Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Роль тканеспецифичного галактана в формировании надмолекулярной структуры клеточной стенки желатинозного типа

Диссертация: Роль тканеспецифичного галактана в формировании надмолекулярной структуры клеточной стенки желатинозного типа
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Эти факты, безусловно, свидетельствуют об особенности трехмерной организации галактана льна и делают его интересным объектом для изучения основ формирования вторичной и третичной структуры полисахаридов. Эта тематика разработана в мире чрезвычайно слабо, поэтому необычные свойства галактана желатинозных волокон требуют дальнейшего изучения, как в плане выявления конкретных факторов… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. И
    • 1. 1. Растительная клеточная стенка, как надмолекулярная структура
    • 1. 2. Подходы к изучению взаимодействия полисахаридов при формировании надмолекулярной структуры клеточной стенки
      • 1. 2. 1. Исследование структуры природных надмолекулярных комплексов полисахаридов
      • 1. 2. 2. Анализ взаимодействия полисахаридов «при смешивании в пробирке»
      • 1. 2. 3. Изучение взаимодействия полисахаридов матрикса растительной клеточной стенки с микрофибриллами, формируемыми целлюлозо-синтезирующими бактериями
      • 1. 2. 4. Исследование формирования и модификации клеточной стенки непосредственно в растительных объектах
    • 1. 3. Ключевые процессы при формировании надмолекулярной структуры растительной клеточной стенки
      • 1. 3. 1. Формирование микрофибрилл целлюлозы
      • 1. 3. 2. Взаимодействие полисахаридов матрикса внутри субструктур аппарата Гольджи
      • 1. 3. 3. Взаимодействие секретированных полисахаридов матрикса с формирующимися микрофибриллами целлюлозы после выплескивания содержимого пузырьков аппарата Гольджи за пределы плазмалеммы
      • 1. 3. 4. Упаковка формирующихся комплексов и индивидуальных полисахаридов в слои клеточной стенки
      • 1. 3. 5. Модификация отложенных слоев клеточной стенки
    • 1. 4. Желатинозный тип вторичной клеточной стенки
    • 1. 5. Тканеспецифичный галактан флоэмных волокон льна
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Растительный материал
    • 2. 2. Постановка экспериментов с ИС
    • 2. 3. Биохимический анализ галактозосодержащих фракций
      • 2. 3. 1. Моносахаридный анализ
      • 2. 3. 2. Обработка галактанов ферментами
    • 2. 4. ЯМР-спектроскопия
    • 2. 5. Масс-спектрометрия
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Сопоставление структуры и свойств тканеспецифичного галактана волокон до и после встраивания в клеточную стенку
      • 3. 1. 1. Гидролиз галактана аппарата Гольджи и галактана, прочно связанного с целлюлозой, специфичными ферментами рамногалактуроназа и галактаназа)
      • 3. 1. 2. Анализ высокомолекулярных фрагментов, полученных после гидролиза галактанов галактаназой, с помощью ЯМРспектроскопии
      • 3. 1. 3. Анализ низкомолекулярных фраментов, полученных после гидролиза галактанов галактаназой, с помощью масс-спектрометрии
      • 3. 1. 4. Модификации в структуре галактана, происходящие в ходе встраивания в клеточную стенку
    • 3. 2. Исследование метаболизма галактана в экспериментах с 14С
      • 3. 2. 1. Радиоактивность высокомолекулярного галактана аппарата Гольджи
      • 3. 2. 2. Радиоактивность галактозосодержащих полимеров клеточной стенки
        • 3. 2. 2. 1. Радиоактивность галактозы полимеров, слабо связанных с микрофибриллами целлюлозы в клеточной стенке волокнистой части стебля льна
        • 3. 2. 2. 2. Радиоактивность галактозы полимеров, прочно связанных с микрофибриллами целлюлозы в клеточной стенке волокнистой части стебля льна
        • 3. 2. 2. 3. Радиоактивность галактозы полимеров клеточной стенки изолированных волокон
      • 3. 2. 3. Состав и радиоактивность низкомолекулярных Сахаров волокнистой части стебля

Роль тканеспецифичного галактана в формировании надмолекулярной структуры клеточной стенки желатинозного типа (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Постановка проблемы и ее актуальность.

Растительная клеточная стенка представляет собой динамичную и многокомпонентную систему, в процессе формирования которой полимеры взаимодействуют друг с другом, образуя сложную надмолекулярную структуру. Именно надмолекулярная структура клеточной стенки во многом определяет ее особенности и функции.

Предполагается, что формирование надмолекулярной структуры клеточной стенки основано на спонтанном взаимодействии полисахаридов в специфических условиях периплазмы (Fry, 1988), однако конкретные процессы, сопряженные со встраиванием полисахаридов охарактеризованы крайне слабо. В основном это определяется сложным строением клеточной стенки и проблемами выделения индивидуальных полисахаридов, как до встраивания в клеточную стенку, так и из ее состава.

Выделение любого индивидуального полимера требует либо специфических ферментативных обработок, либо многоступенчатого химического фракционирования. Полисахариды клеточной стенки находятся в сложной взаимосвязи друг с другом, что делает невозможным выделение индивидуального полимера без нарушения деталей его строения. Кроме того, различные полисахариды характеризуются сходными химическими свойствами, что приводит к получению при фракционировании сложной смеси данных молекул. Ни один полисахарид клеточной стенки не извлекается полностью ни одним из известных растворителей или ферментов.

Уникальная возможность для подобных исследований открывается при использовании модельной системы флоэмных волокон льна. Тканеспецифичный полимер (3−1,4-галактан, построенный по типу рамногалактуронана I, накапливается в субструктурах аппарата Гольджи до встраивания в клеточную стенку (Salnikov et al., 1993; Salnikov et al., 2008), что позволяет извлекать его в количествах, достаточных для исследования структуры. В клеточной стенке этот полимер сосредоточен во фракции полисахаридов, исключительно прочно связанных с целлюлозой, для извлечения которых недавно разработан специальный протокол (Gurjanov et al., 2008). Таким образом, появилась возможность охарактеризовать процессы, происходящие при встраивании индивидуального полисахарида в клеточную стенку и ее дальнейшей модификации.

Галактан волокон льна представляет собой полимер, участвующий в формировании клеточной стенки желатинозного типа (Горшкова и др., 2009), анализ которого дает возможность охарактеризовать отдельный полисахарид клеточной стенки, рассматривая его и как ключевой полимер матрикса клеточной стенки особого типа, и как более общий пример полисахарида клеточной стенки. Сопоставление особенностей структуры галактана до и после встраивания в клеточную стенку, а также установление последовательности и временных рамок постсинтетических модификаций этого полимера позволит охарактеризовать его роль в ходе формирования надмолекулярной структуры клеточной стенки и ее последующих изменений.

Цель и задачи исследований.

Целью работы была характеристика процессов, происходящих с тканеспецифичным галактаном волокон льна при его встраивании в клеточную стенку желатинозного типа и в ходе дальнейших модификаций ее структуры.

Были поставлены следующие задачи:

1. Сопоставить состав и свойства галактана до и после встраивания в клеточную стенку.

2. Провести сравнительный анализ состава фрагментов, полученных после гидролиза галактана аппарата Гольджи и галактана клеточной стенки специфичными ферментами.

3. Выявить особенности структуры галактанов путем анализа фрагментов, полученных после частичного ферментативного гидролиза, с помощью ЯМР-спектроскопии и масс-спектрометрии.

4. Проанализировать метаболизм галактана в экспериментах по изучению перераспределения метки после фотосинтеза целых растений с, 4ССЬ.

Научная новизна работы.

Впервые охарактеризованы процессы, происходящие с индивидуальным полисахаридом при встраивании в растительную клеточную стенку в ходе ее формирования и модификации, а также установлена их последовательность и временные рамки.

Выявлено, что при встраивании галактана в клеточную стенку происходит гидролиз боковых цепочек полимера, сопровождающийся появлением большого количества свободной галактозы. Показано, что укорочение галактозных цепочек носит избирательный характер: не все молекулы галактозы и не все боковые цепочки подвергаются гидролизу. Продемонстрировано наличие препятствий для гидролиза галактанов эндогенной галактозидазой и установлена природа.

Выявлена способность галактана поддерживать гидродинамический объем после удаления основной части боковых цепочек полимера, что свидетельствует о высоком уровне организации структуры молекул полисахарида и делает этот полимер интересным объектом для изучения принципов построения вторичной и третичной структуры полисахаридов.

