Регуляция экспрессии гена агглютинина зародыша пшеницы фитогормонами в корнях проростков пшеницы
Полученные в работе результаты убедительно свидетельствуют об участии не только АБК, но и гибберелловой и индолилуксусной кислот, цитокинина и 24-эпибрассинолида в относительно быстрого увеличения уровня мРНК АЗП, которое в целом по времени предшествует его массированному накоплению в корнях. Одновременный анализ в одних и тех же растениях содержания лектина и АБК позволил выявить различие… Читать ещё >
Содержание
- 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Гормональная регуляция синтеза белка у растений
- 1. 1. 1. Уровни гормональной регуляции синтеза белка у растений
- 1. 1. 2. Молекулярные механизмы регуляции транскрипции фитогормонами
- 1. 1. 3. Гормональная регуляция синтеза белка на посттранскрипционном уровне
- 1. 2. Характеристика АЗП
- 1. 2. 1. Предполагаемые функции лектина пшеницы
- 1. 2. 2. Контроль абсцизовой кислотой синтеза и количественного уровня АЗП. г
- 1. 1. Гормональная регуляция синтеза белка у растений
- 2. 1. Объект исследования
- 2. 2. Постановка физиологических опытов
- 2. 2. 1. Постановка опытов с использованием 24-эпибрассинолида
- 2. 2. 1. 1. Подбор оптимальных концентраций действия 24-эпибрассинолида
- 2. 2. 1. 2. Постановка опытов с применением 24-эпибрассинолида
- 2. 2. 2. Схема опытов с использованием различных фитогормонов
- 2. 2. 3. Экстрагирование фитогормонов и лектина из одной растительной навески для последующего определения их содержания
- 2. 2. 3. 1. Определение содержания лектина и фитогормонов методом ИФА
- 2. 2. 4. Подготовка компетентных клеток
- 2. 2. 5. Трансформация компетентных клеток E. coli плазмидной
- 2. 2. 6. Выделение и очистка плазмидной ДНК
- 2. 2. 7. Выделение РНК
- 2. 2. 8. Элюция ДНК из агарозных гелей
- 2. 2. 9. Радиоактивное мечение препарата ДНК
- 2. 2. 10. Дот-блот анализ РНК
- 2. 2. 1. Постановка опытов с использованием 24-эпибрассинолида
- 3. 1. Влияние фитогормонов на динамику содержания лектина и АБК в корнях проростков пшеницы
- 3. 1. 1. Изменение содержания АЗП и АБК в корнях проростков пшеницы при воздействии АБК и ГК
- 3. 1. 2. Участие АБК и ГК в регуляции экспрессии гена лектина пшеницы
- 3. 1. 3. Уровни гормональной регуляции накопления АЗП в корнях проростков пшеницы
- 3. 1. 4. Изменение содержания АЗП и АБК в корнях проростков пшеницы при воздействии БАП и ИУК
- 3. 2. 5. Участие БАП и ИУК в регуляции экспрессии гена лектина пшеницы
- 3. 2. Влияние 24-эпибрассинолида на количественный уровень лектина в корнях проростков пшеницы
- 3. 2. 1. Динамика содержания АЗП в корнях проростков пшеницы под влиянием 24-эпибрассинолида
- 3. 2. 1. 1. Влияние 24-эпибрассинолида на гормональный статус растений
- 3. 2. 2. Индукция под влиянием 24-эпибрассинолида экспрессии гена АЗП в корнях проростков пшеницы
- 3. 2. 1. Динамика содержания АЗП в корнях проростков пшеницы под влиянием 24-эпибрассинолида
- 3. 3. Взаимовлияние АЗП и фитогормонов в регуляции роста проростков пшеницы
- 3. 3. 1. Влияние АЗП на ростовые параметры проростков пшеницы
- 3. 3. 2. Влияние лектина на гормональный баланс в корнях проростков пшеницы
- 3. 3. 3. Взаимодействие АЗП и 24-эпибрассинолида в контроле митотической активности клеток корней пшеницы
Регуляция экспрессии гена агглютинина зародыша пшеницы фитогормонами в корнях проростков пшеницы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)
Актуальность. Выяснение физиологической роли лектинов, обладающих свойством специфически и обратимо связывать углеводы, в связи с их распространенностью в самых разных живых организмах и разнообразием предполагаемых функций, представляет общебиологическую проблему. Известные более 100 лет лектины являются объектом пристального внимания исследователей во всем мире. Имеются многочисленные публикации, посвященные детальному исследованию их структуры, функций и разнообразия их углеводной специфичности, хотя до сих пор физиологическая значимость большинства лектинов остается во многом дискуссионной, что справедливо и в отношении типичного представителя лектинов злаков агглютинина зародыша пшеницы (АЗП). Решающую роль в выполнении предполагаемых функций лектинов отводят наличию в них углеводсвязывающих доменов, благодаря которым они могут взаимодействовать с углеводными лигандами (Королев, 1984; Chrispeels, Raikhel, 1991; Peumans, Van Damme, 1995; Roy, 1997; Jouanin et al., 1998; Espinosa et al., 2000). В связи с тем, что АЗП обладает специфичностью к N-ацетил-О-глюкозамину, к числу наиболее вероятных предполагаемых функций относится защитная. Так, в опытах in vitro было выявлено, что АЗП ингибирует прорастание спор', рост пыльцевых трубок и клеток мицелия ряда хитинсодержащих грибных патогенов (Mirelman et al., 1975; Лахтин, * Яковлева, 1987; Ciopraga et al., 1999). Хотя прямых доказательств вовлечения АЗП в формирование защитных реакций в системе хозяин-грибной патоген in vivo пока не получено, в пользу его участия в ответе на инфицирование могут служить данные о значительном накоплении этого белка в зараженных корневой гнилью и септориозом растениях пшеницы (Шакирова и др., 1990; 1994) и при обработке пшеницы элиситорами (Cammue et al., 1990), фунгицидами и другими препаратами, повышающими устойчивость растений к возбудителям грибных болезней (Шакирова, 1999). Вместе с тем, абиотические стрессовые факторы среды также вызывают резкое накопление АЗП, которому предшествует стресс-индуцированное увеличение уровня АБК (Cammue et al., 1989; Шакирова и др., 1993; Shakirova et al., 1996; Singh et al., 2000), что подтверждает участие АБК в индукции синтеза и накопления этого белка (Mansfield, Raikhel, 1990). Учитывая это, можно предположить, что защитная функция АЗП не ограничивается условиями инфицирования, вероятно, он вовлекается в становление неспецифических АБК-контролируемых защитных реакций растений пшеницы (Шакирова, 2001).
Однако АЗП является конститутивным белком, характерным для пшеницы на протяжении всего онтогенеза, уровень которого подвергается существенным флкжтуациям (Raikhel et al., 1993; Rudiger, 1997). Поэтому можно предположить участие помимо АБК и других фитогормонов в регуляции содержания АЗП. Исследование механизмов гормональной регуляции количества АЗП в проростках на уровне экспрессии кодирующего его гена, а также посттранскрипционном и посттрансляционном уровнях (поскольку факт наличия в клетках пула запасных мРНК АЗП и его пробелков, в виде которых лектин претерпевает сложный процессинг известен (Peumans, Stinissen, 1983; Mansfield et al., 1988)), может способствовать пониманию физиологической роли АЗП в растениях пшеницы в обычных условиях произрастания.
Цель и задачи исследований. Цель данной работы заключалась в выяснении механизмов регуляции экспрессии гена АЗП в проростках пшеницы под влиянием фитогормонов (АБК, ИУК, цитокинин, гибберелловая кислота, 24-эпибрассинолид), различающихся по физиологическому действию на рост растений. В связи с этим были поставлены следующие задачи:
1). Для изучения гормональной регуляции уровня АЗП, выявления сходства и различия в действии разных фитогормонов на количество АЗП исследовать динамику содержания лектина в корнях проростков пшеницы под влиянием АБК, ИУК, цитокинина, гибберелловой кислоты (ГК), 24эпибрассинолида (ЭБ) в сочетании с анализом количественных изменений АБК.
2). Провести сравнительную оценку влияния разных фитогормонов на экспрессию гена АЗП в корнях проростков пшеницы.
3). С использованием ингибиторного анализа выявить вклад транскрипционного и трансляционного уровней в гормональную регуляцию содержания лектина в проростках пшеницы.
4). Провести сравнительный анализ влияния АЗП и других фитолектинов на рост делением и растяжением клеток корней растений пшеницы.
5). Исследовать характер динамики накопления АЗП в предобработанных ЭБ проростках и в сочетании с воздействием экзогенного АЗП попытаться получить экспериментальные доводы в пользу вовлечения эндогенного лектина в гормональную регуляцию роста растений пшеницы.
Научная новизна. Получены приоритетные данные об участии, наряду с АБК, фитогормонов — активаторов роста растений — ауксина, цитокинина, ГК и ЭБ — в активации экспрессии гена АЗП. Анализ динамики содержания АБК и лектина пшеницы, а также накопления мРНК АЗП под влиянием исследованных фитогормонов выявил различие в механизмах гормональной регуляции количественного уровня АЗП в корнях проростков: ГК и ЭБ, не вызывая, в отличие от ИУК и БАП, увеличения содержания АБК, способны контролировать экспрессию гена АЗП и накопление этого белка независимо от АБК, что указывает на существование альтернативных путей регуляции этих процессов фитогормонами. В работе впервые получены данные, указывающие на возможность участия АЗП в гормональной регуляции роста корней пшеницы.
