Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Роль компонентов системы транспорта глюкозы в проявлении физиологических свойств бактерий рода Erwinia

Диссертация: Роль компонентов системы транспорта глюкозы в проявлении физиологических свойств бактерий рода Erwinia
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

ФТС — мультиферментный комплекс, состоящий из ряда цитоплаз-матических общих и мембранных субстратспецифичных белков. Система катализирует ФЕП-зависимое фосфорилирование углеводов Б-глюкои Б-манно-конфигураций, а также шестиатомных спиртов, называемых ФТС-субстратами. В процессе фосфотрансферазной реакции фосфорильная группа от ФЕП передается общим компонентом ФТС ферментом I (Ф1… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Структура и функции ФТС у энтеробактерий
    • 1. 2. Общие компоненты ФТС
      • 1. 2. 1. Фермент I
      • 1. 2. 2. Белок НРг
    • 1. 3. Генетика ФТС. Регуляция синтеза общих и 11 субстратспецифичных компонентов ФТС
      • 1. 3. 1. Специфические компоненты
      • 1. 3. 2. р1з-оперон
    • 1. 4. Свойства мутантов энтеробактерий, дефектных по 15 компонентам ФТС
    • 1. 5. Участие белков ФТС в регуляции физиологических процессов 15 бактериальной клетки
      • 1. 5. 1. ФТС и явление «исключение индуктора»
      • 1. 5. 2. Роль компонентов ФТС в регуляции активности 18 аденилатциклазы
      • 1. 5. 3. Роль ФТС в регуляции генной активности
    • 1. 6. ФТС бактерий рода Епуппа
    • 1. 7. Пектолитические ферменты бактерий рода Егмша
      • 1. 7. 1. Генетический контроль синтеза пектолитических ферментов 25 ЕпуЫа
      • 1. 7. 2. Регуляция синтеза пектатлиаз у Епмта
    • 1. 8. Целлюлолитические ферменты и регуляция их синтеза у 28 бактерий рода Етииа
  • Глава 2. Общая характеристика объектов и методов исследования
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Получение и характеристика pts-мутантов бактерий рода 39 Erwinia
      • 3. 1. 1. Выделение мутантов бактерий рода Erwinia с нарушением 3 9 утилизации глюкозы
      • 3. 1. 2. Утилизация углеводов у выделенных glu" — мутантов
      • 3. 1. 3. Скорость транспорта ФТС-углеводов у выделенных мутантов 51 бактерий рода Erwinia
    • 3. 2. Устойчивость продукции пектолитических ферментов к 53 катаболитной репрессии глюкозой
    • 3. 3. Клонирование pts-генов бактерий рода Erwinia
      • 3. 3. 1. Клонирование pts-генов бактерий Е. chrysanthemi и Е. 54 atroseptica
      • 3. 3. 2. Клонирование гена ptsl бактерий рода Erwinia 55 in vivo
      • 3. 3. 3. Экспрессия ptsl-генов в гомо- и гетерологичных системах
      • 3. 3. 4. Клонирование гена ptsH
      • 3. 3. 5. Клонирование гена Е. chrysanthemi, комплементирующего 66 мутацию в штамме 052. Идентификация мутации
    • 3. 4. Картирование генов ptsl и ptsH Е. chrysanthem
    • 3. 5. Активность ферментов у транспортных мутантов бактерий Е. 72 chrysanthemi и Е. atroseptica
      • 3. 5. 1. Синтез Р-галактозидазы у штаммов Е. chrysanthemi и Е. 72 atroseptica, дефектных по общим компонентам ФТС
      • 3. 5. 2. Внутриклеточная концентрация цАМФ у транспортных 75 мутантов бактерий рода Erwinia
      • 3. 5. 3. Влияние pts-мутаций на продукцию внеклеточных ферментов 76 бактериями Е. chrysanthemi и Е. atroseptica
        • 3. 5. 3. 1. Влияние мутаций ptsl и ptsH на продукцию пектатлиаз 76 бактериями рода Erwinia
        • 3. 5. 3. 2. Влияние мутаций ptsl и ptsH на динамику синтеза 78 пектатлиазы у Erwinia
        • 3. 5. 3. 3. Регуляция синтеза изоферментов пектатлиаз
        • 3. 5. 3. 4. Целлюлолитическая активность ptsl-мутантов
        • 3. 5. 3. 5. Изучение патогенных свойств pts-мутантов бактерий Е. atro- 89 septica в системе «бактерия — растение-хозяин»
  • Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Роль компонентов системы транспорта глюкозы в проявлении физиологических свойств бактерий рода Erwinia (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Вопрос адаптации бактерий к изменяющимся условиям внешней среды до настоящего времени остается одним из наиболее актуальных в микробиологии. Одним из механизмов такой адаптации является функционирование системы транспорта углеводов: фосфоенолпируват (ФЕП): углевод фосфотрансферазной системы (ФТС) (104). Существование ФТС показано у 64 видов бактерий (79).

