Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Совершенствование методов количественного определения кислоты аскорбиновой в фармацевтическом анализе

Диссертация: Совершенствование методов количественного определения кислоты аскорбиновой в фармацевтическом анализе
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При выборе подходящего метода для аналитического контроля ЛП часто возникает проблема, присущая практике количественного определения многих веществ. Она связана с тем, что многие методики, удовлетворяющие a priori основным требованиям, предъявляемым к аналитическому контролю, разработаны с использованием индивидуальных веществ, без учета влияния примесей, всегда присутствующих в ЛП, особенно… Читать ещё >

Содержание

  • РАЗДЕЛ 1. ПРОБЛЕМЫ КОЛИЧЕСТВЕННОГО АНАЛИЗА КИСЛОТЫ АСКОРБИНОВОЙ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
    • 1. 1. Кислота аскорбиновая. Физико-химические свойства
    • 1. 2. Кислота аскорбиновая — важный компонент антиоксидантной системы
    • 1. 3. Методы количественного определения КА
      • 1. 3. 1. Титриметрические методы анализа
      • 1. 3. 2. Спектрофотометрические и флюорометрические методы
      • 1. 3. 3. Электрохимические методы
      • 1. 3. 4. Ферментативные методы
      • 1. 3. 5. Хроматографические и электросепарационные методы
    • 1. 4. Фармакопейные методы анализа КА
    • 1. 5. Проблемы стандартизации методов анализа лекарственных веществ.48 .РАЗДЕЛ 2. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ. РЕШЕНИЕ ПРОБЛЕМЫ КОЛИЧЕСТВЕННОГО АНАЛИЗА КА
  • СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКИЙ ПОДХОД
  • ГЛАВА 1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • ГЛАВА 2. ОПТИМИЗАЦИЯ И РАЗРАБОТКА УСЛОВИЙ СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКОЙ МЕТОДИКИ ОПРЕДЕЛЕНИЯ КА С ПРИМЕНЕНИЕМ КИСЛОТЫ ФОСФОРНОМОЛИБДЕНОВОЙ.57 2.1 Валидационная оценка методики анализа КА с использованием
  • ГЛАВА 3. ОЦЕНКА ВЛИЯНИЯ СОПУТСТВУЮЩИХ ВЕЩЕСТВ ПРОБЫ НА РЕЗУЛЬТАТЫ АНАЛИЗА КА СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКИМИ МЕТОДАМИ С ФМК И ЕЕ НАТРИЕВОЙ СОЛЫО
    • 3. 1. Оценка влияния углеводов на результаты количественного определения КА
    • 3. 2. Оценка влияния органических кислот на результаты количественного определения кислоты аскорбиновой
    • 3. 3. Оценка влияния флавоноидов и дубильных веществ на результаты количественного определения кислоты аскорбиновой
    • 3. 4. Оценка влияния стабилизаторов инъекционных форм на результаты определения КА
  • ГЛАВА 4. КОЛИЧЕСТВЕННОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ КА В РАСТИТЕЛЬНОМ СЫРЬЕ И ЛЕКАРСТВЕННЫХ ПРЕПАРАТАХ
    • 4. 1. Количественное определение КА в растворе кислоты аскорбиновой для инъекций
    • 4. 2. Количественное определение К, А в сухих плодах шиповпика. 92 4.3 Количественное определение КА различными методами в сиропе плодов шиповника
    • 4. 4. Количественное определение КА в лекарственном препарате
  • Аскорутин"
  • РАЗДЕЛ 3. РЕШЕНИЕ ПРОБЛЕМЫ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ К, А В ЛП И ЛРС. ПРИМЕНЕНИЕ МЕТОДА КАПИЛЛЯРНОГО ЭЛЕКТРОФОРЕЗА
  • ГЛАВА 5. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • ГЛАВА 6. ВЫБОР УСЛОВИЙ И РАЗРАБОТКА МЕТОДИКИ ОПРЕДЕЛЕНИЯ КИСЛОТЫ АСКОБИНОВОЙ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ КАПИЛЛЯРНОГО ЭЛЕКТРОФОРЕЗА
    • 6. 1. Валидационная оценка методики
  • ГЛАВА 7. ПРИМЕНЕНИЕ МЕТОДА КЭ ДЛЯ АНАЛИЗА КА В ЛП И ЛРС

Совершенствование методов количественного определения кислоты аскорбиновой в фармацевтическом анализе (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

исследования. Одной из основных задач фармацевтической химии и фармации в целом, является совершенствование методик анализа JIB. Оценка качества фармацевтической продукции осуществляется на всех этапах производства ЛП [4,7] и в значительной степени, зависит от надежности используемого метода анализа [13].

Актуальность исследований, направленных на совершенствование методик анализа JIB, связана с введением на фармацевтических предприятиях России правил надлежащей производственной практики (ГОСТ Р 52 249−2004) и изменением подхода к контролю качества ЛП и ЛРС. Повышение требований к чувствительности, точности, правильности, воспроизводимости, технологичности анализа, заставляют пересматривать и совершенствовать уже имеющиеся методики, а так же разрабатывать новые.

Объектом настоящей работы была выбрана кислота аскорбиновая, поскольку с одной стороны, она является веществом с хорошо изученными свойствами и для нее разработаны многочисленные методы определения [28, 29, 30], с другой стороны — это компонент многих ЛП и ЛРС, которые применяются для профилактики и терапии широкого спектра заболеваний [20, 49, 54, 165].

Степень разработанности темы исследования.

В настоящее время, интерес для рутинной фармацевтической практики представляют спектрофотометрические методики, которые характеризуются достаточной для анализа чувствительностью, точностью, простотой выполнения и легко автоматизируются [13]. Однако, при анализе сложных многокомпонентных образцов, предпочтение отдается высокоспецифичным хроматографическим или электрофоретическим методам [50, 108, 127]. Так, фармакопеи Британии, Японии, США рекомендуют использовать для анализа растительного сырья только высокоспецифичные хроматографические методы.

В отечественной фармации, для количественного определения КА используют йодатометрическое титрование и титрование с 2,6 -дихлорфенолиндофенолятом натрия. Эти методики являются длительными, трудоемкими и требуют предварительной (иногда ежедневной) стандартизации титранта. Единственным фармакопейным спектрофотометрическим методом анализа КА является метод на основе натриевой соли кислоты фосфорномолибденовой (ФМ-Ыа), рекомендованный для экстракта плодов шиповника (ФС 42−32−5-96). Однако, этот метод неудобен для использования в рутинной фармацевтической практике, основной реагент нестабилен и требует ежедневного приготовления. Для лекарственных форм КА, содержащих синтетическую субстанцию КА, рекомендованного спектрофотометрического метода анализа не предусмотрено. Так же в отечественной фармакопейной практике не предусмотрено метода, позволяющего эффективно проводить анализ растительного сырья, содержащего КА, несмотря на то, что разрабатываются общие фармакопейные статьи на высокоселективпые методы.

Целыо настоящей работы является оценка применимости титриметрических, спектрофотометрических и электрофоретических методик для анализа КА в субстанции, ЛП и ЛРС.

Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи:

1. Оценить возможность применения общепринятых методов для количественной оценки КА в лекарственных препаратах и ЛРС, учитывая требования современных стандартов и ГОСТов.

2. Адаптировать спектрофогометрическую методику на основе свободной кислоты фосфорномолибденовой для количественного определения КА.