Практическая значимость работы. Совокупность полученных результатов свидетельствует об участии различающихся по физиологическому действию фитогормонов в регуляции синтеза АЗП на разных уровнях и расширяет знания о существовании множественной гормональной регуляции индукции экспрессии генов индивидуальных белков в растениях пшеницы.
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
ВЫВОДЫ.
1. Активация экспрессии гена агглютинина зародыша пшеницы под влиянием не только АБК, но и ИУК, 6-бензиламинопурина, гибберелловой кислоты и 24-эпибрассинолида указывает на множественную гормональную регуляцию уровня этого белка в корнях проростков пшеницы, которая реализуется в разные временные интервалы, и эти данные коррелируют с изменением содержания АЗП.
2. Выявлено наличие альтернативных путей гормональной регуляции экспрессии гена АЗП: ГК и ЭБ способны активировать этот процесс независимо от АБК, тогда как накоплению уровня мРНК АЗП под влиянием ИУК и БАП предшествует вызванное ими накопление АБК.
3. С использованием ингибиторного анализа впервые показано, что АБК может регулировать содержание лектина в корнях проростков пшеницы не только на уровне транскрипции его гена, но и посттранскрипционном и посттрансляционном уровнях.
4. Быстрые, вызванные ЭБ, изменения в спектре отдельных форм цитокининов (в частности нуклеотида зеатина) сначала в корнях, а затем в побегах проростков пшеницы предполагают усиление под влиянием ЭБ синтеза цитокининов.
5. Выявлено, что АЗП стимулирует митотический индекс меристематических клеток и размер клеток в зоне растяжения корней проростков пшеницы. Получены экспериментальные доводы в пользу вовлечения эндогенного АЗП в активацию под влиянием ЭБ деления клеток апикальной меристемы корней проростков.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
.
Несмотря на то, что лектины растений относятся к давно известным белкам, а физико-химические и биологические свойства многих из них детально исследованы, их физиологическая значимость для растений до сих пор дискутируется в литературе. Все это справедливо и в отношении АЗП, являющегося типичным представителем лектинов злаков (Peumans, Van Damme, 1995; Rudiger, 1997). Теперь уже почти не вызывает сомнений вовлечение АЗП в развитие неспецифических защитных реакций растений пшеницы, поскольку к настоящему времени накопилось немалое количество данных об усилении синтеза и существенном повышении его уровня в ответ на разнообразные по природе стрессовые факторы среды (Cammue et al., 1989; 1990; Raikhel et al., 1993; Шакирова и др., 1993; 1994; 1995; Oka et at., 1997; Singh et al., 2000). Получены убедительные доказательства того, что индукция синтеза и накопления лектина пшеницы находится под контролем АБК (Mansfield, Raikhel, 1990), играющей ключевую роль в переключении функционирования клеток при обычных условиях на стрессовые программы, и ее содержание может очень быстро транзитно повышаться в несколько раз в неблагоприятных условиях (Leung, Giraudat, 1998). Все это указывает на участие АЗП в АБК-контролируемых механизмах неспецифической устойчивости пшеницы (Шакирова, 2001).
Вместе с тем, АЗП является присущим для пшеницы белком не только в период формирования семян (Raikhel, Quatrano, 1986), но и на протяжении всего онтогенеза растений — молодых и старых вегетирующих растений, содержание которого подвергается существенным изменениям в обычных условиях произрастания (Mishkind et al., 1982; Raikhel et al., 1984; Шакирова и др., 1993). Поскольку онтогенез растений контролируется всеми классами фитогормонов, это позволило предположить участие не только АБК, но и других фитогормонов в регуляции содержания АЗП.
Действительно, к моменту начала наших работ сотрудниками лаборатории были получены данные о количественных изменениях АЗП в ходе прорастания под влиянием различных фитогормонов (Безрукова, 1997; Безрукова, Шакирова, 1999). Однако прорастание семян представляет собой очень сложный физиологический процесс, происходящий во времени, протекание которого находится под контролем всей гормональной системы: так гиббереллины, ауксины, цитокинины и брассиностероиды активируют его, тогда как АБК, напротив, тормозит. Поэтому перед нами стояла задача проанализировать характер влияния разных по физиологической направленности фитогормонов на содержание АЗП в корнях изолированных от эндосперма 4-суточных проростков пшеницы, выяснить уровни гормональной регуляции количества этого белка, включая экспрессию его гена, а также с использованием ингибиторного анализа попытаться разграничить транскрипционный и трансляционный уровни контроля содержания АЗП. Эта модельная система, судя по данным о быстрых ответах на стрессовые воздействия, могла бы позволить детектировать количественные изменения в уровне лектина пшеницы под влиянием фитогормонов уже в течение первых часов.
Полученные в работе результаты убедительно свидетельствуют об участии не только АБК, но и гибберелловой и индолилуксусной кислот, цитокинина и 24-эпибрассинолида в относительно быстрого увеличения уровня мРНК АЗП, которое в целом по времени предшествует его массированному накоплению в корнях. Одновременный анализ в одних и тех же растениях содержания лектина и АБК позволил выявить различие в механизмах гормонального контроля количественного уровня АЗП. Поскольку обработка ГК и ЭБ не приводит к заметным изменениям в содержании АБК, можно полагать, что они непосредственно стимулируют увеличение уровня лектина, тогда как ИУК и БАП, вероятно, оказывают свое влияние на этот процесс опосредованно через АБК, т.к. вызывают кратковременное, предшествующее по времени усилению экспрессии гена лектина и его накоплению, повышение содержания АБК.
Эти результаты раскрывают сложную систему взаимовлияния фитогормонов в ходе регуляции экспрессии гена АЗП и являются важными в связи с тем, что АБК способна, наряду с транскрипционным, мобилизовать также посттранскрипционный и даже посттрансляционный уровни регуляции образования лектина, что показано нами с использованием ингибиторного анализа. Это вполне вероятное явление, поскольку уже давно было выявлено наличие запасного пула мРНК АЗП (Peumans, 1984), а поскольку АЗП подвергается сложной посттранляционной модификации (Mansfield et al., 1988), то в клетках пшеницы в каждый момент может иметься некий пул пре-прои про-лектиновых полипептидов. Вероятно, все эти уровни регуляции синтеза лектина, индуцируемые АБК, включаются в АБК-контролируемое резкое накопление АЗП, что имеет место в стрессовых ситуациях.
Полученные в работе данные указывают на существование альтернативных путей гормональной регуляции количественного уровня АЗП. В литературе имеются данные, свидетельствующие об участии разных фитогормонов в регуляции экспрессии одного и того же гена (Zurek et al., 1994; Ulmasov et al., 1995a). Лектин пшеницы также представляет пример множественной гормональной регуляции экспрессии его гена. Вместе с тем, это ставит вопрос о физиологической значимости данного белка в жизнедеятельности растений пшеницы.
Данные по увеличению уровня мРНК лектина и его накоплении под влиянием фитогормонов, обладающих ростстимулирующим действием, позволили предположить участие АЗП в реализации сигнальной регуляции ростовых процессов в растениях. О том, что разные фитолектины обладают митогенной активностью известно уже давно (Марков, Хавкин, 1983; Королев, 1984; Лахтин, 1986). В числе предполагаемых функций АЗП также обсуждалась возможность его вовлечения в деление клеток (Peumans, 1984), основанная, главным образом, на том, что преимущественным местом синтеза этого лектина являются меристематические клетки растений пшеницы (Raikhel et al., 1984). Однако экспериментальных доводов в пользу этого предположения не было.
Сравнительный анализ влияния экзогенного АЗП на митотическую активность меристематических клеток корня проростков пшеницы и площадь клеток в зоне растяжения показал его высокий стимулирующий эффект на эти показатели ростовых процессов клеток, заметно превышающий таковой известных митогенов КоА и ФГА. Более того, нами получены данные о существенном сдвиге в балансе ИУК/АБК и цитокинины/АБК в сторону фитогормонов — активаторов роста под влиянием АЗП. Это говорит о возможности участия лектина в совместной с фитогормонами регуляции роста клеток пшеницы.
Опыты с совместным использованием АЗП и 24-эпибрассинолида в двух оптимальных для стимуляции роста корней концентрациях, характерной особенностью которого является ярко выраженная активация деления и растяжения клеток в крайне низких концентрациях, позволили получить серьезные доводы в пользу участия эндогенного лектина в индукции ЭБ деления апикальных клеток зоны меристемы корней проростков пшеницы и корректировки с помощью экзогенного АЗП этого процесса. Пока это первые результаты, свидетельствующие о возможности вовлечения лектина в гормональную регуляцию роста клеток. Лишь последующая работа с использованием АЗП и других фитогормонов ростактивирующего типа действия позволит более определенно ответить на этот вопрос. Однако приведенные в настоящей работе результаты, свидетельствующие о регуляции синтеза лектина в вегетирующих растениях пшеницы не только АБК, но и гормонами, участвующими в стимуляции ростовых процессов, указывают на то, что АЗП может вовлекаться в реализацию разнообразных контролируемых этими гормонами физиологических программ, лежащих в основе жизнедеятельности растений, а не только в АБК-контролируемые антистрессовые программы.