ФТС — мультиферментный комплекс, состоящий из ряда цитоплаз-матических общих и мембранных субстратспецифичных белков. Система катализирует ФЕП-зависимое фосфорилирование углеводов Б-глюкои Б-манно-конфигураций, а также шестиатомных спиртов, называемых ФТС-субстратами. В процессе фосфотрансферазной реакции фосфорильная группа от ФЕП передается общим компонентом ФТС ферментом I (Ф1) на цитоплазматический низкомолекулярный переносчик фосфата — белок НРг, также являющимся общим компонентом системы и выступающим донором этой группы в ее дальнейшей транслокации по цепи субстратспецифичных компонентов ФТС к поступающему в клетку ФТС-субстрату. Специфичные компоненты — ферменты II (ФП) — осуществляют непосредственную передачу фосфата на углевод, и, как правило, связаны с мембраной.

Изучение свойств мутантов, в первую очередь, дефектных по общим белкам, позволило установить, что ФТС, первоначально описанная как транспортная система для ряда источников углерода (76), принимает участие в регуляции многих физиологических процессов у бактерий: утилизация углеводов, не относящихся к ФТС-субстратамсинтез и активность ферментоввирулентностькатаболитная репрессияхемотаксиссинтез фимбрий и пил ейпроникновение в бактериальную клетку ДНК фага X и т. д. (103,104). В качестве регуляторов этих процессов выступают как общие (Ф1 и белок.

НРг), так и субстратспецифичные (некоторые ФП) компоненты этой системы.

В настоящее время считается, что ФТС, в целом, является координирующей и регулирующей системой, позволяющей бактериальной клетке легко адаптироваться к изменяющимся условиям среды обитания (103,104).

На сегодняшний день наиболее полно, генетически и биохимически, охарактеризована ФТС представителей сем. Enterobacteriaceae — бактерий Escherichia coli и Salmonella typhimurium: картированы и секвенированы pts-геныопределено участие компонентов этой системы в регуляции метаболизма (103).

Однако практически ничего не известно, за исключением данных, приведенных в нескольких публикациях (31, 57) о строении и функциях ФТС у членов этого же семейства — бактерий рода Erwinia. Обладая многими схожими чертами с бактериями Е. coli, эти фитопатогенные микроорганизмы, тем не менее, имеют более сложный комплекс свойств, связанный с присутствием факторов вирулентности, вполне вероятно, также регулируемый ФТС.

Бактерии рода Erwinia повсеместно распространены в природе и вызывают ряд заболеваний высших растений — «черную ножку», «мокрую гниль» и «водянку». По некоторым оценкам прямые потери урожая важнейших сельскохозяйственных культур во время вегетации и хранения огромны (97). Патогенность этих бактерий связана с продукцией деполимеризующих внеклеточных ферментов: пектатлиаз, целлюлаз и протеаз, являющейся существенным фактором вирулентности (70).

В связи с этим, целью настоящей работы являлось изучение роли общих компонентов ФТС на физиологические свойства бактерий Erwinia chrysanthemi и двух подвидов бактерий Erwinia carotovora: carotovora и atroseptica.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить ряд задач:

1. Получить штаммы бактерий рода Erwinia с дефектами в общих компонентах глюкозной транспортной системы.

2. Изучить способность мутантных бактерий к утилизации различных источников углерода.

3. Выявить эффекты мутационного повреждения общих компонентов глюкозной ФТС на выражение катаболитчувствительных оперонов у Эрвиний.

4. Определить расположение генов, детерминирующих синтез общих белков этой системы, на хромосоме Erwinia и клонировать данные гены.

Для решения поставленных задач были использованы современные микробиологические, генетические и биохимические методы.

В результате проведенных исследований с помощью двух методов мутагенеза были получены штаммы различных видов Erwinia с дефектами в генах ptsl и ptsH. У выделенных мутантов была нарушена утилизация как ФТС-субстратов, так и источников углерода, имеющих собственные транспортные системы (не-ФТС-субстраты). Оказалось, что в отличие от соответствующих мутантов бактерий Е. coli, уровень цАМФ у мутантных бактерий Erwinia был сравним с таковым у клеток дикого типа. Анализ результатов, полученных при изучении дифференциальной скорости синтеза ß—галактозидазы и продукции внеклеточных ферментов, позволил предложить модель регуляции деятельности индуцибельных оперонов у бактерий рода Erwinia. Впервые было продемонстрировано, что бактерии Е. atroseptica, дефектные по гену ptsl, не способны вызывать развитие симптомов заболевания у растения-хозяина. Клонирован in vivo ген ptsl бактерий Е. chrysanthemi и Е. atroseptica. Путем картирования мутаций у бактерий Е. chrysanthemi показано, что гены, отвечающие за синтез общих компонентов ФТС, расположены на 100 и 175 минутах генетической карты хромосомы и не образуют группу сцепления.

