrhagic disease virus/ G. Meyers // J Virol. 2007. — № 81. — P. 9623−9632.
  109. Meyers, G. Translation of the minor capsid protein of a calicivirus is initiated by a novel termination-dependent reinitiation mechanism/ G. Meyers // J Biol Chem. -2003. № 278. — P. 34 051−34 060.
  110. Minor structural protein VP2 in rabbit hemorrhagic disease virus downregulates the expression of the viral capsid protein VP60/ L. Chen, G. Liu, Z. Ni, B. Yu, T. Yun, Y. Song, J. Hua, S. Li, J. Chen // J Gen Virol. 2009. — № 90. -P. 2952−2955.
  111. Molecular epidemiology of rabbit haemorrhagic disease virus outbreaks in France during 1988 to 1995/ G. Le Gall, C. Arnauld, E. Boilletot, J.P. Morisse, D. Rasschaert // J Gen Virol. 1998. — № 79. — P. 11−16.
  112. Molecular epidemiology of Rabbit haemorrhagic disease virus/ S.R. Moss, S.L. Turner, R.C. Trout, P.J. White, P.J. Hudson, A. Desai, M. Armesto, N.L. Forrester, E.A. Gould // J Gen Virol. 2002. — № 83. — P. 2461−2467.
  113. Norovirus classification and proposed strain nomenclature/ D.P. Zheng, T. Ando, R.L. Fankhauser, R.S. Beard, R.I. Glass, S.S. Monroe // Virology. -2006.-№ 346. P. 312−323.
  114. Norwalk virus infection and disease is associated with ABO histo-blood group type/ A.M. Hutson, R.L. Atmar, D.Y. Graham, M.K. Estes // J Infect Dis. -2002. № 185.-P. 1335−1337.
  115. Norwalk virus-like particle hemagglutination by binding to h histo-blood group antigens/ A.M. Hutson, R.L. Atmar, D.Y. Graham, M.K. Estes // J Virol. 2003. — № 77. — P. 405−415.
  116. Novel calicivirus identified in rabbits, Michigan, USA/ I.L. Bergin, A.G. Wise, S.R. Bolin, T.P. Mullaney, M. Kiupel, R.K. Maes // Emerg Infect Dis. 2009. — № 15. — P. 1955−1962.
  117. Ohlinger, V.F. Rabbit hemorrhagic disease (RHD): characterization of the causative calicivirus/ V.F. Ohlinger, B. Haas, H.J. Thiel // Vet Res. 1993. — № 24.-P. 103−116.
  118. Oral immunization of rabbits with VP60 particles confers protection against rabbit hemorrhagic disease/ J. Plana-Duran, M. Bastons, M.J. Rodriguez, I. Climent, E. Cortes, C. Vela, I. Casal // Arch Virol. 1996. — № 141. p. 14 231 436.
  119. Origin and phylodynamics of rabbit hemorrhagic disease virus/ P.J. Kerr, A. Kitchen, E.C. Holmes // J Virol. 2009. — № 83. — P. 12 129−12 138.
  120. Park, J. H. Pathogenesis of acute necrotic hepatitis in rabbit hemorrhagic disease/ J. H. Park, Y.S. Lee, C. Itakura // Lab Anim Sci. 1995. — № 45.-P. 445−449.
  121. Parkes, J.P. Changes in immunity to rabbit haemorrhagic disease virus, and in abundance and rates of increase of wild rabbits in Mackenzie Basin, New Zealand/ J.P. Parkes, B. Glentworth, G. Sullivan // Wildl Res. 2008. — № 35. -P. 775−779.
  122. Parra, F. Purification and characterization of a calicivirus as the causative agent of a lethal hemorrhagic disease in rabbits/ F. Parra, M. Prieto // J Virol/ 1990. — № 64. — P. 4013−4015.
  123. Partial characterization of the human erythrocyte receptor for rabbit haemorrhagic disease virus/ N. Ruvoen-Clouet, D. Blanchard, G. Andre-Fontaine, J.P. Ganiere // Res Virol. 1995 — № 146. — P. 33−41.
  124. Patton, N.M. Viral hemorrhagic disease. A major new disease problem of rabbits/ N.M. Patton // Rabbit Res. 1989. — № 12. — P. 64−67.
  125. Persistence of rabbit haemorrhagic disease virus in decomposing rabbit carcases/ K.A. McColl, C.J. Morrissy, B.J. Collins, H.A. Westbury // Aust Vet J. 2002. — № 80. — P. 298−299.