Список литературы
- Алексеева Е.С., Паушева З. П. Генетика, селекция и семеноводство гречихи. 1988. Киев: Выща школа. 207 с.
- Антонюк В.А., Луцик М. Д., Ладная Л. Я. Сезонные изменения титра гемагглютинации и сродства к углеводам экстрактов растений, содержащих фукозоспецифичные лектины // Физиол. растений. 1982. Т.29. Вып.6. С.1219−1224.
- Безрукова М.В. Гормональная регуляция содержания лектина пшеницы в стрессовых условиях. Дисс. .канд. биол. наук. Уфа, 1997. 167 с.
- Безрукова М.В., Шакирова Ф. М. Влияние экзогенной обработки фитогормонами на динамику содержания лектина и абсцизовой кислоты в ходе прорастания семян пшеницы // Изв. РАН. Серия биол. 1999. N 5. С.629−933.
- Бокебаева Г. А. Защитное действие брассиностероидов на растения ячменя при засолении. Автореф. дис. канд.биол.наук.М.: ИФР, 1991. 25 с.
- Вандерпланк Я. Генетические и молекулярные основы патогенеза у растений. М.: Мир, 1981.236 с.
- Данилова М.Ф., Мазель Ю. Я., Телепова М.Н" Житнева H.H. Формирование систем поглощения и транспорта ионов в корне кукурузы (Zea mays): анатомия и ультраструктура корня // Физиол. растений. 1990. Т.37. Вып.4. С.629−635.
- Заякин В.В. Изолированные семядоли проростков люпина как модельная система для изучения регуляторного действия цитокинина и абсцизовой кислоты. Автореф.дисс. канд. биол. наук. Москва, 1990. 20 с.
- Иосипенко O.A., Стадник Г. И., Игнатов В. В. Лектины корней проростков пшеницы в процессе взаимодействия растения с ассоциативными микроорганизмами рода Azospirillum // Приют, биохимия и микробиол. 1996. T.32.N4. С.458−461.
- Клячко H.JI. Посттранскрипционная регуляция синтеза белка фитогормонами. Автореф. дис. д-ра биол.наук. М.: ИФР, 1985. 47 с.
- Ковалев В.М. О характере физиологических реакций при воздействии на растений экзогенных регуляторов роста химической и физической природы // С.-хоз. биология. 1998. N 1. С.91−100.
- Ковалева JI.B., Комарова Э. Н., Выскребенцева Э. И. Спорофитно-гаметофитные взаимодействия в системе пыльца-пестик. 1. Пектины клеточных стенок// Физиол. растений. 1999. Т.46. N 1. С.98−101.
- Кораблева Н.П. О механизме действия фитогормонов на синтез нуклеиновых кислот и белка // Рост растений. Первичные механизмы. М.:Наука, 1978. С.148−177.
- Кораблева Н.П., Платонова Т. А. Биохимические аспекты гормональной регуляции покоя и иммунитета растений (Обзор) // Прикл. биохимия и микробиол. 1995. Т.31. N 1. С.103−114.
- Кораблева Н.П., Платонова Т.А, Догонадзе М. З. Изменение биосинтеза этилена в меристемах клубней картофеля Solarium tuberosum L. Под действием брассинолида//ДАН. 1998. Т.361. N 1. С. 113−115.
- Королев Н.П. Функции лектинов в клетках // Итоги науки и техники. Сер. общие проблемы физико-химической биологии. М.: ВИНИТИ, 1984. Т.1. 351 с.
- Котусов В.В., Семак Н. Н., Щеголев С. Ю. и др. Взаимодействие лектина пшеницы со свободноживущими азотфиксирующими микроорганизмами // Докл. АН СССР. 1984. Т.274. N 3. С.751−754.
- Кудоярова Г. Р., Веселов С. Ю., Каравайко Н. Н. и др. Иммуноферментная тест-система для определения цитокининов // Физиол. растений. 1990. Т.37. Вып.1. С.193−199.
- Кудоярова Г. Р., Докичева Р. А., Веселов С. Ю. и др. БАП-индуцированная ростовая реакция растений пшеницы и эндогенное содержание гормонов, обусловленное уровнем минерального питания // Физиол растений. 1993. Т.40. Вып.6. С.893−897.
- Кулаева О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка. XLI Тимирязевское чтение. М.: Наука, 1982. 84 с.
- Кулаева О.Н. О регуляции экспрессии генов в растительных клетках // Физиол. растений. 1978. Т.25. Вып. 5. С.990−1008.
- Кулаева О.Н., Бурханова Э. А., Федина А. Б. и др. Брассиностероиды в регуляции синтеза белка в листьях пшеницы // Докл. АН СССР. 1989. Т.305. N 5. С.1277−1279.
- Курапов П.Б. Гормональный баланс растений. Методы его изучения и регулирования. Автореф. дис. д-ра биол.наук. М.: ТСХА, 1996. 47 с.
- Марков Е.Ю. Лектины (эритроагглютинины) в зерновке и проростках кукурузы //Изв. СО АН СССР. 1980. Т.29. N 15. Вып.З. С.85−89.
- Марков Е.Ю. Получение антилектиновой сыворотки и иммунохимический анализ распределения лектинов по тканям и органам зерновки и проростка кукурузы // Изв. СО АН СССР. 1983. Т.29. N 15. Вып.З. С.83−87.
- Марков Е.Ю., Хавкин Э. Е. Лектины растений: предполагаемые функции // Физиол. растений. 1983. Т.ЗО. Вып.5. С.852−867.
- Метлицкий Л.В., Озерецковская О. Л. Как растения защищаются от болезней. М.: Наука, 1985. 192 с.
- Муромцев Г. С., Данилина Е. Э. Эндогенные химические сигналы растений и животных. Сравнительный анализ. // Успехи совр. биологии. 1996. Т. 116. Вып. 5. С.533−551.
- Муромцев Г. С., Чкаников Д. И., Кулаева О. Н., Гамбург К. З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агропромиздат, 1987. 383 с.
- Никитина В.Е., Аленькина С. А., Пономарева Е. Г., Савенкова H.H. Изучение роли лектинов клеточной поверхности азоспирилл во взаимодействии с корнями пшеницы //Микробиол. 1996. Т.65. N 2. С.165−170.
- Никитина В. Е, Галкин М. А, Котусов В. В. и др. Влияние лектина пшеницы на азотфиксирующую активность Azospirillum brasilense // Прикл. биохимия и микробиол. 1987. Т.23. Вып.З. С.389−392.
- Лахтин В.М. Лектины регуляторы метаболизма // Биотехнология. 1986. N 6. С.66−79.
- Лахтин В. М, Яковлева З. М. Связывание лектина из зародышей пшеницы с поверхностью мицелия и спор Helminthosporium sativum // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1987. N 5. С.792−795.
- Луцик М. Д, Панасюк Е. Н, Луцик А. Д. Лектины. Львов: Вища шк, изд-во при Львов, ун-те, 1981. 256 с.
- Полевой В.В. Фитогормоны. Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. 248 с.
- Прусакова Л. Д, Чижова С. И. Роль брассинолидов в росте, устойчивости и продуктивности растений// Агрохимия. 1996. N 11. С. 137−150.
- Прусакова Л. Д, Чижова С. И, Агеева Л. Ф. и др. Влияние эпибрассинолида и экоста на засухоустойчивость и продуктивность яровой пшеницы // Агрохимия. 2000. N 3. С.50−54.
- Шакирова Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа: Гилем, 2001. 160 с.
- Шакирова Ф.М. Салициловая кислота индуктор устойчивости растений (Обзор) // Агрохимия. 2000. N11. С.87−95.
- Шакирова Ф.М. Участие фитогормонов и лектина пшеницы в ответе растений на стрессовые воздействия. Автореф. дисс. докт. биол. наук. С.-Петерб.университет, 1999. 44 с.
- Шакирова Ф.М., Безрукова М. В. Изменение уровня АБК и лектина в корнях проростков пшеницы под влиянием 24-эпибрассинолида и засоления // Физиология растений. 1998. Т.45. N 3. С.451−455.
- Шакирова Ф.М., Безрукова М. В., Хайруллин P.M. Стимуляция увеличения уровня лектина в проростках пшеницы под влиянием солевого стресса //Известия РАН. Серия биол. 1993. N 1. С.143−145.
- Шакирова Ф.М., Безрукова М. В., Шаяхметов И. Ф. Влияние теплового стресса на динамику накопления АБК и лектина в культуре клеток пшеницы // Физиология растений. 1995. Т.42. N 5. С.700−702.
- Шакирова Ф.М., Клячко Н. Л., Кулаева О. Н. Гормональная регуляция экспрессии растительного генома на посттранскрипционном уровне // Геном растений, структура и экспрессия. Уфа: БФ АН СССР, 1983. С.189−197.
- Шакирова Ф.М., Конрад К., Клячко Н. Л., Кулаева О. Н. Связь между действием цитокинина на рост изолированных семядолей тыквы и синтезом в них РНК и белка// Физиол. растений. 1982. Т. 29. N 1. С.52−61.