3. Определить основные метрологические характеристики модифицированной методики и возможность ее использования для количественной оценки КА в лекарственных средствах и препаратах.

4. Изучить влияние сопутствующих и вспомогательных веществ, содержащихся в лекарственных препаратах и растительном сырье, на результаты количественного определения КА.

5. Разработать условия для количественного определения КА с использованием метода капиллярного электрофореза.

6. Оценить валидность методик КЗЭ и МЭКХ для анализа КА в ЛП и JIPC.

Научная новизна работы.

Впервые была проведена сравнительная оценка общепринятых методов анализа КА в лекарственных препаратах и JTPC. Показана необходимость проведения процедуры валидации используемых фармакопейных методов анализа и их возможного пересмотра в соответствии с современными нормами и стандартами на примере анализа КА в ЛП и ЛРС.

Впервые изучено влияние монои дисахаридов, органических кислот, флавопоидов, дубильных веществ, натрия сульфита и натрия гидросульфита на правильность определения КА двумя спектрофотометрическими методиками.

Впервые предложена модифицированная методика спектрофотометрического анализа КА на основе реакции с фосфорномолибденовой кислотой и показаны ее возможности и ограничения для анализа КА в ЛП и ЛРС.

Обоснована возможность замены методики йодатометрического титрования на спектрофотометрическую методику для анализа КА в растворе для инъекций.

Предложено использование сепарационных методов анализа, которые позволяют получить результаты, удовлетворяющие требования НТД на препараты, содержащие КА.

Впервые проведена валидационная оценка спектрофот-ометрических и электрофоретических методик количественного определения-'КА в соответствии с требованиями международных документов ISO 5725/ ICH, правилами GMP и ГОСТ Р 5725−2002.

Показано, что метрологические характеристики сепарационных методов при использовании сложного лабораторного оборудования, удовлетворяют всем требованиям для включения их в ФС.

Теоретическая и практическая значимость работы.

На основании проведенных исследований:

Установлено, что прямые спектрофотометрические методы определения КА характеризуются должной правильностью результатов только при анализе простых лекарственных форм. Изучение влияния матрицы многокомпонентных образцов на результаты определения КА, показало необходимость проведения процедуры валидации методики для каждого вида образца. Интерференционные эффекты в таких многокомпонентных объектах как ЛРС, не позволяют определять содержание КА с высокой правильностью методами, основанными на окислительно-востановительных реакциях без предварительной очистки и подготовки образца.

Разработана спектрофотометрическая методика с применением ФМК для анализа КА в субстанции и инъекционных растворах.

Разработана унифицированная методика капиллярного электрофореза для количественного определения КА в ЛП и ЛРС. Показана возможность использования ФК и ПАБК в качестве внутреннего стандарта.

Доказана эффективность применения электросепарационных методов для анализа КА в многокомпонетных образцах.

Проведена апробация методики спектрофотометрического определения КА в инъекционных формах в аналитической лаборатории Центра контроля качества лекарственных средств ГУП «Волгофарм» и ООО «Научно-производственная фирма Фармация».

Результаты диссертационного исследования включены в материалы лекций и используются в учебных и научно-исследовательских процессах учебнопроизводственной аптеки ВолгГМУ и кафедре фармацевтической и токсикологической химии ВолгГМУ.

Методология и методы исследования.

Методологической основой исследования явились статьи Европейской, Японской, Американской Фармакопеи и ГФ XI, XII, ОСТ 42−510−98 «Правила производства и контроля качества лекарственных средств GMP» (раздел «Валидация»), Государственный стандарт РФ ГОСТ Р ИСО 5725−6-2002 под общим заголовком «Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений» в практической деятельности по метрологии (разработке, аттестации и применению методик выполнения измерений), стандартизации методов контроля (испытаний, измерений, анализа), испытаниям продукции, Национальный стандарт России ГОСТ Р 52 249−2004, ГОСТ Р 52 249−2009 «Правила производства и контроля качества лекарственных средств», руководство международной конференции по гармонизации (ICH), труды отечественных и зарубежных ученых.

В работе использовалось следующее оборудование: спектрофотометр Helios, жидкостный хроматограф Shimadzu (30 425−05), прибор для капиллярного электрофореза НРСЕ Agilent Technologies (Gl602А), весы аналитические AB 12 001 (Веста®-, Россия, 36 468−07), термостат воздушный ТС-80 (Россия), термостат водяной ВБ-2 (Россия), автоматические дозаторы фиксированного и переменного объема производства «Ленпипет» (Россия) и «Thermo Labsystems» (Финляндия), мерная стеклянная посуда, посуда из пропилена (2 класса точности) (Экрос). Химические реактивы соответствовали квалификации ХЧ (содержание основного вещества более 99%), субстанция КА соответствовала требованиям, предъявляемым к PCO.

Для количественного определения КА в ЛП и ЛРС использовали два титриметрических метода: с 2,6-ДХФИФ и КЮз, как методы, рекомендованные ГФ для анализа ЛП и ЛРС, спектрофотометрический метод с натриевой солыо фосфорномолибденовой кислоты (ФС 42−3285−96), модифицированная методика на основе свободной фосфорномолибденовой кислоты, метод ВЭЖХ, высокоспецифичный спектрофотометрический ферментативный метод на основе аскорбатоксидазы и метод КЭ.

На защиту выносятся:

• Результаты разработки спектрофотометрической методики количественного определения КА с использованием ФМК для анализа субстанции КА и инъекционного раствора.

• Результаты исследования влияния сопутствующих веществ пробы на правильность количественного определения КА в многокомпонентных образцах.

• Результаты разработки условий и валидационные характеристики для методики количественного определения КА с помощью капиллярного электрофореза.

• Результаты количественного определения КА в лекарственных препаратах и JIPC с помощью метода капиллярного электрофореза.

Степень достоверности и апробация работы.

Для оценки степени достоверности измерений, показателей точности и характеристик погрешности руководствовались рекомендациями (МИ 1317— 2004; РМГ 62—2003; РД 50−453—84- и ГОСТ Р 52 249−2009), неопределенности — ГОСТ Р 54 500.3 — 2011. Количество измерений для расчета аналитических характеристик определялось рекомендациями ГФ XI, «Руководством по валидации методик анализа лекарственных средств (Методические рекомендации)» — 2007 и РМГ 76−2004 ГСИ (Внутренний контроль качества результатов количественного химического анализа). Всего было выполнено более 10 тысяч измерений.

Обработка результатов исследования проводилась согласно требованиям ГФ и рекомендациям Международной конференции по гармонизации ICH с использованием встроенных функций программы МС Excel (среднее значение, стандартное отклонение, стандартная ошибка, 95% доверительный интервал, медиана) и программы Stastitica 6,0 (StatSoft).

Основные теоретические и практические результаты диссертации опубликованы в 11 статьях и докладах, среди которых 3 публикации в ведущих рецензируемых изданиях, рекомендованных в действующем перечне ВАК. Результаты работы защищены рационализаторским предложение на использование спектрофотометрического метода для количественного определения кислоты аскорбиновой с использованием свободной кислоты фосфорномолибденовой (Принято Волгоградским государственным медицинским университетом 22.12.2008).

Основные положения работы докладывались и обсуждались на ежегодных научных конференциях Волгоградского государственного медицинского университета «Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины» в 2005;2007 гг., XIX Зимней молодежной научной школе «Перспективные направления физико-химической биологии и биотехнологии» (Москва, 2007), XIII региональной конференции молодых исследователей Волгоградской области (Волгоград, 2008), «Перспективные разработки науки и техники» (Польша, 2011), «Актуальные проблемы современной науки» (Польша, 2012).