Установлено, что процесс попадания галактана во фракцию прочно связанных с целлюлозой полимеров имеет двухфазный характер: часть молекул полисахарида прочно связывается с микрофибриллами целлюлозы в момент их сборки, другая — через несколько дней после попадания в клеточную стенку, после существенного гидролиза во фракции полимеров, экстрагируемых оксалатом аммония.

Показано, что связывание галактана с целлюлозой сопровождается повышением уровня кристалличности целлюлозы. Выявлена сопряженность процессов модификации галактана с трансформацией структуры слоев клеточной стенки.

Обоснована связь между структурой полисахарида и его функциональной ролью. Сформировано представление, что в ходе формирования надмолекулярной структуры клеточной стенки галактан выполняет двойную роль: создает условия для постепенного латерального взаимодействия микрофибрилл в клеточной стенке и эффективно обеспечивает их натяжение за счет способности поддерживать гидродинамический объем.

Научно-практическая значимость работы.

Полученные данные вносят вклад в понимание механизмов образования и функционирования особого желатинозного типа вторичной клеточной стенки, которая характерна для многих хозяйственно ценных культур. Сформулированные представления о роли тканеспецифичного полимера в формировании надмолекулярной структуры позволят целенаправленно влиять на свойства клеточной стенки. Выявление особых свойств галактана, позволяет рассматривать на его примере механизмы организации вторичной и третичной структуры полисахаридов, что открывает новые перспективы в изучении этого класса молекул. Разработанная совокупность подходов для характеристики структуры, свойств и метаболизма индивидуального полимера в целом растении может быть использована при исследовании других компонентов растительной клетки. Полученные результаты и методические разработки могут быть использованы в биологических, сельскохозяйственных и биотехнологических учреждениях и включены в курсы лекций по биохимии и физиологии растений, а также по общей биохимии углеводов.

Апробация работы.

Материалы диссертации докладывались на VI съезде Общества физиологов растений России (Сыктывкар, 2007), IX Международной конференции по клеточнойр стенке (Копенгаген, Дания, 2007), Международной конференции «Pectins and Pectinases» (Вагенинген, Нидерланды, 2008), IV съезде Российского общества биохимиков и молекулярных биологов (Новосибирск, 2008), Международной конференции по растительным полисахаридам «PPW 2008» (Сигтуна, Швеция, 2008), Международном симпозиуме по углеводам «ICS 2008» (Осло, Норвегия, 2008), итоговых конференциях КИББ КазНЦ РАН (2008, 2009), Международной конференции по растительным волокнам «Plant fibers: view of fundamental biology» (Казань, 2009), Гордоновской конференции по растительной клеточной стенке (Смитфилд, США, 2009).

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 12 работ.

Связь работы с научными программами и собственный вклад автора в исследования.

Исследования проводились в соответствии с планами НИР КИББ КазНЦ РАН (номер госрегистрации 0120.0 408 625) — частично поддержаны грантами РФФИ № 06−04−48 853, № 08−04−845.

Научные положения и выводы диссертации базируются на результатах собственных исследований автора.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация изложена на 160 страницах машинописного текста (включая иллюстрации и список цитируемой литературы) и состоит из введения, обзора литературы, описания объекта и методов исследования, изложения и обсуждения результатов, заключения, выводов и списка литературы. В работе представлено 13 таблиц, 33 рисунка.

Список литературы

включает 199 источников, в том числе 182 — иностранных.

выводы.

1. Сформирована совокупность подходов, позволяющих охарактеризовать свойства и проанализировать метаболизм индивидуального полисахарида клеточной стенки в определенном типе клеток на определенной стадии их развития без вмешательства в естественный ход процессов.

2. При сопоставлении структуры галактана до и после встраивания в клеточную стенку обнаружено, что в ходе формирования надмолекулярной структуры клеточной стенки происходит два основных процесса: укорочение боковых цепочек полимера и изменение конформации молекулы, что сопровождается увеличением времени элюции при гель-фильтрации.

3. Установлено, что гидролиз галактозных цепочек галактана in тиго имеет избирательный характер. Часть цепочек отщепляется полностью, другаяподвергается незначительному гидролизу, либо не модифицируется вовсе. Различная степень гидролиза боковых цепочек объясняется как присутствием в их структуре препятствий для действия эндогенной Р~ 1,4-галактозидазы (единичный остаток арабинозы, другие типы связи между остатками галактозы), так и конформационными особенностями организации молекул полимера.

4. Показана способность галактана льна поддерживать гидродинамический объем после удаления основной части галактозных цепочек при воздействии галактаназы или галактозидазы.

5. В экспериментах по изучению прераспределения метки после фотосинтеза целых растений с 14СОг впервые установлено, что при встраивании галактана в клеточную стенку его связывание с микрофибриллами целлюлозы имеет двухфазный характер: часть молекул галактана оказывается прочно связанной с целлюлозой сразу после секреции за пределы плазмалеммыосновная часть молекул этого полимера начинает связываться с целлюлозой через несколько суток.

6. Показано, что вторая фаза связывания галактана с микрофибриллами целлюлозы обеспечивается переходом молекул галактана из фракции, экстрагируемой оксалатом аммония. Этот переход предваряется удалением значительной части боковых цепочек.

7. Впервые обнаружено, что в волокнах на стадии формирования вторичной клеточной стенки содержится свободная галактоза в значительных концентрациях. Динамика ее радиоактивности резко отличается от динамики радиоактивности первичных продуктов фотосинтеза и свидетельствует о том, что она образуется в результате частичного гидролиза галактана клеточной стенки.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Основываясь на полученных в представленной работе результатах и полученных ранее данных, можно выделить следующие характеристики исследуемого галактана:

1) это тканеспецифичный полимер флоэмных волокон льна, формирующих вторичную клеточную стенку желатинозного типа (Gorshkova et al., 1996, 2004);

2) существует особый тип секреции этого полисахарида, позволяющий накапливать содержимое пузырьков аппарата Гольджи и при его выплескивании за пределы плазмалеммы покрывать значительные участки периплазмы (Salnikov et al., 2008);

3) галактан имеет остов из рамногалактуронана I и разнообразные по структуре боковые цепочки, состоящие, в основном, из Р-(1 —"4)-галактозных звеньев (Gorshkova et al., 1996; Gurjanov et al., 2007) — длина некоторых боковых цепочек насчитывает, по крайней мере, сотню остатков галактозы;

4) в клеточной стенке зрелых волокон основная часть галактана прочно связана с микрофибриллами целлюлозы (Gurjanov et al., 2008);

5) галактан обладает характерным свойством — поддерживать гидродинамический объем при удалении значительной части боковых цепочек;

6) при взаимодействии с целлюлозой галактан изменяет конформацию и/или разбирается на блоки, о чем свидетельствует сравнение профилей элюции полисахарида, выделенного до встраивания в клеточную стенку или из фракции, экстрагируемой оксалатом аммония, и полученного из фракции полимеров, прочно связанных с целлюлозой;

7) динамика взаимодействия галактана с целлюлозой носит двухфазный характерчасть молекул галактана связывается с микрофибриллами сразу после секреции за пределы плазмалеммы, другая — после отщепления значительной части боковых галактозных цепочек;

8) в ткани присутствуют значительные количества свободной галактозы, появляющейся в результате частичного гидролиза галактана;

9) в структуре галактана имеются препятствия для полного гидролиза боковых цепочек эндогенной |3-(1—И-)-галактозидазой.

На основании этой совокупности данных, процесс формирования надмолекулярной структуры клеточной стенки желатинозного типа в волокнах льна можно, с нашей точки зрения, представить следующим образом. Ключевыми «игроками» являются микрофибриллы целлюлозы и тканеспецифичный галактан, обладающий особыми свойствами, основанными, по-видимому, на существовании высоких уровней организации структуры молекулы.