- Шаяхметов И.Ф., Шакирова Ф. М., Хайруллин P.M. и др. Исследование содержания лектина в связи с формированием морфогенного каллуса пшеницы // Физиология и биохимия культурных растений. 1994. Т.26. N 1. С.68−71.
- Яковлева JI.A., Клячко Н. Л., Кулаева О. Н. Действие 6-бензиламинорурина на включение С-лейцина в белок в бесклеточной системе из изолированных семядолей тыквы // Молек. биология. 1977. Т.П. В.4. С.868−882.
- Abel S., Nguyen M.D., Theologis A. The PS-IAA4/5-Xikt family of early auxin-inducible mRNAs in Arabidopsis thaliana II J. Mol. Biol. 1995. V.251. P.533−549.
- Abel S., Oeller P.W., Theologis A. Early auxin-induced genes encode short-lived nuclear proteins //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V.91. P.326−330.
- Abel S., Theologis A. Early genes and auxin action // Plant Physiol. 1996. V.lll. P.9−17.
- Abeles F.B. Auxin stimulation of ethylene evolution // Plant Physiol. 1966. V.41. N.2. P.585.
- Allen A.K. A lectin from the exudate of the fruit of the vegetable marrow (Cucurbita pepo) that has a specificity for -1,4-linked N-acetylglucosamine oligosaccharides//Biochem. J. 1979. V.183. N l.P.133−137.
- Allen A.K., Neuberger A., Sharon N. The purification, composition and specifity of wheat-germ agglutinin //Biochem. J. 1973. V.131. P.155−162.
- Altmann T. A tale of dwarfs and drugs: brassinisteroids to the rescue // Trends Gen. 1998a. V. 14. P. 490−495.
- Altmann T. Molecular physiology of brassinosteroids revealed by the analysis of mutants // Planta. 1999. V. 208. P. l-11.
- Altmann T. Recent advances in brassinosteroid molecular genetics // Curr. Opin. Plant Biol. 1998b. V. 1. P. 378−383.
- Alvarez M. E. Salicylic acid in the machinery of hypersensitive cell death and disease resistance // Plant Mol. Biol. 2000. V.44. P.429−442.
- Anker L. Auxin synthesis inhibition by abscisic acid and its reversal by gibberellic acid//ActaBot. Neerl. 1975. V.24. N.2. P.339−345.
- Arteca R.N., De-Sheng T., Shlagnhaufer C., Mandava N.B. The effect of brassimosteroid on auxin-indused ethylene production by etiolated mung bean segments //Physiol. Plant. 1983. V.59. P.539−544.
- Asami T., Min Y.K., Nagata N. et al. Characterization of brassinazole, a triazole-type brassinosteroid biosynthesis inhibitor // Plant Physiol. 2000. V. 123. P.93−100.
- Azpiroz R., Wu Y., LoCascio J.C., Feldmann K.A. An arabidopsis brassinosteroid-dependend mutant is blocked in cell elongation // Plant Cell. 1998. V.10. P.219−230.
- Ballas N., Wong L.-M., Malcolm K., Theologis A. Two auxin-responsive domains interact positively to induce expression of the early indoleacetic acid-inducible gene PS-IAA4/5 II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V.86. P.3483−3487.
- Ballas N., Wong L.-M., Theologis A. Identification of the auxin-responsive element, AuxRE, in the primary indoleacetic acid-inducible gene, PS-IAA4/5, of pea (Pisum sativum) II J. Mol. Biol. 1993. V.233. P.580−596.
- Barciszewski J., Rattan S.I.S., Siboska G., Clark B.F.C. Kinetin 45 years on // Plant Sci. 1999. V.148. N 1. P.37−45.
- Barkai-Golan R., Mirelman D., Sharon N. Studies on growth ihibition by lectins of Penicilla and Aspergilli // Arch. Microbiol. 1978. V. l 16. P. l 19−124.
- Barraqueta-Egea P., Schauz K. The influenca of phytolectins on spore germination of Tilletia caries, Puccinia graminis and Aspergillus Flavus // Z. fur Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz. 1983. V.90. N.5. P.488−495.
- Becker W., Apel K. Isolation and characterization of a cDNA encoding a novel jasmonate-induced protein of barley (Hordeum vulgare L.) // Plant Mol. Biol. 1992. V.19. P.1065−1067.
- Bednarek S.Y., Wilkins T.A., Dombrowski J.E., Raikhel N.V. A carboxyl-terminal propeptide is necessary for proper sorting of barley lectin to vacuoles of tobacco//Plant Cell. 1990. V.2.N.12. P.1145−1155.
- Benfey P.N., Ren L., Chua N.-H. The CaMV 35S enhancer contains at least two domains which can confer different developmental and tissue-specific expression patterns // EMBO J. 1989. V.8. P.2195−2202.
- Bewley J.D. Seed germination and dormancy // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 10 551 066.
- Birkenmeier G.F., Ryan C.A. Wound signaling in tomato plants // Plant Physiol. 1998. V. 117. N2. P. 687−693.
- Bishop G.J., Yokota T. Plants steroids hormones, brassinosteroids: current highlights of molecular aspects on their synthesis/metabolism, transport, perception and response // Plant Cell Physiol. 2001. V. 42. P. 114−120.
- Bisseling T., Weigel D. Plant development: from cell fate to organ formation // Plant Cell. 2001. V.13. N2. P.221−227.
- Boothe J.G., de Beus M.D., Johnson-Flanagan A.M. Expression of a low-temperature-induces protein in Brassica napus // Plant Physiol. 1995. V. l08. P.795−803.
- Bouckaert J., Hamelryck T., Wyns L., Loris R. Novel structures of plants lectins and their complexes with carbohydrates // Curr Opin Struct Biol. 1999. V.9. N.5. P.572−577.
- Bowles D.J., Marcus S. Characterization of receptors for the endogenous lectins in soybean andjackbean seeds //FEBS Lett. 1981. V.129. N 1. P.135−138.
- Braun P., Wild A. The influence of brassinosteroid on growth and parameters of photosinthesis of wheat and mustard plants // J. Plant Physiol. 1984. V. l 16. N.3. P.189−285.
- Broekaert W.F., Marien W., Terras F.R.G. et al. Antimicrobial peptides from Amaranthus caudatus seeds with sequence homology to the cysteine/glycine-rich domain of chitin-binding proteins // Biochemistry. 1992. V.31. P.4308−4314.
- Broekaert W.F., Van Parijs J., Leyns F. et al. A Chitin-binding lectin from stinging nettle rhizomes with antifungal properties // Sciense. 1989. V.245. N.4922. P. l 100−1102.
- Busk P.K., Jensen A.B., Pages M. Regulatory elements in vivo in the promoter of the abscisic acid responsive gene rabl7 from maize // Plant J. 1997. V. l 1. P.1285−1295.
- Busk P.K., Pages M. Protein binding to the abscisic acid-responsive element is independent of VIVIPAROUS 1 in vivo II Plant Cell. 1997. V.9. P.2261−2270.
- Busk P.K., Pages M. Regulation of abscisic acid-induced transcription // Plant Mol. Biol. 1998. V.37. P.425−435.
- Cammue B.P.A., Broecaert W.F., Kellens T.S. et al. Stress-induced accumulation of wheat germ agglutinin and abscisic acid in roots of wheat seedlings // Plant Physiol. 1989. V.91. N.4. P.1432−1435.
- Cammue B.P.A., Broeckart W.F., Peumans W.J. Wheat germ agglutinin in wheat seedling roots induction by elicitors and fungi // Plant Cell Repts.1990. V.9. N.5.-P.264−267.
- Cammue B.P.A., Raikhel N.V., Peumans W.J. Occurense and synthesis of isolectins in different tissues of wheat // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1988. V.183. N.5. P.379−387.
- Choi H., Hong J., Ha J., Kang J., Kim S.Y. ABFs, a family of ABA-responsive element binding factors // J. Biol. Chem. 2000. V.275. N 3. P.1723−1730.
- Chrispeels M.J., Raikhel N.V. Lectins, lectin genes and their role in plant defense //Plant Cell. 1991. V.3. N.l. P. l-9.
- Ciopraga J., Gozia O., Tudor R. et al. Fusarium sp. growth inhibition by wheat germ agglutinin // Biochim. Biophys. Acta. 1999. V.1428. N.2−3.
- Citores L., de Benito F., Iglesias R., Jimenez P. Isolation and characterization of a new non-toxic two-chain ribosome-inactivating protein from fruits of elder {Sambucus nigra L.) II Journal of Experimental Botany. 1996. V.47. P. 15 771 585.
- Clark R.A.C., Kuster B., Benallal M. et al. Characterisation of tissue-specific oligosaccharides from rat brain and kidney membrane preparation enriched in Na+, K±ATPase // Glycoconjgate J. 1999. V.16. N.8. P.437−456.
- Clewell D.B., Helinsky D.R. // Supercoiled circular DNA-protein complex in E. coli purification and diduced convertion to an open circular DNA form // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1969. V.62. P.1159−1162.
- Clouse S.D. Molecular genetic analysis of brassinosteroid action // Physiol. Plant. 1997. V. 100. P. 702−709.
