Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Оценка токсичности стробилуриновых фунгицидов для гидробионтов

Диссертация: Оценка токсичности стробилуриновых фунгицидов для гидробионтов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научная новизна работы. В работе впервые проведена комплексная оценка токсического действия стробилуриновых фунгицидов на ветвисто-усых ракообразных, брюхоногих моллюсков и рыб в различных фазах онтогенеза (эмбрионы и предличинки осетровых рыб, сеголетки карпа) в условиях острых и хронических экспериментов — это позволяет оценивать химическое поражение на разных стадиях патологического процесса… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОСНОВНЫЕ ПРИНЦИПЫ ОЦЕНКИ ПЕСТИЦИДНОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ НА ВОДНЫЕ ЭКОСИСТЕМЫ
    • 1. 1. Пестициды в современном мире и их классификация
    • 1. 2. Стробилуриновые фунгициды — характеристика и биологическое действие
    • 1. 3. Экологические проблемы пестицидного загрязнения водных экосистем
    • 1. 4. Механизмы токсического действия пестицидов на гидробионтов
      • 1. 4. 1. Физиологические нарушения у гидробионтов при пестицидном воздейсвии
      • 1. 4. 2. Биохимические процессы при пестицидной интоксикации
  • ГЛАВА 2. ПОСТАНОВКА ЭКСПЕРИМЕНТОВ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты и материалы исследования
    • 2. 2. Постановка экспериментов
    • 2. 3. Методы биохимических исследований
      • 2. 3. 1. Получение биологических материалов для биохимического анализа
      • 2. 3. 2. Определение содержания малонового диальдегида
      • 2. 3. 3. Определение активности супероксиддисмутазы
      • 2. 3. 4. Определение активности каталазы
      • 2. 3. 5. Определение активности кислой фосфатазы
      • 2. 3. 6. Определение активности ацетилэстеразы
      • 2. 3. 7. Определение активности карбоксилэстеразы
      • 2. 3. 8. Определение содержания восстановленного глутатиона
      • 2. 3. 9. Определение активности глутатионредуктазы
      • 2. 3. 10. Определение активности гаммаглутамилтрансферазы
      • 2. 3. 11. Определение активности глутатион-Б-трансферазы
      • 2. 3. 12. Определение содержания общего белка
    • 2. 4. Математическая обработка результатов
      • 2. 4. 1. Расчет токсикометрических параметров
      • 2. 4. 2. Статистическая обработка данных
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Токсикологическая оценка стробилуриновых фунгицидов по токсикометрическим параметрам и клиническим признакам интоксикации у гидробионтов
      • 3. 1. 1. Оценка степени острой токсичности стробилуринов для зоо-планктонных организмов
      • 3. 1. 2. Оценка степени острой токсичности стробилуринов для зообен-тосных организмов
      • 3. 1. 3. Оценка степени острой токсичности стробилуринов для рыб
    • 3. 2. Особенности биохимического статуса гидробионтов при действии стробилуринов на ранних стадиях интоксикации
      • 3. 2. 1. Влияние стробилуринов на интенсивность ПОЛ в тканях брюхоногих моллюсков и карповых рыб в остром эксперименте
      • 3. 2. 2. Активность антиоксидантных ферментов у брюхоногих моллюсков и карповых рыб при действии стробилуриновых фунгицидов на ранних стадиях токсического процесса
      • 3. 2. 3. Активность детоксикационных процессов у брюхоногих моллюсков и карповых рыб при остром воздействии стробилуринов
    • 3. 3. Оценка формирования метаболических нарушений у карповых рыб при действии стробилуринов в длительном 15-ти суточном эксперименте
    • 3. 4. Действие стробилуринов на биологические показатели жизнедеятельности ветвистоусых ракообразных в хроническом эксперименте
    • 3. 5. Влияние стробилуринов на эмбриональное и раннее постэмбриональное развитие осетровых рыб

Оценка токсичности стробилуриновых фунгицидов для гидробионтов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследований. Изменение свойств водной среды в результате использования химических загрязнений нанесло значительный ущерб биопродуктивности многих водоемов (Брагинский, 1998). Особенно остро это проявилось уже 60 — 70 годы XX столетия. Стало очевидным, что использование разных классов веществ оказывают губительное влияние на водные экосистемы. Пестициды — выступают одним из важных факторов загрязнения окружающей среды (Потапов, Ястребов, 1998; Соколов и др., 2001). Однако, ни одна страна мира в настоящее время не смогла отказаться от использования пестицидов, что, в свою очередь приводит к неизбежному попаданию этих химических соединений в водоемы. Находясь в водной среде, пестициды могут вызывать различные патологические изменения, как у отдельных гидробионтов, так и у целых сообществ (Федоров, Яблоков, 1999).

Анализ литературных данных свидетельствует о том, что сравнительно полные токсиколого-биохимические исследования на гидробионтах проведены лишь при изучении действия пестицидов, которые используются в сельском хозяйстве уже несколько десятилетий (это хлори фосфорорганические соединения, карбаматы, пиретроиды). Доказана их высокая токсичность для водных сообществ.

В настоящее время создаются пестициды новых поколений (Грапов, 1995; РНтшег, 1996). Важным является изучение поведения таких современных пестицидов в водных экосистемах. Последнее вызвано тем, что гидро-бионты, вследствие определенных физико-химических особенностей самой среды обитания и процессов их взаимодействия с этой средой, оказываются в большинстве случаев наиболее чувствительными к антропогенному загрязнению экосистем (Врочинский, Мухопад, 1988; Брагинский, 1998).

Стробилурины представляют собой новое, 4-е поколение, фунгицидов с очень широким спектром трансламинарного мезосистемного действия, обладающие высокой эффективностью в борьбе практически со всеми грибковыми заболеваниями растений (Рубчиц, 2005). Они обладают новым механизмом фунгицидного действия: подавляют митохондриальное дыхание в грибах путем блокировки перемещения электронов в цитохромах «Ь» и «с» дыхательной цепи (Багодский, Санин, 1991).

В известной нам литературе практически нет сведений о влиянии стро-билуринов на водные объекты, не исследованы механизмы токсического действия на гидробионтов, не налажена на должном уровне система мониторинга этих соединений в водоемах. Тем не менее, использование стробилуринов в сельском хозяйстве, как современных средств защиты растений, увеличивается год от года, в результате возрастает опасность попадания их в водоемы.

Вследствие этого, актуальным является изучение влияния стробилури-новых фунгицидов на формирование структурно-метаболических и биологических нарушений у гидробионтов разных систематических групп.

