Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Влияние УФ-А излучения и синего света низкой интенсивности на морфогенез и содержание фотосинтетических пигментов растений

Диссертация: Влияние УФ-А излучения и синего света низкой интенсивности на морфогенез и содержание фотосинтетических пигментов растений
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Поглощение УФ-А лучей различными частями растений достигает весьма большой величины, что определяет роль УФ-А лучей как важного фактора экологии (Дубров, 1963; Тооминг, 1977). Существуют различные мнения о роли УФ-А радиации в жизнедеятельности растений. Отмечается как угнетающее, так и стимулирующее влияние УФ-А лучей или их действие приравнивают по значению к видимым лучам (Дубров, 1963… Читать ещё >

Содержание

  • 03. 00. 16. — Экология
  • Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук
  • Научный руководитель к.х.н., доцент Минич A. C
  • Томск оглавление
  • список сокращений и условных обозначений введение
    • глава 1. роль света в регуляции роста и морфогенеза растений
    • 1. 1. Фотоморфогенез
    • 1. 2. Влияние УФ излучения на растительные организмы
    • 1. 2. 1. Морфологические и физиологические эффекты
  • УФ излучения
    • 1. 2. 2. Адаптация растений к УФ излучению и механизмы репарации повреждений
    • 1. 3. Фоторегуляторные пигменты СС и УФ света
    • 1. 4. Высокоэнергетические и низкоэнергетические морфогенетические реакции
    • 1. 5. Светокультура и фильтры электромагнитного излучения
  • глава 2. объекты и методы исследования
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Методы выращивания растений
    • 2. 3. Методы проведения морфометрических измерений
    • 2. 4. Метод определения фотосинтетических пигментов
  • глава 3. адаптация
  • АЯАВЮОРЗН ТНАЫАт (ь.) неугш. дикого типа ьег и мутантов (1гуЗ, ку4) к уф, а излучению и синему свету низкой интенсивности
    • 3. 1. Рост и развитие растений на белом свету
    • 3. 2. Влияние УФ-А излучения на морфогенез и уровень накопления фотосинтетических пигментов растений
    • 3. 3. Динамика роста и развития растений при уменьшении интенсивности белого света и УФ-А излучения
    • 3. 4. Влияние синего света низкой интенсивности с максимумом 447 нм на рост и развитие растений
  • глава 4. морфогенез белокочанной капусты под светокорректирующей пленкой, генерирующей синий свет с максимумом 447 нм
  • выводы

    • Влияние УФ-А излучения и синего света низкой интенсивности на морфогенез и содержание фотосинтетических пигментов растений (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

    Актуальность исследования. Изучение закономерностей в отношениях между растениями и средой их обитания на разных уровнях организации является одной из главных фундаментальных задач экологической науки, так как растительность представляет собой важнейший компонент абсолютного большинства экосистем и биосферы в целом. Важнейшим фактором окружающей среды для растений является свет, который выступает источником энергии для фотосинтеза и регулятором всех сторон жизнедеятельности растительного организма (Stapleton, 1992; Jackson, 1995; Franklin, 2004). Растения получают из окружающей среды световые сигналы, которые являются индикаторами свойств окружающей обстановки и используют полученную информацию для адаптации и развития (Kasahara, 2002; Franklin, 2004). Это осуществляется с помощью фоторецепторов с целью определения спектрального состава, интенсивности, направленности светового потока, продолжительности и периодичности освещения (Whitelam, 1998).

    Протекание процессов, регулируемых излучением, возможно при облучении растений светом как высокой, так и низкой интенсивности. Свет высокой интенсивности, в том числе УФ-А излучение, изменяет в первую очередь фотосинтетическую активность растений (Дубров, 1968; Насыров и др., 1972; Ellenberg, 1986). Свет низкой интенсивности вызывает изменения в протекании низкоэнергетических реакций, связанных с фоторегуляторными пигментами, отвечающими за индивидуальное развитие растений (Красновский, 1975; Воскресенская, 1987). Однако процессы, возбуждаемые излучением низкой интенсивности, очень требовательны к спектральному составу света (Воскресенская, 1975). При изменении в световом потоке одного из участков спектра наблюдаются изменения в морфогенезе растений, так как нарушается передача сигнала в системе фоторегуляции (Карначук,.

    1989; Deng, 1994).

    Поглощение УФ-А лучей различными частями растений достигает весьма большой величины, что определяет роль УФ-А лучей как важного фактора экологии (Дубров, 1963; Тооминг, 1977). Существуют различные мнения о роли УФ-А радиации в жизнедеятельности растений. Отмечается как угнетающее, так и стимулирующее влияние УФ-А лучей или их действие приравнивают по значению к видимым лучам (Дубров, 1963). Однако точно известно, что действие УФ-А излучения малоэффективно при коротких экспозициях, но эффективно при длительном облучении и высокой интенсивности (Дубров, 1968). Роль УФ-А света значительно возрастает при совместном действии с ФАР, особенно в синергизме с СС (Whitelam, 1998; Christie, 2001), т. е. УФ-А излучение является важным фактором для протекания процессов фотоморфогенеза (Данильченко и др., 2002).

    Изучение действия света определенных длин волн и интенсивности в естественных условиях является сложной задачей из-за влияния на растения множества факторов. Поэтому в настоящее время исследования проводят, применяя генетические технологии с использованием растений Arabidopsis, что позволяет объяснить роль света требуемого диапазона и взаимодействие между различными фоторецепторами (Whitelam, 1998).