Синтезированный в аппарате Гольджи галактан секретируется за пределы плазмалеммы, при этом используется особый тип секреции, обеспечивающий покрытие существенной площади периплазматического пространства (рис. 33 а). Эта картина имеет некоторое сходство с наблюдаемой у волосков семян хлопчатника, где на этапе формирования вторичной клеточной стенки в периплазматическое пространство откладывается слой каллозы, постоянно подвергающийся обновлению (Maltby et al., 1978, Salnikov et al., 2003). Для клеточных стенок и у желатинозных волокон, и у волосков семян хлопчатника характерно очень высокое содержание целлюлозы (85−95%), то есть очень низкое содержание иных полимеров. У таких клеток, интенсивно формирующих клеточную стенку и, соответственно, имеющих на плазмалемме высокую плотность целлюлозосинтазных комплексов, существует вероятность для латерального взаимодействия микрофибрилл, или даже индивидуальных молекул целлюлозы, сформированных различными целлюлозосинтазными комплексами. В этом случае, мог бы сформироваться протяженный кристалл, который лишал бы микрофибриллы их индивидуальности и препятствовал бы построению необходимой структуры клеточной стенки. галактан, покрывающий микрофибриллы целлюлозы в момент их сборки вторичная клеточная стенка желатинозного типа б) рыхлый" недавно отложенный Gn-слой галактан.

3−1,4-галактозидаза галактан, экстрагируемый, оксалатом. т.

— f л аммония у^ I микрофибриллы свободная галактоза целлюлозы и" галактан, «запечатанный» между латерально взаимодействующими микрофибрилламы.

Наличие слоя полисахаридов матрикса в периплазматическом пространстве, по-видимому, связано с необходимостью разделения между собой микрофибрилл целлюлозы для предотвращения их латерального взаимодействия сразу после формирования. У волосков семян хлопчатника именно такую роль, с нашей точки зрения, играет каллоза, функции которой до сих пор не были ясны. Каллоза — наиболее «легко» синтезируемый полисахарид матрикса, образование которого происходит на плазмалемме и не требует участия аппарата Гольджи.

В желатинозных волокнах подобную роль играет тканеспецифичный галактан, точнее, — его длинные галактозные цепочки. Полимер с протяженными боковыми цепочками покрывает значительную площадь поверхности микрофибрилл, предотвращая тем самым их латеральное взаимодействие сразу после сборки. При этом часть молекул галактана захватывается формирующимися микрофибриллами, сразу попадая во фракцию прочно связанных с целлюлозой полимеров. Существенных модификаций, связанных с укорочением боковых цепочек этого галактана не происходит (соотношение Гал/Рам существенно не снижается), хотя при взаимодействии с целлюлозой галактан изменяет конформацию, о чем свидетельствует его элюция в более низкомолекулярной области при гель-фильтрации.

В отличие от каллозы волосков семян хлопчатника, галактан волокон льна выполняет и другую роль — с его участием создается натяжение микрофибрилл целлюлозы, обеспечивая реализацию функции G-слоев. Эту роль играет основная часть молекул галактана, которая не связывается сразу с целлюлозой и сначала попадает при фракционировании клеточной стенки во фракцию полимеров, экстрагируемых оксалатом аммония. Именно эта часть молекул галактана обеспечивает видимость «рыхлой» структуры недавно отложенных слоев клеточной стенки, наблюдаемой на электронномикроскопических снимках (рис. 33 б).

Молекулы галактана, находящиеся во фракции полимеров, слабо связанных с микрофибриллами целлюлозы, доступны для действия галактозидазы. Гидролиз боковых цепочек галактана, в результате которого появляется свободная галактоза, уменьшает площадь покрытия им микрофибрилл целлюлозы и делает возможным их латеральное взаимодействие (рис. 33 в). При этом между микрофибриллами «захлопывается» дополнительная порция галактана, что приводит к попаданию дополнительных количеств галактана во фракцию полимеров, прочно связанных с целлюлозой, соответствуя второй фазе возрастания метки в ней.

Идея о наличии латерального взаимодействия микрофибрилл была высказана в работе Е. Mellerowicz с соавторами (2008), на основании увеличенных размеров кристаллитов в клеточных стенках желатинозного типа (Muller et al., 2006). Присутствие между микрофибриллами целлюлозы «запечатанного» полисахарида приводит к некоторому их изгибу и создает натяжение, которое и лежит в основе особых механических свойств желатинозных волокон.

Латеральное взаимодействие микрофибрилл в ходе формирования надмолекулярной структуры клеточной стенки волокон льна сопровождается увеличением доли кристаллической целлюлозы и созданием однородной плотной структуры клеточной стенки. Способность галактана поддерживать гидродинамический объемспособствует, вероятно, созданию натяжения в клеточной стенке при латеральном взаимодействии микрофибрилл и, в конечном счете, выполнению волокнами своей механической функции.

Свободная галактоза, образовавшаяся при тримминговании цепочек галактана, вряд ли распределена равномерно по всей клетке, а, скорее всего, скапливается за пределами плазмалеммы. Возможно, что она играет роль в связывании галактозных боковых цепочек молекул галактана между собой или с целлюлозой, поскольку известно, что низкомолекулярные сахара в высокой концентрации могут способствовать образованию связей между нейтральными полисахаридами, усиливая гидрофобные взаимодействия (Grosso et al., 2000).

Тканеи стадия-специфичность галактана желатинозных волокон заставляет предположить у него наличие особых свойств. Между тем, построенный по сходному принципу полисахарид (остов из рамногалактуронана I и боковые цепочки из (3-(1->4)-галактозы), присутствует и в других типах клеточных стенок (Fry, 1988). Особые свойства полимера льна четко проявлялись при гидролизе специфичными ферментами, расщепляющими р-(1—И-)-связи галактозы: (3−1,4-эндогалактаназой или р-1,4-галактозидазой. Несмотря на значительное снижение содержания галактозы, полисахарид выявлялся на профиле элюции в том же месте, что и до обработки ферментомто есть галактан волокон с клеточной стенкой желатинозного типа может поддерживать гидродинамический объем даже после удаления значительной части боковых цепочек.

Эти факты, безусловно, свидетельствуют об особенности трехмерной организации галактана льна и делают его интересным объектом для изучения основ формирования вторичной и третичной структуры полисахаридов. Эта тематика разработана в мире чрезвычайно слабо, поэтому необычные свойства галактана желатинозных волокон требуют дальнейшего изучения, как в плане выявления конкретных факторов, их обеспечивающих, так и в плане использования этих свойств в прикладных целях. и в других типах клеточных стенок (Fry, 1988). Особые свойства полимера льна четко проявлялись при гидролизе специфичными ферментами, расщепляющими р-(1 —>4)-связи галактозы: р-1,4-эндогалактаназой или р-1,4-галактозидазой. Несмотря на значительное снижение содержания галактозы, полисахарид выявлялся на профиле элюции в том же месте, что и до обработки ферментом свидетельствуя, что галактаны волокон с клеточной стенкой желатинозного типа могут поддерживать гидродинамический объем даже после удаления значительной части боковых цепочек.