Цель и задачи исследования

Цель работы — оценка токсичности стро-билуриновых фунгицидов для гидробионтов на основе изучения патологических, адаптивных и детоксикационных процессов у них.

В соответствии с целью были поставлены следующие задачи:

1. Установить токсикометрические параметры стробилуриновых фунгицидов (Трифлоксистробин, Пиракластробин, Димоксистробин и Флу-оксастробин) для представителей зоопланктона, зообентоса и рыб в различных фазах онтогенеза (предличинки осетровых рыб, сеголетки карпа).

2. Изучить изменения интенсивности перекисного окисления липи-дов (ПОЛ), состояние систем I и II фаз детоксикации и антиоксидантной защиты у карповых рыб и брюхоногих моллюсков при действии фунгицидов на ранних стадиях развития токсического процесса.

3. Изучить влияние стробилуринов на биохимические процессы у сеголеток карпа в условиях длительного 15-ти суточного эксперимента.

4. Исследовать действие стробилуринов на биологические показатели жизнедеятельности зоопланктонных организмов в хроническом эксперименте.

5. Изучить влияние стробилуринов на эмбриональное и раннее постэмбриональное развитие осетровых рыб.

6. Определить порог чувствительности у разных видов гидробио-нтов к действию стробилуринов.

Научная новизна работы. В работе впервые проведена комплексная оценка токсического действия стробилуриновых фунгицидов на ветвисто-усых ракообразных, брюхоногих моллюсков и рыб в различных фазах онтогенеза (эмбрионы и предличинки осетровых рыб, сеголетки карпа) в условиях острых и хронических экспериментов — это позволяет оценивать химическое поражение на разных стадиях патологического процесса. Проведен сравнительный анализ интенсивности процессов перекисного окисления ли-пидов, антиоксидантной защиты, первой и второй фаз детоксикации у рыб и брюхоногих моллюсков при интоксикации стробилуринами. Впервые изучены основные показатели жизнедеятельности ветвистоусых ракообразных, пластического обмена у осетровых рыб на ранних стадиях онтогенеза, установлены аномалии развития эмбрионов и предличинок при действии фунгицидов данного класса.

Теоретическая и практическая значимость. Результаты исследований вносят значительный вклад «в базу данных» по водной токсикологии. Проведенные исследования позволяют выявить закономерности формирования адаптивных и патологических процессов у гидробионтов в ответ на краткосрочное и длительное воздействие стробилуриновых фунгицидов и оценить их потенциальную опасность для водных организмов.

Практическая значимость работы заключается в следующем: определены токсикометрические параметры и дозоэффективные зависимости воздействия изученных фунгицидов для гидробионтов разных систематических групп, установлены наиболее чувствительные тест-объекты при интоксикации стробилуринами. Найдены информативные биохимические и биологические параметры, характеризующие развитие в организмах гидробионтов пес-тицидной интоксикации, которые могут быть использованы при проведении эколого-токсикологического мониторинга водных экосистем. На основе изучения показателей жизнедеятельности 4-х поколений ветвистоусых ракообразных при действии фунгицидов впервые определены пороги чувствительности зоопланктонных организмов к действию стробилуринов, что является необходимым условием обоснования безвредных уровней содержания их в воде рыбохозяйственных водоемов.

Разработанный комплекс показателей используется в научных исследованиях отдела рыбохозяйственной токсикологии ФГУП «АзНИИРХ». Материалы проведенных исследований легли в основу разработки 4-х рыбохозяйственных нормативов (ПДК) стробилуриновых фунгицидов.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Исследованные стробилурины (Трифлоксистробин, Пиракласт-робин, Димоксистробин и Флуоксастробин) особо токсичны для зоопланктонаособолибо высокотоксичны для рыб на разных стадиях жизненного цикла (от эмбрионов до взрослых особей). Для зообентоса острая токсичность стробилуринов возрастает от среднетоксичного Флуоксастробина до особотоксичного Димоксистробина.

2. Закономерности формирования биохимических адаптивных и патологических процессов у гидробионтов при действии стробилуринов: а) действие Пираклостробина и Трифлоксистробина на уровне минимальных летальных концентраций (Ж)6) в начальные сроки интоксикации (1е 4е сутки) вызывает нарушение про/анти-оксидантного баланса в тканях сеголетков карпа и брюхоногих моллюсков параллельно с активацией де-токсикационных процессов. б) 15-ти суточное воздействие Димоксистробина на уровне минимальной летальной концентрации приводит к срыву адаптационных механизмов, проявившихся в начальные сроки интоксикации, увеличивая его токсичность для рыб.

3. В хроническом эксперименте у ветвистоусых ракообразных происходят необратимые нарушения, связанные с развитием, ростом и репродукцией, в растворах с низкими концентрациями всех исследованных фунгицидов.

4. Стробилурины нарушают пластический обмен у предличинок бесте-ра, снижая их линейный и весовой рост, и обладают выраженным тератогенным действием для эмбрионов и предличинок осетровых рыб.

5. Наиболее чувствительными к действию стробилуринов оказались ветвистоусые ракообразные, эмбрионы и предличинки осетровых рыб.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на российских и международных конференциях: Международная конференция: «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов» (Петрозаводск, 2010) — Международная научая, конференция «Современное состояние водных биоресурсов и экосистем морских и пресных вод России: проблемы и пути решения» (Ростов-на-Дону, 2010) — Седьмая международная научно — практическая конференция молодых ученых по проблемам черного и азовского морей «Понт Эвксинский» (Севастополь, 2011) — Всероссийской конференции с международным участием «Современные проблемы водной токсикологии к 100-летию со дня рождения профессора Е.А. Веселова» (Петрозаводск, 2011) — IV Всероссийской конференции по водной экотоксиколо-гии «Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы» Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина РАН (п.Борок, 2011).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 научных работ, в том числе 3 статьи в изданиях из перечня ВАК. Доля участия автора в публикациях составляет 59% (3,56 п.л.).

Структура и объем диссертации

Диссертационная работа изложена на 143 страницах печатного текста. Состоит из введения, трех основных глав, заключения, выводов, списка использованной литературы, включающей 115 источников отечественных и 55 зарубежных авторов. Содержит 35 таблиц и 28 рисунков.

ВЫВОДЫ.

