Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Анализ нарушений раннего эмбрионального развития и их коррекция с помощью антисмысловых олигодезоксинуклеотидов

Диссертация: Анализ нарушений раннего эмбрионального развития и их коррекция с помощью антисмысловых олигодезоксинуклеотидов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Широкую возможность корректирующего не затрагивающего целостность генома влияния на клетки предоставляют АсОДН. В проведенном комплексном исследовании было показано, чтомодифицированные олигонуклеотиды не обладают эмбриотоксическим и отсроченным тератогенным эффектами, в дальнейшем не влияют на поведение и репродукцию взрослых животных. В культуре in vitro на модели адипогенной дифференцировки… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРНЫХ ДАННЫХ
    • 1. 1. Некоторые аспекты раннего эмбрионального развития
      • 1. 1. 1. Активация эмбрионального генома
      • 1. 1. 2. Компактизация
      • 1. 1. 3. Стадия бластоцисты
    • 1. 2. Нарушения раннего эмбрионального развития
      • 1. 2. 1. Остановки развития
      • 1. 2. 2. Фрагментация доимплантационных эмбрионов
      • 1. 2. 3. Клеточная гибель в раннем развитии млекопитающих
  • Характерные черты апоптоза и некроза
  • Апоптоз в раннем развитии млекопитающих
    • 1. 3. Антисмысловые олигонуклеотиды в генной терапии
      • 1. 3. 1. Генная терапия
      • 1. 3. 2. Способы подавления синтеза белков
      • 1. 3. 3. Антисмысловые олигонуклеотиды
  • Химические модификации антисмысловых олигонуклеотидов
  • Проникновение и системы доставки олигонуклеотидов в клетки
  • АсОДН как действующие агенты для терапии клеток в культурах in vitro
  • 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 3. 1. Материалы
      • 3. 1. 1. Животные и получение эмбрионов
      • 3. 1. 2. Выделение и культивирование клеток из подкожной жировой ткани человека
      • 3. 1. 3. Реактивы и среды для культивирования
      • 3. 1. 4. Олигонуклеотидные последовательности
    • 3. 2. Эксперименты на животных
      • 3. 2. 1. Манипуляции с доимплантационными эмбрионами
      • 3. 2. 2. Оценка интактных эмбрионов и эмбрионов после культивирования in vitro на разных сроках развития
      • 3. 2. 3. Оценка поведенческих и репродуктивных показателей мышей
    • 3. 3. Эксперименты на клетках в культуре in vitro
    • 3. 4. Статистическая обработка данных
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ
    • 4. 1. Спонтанные нарушения раннего развития у мышей линий SAM
    • 4. 1. Л. Нарушения развития у мышей линии SAMP1 in vivo, доимплантационная гибель
      • 4. 1. 2. Сравнение аномалий развития у мышей линий SAM, мышей ICR и гибридов BALB/DBA, C57B16/DBA на стадии 2.5 суток развития
      • 4. 1. 3. Нарушения развития у мышей линий SAMP1, ICR и гибридов C57B16/DBA in vitro
    • 4. 2. Нарушения раннего эмбрионального развития мыши при проапоптотическом воздействии
    • 4. 3. Раннее развитие после введения в бластоцисты мыши низкодифференцированных клеток человека
      • 4. 3. 1. Выживаемость суспензий НСК и МСК при различных условиях хранения и изменении состава суспензионной среды
      • 4. 3. 2. Получение инъекционных химер с НСК и МСК при различных условиях хранения и изменении состава суспензионной среды
    • 4. 4. Исследование эмбрионального и постэмбрионального воздействия олигонуклеотидных последовательностей, добавляемых в среду при культивировании in vitro
      • 4. 4. 1. Раннее развитие после культивирования эмбрионов мыши в среде с добавлением АсОДН, специфичных к мРНК генов HRK, FASL и ВАХ человека и бессмысленной олигонуклеотидной последовательности
      • 4. 4. 2. Постимплантационное развитие после культивирования эмбрионов мыши в среде с добавлением АсОДН, специфичных к мРНК генов HRK, FASL и ВАХ человека
      • 4. 4. 3. Оценка поведения и репродуктивных способностей мышей, полученных после культивирования эмбрионов в среде с добавлением АсОДН, специфичных к мРНК генов HRK и FASL человека
      • 4. 4. 4. Влияние АсОДН, специфичных к мРНК гена PPARy, на адипогенную дифференцировку клеток, полученных из жировой ткани
    • 4. 5. Влияние АсОДН, специфичных к мРНК гена Hrk мыши, на динамику спонтанных и индуцированных нарушений раннего развития
  • 5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
    • 5. 1. Спонтанные нарушения раннего развития у мышей линий SAM
    • 5. 2. Нарушения раннего эмбрионального развития мыши при проапоптотическом воздействии
    • 5. 3. Раннее развитие после введения в бластоцисты мыши низкодифференцированных клеток человека
    • 5. 4. Неспецифические и специфические эффекты антисмысловых олигодезоксинуклеотидов
    • 5. 5. Влияние АсОДН, специфичных к мРНК проапоптотических генов на раннее эмбриональное развитие