- Clouse S.D., Langford M., McMorris F.C. A brassinosteroid-insensive mutant in Arabidopsis thaliana exhibits multiple defects in growth and development // Plant Physiol. 1996. V.lll. P.671−678.
- Clouse S.D., Zurek D.M., McMorris F.C., Baker M.E. Effect of brassinolide on gene expression in elongating soybean epicotyls // Plant Physiol. 1992. V. 100. P. 1377−1383.
- Cohen J.D., Meudt W.J. Investigations on the mechanism of the brassinosteroid response. 1. Indole-3-acetic acid metabolism and transport // Plant Physiol. 1983. V.72.P.691−694.
- Colon-Carmona A., Chen D.L., Yeh K.C., Abel S. Aux/IAA proteins are phosphorylated by phytochrome in vitro II Plant Physiol. 2000. V.124. N 4. P.1728−1738.
- Creelman R. A, Mullet J.E. Oligosaccharins, brassinolides, and jasmonates: nontraditional regulators of plant growth, development, and gene expression //PlantCell. 1997. V.9. P.1211−1223.
- Czapla T. H, Lang B.A. Effect of plant lectins on the larval development of European corn borer (Lepidoptera: Pyralidae) and Southern corn rootworm (Coleoptera: Chrysomelidae) // J. Econ. Entomol. 1991. V.83. P.2480−2485.
- Czarnecka E, Nagao R. J, Key J. L, Gurley W.B. Characterization of Gmhsp26-A, a stress gene encoding a divergent heat shock protein of soybean: heavy-metal-induced inhibition of intron processing // Mol. Cell Biol. 1988. V.8. P.1113−1122.
- Daniel V. Glutathione S-transferases: gene structure and regulation of expression // Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 1993. V.28. P.173−207.
- Deikman J, Hammer P.E. Induction of anthocyanin accumulation by cytokinins in Arabidopsis thaliana H Plant Physiol. 1995. V.108. P.47−57.
- Deji A, Sakakibara H, Ishida Y, Yamada S, Komari T, Kubo T, Sugiyama T. Genomic organization and transcriptional regulation of maize ZmRRl and ZmRR2 encoding cytokinin-inducible response regulators // Biochim. Biophys. Acta. 2000. V.1492. P.216−220.
- Del Campillo E.M.A, Howard J. A, Shannon L. M, Interaction of soybean agglutinin with soybean callus cells // Z. Pflanzenphysiol. 1981. B.104. H.2. S.97−102.
- Does M. P, Cornelissen B.J.C. A chimerica of Urtica dioica agglutinin and tobacco chitinase display both agglutination and chitinase activity // Plant Sci. 1999. V.148. N.2. P.121−129.
- Dolferus R, Jacobs M, Peacock W. J, Dennis E.S. Differential interactions of promoter elements in stress responses of the Arabidopsis Adh gene // Plant Physiol. 1994. V.105. P.1075−1087.
- Donald R.G.K, Cashmore A.R. Mutation of either G box or I box sequences profoundly affects expression from the Arabidopsis rbcS-lA promoter // EMBO J. 1990. Y.9. P.1717−1726.
- Du Z., Aghoram K., Outlaw W.H.Jr. In vivo phosphorylation of phosphoenolpyruvate carboxylase in guard cells of Vicia faba L. is enhanced by fusicoccin and suppressed by abscisic acid // Arch. Biochem. Biophys. 1997. V.337.N 2. P. 345−350.
- Dure L.S., Capdevila A.M., Greenway S.C. Messenger RNA domains in the embryogenesis and germination of cotton cotyledons // Genome organization and expression in plants. / Ed. C.J. Leaver. New-York, London: Plenum Press, 1980. P. 127−146.
- Edelman G.M., Wang J.L. Binding and functional properties of concanavalin A and its derivatives. 111. Interactions with indoleacetic acid and other hydrophobic ligands // J. Biol. Chem. 1978. V.253. N.9.P.3016−3022.
- Etzler M.E. Distribution and function of plant lectins // The lectins: Properties, functions and applications in biology and medicine. Ed. Liener I. Orlando: Academic Press, 1986. P.371−435.
- Etzler M.E., Kalsi G., Ewing N.N.et al. A nod factor binding lectin with apyrase activity from legume roots // Proc. Natl. Acad. Sci. 1999. V.96. N.10. P.5856−5861.
- Eun J.-S., Karaishi S., Sakurai N. Changes in level of auxin and abscisic acid and the evolution of ethylene in squash hypocotyls after treatment with brassinolide // Plant Cell Physiol. 1989. V.30. N.6. P.807−810.
- Feinberg A.P., Vogelstein B. A technique for radiolabelling DNA restriction endonuclease fragments to high specific activity // Anal Biochem. 1983. V.132. P.6−13.
- Felsenfeld G. Chromatin as an essential part of the transcriptional mechanism //
- Gallie D.R. Posttranscriptional regulation of gene expression in plants // Annu.
- Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P.77−105. Gantt J.S., Key J.L. Coordinate expression of ribosomal proteins mRNAs following auxin treatment of soybean hypocotyls // J. Biol. Chem. 1985. V.260. P.6175−6181.
- Gaudino R.J., Pikaard C.S. Cytokinin induction of RNA-polymerase-1 transcription in Arabidopsis thaliana II J. Biol.Chem. 1997. V.272. N10. P.6799−6804.
- Gehring C.A. Natriuretic peptides a new class of plant hormone? // Annals of
- Goldstein I.J. Plant derived lectins // Recent Adv. Phytochem. 1981. V. l5. P.25−35.
- Goldstein I.J., Hayes C.E. The lectins: carbohydrate binding proteins of plants and animals //Adv. Carboh. Chem. Biochem. 1978. V.35. P.127−340.
- Gregory L.E., Mandava N.B. The activity and interaction of brassinolide and gibberellic acid in mung bean epicotyls // Physiol. Plant. 1982. V.54. P.239−243.
- Grilli I., Pollone E., Meletti P. Poly (A) polymerase in dormant embryos of Triticum durum //Annals of Botany. 1999. V. 84. N.l. P.71−77.
- Grove D.M., Spenser G.F., Rohwedder W.K. et al. Brassinolide, a plant growth-promoting steroid isolated from Brassica napus pollen // Nature. 1979. V.281. N.5728. P.216−217.
- Gubler F., Jacobsen J.V. Gibberellin-responsive elements in the promoter of a barley high-pl a-amylase gene // Plant Cell. 1992. V.4. P. 1435−1441.
- Gubler F., Kalla R., Roberts J.K., Jacobsen J.V. Gibberellin-regulated expression of a myb gene in barley aleurone cells: evidence for myb transactivation of a high-pl a-amylase gene promoter// Plant Cell. 1995. V.7. P. 1879−1891.
- Guilfoyle T., Hagen G., Ulmasov T., Murfett J. How does auxin turn on genes? // Plant Physiol. 1998a. V.118. P.341−347.
- Guilfoyle T., Olszewski N., Zurfluh L. RNA Polymerases and transcription during developmental transitions in soybean // Genome organization and expression in plants / Ed. C.J. Leaver.N.Y.- L.: Plenum press, 1980. P. 93−104.
- Guilfoyle T.J., Ulmasov T., Hagen G. The ARF family of transcription factors and their role in plant hormone responsive transcription // Cell Mol. Life Sci. 1998b. V.54. P.619−627.
- Guiltinan M.J., Marcotte W.R., Quatrano R.S. A plant leucine zipper protein that recognizes an abscisic acid response element // Science. 1990. V.250. P.267−271.
- Gutierrez R.A., Macintosh G.C., Green P.J. Current perspectives on mRNA stability in plants: multiple levels and mechanisms of control // Trends Plant Sci. 1999. V.4. N 11. P.429−438
- Hagen G., Uhrhammer N., Guilfoyle T.J. Regulation of expression of an auxin-induced soybean sequence by cadmium // J. Biol. Chem. 1988. Y.263. P.6442−6446.
- Hamelryck T.W., Loris R., Bouckaert J., Dao-Thi M. N. Carbohydrate binding, quaternary structure and a novel hydrophobic binding site in two legume lectin oligomers from Dolichos biflorus //J Mol Biol. 1999. V.5. N.4. P.1161−77.
- Heese-Peck A., Raikhel N.V. A glycoprotein modified with terminal N-acetylglucosamine and localized at the nuclear rim shows sequence similarity to aldose-1-epimerases// Plant Cell. 1998. V. 10. P.599−612.
- Hildmann T., Ebneth M., Pena-Cortes H., Sanchez-Serrano J.J., Willmitzer L., Prat S. General roles of abscisic and jasmonic acids in gene activation as a result of mechanical wounding // Plant Cell. 1992. V.4. P. l 157−1170.
- Hobo T., Asada M., Kowyama Y., Hattori T. ACGT-containing abscisic acid response element (ABRE) and coupling element 3 (CE3) are functionally equivalent//Plant J. 1999a. V.19. N 6. P.679−689.
- Hobo T., Kowyama Y., Hattori T. A bZIP factor, TRAB1, interacts with VP1 and mediates abscisic acid-induced transcription // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999b. V.96. N 26. P.15 348−15 353.
