Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Изучение возможности использования электрофореза белков и нуклеиновых кислот для диагностики вирусных и вирусоподобных болезней ягодных культур

Диссертация: Изучение возможности использования электрофореза белков и нуклеиновых кислот для диагностики вирусных и вирусоподобных болезней ягодных культур
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Широкое применение электрофорез получил в области фитопатологии первоначально как метод изучения, выделения и очистки нативных вирусных частиц. Позднее было признано использование данного метода для анализа кап-сидного вирусного бежа и нуклеиновых кислот. Данный метод позволяет установить природу болезнетворного агента (вироид, вирус или фитоплазменный организм), определить молекулярную массу… Читать ещё >

Содержание

  • Цели и задач исследований
  • Научная новизна и практическая ценность работы
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Вирусные, фитоплазменные и вирусоподобные болезни ягодных культур
    • 1. 2. Основные принципы и методы очистки вирусов и вирусных белков
    • 1. 3. Особенности очистки непереносимых соком вирусов
    • 1. 4. Выделение и очистка вирусспецифических нуклеиновых кислот
    • 1. 5. Использование электрофореза белков для изучения и диагностики вирусов
    • 1. 6. Диагностика и анализ вирусов методом электрофореза нуклеиновых кислот
  • Глава 2. Материалы и методы
    • 2. 1. База исследований
    • 2. 2. Материалы и объекты исследований
    • 2. 3. Методика выделения и очистки вирусспецифических белков
    • 2. 4. Выделение и очистка вирусспецифических нуклеиновых кислот
    • 2. 5. Методика проведения электрофореза
  • Глава 3. Результаты исследований
    • 3. 1. Очистка и выявление методом электрофореза специфического белка вируса хлороза жилок малины (ЯУСУ)
    • 3. 2. Очистка и выявление методом электрофореза специфических белков вирусов крапчатости (БМУ) и морщинистости (8СУ) земляники
    • 3. 3. Очистка и выявление методом электрофореза специфических белков возбудителей вирусных и вирусоподобных болезней смородины и крыжовника
    • 3. 4. Изучение возможности использования разработанной методики для выявления вирусов косточковых культур
    • 3. 5. Очистка и выявления методом электрофореза специфических РНК вирусов ягодных культур
    • 3. 6. Ожидаемый экономический эффект по использованию метода электрофореза белков и нуклеиновых кислот для диагностики вирусных и вирусоподобных болезней ягодных культур
    • 3. 7. Обсуждение результатов
    • 4. Выводы
    • 5. Рекомендации по практическому использованию

Изучение возможности использования электрофореза белков и нуклеиновых кислот для диагностики вирусных и вирусоподобных болезней ягодных культур (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Ягодные культуры в сильной степени поражаются вирусными и фито-плазменными заболеваниями. К настоящему времени число выявленных вирусов и фитоплазм составляет на землянике -27, малине -25, смородине -14, на крыжовнике 9 (R.H. Converse, 1987). Вредоносность этих заболеваний может быть значительной. Так, израстание на малине и реверсия на смородине могут вызывать полное бесплодие насаждений (Ю.Н. Помазков, 1975). Потери урожая малины в результате заражения мозаикой могут достигать 53% (Г.Т. Борзых, 1975; A.A. Кузнецова, 1970), на землянике от вирусов крапчатости и морщинистости урожаи уменьшаются в 1,7 раза (О.О. Белошапкина, 1986; В. Ю. Минаев, 1985). Из-за внутриклеточного характера паразитирования и теснейшей взаимосвязи цикла развития вирусов с жизнедеятельностью растений-хозяев борьба с этими патогенами в существующих насаждениях невозможна. Единственный эффективный способ снижения их вредоносности в условиях многофакторной динамичной системы адаптивного садоводства является использование высококачественного оздоровленного посадочного материала (В. И. Кашин, 1995).

Производство оздоровленного посадочного материала и фитовирусологи-ческие исследования, в целом, в настоящее время невозможны без современных методов экспресс-диагностики вирусов. К одним из таких методов относится иммуноферментный анализ, основанный на производстве антисывороток к вирусам. Однако область применения этого метода довольно ограничена ввиду наличия целого ряда так называемых соконепереносимых вирусов, частицы которых необратимо разрушаются либо в экстрактах сока, либо в процессе очистки. Получение антисывороток к таким вирусам в настоящее время не представляется возможным. Диагностика этих вирусов в настоящее время возможна только путём прививок на соответствующие растения — индикаторы, что весьма трудоёмко, требует наличия зимних теплиц и большого количества растений-индикаторов, в то время, как продолжительность теста составляет 1−2 года. Аналогичным образом осуществляется сейчас и диагностика фитоплазм, поражающих ягодные культуры: израстания малины, желтухи и позеленения лепестков земляники и т. д.

Исследования последних десятилетий показали возможность решения данной проблемы на основе использования метода электрофореза белков и нуклеиновых кислот данных патогенов.

Широкое применение электрофорез получил в области фитопатологии первоначально как метод изучения, выделения и очистки нативных вирусных частиц. Позднее было признано использование данного метода для анализа кап-сидного вирусного бежа и нуклеиновых кислот. Данный метод позволяет установить природу болезнетворного агента (вироид, вирус или фитоплазменный организм), определить молекулярную массу, макроструктуру и концентрацию белков и нуклеиновых кислот, контролировать качество очистки вирусных препаратов и иммуноглобулинов, анализировать конечный продукт полимеразной цепной реакции и т. д. В последнее десятилетие электрофорез выделился в качестве самостоятельного метода диагностики некоторых флоэмограниченных вирусов, вироидов и считается единственным методом выявления так называемых критических вирусов.

В России и СНГ метод электрофореза использовали для диагностики вироидов веретеновидности клубней картофеля и карликовости хризантем (Т.Я. Васильева, 1985; Т. Б. Кастальева, К. А. Можаева, 1988; Ю. А. Леонтьева и др., 1988) и для изучения прижилковой мозаики и бороздчатости древесины винограда (H.A. Мулюкина, 1993) — на ягодных культурах данный метод не испытывал ся.

В связи с выше изложенным, целью наших исследований являлось изучение возможности использования метода электрофореза белков и нуклеиновых кислот для диагностики вирусных и вирусоподобных болезней ягодных культур.

В конкретные задачи исследований входило следующее:

1. Выделить и изучить методом электрофореза специфические белки возбудителей вирусных и вирусоподобных болезней ягодных культур.

2. Отработать методику выделения и анализа РНК для диагностики ряда непереносимых соком вирусов ягодных культур.

3. Оценить возможность использования метода электрофореза белков и нуклеиновых кислот для выделения безвирусных клонов ягодных культур.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА И ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ РАБОТЫ.

Впервые разработана методика очистки и выявления методом электрофореза специфических белков и нуклеиновых кислот труднодиагностируемых вирусов хлороза жилок малины (КУСУ), морщинистости земляники (8СУ) и крапчато-сти земляники (8МУ) непосредственно из тканей растений хозяев.