Эти факты, безусловно, свидетельствуют об особенности трехмерной организации галактанов льна и делают их интересными объектами для изучения основ формирования вторичной и третичной структуры полисахаридов. Эта тематика разработана в мире чрезвычайно слабо, поэтому необычные свойства галактанов желатинозных волокон требуют дальнейшего изучения, как в плане выявления конкретных факторов, их обеспечивающих, так и в плане использования этих свойств в прикладных целях.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Современные представления о строении целлюлоз / JI.A. Алешина, С. Б. Глазкова, JI.A. Луговскал, М. В. Подойникова, А. Д. Феофанов, Е. В. Силина //Химия растительного сырья. —2001. —№ 1. — С. 5−36.
  2. Н.В. Углевод-углеводные взаимодействия / Н. В. Бовин // Биохимия. 1996. — Т. 61. — С. 968−983.
  3. В.Н. Пектин: химия, технология, применение / В. Н. Голубев, Н. П. Шелухина М, 1995. -387 с.
  4. Стадии формирования лубяных волокон Linum usitatissimum L. / Т. А. Горшкова, М. В. Агеева, В. В. Сальников, Н. В. Павленчева, А. В. Снегирева, Т. Е. Чернова, С. Б. Чемикосова // Бот. журн. — 2003. — Т. 88. -№ 12.-С. 1−11.
  5. Формирование надмолекулярной структуры растительной клеточной стенки / Т. А. Горшкова, П. В. Микишна, О. П. Гурьянов, С. Б. Чемикосова // Биохимия. 2010. — Т. 75. —№ 2. (в печати).
  6. Т.А. Растительная клеточная стенка как динамичная система / Т. А. Горшкова. М.: Наука, 2007. — 429 с.
  7. Характеристика структуры тканеспег^ифичного галактана волокон льна с использованием 1Н-ЯМР и MALDI-TOF-масс-спектрометрии / О. П. Гурьянов, Т. А. Горшкова, М. Кабел, Я. ван Дам // Биоорганическая химия. 2006. — Т. 32. — № 6. ~ С. 1−11.
  8. Свободная галактоза и галактозидазная активность в волокнах льна на разных стадиях формирования / П. В. Микишна, С. Б. Чемикосова, Н. Е. Мокшина, Н. Н. Ибрагимова, Т. А. Горшкова // Физиология растений. -2009.-Т. 56.-Nol.-C. 1−11.
  9. , Н.В. Метаболизм тканеспецифичного галактана и развитие флоэмных волокон льна: Автореф. дис.. канд. биол. наук: 03.00.12 /Н.В. Павленчева- Казань, 2004.- 23 с.
  10. Ю.Петрова В. В. Рентгенография целлюлоз / В. В. Петрова. — Петрозаводск, 1994. —38 с. 11 .Ультраструктурный анализ лубяных волокон / В. В. Сальников, М. В. Агеева, В. Н. Юмашев, В. В. Лозовая // Физиология растений. — 1993. — Т. 40. -Ко 3.- С. 458−464.
  11. , В.В. Структурно-функциональная характеристика клеточных стенок в растительных тканях, специализированных на интенсивном синтезе целлюлозы: Автореф. дис.. докт. биол. наук: 03.00.12 /В.В Сальников- С.-Пб, 2005.- 47с.
  12. Онтогенетическое развитие клеток волокна у разных генотипов льна-долгунца / H.JI. Трухановец, В. В. Рубан, В. П. Ильченко, JI.B. Хотылева //Докл. НАН Беларуси. 2001. — Т. 45. -№ 2. — С. 86−88.
  13. Формирование флоэмных волокон льна в условиях почвенной засухи / С. Б. Чемикосова, Н. В. Павленчева, О. П. Гурьянов, Т. А. Горшкова // Физиология растений. — 2006. Т. 53. — № 5. — С. 739 — 746.
  14. Формирование первичных и вторичных волокон конопли / Т. Е. Чернова, М. В. Агеева, С. Б. Чемикосова, Т. А. Горшкова // Вестн. ВНИИ по переработке лубяных культур. — 2005. — № 2. — С. 6−13.
  15. Вариабельность состава тканеспег^ифичного галактана волокон льна / Т. Е. Чернова, О. П. Гурьянов, Н. Б. Брач, А. В. Павлов, Е. А. Пороховинова, С. Н. Кутузова, С. Б. Чемикосова, Т. А. Горшкова // Физиология растений. 2007. — Т. 54. —К° 6. — С. 876−884.
  16. , Т.Е. Биогенез флоэмных волокон льна (Linum usitatissimum L.) и конопли (Cannabis saliva L.): сравнительный анализ: Автореф. дис.. канд. биол. наук: 03.00.12 / Т.Е. Чернова-Казань, 2007.- 24 с.
  17. Abdel-Massih R.M. In vitro biosynthesis of)-1,4-galас tan attached to a pectin—xyloglucan complex in pea / R.M. Abdel-Massih, E.A.H. Baydoun, C.T. Brett//Planta. 2003. — V. 216. — P. 502−511.
  18. Andeme-Onzighi С. Immunocytochemical characterization of early-developing flax fibre cell walls / C. Andeme-Onzighi, R. Girault, I. His, C. Morvan, A. Driouich // Pro top I as ma. 2000. — V. 213. -P. 235−245.
  19. Asam M.R. Collision-induced signal enhancement: a method to increase product ion intensities in MS/MS and MSn experiments / M.R. Asiun, K.L. Ray, G.L. Glish //Anal. Chem. 1998. — V. 70. -№ 9. -P. 1831−1837.
  20. Atalla R.H. Hemicelluloses as structure regulators in the aggregation of native cellulose /R.H. Atalla, J.M. Hackney, I. Uhlin, N.S. Thompson //Int. J. Biol. Macromol. -1993. V.15. -P. 109−112.
  21. Baba K. Localization of xyloglucan in the macromolecular complex composed of xyloglucan and cellulose in pea stems / K. Baba, Y. Sone, A. Misaki, T. Hayashi//Plant and Cell Physiol. 1994. — V. 35. -№ 3.~ P. 439−444.
  22. Bahr U. High-sensitivity analysis of neutral underivatized oligosaccharides by nanoelectrospray mass spectrometry / U. Bahr, A. Pfenninger, M. Karas, B. Stahl//Anal. Chem. 1997. — V. 69. -P. 4530.
  23. Barnett J.R. Cellulose microfibril angle in the cell wall of wood fibres / J.R. Burnett, V.A. Bonham // Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 2004. — V. 79. — P. 461−472.
  24. Biggs K.J. Phenolic cross-linking in the cell wall /K.J. Biggs, S.C. Fry //
  25. Physiology of cell expansion during plant growth- Cos grove D.J., Knievel D.P. eds. Rockville: Am. Soc. of Plant Physiol., 1987. — P. 46−57.
  26. Bock K. Carbon-13 nuclear magnetic resonance spectroscopy of monosaccharides / К. Bock, C. Pedersen // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. — 1983. V. 41. -P. 27−66.
  27. Bowles D.J. The amounts and rates of export of polysaccharides found within the membrane system of maize root cells / D.J. Bowles, D.H. Northcote // Biochem. J. 1974. — V. 142. — P. 139−144.
  28. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye-binding / M.M. Bradford//Anal. Biochem. 1976. — V. 72.-P. 248−254.
  29. Brett C. Physiology and biochemistry of plant cell walls / C. Brett, K. Waldron. London.: Hyman, 1990. -194p.
  30. Brett C.T. Binding of nascent ghicuronoxylan to the cell walls ofpea seedlings / C.T. Brett, S.A. Healy, M.S. McDonald, C. Macgregor, E.A.H. Baydoun //1.t. J. Biol. Macromol. 1997. — V. 21. -№½.-P. 69−73.
  31. Brett C.T. Xyloglucan-pectin linkages in type I primary cell walls of plants / C.T. Brett, E. Baydoun, R. Abdel-Masih //Plant Biosystems. 2005. — V. 139.- P. 54−59.
  32. Brummell D.A. Cell wall metabolism in fruit softening and quality and its manipulation in transgenic plants / D.A. Brummell, M.H. Harpster // Plant Mol. Biol.-2001. -V. 47.-P. 311−340.
  33. Bunzel M. Structural identification of dehydrotriferulic and dehydrotetraferulic acids isolated from insoluble maize fiber / M. Bunzel, J. Ralph, P. Bruning, H. Steinhart // J. Agric. Food Chem. 2006. — V. 54. — P. 6409−6418.
  34. Burr S.J. Extracellular cross-linking of maize arabinoxylans by oxidation of feruloyl esters to form oligoferuloyl esters and ether-like bonds / S.J. Burr, S.C. Fry//Plant J. 2009. — V. 58.-P. 554−567.