128 ВЫВОДЫ.

1. Сравнительная оценка спектрофотометрических и титриметрических методик для количественного анализа КА в ЛП и ЛРС показала, что для количественного определения КА в многокомпонентных образцах малопригодны методы, основанные на ее окислительно-восстановительных свойствах. Анализ КА в многокомпонентных ЛП и ЛРС требует использования современных сепарационных методов.

2. Разработаны условия для проведения спектрофотометрического анализа КА с использованием ФМК. Рабочий реагент: 4 мМ раствор кислоты фосфорномолибденовой в 0,6 М растворе кислоты серной. Инкубирование проб 90 минут при 37 °C.

3. Методика спектрофотометрического определения КА с применением свободной фосфорномолибденовой кислоты характеризуется высокой точностью и воспроизводимостью, хорошей повторяемостью (2,9% при анализе растворов с концентрацией КА 0,25 мМ- 2,4% - с концентрацией 0,5 мМ и 1,8% при работе с 1 мМ растворов КА). Калибровочный график линеен, значение коэффициента детерминации составило 0,999, предел обнаружения — 0,02 мМ КА в пробе. Стабильность рабочего реактива в 20 раз превышает этот показатель для рабочего реактива метода с натриевой солыо форномолибденовой кислоты. Установлено, что методика валидна для анализа КА в растворе для инъекций.

4. Углеводы (глюкоза, сахароза, фруктоза и лактоза), флавоноиды и дубильные вещества снижают правильность результатов анализа КА в ЛРС с использованием спектрофотометрических методик на основе ФМК и ее натриевой соли, что ограничивает области применения этих методик.

5. Показана возможность использования спектрофотометрической методики с ФМК для анализа КА в присутствии стабилизаторов (натрия сульфита), входящих в состав инъекционных растворов КА.

6. Разработаны условия и обоснованы параметры пригодности системы для электрофоретического определения К, А в ЛП и ЛРС. Кварцевый капилляр 50 мкм х 24,5 см или 50 мкм х 40 см, ведущий электролит рН 9,3 (смесь 25 мМ раствора тетрабората натрия и 50 мМ раствора БОБ), напряжение +20 кВ, температура 25 °C. Ввод пробы с длинного конца капилляра в течение 3 сек при давлении 50 мбар или 10 сек * 30 мбар (для капилляра 40 см). Длина волны детекции 254 нм. Внутренний стандарт ПАБК или ФК (для искусственно синтезированных ЛП).

7. Определены валидационные характеристики методики КЭ для анализа КА. Диапазон линейности составил 0,05−1 мМ, коэффициент регрессии -0,999, рассчитанные значения критериев Стьюдента и Фишера составили 1,5 и 2,15, соответственно. Предел количественного определения КА — 8 мг/л. Показано, что метод КЭ может быть валидирован для контроля качества ЛРС и лекарственных препаратов, содержащих КА.

КА.

ЛРС.

АОС.

ЛВ.

ЛП.

ДАКдкгк-мтт.

РМ8-ГЖХвэжх-кзэ.

МЭКХ-ПАБК-ССК-ФКкч.

ДХФИФ ФМ^аФМК-ДНФГ.

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ кислота аскорбиновая лекарственное растительное сырье антиоксидантная система лекарственное вещество лекарственный препарат дегидроаскорбиновая кислота дикетогулоновая кислота дикетогулоновая кислота.

3-(4,5-диметилтетразолин-2)-2,5-дифенилтетразолиум бромид.

5-метилфеназиниум метасульфата газожидкостная хроматография высокоэффективная жидкостная хроматография капиллярный зонный электрофорез мицеллярная электрокинетическая хроматография п-аминобензойная кислота кислота сульфосалициловая кислота феруловая коэффициент чувствительности натрия дихлофенолиндофенолят натрия фосфорномолибдат кислота фосфорномолибденовая динитрофенилгидразин.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Точное определение содержания КА необходимо для принятия решений по многим вопросам в самых различных областях медицины, фармакологии, гигиены питания и т. д.

При выборе подходящего метода для аналитического контроля ЛП часто возникает проблема, присущая практике количественного определения многих веществ. Она связана с тем, что многие методики, удовлетворяющие a priori основным требованиям, предъявляемым к аналитическому контролю, разработаны с использованием индивидуальных веществ, без учета влияния примесей, всегда присутствующих в ЛП, особенно в ЛРС, в широком диапазоне концентраций. Поэтому недорогие и достаточно точные титриметрические методы, прямые спектрофотометрические методы далеко не всегда удается использовать для определения основного продукта в многокомпонентных образах.

В России десятилетиями действовали фармакопеи, которые были ориентированы на очень низкий уровень оснащения контрольно-аналитической базы и были далеки от идеалов и требований вМР. На сегодняшний день ситуация меняется, и открытые рыночные отношения заставляют производителей ЛП ориентироваться на международные стандарты, что несомненно влечет за собой необходимость радикального пересмотра подходов к анализу многокомпонентных образцов.

Для количественной оценки КА в многокомпонентных образцах со сложной матрицей, следует применять только высокоспецифичные или сепарационные методы анализа. Однако высокоспецифичные методы на основе аскорбатоксидазы является достаточно дорогостоящими и малопроизводительными, что ограничивает их применение в рутинном фармацевтическом анализе. Метод ВЭЖХ широко применяется в фармацевтическом анализе для количественного определения практически всех витаминов в поливитаминных препаратах и многокомпонентных ЛРС. Однако метод не всегда удается использовать с одинаковой легкостью, как для анализа всего разнообразия образцов содержащих КА (особенно, для биологических образцов), так и для определения малых концентраций КА. Кроме того, метод ВЭЖХ требует больших затрат времени на подбор условий проведения анализа, специфичных для конкретного объекта (колонка, элюент и т. п.), подбор пробоподготовки.

Метод КЭ является дополнением и в то же время, альтернативой ВЭЖХ, характеризуется высокой эффективностью, малым расходом недорогих реагентов и простотой эксплуатации, капилляры долговечны и легко регенерируются. Несомненно, как и любой инструментальный метод, метод.

КЭ предполагает материальные затраты на приобретение оборудования, однако такое оборудование является универсальным и позволяет проводить различные анализы.

Предложенная методика КЭ может быть использована для контроля качества лекарственного растительного сырья и лекарственных препаратов, содержащих КА (плоды и сироп шиповника, витаминный сбор № 2, листья бархатцев, растворов КА для инъекций и препарата «Аскорутин»). При анализе искусственно синтезированных препаратов в качестве внутреннего стандарта можно использовать феруловую кислоту или ПАБК, тогда как для ЛРС, только ПАБК.