Анализ нарушений раннего эмбрионального развития и их коррекция с помощью антисмысловых олигодезоксинуклеотидов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Закономерности раннего эмбрионального развития активно изучают, начиная с 60-ых годов прошлого столетия, когда была разработана методика культивирования ранних эмбрионов in vitro [Biggers et al, 1965]. Высокая исследовательская активность в изучении доимплантационного периода развития млекопитающих связана не только с изучением фундаментальных закономерностей и познавательным интересом, но имеет большое медико-биологическое и социальное значение. Практические задачи этого направления исследований связаны с усовершенствованием методов искусственного оплодотворения, сохранением биоразнообразия и генофонда, племенным разведением сельскохозяйственных животных [Pope, 2000; Solti et al, 2000; Allen, 2005]. Проблема лечения бесплодия человека в настоящее время приобретает не только медицинское, социально-демографическое, но и экономическое значение. Результативность лечения бесплодия методами экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) во многом зависит от способности полученных ооцитов к оплодотворению in vitro и последующему развитию. Одним из отягчающих факторов при лечении бесплодия является возраст пациенток — после 30 лет резко снижается жизнеспособность эмбрионов и частота рождения детей после программы ЭКО [Templeton et al, 1996; Боярский, Василевская, 1998].

Жизнеспособность ранних эмбрионов обусловлена многими факторами, в том числе, зрелостью и генетическим статусом гамет, активацией эмбрионального генома, стадиоспецифичной экспрессией генов, межклеточными взаимодействиями. У всех млекопитающих некоторая часть эмбрионов погибает на доимплантационных стадиях развития. При культивировании эмбрионов in vitro нарушения могут быть вызваны как генетическим статусом развивающегося зародыша, так и влиянием ряда внешних факторов (например, нехваткой факторов роста, увеличением количества токсичных метаболитов, окислительным стрессом) [O'Neill, 1998; Agarwal et al, 2005]. Эмбрионы млекопитающих до компактизации обладают наибольшей чувствительностью к изменениям микроокружения и внешним воздействиям [Ribas et al, 2006; Zander et al, 2006]. Культивирование in vitro замедляет темпы развития [Fischer, 1987; Van der Auwera, D’Hooghe, 2001], изменяет уровень экспрессии ряда регуляторных факторов [Lee et al, 2001; Zheng et al, 2005; Chandrakanthan et al, 2006], нарушает экспрессию импринтированных генов [Исаев и др., 2005; Gardner, Lane, 2005], снижает количество жизнеспособных и увеличивает число гибнущих и фрагментированных клеток в эмбрионах [Hardy, 1999]. Но в условиях культивирования in vitro трудно разграничить аномалии, вызванные условиями культивирования, и нарушения, связанные с генетикой объекта. Поэтому представляется актуальным исследование нарушений раннего развития, обусловленных генетикой объекта.