Анализ полученных данных позволяет предположить, что, как у бактерий Е. coli и S. typhimurium, так и у Erwinia, фосфотрансферазная система занимает, вероятно, одно из центральных мест в регуляции физиологических процессов.

Результаты, полученные в настоящем исследовании, имеют не только теоретическое, но и практическое значение. Сведения, касающиеся влияния общих компонентов ФТС на продукцию внеклеточных ферментов, являющихся одними из основных факторов вирулентности, можно использовать при изучении процесса патогенеза, понимание механизмов которого должно привести к разработке эффективных способов защиты культурных растений от болезней, вызываемых фитопатогенными Erwinia. Кроме того, поскольку часть экзоферментов (пектатлиаза) применяется в пищевой и текстильной промышленности, а также в научных исследованиях при изучении строения растительных клеточных стенок и структуры пектиновых биополимеров (114), существует необходимость в конструировании штаммов-сверхпродуцентов. Этому могут способствовать полученные данные по регуляции синтеза внеклеточных ферментов со стороны компонентов ФТС.

ВЫВОДЫ.

1. Полученные штаммы бактерий Епуциа сапЛоуога зиЬэр. сагоШуога -1183, Епуппа carotovora эиЬзр. айозерИса — 1−4, 6−4 и 1−73, Епуииа сЬгу-БапШегш ЕЫА49 — 169, 1449П, 49/48, 49/50 и 49/55, имеющие нарушения в утилизации глюкозы, идентифицированы как мутанты по генам и р! зН, кодирующим общие компоненты фосфоенолпируватзависимой фосфотранс-феразной системы.

2. Присутствие мутаций в генах и ptsH приводит к нарушению транспорта и утилизации как ФТС-, так и не-ФТС-углеводов клетками Еплата.

3. Мутации р1б1 и р! зН картированы в разных областях хромосомы бактерий Епуипа сИгузапШегш ЕКА49: — на 100, а р1вН — на 175 минуте генетической карты хромосомы. Такая локализация выделенных мутаций указывает на то, что гены р! з1 и у этих бактерий, возможно, не образуют оперонную структуру.

4. Клонированные р1з1-гены бактерий Е. сИгузапШегш и Е. айоэерйса комплементировали эффекты мутантных р1з1-генов в гомои гетероло-гичных системах.

5. Мутационное повреждение общих компонентов ФТС у изученных бактерий Е. сИгуБапШегш и Е. а^оверйса не влияет на внутриклеточное содержание цАМФ.

6. У р1з1- и ptsH-мyтaнтoв бактерий Е. скгузапйюпп и Е. ай-оэерИса снижены экспрессия генов лактозного оперона и продукция внеклеточных ферментов — пектатлиазы и целлюлазы, что свидетельствует о нарушениях в индукции катаболитчувствительных оперонов. При этом синтез индуцибель-ных ферментов становится устойчивым к катаболитной репрессии глюкозой.