Впервые выявлено наличие у КУСУ и 8СУ двух белков с молекулярными массами 52кД и 37кД, типичных для представителей группы рабдовирусов.

Впервые очищены и фракционированы методом электрофореза специфические белки возбудителей реверсии чёрной и красной смородины, а также нуклеиновые кислоты КУСУ, БМУ и 8СУ.

Практическое значение работы состоит в разработке методики тестирования наличия специфических белков и нуклеиновых кислот соконепереносимых вирусов ягодных культур, что позволяет сократить сроки их диагностики с 1−2 лет до 2 дней по сравнению с методом растений — индикаторов и в 43 раза снизить затраты на проведение диагностических тестов.

85 Выводы.

1. Разработана методика очистки и выявления методом электрофореза специфических белков и нуклеиновых кислот труднодиагностируемых вирусов хлороза жилок малины (КУСУ), морщинистости земляники (8СУ) и крапча-тости земляники (БМУ) непосредственно из тканей растений-хозяев.

2. Предложенная методика позволяет сократить сроки диагностики КУСУ, БМУ и БСV с 1 -2 лет до 2 дней по сравнению с методом растений индикаторов и в 43 раза снижает затраты на проведение диагностических тестов.

3. Наиболее эффективная очистка вирусспецифических белков достигается использованием боратного экстрагирующего буфера, дифференциального центрифугирования и центрифугирования через подушку сахарозы.

4. Использование для доочистки белков Я УСУ, БМУ и 8СУ экстрагирующего Трис и фосфатного буферов, хлороформа и преципитации с помощью поли-этиленгликоля ухудшает качество препаратов, а центрифугирование в градиентах плотности сульфата и хлорида цезия вызывает разрушение белковой фракции.

5. У КУСУ и БСУ выявлено наличие двух белков с молекулярными массами 52кД. и 37 кД., что типично для представителей группы рабдовирусов.

6. Впервые в России очищены и фракционированы методом электрофореза специфические белки возбудителей реверсии чёрной и красной смородины.

7. Отработанная методика очистки белков с высокой эффективностью апробирована для выявления вирусов шарки слив (РРУ), некротической кольцевой пятнистости косточковых (Р>Ш8У) и карликовости сливы (РВУ) непосредственно в листьях древесных растенийхозяев.

8. Для диагностики КУСУ, 8МУ и 8СУ методом электрофореза нуклеиновых кислот целесообразно использовать метод фенольной депротеинизации, с последующим осаждением высокомолекулярной РНК хлористым литием в концентрации 2 М.

9. Методика выделения и очистки специфических белков и нуклеиновых кислот вируса окаймления жилок крыжовника, возбудителей пестролистности и желтухи смородины нуждается в дальнейшей отработке.

10. Применение метода электрофореза для выявления вирусов и вирусоподобных болезней ягодных культур позволяет получить экономический эффект в размере 1189,15 руб. при анализе белков этих патогенов и 1206,84 руб.— их нуклеиновых кислот по сравнению с методом растений — индикаторов.

Рекомендации по практическому использованию.