1. Результаты изучения дозоэффективных зависимостей позволили определить, что по степени острой токсичности все исследованные фунгициды относятся к группе особо токсичных пестицидов для дафний. Для пред-личинок бестера и сеголетков карпа Пираклостробин, Трифлоксистробин и Димоксистробин — особо токсичны, Флуоксастробин — высокотоксичен. Для катушки роговой Пираклостробин и Трифлоксистробин — высокотоксичны, Димоксистробин — особо токсичен. Флуоксастробин относится к группе среднетоксичных соединений для бентосных организмов.

2. При действии стробилуриновых фунгицидов в минимальных летальных концентрациях (ЛК^) на рыб и моллюсков в начальные сроки интоксикации (1-е — 4-е сутки) нарушался про/анти-оксидантный баланс в тканях, что в свою очередь сказывалось на функциональном состоянии лизосо-мальной протеолитической системы, происходила активация КФ. Параллельно усилению процессов ПОЛ и ингибированию активности СОД активировались КТ и ферменты I и II фаз детоксикации в тканях гидробионтов.

3. Длительное воздействие Димоксистробина (15 суток) на уровне минимальной летальной концентрации острого опыта (ЛК]64) вызывало дальнейшую интенсификацию ПОЛ, что приводило к срыву адаптационных механизмов, проявившихся в начальные сроки интоксикации и нарушению функционирования процессов детоксикации. Отмечалось ингибирование активности СОД, КТ, ГЗТ, снижалось содержание ГБН, увеличивалось число погибших рыб.

4. В результате проведения хронических экспериментов установлены высокие пороги чувствительности ветвистоусых рачков к действию стро-билуринов (мг/л): Трифлоксистробин — 0,5, Пираклостробин — 0,6, Димоксистробин — 0,0005, Флуоксастробин — 0,5. Начиная с этих концентраций, в растворах фунгицидов снижалась выживаемость, численность и биомасса популяций, биопараметры воспроизводства, размерно-массовые показатели рачков.

5. Установлены пороги чувствительности осетровых рыб на ранних стадиях онтогенеза к действию стробилуринов (мг/л): Пираклостробин и Трифлоксистробин — 0,001, Димоксистробин — 0,0005, Флуоксастробин -0,05. Начиная с этих концентраций стробилуринов, происходило подавление нормального развития и роста предличинок бестера.

6. Выявлены неспецифические тератогенные эффекты у эмбрионов и предличинок осетровых рыб. Количество патологических признаков и степень их проявления у эмбрионов и предличинок имели дозозависимый характер.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

АОЗ — антиоксидантная защита.

АцЭ — ацетилэстераза.

ГБН — глутатион восстановленный.

Г8Т — глутатион-8-трансфераза.

ГГТ — гамма-глутамилтрансфераза.

ГР — глутатионредуктаза.

ГС — глутатионовая система д.в. — действующее вещество.

КарбЭ — карбоксилэстераза.

КТ — каталаза.

КФ — кислая фосфатаза.

ЛК0 — минимальная недействующая концентрация ЛК16 — минимальная летальная концентрация ЛК50 — среднелетальная концентрация.

ЛК84 — концентрация токсического вещества, вызывающая гибель 84% тест-объектов.

ЛКюо — концентрация токсического вещества, вызывающая гибель 100% тест-объектов.

МДА — малоновый диальдегид ОБ — общий белок.

ПДК — предельно допустимая концентрация ПОЛ — перекисное окисление липидов СОД — супероксиддисмутаза СРП — свободнорадикальные процессы ФОС — фосфорорганические соединения ХОС — хлорорганические соединения.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Подводя итоги проведенной работе, и обобщая имеющиеся литературные данные о влиянии стробилуринов на окружающую среду, а также результаты экспериментов можно отметить следующее.

Стробилурины являются фунгицидами нового поколения и, следовательно, должны наносить минимальный ущерб окружающей среде по сравнению с ранее используемыми пестицидами (Захаренко, 2000; Черных, 2003). По литературным данным они малотоксичны для млекопитающих и отнесены к IV классу опасности (Пестициди. Классифкащя., 2000) — характеризуются отрицательным минимальным действием на пчел, дождевых червей и микробиоту почв (Гришечкина и др. 2004.).

Результаты проведенных нами экспериментов показали, что водные организмы оказались высокочувствительными к действию стробилуриновых фунгицидов в отличие от млекопитающих, толерантных к их действию. Исследованные фунгициды образовали следующий ряд в порядке убывания токсичности:

— для дафний: Пираклостробин > Трифлоксистробин > Флуоксастробин > Димоксистробин;

— для моллюсков: Димоксистробин > Пираклостробин > Трифлоксистробин > Флуоксастробин;

— для предличинок бестера: Пираклостробин > Трифлоксистробин > Димоксистробин > Флуоксастробин;

— для карповых рыб: Трифлоксистробин > Пираклостробин > Димок-ситробин > Флуоксастробин.

На дафний и предличинок осетровых рыб стробирулины оказывали патологическое действие в наименьших концентрациях, причем наиболее токсичным был Пираклостробин.

Наиболее чувствительными к действию этого класса фунгицидов оказались ветвистоусые ракообразные. В растворах с достаточно низкими концентрациями стробилуринов отмечено дозозависимое снижение основных показателей жизнедеятельности кладоцер. За несколько поколений дафний в экспериментальных рядах не произошло восстановления плодовитости, численности и биомассы популяции, более того, происходило снижение размерно-массовых показателей рачков, по-видимому, это свидетельствует об отсутствие адаптации исследуемых гидробионтов к стробилуринам.

По данным литературы стробилурины относятся к пестицидам с умеренной стабильностью в водной среде, т. е. период их 95% распада — до 60 суток. Кроме того, в результате их распада могут образовываться более стабильные метаболиты (Эколого-рыбохозяйственная оценка и нормирование фунгицида Зато.). Ветвистоусые ракообразные активно участвуют в процессах самоочищения водоемов и по численности преобладают в них (Андроникова, 1966). Они являются организмами с коротким жизненным циклом развития. В течение 60-ти суток происходит смена многих поколений кладоцер. Таким образом, нахождение этих фунгицидов в водной среде даже в течение 60-ти суток может оказаться опасным для популяций зоопланктонных организмов, что скажется на продуктивности водоемов.

Поступая в водоемы, пестициды могут оказывать негативное влияние на икру и личинок рыб. Исследования чувствительности осетровых рыб на ранних стадиях онтогенеза к действию стробилуринов в малых дозах свидетельствовали об угнетении обмена веществ у них, что проявлялось в замедлении роста и уменьшении массы гидробионтов. Также стробилурины оказывали существенное тератогенное действие на эмбрионов и предличинок бестера, происходило подавление нормального развития организмов уже в нелетальных дозах пестицидов, а возникшие уродства свидетельствовали о нежизнеспособности особей.