7. Мутации по общим компонентам ФТС ведут к снижению вирулентных свойств Эрвиний. Показано, что мутант по гену бактерий Е. айозерйса утрачивает способность вызывать характерные симптомы заболевания «черная ножка» у растения-хозяина.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.В., Балтага С. В., Пономарева Н. П. Методы анализа пектиновых веществ, гемицеллюлоз и пектиновых ферментов в плодах. Кишинев, 1970. 62с.
  2. Е.В., Песнякевич А. Г., Николайчик Е. А. Характеристика мутантов бактерий Erwinia carotovora subsp. atroseptica 3−2 с нарушенной секрецией пектатлиазы// Прикл. биохим. и микробиол. 1995. Т.31. № 4. С. 447 -452.
  3. Т.Н., Габриэлян Т. Р., Бурд Г. И., Гершанович В.Н. Lac-промотор место действия pts-мутаций на синтез ß--галактозидазы у Escherichia coli//Докл. АН СССР. 1976. Т.229. № 3. С. 1248 — 1250.
  4. Т.Н., Ерлагаева P.C., Кызылова H.A., Гершанович В.Н. ptsS новый элемент регуляции фруктозного регулона у Escherichia coli К12// Мол. генет. микробиол. вирусол. 1988а. Т.2. С. 41 — 44.
  5. Т.Н., Ерлагаева P.C., Добрынина О. Ю., Гершанович В. Н. Мутация fruB во фруктозном регулоне, влияющая на синтез ß--галактозидазы и активность аденилатциклазы у Е. coli Kl 2// Мол. генет. микробиол. вирусол. 1988b. Т.4. С. ЗЗ 39.
  6. Г. И., Большакова Т. Н., Сапрыкина Т. П., Гершанович В. Н. Снижение скорости биосинтеза РНК и белка у термочувствительного мутанта Escherichia coli К-12, дефектной по фосфотрансферазной системе Ро-земана// Мол. биология. 1971. Т.5. № 3. С.384 389.
  7. В.Н., Бурд Г. И., Юровицкая Н. В., Скавронская А. Г., Ключарева В. В., Шаболенко В. П. Мутант Escherichia coli с нарушенными системами утилизации глюкозы//Мол. биология. 1967. Т.1. № 1. С. 104 -113.
  8. В.Н., Бурд Г. И., Большакова Т. Н., Ерлагаева P.C., Умя-ров А.М., Габриэлян Т. Р. Система транспорта глюкозы и регуляция генной активности у Escherichia coli К-12// Микробиология. 1977. Т.46. С.912 919.
  9. В.Н., Большакова Т. Н., Ерлагаева P.C., Глезина М.Л.,
  10. О.Ю. Фосфоенолпируватзависимая фосфотрансферазная система и регуляция метаболизма в бактериальной клетке// Усп. совр. биол. 1987. Т.103. Вып.2. С. 173 -188.
  11. Д. Новое в клонировании ДНК. Методы. Москва: Мир, 1989. 367 с.
  12. Т.А., Гершанович В. Н. Амплификация гена аденилат-циклазы в клетках Escherichia coli К-12// Мол. биол. 1986. Т.20. Вып.1. С.154 162.
  13. В.Г., Лившиц В. А. Современные методы создания промышленных штаммов микроорганизмов. Москва: Высшая школа, 1988. 207 с.
  14. А.Н. Биологическая характеристика пектолитических бактерий рода Erwinia// Дисс.. канд. биол. наук: 03. 00. 07. Минск, 1981. 158 с.
  15. А.Н., Прокулевич В. А., Белясова H.A. Фомичев Ю. К. Мутанты Erwinia chrysanthemi, дефектные по секреции внеклеточных эндо-пектатлиаз//Мол. генет. микробиол. вирусол. 1984. № 5. С. 11 -15.
  16. А.Н., Фомичев Ю. К. Секреция пектатлиаз клетками Erwinia chrysanthemi и Erwinia carotovora var. atroseptica// Микробиология. 1996. T.65. № 3. С. ЗЗЗ 338.
  17. А.Н., Даценко К. А., Литвинова Е.В.Свойства мутантов бактерий Erwinia chrysanthemi ENA49, дефектных по компонентам фосфо-енолпируватзависимой глюкозофосфотрансферазной системы// «Дост. совр. биол. и биол. обр.». Минск, 1997. С. 108 -116.
  18. И.Я., Умяров A.M., Бурд Г. И. // Биохимия. 1981. Т.46. № 4. С. 732.
  19. E.B. Продукция пектатлиазы бактериями Erwinia са-rotovora subsp. atroseptica// Дисс. канд. биол. наук: 03. 00. 07. Минск, 1996. 104 с.
  20. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. Москва: Мир, 1984. 479 с.
  21. Дж. Эксперименты в молекулярной генетике. Москва: Мир, 1976. 436 с.
  22. Е.А., Песнякевич А. Г. Картирование хромосомы бактерий Erwinia carotovora subsp. atroseptica 3−2// Генетика. 1995a. T.31. № 7. С.889 895.
  23. Е.А., Песнякевич А. Г. Кольцевая генетическая карта хромосомы бактерий Erwinia carotovora subsp. atroseptica 3−2// Генетика. 1995b. T.31. № 8. C.1052 1058.
  24. Л.Б., Евтушенков A.H. Получение и некоторые свойства мутантов Erwinia aroideae 9 В с синтезом пектатлиазы, резистентным к ката-болитной репрессии глюкозой// Матер. V науч. конф. мол. уч. АН БССР. Минск: Наука и техника, 1978. С. 95 96.
  25. В.А., Евтушенков А. Н., Фомичев Ю. К. Регуляция синтеза внеклеточной эндопектатлиазы бактериями Erwinia chrysanthemi ENA 49//Мол. генет. микробиол. вирусол. 1984. Т.8. С. 26 30.