Использовать в специализированных центрах по производству безвирусного посадочного материала разработанную нами методику очистки и выявления методом электрофореза специфических белков соконепереносимых вирусов, позволяющую сократить тестирование с 1 -2 лет до 2 дней по сравнению с методом растений-индикаторов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. П. Разделение клеточных частиц и макромолекул Издат. «Мир», — М.: 1974, — 374с.
  2. Е.В. Некоторые свойства структурных белков потексвирусов //Взаимоотношения вируса с клетками растения хозяина. — Владивосток, ДВНЦ АН СССР.-1985. — с. 25 — 33.
  3. Г. П. Новый диагностический признак реверсии //Защита растений. 1992.-Ж7, — С. 52.
  4. О.О. Особенности и усовершенствование мер борьбы с вирусными болезнями земляники //Автореферат дисс. кандидат, биол. наук. М., 1986, — 14с.
  5. Н.Д. Разработка современных иммунологических методов диагностики вируса шарки сливы //Автореферат дисс. канд. биол. наук. -Прилуки, 1992.-22с.
  6. Г. Т. Распространение и вредоносность курчавости малины в Чернозёмной зоне //Сб. науч. трудов ВНИИС им. Мичурина- 1975 Вып. 20.-с. 88−92.
  7. Т.Я. Изучение свойств вироида веретеновидности клубней картофеля //Автореферат дисс. канд. наук. М. 1985. — 23с.
  8. Ю.Власов Ю. И. Вирусные и микоплазменные болезни растений М.: Колос, 1992.-207с.
  9. П.Гааль Э., Медьеши Г., Верецкеи JI. Электрофорез в разделении биологических макромолекул М.: Мир,-1982.- 448с.
  10. А., Харрисон Б. Основы вирусологии растений М.- Мир.-1978.-429с.
  11. В.И. Рябуха чёрной смородины в Сибири и разработка мер борьбы с болезнью//Автореферат дисс.канд.наук.-М., 1978. 17с.
  12. Р.В. Серология и иммунохимия вирусов растений. М.: Наука, 1993.-301с.
  13. А. В., Скрипаль И. Г., Малиновская J1. П. Электрофорез белков, как средство таксономического анализа фитопатогенных микоплазм //Вирусные болезни сельскохозяйственных культур /Всесоюз. акад.с.-х. наук им. В. И. Ленина-М.- 1980, — С.50−56.
  14. Т.Б., Можаева К. А. Фракционирование цетавлоном нуклеиновых кислот из растений, поражённых вироидом веретеновидности клубней картофеля//Биологические науки.-1988.-№ 10. с. 101 — 105.
  15. В. И. Научные основы адаптивного садоводства.-М.: Колос-1995,-335с.
  16. А. В. Вирусы растений Дальнего Востока. Идентификация особенности биологии и классификация М.- Наука-1992.-112с.
  17. A.A. Вирусные заболевания мозаичного типа на малине //Автореферат дисс.канд. биол. наук.-Харьков, 1970. -22с.
  18. Е.А. Особенности производства безвирусного посадочного материала земляники и малины в ЦЧР //Автореферат дисс.канд. с.-х. наук. Мичуринск, 1998. — 26с.
  19. Методические указания по диагностике и идентификации вироидов веретеновидности клубней картофеля (ВВКК) и карликовости хризантем (ВКХр). Под ред. Ю. А. Леонтьевой, К. А. Можаевой. М.: ВАСХНИЛ. -1982.-40С.
  20. В.Ю. Вирусные болезни в Нижнем Поволжье //Автореферат дисс. канд. биол. наук. М., 1985. — 22с.
  21. JI. А., Калашникова Л. В., Алексеева Т. И., Крылов А. В. К вопросу об идентификации растворимых антигенов вирусов мозаики и закукливания злаков //Взаимодействие вирусов с клетками растения-хозяина. Владивосток: ДВНЦ АН СССР.-1985- С.40−49.
  22. Л. А., Федотина В. Л., Бородина Е. Е., Крылов А. В. Рабдовирусы злаков СССР -М.: Наука-1987.-129с.
  23. Н. А. Прижилковая мозаика и бороздчатость древесины винограда (этиология, диагностика, меры борьбы). //Автореф. дисс.канд. биол. наук. Киев. — 1993.-17с.
  24. Р. Вирусы растений М.: Мир — 1973.- 600с.
  25. В. И., Малеева Н. Е., Санько Д. Ф., Мирзабеков А. Д. Два простых метода выделения ДНК из различных источников с применением цетавлона. 1977, — Т.42, Вып. 10. — С. 1783−1789.
  26. Н. И., Моисеенко Л. И. Симптомы полосчатости риса не выясненной этиологии // Фитовирусы Дальнего Востока.-Владивосток., Дальнаука. 1993, — С. 139−145.
  27. О. В., Новиков В. К., Кагроманов В. Н. Определение М и S-вирусов картофеля методом иммуноферментного анализа // С.-х. биология. -1985.- Т.15, № 2.- С. 96−102.
  28. Ю.И. Вирусные болезни плодовых и ягодных культур в Нечернозёмной зоне. /Автореф. дисс. докт. с.-х. Наук.-М. 1975.-34с.
  29. Н.Б., Бутенко С. И. Некоторые вопросы очистки вируса жёлтой мозаики фасоли // Вирусы и вирусные болезни растений-Киев., Наукова думка, — 1974.-С. 225−227.
  30. А. Е., Сургучёва Н. А. Микоплазменная этиология махровости чёрной смородины. //С.-х. биология.-1974.-№ 9-с.80−83.
  31. Практикум по общей вирусологии. /Под ред. И.Г.Атабекова-М.-МГУ.-1981.-192с.
  32. Ю.Н., Суркова О. Ю. Вирусные болезни крыжовника в средней полосе России //Плодоводство и ягодоводство России /Сб. науч. трудов ВСТИСП. 1994. — С.124 — 134.
  33. Ю.Н., Суркова О. Ю., Метлицкий 0.3. НЕПО-вирусы на смородине в средней полосе России и пути их диагностики // Плодоводство и ягодоводство России /Сб. науч. трудов ВСТИСП. 1994. — С. 135 — 142.
  34. Ю.Н., Веретенникова Н. П., Лапинская М. П., Суркова О. Ю., Бурдейная Т. В. Диагностика вирозов и микоплазмов ягодных культур //Защита растений. 1995.-№ 8. — С.36 — 37.
  35. Ю.Н. Технология оздаровления крыжовника от вирусов //Плодоводство и ягодоводство России /Сб. науч. трудов ВСТИСП. 1996. -С.109- 113.
  36. Ю.Н. О видовом составе и распространёности вирусов малины в Европейской части России //Плодоводство и ягодоводство России /Сб. науч. трудов ВСТИСП. 1997. — Т.4. — С. 96 — 101.
  37. М. В. Электрофоретическое исследование белков растений, инфицированных вирусами мозаики и закукливания злаков //Фитовирусы Дальнего Востока -Дальнаука 1993, — С. 81−89.
  38. А., Тарасова К., Ромейкие М., Рейн Ю. К проблеме этиологии и распространения реверсии (махровость) чёрной смородины. /Вирусы и вирусные болезнирастений.-Киев- Наукова думка-1974.-С. 289−292.