- Holmberg L., Nygard O. Depurination of A4256 in 28 S rRNA by the ribosome-inactivating proteins from barley and ricin results in different ribosome conformations // J. Mol. Biol. 1996. V.259. N.l. P.81−94.
- Jacinto T., McCurl B., Ryan C.A. Wound-regulation and tissue specificity of the tomato prosistemin promoter in transgenic tobacco plants // Plant Sci. 1999. V.14. P.155−159.
- Jackson M. Are plants hormones involved in root to shoot communication? / In: Advanced in Botanical Research, 1993. V.19 (ed. by J.A.Callow), Academic Press. P.103−187.
- Jacobson J.V., Zwar J.A. Gibberellic acid causes increased synthesis of RNA which contains poly (A) in barley aleurone tissue // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1974. V.71. N 8. P.3290−3293.
- Jouanin L., Bonade-Bottino M., Girard C. et al. Transgenic plants for insect resistance // Plant Sci. 1998. V.131. P. l-11.
- Kakimoto T. Cytokinin signalling// Curr. Opin. Plant Biol. 1998. V.l. P.399−403.
- Kalinich J.F., Mandava N.B., Todhunter J.A. Ralationship of nucleic acid metabolism to brassinolide-indused responses in beans // J. Plant Physiol. 1985. V.120. N.3. P.207−221.
- Kao C-Y, Cocciolone S. M, Vasil I. K, McCarty D.R. Localization and interaction of the cis-acting elements for abscisic acid, VIVIPAROUS 1, and light activation of the CI gene of maize // Plant Cell. 1996. V.8. P. 1171−1179.
- Katzin B. J, Collins E. J, Robertus J.D. Structure of ricin A-chain at 2.5 A // Proteins. 1991. V.10. P.251−259.
- Kauss H. Lectins and their physiological role in slime molds and in higher plants // Encycl. Plant Physiol, new ser. 1981. V.13B. P.627−657.
- Keen N.T. The molecular biology of disease resistance // Plant Mol. Biol. 1992. V.19 P.109−122.
- Kende H, Gardner G. Hormone binding in plants // Annu. Rev. Plant Physiol. 1976. V.27. P.267−290.
- Kende H, Zeevaart J.A.D. The five «classical» plant hormones // Plant Cell. 1997. V. 9.P. 1197−1210.
- Khripach V, Zhabinskii V, de Groot A. Twenty years of brassinosteroids: steroidal plant hormones warrant better crops for the XXI century // Annals of Botany. 2000. V. 86. P.441−447.
- Kiraly Z, Ersek T, Barna B, Adam A, Gullner G. Pathophysiological aspects of plants disease resistance // Acta Phytopath. Entomol. Hungarica. 1991. V. 26. N.3−4. P.233−250.
- Klyachko N. L, Ananiev E, Kulaeva O. N. Effect of 6-benzylaminopurine and abscisic acid on protein synthesis in isolated pumpkin cotyledons // Physiol. Vegetale. 1979. V.17. N.3. P.607−617.
- G.H., Paul A.-L., McCarty D.R., Ferl R.J. Transcription factor veracity: Is GBF3 responsible for ABA-regulated expression of Arabidopsis Adhl II Plant Cell. 1996. V.8. P.847−857.
- Maddock S.E., Huffman G., Isenhour D.J. et al. Expression in maize plants of wheat germ agglutinin: a novel source of insect resistance. 1991. Third Int. Soc. Plant Mol. Biol., Tucson, Arizona. (Abstr.)
- Maliaric M.J., Roberts D.D., Goldstein I.J. Properties of the lectin from the hog peanut (Amphicarpaea bracteata) // Arch. Biochem. Biophys. 1987. V.255. N 1. P. 194−200.
- Mandava N.B. Plant growth-promoting brassinosteroids // An N.Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1988. V.39. P.23−52.
- Mandava N.B., Thompson M.J., Yopp J.H. Effects of selected putative inhibitors of RNA and protein synthesis on brassinosteroid-induced growth in mung bean epicotyls // J. Plant. Physiol. 1987. V.128. N.l. P.63−68.
- Mansfield M.A., Peumans W.J., Raikhel N.V. Wheat germ agglutinin is synthesized as a glycosylated precursor // Planta. 1988. V.173. N.4. P.482−489.
- Mansfield M.A., Raikhel N.V. Abscisic acid enhances the transcription of wheat-germ agglutinin mRNA without altering its tissue-specific expression // Planta. 1990. V.180. N.4. P.548−554.
- Mason H.S., DeWald D.B., Mullet J.E. Identification of a methyl jasmonate-responsive domain in the soybean vspB promoter // Plant Cell. 1993. V.5. P.241−251.
- Mauch-Mani B., Metraux J.-P. Salicylic acid and systemic acquired resistance to pathogen attack//Annals of Botany. 1998. V. 82. P.535−540.
- McCarty D.R. Genetic control and integration of maturation and germination pathways in seed development // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1995. V.46. P.71−93.
- McCarty D.R., Hattori T" Carson C.B., Vasil V., Lazar M., Vasil I.K. The Viviparous1 developmental gene of maize encodes a novel transcriptional activator//Cell. 1991. V.66. P.895−905.
- McKendree W.L.Jr., Ferl R.J. Functional elements of the Arabidopsis Adh promoter include the G-box // Plant Mol. Biol. 1992. V.19. P.859−862.
- McKendree W.L.Jr., Paul A-L., DeLisle A.J., Ferl R.J. In vivo and in vitro characterization of protein interactions with the dyad G-box of the Arabidopsis Adh gene //Plant Cell. 1990. V.2. P.207−214.
- Medina J. Zipping between transcription factors: the ABA transduction pathway // Trends Plant Sci. 2001. V.6. N3. P.96.
- Mirelman D., Galun E., Sharon N., Lotan R. Inhibition of fungal growth by wheat germ agglutinin//Nature. 1975. V.256. N.5516. P.414−416.
- Mishkind D., Raikhel N.V., Palevits B.A., Keegstra K. Immunocytochemical localization of wheat germ agglutinin in wheat // J. Cell Biol. 1982. V.92. N.3. P.753−764.
- Mishkind M., Keegstra K., Palevitz A. Distribution of wheat germ agglutinin in young wheat plants // Plant Physiol. 1980. V.66. N.5. P.950−955.
- Mitchell J.W., Mandava N., Worley J.F. et al. Brassins a new family of plant hormones from rape pollen // Nature. 1970. V.225. N.5237. P.1065−1066.
- Money N.P. Measurement of pore size in the hyphal cell wall of Achyla bisexualis //Exp. Mycol. 1990. V.14. P.234−242.
- Morris P.C., Maddock S.E., Jones M.G.K., Bowles D.J. Changes in the levels of wheat- and barley-germ agglutinin during germination // Planta. 1985. V.166. N 3. P.407−413.
- Morris P.-Ch. Endogenous abscisic acid and wheat germ agglutinin content in wheat grains during development // Physiol. Plant. 1989. V.77. N.4. P.507−511.
- Murdock L.L., Huesing J.E., Nielsen S.S., Pratt R.C., Shade R.E. Biological effects of plant lectins on the cowpea weevil // Phytochemistry. 1990. V.29. P.85−89.
- Muthukrishnan S., Chandra G.R., Maxwell E.S. Hormonal control of a-amylase gene expression in barley: Studies using a cloned cDNA probe // J. Biol. Chem. 1983. V.258. P.2370−2375.
- Nagata N., Min Y.K., Nakano T. et al. Treatment of dark-grown Arabidopsis thaliana a brassinosteroid-biosynthesis inhibitor, brassinazol, induces some characteristics of light-grown plants // Planta. 2000. V. 211. N.6. P. 781−790.
- Nagata Y., Burger M.M. Wheat germ agglutinin. Molecular characteristics and specificity for sugar binding // J. Biol. Chem. 1974. V.249. N.10. P.3116−3122.
- Oda T., Nakamura A., Okamoto T. et al. Lectin-induced enhancement of superoxide anion production by red tide phytoplankton // Marine Biology. 1998. V.131.N 2. P.383−390.
- Oeller P.W., Keller J.A., Parks J.E., Silbert J.E., Theologis A. Structural characterization of the early indoleacetic acid-inducible genes PS-IAA4/5 and PS-IAA6, of pea (Pisum sativum L.) // J. Mol. Biol. 1993. V.233. P.789−798.
- Oeller P.W., Theologis A. Induction kinetics of the nuclear proteins encoded by the early indoleacetic acid-inducible genes, PS-IAA4/5 and PS-IAA6 in pea (Pisum sativum L.) // Plant J. 1995. V.7. P.37−48.
- Ohme-Takagi M., Suzuki K., Shinshi H. Regulation of ethylene-induced transcription of defense genes // Plant Cell Physiol. 2000. V.41. N 11. P.1187−1192.
- Oka Y., Chet I., Spiegel Y. Accumulation of lectins in cereal roots invaded by the cereal cyst nematode Heterodera avenae II Physiol. Mol. Plant Pathol. 1997. V.51. P.333−345.
- Ono A., Izawa T., Chua N-H., Shimamoto K. The rabl6B promoter of rice contains two distinct abscisic acid-responsive elements // Plant Physiol. 1996. V.112. P.483−491.