    В лабораторных условиях наиболее эффективными техническими средствами изменения спектрального состава излучения являются светофильтры (Сечняк и др., 1981). В научных исследованиях в качестве эффективных селективных фильтров электромагнитного излучения применяют светокорректирующие полимерные пленки (Толстиков, 1998; Рогозин и др., 1998; Кособрюхов и др., 2000; Минич A.C. и др., 2000; Головацкая и др., 2002; Астафурова и др., 2003; Минич A.C. и др., 2003; Минич И. Б., 2005). Такие пленки за счет введения в их состав фотолюминофоров преобразуют часть УФ-А излучения в видимую область спектра (Щелоков, 1986; Kusnetsov et al., 1989; Карасев, 1995; Райда и др., 2003). В лабораторных условиях показано, что незначительное изменение интенсивности и спектрального состава видимого и УФ-А излучения светокорректирующей пленкой влияет на морфогенез Arabidopsis посредством изменения гормонального баланса растений (Минич И.Б., 2005; Минич A.C. и др. 2006). Использование светокорректирующих пленок в защищенном грунте приводит к эффекту ускорения процессов жизнедеятельности растений и повышению их урожайности (Щелоков, 1986).

    За длительную историю эволюционного развития растения выработали способность использовать не только ФАР, но и УФ-А лучи для различных реакций роста и развития. Хотя защитные и адаптационные механизмы действуют в растениях, существо этих реакций до сих пор не раскрыто. Способность растений к световой адаптации является важной проблемой, требующей исследований (Borevitz, 2002). Поэтому представляет интерес исследовать in vitro влияние на жизнедеятельность растений УФ-А излучения, а также СС низкой интенсивности с максимумом излучения 447 нм, генерируемого светофильтром за счет преобразования части УФ-А света.

    Цель работы. Оценка влияния УФ-А излучения и СС низкой интенсивности с максимумом 447 нм на морфогенез и накопление фотосинтетических пигментов растений.

    Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

    1. Изучить особенности роста, развития и накопления фотосинтетических пигментов модельного объекта Arabidopsis Ler, мутантов hy3 и hy4 при выращивании на БС от ламп «Fluora» в условиях светокультуры.

    2. Установить особенности роста, развития и накопления фотосинтетических пигментов Arabidopsis Ler, hy3 и hy4 при выращивании на свету, состоящем из БС и УФ-А излучения, и определить влияние УФ-А света на жизнедеятельность растений.

    3. Оценить влияние уменьшения интенсивности БС и УФ-А излучения на процессы роста, развития, семенную продуктивность и накопление фотосинтетических пигментов Arabidopsis Ler, hy3 и hy4.

    4. Выявить роль излучения низкой интенсивности синей области спектра с максимумом 447 нм на процессы роста, развития, семенную продуктивность и накопление фотосинтетических пигментов Arabidopsis Ler, hy3 и hy4.

    5. Определить эффективность внедрения в практику тепличных хозяйств в качестве укрытий сооружений закрытого грунта светокорректирующей полиэтиленовой пленки, преобразующей часть УФ-А излучения в синюю область спектра, с целью управления продукционным процессом.

    Научная новизна. Полученные результаты вносят вклад в развитие представлений об особенностях адаптации растений к действию УФ-А излучения и СС низкой интенсивности.

    Показано, что УФ-А излучение влияет на морфогенез Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Ler, мутантов hy4 и hyS ингибируя ростовые реакции, что ведет к удлинению этапов онтогенеза, увеличению сроков вегетации растений и связано у мутантных линий с увеличением содержания фотосинтетических пигментов.

    Выявлено, что уменьшение интенсивности светового потока БС и УФА излучения изменяет морфогенез Arabidopsis thaliana. Это выражается в различной скорости ростовых реакций на конечных этапах онтогенеза и в изменении семенной продуктивности мутантов куЗ и hy4.

    Показано, что основную роль в регуляции роста и развития Arabidopsis thaliana на свету, содержащем УФ-А излучение и СС низкой интенсивности, принадлежит не CRY1, а другому пигменту, возможно относящемуся к неизвестной группе фоторецепторов СС и УФ-А излучения.

    Показано регуляторное действие СС низкой интенсивности с максимумом 447 нм на морфогенез Arabidopsis thaliana Ler и мутанта hy4. Выявлено, что у растений Ler увеличение скорости ростовых реакций не изменяет их семенную продуктивность, а у мутанта hy4 ведет к ее значительному увеличению и не связано с изменениями содержания фотосинтетических пигментов.

    Впервые выявлено в условиях защищенного грунта ускоренное развитие рассады капусты сорта «Надежда» под светокорректирующей пленкой с максимумом люминесцентного излучения 447 нм.

    Практическая значимость. Показана возможность эффективного применения светокорректирующей пленки с максимумом люминесцентного излучения 447 нм в качестве укрытий сооружений защищенного грунта при культивировании белокочанной капусты сорта «Надежда» с целью значительного укорочения рассадного периода. Это позволяет решать вопросы создания светокорректирующих пленок, используемых в растениеводстве защищенного грунта, с необходимыми фотофизическими свойствами для управления продукционным процессом растений, что используется в фермерском хозяйстве М. П. Борзунова (г. Томск) и в тепличном хозяйстве «Башня Ли» (г. Лоян, провинция Хэнань, КНР).