Для количественного определения КА в инъекционных растворах можно использовать более дешевый и доступный спектрофотометрический метод с ФМК.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Ж.И. Человек и противоокислительные вещества / Абрамова Ж. И., Оксенгендлер Г. И. Л.: Наука, 1985. — 230 с.
  2. , В.Н. Использование метода электрофореза для анализа витамина С / Абдуллабекова В. Н., Равшанов С. П. // Актуальные проблемы образования, науки и производства в фармации: сб.научн.ст. Ташкент, 2005.- С. 73−74.
  3. , Ж.И. Практические аспекты работ по валидации аналитических методик / Аладышева Ж. И., Беляев В. В., Береговых В. В. // Фармация. -2008. № 7. — С. 9−14.
  4. , Л.А. Витамины-антиоксиданты в профилактике и лечении сердечно-сосудистых заболеваний / Алексанян Л. А., Полосьянц О. Б. // РМЖ. Кардиология. 2005. Т.13, № 11. — С. 18−20.
  5. Анализ лекарственных смесей / Арзамасцев А.П.и др. М.: Компания Спутник, 2000.- 275с.
  6. , А.П. Валидация аналитических методов / Арзамазцев А. П., Садчикова Н. П., Харитонов Ю. Я. // Фармация. 2006. — № 4. — С. 8−12.
  7. , А.П. Стандартные образцы лекарственных веществ / Арзамасцев А. П., Сенов П. Л. М.: Медицина, 1978. — 248 с.
  8. , Г. И. Определение дегидроаскорбиновой кислоты в пищевых продуктах / Ахромеева Г. И. // Вопросы питания. 1988. — № 3. — С. 66−88.
  9. П.Барабой, В. А. Биологическое действие растительных фенольных соединений / Барабой В. А. Киев: Наук, думка, 1976. — 260 с.
  10. , В.Г. Анализ лекарственных веществ фотометрическими методами. Опыт работы отечественных специалистов / Беликов В. Г. // Рос. хим. ж. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 2002. — Т. 46, № 4. — С. 63−67.
  11. , В.Г. Фармацевтическая химия: в 2ч. / Беликов В. Г. Пятигорск: Высш. шк., 2003. — 4.2. — 720 с.
  12. , В.М. Химия витаминов / Березовский В. М. М.: Пищевая пром-ть, 1973. — С. 230−300.
  13. , Р.В. Технология лекарственных форм / Бобылев Р. В., Грядунова Г. П., Иванова Л. А. -М.: Медицина, 1991. -544 с.
  14. , В.Н. Специфичность систем антиоксидантной защиты органов и тканей — основа дифференцированной фармакотерапии антиоксидантами / Бобырев В. Н., Почернява В. Ф., Стародубцев С. Г. // Эксперим. и клинич. фармакология.- 1994. — № 57(1) —С. 47−54.
  15. , В.М. Витамины /Борец В.М. -М.: Наука, 1980.-29 с.
  16. , Р. Современные воззрения в биохимии / Бохински Р. М.: Мир, 1987. — 544 с.
  17. , С.М. Витамины / Бременер С. М. М.: Медицина, 1974. — 194 с.
  18. , Л.И. Количественный анализ лекарственных препаратов растительного происхождения / Брутко Л. И. М.: Медицина, 1985. — 249 с.
  19. , Е.Б. Роль токоферолов в пероксидном окислении липидов биомембран / Е. Б Бурлакова, С. А Крашаков, Н. Г Храпова // Биол. Мембраны. 1998. — ТЛ5, № 2. — С. 137−167.
  20. , B.B. Введение в доказательную медицину / Власов В.В.- М.: Медиа-Сфера, 2012. 392 с.
  21. , H.A. Полиметакрилатные сенсоры для определения аскорбиновой кислоты / Гавриленко H.A., Джиганская О. В., Мокроусов Г. М. // Тез.докл. 17 Менделевского съезда по общей и прикладной химии. -Казань: КГУ, 2003. С. 297−297.
  22. , H.A. Оптический сенсор для определения аскорбиновой кислоты / Гавриленко H.A., Мокроусов Г. М., Джиганская О. В. // Журн. аналит. химии. 2004. — Т. 59, № 7. — С. 600−604.
  23. , Г. Н. Новый подход к контролю качества лекарственных средств / Гильдеев Г. Н., Соловьева О. В., Косенко В. В. // Ремедиум. 2006. — № 9. — С. 33−36.
  24. Государственная фармакопея СССР. 10 изд. — М.: Медицина, 1968. -1081 с.
  25. Государственная фармакопея СССР. Вып. 2. Общие методы анализа. Лекарственное сырье. МЗ СССР. 11-е изд., доп. — М.: Медицина, 1990. -400 с.
  26. ГОСТ 30 627.2−98 Методы измерения массовой доли витамина С в продуктах молочных для детского питания. М.: Изд. стандартов, 1999. — 11 с.
  27. ГОСТ 52 441 2007 Премиксы. Определение содержания витаминов: Bi, Вг, В5, Вб, Вс, С методом капиллярного электрофореза. — М.: Стандартинформ, 2007.- 18 с.
  28. ГОСТ Р ИСО 5725−6-2002 Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений. М.: Госстандарт России, 2002. — 42 с
  29. , Г. П. Цитохром Р-450 и витамин С / Григорьев Г. П. // Вопросы питания. -1983. № 4. — С. 5−10.
  30. , Н.И. Химический анализ лекарственных растений / Гринкевич Н. И., Сафронович Л. Н. -М.: Высш. шк, 1983.- 174 с.
  31. , М. Витамин С: Химия и биохимия / Девис М., Остин Дж., Патридж Д.-М.: Мир, 1999.-176 с.
  32. , Н.М. Определение аскорбиновой кислоты методом амперометрического титрования / Дубова Н. М., Слепченко Г. Б., Ковалева H.A. // Сиб. мед. журн. 2002. № 2 — С. 102−105.
  33. , Е.П. Витамин Е как универсальный антиоксидант и стабилизатор биологических мембран / Евстигнеева Е. П., Волков И. М., Чудинова В. В. // Биологич. мембраны.- 1998.- Т. 15, № 2.- С.119−135.
  34. , Б.И. Практикум по биологической химии / Збарский Б. И., Збарский И. Б., Солнцев А. И. М.: МЕДГИЗ, 1954. — 348 с.
  35. , Ю.А. Основы аналитической химии. Методы химического анализа: учебник для вузов / Золотов 10.А., Дорохова E.H., Фадеева В.И.-М.: Высш. шк., 1996, — Кн.2. -461 с.
  36. , Ю.А. Основы аналитической химии. Кн.1. / Зотов Ю. А. М.: Высш.шк., 2004. -412 с.
  37. , С.А. Органическая химия / Зубабян С. А., Колесник Ю.А.- М.: Медицина, 1989.-432 с.
  38. , В.П. Пищевые добавки и пряности / Исупов В. П. СПб: ГИОРД, 2000.- 176 с.
  39. Каждое пятое лекарство в аптеках подделка Электронный ресурс. / Новые известия, — 2004. — 16 июня. — Режим доступа: www.aferizm.ru
  40. , М. Д. Лекарственные средства: в 2 т.- 14-е изд. / Машковский М. Д.-М.: Новая Волна, 2000. 598 с.
  41. , Jl. Методы органического анализа / Мазор Л. М.: Мир, 1986. — 493 с.
  42. , И.А. Витамины и фитогормоны в жизни растений / Карабанов И. А. Минск: Урожай, 1977. — 110 с.
  43. , В. К. Антиоксидантная система и ее функционирование в организме человека / Казимирко В. К., Мальцев В. И., Бутылин В. Ю. // Здоровье Украины. 2004. — № 98. — С. 24−27.