Действие стробирулиновых пестицидов на взрослых рыб и брюхоногих моллюсков в минимальных летальных концентрациях вызывало нарушение биохимических процессов антиоксидантной защиты и детоксикации в течение первых 96-ти часов. При увеличении сроков экспозиции до 15-ти суток патологическое влияние стробилуринов усиливалось, что приводило к мор-фофункциональным изменениям в тканях рыб и их гибели.

Известно, что гетероциклическим пестицидам, к которым относятся и стробилурины, присущи липофильные свойства. Они сравнительно легко проникают сквозь липиды мембран и поступают с помощью липопротеинов в жидкую среду клеток (Hollingworth е! а1., 1994). Вследствие чего при длительном воздействии стробилурины могут накапливаться в тканях и оказывать негативное влияние на рыб и других гидробионтов. Ранее было установлено, что смертность личинок мальков рыб положительно коррелирует с количеством накопленных пестицидов в эмбриональный период (Попова, Шамрова, 1987).

Мониторинг стробилуриновых фунгицидов в водной среде практически не проводится в настоящее время. Тем не менее, они могут представлять реальную опасность для водных экосистем. При оценке токсикологического состояния промысловых рыб Азовского моря в 2009;2010 году сотрудниками ФГУП «АзНИИРХ» в весенней период в печени бычка-кругляка, пиленгаса и судака был обнаружен Димоксистробин, хотя его содержание было достаточно мало (Войкина и др., 2011). Его обнаружение является сигналом для проведения систематических мониторинговых наблюдений за содержанием этих фунгицидов в воде и промысловых видах рыб.

Таким образом, проведенные нами исследования показали, что наиболее уязвимыми к действию стробилуринов оказались дафнии, эмбрионы и предличинки осетровых рыб. У них отмечались необратимые биологические нарушения, связанные с развитием, ростом, репродукцией, в низких концентрациях фунгицидов.

В настоящее время доля стробилуриновых пестицидов, используемых в сельскохозяйственном производстве, увеличивается, расширяется ассортимент препаративных форм фунгицидов на основе стробилуринов и, следовательно, возрастает опасность попадания их в водоемы. В таком случае в природных водоемах эти фунгициды могут быть потенциально опасны, в первую очередь, для гидробионтов, находящихся на ювенильной стадии развития и зоопланктона, являющегося кормовой базой молоди рыб.

Приведенные данные однозначно свидетельствуют о необходимости проведения систематических ежегодных мониторинговых наблюдений за содержанием стробилуриновых фунгицидов в воде рыбохозяйственных водоемов и их влиянием на гидробионтов для объективной оценки уровня экологического риска этих пестицидов для водных экосистем.