    Полученные результаты используются в учебном процессе Томского государственного педагогического университета при чтении курсов «Общая экология», «Физиология растений», «Основы сельского хозяйства».

    Защищаемые положения. Экспозиция УФ-А излучением приводит к изменениям в морфогенезе Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Ler, мутантов hy4 и hy3 и к накоплению фотосинтетических пигментов у мутантов.

    СС низкой интенсивности с максимумом 447 нм оказывает регуляторное действие на морфогенез и семенную продуктивность Arabidopsis thaliana Ler и мутанта hy4.

    При использовании светокорректирующей пленки с максимумом 447 нм в защищенном грунте оптимизируются процессы роста и развития растений.

    Внедрение результатов исследований было осуществлено на агробиологической станции Томского государственного педагогического университета, в фермерском хозяйстве М. П. Борзунова (г. Томск) и в тепличном хозяйстве «Башня Ли» (КНР) при выращивании различных культур — томатов, огурцов, капусты, редиса и салата.

    Апробация работы. Материалы настоящей работы были доложены на.

    Межрегиональной научно-технической конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Молодежь Сибири науке России», г. Красноярск, 2004; VIII Всероссийской конференции студентов, аспирантов и молодых ученых (с международным участием) «Наука и образование», г. Томск, 2004; VIII Международной научной школе-конференции студентов и молодых ученых «Экология Южной Сибири и сопредельных территорий», г. Абакан, 2004; Международной научно-практической конференции «Регуляция продукционного процесса сельскохозяйственных растений», г. Орёл, 2005; X Всероссийской конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Наука и образование», г. Томск, 2006.

    Публикации. По теме диссертационной работы опубликовано 10 научных работ, в том числе 4 статьи (1,1 п.л.) в журналах, рекомендованных списком ВАК.

    Объем и структура работы. Диссертация изложена на 126 страницах машинописного текста, содержит 39 рисунков, 13 таблицсостоит из введения, обзора литературы, главы объектов и методов исследования, двух глав экспериментальных результатов и их обсуждения, выводов, списка литературы, включающего 168 наименований, в том числе 78 иностранных источников.

    ВЫВОДЫ.

    1. Установлено, что ростовые реакции Arabidopsis thaliana мутантов hy4 и hy3 на БС от ламп «Fluora» с интенсивностью светового потока 126 Вт/м протекают интенсивнее, чем у растений Ler, что приводит к уменьшению периода вегетации мутантов на 6 суток.

    2. УФ-А излучение с интенсивностью 0,35 Вт/м влияет на морфогенез Arabidopsis thaliana ингибируя ростовые реакции, что приводит к удлинению этапов онтогенеза и увеличению сроков вегетации Arabidopsis thaliana Ler на 15 суток, мутантов hy3 и hy4 — на 25 суток. Увеличение сроков вегетации способствует повышению семенной продуктивности растений Ler в 1,9 раза и ку4 в 2,7 раза. Изменения в морфогенезе у мутантных линий сопряжены с увеличением содержания фотосинтетических пигментов.

    3. Уменьшение интенсивности БС до 88,4 Вт/м2 и УФ-А излучения до 0,21 Вт/м влияет на морфогенез Arabidopsis thaliana, приводя к различиям в скорости ростовых реакций в репродуктивной фазе онтогенеза, к уменьшению семенной продуктивности мутанта hy4 в 3,3 раза и увеличению семенной продуктивности мутанта куЗ в 3,2 раза.

    4. Действие СС низкой интенсивности и УФ-А излучения увеличивает семенную продуктивность мутанта hy4. Это позволяет предположить, что основным регуляторным фоторецептором УФ-А излучения и СС низкой интенсивности у Arabidopsis thaliana является не CRY1. Доминирующая роль в регуляции роста и развития растений принадлежит другому фоторецептору СС и УФ-А излучения.

    5. СС низкой интенсивности с максимумом 447 нм регулирует морфогенез Arabidopsis thaliana Ler, мутанта hy4 и не влияет на морфогенез мутанта hy3. У растений Ler увеличение скорости ростовых реакций не изменяет их семенную продуктивность, а у мутанта hy4 происходит увеличение семенной продуктивности в 7,2 раза.

    6. Применение светокорректирующей полиэтиленовой пленки с максимумом люминесцентного излучения 447 нм в качестве укрытий сооружений защищенного фунта в регионе Томска при выращивании рассады белокочанной капусты Brassica oleracea (L.) сорта «Надежда» приводит к ускоренному развитию растений и укорочению рассадного периода на одну неделю.