  35. Carpita N.C. Structural models of primary cell walls in flowering plants: consistency of the walls during growth / N.C. Carpita, D.M. Gibeaut // Plant J.- 1993. -V.3.- P. 1−30.
  36. Carpita N. The cell wall / N. Carpita, M. McCann // Biochemistry and Molecular Biology of Plants / Eds. Buchanan В., Gruissem W., Jones R. — Rockville: Am. Soc. of Plant Physiologists, 2000. P. 52−108,
  37. Carrington C.M.S. Cell wall metabolism in ripening fruit / C.M.S. Carrington, L.C. Greve, J.M. Labavitch // Plant Physiol. 1993. — V. 103. -P. 429−434.
  38. Chang S.-S. Mesoporosity as a new parameter for understanding tension stress generation in trees / S.S. Chang, B. Clair, J. Ruelle, J. Beauchene, F. Di Renzo, F. Quignard, G.J. Zhao, H. Yamamoto, J. Gril // J. Exp. Bot. -2009. V. 60. 11.-P. 3023−3030.
  39. Chanliaud E. Mechanical effects of plant cell wall enzymes on cellulose/xyloglucan composites / E. Chanliaud, J. De Silva, B. Strongitharm, G. Jeronimidis, M.J. Gidley // Plant J. 2004. — V. 38.-P. 27−37.
  40. Clair B. Tension wood and opposite wood in 21 tropical rain forest species 1. Occurrence and efficiency of the G-layer / B. Clair, J. Ruelle, J. Beauchene, M.F. Prevost, M. Fournier //1 AW A J. 2006. -V. 27.-P. 329−338.
  41. Clair В. Characterization of a Gel in the Cell Wall To Elucidate the Paradoxical Shrinkage of Tension Wood / B. Clair, J. Gril, F. Di Renzo, H. Yamamoto, F. Quignard//Biomacromol. 2008. — V. 9. -№ 2. — P. 494−498.
  42. Coenen G.J. Identification of the connecting linkage between homo- or xylogalacturonan and rhamnogalacturonan type I / G.J. Coenen, E.J. Bakx, R.P. Verhoef, H.A. Schols, A.G.J. Voragen // Carbhydr. Polym. 2007. — V. 20. — P. 224−235.
  43. Cosgrove D.J. Relaxation in a high-stress environment: The molecular bases of extensible cell walls and cell enlargement / D.J. Cosgrove // Plant Cell. — 1997. -V.9.-P. 1031−1041.
  44. Cosgrove D.J. Growth of the plant cell wall / D.J. Cosgrove // Nature Rev Mol Cell Biol. 2005. — V. 6. — P. 850−861.
  45. Cronier D. Structure and chemical composition of bast fibers isolated from developing hemp stem / D. Cronier, B. Monties, B. Chabbert // J. Agric. Food Chem. 2005. — V. 53. — P. 8279−8289.
  46. Darley C.P. The molecular basis of plant cell wall extension / C.P. Darley, A.M. Forrester, S.J. McQueen-Mason // Plant Mol. Biol. 2001. -V. 47.- P. 179−195.
  47. Davis E.A. Isolation and NMR study of pectins from flax (Linum usitatissimum L.) / E. A Davis C. Derouet, C. Herve du Penhoat, C. Morvan // Carbohydr. Research. 1990. — V. 197.-P. 205−215.
  48. Delmer D.P. Cellulose biosynthesis: Exciting times for a difficult field of study/ D.P. Delmer // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1999. -V. 50.- P. 245−276.
  49. Domon В. A systematic nomenclature for carbohydrate fragmentation in FAB-MS/MS spectra of glycoconjugates / B. Domon, C. Costello // Glycoconj J. — 1988.-V. 5.-P. 253−257.
  50. Dubois M. Colorimetric method for determination of sugars and related substances/M. Dubois, K.A. Gilles, J.K. Hamilton //Anal. Chem. — 1956. V. 28. — P. 350−356.
  51. Edelmann H.G. Kinetics of integration of xyloglucan into the walls of suspension-cultured rose cells / H.G. Edelmann, S.C. Fry // J. Exp. Bot. -1992a. V. 43.-P. 463−470.
  52. Edelmann H.G. Effect of Cellulose Synthesis Inhibition on Growth and the Integration of Xyloglucan into Pea Internode Cell Walls / H.G. Edelmann, S.C. Fry // Plant Physiol. 19 926. — V. 100.-P. 993−997.
  53. Emons A.M.C. How the deposition of cellulose microfibrils builds cell wall architecture /A.M.C. Emons, B.M. Mulder // Trends In Plant Sci. — 2000. — V. 5. № 1. — P. 35−40.
  54. Engels F.M. Function of Golgi vesicles in relation to cell wall synthesis in germinating Petunia pollen. II Chemical composition of Golgi vesicles and pollen tube wall / F.M. Engels // Acta. Bot. 1974. — V. 23. — P. 81−89.
  55. Fisher J.B. Tension wood fibers are related to gravitropic movement of red mangrove (Rhizophora mangle) seedlings / J.B. Fisher, P.B. Tomlinson // J. Plant Research. 2002. — V. 115.-P. 39−45.
  56. I.Fisher J.B. Anatomy of axis contraction in seedlings from a fire prone habitat /J.B. Fisher//Am. J. Bot. -2008. V.95.-P. 1337−1348.
  57. Foster T.J. Mobility-resolved C-13-NMR spectroscopy of primary plant cell walls / T.J. Foster, S. Ablett, M.C. McCann, M.J. Gidley //Biopolym. -1996. V. 39. -P. 51−66.
  58. Fry S.C. Cross-linking of matrix polysaccharides in the growing cell walls of angiosperms /S.C. Fry // Annu. Rew. Plant Physiol. — 1986. — V. 37. — P. 165 186.
  59. Fry S.C. Intracellular feruloylation of pectic polysaccharides/ S.C. Fry // Planta. 1987. — V. 171.-P. 205−211.
  60. Fry S.C. The growing plant cell wall: chemical and metabolic analysis /S.C. Fry. —London: Longman Sci. and Technic., 1988. — 333 p.
  61. Fry S.C. Xyloglucan endotransglucosylase, a new wall-loosening enzyme activity from plants / S.C. Fry, R.C. Smith, K.F. Renwick // Biochem. J. — 1992. V. 282. -P. 821−828.
  62. Fry S.C. Intraprotoplasmic and wall-localised formation of arabinoxylan-bound diferulates and larger ferulate coupling-products in maize cell-suspension cultures / S.C. Fry, S.C. Willis, A.E.J. Paterson // Planta. — 2000. -V. 211.-P. 679−692.
  63. Fry S.C. Cell walls and fibers / S.C. Fry // Encycloped. of applied plant sciences /Eds. Thomas B. Elsiever Ltd., 2003. — P. 75−87.
  64. Fry S.C. Primary cell wall metabolism: tracking the careers of wall polymers in living plant cells/S.C. Fry //New Phytol. 2004. — V. 161. — P. 641−675.
  65. Gibeaut D.M. Tracing Cell Wall Biogenesis in Intact Cells and Plants. Selective turnover and alteration of soluble and cell wall polysaccharides in grasses / D.M. Gibeaut, N.C. Carpita //Plant Physiol. 1991. — V. 97. — P. 551−561.
  66. Gibeaut D.M. Biosynthesis of plant cell wall polysaccharides / D.M. Gibeaut, N.C. Carpita // FASEB J. 1994. — V. 8.-P. 904−915.
  67. Gierlinger N. Insights into the chemical composition of Equisetum hyemale by high resolution Raman imaging / N. Gierlinger, L. Sapei, О. Paris // Planta. — 2008. V. 227. -№ 5.-P. 969−980.
  68. Girault R. Galactans and cellulose in flax fibres: putative contributions to the tensile strength / R. Girault, F. Bert, C. Rihouey, A. Jauneau, C. Morvan, M. Jarvis//Int. J. Biol. Macromol. 1997. — V. 21. -P. 179−188.
  69. Pectins in secondary cell walls: modifications during cell wall assembly and maturation // Gorshkova, T.A., Mikshina, P. V., Ibragimova, N.N., Mokshina,
  70. N.E., Chernova, Т.Е., Gurjanov, O.P., Chemikosova, S.B. / The chapters for the symposium books Pectins and Pectinases /Eds. Schols H.A., Visser R.G.F., Voragen A.G.J. — The Netherlands: Wageningen, Academic Publishers, 2009. -P. 149−165.
  71. Gorshkova T.A. Cell-wall polysaccharides of developing flax plants / T.A. Gorshkova, S.E. Wyatt, V. V. Salnikov, D.M. Gibeaut, M.R. Ibragimov, V. V. Lozovaya, N.C. Carpita //Plant. Physiol. 1996. — V. 110. — № 2. — P. 721 729.