Качество развивающихся эмбрионов оценивают по ряду морфологических признаков, учитывающих степень фрагментации, форму и размеры бластомеров. Многие исследователи связывают нарушения раннего развития с апоптотической гибелью клеток в эмбрионах [Exley et al, 1999; Van Blerkom et al, 2001; Jurisicova et al, 2003], поэтому перспективным представляется изучение возможности коррекции спонтанных и индуцированных нарушений раннего развития путем воздействия на проапоптотические факторы. В последнее время для специфического блокирования экспрессии генов все чаще применяют антисмысловые олигодезоксинуклеотиды (АсОДН), представляющие собой короткие дезоксирибонуклеотидные последовательности. АсОДН присоединяются к специфической мРНК, препятствуют трансляции и, следовательно, выработке белка [Stein, Cohen, 1988]. Эта технология дает возможность временно и направленно воздействовать практически на любой процесс в клетке с высочайшей специфичностью, не затрагивая целостность генома. Создание препаратов на основе антисмысловых олигонуклеотидов — одно из новейших направлений лекарственных разработок для лечения ряда заболеваний, например в онкологии [Mullen et al, 2004], для лечения гипертонической болезни [Phillips, Kimura, 2005], аллергических расстройств [Ball et al, 2004], некоторых вирусных и бактериальных инфекций [Geller, 2005].

В связи с этим, изучение генетически обусловленных и индуцированных нарушений раннего развития эмбрионов млекопитающих и возможность их коррекции посредством обратимых воздействий является актуальным вопросом, как биологии развития, так и практической репродуктивной медицины.

7. ВЫВОДЫ.

1. Родственные линии мышей SAMP1 и SAMR1 характеризуются высоким уровнем нарушений раннего эмбрионального развития как in vivo, так и при культивировании in vitro. Это выражается в аномалиях процессов компактизации и кавитации, отставаниях по стадии и остановках развития, фрагментации и дегенерации.

2. При воздействии проапоптотического агента блеомицина на эмбрионы линии мышей с исходно высоким уровнем генетических аномалий (SAMP1) нарушения развития в основном связаны с нарушениями процессов компактизации и кавитации. При воздействии на эмбрионы мышей с нормальными репродуктивными показателями (ICR, C57B16/DBA) гибель эмбрионов преимущественно связана с увеличением числа дегенерирующих эмбрионов.

3. Инъекция в бластоцисты мыши ксеногенных клеток (НСК и МСК человека) не влияет на жизнеспособность эмбрионов. Использование 10% раствора инфукола ГЭК или 24 часовая экспозиция суспензии при +4°С приводят к возрастанию числа случаев встраивания донорских НСК во внутреннюю клеточную массу бластоцисты.

4. Немодифицированные АсОДН, специфичные к мРНК генов HRK, FASL и ВАХ человека, в концентрации 0,1нмоль/мл не обладают токсическим влиянием на эмбрионы и отсроченным тератогенным воздействием на плоды мыши, и в дальнейшем не влияют на поведенческие и репродуктивные показатели взрослых животных.

5. Воздействиемодифицированных АсОДН, специфичных к мРНК гена PPARy, на культуру стромальных клеток жировой ткани человека приводит к уменьшению доли адипоцитов и стабилизации этого показателя после пассирования культуры.

6. Немодифицированные АсОДН, специфичные к мРНК проапоптотического гена Hrk, улучшают качество выживших эмбрионов мыши с индуцированными блеомицином нарушениями раннего развития.