  126. Persistence of viral RNA in rabbits which overcome an experimental RHDV infection detected by a highly sensitive multiplex real-time RT-PCR/ A. Gall, B. Hoffmann, J.P. Teifke, B. Lange, H. Schirrmeier // Vet. Microbiol. -2007.-№ 120.-P. 17−32.
  127. Programmed cell death in the pathogenesis of rabbit hemorrhagic disease/ C. Alonso, J.M. Oviedo, J.M. Martin-Alonso, E. Diaz, J.A. Boga, F. Parra // Arch Virol. 1998. — № 143. — P. 321−332.
  128. Rabbit haemorrhagic disease: an investigation of some properties of the virus and evaluation of an inactivated vaccine/ B. Smid, L. Valicek, L. Rodak, J. Stepanek, E. Jurak // Vet Microbiol. 1991. № 26. — P. 77−85.
  129. Rabbit hemorrhagic disease virus (RHDV): ultrastructure and biochemical studies of typical and core-like particles present in liver homogenates/ H. Granzow, F. Weiland, H.G. Strebelow, C.M. Liu, H. Schirrmeier // Virus Res. -1996.-P. 163−172.
  130. Rabbit hemorrhagic disease virus: genome organization and polyprotein processing of a calicivirus studied after transient expression of cDNA constructs/ G. Meyers, C. Wirblich, T. J Thiel, J.O. Thumfart // Virology. 2000. -№ 276.-P. 349−363.
  131. Rabbit hemorrhagic disease virus—molecular cloning and nucleotide sequencing of a calicivirus genome/ G. Meyers, C. Wirblich, H.J. Thiel // Virology. 1991. — № 184. — P. 664−676.
  132. Rabbit hemorrhagic disease: a review with special reference to its epizootiology/ S. Mitro, H. Krauss // Eur J Epidemiol. 1993. — № 9. — P. 70−78.
  133. Rabbit populations and game management: the situation after 15 years of rabbit haemorrhagic disease in central southern Spain/ M. Delibes-Mateos, P. Ferreras, R. Villafuerte // Biodivers Conserv. 2008 — № 17. — P. 559−574.
  134. Rabbits as a keystone species in southern Europe/ M. Delibes-Mateos, S.M. Redpath, E. Angulo, P. Ferreras, R. Villafuerte // Biol Conserv. 2007. — № 137.-P. 149−156.
  135. Rapid and simple method for purification of nucleic acids/ R. Boom, S.J.A. Sol, M.M.M. Salimans, C.L. Jansen, P.M.E. Wertheim-van Dillen and J. van der Noordaa// J. of Clinical Microbiology. 1990. — Vol.28, N3. — P.495−503.
  136. Recombinant VP60 in the form of virion-like particles as a potential vaccine against rabbit hemorrhagic disease virus/ B. Gromadzka, B. Szewczyk, G. Konopa, A. Fitzner, A. Kesy // Acta biochimica Polonica. 2006. — № 53. — P. 371−376.
  137. Recombination in rabbit haemorrhagic disease virus: possible impact on evolution and epidemiology/ N.L. Forrester, S.R. Moss, S.L. Turner, H. Schirrmeier, E.A. Gould // Virology. 2008. — № 376. — P. 390−396.
  138. Seal, B.S. Analysis of feline calicivirus capsid protein genes: identification of variable antigenic determinant regions of the protein/ B.S. Seal, J.F. Ridpath, W.L. Mengeling // J Gen Virol. 1993. — № 74. — P. 2519−2524.
  139. Sequence and genomic organization of a rabbit hemorrhagic disease virus isolated from a wild rabbit/ D. Rasschaert, S. Huguet, M.F. Madelaine, J.F. Vautherot // Virus Genes. 1995. — № 9. — P. 121−132.
  140. Serological evidence for a non-protective RHDV-like virus/ S. Marchandeau, G. Le Gall-Recule, S. Bertagnoli, J. Aubineau, G. Botti, A. Lavazza // Vet Res. 2005. — № 36. — P. 53−62.
  141. Serology of rabbit haemorrhagic disease virus in wild rabbits before and after release of the virus in New Zealand/ J.S. O’Keefe, J.E. Tempero, M.X. Motha, M.F. Hansen, P.H. Atkinsona // Vet Microbiol. 1999. — № 66. — P. 29−40.
  142. Shien, J.H. Experimental infections of rabbits with rabbit haemorrhagic disease virus monitored by polymerase chain reaction/ J.H. Shien, H.K. Shieh, L.H. Lee // Res Vet Sci. 2000. — № 68. — P. 255−259.