  39. Л.В. Разработка современных иммунологических методов диагностики вируса хлоротической кольцевой пятнистости косточковых пород //Автореферат дисс. канд. биол. наук. Кишинёв, 1993. — 18с.
  40. О. Ю. Анализ распространённости, вредоносности и этиологии вирусных и вирусоподобных болезней красной и чёрной смородины иразработка мер борьбы с ними в средней полосе России. Автореферат. канд. с.-х. наук-М., 1994. -20с.
  41. О. Ю., Лапинская М. П., Приходько Ю. Н. Видовой состав и распространённость вирусов на чёрной и красной смородине в Европейской части России //Тез. Докладов Всероссийского съезда по защите растений. -Санкт-Петербург, 1995 .-с.92−93.
  42. Н.П., Глушак JI.E. Рабдовирусы смородины чёрной и малины /ЛУПкробюлопчный журнал. -1995-Т.57, № 5. -С. 44 -52.
  43. М.Т. Вирусные болезни и оздоровление нетрадиционных ягодных и плодовых культур //Плодоводство и ягодоводство России /Сб. науч. трудов ВСТИСП. 1996. — С. 102 — 108.
  44. В. Л., Сургучева Н. А., Чирков С. Н., Кочкина 3. М. Очистка и иммуноферментный анализ вируса кольцевой пятнистости малины //Сельскохозяйственная биология. -i 990.-№ 5 С. 174−181.
  45. Adams A.N., Barbara D.J. Host range, purification and some properties of hop mosaic virus //Ann. appl.Biol. -1980.-Vol. 96. P. 201 — 208.
  46. Adams A. N., Barbara D. J. Transmission of a virus from Fragaria vesca infected with strawberry mottle virus to Chenopodiuin quinoa.-Acta. Hortic-1986 -№.186. P. 71−76.
  47. Akius M., Westorm B. Apple chlorotic leaf spot virus (ACLSV). Purification, immunization and further characterization //Vaxtskyddsnotiser. -1983. -Vol.47, № 5 6. — P. 74 — 76.
  48. Allen R. N., Dale J. Application of rapid biochemical methods for detecting avocado sunblotch disease // Ann. appl Biol.-l 981.- Vol. 98.- P. 451−461.
  49. Alper M., Salomon R., Loebenstein G. Gel electrophoresis of virus associated polypeptides for detecting viruses in bulbous irises // Phytopathology.-1984.-Vol.74, № 8.-P.960−962.
  50. Barbara D.J., Ashby S.Cc., Mc Namara D.G. Host range, purification and some properties of Rubus Chinese seed -borne virus //Ann. appl Biol.-1985, — Vol. 107,-P. 45−55.
  51. Barnett O.W. Mayo M.A., Raschke J.H. Some biochemical propertion and purification of raspberry bushy dwarf virus// Ann. appl Biol.-1970, — Vol. 65, — P. 435−449.
  52. Bar-Joseph M., Garmsey S.M., Gonsalves D. The closterovirus: A distinct group of elongated plant viruses //Adv. Virus Res.-1979.-Vol. 25. P. 93 -168.
  53. Breyel E., Maiss E., Casper R., El-Quaghlidi F. Isolation of ds-RNA from plum pox virus-infected plant tissue // Acta Horticulturae .-1986 .- № 193, — P. 167−172.
  54. Breyel E., Casper R., Ansa O.A., Kuhn C.W., Misari S.M., Demski J.W. A simple procedure to detect a ds-RNA associated with groundnut rosette //J.Phytopathology.-1988.-Vol. 121,№ 2.-P. 119−124.
  55. Bremer K. Viral diseases occuring on Ribes species in Finland //Ann. Agriculturae Fenniae. -1983 -Vol.22, № 2, -P.104−109.
  56. Brunt A.A. Some hosts and properties of dahlia mosaik virus //J. Appl. Biol. -1971.-Vol. 67-P. 357−368.
  57. Certification scheme № 9.Pathogen tested material of Ribes //Bulletin OEPP/ EPPO Bulletin.-1994.-Vol. 24, № 4 — P. 857 — 864.
  58. Certification scheme № lO. Pathogen tested material of Rubus //Bulletin OEPP/ EPPO Bulletin.-1994.-Vol. 24, № 4 — P. 865 — 873.
  59. Certification scheme № 11 .Pathogen tested strawberry //Bulletin OEPP/ EPPO Bulletin.-1994.-Vol. 24, № 4 — P. 875 — 889.
  60. Codman C.H. Raspberry viruses and virus diseases in Britain //Horticultural Research-1961 .-Vol. 1. P. 47 — 61.
  61. Clark MF., Lister R.M. Preparation and some properties of the nucleic acid of tobacco streak virus // Vorology.-1971.-Vol.45, № 1.- P.61−74 .
  62. Converse R.H. Infection of cultivated strawberries by tomato ringspot virus //Phytopathology.- 1981.-Vol. 71.-P. 1149- 1152.
  63. Converse R.H. Virus disease of small fruits.-USDA ARS Agriculturae Handbook.-1987 ,-N 631 .-277c.
  64. Convers R. H., Schaper U. Irregular occurrence of rhabdoviruslike particles in tissues of Fragaria vesca plants infected with strawberry crinkle virus. //J. Phytopathology. -1988. -Vol. 121. -P. 206 209.
  65. Convers R. H. Laboratory detection of viruses and mycoplasmalike organisms in Strawberry //Plant disease. 1988, — Vol.72.-№ 9-P.744−749.
  66. Dale J.L., Peters D. Protein composition of the virions of five plant rhabdovinises // Intervirology.-l981 .-Vol.l6-№ 2.- P.86−94.
  67. Dale J.L., Phillips D.A., Parry J.N. Double stranded RNA in banana plants with bunchy top disease // The journal of general virology.-1986.-Vol.67, № 2-P. 371−375.
  68. Dale J.L. Cassia yellow blotch virus //CMV/AAB Descriptions of Plant Viruses. -1988.-№ 334. 3s.
  69. Dawson W.D., Dodds J.A. Characterization of sabgenomic double-stranded RNAs from virus-infected plants // Biochem.Biophys.Res.Commun.-1982.-Vol.107,-P.1220−1235.
  70. DePaulo J.J., Powell C.A. Extraction of double-stranded RNA from plant tissues without the use of organic solvents //Plant Disease-1995.-Vol.79.-№ 3.-P.246−248.
  71. Derrick K.S., Brlansky R.H., da Graca J.V., Timmer L.W., Nguyen T.K. Partial characterization of a virus associated with citrus ring spot // Phytopathology. -1988.-Vol.78, № 10.-P. 1298−1301.
  72. Fagoaga C., Pina J.A., Duraa-Vila N. Occurencee of small RNAs in severely diseased vegetable crops // Plant Disease.-l 994.-Vol.78, № 7.-P.749−753.
  73. Falk B.W., Moms T.J., Duffus J.S. Unstable infectivity and sedimentable ds-RNA assosiated with lettuce speckles mottle virus // Virology.-1979.-Vol.96,-P.239−248.
  74. Frazier N.W., Yarwood C.E., Gold A.H. Yellow-bud virus endemic along California coast //Plant Dis. Reptr.-1961 .-Vol. 45. P. 649 — 651.