  26. Прокулевич В. А. Организация генома Erwinia chrysanthemi// Дисс.. докт. биол. наук: 03.00.15. Минск, 1988. 329с.
  27. В.Е., Евтушенков А. Н., Фомичев Ю. К. Изоферменты внеклеточных пектатлиаз бактерий рода Erwinia// Биохимия. 1988. Т.53. Вып. 10. С.1628 1638.
  28. В.Е., Евтушенков А. Н., Фомичев Ю. К. Зависимость состава пектолитических ферментных комплексов бактерий рода Erwinia от химического состава среды культивирования// Прикл. биохим. и микробиол. 1992. Т.28. № 1. С.87−93.
  29. Aiba H. Autoregulation of the Escherichia coli crp gene, CRP is a trans-criptional repressor for its own gene// Cell. 1983. V.32. P. 141 149.
  30. Aiba H. Transcription of the Escherichia coli adenylate cyclase gene is negatively regulated by cAMP-cAMP receptor protein// J. Biol. Chem. 1985. V.260. № 5. P.3063 3070.
  31. Aldrige P., Metzger M., and Geider K. Genetics of sorbitol metabolism in Erwinia amylovora and its influence on bacterial virulence// Mol. Gen. Genet. 1997. V.256. P.611 -619.
  32. Alexsander J.K., and Tyler B. Genetic analysis of succinate utilization in Enzyme I mutants of the phosphoenolpyruvate: sugar phosphotransferase system of Escherichia coli// J. Bacteriol. 1975. V.124. № 1. P. 252 261.
  33. Amin N., and Peterkofsky A. A dual mechanism for regulating cAMP levels in Escherichia coli//J. Biol. Chem. 1995. V.270. № 20. P. 11 803 11 805.
  34. Anderson B., Weigel N., Kundig W., Roseman S. Sugar transport. Purification and properties of a phosphocarrier protein (HPr) of the phosphoenolpyruvate: dependent phosphotransferase system of Escherichia coli// J. Biol. Chem. 1971. V.246. P.7023 7033.
  35. Barras F., Gijsegem F., Chatterjee A.K. Extracellular enzymes and pathogenesis of soft-rot Erwinia// Annu. Rev. Phytopathol. 1994. V.32. P.201 234.
  36. Boccara M., Diolez A., Rouve M., Kotoujansky A. The role of individual pectate lyase of Erwinia chrysanthemi strain 3937 in pathogenicity on saint-paulia plants// Phsiol. Mol. Plant Pathol. 1988. V.33. № 1. P.95 -104.
  37. Boccara M., Aymeric J.L., and Camus C. Role of endoglucanase in Erwinia chrysanthemi 3937 virulence on Saintpaulia ionantha// J. Bacteriol. 1994. V.176. P. 1524- 1526.
  38. Bolshakova T.N., Gabryelian T.R., Bourd G.I., Gershanovitch V.N. Involvement of the Escherichia coli phosphoenolpyruvate-dependent phosphotransferase system in regulation of catabolic genes//Eur. J. Biochem. 1978. V.89. P.483 490.
  39. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding// Anal. Biochem. 1976. V.22. № 3. P.248 254.
  40. Chatterjee A., Murata H., McEvoy J.L., and Chatterjee A. Global regulation of pectinases and other degrative enzymes in Erwinia carotovora subsp. carotovora, the incitant of postharvest decay in vegetables// Hort Science. 1994. V.29. № 7. P.754 758.
  41. Chauvin F., Brand L., and Roseman S. Enzyme I: protein and potential regulator of the bacterial phosphoenolpyruvate: glycose phosphotransferase system// Research in Microbiology. 1996. V. 147. P.471 479.
  42. Condemine G., Robert-Baudouy J. Tn5 insertion in kdgR, a regulatory gene of the polygalacturonate pathway in Erwinia chrysanthemi// FEMS Microbiol. Letters. 1987. V.42. P. 39 46.
  43. Crasnier M., Dumay V., and Danchin A. The catalytic domain of Escherichia coli Kl 2 adenylate cyclase as revealed by deletion analysis of the cya gene// Mol. Gen. Genet. 1994. V.243. P.409 416.
  44. Crasnier M. Cyclic AMP and catabolite repression// Research in Microbiology. 1996. V.147. P.479 482.
  45. Dahl R., Wang R.J., and Morse M.L. Effect of pleiotropic carbohydrate mutations (cts) on tryptophan catabolism// J. Bacteriol. 1971. V.107. № 2. P.513 -518.
  46. Danelly H.K., Roseman S. NAD+ and NADH regulate an ATP-dependent kinase that phosphrylates Enzyme I of the Escherichia coli phosphotransferase system//Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1992 V.89. P.11 274 11 276.
  47. De Lorenzo V., Herrero M., Jakubzik U., and Timmis K.N. MiniTn5 transposon derivatives for insertion mutagenesis, promoter probing, and chromosomal insertion of cloned DNA in gram-negative Eubacteria// J. Bacteriol. 1990. V.172. № 11. P.6568 6572.
  48. De Reuse H., Huttner E., and Danchin A. Analysis of the ptsH-ptsI-crr region in Escherichia coli K-12: evidence for the existence of a single transcriptional unit// Gene. 1984. V. l 126. P.31 40.