  44. , В.К. Свободнорадикальное окисление и антиоксидантная терапия / Казимирко В. К., Мальцев В. И., Бутылин В. Ю. — Казань: Морион, 2004. —160 с.
  45. , Я.С. Капиллярный электрофорез. Аппаратурное оформление и области применения / Каменцев Я. С., Комарова Н. В. // Партнеры и конкуренты. 2002, — № 1- С. 12−15.
  46. , М.Д. Витамин С и профилактика С-витаминозных состояний на Севере /Киверин М.Д. -Томск: Сев.-Зап. книжное изд., 1971. С. 5−7.
  47. , Е.И. Новый способ определения активности антиоксидантов / Короткова Е. И. //Жури, физич. химии. 2000. — Т. 74, № 9. — С. 1544−1546.
  48. , И.М. Фотометрический анализ. Методы определения органических соединений / Коренман И. М. М.: Химия, 1975. — 360 с.
  49. , Л.И. Коррекция нарушений оксидации у онкологических больных в процессе лучевого лечения / Корытова Л. И., Вершинина С. Ф. // Вестник РНЦРР Минздрава России. 2004. — № 3. — С. 183−185.
  50. , Ю.Ф. Регистрация и контроль качества лекарственных средств в Российской Федерации / Крылов Ю. Ф. // Фарматека. 2006. — № 1(37). — С. 7−10.
  51. , Е.А. Фитотерапия / Ладынина Е. А., Морозова P.C.- М.: Медицина, 1990. 153 с.
  52. Лекарственные препараты в России: справочник ВИДАЛЬ. 12-е изд., перераб, испр. и доп. — М.: АстраФармСервис, 2006. — 1614 с.
  53. , Н.Я. Аналитическая химия / Логинов Н. Я., Воскресенский А. Г., Солодкин И. С. 2-е изд., перераб. — М.: Просвещение, 1979. — 480 с.
  54. , И.В. Профилактическое и клиническое значение витаминов / Маев И. В., Казюлин А. Н., Кучерявый Ю. А. // Фармац. вестник. 2002. — № 12. — С. 17−19.
  55. , М.Д. Лекарственные средства. В 2 т. / Машковский М. Д. -14-е изд.-М.: Новая волна, 2000.-598 с.
  56. , Г. А. Практическое руководство по фармацевтической химии / Мелентьев Г. А. М.: Медицина, 1967. — 340 с.
  57. , Д. А. Фармакогнозия: учебник.- 3-е изд. / Муравьева Д. А. М.: Медицина, 1991.-560 с.
  58. , А.П. Химический состав сухого водного экстракта из шрота шиповника / Матасова А. П., Рыжова Г. Л., Дычко К. А. // Химия раст. сырья. — 1997.-№ 2-С. 28−31.
  59. Методы анализа лекарств / Максютина Н. П. и др. Киев: Здоровье, 1984. — 222 с.
  60. , В.В. Клиническая лабораторная аналитика в пяти томах / Меньшиков В. В. // Основы клинич. лаб. анализа. 2002. — Т. 1. — 860 с
  61. , Д. Биохимия / Мецлер Д. М.: Мир, 1980. Т. 2. — 606 с.
  62. Национальный стандарт ГОСТ Р 52 249−2004 Правила производства и контроля качества лекарственных средств. — Чебоксары: Чебоксарская типография, 2004. — 211 с.
  63. , C.B. Клиническая фармакология антиоксидантов / Оковитый C.B. // ФАРМиндекс-Практик. 2003. — Вып. 5. — С. 85−111.
  64. , Л.В. Растения антигопоксанты (фитотерапия) / Пастушенков Л. В., Лешовская Е. Е. — СПБ.: Хим.-фармац. ин-т., 1991. — 96 с.
  65. , Г. А. Определение аскорбиновой кислоты в моче при гигиенических исследованиях / Петрова Г. А. // Гигиена и санитария. 1989. -№ 5.-С. 49−50.
  66. , Ж.В. Аминокислотный и витаминный состав цветков бархатцев Tagetes patula L. / Подгорная Ж. В., Гранкина И. И. // Науч. обозрение. -2008. № 2. -С. 7−8.
  67. Поллинг, J1. Рак и витамин С / Поллинг JT. М.: Кобра Интернеэшнл, 2001. — 332 с.
  68. , JI. Витамин С и здоровье / Полинг JI. М.: Знание, 1974. — 80 с.
  69. , Х.Н. Методы биохимического анализа растений / Починок Х. Н. -М.: Медицина, 1976.-286 с.
  70. , Л.Д. Сравнительная оценка влияния веществ в растениях / Рыжикова Л. Д. -М.: Медицина, 1999. -138 с.
  71. Руководство по методам контроля качества и безопасности Б АД к пище. Р 4.1.1672−03. М.: Стандартинформ, 2003. — 240 с.
  72. Руководство ICH «Валидация аналитических методик. Содержание и методология» Q2 (R1) // Фармация. -2008, — № 4.-С.3−10.
  73. , В.Б. Методы оценки витаминной обеспеченности населения / Спиричев В. Б., Коденцова В. М., Вржесинская O.A.- ГУ НИИ питания РАМН МЗ РФ. М, 2001. — 68 с.
  74. , В.В. Определение аскорбиновой, дегидроаскорбиновой и дикетогулоновой кислот в биологических тканях / Соколовский В. В., Лебедева Л. В., Лиэлуп Т.Б.// Лаб. дело. -1967. -№ 12. -С.160−162.
  75. , Н. Энциклопедия клинических лабораторных тестов / Титц Н. М.: Лабинформ, 1997. — 960 с.
  76. , З.А. Вольтамперометрическое определение аскорбиновой кислоты в пищевых продукта / Темердашев З. А., Цюпко Т. Г., Федоровская С. Н. // Химия и компьютерное моделирование. Бутлеровские сообщения. -2002. № 8. — С. 46−46.
  77. , A.B. Биохимия и физиология витаминов и антивитаминов / Труфанов A.B. М.: Сельхоз. лит., 1959. — 654 с.
  78. ФС 42−3285−96 Экстракт шиповника сухой -М.:Фармстандарт, 1996. 5 с.
  79. , Д. Высокоэффективный капиллярный электрофорез / Д. Хайгер -М.: Мир, 2000. 115 с.
  80. , Ю.Я. Аналитическая химия. Т.1. Качественный анализ / Харитонов Ю.Я. М. Высш.шк., 2003. — 615с.
  81. , Г. Н. Система аскорбиновой кислоты растений: Монография / Чупахина Г. Н. Калининград: Калинингр. ун-т., 1997. — 120 с.
  82. , E.H. Хроматографические методы анализа / Шаповалова E.H., Пирогов A.B. М.:МГУ, 2007. — 109с.
  83. Ших, К. В. Взаимодействия компонентов витаминно-минеральных комплексов и рациональная витаминотерапия / Ших К. В. // Рос. мед. журн. 2004.-Т. 6, № 12.-С. 34−37.
  84. , У.Д. Определение анионов / Уильяме У. Д. М.: Химия, 1982.-624с.
  85. , H.A. Оценка пригодности (валидация) ВЭЖХ методик в фармацевтическом анализе / Эпшпейн H.A. // Хим.- фармац. журн. 2004. -Т.38., № 4. — С. 40−56.
  86. Abudu, N. Vitamins in human arteriosclerosis with emphasis on vitamin С and vitamin E / Abudu N, Miller J., Attaelmannan M. // Clin Chim Acta. 2004. -Vol.339, N.ll.-P 25−25.
  87. Ahsan, H. Pro-oxidant, anti-oxidant and cleavage activities on DNA of curcumin and its derivatives demethoxycurcumin and bisdemethoxycurcumin / Ahsan IT., Parveen N., Khan N.U. // Chem. Biol. 1999.- Vol.121, N. 2, — P.161−175. .
  88. Anderson, R. Ascorbate and cysteine-mediated selective neutralisation of extracellular oxidants during N-formyl peptide activation of human phagocytes / Anderson R., Lukey P.T., Theron. // Agents and Actions. — 1987. — Vol. 20. — P. 77−78.