  75. Frazier N.W. Six new strawberry indicator clones evaluated for the detection and diagnosis of twelve graft-transmissible diseases // Plant Dis. Rep-19 746.-Vol. 58.-P. 28−31.
  76. Fulton R.W. Tulare apple mosaic virus //CM1/AAB Descriptions of Plant Viruses. -1971.-№ 42.-3s.
  77. Gardner R.C., Shepherd R.J. A procedure for rapid isolation and analisis of caulifflower mosaic virus DNA //Virology.-1980.-'Vol. 106., № 3,-P. 159- 161.
  78. Garnsey S.M., Timmer L.W. Mechanical transmissibility of a citrus ringspot virus isolates from Florida, Texas and California //8th Int. Org. Citrus Virol.-1980.-P. 174- 179.
  79. Gillet J.M., Ramsdell D.C. Blueberry red ringspot virus //C.M.I./A.A.B. Descriptions of Plant Viruses.-l988.-№ 327 4s.
  80. Gildow F.E., Ballinger M.E., Rochow W.F. Identification of double-stranded RNAs associated with Barley yellow dwarf vims infection of oats //Phytopathology.-1983.-Vol.73, № 1.-P. 1570−1572.
  81. Hadid A., Huang C., Hammond R.W., Hashimoto J. Homology of the agent associated with dapple apple disease to apple scar skin viroid and molecular detction of these viroids // Phytopathology.-1990.-Vol.80, № 3.-P.263−268.
  82. Hansen M.A., Wick R.L. Plant disease diagnosis: Present status and future prospects //Advances in Plant Pathology. -1993. -Vol.10. -P. 65 -126
  83. Hemida S.K., Murant A.F., Duncan G.H. Purification and some particle properties of anthriscus yellows virus, a phloem-limited semi-persistent aphid-borne virus //Ann. appl. Biol.-1989.-Vol. 114.-P. 71−86.
  84. Hepp R.F., Convere R.H. Transmission of strawberry mottle virus between Chenopodium quinoa and Fragaria vesca by aphid and sap inoculation //Phytopatholody. -1987. Vol. 77. -P.1239.
  85. Hilbert E. Mc Donal J. G. Capsid heterogeneity in turnip mosaic virus //Virology.-l976- Vol.70, № 1 -P. 144−150.
  86. Hisachi J., Wakimoto S. An improved method for purification of soybean mosaic virus //Ann. Phytopathol. Soc. Japan. -1985,-Vol. 39, № 5, — P.314−315.
  87. Hollings M., Stone O. Tomato aspermy virus //CMI/AAB Descriptions of Plant Viruses.-1971.-№ 79. 4s.
  88. Rollings M., Brunt A. A. Potyvirus Group. //Descriptions of Plant Viruses. -1981.-№ 245.-6s.
  89. Horst R.K., Kawamoto S.D. Use of polyacrilamide gel electrophoresis for detection of chrysanthemum stunt viroid in infected tissues //Plant Disease.-1980.-Vol. 64, № 2.-P. 186−188.
  90. Hull R. The multicomponent nature of brood bean mottle virus and its nucleic acid // J. Gen. Virol.-1972.-Vol. 17, № 1.- P. 111 117.
  91. Hunter B.G., Richardson J., Dietzgen R.G., Karu A., Sylvester E.S., Jackson A.O., Morris T.J. Purification and some physicochemical properties of strawberry crincle virus //Phytopathology. -1990. -Vol. 80.,-№ 3.-P. 282 287.
  92. Jackson A.O., Christie S.R. Purification and some physicochemical properties of sonchus yellow net vims //Virology.-l 977-Vol. 77 P. 344 — 355.
  93. Jacob H. Investigations on symptomatology, transmission, etiology, and host specificity of blackcurrant reversion virus //Acta Hort. -1976 -№ 66.-P.99−104.
  94. Jelkman W., Lesemann D.E., Casper R. Rhabdoviruslike particles in crinkle-diseased strawberries in Germany //J.Phytopathology.-1988.-Vol.l21, № 2- P. 143 149.
  95. Jelkman W., Martin R.R., Lesemann D., Vetten H.J., Stelton F. A new potexvirus associated with strawberry mild yellow edge disease //J. General Virology.-1990,-Vol. 71, № 6 P. 1251 — 1258.
  96. Jones A.T., Roberts I.M., Miirant A.F. Association of different kinds of bacilliform particles with vein chlorosis and mosaic diseases of raspberry (Rubus idaeus) //Ann. appl. Biol. -1974. -Vol. 77,№ 3. -P. 283 -288.
  97. Jones A.T., Murant A.F., Stace -Smith R. Raspberry vein chlorosis virus //CMV/AAB Descriptions of Plant Viruses. -1977. -№ 174. -4s.
  98. Jones A.T., Abo El-Nasr M.A., Mayo M.A., Mitchell M.J. Association of ds RNA with some virus-like diseases of small fruits // Acta Horticulturae.-1986.-№ 186.-P.63−70.
  99. Jones A.T. Advances in the study, detection and control of viruses and virus diseases of Rubus, with special reference to the United Kingdom //Crop Research.-1986.-Vol. 26, № 2, — P. 127 176.
  100. Jones A.T., McGavin W.J., Watkins C.A. Recent studies in Scotland on the aetiology of virus and virus-like diseases of small fruit crops //Acta Hort. -1992. -№ 308.-P. 31−35.
  101. Yoshikawa N., Jnouye T., Convere R.H. Two types of rhabdovirus in strawberry //Ann. Phytopathoeogy. -1986. -Vol.52, № 3. -P. 437 444.
  102. Yoshikawa N., Jnouye T. Purification, characterization and serology of strawberry pseudo mild yellow edge vims //Ann. Phytopath. Soc. Japan-1986-Vol. 52, № 4, — P.634−652.
  103. Yoshikawa N., Convere R.H. Purification, and some properties of strawberry mottle vims //Ann. appl. Biol-1991 .-Vol. 118, № 3, — P/ 565−576.
  104. Yoshikawa N., Convere R.H. Strawberry pallidosis disease: Distinctive dsRNA species associated with latent infections in indicators and in diseased strawberry cultivars // Phytopathoiogy. -1990. -Vol.80, № 6. -P. 543 548.
  105. Kerlan C., Dunez J. Some properties of plum pox vims and its nucleic acid and protein component // Acta Horticulturae.-1976.-№ 67.-P.185−192.
  106. Khoiiry J., Singh R.P., Boucger A., Coomds D.Y. Concentration and distribution of mild and severe strains of potato spindle tuber viroid in crossprotected tomato plants //Phytopathology-1988-Vol. 78, № 10,-P. 13 311 336.
  107. Kitajima E.W., Betti J.A., Costa A.S. isometric viruslike particles in leaf tissues of Fragaria vesca L. infected with strawberry mottle virus //Ciencia e Culture-1971 .-Vol.23,№ 5.- P.649 655.
  108. Koganezawa H., Uanase H., Sakuma T. Viroid-like RNA associated with apple scar skin (or dapple apple) disease //Acta Horticulturae.-1983.-№ 130.-P.193−197.