    Показать весь текст

    Список литературы

    1. А. с. 1 381 128 СССР, МКИ4 С08 К 5/07. Полимерная композиция (ее варианты) / Л. Н. Голодокова, А. Ф. Лепаев, В. М. Дмитриев и др. № 3 326 307 / 23−05- Заявл. 10.08.81- Опубл. 15.03.88, БИ № 10,1989.
    2. Т.П., Верхотурова Г. С., Зайцева Т. А., Ракитин A.B. и др. Влияние соотношения спектральных участков ФАР на фотосинтетический метаболизм растений огурца // Вестник Башкирского университета. 2001. -№ 2(1).-С. 9−11.
    3. Т.П., Верхотурова Г. С., Зайцева Т. А. и др. Особенности роста и развития растений огурца при выращивании под светокорректирущими пленками // Сельскохозяйственная биология. 2003. -№ 5.-С. 44−48.
    4. Ш. Г. Овощные культуры мира. Энциклопедия огородничества. -СПб.: Диля, 1998.-512 с.
    5. Н.Г. Спектральный состав света как фактор изменения физиологического состояния и продуктивности растений // Сельскохозяйственная биология. 1993. — № 1. — С. 9−17.
    6. Н.Г. Интенсивность и спектральный состав света: влияние на начальные стадии фотосинтеза // Физиология растений. 1987. — Т. 34. -Вып. 4. — С. 748−757.
    7. И.В. О методике изучения семенной продуктивности. Ботанический журнал. 1974. — Т. 59. — № 6. — С. 826−831.
    8. А.Е. Динамика клеточных компонентов тканей листа Arabidopsis thaliana (Brassicaceae) в ходе диффренциации. 1. Апикальная меристема и листовые примордии // Ботанический журнал. 2000. — Т. 85. -№ 8.-С. 68−83.
    9. М.П., Воскресенская Н. П. Тонкая структура хлоропласта нормальных и мутантных растений гороха, выращенных на свету различногоспектрального состава // Физиология растений. 1973. — Т. 20. — № 1. — С. 96−101.
    10. И.Д. Фитохром регуляторный фоторецептор растений. -Минск: Навука и техшка, 1992. — 168 с.
    11. Н.П. Фотосинтез и спектральный состав света. М.: Наука, 1965.-308 с.
    12. Н.П. Физиология фотосинтеза (сб. статей). Регуляторная роль синего света. М.: Наука, 1982. — 320 с.
    13. Н.П. Фоторегуляторные реакции и активность фотосинтетического аппарата // Физиология растений. 1987. — Т. 34. -Вып.4. — С. 669−683.
    14. Н.П., Гришина С. Г., Сеченская М. Р. и др. О последствии синего и красного света на активность окисления гликолевой кислоты хлоропластами и галогентами гороха // Физиология растений. 1970. — Т. 17. -№ 5. — С. 1028−1036.
    15. М.И., Золин В. Ф. Спектры люминесценции европия. М.: Наука, 1974.-215 с.
    16. И.Ф., Райда B.C., Лещук Р. И. и др. Физиолого-биохимические особенности роста и продуктивность растений овощных культур при выращивании под светокорректирующими пленками // Сельскохозяйственная биология. 2002. — № 5. — С. 47−51.
    17. И.Ф., Карначук P.A., Ефимова М. В. Рост и гормональный баланс арабидопсиса на зеленом свету // Вестник Башкирского университета. -2001. -№ 2 (1). -С.114−116.
    18. А., Девис П., Сэттер Р. Жизнь зеленого растения. М.: Мир, 1983.-550 с.
    19. О.А., Гродзинский Д. М., Власов В. Н. Значение ультрафиолетового излучения в жизнедеятельности растений // Физиология и биохимия культурных растений. 2002. — Т. 34. — № 3. — С. 187−197.
    20. И.С., Бондар В. В., Бухов Н. Г., Котов А. А., Котова Л. М., и др. Влияние спектрального состава света на морфогенез и донорно-акцепторные отношения у растений редиса // Физиология растений. 2001. — Т. 48. — № 4. — С. 485190.
    21. А.П. Действие ультрафиолетовой радиации на растения. М.: Изд. Академии наук СССР, 1963. — 115 с.
    22. А.П. Генетические и физиологические эффекты действия ультрафиолетовой радиации на высшие растения. М.: Наука, 1968. — 257с.
    23. Е.И., Канаш Е. В. Современные проблемы УФ-В радиации в экофизиологии и растениеводстве // Сельскохозяйственная биология. 2005. -№ 1.-С. 3−19.
    24. М.Н. Фенольные соединения. Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993. — 271 с.
    25. Заявка № 50−10 219 Япония, МКИ, А 01 в 13/00. Пленочные водозащитные покрытия / Микадо како К.К. -№ 45−109 892- Заявл. 10.12.70- Опубл. 19.04.75 // Изобретения за рубежом. 1975. — В. 1. — № 24.
    26. Заявка № 51−28 529 Япония, МКИ, А 01 в 13/02. Светофильтрующая пленка / Микадо како К.К. № 49−73 607- Заявл. 08.07.70- Опубл. 19.08.76 // Изобретения за рубежом. — 1976. — В. 1. — № 24.
    27. Заявка № 51−28 530 Япония, МКИ, А 01 в 13/02. Светорассеивающая защитная пленка для ускорения роста растений / Микадо како К.К. № 4 983 911- Заявл. 10.12.70- Опубл. 19.08.76 // Изобретения за рубежом. — 1976. -В. 1. -№ 24.
    28. В.Ф., Коренева Л. Г. Редкоземельный зонд в химии и биологии. -М.: Наука, 1980.-350 с.