Показать весь текст

Список литературы

  1. И.Н. Показатели участия зоопланктона в процессах естественного самоочищения // Структурно-функциональная организация зоопланктона озерных экосистем разных трофических типов. СПБ.: Наука, 1966.-С. 110−122.
  2. А.И., Карузина И. И. Окисление чужеродных соединений и проблемы токсикологии // Вести. АМН СССР. 1988. № 1. С. 14−23.
  3. С.Р. Новые достижения в химии фунгицидов //Агрохимия, 2003, № 11.-С.-27−32.
  4. Л.П. Пестициды и жизнь водоемов К. Науково думка 1972. -82с.
  5. Л.П., Величко И. М., Щербань Э. П. Пресноводный планктон в токсической среде // К.: Наукова думка. 1987. С. 3−15.
  6. Л.П. Принцыпы классификации и некоторые механизмы структурно-фуекциональных перестроек пресноводных экосистем в условиях антропогенного стресса // Гидробиол. Ж. 1998. 34, № 6. — С. 72−94.
  7. Э.Э. Определение токсичности некоторых пестицидов для икры, личинок и молоди куринского осетра // Методы ихтиотоксикологиче-ских исследований. Л., 1987. — С. 17−18.
  8. Ю.А., Арчаков А. Н. Перекисное окисление липидов биологических мембранах М.: Наука. 1972. — 252 с.
  9. Ю.А., Азизова O.A., Деев А. И., Козлов A.B., Осипов А. Н., Рощупкин Д. И. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техники / серия Биофизика. 1991. 250 с.
  10. Ю.А. Свободнорадикальное окисление липидов и физические свойства липидного слоя биомембран // Биофизика. 1987.- Т. 32, Вып. 5. — С. 830−844.
  11. Временные методические указания по методу биоиндикации поверхностных вод на основе анализа биоритмов ферментативной активности моллюсков // Серия 1. Л.: «Гидрометеоиздат». 1987. С. 44−62.
  12. К.К., Мухопад Л. Н. Эколого-гигиенические аспекты миграции пестицидов в водоемах // Влияние биологически активных веществ на гидробионтов. Сб. научных трудов Л., Вып. 287. 1988. — С. 31−37.
  13. Н. Л. Абиотическая трансформация пестицидов в природных водах и донных отложениях // Поведение пестицидов и химикатов в окружающей среде: Тр. Сов.-амер. симп., Айова-Сити, окт., 1991. С. 371−381.
  14. А.Н. Действие малооксона на эстеразы рыб // Ихтиология. -1983, № 8.-С. 180−183.
  15. A.M. Динамика численности пресноводных планктонных ракообразных-М.: Наука. 1987. 189 с.
  16. A.C., Детлаф Т. А. Развитие осетровых рыб. Созревание яиц, оплодотворение и эмбриогенез. М.: Наука. 1969. — 130 с.
  17. С.Н., Саноцкий И. В., Тиунов JI.A. Общие механизмы токсического действия / АМН СССР. Л.: Медицина. 1986. — 280 с.
  18. А.Ф. Пестициды: новые препараты, механизм действия, метаболизм (по материалам VIII Международного конгресса по химии пестицидов) // Агрохимия. 1995. № 3. — С. 84−100.
  19. А.Ф., Козлов В. А. Современные подходы к созданию новых пестицидов // Агрохимия 2003. № 11. — С. 4−13.
  20. Л.Ф., Вавилин В. А., Ляхович В. В. Ферменты биотрансформации ксенобиотиков в химическом канцерогенезе: Аналит. обзор. / Отв. ред. Дымшиц Г. М. Новосибирск: Наука. 2000. — 85 с.
  21. Л.Ф., Гришанова А. Ю., Громова O.A., Слынько H.H., Вавилин В. А., Ляхович В. В. Микросомальная монооксигеназная система живых организмов в биомониторинге окружающей среды / Отв. ред. Лаврик О. И. Новосибирск: Наука. 1994. — 100 с.
  22. С.С., Данильченко О. П. Реагирование эмбрионов и личинок карпа на фосфорорганические соединения // В кн. Реакция гидробионтов на загрязнение -М.: Наука, 1983. С. 158−167.
  23. Т.А., Гинзбург A.C., Шмальгаузен О. И. Развитие осетровых рыб. М.: Наука. 1981.-223 с.
  24. М.О. Воздействие остатков ракетного топлива на фауну водных моллюсков // Материалы. Международной Научной конференции. «Актуальные проблемы экологической физиологии, биохимии, генетики животных» Саранск. 2005. С. 79−80.
  25. В.А. Защита растений в третьем тысячелетии (Материалы XIV Международного конгресса по защите растений) // Агрохимия. 2000, № 4.-С. 75−93.
  26. В.А. Пестициды в аграрном секторе России конца XX начала XXI века // Агрохимия. — 2008. — С.86−96.
  27. М.Б. Продукция планктонных ракообразных. // Общие основы изучения водных экосистем. JL: Наука, 1979. — с. 155 — 169.
  28. Ю. А., Цыбань A.B., Антропогенная экология океана // Л.: Гидрометеоиздат. 1989. 528с.
  29. A.B., Липкина Л. В., Березняк И. В., Федерова С. Г. // Материалы IX Всероссийского съезда гигиенистов и санитарных врачей. М., 2001, Т. 2.-С. 91−94.
  30. Ю.С., Ершова Е. А., Леоненко О. Б., Ксиленко М. А., Жминько П. Г., Зейналова Т. А. Роль монооксигеназной системы в метаболизме и механизме действия некоторых пестицидов // Вестн. АМН СССР. 1988. № 1. -С. 70−75.
  31. Ю.С., Овсянникова Л. М. Некоторые актуальные вопросы токсикологии пестицидов // Физиол. актив, вещества. 1990. № 22. — С. 1−9.
  32. М.Л., Милютина Н. П., Кузнецова Л. Я., Ракитский В. Н. Сво-боднорадикальные процессы в механизме действия и диагностике пестицид-ной интоксикации ихтиофауны. Ростов-на-Дону. 1997. — 119 с.
  33. В.А. Статистическая обработка данных при малом числе опытов // Укр. биохим. ж. 1975. — 47. № 6. — С. 776−777.
  34. В.Г., Камышников B.C. Справочник по клинической химии. -Минск: Беларусь. 1982. С. 147−152.
  35. O.E., Маркин A.A., Федорова Т. Н. Перекисное окисление ли-пидов и методы определения продуктов липопероксидации в биологических средах // Лаб. дело. 1984. № 9. — С. 540−546.
  36. Д.А., Чмырь П. Г. Защита плодоносящих садов яблони и груши // Защита и карантин растений. Приложение. № 6. 2005. — С. 49−119.
  37. П.В., Лошицький В. П. Сади яблуш. Удосконалення сис-теми захисту вщ шюдниюв i хвороб // Захист рослин. № 5. 2000. — С. 24−25.
  38. М.А., Иванова Л. И., Майорова И. Г., Токарев В. Е. Метод определения активности каталазы // Лабораторное дело. 1988. № 1. — С.16−19.
  39. Л.А. Ихтиологические критерии биологической индикации экологических нарушений // Биологическая индикация в антропоэкологии. -Л., 1984.-С. 120−125.
  40. Н.С. Токсические эффекты пестицидов на личинок черноморских рыб // Тез. докл. Второго съезда токсикологов России М., 2003. -С. 150−151.
  41. В.И., Колесниченко Л. С. Обмен глутатиона //Успехи биологической химии. 1990. Т. 31. — С. 157−179.