  109. Kollar A., Seemuller E., Bonnet F., Saillard C., Bove J.M. Isolation of the DNA various plant pathogenic mycoplasmalike organisms from infected plants //Phytopathology.-1990.-Vol.80, № 3.-P.233−237.
  110. Kurppa A., Martin R.R. Use of double-stranded RNA for detection and identification of virus diseases of Rubus species //Acta Horticulturae.-1986.-№ 186.-P.51−62.
  111. Laemmli U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage. 1970.-T.4.- Nature (London). -Vol.227. P. 680 — 685.
  112. Lawson N.R., Civerolo E.L. Carnation etched ring virus: purification, stability of inclusions, and properties of the nucleic acid //Phytopathology-1978-Vol. 68.-P. 181−188.
  113. Lee R. F., Garnsey S. M., Brlansky R. H., Goheen A. C. A purification procedure for enhanament of citrus tristeza vims yields and its application to other phloem-limited virus. //Phytopathlogy. — 1987, — Vol.77.№ 4.-P.543−549.
  114. Lemmetty A., Latvala S., Jones A.T., Susi P., McGavin W.J., Kehto K. Purification and properties with nepoviruses, and its close association with black currant reversion diseases // Phytopathoiogy. -1997. -Vol.87, № 4. -P. 404 413.
  115. Lesemann D.E., Koenig R., Hein L. Statistic virus Y-a vims related to bean yellow mosaic and clover yellow vein viruses //Phytopathlogy.-1970.-Vol. 95, № 2.-P. 128- 139.
  116. Lister R.M., Hadidi A.F. Some properties of apple chlorotic leaf spot virus and their reaction to purification problems //Virology-1971 -Vol. 45.-P. 240 251.
  117. Lopez-Moya J.J., Canton T., Lopez-Abella D., Diaz-Rutz J.R. Differentiation of Mediterranean plum pox virus isolates by coat protein analyses //Plant Pathology. -1994. -Vol.43.-P. 164−171.
  118. Mac Donald S.G., Martin R.R. Bristow P.R. Characterization of an ilarvirus associated with a necrotic shork reaction in blueberry //Phytopathlogy-1991.-Vol.81. № 2, — P. 210−214.
  119. Martin R.R., Converse R.H. Purification, properties and serology of strawberry mild yellow-edge virus //Phytopatologische Zeitschrift.-1985.-Vol. 114, № 1.- P. 21−30.
  120. Matsubara A., Kojima M., Kawano S., Narita M., Uyeda J., Schikata E. Purification and serology of a Japanese isolates of barley yellow dwarf virus //Ann. Phytopath. Soc. Japan.-1985.-Vol. 51, № 2, — P. 152 158.
  121. Meer van der F.A. Nicotiana occidentalis, a suitable test plant in research on viruses of small fruit crops //Acta Hort.-1989.-№ 236.- P. 27 35.
  122. Miki T., Knight C.A. Some chemical studies on strains of white clover mosaic vims //Virology.-1967,-Vol. 31, № 1.- P. 55 -63.
  123. Miki T., Oshima N. Chemical studies of the structural protein of potato aucuba mosaic virus //Ibid.-1972.-Vol. 48, № 2, — P. 386 393.
  124. Mochamed W.A., Young B.R. Garlic yellow streac vims, a potyvirus infecting garlic in New Zealand //Ann. appl. Biol.-1984.-Vol. 97, № 1.- P. 65−75.
  125. Monette P.L., Jomes D., Godkin S.E. Double-stranded RNA from rupestris stem pitting-affected grapevines //Vitis.-1989.-Vol.28,№ 3.-P. 137−144.
  126. Moore D.L., Cameron H.R. A nucleic acid associated with necrotic rusty mottle diseased cherry //Acta Horticulturae.-l 982.-№ 130 — P. 80.
  127. Moore D.L., Cameron H.R. Double stranded RNA from cherries //Acta Horticulturae.-1986.-№ 193.- P. 307 — 310.
  128. Moreno P., Guerri J., Munoz N. Identification of spanish strains of citrus tristeza virus by analysis of double-stranded RNA //Phytopathology.-1990.-Vol.80,№ 5.-P.477−482.
  129. Morris T.J., Dodds J.A. Isolation and analysis of double-stranded RNA from virus-infected plant and fungal tissue //Phytopathology-1979-Vol. 69, № 8- P. 854−858.
  130. Morris T.J., Mullin R.H., Schlegel D.E., Cole A., Alosi M. Isolation of a caulimovirus from strawberry tissue infected with strawberry vein banding vims // Phytopathology.-1980.-Vol. 70,№ 2,-P. 156- 160.
  131. Murant A.F. Strawberry latent ringspot virus //CMV/AAB Descriptions of Plant Viruses.-1974.-№ 126- 4s.
  132. Murant A.F., Jones A.T., Roberts J.M. Recent research on 52V virus of raspberry //Acta Horticulturae.-l 976.-JN® 66 P. 39 — 46.
  133. Murant A.F., Mayo M.A., Raschke J.H. Some biochemical properties of raspberry bushy dwarf virus // Acta Horticulturae.-l 986.-№ 186 P.23 — 30.
  134. Murant A.F., Roberts J.M. Particles of raspberry vein chlorosis virus in the aphid vector, Aphis idaei //Acta Phytopathology Hung.-1980.-Vol. 15 P. 103 106.
  135. Namba S., Boscia D., Azzam O., Maixner M., Hu J.S., Golino D., Gonsalves D. Purification and properties of closteroviruslike particles associated with grapevine corky bark disease //Phytopathology-1991 -Vol.81,№ 9 P. 964 -970.
  136. Noordan D. Identification of plant viruses. Methods and experiment //Centre for Agriculturae Publishing and Documentation-Wageningen, 1973. 216s.
  137. Ochawa K., Ebata N. Silver stain for detecting 10-temtogram quantities of protein after polyacrylamide gel electrophoresis //Analytical Biochemistry.-1983.-Vol. 135, № 2, — P. 409−415.
  138. Ozaslan M., Cinar A. The deterction of citrus exocortis viroid by polyacrylamide gel electrophoresis //J. Turk. Phytopath. -1990. -Vol. 19,№ 2. -P.41−52.
  139. Peters D. Plant rhabdovirus group //CMI /AAB Descriptions of Plant Viruses. -1981.-№ 244, — 4s.
  140. Pfannenstion M.A., Slack S.A., Lane L.C. Detection of potato spindle tuber viroid in field-groowin potatoes by a improved electrophoretic assay //Phytopathology.-1980,-Vol. 70, № 10, — P. 1015 1018.
  141. Pirone T.P., Pound G.S., Shepheld R.J. Properties and serology of purified cauliflower mosaic virus //Phytopathology-1961.-Vol. 51.- P. 541 546.
  142. Polak J., Bezpalkova H. Metody diagnozy a rozsireni viru strakatosti jahodniku VCSR //Zahradnictvi. -1987. -Vol.14, № 4. -P.259 -265.