  49. De Reuse H., and Danchin A. The ptsH, ptsl, and err genes of the Escherichia coli phosphoenolpyruvate-dependent phosphotransferase system: a complex operon with several modes of transcription// J. Bacteriol. 1988. V. l70. № 9. P.3827 3837.
  50. De Reuse H., Levy S., and Danchin A. Genetics of the PTS components in Escherichia coli K-12// FEMS Microbiol. Lett. 1989. V.63. P.61 68.
  51. De Reuse H., and Danchin A. Positive regulation of the pts operon of Escherichia coli: genetic evidence for a signal transduction mechanism// J. Bacteriol. 1991. V.173. № 2. P.727 733.
  52. Eckardt T. A rapid method for the identification of plasmid deoxyribonucleic acid in bacteria// Plasmid. 1978. V.l. P.584 589.
  53. Erni B. Group translocation of glucose and other carbohydrates by the bacterial phosphotransferase system// Inter. Rev. Cytol. 1992. V.137A. P.127 -148.
  54. Feucht B.U., and Saier M.HJr. Fine control of adenylate cyclase by the phosphoenolpyruvate: sugar phosphotransferase systems in Escherichia coli and Salmonella typhimurium //J. Bacteriol. 1980. V.141. № 2. P.603 610.
  55. Fox D.K., Presper K.A., Adhya S., Roseman S., and Garges S. Evidence for two promoters upstream of the pts operon: regulation by the cAMP receptor protein regulatory complex// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V.89. P.7056 -7059.
  56. Fraser A.D.E., and Yamazaki H. Significance of p-galactosidase repression in glucose inhibition of lactose utilization in Escherichia coli// Current Microbiol. 1982. V.7. P.241 244.
  57. Geers R.H., Izzo F., Postma P.W. The PEP: fructose phosphotransferase system in Salmonella typhimurium: FPr combines Enzyme III611 and pseudo-HPr activities//Mol. Gen. Genet. 1989. V.216. P.517 525.
  58. Gijsegem F., and Toussaint A. Chromosome transfer and R-prime formation by an RP4: mini-Mu derivative in Escherichia coli, Salmonella typhimurium, Klebsiella pneumoniae, and Proteus mirabilis// Plasmid. 1982. V.7. P.30 44.
  59. Guiso N., and Blazy B. Regulatory aspects of the cyclic AMP receptor protein in E. coli K12// Biochem. Biophys. Res. Commun. 1980. V.94. P.278 283.
  60. Hedegaard L., and Danchin A. The cya gene region of Erwinia chrysanthemi B374: organization and gene products// Mol. Gen. Genet. 1985. V.21. № 1. P.38 42.
  61. Hinton J.C.D., Sidebotham J.M., Hyman L.J. Isolation and characterization of transposon induced mutants of Erwinia carotovora subsp. atroseptica// Mol. Gen. Genet. 1989. V.217. № 1. P.141 148.
  62. Hugouvieux-Cotte-Pattat N., and Robert-Baudouy J. Lactose metabolism in Erwinia chrysanthemi// J. Bacteriol. 1985. V.162. № 1. P.248 255.
  63. Hugouvieux-Cotte-Pattat N., Reverchon S., Robert-Baudouy J. Expanded lineage map of Erwinia chrysanthemi strain 3937// Mol. Microbiol. 1989. V.3. P.573 580.
  64. Hugouvieux-Cotte-Pattat N., Condemine G., Nasser W., and Reverchon S. Regulation of pectinolysis in Erwinia chrysanthemi// Annu. Rev. Microbiol. 1996. V.50. P.213 257.
  65. Ishizuka H., Hanamura A., Kunimura T., and Aiba H. A lowered concentration of cAMP receptor protein caused by glucose is in an important determinant for catabolite repression in Escherichia coli// Mol. Microbiol. 1993. V.10. № 2.P.341 -350.
  66. Island M.D., Wei B.-Y., and Kadner R.J. Structure and function of the uhp genes for sugar phosphate transport system in Escherichia coli and Salmonella typhimurium // J. Bacteriol. 1992. V.174. № 9. P.2754 2762.
  67. Jacob F., Wollman E.L. Sexuality and genetics of bacteria// N.Y.: Acad. Press, Inc., 1961. 460p.
  68. Jones-Mortimer M.C., and Kornberg H.L. Genetic control of inducer exclusion by Escherichia coli K12// J. FEBS Lett. V.48. P.93 95.
  69. Kotoujansky A., Diolez A., Boccara M., Bertheau J. Molecular cloning of Erwinia chrysanthemi pectinase and cellulase structural genes// EMBO J. 1985. V.4.№ 3.P.781 -785.
  70. Kundig W., Ghosh S., Roseman S. Phosphate bound to histidine in a protein as an intermediate in a novel phosphotransferase system. Proc. Natl. Acad. Sci. 1964. V.52. P.1067- 1074.
  71. Lei S.-P., Lin H.-C., Wang S.-S., Wilcox G. Characterization of the Erwinia carotovora pelA gene and its product pectate lyase A// Gene. 1988. V.62. P. 159- 164.
  72. Lei S.-P., Lin H.-C., Wang S.-S., Higaki P., Wilcox G. Characterization of the Erwinia carotovora peh gene and its product polygalacturonase// // Gene. 1992. V.117. P. 119−124.