  89. Anderson, R. Ascorbic acid and immune Functions: Mechanism of immunostimulation./ Anderson R. — London: Applied Science, 1981. — 249 p.
  90. Arrigoni, O. Ascorbic acid: much more than just anantioxidant / Arrigoni O, De Tullio M. // Biochim Biophys Acta. 2002. -Vol. 15. — P. 1−9.
  91. Asplund, K. Antioxidant vitamins in the prevention of cardiovascular disease: a systematic review / Asplund K. // Intern Med. 2002. — Vol. 251, N 72. — P.89 -92.
  92. Baker, T. Effect of vitamin С on the availability of tetrahydrobiopterin in human endothelial cells / Baker Т., Milstien S, Katusic ZS. // Cardiovasc Pharmacol.-2001.- Vol.37, N333. -P.8−10.
  93. Beisel, W.R. Single nutrients and immunity / Beisel W.R. // J. Clin. Nutr.— 1982. — Vol. 35. —P. 417−419.
  94. Benzie, I. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of «antioxidant power»: the FRAP assay / Benzie I., Strain J. // Analytical Biochemistry. 1996. — Vol. 239. — P. 70−76.
  95. Blois, M. Antioxidant determination by the use of a stable free radical / Blois M. // Nature. 1958. — Vol. 26. — P. 1198−1200.
  96. Bocek, P. Selectivity in Capillary Electrophoresis / Bocek P., Vespalec R. // Anal. Chem. 2000. — Vol. 1. — P. 586−595.
  97. Burton, G. Vitamin E: application of the principles of physical organic chemistry to the exploration of its structure and function / Burton G., Ingold K. // Acc. Chem. Res. 1986. — Vol. 19, N. 194. — P. 201 — 208.
  98. Bowry, V. Tocopherol-mediated peroxidation: the prooxidant effect of vitamin E on the radical-initiated oxidation of human low-density-lipoprotein ./ Bowry, VW, StockerR. //Am Chem Soc. 1993.-Vol.115, N.60 — P. 29.-44.
  99. Burton, G. Vitamin E: application of the principles of physical organic chemistry to the exploration of its structure and function / Burton G., Ingold K. // Acc. Chem. Res. 1986. — Vol.19, N.194. — P. 201−206.
  100. Cancalon, P. Routine analysis of ascorbic acid in juice using capillary electrophoresis: Food authenticity / Cancalon P. // J. of AOAC International. -2001. Vol. 84, N.3. — P. 987−991.
  101. Carr, A. Potential antiatherogenic mechanisms of ascorbate (vitamin C) and alpha-tocopherol (vitamin E) / Carr A., Zhu B., Frei B. // Circ Res. 2000. Vol.87., N.349. — P. 54−55.
  102. Chen, S. Counterflow Isotachophoresis-Capillary Zone Electrophoresis on Directly Coupled Columns of Different Diameters / Chen S., Lee M. // Analyt. Chem. 1998. — Vol. 70. — P. 3777−3780.
  103. Chen, X. Antioxidant effects of vitamins C and E are associated with altered activation of vascular NADPH oxidase and superoxide dismutase in stroke-prone SHR / Chen X, Touyz R, Park J // Hypertension. 2001. — Vol. 38, N. 606. — P. 11−16.
  104. Cuzzocrea, S. Antioxidant therapy: A new pharmacological approach in shock, inflammation, and ischemia/reperfusion injury / Cuzzocrea S., Riley D.P., Caputi A.//Pharmacol. Rev. -2001. Vol.53. — P. 153−159.
  105. Daniel, W. Comparison of Ascorbic Acid Concentrations in Whole Blood Obtained by Venipuncture or by Finger Prick / Daniel W. Bradley, James E. // Clinical Chemistry. 1972. — Vol. 18, N. 9. — P. 89−93.
  106. Dayton P. Ascorbinic acid and blood coagulation / Dayton P., Weiner M. // Ann.N.Y.Acad Sci. 1961. — Vol. 12. — P. 302−306.
  107. Dietz, E. Die relative Bioverfugbarkeit der Ascorbate oxidase des Saddornsaftes fur den Menschen / Dietz E., Witthoft C., Bitsch I. // Food Science and Technology. 2012. — Vol. 52, N. 2. — P. 123−130.
  108. Dror, Y. Recommended micronutrient supplementation for institutionalized elderly / Dror Y., Stern F., Berner Y.N. // J. Nutr. Health. Aging. 2002. — Vol. 6. — P. 295−300.
  109. Elars, R antioxidative activity of phenolic acids and esters / Elars, R, P Urizzi, J. Souchard // Int. Electronic Conf. on Synthetic Organic Chemistry (ECSOC-2) -1998.-Vol. 9. P.1−30.
  110. Evans R.M. The distribution of ascorbic acid between various cellular components of blood, in normal individuals, and its relation to the plasma concentration / Evans R.M., Currie. L., Campbell A. // Brit. J. Nutr. — 1982. — Vol. 47. P. 473−479.
  111. European Pharmacopoeia. Published in accordance with Convection on the Elaboration of a European Pharmacopoeia. Strasbourg: Council of Europe, 2011. — 1336 p.
  112. Gliniecki, K. Hadebutten-Bestimmung des Vitamin C-Gehaltes / Gliniecki K., I-lademann U., Kuhne W. // Pharm. Zeitung. 1999. — Vol. 127. — P. 823−826.
  113. , W., Hallstein H. // Prax. Naturwiss. Chem. 1980. — Vol. 10. — P. 295−304.
  114. Goodman, G. The pharmacological Basis of Therapeutics, Eight Edition / Goodman, G. 2002. — 1236 p.
  115. Grossman, P. Capillary Electrophoresis Theory and Practice / Grossman P., Colburn J. — San Diego: Academic Press Inc., 1992. — 643 p.
  116. Heiger, D. High Performance Capillary Electrophoresis / Heiger D. // Agilent Technologies. 2000. — P. 130−135.
  117. Hempel, G. Strategies to Improve the Sensitivity in Capillary Electrophoresis for the Analysis of Drugs in Biological Fluids / Hempel G. // Electrophoresis. -2000. Vol.21. -P. 691−698.
  118. Heller, R. L-ascorbic acid potentiates endothelial nitric oxide synthesis via a chemical stabilization of tetrahydrobiopterin / Heller R., Unbehaun A, Schellenberg B. // Biol Chem. -2001.- Vol. 276, N.40. P 7−9.
  119. Henderson, P.T. The hydantoin lesions formed from oxidation of 7,8-dihydro-8-oxoguanine are potent sources of replication errors in vivo / Henderson P.T., Delaney J. C, Muller J. G // Biochemistry. 2003. -Vol.42, N.31. — P. 9257- 9262.
  120. Hernandez, J. Determination of L-ascorbic acid and total ascorbic acid in vascular and nonvascular plants by capillary zone electrophoresis / Hernandez J. // Laboratory Robotics and Automation. 1999. — Vol. 11. — P. 121 -126.
  121. Hewitt E., Dickes G. Spectrophotometric Measurements on ascorbic acid and their use for the estimation of ascorbic acid and dehydroascorbic acid in planttissuer / Hewitt E., Dickes G. // The biochemical Journal. 1961. — Vol. 78. N. 2. -P. 384−391.