  42. В.И., Колесниченко Л. С. Биологическая роль глутатиона // Успехи современной биологии. 1990, Т. 110, Вып. 1. — С. 20−23.
  43. В.И. Обезвреживание ксенобиотиков // Соросовский образовательный журнал. 1999. № 1. — С. 8−12.
  44. С. А. Основы токсикологии. СПб: Фолиант. 2004. — 720 с
  45. Лабораторные методы исследования в клинике. Справочник под редакцией проф. В. В. Меньшикова. М: Медицина. 1987. — С. 209−210.
  46. С.А. Сравнительный анализ влияния перметрина на ферменты в условиях эксперимнтов in vivo // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез. докл. / Моск. Гос. акад. Ветеринарной медицины и биотехнологии М., 1999.-С. 66−67.
  47. Г. Ф. Биометрия. М., 1979. — 342 с.
  48. И.Л., Москвичев Д. В., Зинчук O.A. Экологические аспекты токсичности азоловых пестицидов для гидробионтов Ростов-на-Дону: Медиа-полис. 2007. — 203 с.
  49. О.Б. Потенцирование токсичности при комбинированном действии сульфата меди с дельтаметрином и пиримифосметилом // Токсикол. вестник. 1996. № 2. — С. 13−15.
  50. О.Б., Каган Ю. С. Критериальное значение показателей пере-кисного окисления липидов при воздействии пестицидов // Токсикол. вестник. 1994. № 4. — С. 24−27.
  51. И.Н. Нарушения в раннем онтогенезе осетровых // Тез. докл. V Всесоюзной конференции по раннему онтогенезу рыб. Астрахань, 1−3 окт., 1991.-С. 161−162.
  52. А.П. Потоки осадочного вещества, природные фильтры и осадочные системы «живого океана» // Геология и геофизика 2004. Т. 45, № 1.-С. 15−48.
  53. В.И. Общая ихтиотоксикология. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. — 320 с.
  54. А.Г., Бойко А. П., Винокуров Н. Б., Гарвилов A.A. Зато в системе защиты яблони от парши // Защита и карантин растений № 4. 2001. -С. 25−26.
  55. Материалы заявки на регистрацию фунгицида Баритон, КС (д.в. про-тиоконазол, 37,5 г/л и флуоксастробин, 37,5 г/л) фирмы «Байер КропСайенс АГ». Германия. 2009. 45 с.
  56. Материалы заявки на регистрацию фунгицида Пиктор, КС (д.в. димок-систробин, 200 г/л и боскалид, 200 г/л) фирмы «BASF». Германия. 2006. 22 с.
  57. .Н., Логинов A.C., Ткачев В. Д. Цитохром P-450-зависимое гидроксилирование и активность глутатионзависимых ферментов печени при ее хроническом поражении // Вопр. мед. химии. 1997. — Т. 43, № 4. — С. 256−260.
  58. H.H. Пестициды. Химия, технология и применение. М.: Химия. 1987.-711 с.
  59. H.H., Волков А. И., Коротков A.A. Пестициды и окружающая среда. М.: Химия. 1977. — 240 с.
  60. H.H., Новожилов К. В., Белан С. Р. Пестициды и регуляторы роста растений / Справ, изд. М.: Химия. 1995. — 576 с.
  61. Методические рекомендации по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ) загрязняющих веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение М.: ВНИРО. 1998. — 147 с.
  62. Методические указания по разработке предельно-допустимых концентраций пестицидов в воде рыбохозяйственных водоемов Ростов — на — Дону. 1979.-С 7−9.
  63. В.Г. Адаптация рыб в процессе стресса и тренировки: Тез. докл. Первый конгресс ихтиологов России. М.: ВНИРО. 1997. — С. 231−232.
  64. В.М., Ляхович В. В. Множественные формы цитохрома Р-450. -Новосибирск: Наука. 1985. 180 с.
  65. Д.В., Кесельман М. Л., Лукаш А. И. Свободнорадикальные механизмы пестицидной интоксикации в тканях белых крыс // Токсикол. вестник. 2000. № 2. — С. 6−11.
  66. В.А., Камилов Ф. Х. О роли процессов перекисного окисления липидов в патогенезе острой интоксикации фосфорорганическими соединениями // Башк. хим. ж. 1997. — 4, № 1. — С. 16−22.
  67. С.А. Введение в биохимическую экологию. М.: Наука, 1986.- 176 с.
  68. Г. А., Голованова И. Л., Ушакова Н. В. Репродуктивные показатели, размеры и активность гидролаз у Daphnia magna Straus в ряду поколений при действии гербицида «раундап» // Биология внутренних вод 2009. № 3. — С. 105−110.
  69. Пестициди. Классифкащя за ступенем небезпечности: ДСанГБН 8.8.1.002−98 // 36. важливих офщшних матер1ал1 В з саштарних I протиешдесм1чних питань. Кшв. — Т. 9, ч. 1. 2000. — С. 249−266.
  70. A.A., Тутельян В. А. Лизосомы. М.: Наука, 1976. — 382 с.
  71. A.A., Арчаков А. И. Определение активности ацетилэстера-зы по A.A. Покровскому, А. И. Арчакову // Современные методы в биохимии. -М.: «Медицина». 1968.-С. 50−51.
  72. Г. В., Шамрова Л. Д. Накопление пестицидов в воспроизводительной системе рыб и их гонадотоксическое действие // Экспериментальная водная токсикология. 1987, Вып. 12. — С. 191−193.
  73. А.И., Ястребов Г. Г. Гигиенические проблемы национальной безопасности России. Мат-лы VIII Всероссийского съезда гигиенистов и санитарных врачей. Сб. научн. Трудов. -М, 1998. Т. 1. — С. 7−10.
  74. И.А. Применения смесей пестицидов и регуляторов роста на посевах зерновых колосовых культур // Агрохимия. 1998, С.74−89.
  75. В .Б. Использование метода наименьших квадратов для пробит-анализа кривых летальности // Фармакол. и токсикол. 1962. № 1. -С. 68−72.
  76. В.Н. Проблема оценки потенциальной и реальной опасности в санитарной токсикологии и гигиене. Сб. научных трудов. Уфа. 1997. — С. 12−14.
  77. O.B. Компания БАСФ: инновации залог успеха клиентов// Защита и Карантин растений. 2005. № U.C. 45−46.
  78. А.Д., Коропенко Е. О. Влияние хлорорганических пестицидов на состояние ихтиофауны нижнего дона // Современные проблемы водной токсикологии. Тезисы докладов. Борок. 2002. — 24 с.
  79. А. Д., Коротков Л. И., Сапожникова Е. в., Коропенко Е. О. Современное состояние пестицидного загрязнения водных объектов Азовского бассейна // Сб. науч трудов АзНИИРХ. Ростов-на-Дону, 2000. — С. 112−113
  80. B.C. Экологическая биохимия рыб. Липиды. Л.: Наука. 1983. — 240 с.
  81. B.C., Немова H.H., Высоцкая Р. У., Такшеев С. А. Вариабельность интегрального биохимического индекса у рыб под влиянием техногенных вод горно-обогатительного комбината // Экология. 2003. № 4. — С. 274 280.
  82. Н.И., Микряков В. Р. Состояние процессов перекисного окисления липидов и антирадикальной системы тканей рыб при воздействии фенола и нафталина // Токсикол. вестник. 2006. № 3. — С. 19−23.