  73. Lengeler J.W., Titgemeyer F., Vogler A.P., and Wohrl B.M. Structures and homologies of carbohydrate: phosphotransferase system (PTS) protein// Phil. Trans. R. Soc. Lond. 1990. V.326. P.489 504.
  74. Lengeler J.W., Jahreis K., Wehmeier U.F. Enzymes II of the phos-phoenolpyruvate-dependent phosphotransferase systems: their structure and function in charbohydrate transport// Biochemica et Biophisica Acta. 1994. V.2. P.1188 1198.
  75. Leon J., Garcia-Lobo J.M., Ortiz J.M. Fosfomycin inactivates its target enzyme in E. coli cells carrying a fofomycin resistance plasmid// Antimicrob. Agents and Chemother. 1983. V.24. № 2. P.276 278.
  76. Levy S., Zeng G.-Q., and Danchin A. Cyclic AMP synthesis in Escherichia coli strains bearing known deletions in the pts phosphotransferase operon// Gene. 1990. V.86. P.27 33.
  77. LiCalsi C., Crocenzi T.S., Freire E., and Roseman S. Sugar transport by bacterial phosphotransferase system: structural and thermodynamic domains of Enzyme I of Salmonella typhimurium// J. Biol. Chem. 1991. V.266. P. 19 519 -19 527.
  78. Low K.B. Mapping techniques and determination of chromosome size// in Escherichia coli and Salmonella typhimurium cellular and molecular biology. First edition. 1987. P. 1184 1189. ASM PRESS. Washigton, DC.
  79. Magasanik B., and Neidhardt F. Regulation of carbon and nitrogen utilization// in Escherichia coli and Salmonella typhimurium cellular and molecular biology. First edition. 1987. P.1318 1325. ASM PRESS. Washigton, DC.
  80. Majerfeld I.H., Miller D., Spitz E., and Rickenberg H.V. Regulation of the synthesis of adenylat cyclase in Escherichia coli by cAMP-cAMP receptor protein complex//Mol. Gen. Genet. 1981. V. 181. P.470 475.
  81. Merrick M.L., Taylor M., Saier M.HJr., and Reizer J. The role of genes downstream of the ctn structural gene rpoN in Klebsiella pneumoniae// in «Nitrogen fixation: Fundamentals and Applications». 1995. P. 189 194.
  82. Miller J.L. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar//Anal. Chem. 1959. V.31. № 3. P.426 428.
  83. Mount M.S., Berman P.M., Mortlock R.P., Hubbard J.P. Regulation of endopolygalacturonate transeliminase in an adenosine 3', 5'-cyclic monophosphate deficient mutant of Erwinia carotovora//Phytopatol. 1979. V.69. P.117 -120.
  84. Nasser W., Reverchon S., Condemine G., Robert-Baudouy J. Specific interactions of Erwinia chrysanthemi KdgR repressor with different operators of genes involved in pectinolysis// Academic Press Limited. 1994. P.427 440.
  85. Nasser W., Robert-Baudouy J., and Reverchon S. Antagonistic effect of CRP and KdgR in the transcription control of the Erwinia chrysanthemi pec-tinolysis genes//Mol. Microbiol. 1997. V.26. № 5. P.1071 1082.
  86. Pardee A.B., Jacob F., and Monod J. The genetic control and cytoplasmic expression of inducibility in the synthesis of (3-galactosidase of Escherichia coli// J. Mol. Biol. V.l. P. 165 178.
  87. Pastan I., Perlman R.L. Repression of P-galactosidase synthesis by glucose in phosphotransferase mutants of Escherichia coli Repression in the absence of glucose phosphorylation// J. Biol. Chem. 1969. V.224. P.5836 b- 5842.
  88. Perombelon M.C.M., Kelman A. Black leg and other potato diseases caused by soft rot Erwinias// Plant disease. 1987. V.71. № 3. P.283 -287.
  89. Perombelon M.C.M., and Salmond G.P.C. Bacterial soft rots// in Pathogenesis and Host Specifity in Plant Diseases. 1993. Pergamon Press. P. l 20.
  90. Peterkofsky A., Svenson I., and Amin N. Regulation of Escherichia coli adenylate cyclase activity by the phosphoenolpyruvate: sugar phosphotransferase system//FEMS Microbiol. Rev. 1989. V.63. P. 103 108.
  91. Peterkofsky A., Reizer A., Reizer J., Gollop N., Zhu P.-P., and Amin N. Bacterial adenylyl cyclases// Progress in Nucl. Acid Res. And Mol. Biol. 1993. V.44. P.32 65.
  92. Pirhonen M., Karlsson M.-B., Saarilahti H., Palva E.T. Identification of pathogenicity determinants of Erwinia carotovora subsp. carotovora by transpo-son mutagenesis// Mol. Plant-Microbe Interact. 1991. V.4. P.276 283.
  93. Pirhonen M., Flego D., Heikinheimo R., Palva E.T. A small diffusible signal molecule is responsible for the global control of virulence and exoenzyme production in the plant pathogen Erwinia carotovora// EMBO J. 1993. V.12. P.2467 2476.