  72. Gorshkova T.A. Turnover of Galactans and Other Cell Wall Polysaccharides during Development of Flax Plants / T.A. Gorshkova, S.B. Chemikosova, V.V. Lozovaya, N.C. Carpita // Plant Physiol. 1997. — V. 114. — № 2. — P. 723 729.
  73. Gorshkova T.A. Snap point: a transient point in Linum usitatissimum bast fiber development / T.A. Gorshkova, V. V. Salnikov, S.B. Chemikosova, M. V. Ageeva, N.V. Pavlencheva, J.E.G. van Dam // Ind. Crops and Products. — 2003. V. 18. — P. 213−221.
  74. Gorshkova T.A. Occurrence of cell-specific galactan is coinciding with bast fibre developmental transition in flax / T.A. Gorshkova, S.B. Chemikosova,
  75. V.V. Salnikov, N.V. Pavlencheva, O.P. Gurjanov, T. Stoll-Smits, J.E.G. van Dam //Ind. Crops Prod. 2004. -V. 19.-P. 217−224.
  76. Gorshkova T.A. Tissue-specific processes during cell wall formation in flax fiber / T.A. Gorshkova, M. Ageeva, S. Chemikosova, V. Salnikov // Plant Biosystems. -2005. V. 139. -№ 1. -P. 88−92.
  77. Gorshkova T. Secondary cell-wall assembly in flax phloem fibres: role of galactans / T. Gorshkova, C. Morvan//Planta. -2006. V. 223. -P. 149−158.
  78. Goubet F. Subcellular localization and topology of homogalacturonan methyl transferase in suspension-cultured Nicotiano tabacum cells / F. Goubet, D. Mohnen//Planta. 1999. — V. 209.-P. 112−117.
  79. Grabber J.H. Genetic and molecular basis of grass cell wall biosynthesis and degradability I. lignin-cell wall matrix interactions / J.H. Grabber, J. Ralph, л
  80. C. Lapierre, Y. Barriere //J. of the French Acad. ofSci. 2004. — V. 327. — P. 455−465.
  81. Grant G.T. Biological interactions between polysaccharides and divalent cations: The egg-box model / G.T. Grant, E.R. Morris, D.A. Rees, P.J.C. Smith, D. Thorn//FEBSLett. 1973. — V. 32.-P. 195−198.
  82. Gritsch C.S. Developmental changes in cell wall structure of phloem fibres of the bamboo Dendrocalamus asper / C.S. Gritscli, G. Kleist, R.J. Murphy // Ann. Bot. 2004. — V. 94. -№ 4. — P. 497−505.
  83. Grosso C.R.F. Effect of sugar and sorbitol on the formation of low methoxyl pectin gels / C.R.F. Grosso, P.A. Bobbio, C. Airoldi // Carbohydr. Polym. -2000. V. 41. -№ 4.-P. 421−424.
  84. Gurjanov O.P. MALDI-TOF MS evidence for the linking of flax bast fibre galactan to rhamnogalacturonan backbone / O.P. Gurjanov, T.A. Gorshkova, M.A. Kabel, H.A. Schols, J.E.G. van Dam // Carbohydr. Polymers. 2007. — V. 67. — P. 86−96.
  85. Gurjanov O.P. Polysaccharides, tightly boung to cellulose in the cell wall of flax bast fibre: Isolation and identification / O.P. Gurjanov, N.N. Ibragimova, O.I. Gnezdilov, T.A. Gorshkova // Carbohydr. Research. — 2008. — V. 72. — P. 719−729.
  86. Hannuksela T. NMR structural determination of dissolved O-acetylated galactoglucomannan isolated from spruce thermomechanical pulp / T. Hannuksela, C. Herve du Penhoat // Carbohydr. Research. — 2004. V. 339. -P. 301−312.
  87. Hanus J. The xyloglucan cellulose assembly at the atomic scale / J. Hanus, K. Mazeau//Biopolymers. 2006. -V. 81.-P. 59−73.
  88. Harding S.E. Challenges for the modern analytical ultracentrifuge analysis of polysaccharides / S.E. Harding // Carbohydr. Research. —2005. V. 340. — P. 811−826.
  89. Hartley R.D. Substituted truxillic and truxinic acids in cell walls of Cynodon dactylon / R.D. Hartley, W.H. Morrison, F. Balza, G.H.N. Towers // Phytochem. 1990. — V. 29.-P. 3699−3703.
  90. Hasegawa Y. Immunocytochemical and chemical analyses of Golgi vesicles isolated from the germinated pollen of Camellia japonica / Y. Hasegawa, S. Nakamura, S. Kakizoe, M. Sato, N. Nakamura // J. Plant Research. 1998. — V. 111.-P. 421−429.
  91. Hayashi T. Pea xyloglucan and cellulose. III. Metabolism during lateral expansion of pea epicotyl cells / T. Hayashi, G. Maclachlan //Plant Physiol. 1984.-V. 76.-P. 739−742.
  92. Hayashi T. Pea xyloglucan and cellulose V. Xyloglucan-cellulose interactions in vitro and in vivo / T. Hayashi, M.P.F. Marsden, D.P. Delmer // Plant Physiol 1987. — V. 83. -P. 384−389.
  93. Hayashi T. Xyloglucans in the primary cell wall / T. Hayashi // Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1989. — V. 40.-P. 139−168.
  94. Hayashi T. Characterization of the adsorption of xyloglucan to cellulose / T. Hayashi, K. Ogawa, Y. Mitsuishi// Plant Cell Physiol. 1994. — V. 35. — P. 1199−1205.
  95. Ishii Т. Use ofnon-radioactive digoxigenin-labeled DNA probe for RFLP analysis in rice / T. Ishii, O. Panaud, D.S. Brar, G.S. Khush // Plant Mol. Biol. Rep. 1990. — V. 8.-P. 167−179.
  96. Ishii T. The paint cell wal polysaccharide rhamnogalacturonan II self-assembles into a covalently cross-linked dimmer / T. Ishii, T. Matsunaga, P. Pellerin, M.A. O’Neill, A. Darvill, P. Albersheim //J. Biol. Chem. 1999. -V. 274.-P. 13 098−13 109.
  97. Iwata T. Affinity of hemicellulose for cellulose produced by Acetobacter xylinum / T. Iwata, L. Indrarti, J. L Azuma // Celhdose. 1998. — V. 5. — P. 215−228.
  98. Jones L. Localization of pec tic galactan in tomato cell wall using a monoclonal antibody specific to (1—4)-fi-D-galactan / L. Jones, G. Seymour, J.P. Knox //Plant Physiol. 1997. — V. 113.-P. 1405−1412.
  99. Kabel M.A. Structural differences of xylans affect their interaction with cellulose / M.A. Kabel, H.V.D. Borne, J.-P. Vincken, A.G.J. Voragen, H.A. Schols//Carbohydr. Polym. 2007. — V. 69. -P. 94−105.
  100. Kaku T. Proteomic analysis of the G-layer in poplar tension wood/ T. Kaku, S. Serada, K. Baba, F. Tanaka, T. Hayashi //J. Wood Sci. 2009. — V. 55. -P. 250−257.
  101. Kato A. A new feruloylated trisaccharide from bagasse / A. Kato, J. Azuma, A. Koshijima//Chem. Lett. 1983. — P. 137−140.
  102. Kauss H. Biosynthesis of the metyl ester groups of pectin by transmethylation from S-adenosyl-L-methionine / H. Kauss, A.L. Swanson, W.Z. Hassid // Biochem. Biophys. Res. Commun. — 1967. —V. 26. — P. 234 240.
  103. Kerr E.M. Pre-formed xyloglucans and xylans increase in molecular weight in three distinct compartments of a maize cell suspension culture / E.M. Kerr, S.C. Fry//Planta. -2003. -V. 217.-P. 327−339.
  104. Kerr E.M. Extracellular cross-linking of xylan and xyloglucan in maize cell-suspension cultures: the role of oxidative phenolic coupling / E.M. Kerr, S.C. Fry //Planta. 2004. — V. 219. -P. 73−83.
  105. Knox J.P. The use of antibodies to study the architecture and developmental regulation of plant cell walls / J.P. Knox //Int. Rev. Cytol. — 1997. V. 171. — P. 79−120.
  106. Kobayashi M. Two chains of rhamnogalacturonan II are cross-linked by borate-diol ester bonds in higher plant cell walls / M. Kobayashi, T. Matoh, Ji. Azuma // Plant Physiol. 1996. — V. 119.-P. 199−203.
  107. Kohnke T. The effect of barley husk arabinoxylan adsorption on the properties of cellulose fibres / T. Kohnke, C. Pujolras, J. P. Roubroeks, P. Gatenholm // Cellulose. 2008. -V. 15.- № 4. — P. 537−546.
  108. Lamport D.T.A. Salt Stress Upregulates Periplasmic Arabinogalactan Proteins: Using Salt Stress to Analyse AGP Function /D.T.A. Lamport, M.J. Kieliszewski, A.M. Showalter // New Phytol. 2006. — V. 169.-P. 479−492.