  143. Strive, T. Identification and partial characterisation of a new Lagovirus in Australian wild rabbits/ T. Strive, J.D. Wright, A.J. Robinson // Virology. 2009. — № 384. — P. 97−105.
  144. Stuart, A.D. Alpha2,6-linked sialic acid acts as a receptor for Feline calicivirus/ A.D. Stuart, T.D. Brown // J Gen Virol. 2007. — № 88. — P. 177−186.
  145. Survival of rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV) in the environment/ J. Henning, J. Meers, P.R. Davies, R.S. Morris // Epidemiol Infect. -2005.-№ 133.-P. 719−730.
  146. Synthesis of subgenomic RNAs by positive-strand RNA viruses/ W.A. Miller, G. Koev // Virology. 2000. — № 273. — P. 1−8.
  147. The amino terminal sequence of VP60 from rabbit hemorrhagic disease virus supports its putative subgenomic origin/ F. Parra, J.A. Boga, M.S. Marin, C. Casais // Virus Res. 1993. — № 27. — P. 219−228.
  148. The coat protein of Rabbit hemorrhagic disease virus contains a molecular switch at the N-terminal region facing the inner surface of the capsid/ J.147
  149. Barcena, N. Verdaguer, R. Roca, M. Morales, I. Angulo, C. Risco, J.L. Carrascosa, J.M. Torres, J.R. Caston // Virology. 2004 — № 322. — P. 118−134.
  150. The initial impact of rabbit hemorrhagic disease on European rabbit populations in South Australia/ G. Mutze, B. Cooke, P. Alexander // J Wildl Dis. -1998.-№ 34.-P. 221−227.
  151. The non-pathogenic Australian lagovirus RCV-A1 causes a prolonged infection and elicits partial cross-protection to rabbit haemorrhagic disease virus/ T. Strive, J. Wright, J. Kovaliski, G. Botti, L. Capucci // Virology. 2010. — № 398.-P. 125−134.
  152. Three-dimensional structure of baculovirus-expressed Norwalk virus capsids/ B.V. Prasad, R. Rothnagel, X. Jiang, M.K. Estes // J Virol. 1994. — № 68.-P. 5117−5125.
  153. Trout, R.C. Seroepidemiology of rabbit haemorrhagic disease (RHD) in wild rabbits (Oryctolagus cuniculus) in the United Kingdom/ R.C. Trout, D. Chasey, G. Sharp // J Zool (Lond). 1997. — № 243. — P. 846−853.
  154. Two independent pathways of expression lead to self-assembly of the rabbit hemorrhagic disease virus capsid protein/ M. Sibilia, M.B. Boniotti, P. Angoscini, L. Capucci, C. Rossi // J Virol. 1995. — № 69. — P. 5812−5815.
  155. Typing of rabbit haemorrhagic disease virus from New Zealand wild rabbits/ J. S. O’Keefe, J. Tempero, P.H. Atkinson, L. Pacciarini, F. Fallacara, G. W. Horner, J. Motha // N Z Vet J. 1998. — № 46. — P. 42−43.
  156. Unifying the epidemiological and evolutionary dynamics of pathogens/ B.T. Grenfell, O.G. Pybus, J.R. Gog, J.L. Wood, J.M. Daly, J. A Mumford, E.C. Holmes // Science. 2004. — № 303. — P. 327−332.
  157. Use of ELISAs in field studies of rabbit haemorrhagic disease (RHD) in Australia/ B.D. Cooke, A.J. Robinson, J.C. Merchant, A. Nardin, L. Capucci // Epidemiol Infect. 2000. — № 124. — P. 563−576.
  158. Viaplana, E. Microheterogeneity of p60 capsid protein and the encoding gene among contemporary isolates of rabbit hemorrhagic disease virus/ E. Viaplana, A. Villaverde // Virus Genes. 1996. — № 12. — P. 189−192.
  159. Viral haemorrhagic disease of rabbits in Mexico: epidemiology and viral characterization/ D.A. Gregg, C. House, R. Meyer, M. Berninger // Rev Sci Tech.- 1991. -№ 10.-P. 435−451.
  160. Wirblich, C. Genetic map of the calicivirus rabbit hemorrhagic disease virus as deduced from in vitro translation studies/ C. Wirblich, H.J. Thiel, G. Meyers // J Virol. 1996. — № 70. — P. 7974−7983.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!