  94. Postma P.W. Defective enzyme II-BGlc of the phosphoenolpyruvate: sugar phosphotransferase system leading to uncoupling of transport and phosphorylation in Salmonella typhimurium//J. Bacteriol. 1981. V.147. P.382 389.
  95. Postma P.W., Lengeler J.W., Jacobson G.R. Phosphoenolpyruvate: car-bohydrate phosphotransferase system of bacteria//Microbiol. Rev. 1993. V.57. P. 543 594.
  96. Postma P.W., Lengeler J.W., Jacobson G.R. Phosphoenolpyruvate: carbohydrate phosphotransferase systems// in Escherichia coli and Salmonella typhi-murium cellular and molecular biology. Second edition. 1996. V.l. P. 1149 1174. ASM PRESS. Washigton, DC.
  97. Praillet T., Reverchon S., and Nasser W. Mutual control of the PecS/PecM couple, Two proteins regulating virulence-factor synthesis in Erwinia chrysanthemi// Mol. Microbiol. 1997. V.24. № 4. P.803 814.
  98. Py B., Chippaux M., and Barras F. Mutagenesis of cellulase EGZ for studying the general protein secretory pathway in Erwinia chrysanthemi// Mol. Microbiol. 1993. V.7. № 5. P.785 793.
  99. Ramseier T.M. Cra and the carbon flux via metabolic pathways// Research in Microbiology. 1996. V. l47. P.489 494.
  100. Reizer J., Reizer A., and Saier M.H.Jr. Novel phosphotransferase system genes revealed by bacterial genome analysis a gene cluster encoding a unique Enzyme I and the proteins of a fructose-like permease system// Microbiol. 1995. V.141.P.961 -971.
  101. Reverchon S., Van Gijsegem F., Rouve M. Organisation of a pectate lyase gene family in Erwinia chrysanthemi// Gene. 1986. V.29. № 2. P.215 224.
  102. Reverchon S., Nasser W., Robert-Baudouy J. PecS: a locus controlling pectinase, cellulase and blue pigment production in Erwinia chrysanthemi// Mol. Microbiol. 1994. V.11.P.1127- 1139.
  103. Reverchon S., Expert D., Robert-Baudouy J., and Nasser W. The cylic AMP receptor protein is the main activator of pectinolysis genes in Erwinia chrysanthemi// J. Bacteriol. 1997. V.179. № 11. P.3500 3508.
  104. Reznikoff W.S. Catabolite gene activator protein activation of lac transcription// J. Bacteriol. 1992 V.174. № 3. P. 655 658.
  105. Rombouts F.M., Pilnik W. Pectic enzymes// Economic microbiology. Microbial enzymes and bioconversions. Ed. by A.H.Rose. London: Acad. Press, 1980. V.5. P.227 282.
  106. Ryu S., and Garges S. Promoter switch in the Escherichia coli pts ope-ron// J. Biol. Chem. 1994. V.269. P.4767 4772.
  107. Ryu S., Ramseier T.M., Michotey V., Saier M.H.Jr., and Garges S. Effect of the FruR regulator on transcription of the pts operon in Escherichia coli// J. Biol. Chem. 1995. V.270. № 6. P.2489 2496.
  108. Saffen D.W., Presper K.A., Doering T., and Roseman S. Sugar transport by bacterial phosphotransferase system: Molecular cloning and structural analysis of the Escherichia coli ptsH, ptsl, and err genes// J. Biol. Chem. 1987. V. 262. P. 16 241 16 253.
  109. Saier M.H.Jr., Reizer J. Proposed uniform nomenclature for the proteins and protein domains of the bacterial phosphoenolpyruvate: sugar phosphotransferase system// J. Bacteriol. 1992. V.174. P.1433 1436.
  110. Saier M.H.Jr., and Reizer J. The Bacterial phosphotransferase system: new frontiers 30 years later// Mol. Microbiol. 1994. V.13. P.755 764.
  111. Saier M.H.Jr. Cyclic AMP-independent catabolite repression in bacteria// FEMS Microbiol. Lett. 1996a. V.138. P.97 103.
  112. Saier M.H.Jr. Regulatory interactions controlling carbon metabolism: an overview// Research in Microbiology. 1996b. V.147. P.439 448.
  113. Saier M.H.Jr., and Crasnier M. Inducer exclusion and the regulation of sugar transport//Research in Microbiology. 1996c. V.147. P.482 489.
  114. Scholte B.J., Schuitema A.R.J., and Postma P.W. Characterization of factor IIIGlc in catabolite repression-resistant (err) mutants of Salmonella typhimu-rium// J. Bacteriol. 1982. V.149.№ 2. P.576 586.
  115. Schoonejans E. and Toussaint A. Utilization of plasmid pULBl 13 (RP4:Mini-Mu) to construct a lineage of Erwinia carotovora subsp. chrysanthe-mi// J. Bacteriol. 1983. V.154. № 3. P.1489 1492.
  116. Ullmann A., and Danchin A. Role of cyclic AMP in bacteria// Adv. Cyclic Nucleotide Res. 1983. V.15. P. l -15.
  117. Waygood E.B., Sharma S., Bhanot P. The structure of HPr and site-directed mutagenesis// FEMS Microbiol. Rev. 1989. V.63. P.43 52.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!