    29. Е.Я., К познанию системы видов Arabidopsis Heynh., произрастающих в СССР // Ботанический журнал. 1972. — Т. 57. — № 3. — С. 331−335.
    30. В.Е. Полисветаны новые полимерные светотрансформирующие материалы для сельского хозяйства // Вестник ДВО РАН. — 1995. — № 2. — С. 66−73.
    31. P.A., Протасова H.H., Головацкая И. Ф. Рост растений и содержание гормонов в зависимости от спектрального состава света. В сб.: Рост и устойчивость растений. Новосибирск, 1988. — С. 71−81.
    32. P.A., Головацкая И. Ф. Гормональный статус, рост и фотосинтез растений, выращенных на свету разного спектрального состава // Физиология растений. -1998. Т. 45. — № 6. — С. 925−934.
    33. P.A. Регуляторная роль света разного спектрального состава в процессах роста и фотосинтетической активности листа растений: Автореф. дисс. д-ра биол. наук. М.: ТСХА, 1989. — 42 с.
    34. P.A., Головацкая И. Ф., Ефимова М. В., Хрипач В А. Действие эпибрассинолида на морфогенез и соотношение гормонов у проростков Arabidopsis на зеленом свету // Физиология растений. 2002. — Т. 49. — № 4. -С.591−595.
    35. Л.В. Фотосинтетический аппарат и световой режим. -Минск: Изд. БГУ, 1980. 142 с.
    36. В.И. Фотоморфогенез, фотосинтез и рост как основа продуктивности растений. Пущино, 1991. — 136с.
    37. А.Ф. Роль света в жизни растений. Сер. III, № 29. — М.: Изд-во «Знание», 1955. — 32 с.
    38. А.Ф., Лебедева Е. В., Протасова H.H. и др. Выращивание растений при искусственном освещении. -М.: Сельхозгиз, 1959. 128 с.
    39. К.Я. Лучистая энергия солнца. Л.: Гидрометеоиздат, 1954.-599 с
    40. A.A., Креславский В. Д., Храмов Р. Н. и др. Влияние дополнительного люминесцентного излучения низкой интенсивности с максимумом 625 нм на рост и фотосинтез растений // Biotronics. 2000. -№ 29.-С. 23−31.
    41. С.А. Интенсификация технологии возделывания культур в защищенном грунте М.: Химия, 1981. — 140с.
    42. A.A. Фоторецепторы растительной клетки и пути светового регулирования. В сб. Фоторегуляция метаболизма и морфогенеза растений. М.: Наука, 1975. — С. 5−15.
    43. Е.Д. Роль фитохрома в растениях. М.: Агропромиздат, 1986. -288 с.
    44. О.Н. Как свет регулирует жизнь растений // Соросовский Образовательный Журнал. 2001. — Т. 7. — № 4. — С. 6−12.
    45. Ф.М. Биологический контроль в сельском хозяйстве. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1962. — 252 с.
    46. Ф.М. Закономерности индивидуального развития растений в зависимости от условий внешней среды. М.: Изд. моек, ун-та, 1963. — 104 с.
    47. В.М. Изготовление осветительных установок с люминесцентными лампами и применение их в теплицах. М.: Изд. «Московский рабочий», 1955. — 19 с.
    48. Г. М., Сидько Ф. Я., Полонский В. И., Тихомиров A.A. Золотухин И. Г. Интенсивность и качество света как факторы, определяющие формирование ценоза и урожай растений в светокультуре // Физиология растений. 1987. — Т. 34. — Вып. 4. — С. 637−643.
    49. Л.А., Проворов H.A., Тиходеев О. Н. и др. Генетика развития растений. СПб.: Наука, 2000. — 539 с.
    50. Е.Ф., Сысоева М. И., Трофимова С. А., Курец В. К. Математические методы определения некоторых биометрических показателей у растений. Препринт. Петрозаводск, 1988. — 32 с.
    51. М.Н. Пигменты, оптика листа и состояние растений // Соросовский Образовательный Журнал. 1998. — № 4. — С. 19−24.
    52. A.C., Минич И. Б., Райда B.C. и др. Биологическое тестирование светокорректирующих пленок в условиях закрытого грунта при выращивании белокочанной капусты // Сельскохозяйственная биология. -2003.-№ 3.-С. 112−115.
    53. И.Б. Влияние красного низкоэнергетического люминесцентного излучения на морфогенез и баланс эндогенных гормонов растений: дисс. канд. биол. наук. Томск: ТГУ, 2005. — 105 с.
    54. А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Наука, 1981.-196 с.
    55. .С. Выращивание растений при искусственном освещении. -Л.: Колос, 1966.-287 с.
    56. В.Д. Приусадебное хозяйство. Овощеводство. М.: Изд-во ЭКСМО-пресс, Изд-во ЛИК-пресс, 2000. — 368 с.
    57. Ю.С., Абдурахманова З. Н., Эргашев А. Э. Действие ультрафиолетовой радиации на фотосинтетические и ферментативныереакции фотосинтеза // Теоретические основы фотосинтетической продуктивности.-М.: 1972.
    58. A.A. Световое и углеводное питание растений -фотосинтез. М.: Изд. Академии наук СССР, 1955. — 288 с.
    59. A.A. свет в фотосинтезе и продуктивности растений Физиология растений. 1987. — Т. 34. — Вып. 4. — С. 628−635.
    60. В.В., Саламатова Т. С. Физиология роста и развития растений. Л.: Изд-во ЛГУ, 1991. — 239 с.