  143. Polak J., van der Meer F.A., Huttinga H. Attempts at multiplication, purification, electron microscopy, and characterization of three isolates of the strawberry motle agent //Biologia Plantarum-1991 -Vol. 33, № 5.- P. 377 385.
  144. Putz C. Les viroses des petits fruits. II Les viroses du cassis et des groseilliers //Ann. Phytopath.-1972.-Vol. 4, — P. 59−75.
  145. Putz C., Meignoz R. Electron microscopy of viruslike particles found in mosaic diseased raspberries in France // Phytopathology.-1972.-Vol. 62 P. 1477 — 1478.
  146. Richardson J., Frazier N.W., Sylvester E. Rhabdoviruslike particles associated with strawberry crincle vims //Phytopathology. -1972. -Vol.62. -P.491 492.
  147. Richardson J., Sylvester E. Succesful juice inoculation of the aphid -vectored strawberry crincle vims //Calif. Agr.-1988.-Vol.42 P.6 -7.
  148. Roberts I.M., Jones A.T. Rhabdoviruslike and closterovirus -like particles in ultrathin section of Rubes species with symptoms of blackcurrant reversion and gooseberry veinbanding diseases //Ann. appl. Biol.-Vol.130-P.77 89.
  149. Rosa M., Lastra R. Purification and partial characterization of papaya ringspot vims //Phytopath. Z.- 1983.-Vol. 95, № 2. P. 128 — 139.
  150. Schroeder M., Weidemann H.L. Simplified application of return gel electrophoresis for the routine detection of potato spindle tuber viroid //Bulletin OEPP/EPPO Bulletin -1989.-Vo1.19, №> 4. P. 661 — 665.
  151. Schumacher J., Neyer N., Riesner D., Weidemann H.L. Diagnostic procedure for detection of viroides and viruses with circular RNAs by «return"-gel electrophoresis// J. Phytopathology.-! 986,-Vol. 155.-P.332−343.
  152. Singh R.P., Boucher A. Elecrophoretic separation of a severe from mild strains of potato spingle tuber viroid // Phytopathology.-1987.-Vol.77, №>11,-P.1588−1591.
  153. Smith O.P., Hunst P.L., Hewings A.D., Stone A.L., Tolin S.A., Damsteegt V.D. Identification of ds-RNAs associated with soybean dwarf virus-infected soybean//Phytopathology.-1991 .-Vol.81, № 2.-P.l 31−134.
  154. Solarska E., Skomra U., Kitlinska J., Wojcierowski J. The occurence of hop latent viroid (HLVd) in Poland //Phytopath. Polonica.-1995.-Vol.10, — P.55 59.
  155. Spiegel S., Martin R.R., Leggett F., Borg M., Postman J. Characterization and geographical distribution of a new ilarvirus from Fragaria chiloensis //Phytopathology.-1993.-Vol. 83, № 9, — P.991 995.
  156. Stace-Smith R., Lo E. Morphology of bacilliform particles associated with raspberry vein chlorosis virus //Canad. J. Botany. -1973. -Vol.51. -P. 1343 -1345.
  157. Stenger D.C., Mullin R.H., Morris T.J. Isolation, molecular cloning and detection of strawberry vein banding virus DNA //Phytopathology-1988-Vol.78, № 2.-P. 154- 159.
  158. Sylvester E.S., Richardson J., Frazier N.W. Strawberry crincle vims //CMI /AAB Descriptions of Plant Viruses. -1976. -№ 163. 4s.
  159. Sylvester E.S., Richardson J. Inoculation of the aphids Hyperomyzus lactucae and Chaetosiphon jacobi with isolates of sowthistle yellow vein virus and strawberry crincle virus // Phytopathology-1981 -Vol.71P.598 602.
  160. Sylvester E.S., Richardson J. Consecutive serial passage of strawberry crincle vims in Myzus ornatus by injection and its occasional transmission to Fragaria vesca//Phytopathology.-1986.-Vol.76, — P. 1161 1164.
  161. Sylvester E.S., Richardson J., Stenger D.C. Use of injected Macrosiphuin euphorbiae aphids as surrogate vectors for transfer of strawberry crincle vims to Nicotiana species //Plant Dis.-1987.- Vol.71.- P. 972 975.
  162. Takanami J., Kubo S. Enzyme-assisted purification of two phloemlimited plant vimses: Tobacco necrotic dwarf and potato leaf roll //J. Gen. Virol.-1979.-Vol. 44, № l.-P. 865−889.
  163. Tavartis S.H. Impoved purification of two potato carlavirus //Phytopathology 1983.-Vol.73, № 2. P. 190−194.
  164. Thresh J.M. Virus and viruslike disease of gooseberry and currant //Virus disease of small fruits and grapevines-University of California.-1970.-P.75−104.
  165. Tomlinson J.A., Shephers R.J., Walker J.C. Purification, properties and serology of cucumber mosaic virus //Phytopathology-1959-Vol. 49, № 5 P. 293 — 299.
  166. Valverde R.A., Nameth S.T., Jordan R.L. Analisis of double-stranded RNA for plant vims diagnosis //Plant Dis. -1990. -Vol.74, № 3 -P. 255 -258.
  167. Wagner R.R., Prevec L., Brown F., Summers D. F, Sokol F., Macleod R. Classification of rhabdovirus proteins: A proposal //J. Virology. -1972. -Vol.10. -P.1228 -1230.
  168. Watkins C.A., Jones A.T., Maio M.A., Mitchell M.J. Double-stranded RNA analysis of strawberry plants affected by june yellows //Advances in Plant Pathology.-1993,-Vol.10.- P.65 -126.
  169. Wei Shiquan, Wu Yuanhua The identification of strawberry mottle virus in China //Acta Phytopath. Sinica.-1994.-Vol.24,№ 4.- P.292 298.
  170. Wolf G., Casper R. Disc-electrophoretic separation of elongated plant viruses in Polyacrylamide agarose gels //J.general Virology-1971 .-Vol.l2.-P.325−329.
  171. Экстрагирующие буферы, используемые для очистки фитопатогенных вирусов
  172. Вирусы растения -накопитель Буферы Стабилизирующие добавки Авторы1 2 3 4 5
  173. Клостеровирусы, вирионы нитевидные -1200×2000×13−14нм
  174. Капиловирусы, вирионы нитевидные, 600−700×12−13нм
  175. Хлоротической пятнистости листьев яблони (АСЬБУ) С. quinoa 0.01М Трис-HCI, рН7,6 0,01MMgS04 M. Akius B. Westrom, 1983
  176. Карловирусы, вирионы нитевидные, 610−700×13−14нм
  177. Ложного слабого пожелтения краёв листьев земляники (БРМШУ) Fragaria vesca ОДМ боратный, рН8,2 2% ПВП, 2% никотина, 0,01 М ЭДТА, 0,2% тиогликолиевая кислота N. Yoshikawa, T. Inouye, 1986о1 2 3 4 5
  178. Мозаики хмеля (НМУ) хмель 0,05 М боратный, рН8,0 l%Na2S03 A. Adams, D. Barbara, 1980
  179. Латентный нарцисса (ЫЪУ) ирис 0,01 М фосфатный, рН8,2 0,1% 2-МЭ, 50% хлороформа М. Alper et al., 1984