  109. Larsson P.T. A CP/MAS 13 С NMR investigation of molecular ordering in celluloses /P.T. Larsson, K. Wickholm, T. Iversen // Carbohydr. Research. — 1997. V. 302. — P. 19−25.
  110. Lavigne M. Propagation of silencing: recruitment and repression of native chromatin in trans by polycomb repressed chromatin / M. Lavigne, N.J. Francis, I.F. King, R.E. Kingston //Mol. Cell. 2004. — V. 13. — P. 415−425.
  111. Lima D.U. Xyloglucan-cellulose interaction depends on the sidechains and molecular weight of xyloglucan / D.U. Lima, W. Loh, M. S. Buckeridge // Plant Physiol, and Biochem. 2004. — V. 42. — P. 389−394.
  112. Linder A. Mechanism of Assembly of Xylan onto Cellulose Surfaces / A. Linder, R. Bergman, A. Bodin, P. Gatenholm // Langmuir. — 2003. — V. 19. — № 12. P. 5072−5077.
  113. Lindsay S.E. Control of diferulate formation in dicotyledonous and gramineous cell-suspension cultures / S.E. Lindsay, S.C. Fry // Planta. — 2008. -V. 227.-P. 439−452.
  114. Lu F. Non-degradative dissolution and acetylation of ball-milled plant cell walls- high-resolution solution-state NMR /F. Lu, J. Ralph //Plant J. — 2003. V. 35. — P. 535−544.
  115. Maltby D. J-1,3-Glucan in developing cotton fibers / D. Maltby, N.C. Carpita, D. Montezinos, C. Kulow, D.P. Delmer // Plant Physiol. 1979. — V. 63. -P. 1158−1164.
  116. McNeil M. Structure and function of the primary cell walls of plants / M. McNeil, A. Darvill, S. Fry, P. Albersheim // Annu. Rev. Biochem. 1984. — V. 53. — P. 625−663.
  117. Mellerowicz E.J. Xyloglucan: The Molecular Muscle of Trees / E.J. Mellerowicz, P. Lmmerzeel, T. Hayashi // Ann. of Bot. 2008. — V. 102. — № 5. -P. 659−665.
  118. Meloche Ch.G. A cortical band of gelatinous fibers causes the coiling of redvine tendrils: a model based upon cytochemical and immunocytochemicalstudies / Ch.G. Meloche, J.P. Knox, K.C. Vaughn //Planta. 2007. — V. 225. -P. 485−498.
  119. Mishima T. Adhesion of beta-D-glucans to cellulose / T. Mishima, M. Hisamatsu, W.S. York, K. Teranishi, T. Yamada // Carbohydr. Research. — 1998. V. 308. -P. 389−395.
  120. Mohnen D. Biosynthesis of pectins and galactomannans / D. Mohnen //
  121. Comprehensive Natural Products Chemistry / Eds. Pinto B.M., Barton D.H.R., Meth-Cohn O. Oxford: Elsevier, 1999. P. 497−527.
  122. Mohnen D. Pectin Structure and Synthesis /Mohnen D. // Curr. Opin. Plant Biol -2008. -V. 11.-P. 266−277.
  123. Morris S. The self-assembly of plant cell wall components by single-molecule force spectroscopy and Monte Carlo modeling / S. Morris, S. Hanna, M.J. Miles // Nanotechnology. 2004. — V. 15.-P. 1296−1301.
  124. Mueller-Harvey I. Linkage of p-coumaroyl and feruloyl groups to cell-wall polysaccharides of barley straw / 1. Mueller-Harvey, R.D. Hartley, P.J. Harris, E.H. Curzon // Carbohydr. Research. 1986. — V. 148. — P. 71−85.
  125. Muller M. Direct investigation of the structural properties of tension wood cellulose microfibrils using micro beam X-ray fibre diffraction / M. Muller, M. Burghammer, J. Sugiyama //Holzforshung. 2006. — V. 60. — P. 474−479.
  126. Myton K.E. Intraprotoplasmic feruloylation of arabinoxylans in Festuca arundinacea cell cultures /K.E. Myton, S.C. Fry // Planta. — 1994. — V. 193. -P. 326−330.
  127. Newman R.H. Estimation of the relative proportions of cellulose la and Ift in wood by carbon-13 NMR spectroscopy / R.H. Newman // Holzforschung. — 1999. V. 53.-P. 335−340.
  128. Obel N. Intracellular feruloylation of arabinoxylan in wheat: evidence for feruloyl-glucose as precursor /N. Obel, A.C. Porchia, H.V. Scheller //Planta. -2003. V. 216. -P. 620−629.
  129. O’Sullivan A.C. Cellulose: the struscture slowly unravels / A.C. O’Sullivan //Cellulose. 1997. — V. 4.-P. 173−20 7.
  130. Patel T. Weak Self-Association in a Carbohydrate System / T. Patel, S. Harding, A. Ebringerova, M. Deszczynski, Z. Hromadkova, A. Togola, B. Paulsen, G. Morris, A. Rowe //Biophys. J. 2007. — V. 93. — № 3. — P. 741 749.
  131. Pauly M. Molecular domains of the cellalose/xyloglucan network in the cell walls of higher plants / M. Pauly, P. Albersheim, A. Darvill, W. S. York // Plant J. 1999. — V. 20. — P. 629−639.
  132. Pauly M. O-Acetylation of plant cell wall polysaccharides: identification and partial characterization of a rhamnogalacturonan O-acetyl-transferase from potato suspension-cultured cells / M. Pauly, H. V. Scheller // Planta. 2000. — V. 210.-P. 659−667.
  133. Plomion Ch. Wood formation in trees / Ch. Plomion, G. Leprovost, A. Stokes //Plant Physiol. -2001. V. 127. -P. 1513−1523.
  134. Popper Z.A. Widespread occurrence of a covalent linkage between xyloglucan and acidic polysaccharides in suspension-cultured angiosperm cells/Z.A. Popper, S.C. Fry //Ann. of Botany. 2005. — V. 96.-№ I. — P. 9199.
  135. Popper Z.A. Xyloglucan-pectin linkages are formed intra-protoplasmically, contribute to wall assembly, and remain stable in the cell wall / Z.A. Popper, S.C. Fry//Planta. 2008. — V. 227. — 781−794.
  136. Proseus Т.Е. Turgor Pressure Moves Polysaccharides into Growing Cell Walls of Chara coralline / Т.Е. Proseus, J.S. Boyer //Ann. of Botany. — 2005. — V. 95.-Ns 6.-P. 967−979.
  137. Proseus Т.Е. Identifying cytoplasmic input to the cell wall of growing Chara coralline / Т.Е. Proseus, J.S. Boyer//J. Exp. Bot. 2006. -V. 57.- No 12. -P. 3231−3242.
  138. Ray P.M. Radioautographic study of cell wall deposition in growing plant cells/P.M. Ray// J. Cell Biol. 1967. — V. 35.-P. 659−674.
  139. Rizk S.E. Protein- and pH-dependent binding of nascent pectin and glucuronoarabinoxylan to xyloglucan in pea / S.E. Rizk, R.M. Abdel-Massih, E.A.H. Baydoun, C.T. Brett//Planta. -2000. V. 211. -P. 423−429.
  140. Roberts J.A. Abscission, dehiscence, and other cell separation processes / J.A. Roberts, K.A. Elliott, Z.H. Gonzalez-Carranza //Ann. Rev. of Plant Biol. -2002. V. 53. -P. 131−158.
  141. Rojo J. Carbohydrate-Carbohydrate Interactions in Biological and Model Systems /J. Rojo, J.C. Morales, S. Penades // Topics Curr. Chem. — 2002. — V. 218. -P. 45−92.
  142. Roland J.C. Further observations on cell wall morphogenesis and polysaccharide arrangement during plant growth / J.C. Roland, B. Vian, D. Reis//Protoplasma. 1977. — V. 91. -P. 125−141.
  143. Rose J.K.C. Temporal sequence of cell wall disassembly in rapidly ripening melon fruit / J.K.C. Rose, K.A. Hadfield, J.M. Labavitch, A.B. Bennett // Plant Physiol. 1998. -V. 117.-P. 345−361.
  144. Rose J.K.C. The Plant Cell Wall / J.K.C. Rose //Blackwell Publishing Ltd.- Oxford, 2003. 381 p.
  145. Rouau X. A dehydrotrimer of ferulic acid from maize bran / X. Rouau, V. Cheynier, A. Surget, D. Glonx, C. Barron, E. Meudec, J. Louis-Montero, M. Criton //Phytochem. 2003. — V. 63. -P. 899−903.
  146. Salnikov V. The localisation of sucrose synthase and callose in freeze substitution secondaiy-wall stage cotton fibers / V. Salnikov, M. Grimson, R. Seagull, C. Haigler // Protoplasma. 2003. — V. 221. -№ 3−4.-P. 175−184.