    61. Т.Я., Власов П. В., Ракитин В. Ю. Гормональные аспекты различной устойчивости мутантов Arabidopsis thaliana к ультрафиолетовой радиации // Физиология растений. 2001. — Т. 48. — № 3. — С. 414−420.
    62. Т.Я., Ракитин В. Ю., Власов П. В., Прудников О. Н. Влияние АБК на индуцированное УФ-Б выделение этилена у etr и ctr мутантов Arabidopsis thaliana II Физиология растений. 2004. — Т. 51. — № 5. — С. 737 741.
    63. Результаты испытаний люминесцентных полимерных пленок «Агролюм» при тепличном выращивании овощных культур: Отчет о НИР / НПО «Монокристаллреактив». Харьков, 1989. — 76 с.
    64. Г. А. Рецепторы фитогормонов // Физиология растений. 2002. -Т. 49.-№ 4.-С. 615−625.
    65. .А. Проблемы физиологии в современном растениеводстве. -М.: Колос, 1979.-302 с.
    66. JI.K., Киндрук H.A., Слюсаренко O.K., Иващенко В. Г., Кузнецов Е. Д. Экология семян пшеницы. М.: Наука, 1981. — 209 с.
    67. К., Костецка-Гугала А., Латовски Д. Каротиноиды растений и стрессовое воздействие окружающей среды: роль модуляции физических свойств мембран каротиноидами // Физиология растений. 2003. — Т. 50. — № 2.-С. 188−193.
    68. И.А. Сигнальные системы клеток растений. М: Наука, 2002.-294 с.
    69. А.Л., Федоров A.A., Курсанов А. Л. и др. Цветковые растения. 1981. — Т. 5. — Ч. 2. — С. 67−74.
    70. А.Н. Защитные механизмы фотосинтеза // Соросовский Образовательный Журнал. 1999. -№ 11. — С. 16−21.
    71. A.A., Лисовский Г. М., Сидько Ф. Я. Спектральный состав света и продуктивность растений. Новосибирск: «Наука» Сибирское отделение, 1991. — 168 с.
    72. A.A., Лисовский Г. М. Уровни организации фотосинтетического аппарата и управление продукционным процессом в фитоценозах в условиях светокультуры // Физиология растений. 2001. — Т. 48.-№ 3.-С. 461−466.
    73. Г. А. Полисветаны фотоиндуцирующие полимерные материалы для покрытия вегетационных сооружений. В сб.: светокорректирующие пленки для сельского хозяйства / Под ред. B.C. Райда. -Томск, 1998. С. 3−4.
    74. Х.Г. Солнечная радиация и формирование урожая. Л.: «Гидрометеоиздат», 1977. — 199 с.
    75. С.С. Свет и развитие растений. М.: Знание, 1960. — 39 с. Шахов А. А. Фотоэнергетика растений и урожай. — М.: Наука, 1993.411с.
    76. А.А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев // Биохимические методы в физиологии растений. М.: Наука, 1971.-С. 154−171.
    77. И.А. Растение и солнце. JL, Гидрометеоиздат, 1973. — 252 с. Щелоков Р. Н. Полисветаны и полисветановый эффект // Изв. АН СССР. — 1986. — № Ю. — С. 50−55.
    78. Ahmad М., Cashmore A.R. HY4 gene of A. thaliana encodes a protein with characteristics of a blue-light photoreceptor // Nature. 1993. — V. 366. — P. 162 166.
    79. Ahmad M., Grancher N., Heil M., Black R.C. et al. Action spectrum for cryptochrome-dependent hypocotyls growth inhibition in Arabidopsis II Plant Physiology. 2002. — V. 129. — P. 774−785.
    80. Al-Shehbaz, Steve L. O’Kane Taxonomy and Phylogeny of Arabidopsis (Brassicaceae). The Arabidopsis Book, — 2004. — P. 1−22. — http://www.itis.gov/
    81. Bagnall D.J., King R.W. et al. Blue-light promotion of flowering is absent in hy4 mutants oi Arabidopsis II Planta. 1996. — V. 200. -№ 2. — P. 278−280.
    82. Bailare C.L. Stress under the sun: spotlight on ultraviolet-B responses // Plant Physiology. 2003. — V. 132. — P. 1725−1727.
    83. Bartley G.E. and Scolnik P.A. Plant Carotenoids: Pigments for Photoprotection, Visual Attraction, and Human Health // The Plant Cell. 1995. -V. 7.-P. 1027−1038.
    84. Bieza K., Lois R. Arabidopsis Mutant Tolerant to Lethal Ultraviolet-B Levels Shows Constitutively Elevated Accumulation of Flavonoids and Other
    85. Phenolics // Plant Physiology. 2001. — V. 126. — P. 1105−1115.
    86. Blum D.E., Neff M.M., Van Volkenburgh E. Light-stimulated cotyledon expansion in the blu3 and hy4 mutants of Arabidopsis thaliana II Plant Physiology. 1994.-V. 105.-P. 1433−1436.
    87. Boccalandro H.E., Mazza C.A. et al. Ultraviolet B radiation enhances a phytochrome-B-mediated photomorphogenic response in Arabidopsis II Plant Physiology. 2001. — V. 126. — P. 780−788.
    88. Borevitz J.O., Maloof J.N., Lutes J. et al. Quantitative Trait Loci Controlling Light and Hormone Response in Two Accessions of Arabidopsis thaliana II Genetics. 2002. — V. 160. — P. 683−696.
    89. Bortwick H.A., Hendriks S.B., Schneider M.I. et al. The high energy light action controlling plant responses and development // Proc. Acad. Sei. USA. -1969. V. 64. — № 2. — P. 479186.