  180. Б-вирус картофеля (РУБ), М-вирус картофеля (РУМ) N. tabacum 0.05М калий-фосфатный, рН7,5 0,005 М ЭДТА, 0,2% 2-МЭ О. В. Николаева и др., 1985
  181. Потексвирусы, вирионы нитевидные, 470−580×11−13нм
  182. Х- вирус картофеля (РУХ) N. tabacum 0.05М фосфатный, рН7,5 0,3% ЭДТА Р. В. Гнутова, 1993
  183. Мозаика белого клевера (VCMV) N. tabacum 0,02 М фосфатный, рН7,6 0,2% ЭДТА, 0,1% N33803 Т. Miki, С. Knight, 1967
  184. Аукуба мозаика картофеля (РАМУ) N. tabacum 0,05 М фосфатный, РН7,5 0,1% 2-МЭ, 0,5 М N301 Т. Miki, N. Oshima, 1972кольцевой пятнистости гортензии (НЕ-БУ) N. tabacum 0,5 М боратный, рН7,8 0,1% аскорбиновая кислота, 0,1% N301 Р. В. Гнутова, 1993
  185. Потиеирусы, вирионы нитевидные, 680−900×11−15нм
  186. Желтой карликовости лука (ОШУ), мозаики гипеаструма (НМУ), У-вирус картофеля (РУ1) лук, гипеаструм, N. tabacum 0,05 М фосфатный, рН7,6−7,8 0,005 М ЭДТА, 0,2% 2-МЭ Е. В. Артюкова, 1985- В. К. Новикова и др. 1982- Mochamed W.A., Young B.R., 1984
  187. Мозаика турнепса (ТМУ) N. tabacum 0.05М фосфатный, рН8,5 0,005 М ЭДТА, 0,1% тиогликолевая кислота Р. В. Гнутова, 1993о1 2 3 4 5
  188. А-вирус картофеля (РУА) N. сЫеуе1апсШ, N. 1аЬасит 0.05М фосфатный, рН8,5 0,005 М ЭДТА, 0,1% тиогликолевая кислота Р. В. Гнутова, 19 930,1 М калий -фосфатный, рН8,5 0,01 М ДИЕКА, 0,2% тиогликолят натрия Ю. А. Варицев и др., 1989
  189. Мозаика сои (БМУ) соя 0, ЗМ натрий -фосфатный, рН7,0 0,01 М ДИЕКА Hisachi J., Wakimoto S., 19 850,5 М боратный, рН7,8 0,2% аскорбиновая кислота, 0,2% Ш2803 Lesemann D.E. et al., 1970
  190. Кольцевой пятнистости папайи (РЯУ) тыква 0,5 М фосфатный, рН7,5 0,1% ЭДТА, 0,1% ДИЕКА, 20% смесь хлороформа и СС14 Rosa M., Lastra R, 1983
  191. Желтой мозаики сои (В1МУ), Слабой мозаики ириса (ШМУ), Суровой мозаики ириса (ШМУ) N. 1аЬасит, ирис 0,01 М фосфатный, рН8,2 0,1% 2-МЭ, 50% хлороформ M. Alper et al., 1984
  192. Шарки слив (РРУ) N. сЫеуе1апсШ, 0,02 М фосфатный, рН7,0 0,01 М ДИЕКА, 0,02 М тиогликоликолят C. Kerlan, J. Dunez, 1976
  193. N. оспёеЩаНз 0,02 М калий -фосфатный, рН8,0 0,01 М ДИЕКА, 0,02 М 2-МЭ Билкей Н. Д., 1992
  194. Рабдовирусы, вирионы бациловидные или пулевидные, 130−200×40−95нм
  195. Мозаика злаков (СеМУ) овёс ОДМ Трис-НС1, рН8,0 — M.B. Сапоцкий и др., 1992
  196. Морщинистости земляники (8СУ) физалис ОДМ Трис-НС1, рН8,2 0,01 М ацетат магния, 0,04 М N32803, 0,001ММпС12 В. Hunter et al., 1990
  197. Желтой сетчатости осота (БШУ) осот ОДМ Трис-НС1, рН8,2 0,01 М ацетат магния, 0,04 М N32803, 0,001ММпС12 A. Jackson, S. Christie, 19772> сг1 2 3 4 5
  198. Бромовирусы, вирионы полиэдрические диаметром 26нм
  199. Мозаики костра (BrMV) ячмень 0,2 М ацетатный, рН5,0 0,1% аскорбиновая кислота, 0,1% 2-МЭ R. Hull, 1972
  200. Cassia yellow blotch virus N. chlevelandii 0,2 М натрий -ацетатный, рН4,8 0,001 М ЭДТА J.L. Dale, 1988
  201. Кукумовирусы, вирионы изометрические диаметром 28-ЗЗнм
  202. Огуречной мозаики (CMV) Аспермии томата (TAV) N. tabacum 0,5 М фосфатный, рН7,5−7,6 0,1% тиогликолевая кислота P.B. Гнутова, 1993
  203. Аспермии томата (TAV) N. tabacum 0, ЗМ фосфатный, рН7,6 0,01 М ДИЕКА, 0,005 М цестеин М. Hollings, О. Stone, 1971
  204. Лютеовирусы, вирионы изометрические, диаметром 23−29нм
  205. Слабого пожелтения краёв листьев земляники (SMffiV) земляника ОДМ фосфатный, рН7,0 0,01 М ДИЕКА, 1% тиогликолевая кислота R. Martin, R. Converse, 1985
  206. Желтой карликовости ячменя (ВГОУ) ячмень, овёс ОДМ фосфатный, рН7,0 — A. Matsubara et al» 1985
  207. Anthriscus yellow virus кориандр 0,06 М фосфатный, рН8,0 0,01 М ЭДТА, 0,1% тиогликолевая кислота S. Hemida et al., 1989
  208. Каулимовирусы, вирионы сферические, диаметром 40−45нм
  209. Окаймление жилок земляники (SVBV) F. vesca 0,5 М натрий-фосфатный, рН7,5 0,2% 2МЭ T. Morris et al., 19 800,2 М Трис-НС1 рН7,5 0,2 М ЭДТА, 2% ПВП, 0,2% 2-МЭ, 1,5 М мочевина, 0,05 М бензоат натрия D. Stenger et al., 1988
  210. Мозаики цветной капусты (СаМУ) репа 0,2 М Трис-НС1, рН7,0 0,02 М ЭДТА, 1,5 М мочевина R. Gardner, R. Shepherd, 1980о1 2 3 4 5
  211. Красной кольцевой пятнистости голубики (BRRV) голубика ОДМ натрий-фосфатный, рН7,2 0,01 М 2-МЭ, 0,005 М тиогликолевая кислота J. Gillet, D. Ramsdell, 1988
  212. Иларвирусы, частицы квазиметрические диаметром 26−3 5нм
  213. Иларвирус Fragaria chiloensis (FCIV) С. quinoa ОДМ фосфатный, рН8,0 0,01 М ДИЕКА, 0,01 М натрий тиогликолевая кислота S. Spiegel et al., 1993
  214. Иларвирус шока голубики (BSIV) N. chlevelandii 0,03 М фосфатный, рН8,0 0,02 М аскорбиновая кислота, 0,02 М 2-МЭ S. Mac Donald etal., 1991
  215. Туларе мозаики яблони (TAMV) N. tabacum 0,02 М фосфатный, рН8,0 0,02 М 2-МЭ R.W. Fulton, 1971
  216. Хлоротической кольцевой пятнистости косточковых (PCRSV) тыква 0,02 М фосфатный, рН8,0 0,01 М ДИЕКА, 0,02 М 2-МЭ JI.B. Скляр, 1993
  217. Неповирусы, вирионы изометрические диаметром ЗОнм
  218. Rubus Chinese seed-bone virus С. quinoa, N. chlevelandii натрий- цетратный, рН6,0 0,2% ДИЕКА, 0,2% тиогликолят натрия, 0,37% ЭДТА D. Barbara et al., 1985
  219. Кольцевой пятнистости малины (RRV) N. rustica 0,05 М фосфатный, рН7,0 0,02 М 2-МЭ B.JI. Федотина и др., 1990
  220. Неклассифицированные вирусы с изометрическими или сферисескими вирионами
  221. Крапчатости земляники (SMV) С. quinoa ОДМ фосфатный, РН7,2 5% тритон Х-100 N. Yoshikawa, R. Converse, 19 910,025 М боратный, рН8,3 0,005 М цистеин-НС1, 0,01 М ДИЕКА, 0,05% твино 001 2 3 4 5
  222. Кустистой карликовости малины (RBDV) С. quinoa 0Д25М нитратный, рН6,0 0,1% тиогликоль A. Murant et al., 19 860,03 М фосфатный, рН8,0 0,02 М 2-МЭ О. Barnett, А. Murant, 1970
  223. Некроза чёрной малины (BRNV) С. quinoa 0,05 М нитратный, рН6,0 0,01 М ДИЕКА A. Murant et al., 1976о чо
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!