  122. Huang, A. Ascorbic acid enhances endothelial nitric-oxide synthase activity by increasing intracellular tetrahydrobiopterin / Huang A., Vita J., Venema R. // Biol Chem. 2000. — Vol. 275, N.17. -P. 399106.
  123. ISO 5725−1-1994. Accuracy (trueness Ana precision) of measurement methods and results P. I. Genera principles and definitions. — Geneva, 1994. — 171. P
  124. Ihara, H. A simple and rapid method for the routine assay of total ascorbic acid in serum and plasma using ascorbate oxidase and o-phenylenediamine / Ihara H., Shino Y., Aoki Y. //Nutr. Sci. Vitaminol. 2000. — Vol. 46. — P. 321−324.
  125. Ihara, H. An automated assay for measuring serum ascorbic acid with use 4-hydroxy 2,2,6−6-tetramethylpiperidinyloxy, free radical and o-phenylenediamine / Ihara H., Matsumoto N., Shino Y. // Clin.Chim. Acta. 2000. — Vol. 301. — P. 193−204.
  126. Jumppunen J. Marker Techniques for High-Accuracy Identification in CZE / Jumppunen J., Reikkola M.//Anal. Chem. 1995. — Vol.67. — P. 1060−1066.
  127. Jagota, S. A new colorimetric technique for the estimation of vitamin C using Folin phenol reagent / Jagota S., Dani H. // Analytical Biochemistry. 1982. -Vol. 127.-P. 178−182.
  128. Kampa M. New automated method for the determination of the Total Antioxidant Capacity (TAC) of human plasma, based on the crocin bleaching assay / Kampa M., Nistikaki A., Tsaousis V. // BMC Clinical Pathology. 2002. -Vol. 2.-P. 34−39.
  129. Kaliora, A. Dietary antioxidants in preventing atherogenesis / Kaliora A., Dedoussis G., Schmidt H. // Atherosclerosis. 2006. — Vol. 187, N. 1. — P. 17−21.
  130. Korcok, J. Differential effects of glucose on dehydroascorbic acid transport and intracellular ascorbate accumulation in astrocytes and skeletal myocytes / Korcok J, Dixon S, Lo T. // Brain Res. 2003. — Vol.993, N.201. — P. 7−8.
  131. Korotkova, E., Study Electroanalytical Chemistry / Korotkova E., Karbainov Y., Shevchuk A. 2002. — Vol. 518, N.l. — P. 56−60.
  132. Moeslinger, T. Spectrophotometric determination of dehydroascorbic acid in biological samples / Moeslinger T., Brunner M., Spieckermann P. // Anal. Bio.Chem. 1994. — Vol. 221. — P.290−296.
  133. Nagaoka S. Kinetics of the reaction by vitamin E is regenerated which natural by vitamin C / Nagaoka S., Kakiuchi T., Ohara K. // Chem Phys Lipids. 2007. -Vol.146, N.6.-P. 32−36
  134. Neuzil, J. The role of vitamin E in atherogenesis: linking the chemical, biological and clinical aspects of the disease / Neuzil J, Weber C, Kontush A. // Atherosclerosis. 2001. — Vol. 157, N.257. — P. 83−83.
  135. Neuzil, J. Vitamin E: function and metabolism / Neuzil J. // The Faseb. J. -2000.-Vol. 13, N. 10.-P. 1145−1155.
  136. Lei, J. Analysis of Ascorbic Acid in Single Human Neutrophils by Electrochemical Detection / Lei J., Wen R. // Chinese Chemical Letters. 2002. -Vol. 13, N. 11.-P. 1087- 1089.
  137. Lin, L. Determination of ascorbic acid and isoascorbic acid by capillary zone electrophoresis: application to fruit juices and to a pharmaceutical formulation / Lin L., Baeyens B., Acker V. // Pharm-Biomed-Anal. 2002. -Vol. 10. — P. 717 721.
  138. Lowry, O. The determination of ascorbic acid in small amounts of blood serum / Lowry O., Hunter T. //Biol. Chem. 1945. — Vol. 169. — P. 61−64.
  139. Lussignoli, S. A microplate-based colorimetric assay of the total peroxyl radical trapping capability of human plasma / Lussignoli S., Fraccaroli M., Andrioli G. // Analytical Biochemistry. 1999. -Vol. 269. — P. 38−44.
  140. Maeda, N. Aortic wall damage in mice unable to synthesize ascorbic acid / Maeda N., Hagihara H., Nakata Y // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. -Vol.97., N.84.- P. 1−6.
  141. Meeran, N., Abdul S., Patel R. Indirect Potentiometric Titration of Ascorbic Acid in Pharmaceutical Preparations Using Copper Based Mercury Film Electrode / Meeran N., Abdul S., Patel R. // Chem. Pharm. Bull. 2004. — Vol. 52(1).-P. 38—40.
  142. Mo, S. Modulation of TNF-alpha-induced ICAM-1 expression, NO and H2O2 production by alginate, allicin and ascorbic acid in human endothelial cells / Mo S., Son E., Rhee D. // Arch Pharm Res. 2003. — Vol. 26. — P. 51−54.
  143. Morris, C. Routine vitamin supplementation to prevent cardiovascular disease: a summary of the evidence for the U.S. Preventive Services Task Force / Morris C., Carson S. // Ann Intern Med. -2003. Vol. 139, N.56. — P. 70−75.
  144. Moser, R. Uptake of ascorbic acid by human granulocytes / Moser R., Weber F. // Internal. J. Vit. Nutr. Res. — 1983. — Vol. 54. — P. 47−49.
  145. Packer, L. Flavonoids and other polyphenols / Packer L. M.: Academic Press, 2001.-105 c.
  146. Padayatty, S. Vitamin C as an Antioxidant: Evaluation of Its Role in Disease Prevention / Padayatty S., Katz A., Wang Y. // Am. Coll. Nutr. 2003, — Vol. 22.-P. 18−35.
  147. Panush, R. Modulation of certain immunologic responses by vitamin C III-Potentiation of in-vitro and in-vivo lymphocyte responses / Panush R.S., Delafuente J.C., Katz P. // Vit. Nutr. Res. — 1982. — Vol. 23. — P. 35−38.
  148. Rayment, S., Shaw J., Woollard K. Vitamin C supplementation in normal subjects reduces constitutive ICAM-1 expression / Rayment S., Shaw J., Woollard K. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2003. — Vol. 308, N.339. — P. 45−49.
  149. Ramanathan, K. Effects of ascorbic acid and alpha-tocopherol on arsenic-induced oxidative stress / Ramanathan K, Balakumar BS, Panneerselvam C. // Hum. Exp. Toxicol. -2002. Vol.21, N.675. — P. 80−82.
  150. Retsky, K. Ascorbic acid oxidation product (s) protect human low density lipoprotein against atherogenic modification / Retsky K.L., Freeman M.W., Frei B // Biol. Chem. — 1993. — Vol. 268. — P. 1304−1309.
  151. Roe, J. Kuether C. The determination of ascorbic acid in blood and urine through the 2.4-dinitrophenylhydrazine derivate of dehydroascorbic acid / Roe J. Kuether C. // Biol. Chem. 1943. — Vol. 147. — P. 394−399.