    90. Briggs W.R., Christie J.M. Phototropins 1 and 2: versatile plant blue-light receptors // Trends Plant Sei. 2002. -V.l.- P. 204−210.
    91. Briggs W.R., Huala E. Blue-light photoreceptors in higher plants // Annu. Rev. Cell Dev. Biology. 1999. — V. 15. — P. 33−62.
    92. Briggs W.R., Olney M.A. Photoreceptors in plant photomorphogenesis to date. Five photochromes, two cryptochromes, one phototropin, and one superchrome // Plant Physiology. 2001. — V. 125. — P. 85−88.
    93. Casal J.J. Phytochromes, cryptochromes, phototropin photoreceptor interactions in plants // Photochemistry and Photobiology. — 2000. — V. 71. — № 1. -P. 1−11.
    94. Cashmore A.R., Jarillo J.A., Wu Y.J., Liu D. Cryptochrome: blue light receptors for plants and animals // Science. 1999. — V.284. — P. 760−765.
    95. Chasan R. Phytochrome: seeing red // The Plant Cell. 1991. — V. 3. — P. 1253−1254.
    96. Chasan R. Seeing light // The Plant Cell. 1993. — V. 5. — P. 137−140. Christie J.M., Reymond P., Powell G.K., Bernasconi P. et al. Arabidopsis NPH1: a flavoprotein with the properties of a photoreceptor for phototropism //
    97. Science. 1998,-V. 282.-P. 1698−1701.
    98. Christie J.M. and Briggs W.R. Blue Light Sensing in Higher Plants // The Journal of Biological Chemistry. 2001. — V. 276. — № 15. — P. 11 457−11 460.
    99. DeBlasio S.L., Mullen J.L. et al. Phytochrome modulation of blue light-induced chloroplast movements in Arabidopsis I I Plant Physiology. 2003. — V. 133.-P. 1471−1479.
    100. Deng X.W., Quail P.H. Signaling in light-controlled development // Semin. Cell Dev. Biol. 1999.-V. 10.-P. 121−129.
    101. Deng X.W. Fresh view of light signal transduction in plants // Cell. 1994. -V. 102.-P. 432−426.
    102. Ellenberg H. Vegetation mitteleuropas mit den Alpen. Stuttgart, 1986. 9861. P
    103. Fankhauser C. The phytochrome, a family of red/far-red absorbing photoreceptors // J. Biol. Chem. 2001. — V. 276. — Issue 15. — P. 11 453−11 456.
    104. Franklin K.A. and Whitelam G.C. Light signals, phytochromes and crosstalk with other environmental cues // Journal of Experimental Botany. 2004. — V. 55.-№ 395.-P. 271−276.
    105. P. Использование теплоудерживающих и люминесцентных пленок в качестве покровных материалов для теплиц // Acta Horticultarae. -1984.-№ 154.-151 p.
    106. Frohnmeyer H. and Staiger D. Ultraviolet-B Radiation-Mediated Responses in Plants. Balancing Damage and Protection // Plant Physiology. 2003. — V. 133. -P. 1420−1428.
    107. Galston A.W. A tale of two pigments // Plant Physiology. 2001. — V. 126. -P. 32−34.
    108. Jackson J.A., Jenkins G.I. Extension-growth responses and expression of flavonoid biosynthesis genes in the Arabidopsis by4 mutant // Planta. 1995. — V. 197.-P. 233−239.
    109. Jenkins G.I., Christie J.M., Fuglevand G. et al. Plant responses to UV and blue light: biochemical and genetic approaches // Plant Science. 1995. — V. 112. -P. 117−138.
    110. Kasahara M., Swartz T.E., Olney M.A. et al. Photochemical Properties of the Flavin Mononucleotide-Binding Domains of the Phototropins from Arabidopsis, Rice, and Chlamydomonas reinhardtii II Plant Physiology. 2002. -V. 129.-P. 762−773.
    111. Koornneef M., Rolffand E., Spruit C.J.P. Genetic control of light-inhibited hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana II Pflanzenphysiol. 1980. — V. 100. -P. 147−160.
    112. Kozuka T., Horiguchi G. et al. The different growth responses of the Arabidopsis thaliana leaf blade and the petiole during shade avoidance are regulated by photoreceptors and sugar // Plant and Cell Physiology. 2005. — V. 46. -№ 1.-P. 213−223.
    113. Krause G.H., Schmude C., Garden H., et al. Effects of Solar Ultraviolet Radiation on the Potential Efficiency of Photosystem II in Leaves of Tropical Plants// Plant Physiology. 1999. — V. 121. — P. 1349−1358.
    114. F. Окрашенные пленки для теплиц // Colt prot. 1982. — V. 11.-№ 5.-P. 53−56.
    115. V.L. Полимерные материалы в сельском хозяйстве типы и характеристики // Rev. Plast Modernos. — 1987. — V. 53. — № 370. — P. 470−482.
    116. Meyerowitz E.M. Prehistory and history of Arabidopsis research // Plant Physiology. 2001. -V. 125. — P. 15−19.
    117. Middleton E.M. and Teramura A.H. The Role of Flavonol Glycosides and Carotenoids in Protecting Soybean from Ultraviolet-B Damage // Plant Physiology. 1993. — V. 103.-P. 741−752.
    118. Mockler Т., Hongyun XuHong Yu, Dhavan Parikh et al. Regulation of photoperiodic flowering by Arabidopsis photoreceptors // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2003. — V. 100. — № 4. — P. 2140−2145.