  83. М.С., Жариков Г. А., Дядищев Н. Р., Подгорный Л. И. Концептуальное обоснование эколого-гигиенического нормирования экосистем // Токсикол. вестник. 2001.№ 3 — С. 31−35.
  84. И.Д., Гаришвили Т. Г. Метод определения малонового диаль-дегида с помощью тиабарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии. М: Медицина. 1977. — С. 66−68.
  85. Н.С., Колосова Л. В. Ведение лабораторной культуры и определения плодовитости дафний в ряде поколений. // Методики биологических исследований по водной токсикологии М.: Наука. 1971. — С. 210−216.
  86. М.Г., Изюмов Ю. Г., Чеботарева Ю. В. Аберрантные митозы и гистопатология гонад у сеголеток плотвы Rutilus rutilus после токсических воздействий в эмбриональный и личиночный периоды развития // Вопросы ихтиологии. 2001. 41. № 2. — С. 232−238.
  87. Л.А. Механизмы естественной детоксикации и антиоксидант-ной защиты // Вестник Рос. АМН 1995. № 3. — С. 9−13.
  88. Л.А. Некоторые вопросы молекулярной токсикологии // Вестник АМН. 1991. № 1.-С. 8−11.
  89. Л.А., Иванова В. А. Роль глутатиона в процессах детоксикации // Вестник АМН СССР. 1988. № 1. — С. 62−69.
  90. Л.А., Яблоков A.B. Пестициды токсический удар по биосфере и человеку — М.: Наука. 1999. — 460 с.
  91. .А. Эколого физиологические аспекты токсикологии пресноводных животных, Автореферат дис. кан. биол. наук. М., 1984. — 33 с.
  92. И. Радикалы кислорода, пероксид водорода и токсичность кислорода // Свободные радикалы в биологии / Под ред. У. Прайора. М.: Мир. 1979.-Т. I.-С. 272−314.
  93. Хмелева Закономерности размножения ракообразных. Минск: наука и техника. 1988.-204 с.
  94. A.M. Угрозы здоровью человека при использовании пестицидов (обзор) // Гигиена и санитария. 2003, № 5. — С. 25−29.
  95. A.M. Гигиеническая оченка применения пестицидов в районах Курской области // Гигиена и санитария. 2006, № 2. — С. 539−545.
  96. В.И., Двоскин Я. Г., Брагина И. В., Иванов A.A., Гарбузова A.A. Загрязнение пестицидами территории Российской Федерации как потенциальная опасность для здоровья населения // Гигиена и санитария. -2003, № 3.-С. 68−71.
  97. O.A. Активность антиоксидантной системы личинок рыб как показатель качества морской среды // 6 Международная конференция «Биоантиоксидант», М. 16−19 апр., 2002: Тезисы докладов. М., 2002. С. 620 621.
  98. О.И. Осетр Acipenser quldenstadti colchicus. Развитие предличинок // В кн. «Объекты биологии развития» АН СССР. М.: Наука. 1975.-С. 264−276.
  99. ЩербаньЭ.П., И. Н. Коновец, О. М. Арсан, исследование токсичности Алжирского суперфосфата для DAFNIA MAGNA и CERIODAFNIA AFFINIS гидробиологический журнал, — 2000.- Т36, № 5. С. 71−77.
  100. Эколого-рыбохозяйственная оценка и нормирование фунгицида Зато 500 г/кг, ВДГ и его действующего вещества Трифлоксистробина для воды рыбохозяйственных водоемов Ростов-на-Дону, ФГУП «АзНИИРХ». 2005. -106 с.
  101. Эколого-рыбохозяйственная оценка и нормирование фунгицида Каб-риотоп 605 г/кг, ВДГ и его действующего вещества Пираклостробина для воды рыбохозяйственных водоемов Ростов-на-Дону, ФГУП «АзНИИРХ». 2005.-112 с.
  102. Эколого-рыбохозяйственная оценка и нормирование фунгицида Баритон, КС (37,5 г/л Флуоксастробина + 37,5 г/л Протиоконазола) и его действующего вещества Флуоксастробина для воды рыбохозяйственных водоемов Ростов-на-Дону, ФГУП «АзНИИРХ». 2009. — 103 с.
  103. Л.Б. О повышении точности определения активности глута-тионредуктазы эритроцитов // Лабораторное дело. 1989, № 4. — С. 19−21
  104. Al-Ghais S.M., АН В. Inhibition of glutathione-S-transferase catalyzed xe-nobiotic detoxication by organotin compound in tropical marine fish tissues // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.- 1999. 62, V. 2. P. 207−213.
  105. Banerjee B.D., Bhattacharya A., Pasha S.T., Chacraborty A.K. Biochemical effects of some pesticides on lipid-peroxidation and free-radical scavengers // Toxicol. Lett. 1999. 107. N 1−3. — P. 33−47.
  106. Basack S.B., Oneto M.L., Fuchs J.S., Wood E.J., Kesten E.M. Esterases of Corbicula fluminea as biomarkers of exposure to organophosphorus peticide // Bull. Environ. Contam. And Toxicol. 1998. 61. N 5. — P. 569−576.
  107. Broeg K. Acid phosphatase activity in liver macrophage as a marker for pollution-induced immunomodulation of the non-specific immune response in fish // Helgold. Mar. Res. 2003. 57. № 3−4. — P. 166−175.
  108. Butler Ph. A. Commercial fishery investigations. Pesticide-wildlife studies (a revue of fish and wildlife service investigations) Washington. — 1963, — P. 5558.
  109. Cantalamessa F. Acute toxicity of two pyrethroids, permethrin and Cypermethrin in neonatal and adult rats //Arch Toxicol. 1993. 67. — P. 510−530.
  110. Czarniewska E., Kasprzyk A., Ziemnicki K. Influence of fenitrothion and malation on antioxidant enzymatic defence in liver of the frog Rana esculenta L. // Pestycydy. -2005. № 1−2. P. 15−23.
  111. El-Khatib E.N. Aldicarb-induced biochemical changes in fresh water fish Tilapia nilotica // Toxicol. Lett. 2001. 123. — 112 p.
  112. Ellman Q.L. Tissue sulfhydryl groups // Arch. Biochem.- 1959. V. 82. P. 70−77.
  113. Felista Rani E., Balasubramanian M.P. Effect of mixtures of pesticide and fertilizer on proteins, carbohydrates, phosphomonoesterases and non-specific esterases in Oreochromis mossambicus (Peters) // Nat. Acad. Sei. Lett. 1999. 22. N 3−4. — P. 70−74.
  114. Forkert Poh-Gek, Lee Raymond P., Reid Ken Involvement of CYP2E1 and carboxylesterase enzymes in vinil carbamate metabolism in human lung microsomes // Drag Metab. And Disposit. 2001. 29. N 3. — P. 258−263
  115. Frederick M. Fishel Pesticide Toxicity Profile: Triazole Pesticides/ 2005. -http://edis.ifas.ufl.edu/ PI 105.
  116. Glickman A. H., Weitman S.D., Lech J.J. Differential toxicity of trans-permethrine in rainbow trout & mise // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1982, 66. -P.153−161.
  117. Gonzalez F.J. Role of xenobiotic-metabolizing enzymes in cancer susceptibility / Pap. Keystone Symp. Mol. and Cell Biol. «Mol.Toxicol.», Copper Mountain, Colo, Jan. 9−15, 1995 // J. Cell. Biochem. 1995. — Suppl. 19A. — 187 p.