  152. Schwerdt, P. Effect of ascorbic acid on rhinovirus replication in WI-38 cells / SchwerdtP. //Proc. Soc. Exp. Biol, and Med. 1975. — Vol. 148. — P. 1237−1243.
  153. Sharma, R. Antioxidant Power Assay: Direct Measure of «Total Antioxidant Activity» of Biological Fluids / Sharma R., Riswal U. // Z. Pflanzenphysiol. -1976. Vol. 78, N. 2. — P. 169−172.
  154. Smith, I.K. Analysis of Ascorbic and Dehydroascorbic Acid in Biological Samples / Smith I.K. Vierheller T.L., Thorne C.A. // Physiol. Plant. 1989. -Vol. 77, N3.-P. 449−456.
  155. Shea, T. Quantification of antioxidant activity in brain tissue homogenates using the 'total equivalent antioxidant capacity / Shea T., Rogers E., Ashline D. // J. Neuroscience Methods. 2003. — Vol.125. -P. 55−58.
  156. Stanner, S. A review of the epidemiological evidence for the antioxidant hypothesis / Stanner S, Hughes J, Kelly C // Public Health Nutr. 2004. — Vol. 7, N. 407. — P. 22−27.
  157. Son, E. Vitamin C blocks TNF-alphainduced NF-kappaB activation and ICAM-1 expression in human neuroblastoma cells / Son E, Mo S, Rliee D. // Arch. Pharm. Res. -2004. Vol. 27, N.1073. — P. 9−13.
  158. Tomlinson, A., Bensen L., Landers J. Investigation of the Metabolism of the Neuroleptic Drug Haloperidol by Capillary Electrophoresis / Tomlinson A., Bensen L., Landers J. // Chromatogr. 1993. — Vol. 652. — P. 417−417.
  159. Tousoulis, D. Effects of combined administration of vitamins C and E on reactive hyperemia and inflammatory process in chronic smokers / Tousoulis D, Antoniades C, Tentolouris C. // Atherosclerosis. 2003. — Vol. 170, N. 261. — P. 7−11.
  160. Urizzi P. The Methods in Enzymology series represents the gold-standard. / Urizzi P., Souchard J., Monje M. // Int. Electronic Conf. on Synthetic Organic Chemistry, Basel. 1998. — P. 24−27.
  161. Weinberger, R. Buffer Systems for Capillary Electrophoresis. Encyclopedia of Chromatography / Weinberger R. Florida: Florida Atlantic University Boca Raton, 2001.-P. 94−97.
  162. Willett, W. Clinical practice. What vitamins should I be taking, doctor? / Willett W., Stampfer M// Med. 2001. — Vol.345, N. 18. — P. 19−24.
  163. Werler, M. Multivitamin supplementation and risk of birth defects / Werler M., Hayes C., Louik C. // J. of Epidemiology. 1999. — Vol. 10. — P. 675−682.
  164. Yi, L. New Developments and Novel Therapeutic Perspectives for Vitamin C1>2 / Yi L. Herb E. // J. nutrition. 2008. — Vol.8. — P. 14- 16.
  165. Рисунок 1. Реакция образования натриевой соли кислоты аскорбиновой.12
  166. Рисунок 2. Реакция превращение КА в ДАК.12
  167. Рисунок 3. Превращение 2.3-ликетогулоновой кислоты в Ь-треоновую (А) ищавелевую (В) кислоты.13
  168. Рисунок 4. Структурные формулы Р-аскорбиновой (Г) и Р-глюкоаскорбиновой1. ПП кислот.15
  169. Рисунок 5. Реакция взаимодействия КА с элементарным йолом.27
  170. Рисунок 6. Структура 2.6-лихлорфенолиндофенола (реактив Тильманса).29
  171. Рисунок 7. Схема образования аскорбината железа.31
  172. Рисунок 8. Реакция взаимодействия ДАК с ДТТФГ.34
  173. Рисунок 9. 2.4-линитрофенилгидразиновое производное 2.3-ДКГК.35
  174. Рисунок 10. Реакция образования Ь-АК диазониевого производного голубогоцвета.36
  175. Рисунок 11. Взаимодействие ДАК с о-фенилендиамином.38
  176. Рисунок 12. Триметилсилиловый эфир К А.42
  177. Рисунок 13. УФ спектр поглощения фосфорномолибденового комплекса.59
  178. Рисунок 14. Кинетические зависимости образования комплекса «молибденовойсини» в зависимости от температуры инкубации.60
  179. Рисунок 16. Сравнение результатов анализа, полученных при использовании олного реактива ФМ-Ыа при хранении в течение 1 или 5 дней в темном месте при комнатной температуре.64
  180. Рисунок 17. Диаграмма рассеяния и регрессионная прямая лля зависимости ОП реакционной смеси от коннентрапии аскорбиновой кислоты в пробе при анализе ФМК-метолом. Регрессионная прямая приведена с указанием 95%доверительного интервала.66
  181. Рисунок 18. Гралуировочная зависимость плошали пика от коннентрапии КА. 88
  182. Рисунок 19. Электофореграмма пробы КА без добавки SPS.104
  183. Рисунок 20. Электрофореграмма пробы КА с добавлением SPS в состав врабочего буферного раствора.105
  184. Рисунок 21. Электрофореграммы проб К, А при температурах 25 °C (А). 20 °C СБ).106
  185. Рисунок 22. Зависимость соотношения плошали пика КА к плошали пика внутреннего стандарта от концентрации КА (мМ) А) лля КЗЭ. Б) для МЭХ. 107 Рисунок 23. Электрофореграмма совместного определения КА и феруловойкислоты в модельной системе.112
  186. Рисунок 24. Пример электрофореграмм реальных проб (внутренний стандарт феруловая кислота): а плоды шиповника, б — сироп плодов шиповника, впрепарат лля инъекций, г драже КА.113
  187. Рисунок 25. Электрофореграмма совместного определения КА (2.295) и ПАБК2.378) в модельной системе (А). КА и ССК (Б).115
  188. Рисунок 26. Электрофореграмма пробы сиропа плодов шиповника (внутреннийстандарт ССК).115
  189. Рисунок 27. Электрофореграмма плодов шиповника (внутренний стандарт1. ПАБК).116
  190. Рисунок 28. Электрофореграмма сиропа плодов шиповника (внутреннийстандарт ПАБК).116
  191. Рисунок 29. Электрофореграмма драже КА (внутренний стандарт ПАБК).116
  192. Рисунок 30. Электрофореграмма раствора КА для инъекций (внутренний стандарт ПАБК).117
  193. Рисунок 31. Электрофореграмма совместного определения КА и ПАБК вмолельной системе при использовании капилляра 40 см.117
  194. Рисунок 32. Электрофореграмма образна витаминного сбора № 2. Капилляр 40 см. время ввола пробы 4 секунды.120
  195. Рисунок 33. Электрофореграмма пробы витаминного сбора № 2. 120
  196. Рисунок 34. Электрофореграмма пробы витаминного сбора № 2 и спектр пика1. КА.121
  197. Рисунок 35. Электрофореграмма пробы плодов шиповника и спектр пика КА. 121
  198. Рисунок 36. Электрофореграмма пробы листьев бархатцев и спектр пика КА. 122
  199. Рисунок 37. Электрофореграмма пробы сиропа плодов шиповника и спектрпика КА.122
  200. Рисунок 38. Спектр пика стандартного раствора К А.1221. Перечень таблиц
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!