    119. Mohr H., Schopfer P. Plant physiology. Berlin: Sringer-Verlag, 1995.598 p.
    120. Neff M.M., Fankhauser C., Chory J. Light: an indicator of time and place // Genes Dev. 2000. -V. 14. — P. 257−271.
    121. Neff M.M., Chory J. Genetic interaction between phytochrome A, phytochrome B, and cryptochrome 1 during Arabidopsis development // Plant Physiology. 1998. — V. 118. — P. 27−35.
    122. Neff M.M., Van Volkenburgh E. Light-stimulated cotyledon expansion in Arabidopsis seedlings (the role of phytochrome B) // Plant Physiology. 1994. -V. 104.-P. 1027−1032.
    123. Nordborg M., Bergelson J. The effect of seed and rosette cold treatment on germination and flowering time in some Arabidopsis thaliana (Brassicaceae) ecotypes // American Journal of Botany. 1999. — V. 86. — P. 470−475.
    124. Parks B.M. Update on red-light signaling. The red side of photomorphogenesis // Plant Physiology. 2003. — V. 133. — P. 1437−1444.
    125. Perrota G., Ninu L. et al. Tomato contains homologues of Arabidopsis cryptochrome 1 and 2 // Plant Mol. Biol. 2000. — V. 42. — P. 765−773.
    126. Quail P.H. Phytochrome photosensory signaling networks // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2002. -V. 3. — P. 85−93.
    127. Reed J.W., Nagpal P. et al. Mutations in the gene for the red/far-red light receptor phytochrome B alter cell elongation and physiological responses throughout Arabidopsis development // The Plant Cell. Vol. 1993. — V. 5. — P. 147−157.
    128. Robson P.R., Whitelam G.C., Smith H. Selected components of the shade-avoidance syndrome are displayed in a normal manner in mutants of Arabidopsis thaliana and Brassica rapa deficient in phytochrome B // Plant Physiology. -1993.-V. 102.-P. 1179−1184.
    129. Sakamoto M., Briggs W.R. Cellular and subcellular localization of phototropin 1 // The Plant Cell. 2002. — V. 14. — P. 1723−1735.
    130. Salomon M., Christie J.M., Knieb E., Lempert U., Briggs W.R.
    131. Photochemical and mutational analysis of the FMN-binding domain of the blue-light photoreceptor phototropin // Biochemestry. 2002. — V. 39. — P. 9401−9410.
    132. Sancar A. CRYPTOCHROME: the second photoactive pigment in the eye and its role in circadian photoreception // Annual Rev. Biochem. 2000. — V. 69. -P. 31−67.
    133. Seed and DNA catalog / Arabidopsis Biological Resource Center. Internet Edition. 1997. — V. 12. — 266 p. — http://aims.cps.msu.edu/aims
    134. Sharrock R.A., Quail P.H. Novel photochrome sequences in Arabidopsis thaliana: structure, evolution, and differential expression of a plant regulatory photoreceptor family II Genes Dev. 1989. — P. 1745−1757.
    135. Scholl R.K., May S.T., Ware D.H. Seed and molecular resources for Arabidopsis // Plant Physiology. 2000. — V. 124. — P. 1477−1480.
    136. Somers D.E., Sharrock J.M. et al. The hy3 long hypocotyls mutant is deficient in phytochrome В // The Plant Cell. 1991. — V.3. — № 12. — P. 12 631 274.
    137. Stapleton A E. Ultraviolet radiation and plants: burning questions // The Plant Cell. 1992. — V. 4. — P. 1353−1358.
    138. Stenoien H.K., Fenster C.B. et al. Quantifying latitudinal clines to light responses of Arabidopsis thaliana (Brassicaceae) I I American Journal of Botany. -2002.-V. 89.-P. 1604−1608.
    139. F. Влияние пластмассовых пленок с фотоселективными свойствами на урожайность бобовых // Colt. prot. 1986. — V. 15. — № 3. — P. 29−34.
    140. Tucker E.B., Lee M., Shaan Alii et al. UV-A induces two calcium waves in Phycomitrella patens II Plant and Cell Physiology. 2005. — V. 46. — № 8. — P. 1226−1236.
    141. Wang H., Deng X.W. Dissecting phytochrome A dependent signaling network in higher plants // Trend Plant Sci. 2003. — V. 8. — P. 172−178.
    142. Wang H., Deng X.W. Phytochrome signaling mechanism. In. Somervile C. R, Meyerwitz E.M., eds // The Arabidopsis Book. 2004. — http: //www.bioone.org/pdfserv/i 1543−8210−018−01 -0001 .pdf
    143. Whitelam G.C., Johnson E., Peng J., Carol P. et al. Phytochrome A null mutants of Arabidopsis display a wild-type phenotype in white light // The Plant Cell. 1993. — V. 5. — P. 757−768.
    144. Whitelam G.C. and Devlin P.F. Light signalling in Arabidopsis II Plant Physiol. Biochemistry. 1998. — V. 36 — № 1−2. — P. 125−133 http ://arabidopsis.info/Multvresult?phenotvpe=crv 1 http://arabidopsis.info/Multyresult?phenotype:=phyB
    Заполнить форму текущей работой

    Заказал и сдал!