  118. Gupta RC, Kadel WL. Concerted role of carboxylesterase in the potentiation of carbofuran toxicity by iso-OMPA pretreatment // J. Toxicol. Environ. Health -1989,N26.-P. 447−457.
  119. Habig W.H., Pabst M.J., Jacoby W.B. Glutation-S-transpherase: the first step in mercapturic acid formation // J. Biol. Chem. 1974. V. 249. — P. 130−139.
  120. Haendel M., Tilton F., Bailey G., Tanguay R. Developmental toxicity of the dithiocarbamate pesticide sodium metam in zebrafish // Toxicol. Sci. 2004. 81. № 2. — P. 390−400.
  121. Haux C., Forlin L. Biochemical method for detecting effects of contaminants on fish. // Ambio. 1988. — 17. — P. 376−380.
  122. Hayes J.D., McLellan L.I. Glutathione and glutathione-dependent enzymes represent a coordinately regulated defence against oxidative stress // Free Radical Res. 1999. V. 31.-P. 273−300.
  123. Herms S., Seehaus K., Koehle H. A Strobilurin Fungicide Enhances the Resistance of Tobacco against Tobacco Mosaic Virus and Pseudomonas syringae pv tabaci // Plant Physiol-2002. V. 130.-P. 120−127.
  124. Hollingworth R.M., Ahammadsahib K.I., Gadelhak Q., McLaughlin J.L. New inhibitors of complex I of the mitochondrial electron transport chain with activity as pesticides // Biochem. Soc. Trans. 1994. 22. N 1. — P. 230−233.
  125. Kresoxim-methyl // JMPR Evaluations 1998 Part II Toxicological (http://www.inchem.org/documents/jmpr/jmpmono/v098prl0.htm).
  126. Kresoxim-methyl Technical Sovran Fungicide. Regulatory Note REG2000−14, October 20, 2000 //Publications Coordinator Pest Management Regulatory
  127. Agency Health Canada (http://www.pmra-arla.gc.ca/english/pdf/reg/reg2000−14-e.pdf).
  128. Krijgsheld K.R., Van der Gen A. Assesment of tne impact of the emission of certain organochlorine compounds on the aquatic environment. Part is monochlo-rophenols and 2,4-dichlorophenol // Chemospher. 1986. Vol. 15, N7. — P.825−860.
  129. Latchoumycandane C., Mathur P.P. Effect of methoxychlor on the antioxidant system in mitochondrial and micrrosome-rich fractions of the rat testis // Toxicology. 2002. 176. N 1−2. — P. 67−75.
  130. Lower N., Moore A. Exposure to insecticides inhibits embryo development and emergence in Atlantic salmon. // Fish Physion. and Biochem. 2003. — 28, № 1. — P. 431−432.
  131. Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. V. 193. — P. 265−275.
  132. Misra H.P., Fridovich I. The role of superoxide anion in the autooxidation of epinephrine and simple assay for superoxide dismutase // J. Biol. Chem. 1972. -Vol. 247, N 10. — P. 3170−3175.
  133. Oruc Elif Ozcan, Uner Nevin. The protective role of glutathione-S-transferase against lipid peroxidation in fish exposed to 2,4-D and azinphosmethil // Drag Metab. Rev. 2002. — 34. — 182 p.
  134. Otto D.M.E., Moon T.W. Phase I and II enzymes and oxidant responses in different tissues of brown bullheads from relatively polluted and non-polluted systems // Arch. Environ. Contam. and Toxicol. 1996. 31. V. 1. — P. 141−147.
  135. Ozcan Orus E., Sevgiler Y., Uner N. Tissue-specific oxidative stress responses in fish exposed to 2,4-D and azinphosmethil // Compar. Biochem. and Physiol. 2004. 137. № l.-P. 43−51.
  136. Ozretic B., Krajnovic-Ozretic M. Esterase heterogeneity in mussel Mytilus galloprovincialis: effects of organophosphate and carbamate pesticides in vitro // Comp. Biochem. Physiol. 1992. V. 103C. N 1. -P. 221−225.
  137. Pena-Llopis S., Ferrado M.D., Pena J.B. Impaired glutation redox status is associated with decreased survival in two organoohosphate-poisoned marine bivalves // Chemosphere. 2002. 47. N 5. — P. 485−497.
  138. Plimmer J.R. Analitical chemistry and the future of pesticides // Environ-mantial Science and Health 1996, B31(4). — P. 645−670.
  139. Shaoguo Ru, Xuanhui Wei, Ming Jiang, Yongqi Li. In vivo and in vitro inhibition of red drum (Sciaenops ocellatus) brain acetylcholinesterase and liver car-boxylesterase by monocrotophos at sublethal concentrations // Cybium. 2003. 27. N l.-P. 17−25.
  140. Shivakumar R., David M. Endosulfan induced behavioural changes in the freshwater fish, Cyprinus carpio // J. Ecotoxicol. and Environ. Monit. 2004. -14, № 1. — P. 65−69.
  141. Sorsa Sota Solomon, Fan De-fang, Li Shao-nan Hepatic glutatihione-s-transferase activity in mosquitofish (Gambusia affinis) and topmouth gudgeon (Pseudorasbora parva) exposed to fenitrothion // J. Zhejiang Univ. Sci. 2000, N2.-P. 190−195.
  142. Sublethal effects of profenofos on locomotor behavior and gill architecture of the mosquito fish, Gambusia affinis // Rao and Chem.Toxicol. 2006. — 29, № 3. — P. 255−267.
  143. Tang Xue-xi, Li Yong-gi, Huang Jian Effect of paration on lipid peroxidation in Platymonas sp. and Dunaliella sp. // Oceonol. et limnol. sin. 1999. 30. N3.-P. 295−299.
  144. Toxicological Profile. Trifloxystrobin. (http://www.fluoridealert.org/ pesti-cides/Trifloxystrobin.FR.Novl 4.01 .htm).
  145. Trifloxystrobin. New Chemical Registration, 20 September, 1990 // Pesticide Fact Sheet: US EPAhttp://www.fluoridealert.org/pesticides/trifloxystrobin.epa.fact.99.pdf).
  146. Van Leeuwen C.J. Ecotoxicological aspects of dithiocarbamatees (Thesis) // University of Utrecht. Utrecht. — 1986. — 235 p.
  147. Villalobos S. Alex, Hamm Jonathan T., The Swee J., Hinton David E. Thi-obencarb-induced embryotoxicity in medaka (Orixias latipes): Stage-specific toxicity and protective role of chloridon // Aquat. Toxicol. 2001. 51. N 3. — P. 293 303.
  148. Wang Chong-gang, Wei Feng-gin. Hubei minzu xueyuan xuebao // J. Hubei Inst. Nat. Natur. Sci. 2002. 20. N 1. — P. 1−3.
  149. Warnick S.L. Concentrations and effects of pesticides in aquatic Environments. J. Am. Water Works Ass, — 1964 56. N 2. — P. 5−8.
  150. Yarsan E., Tanyuksel M., Celic S., Aydin A. Effects of aldicarb and mala-tion on lipid peroxidation // Bull. Environ. Contam. and Toxicol. 1999. 63. N 5. -P. 575−581.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!