- Palen E., Traugh J.A. Phosphorylation of ribosomal protein S6 by cAMP-dependent protein kinase and mitogen-stimulated S6 kinase differentially alters translation of globin mRNA // J. Biol. Chem. 1987. V.262. P.3518−3523.
- Parcy F., Giradaut J. Ineractions between the ABI1 and the ectopically expressed ABB genes in controlling abscisic acid responses in Arabidopsis vegetative tissues // Plant J. 1997. V.ll. P.693−702.
- Parcy F., Valon C., Raynal M., Gaubier-Comella P., Delseny M., Giradaut J. Regulation of gene expression programs during Arabidopsis seed development: Roles of the ABB locus and of endogenous abscisic acid // Plant Cell. 1994. V.6. P.1567−1582.
- Pengelli W.L. Validation of immunoassays //Plant Growth substances: Proc. l2th Int. Conf, Heidelberg, August 26−31, 1985, — Berlin etc.: Springer-Verlag, 1986. P. 35−43.
- Perez L, Aguilar R, Mendez A. P, Sanchez de Jimenez E. Phosphorylation of ribosomal proteins induced by auxins in maize embryonic tissues // Plant Physiol. 1990. V.94. P. 1270−1275.
- Peumans W.J. Biochemistry, cell-biology, physiology, biosynthesis and function of gramineae lectins. Proefschift. Leuven: Katholike univ. Lab. voor Pflatenbiochemie, 1984. 211 p.
- Peumans W. J, Roy S, Barre A. Elderberry (Sambucus nigra) contains truncated Neu5Ac (8 #945- 2,6) Gal/GalNAc-binding type 2 ribosome-inactivating proteins // FEBS Lett. 1998. V. 425. N.l. P.35−39.
- Peumans W. J, Stinissen H. M, Carlier A. Lectin synthesis in developing and germinating wheat and rye embryos // Planta. 1982. V. 156. N. 1. P.41 -44.
- Peumans W. J, Van Damme E.J.M. Lectins as plant defense proteins // Plant Physiology. 1995. V.109. N.2. P.347−352.
- Philippar K, Becker D, Hedrich R, Edwards K, Ljung K, Sandbe G.. .response: Living with gravity// Trends Plant Sci. 2000. V.5. N3. P.86−87.
- Ponstein A. S, Bres-Vloemans S. A, Sela-Buurlage M.B. et al. A novel pathogen-and wound-inducible tobacco (Nicotiana tabacum) protein with antifungal activity//Plant Physiol. 1994. V.104. P.109−118.
- Popova L.P. Effect of abscisic acid on the synthesis of ribulose-l, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase in barley leaves // Photosynthetica. 1989. V.23. N 3. P.300−305.
- Qin X.-F., Holuigue L., Horvath D.M., Chua N.-H. Immediate early transcription activation by salicylic acid via the cauliflower mosaic virus as-1 element // Plant Cell. 1994. V.6. P.863−874.
- Quatrano R.S., Bartels D., Ho T.-H.D., Pages M. New insights into ABA-mediated processes // Plant Cell. 1997. V.9. N 4. P.470−475.
- Rademacher W., Grabe J.E. Hormonal changes in developing kernels of two spring wheat differing in olorage capasity // Ber. Deutch. Bot. Ges. 1984. B. 97. H ½. S. 167−181.
- Raikhel N.V., Lee H.-I., Broekaert W.F. Structure and function of chitin-binding proteins // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V.44. P.591−615.
- Raikhel N.V., Lerner D.R. Expression and regulation of lectin genes in cereals and rice // Devel. Genet. 1991. V.12. P.255−260.
- Raikhel N.V., Mishkind M.L., Palevitz B.A. Characterization of a wheat germ agglutinin-like lectin from adult wheat plants // Planta. 1984. V.162. N.l. P.55−61.
- Raikhel N.V., Palevitz B.A., Haigler C.H. Abscisic acid control of lectin accumulation in wheat seedlings and callus cultures // Plant Physiol. 1986. V.80. N.l. P.167−171.
- Raikhel N.V., Quatrano R.S. Localization of wheat germ agglutinin in developing wheat embryos and those cultured in abscisic acid // Planta. 1986. V.168. N.4. P.433−440.
- Raikhel N.V., Wilkins T.A. Isolation and characterization of a cDNA clone encoding wheat germ agglutinin // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. V.84. N.19. P.6745−6749.
- Ram Chandra G., Muthukrishnan S., Makwell E.S. Hormonal regulation of genome activity in higher plants // Plant growth substances / Ed. Mandava B. ACS Symp. ser. III. Wash.: Amer. Chem. Soc., 1979. P.245−261.
- Raskin I. Role of salicylic acid in plants // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V. 43. P. 439−463
- Reinbothe C., Tewes A., Reinbothe S. Comparative molecular analysis of gene expression during plant embryogenesis: Do evolutionarilyconserved mechanisms control early plant development? // AgBiotech. News Info. 1992a. V.4. 381N-397N.
- Reinbothe S., Mollenhauer B., Reinbothe C. JIPs and RIPs: the regulation of plant gene expression by jasmonates in response to environmental cues and pathogens //Plant Cell. 1994a. Y.6. P. 1197−1209.
- Reinbothe S., Reinbothe C., Heintzen C., Seidenbecher C., Parthier B. A methyl jasmonate-induced shift in the length of the 5 untranslated region impairs translation of the plastid rbcL transcript in barley // EMBO J. 1993. V.12. P.1505−1512.
- Reinbothe S., Reinbothe C., Lehmann J., Becker W., Apel K., Parthier B. JIP60, a methyl jasmonate-induced ribosome inactivating protein involved in plant stress reactions // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994b. V.91. P.7012−7016.
- Reinbothe S., Reinbothe C., Lehmann J., Parthier B. Differential accumulation of methyl jasmonate-induced mRNAs in response to abscisic acid and desiccation in barley (Hordeum vulgare) II Physiol. Plant. 1992b. V.86. P.49−56.
- Rice R.H., Etzler M.E. Chemical modification and hybridization of wheat germ agglutinins // Biochemistry. 1975. V. 14. N. 18. P.4093−4099.
- Rijven A.H.G.C. Initiation of polyphenylalanine synthesis and action of cytokinin in fenugreek cotyledons // Nature. 1974. V.252. N 5480. P.257−259.
- Roberts D.D., Goldstein I.J. Adenine binding sites of the lectin from lima beans (Phaseolus lunatus) // J. Biol. Chem. 1983. V. 258. P. 13 820−13 824.
- Rogers J.C., Lanahan M.B., Rogers S.W. The cis-acting gibberellin response complex in high-pl a-amylase promoters // Plant Physiol. 1994. V.105. P.151−158.
- Rogers J.C., Rogers S.W. Definition and functional implications of gibberellin and abscisic acid cis-acting hormone response complexes // Plant Cell. 1992. V.4. P.1443−1451.
- Roy R. Recent development in the rational design of multivalent glycoconjugates // Topics in Current Chemistry. 1997. V.187. P.241−274.
- Rudiger H. Structure and Function of Plant Lectins // Glycoscienses. Status and Perspectives. Eds.: H.-J. Gabius and S. Gabius. London-Glasgow-Weiheim-NewYork-Tokyo-Melbourne-Madras: Chapman&Hall ITPC, 1997. P.415−438.
- Ryan C.A. The systemic signaling pathways: differential activation of plant defensive genes // Biochim. Biophys. Acta. 2000. V.1477. N. 1−2. P. 112−121.
- Sabnis D.D., Hart J.W. The isolation and some properties of a lectin (haemagglutinin) from Cucurbita phloem exudate // Planta. 1978. V.142. N1. P.97−101.
- Sairam R.K. Effect of homobrassinolide application on metabolic activity and grain yield of wheat under normal and water-stress conditions // J. Agro N.and Crop Sci. 1994. V.173. N.l. P. ll-16.
- Sakakibara H., Suzuki M., Takei K., Deji A., Taniguchi M., Sugiyama T. A response-regulator homologue possibly involved in nitrogen signal transduction mediated by cytokinin in maize // Plant J. 1998. V.14. P.337−344.
- Sakurai A., Fujioka S. The current status of physiology and biochemistry of brassinosteroids: A review//J. Plant Growth Reg. 1993. V.13. P.147−159.
- Samajova O., Samaj J., Volkmann D., Edelmann H.G. Occurrence of osmiophilic particles is correlated to elongation growth of higher plants // Protoplasma. 1998. V.202. P.185−191.
- Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular Cloning. A Laboratory Manual.
- Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989. 1626 p.
- Sasse J.M. Resent progress in brassinosteroid reseaech // Physiol. Plant. 1997. V. 100. P. 696−701.
- Schaeffer G.W., Sharpe F.T.Jr. Cytidine methylation in buds released from dormancy with 6-benzylaminopurine // Biochem. Biophys. Res. Communs. 1970. V.38.N2. P.312−316.
- Schlumbaum A., Mauch F., Vogeli U., Boiler T. Plant chitinases are potent inhibitors of fungal growth//. Nature. 1986. V.324. N.6095. P.365−367.
- Schmulling T., Schafer S., Romanov G. Cytokinins as regulators of gene expression // Physiol. Plantarum. 1997. V.100. N.3. P.505−519.