  147. Salnikov V. V. Homofusion of Golgi secretory vesicles in flax phloem fibers during formation of the gelatinous secondary cell wall / V. V. Salnikov, M. V. Ageeva, T.A. Gorshkova // Protoplasma. 2008. — V. 233. — P. 269−273.
  148. Schols H.A. Isolation and characterization of rhamnogalacturonan-oligomers, liberated during degradation of pectic hairy regions by RGase / H.A. Schols, A.G.J. Voragen, I.J. Colquhoun // Carbohydr. Research. — 1994.- V. 256.-P. 97−111.
  149. Schols H.A. Rhamnogalacturonase: a novel enzyme that degrades the hairy> regions of pectins / H.A. Schols, C.C.J.M. Geraeds, M.J.F. Searle-Van Leeuwen //Carbohydr. Research. 1990. — V. 206. -P. 105−115.
  150. Schroder R. Mannan transglycosylase: a novel enzyme activity in cell walls of higher plants / R. Schroder, Т.Е. Wegrzyn, K.M. Bolitho, R.J. Redgwell //
  151. Planta. 2004. — V. 219.-P. 590−600.
  152. Selvendran R. Isolation and analysis of cell walls from plant material / R. Selvendran, M. O’Neill // Methods ofBiochem. Analysis. 1987. — V. 32. — P. 54−57.
  153. Showalter A.M. Arabinogalactan proteins: structure, expression and function /A.M. Showalter // Cell Mol. Life Sci. 2001. — V. 58. — P. 13 991 417.
  154. Smith R.C. Endotransglycosylation of xyloglucans in plant cell suspension cultures /R.C. Smith, S. C Fry //Biochem. J. 1991. — V. 279. -P. 529−535.
  155. Sturcova A. Structural details of crystalline cellulose from higher plants / A. Sturcova, I. His, D.C. Apperley, J. Sugiyama, M.C. Jarvis //Biomacromol. -2004.-V. 5.-P. 1333−1339.
  156. Talbott L.D. Molecular size and separability features of pea cell wall polysaccharides. Implications for primary wall structure / L.D. Talbott, P.M. Ray //Plant Physiol 1992. — V. 98. — P. 357−368.
  157. Talmage IC.W. The structure of plant cell walls. I. The macromolecular components ofthe pectic polysaccharides II / K. W. Talmage, K. Keegstra, W.O. Bauer, P. Albersheim // Plant Physiol. 1973. — V. 51.-P. 158 173.
  158. Thakur B.R. Chemistry and uses of pectin a review / B.R. Thakur, R.K. Singh, A.K. Handa // Сrit. Rev. Food Sci. Nutr. — 1997. — V. 37. — P. 47−73.
  159. Thompson J.E. Trimming and solubilization of xyloglucan after deposition in the walls of cultured rose cells / J.E. Thompson, S.C. Fry //J. Exp. Bot. -1997. V. 48. -P. 297−305.
  160. Thompson J.E. Xyloglucan undergoes interpolymeric transglycosylation during binding to the plant cell wall in vivo: evidence from 13C/3H dual labelling and isopycnic centrifugation in caesium trifluoroacetate / J.E.
  161. Thompson, R.C. Smith, S.C. Fry //Biochem. J. 1997. — V. 327. — P. 699 708.
  162. Thompson J.E. Density-labelling of cell wall polysaccharides in cultured rose cells: comparison of incorporation of2 H and 13 С from exogenous glucose /J.E. Thompson, S.C. Fry // Carbohydr. Research. -2001. V. 332.-P. 175 182.
  163. Tokoh C. Cellulose synthesized by Acetobacter xylinum in the presence of plant cell wall polysaccarides / C. Tokoh, K. Takabe, J. Sugiyama, M. Fujita //Cellulose. 2002. — V. 9. -№ 1.-P. 65−74.
  164. Tomlinson P.B. Development of gelatinous (reaction) fibers in stems of Gnetum gnemon (Gnetales) / P.B. Tomlinson // Am. J. of Bot. 2003. — V. 90.7.-P. 965−972.
  165. Uhlin K.I. Influence of hemicelluloses on the aggregation patterns of bacterial cellulose / K.I. Uhlin, R.H. Atalla, N.S. Thompson // Cellulose. — 1995. V. 2. -P. 129−144.
  166. Van Hazendonk J. Structural analysis of acetylated hemicellulose polysaccharides from fibre flax (Linum usitatissimum L.) / J. Van Hazendonk, E.J.M. Reinerink, P. de Waard, J. van Dam // Carbohydr. Research. 1996.- V. 291. P. 141−154.
  167. Vietor R.J. Conformational features of crystal-surface cellulose from higher plants / R.J. Vietor, R.H. Newman, M.A. Ha, D.C. Apperley, M.C. Jarvis / Plant J. 2002. — V. 30. -P. 721−731.
  168. Vincken J.-P. Fractionation of xyloglucan fragments and their interaction with cellulose / J.-P. Vincken, A. de Keizer, C. Beldman, A.G.J. Voragen // Plant Physiol. 1995. — V. 108.-P. 1579−1585.
  169. Wallace G. Phenolic components of the plant cell wall / G. Wallace, S.C. Fry//Int. Rev. Cytol. 1994. — V. 151.-P. 229−267.
  170. Wasteneys G.O. Microtidmle organization in the green kingdom: chaos or self-order? / G.O. Wasteneys//J. Cell Sci. 2002. — V. 115. -P. 1345−1354.
  171. Whitney S.E.C. In vitro assembly of cellulose/xyloglucan networks: ultrastructural and molecular aspects / S.E.C. Whitney, J.E. Brigham, A.H. Darke, J.S.G. Reid, M.J. Gidley//Plant J. 1995. — V. 8. -P. 491−504.
  172. Whitney S.E.C. Structural aspects of the interaction of mannan-based polysaccharides with bacterial cellulose /S.E.C. Whitney, J.E. Brigham, A.H. Darke, J.S.G. Reid, M.J. Gidley // Carbohydr. Research. 1998. — V. 307. -P. 299−309.
  173. Whitney S.E.C. Roles of cellidose and xyloglucan in determining the mechanical properties of primary plant cell walls / S.E.C. Whitney, M.G.E. Gothard, J.T. Mitchell, M.J. Gidley //Plant Physiol. 1999. — V. 121. — P. 657−663.
  174. Whitney S.E.C. Probing expansin action using cellulose/hemicellulose composites / S.E.C. Whitney, M.J. Gidley, S.J. McQueen-Mason // The Plant J. 2000. — V. 22. — P. 327−334.
  175. Willats W. G. T. Pectin: new insights into an old polymer are starting to gel / W.G.T. Willats, J.P. Knox, J.D. Mikkelsen // Trends in Food Science & Technol. 2006. -V. 17.-P. 97−104.
  176. Willfor S. Structural features of water-soluble arabinogalactans from Norway spruce and Scots pine heartwood / S. Willfor, R. Sjoholm, C. Laine, B. Holmbom // Wood Science and Technology. — 2002. V. 36. — P. 101−110.
  177. Wyatt S.E. Arabidopsis thaliana as a model for geleratious fiber formation / S.E. Wyatt, R. Sederoff, M.A. Flaishman, S. Lev-Yadun // Rus. Plant Physiol. 2010. -Nq 3. (in press).
  178. Yamamoto H. Role of the gelatinous layer (G-layer) on the origin of the physical properties of the tension wood of Acer sieboldianum / H. Yamamoto, К Abe, Y. Arakawa, T. Okuyama, J. Gril// J. WoodSci. 2005. — V. 51. -P. 222−233.
  179. York W.S. Structural analysis of xyloglucan oligosaccharides by lH-n.m.r. spectroscopy and fast-atom-bombardment mass spectrometry / W.S. York, H. van Halbeek, A.G. Darvill, / Albersheim // Carbohydr. Research. — 1990. — V. 200.-P. 9−31.
  180. Zimmermann M.H. Tension wood in aerial root of Ficus benjamina L. / M.H. Zimmermann, A.B. Wardrop, P.B. Tomlinson // Wood Science and Technoly. 1968. -V.2.- P. 95−104.
  181. Zykwinska A. W. Evidence for in vitro binding of pectin side chains to cellulose / A.W. Zykwinska, M.C.J. Ralet, C.D. Gamier, J.F.J. Thibault // Plant Physiol.-2005. V. 139. -Ns l.-P. 397−407.
  182. Zykwinska A. Alkaline extractability of pectic arabinan and galactan and their mobility in sugar beet and potato cell walls / A. Zykwinska, C. Rondeau-Mouro, C. Gamier, J.-F. Thibault, M.C. Ralet // Carbohydr. Polym. 2006. — V. 65.-№ 4.- P. 510−520.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!