- Schobert C., Baker L., Szederkenyi et al. Identification of immunologically related proteins in sieve-tube exudate collected from monocotyledonous and dicotyledonous plants // Planta. 1998. V.206. N 2. P.245−252.
- Sembdner G., Parthier B. The biochemistry and the physiological and molecular actions of jasmonates // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P. 569−589
- Shakirova F.M., Bezrukova M.V. Shayakhmetov I.F. Effect of heat shock on dynamics of ABA and WGA accumulation in wheat cell culture // Plant Growth Regulation. 1996. V.19. N 1. P. 85−87.
- Sharon N., Lis H. Lectins: cell-agglutinating and sugar-specific proteins // Science. 1972. V.177. N.4053. P.949−959.
- Shen Q., Ho T.-H.D. Functional dissection of an abscisic acid (ABA)-inducible gene reveals two independent ABA-responsive complexes each containing a G-box and a novel cw-acting element // Plant Cell. 1995. V.7. P.295−307.
- Shen Q., Zhang P., Ho T.-H.D. Modular nature of abscisic acid (ABA) response complexes: Composite promoter units that are necessary and sufficient for ABA induction of gene expression in barley // Plant Cell. 1996. V.8. P. l 1 071 119.
- Stirpe F., Bailey S., Miller S.P., Bodley J.W. Modification of ribosomal RNA by ribosome-inactivating proteins from plants // Nucl. Acids Res. 1988. V.16. P.1349−1357.
- Stirpe F., Barbieri L., Batelli M.G., Soria M., Lappi D.A. Ribosome-inactivating proteins from plants: present status and future prospects // Biotechnology. 1992. V.10. N 4. P.405−412.
- Suzuki M., Kao C.Y., McCarty D.R. The conserved B3 domain of VIVIPAROUS 1 has a cooperative DNA binding activity // Plant Cell. 1997. V.9. P.799−807.
- Sweeney E.C., Palmer R.A., Pfuller U. Crystallization of the ribosome-inactivating protein ML1 from Viscum album (mistletoe) complexed with beta-D-galactose // J. Mol. Biol. 1993. V.234. N 4. P.1279−1281.
- Szweykowska A., Gwozdz E., Spychala M. The cytokinin control of protein synthesis in plants. In: Metabolism and molecular activity of cytokinins. Springer-Verlag Berlin Heidelberg New York, 1981. P.212−217.
- Tanaka H., Masuta C., Kataoka J., Kuwata S., Koiwai A., Noma M Inducible expression by plant hormones of S-adenosyl-L-homocysteine hydrolase gene from Nicotiana tabacum during early flower bud formation in vitro II Plant Sci. 1995. V.113.N2.P.167−174.
- Tao K.L., Khan A.A. Increases in activities of amynoacyl-tRNA synthetases during cold-treatment of dormant pear embryo // Biochem Biophys. Res. Communs. 1974. V.59. N 2. P.764−770.
- Taverner E., Letham D.S., Wang J., Cornish E., Willcocks D.A. Influence of ethylene on cytokinin metabolism in relation to Petunia corolla senescence // Phytochemistry. 1999. V.51. P.341−347.
- Teramoto H., Momotani E., Takeba G., Tsuji H. Isolation of cDNA clone for a cytokinin-repressed gene in excised cucumber cotyledons // Planta. 1994. V.193. N.4. P.573−579.
- Tobin E.M., Turkaly E. Kinetin affects rates of degradation of mRNAs encoding two major chloroplast proteins in Lemna gibba L. G-3. // Plant Growth Regul. 1982. V.l. P.3−13.
- Travers A.A. DNA-Protein Interactions. 1993. Chapman and Hall. London. UK.
- Triplett B.A., Quatrano R.S. Timing, localization, and control of wheat germ agglutinin synthesis in developing wheat embryos // Devel. Biol. 1982. V.91.N.2. P.491−496.
- Ulmasov T., Hagen G., Guilfoyle T.J. Activation and repression of transcription by auxin-response factors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999b. Y.96. P.5844−5849.
- Ulmasov T., Hagen G., Guilfoyle T.J. ARF1, a transcription factor that binds auxin response elements // Science. 1997. V.276. P.1865−1868.
- Ulmasov T., Hagen G., Guilfoyle T.J. Dimerization and DNA binding of auxin response factors //Plant J. 1999a. V.19. N 3. P.309−319.
- Ulmasov T., Hagen G., Guilfoyle T.J. The ocs element in the soybean GH2/4 promoter is activated by both active and inactive auxin and salicylic acid analogues // Plant Mol. Biol. 1994. V.26. P. 1055−1064.
- Ulmasov T., Liu Z-B., Hagen G., Guilfoyle T.J. Composite structure of auxin response elements // Plant Cell. 1995b. V.7. P. 1611−1623.
- Ulmasov T., Ohmiya A., Hagen G., Guilfoyle T. The soybean GH2/4 gene that encodes a glutathione S-transferase has a promoter that is activated by a wide range of chemical agents // Plant Physiol. 1995a. V.108. P.919−927.
- Umekawa H., Kondon K., Fujihara M. et al. Interaction of Tora-mama (Phaseolus vulgaris) lectin with indolederivatives // Agric. Biol. Chem. 1990. V.54. N.12. P.3295−3299.
- Van Parijs J., Broekaert W.F., Goldstein I.J., Peumans W.J. Hevein: an antifungal protein from rubber-tree (Hevea brasiliensis) latex // Planta. 1991. V.183. P.258−264.
- Vardhini B.V., Rao S.S.R. Effect of brassinosteroids on nodulation and nitrogenase activity in groundnut (Arachis hopogaea L.) // Plant Growth Regul. 1999. V. 28. P. 165−167.
- Vega-Palas M.A., Ferl R.J. The Arabidopsis Adh gene exhibits diverse nucleosome arrangements within a small DNase I-sensitive domain // Plant Cell. 1995. V.7. P.1923−1932.
- Verma D.P.S., Maclachlan G.A. Metabolism of poly (A) in plant cells // Plant Physiol. 1976. V.58 N 3. P.405−410.
- Wada K., Marumo S. Ikekawa N., et al. Brassinolide and homobrassinolide promotion of lamina inclination of rice seedlings // Plant Cell Physiol. 1981. V.22. N.2. P.323−325.
- Wasilewski L.D., Kleczkowsky K. Preferential stimulated of the plant mRNA synthesis by gibberellic acid // Eur. J. Biochem. 1976. V.66. N 2. P.405−412.
- Weidhase R.A., Kramell H.-M., Lehmann J., Liebisch W., Lerbs W., Parthier B. Methyl jasmonate-induced changes in the polypeptide pattern of senescing barley leaf segments // Plant Sci. 1987. V.51. P.177−186.
- Wenzel M., Rudiger H. Interaction of pea (Pisum sativum L.) lectin with pea storage proteins // J. Plant Physiol. 1995. V.145. P.191−194.
- Wilkins T.A., Bednarek S.Y., Raikhel N.V. Role of propeptide glucan in post-translational processing and transport of barley lectin to vacuoles in transgenic tobacco // Plant Cell. 1990. V.2. N.2. P.301−313.
- Wilkins T.A., Raikhel N.V. Expression of rice lectin is governed by two temporally and spatially regulated mRNAs in developing embryos // Plant Cell. 1989. V.l. P.541−549.
- Williams M.E., Foster R., Chua N.-H. Sequences flanking the hexameric G-box core CACGTG affect the specificity of protein binding // Plant Cell. 1992. V.4. P.485−496.
- Wobus U., Weber H. Seed maturation: genetic programmes and control signals // Curr. Opin. Plant Biol. 1999. V. 2. P. 33−38.
- Worley C.K., Zenser N., Ramos J., Rouse D., Leyser 0.5 Theologis A., Callis J. Degradation of Aux/IAA proteins is essential for normal auxin signaling // Plant J. 2000. V.21. N 6. P.553−562.
- Wright C.S. Refinement of the cristall structure of wheat germ agglutinin isilectin 2 at 1*8 A resolution//J. Mol. Biol. 1987. V.194. N.3. P.501−529.
- Xu N., Hagen G., Guilfoyle T.J. Multiple auxin response modules in the soybean SAUR 15A promoter // Plant Sci. 1997. V.126. P.193−201.
- Yamaguchi-Shinozaki K., Shinozaki K. A novel cis-acting element in an Arabidopsis gene is involved in responsiveness to drought, low-temperature, or high-salt stress // Plant Cell. 1994. V.6. P.251−264.
- Yopp J.H., Colclasure G.C., Mandava N. Effects of brassin-complex on auxin and gibberellin mediated events in the morphogenesis of the etiolated bean hypocotyl // Physiol. Plant. 1979. V.46. P.247−254.
- Zurek D.M., Clouse S.D. Molecular cloning and characterization of a brassinosteroid-regulated gene from elongating soybean (Glycine max L.) epicotyls//Plant Physiol. 1994. V.104. N.l. P.161−170.
- Zurek D.M., Rayle D.L., McMorris T.C., Clouse S.D. Investigation of gene expression, growth kinetics, and wall extensibility during brassinosteroid-regulated stem elongation // Plant Physiol. 1994. V.104. N.2. P.505−513.