6.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Для мышей линии SAMP1, склонной к ускоренному старению, характерен высокий уровень нарушений раннего развития. Наряду с фрагментирующимися и дегенерирующими эмбрионами у этой линии in vivo и in vitro в значительном количестве присутствуют эмбрионы, отстающие по стадии и остановившиеся в развитии, эмбрионы с нарушениями процессов компактизации и кавитации. Эти генетически обусловленные нарушения не поддавались коррекции с помощью антисмысловых олигодезоксинуклеотидов (АсОДН), специфичных к мРНК проапоптотического гена Hrk. Блеомицин — агент, индуцирующий апоптотическую гибель клеток, у мышей SAMP1 увеличивал количество эмбрионов с нарушениями компактизации и кавитации, не влияя на число дегенерировавших эмбрионов. Как правило, ошибки в раннем развитии вызывают гибель бластомеров или всего эмбриона. После воздействия блеомицина на эмбрионы мышей с нормальными репродуктивными показателями (ICR, C57B16/DBA) отмечалось увеличение числа дегенерировавших эмбрионов. Возможно, у мышей линии SAMP1 нарушены механизмы естественной элиминации поврежденных бластомеров и эмбрионов.

При исследовании раннего развития, проблемы, связанные с изучением взаимного влияния клеток, можно оценить в условиях создания химерных организмов. Работы по инъекции ксеногенных клеток в полость бластоцисты мыши немногочисленны, полученные результаты противоречивы [Макашовский и др., 1998; Harder et al., 2002; Koestenbauer et al., 2007]. Оставался неясным вопрос о влиянии инъекции клеток на жизнеспособность эмбрионов. Мы показали, что инъекция в бластоцисты мыши ксеногенных низкодифференцированных клеток (нейральных стволовых и прогениторных клеток человека и мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток костного мозга человека) не влияла на жизнеспособность эмбрионов. Включение инъецированных клеток в бластоцисты мыши зависело от типа клеток, а также от условий хранения и состава суспензий. Использование 10% раствора инфукола или 24 часовая экспозиция суспензии при +4°С увеличивали вероятность попадания нейральных стволовых и прогениторных клеток человека в формирующийся зародыш (внутреннюю клеточную массу бластоцист), уравнивая их по этому показателю с мультипотентных мезенхимальными стромальными клетками костного мозга человека. Возможно, это связано с изменением адгезивных свойств нейральных стволовых и прогениторных клеток под действием инфукола или после 24 часововой экспозиции суспензии при +4°С.

Широкую возможность корректирующего не затрагивающего целостность генома влияния на клетки предоставляют АсОДН [Зеленин и др., 1998; Киггеск, 2003]. В проведенном комплексном исследовании было показано, чтомодифицированные олигонуклеотиды не обладают эмбриотоксическим и отсроченным тератогенным эффектами, в дальнейшем не влияют на поведение и репродукцию взрослых животных. В культуре in vitro на модели адипогенной дифференцировки стромальных клеток жировой ткани было продемонстрировано влияние АсОДН на адипогенез. Полученный результат (уменьшение количества адипоцитов) показывает специфичность влияниямодифицированных АсОДН на дифференцировку клеток в культуре. Немодифицированные АсОДН, специфичные к мРНК проапоптотического гена Hrk, улучшали качество эмбрионов мыши с индуцированными блеомицином нарушениями раннего развития. По-видимому, частичное подавление трансляции белка harakiri сохраняло целостность мембран митохондрий, препятствовало высвобождению проапоптотических факторов и предохраняло эмбрионы от токсического воздействия блеомицина.

Положительное действие АсОДН, специфичных к мРНК проапоптотических генов, на раннее развитие эмбрионов in vitro получило подтверждение в области вспомогательных репродуктивных технологий. Так АсОДН, специфичные к мРНК проапоптотических генов HRK и FASL человека, улучшают качество эмбрионов человека и увеличивают частоту наступления беременности после культивирования ооцитов и эмбрионов в среде с добавлением АсОДН к мРНК генов HRK и FASL [Захарова, 2006; Семенова и др. 2006; Zaletov et al., 2006]. Разработанная композиция для добавления в среду культивирования ооцитов и эмбрионов (патенты РФ № 2 281 777 и № 2 281 778 от 20 августа 2006) позволяет улучшать качество ранних эмбрионов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. JI.B., Дабагян Н. В., Чунаева М. З. Пособие к большому практикуму по эмбриологии. 4.2. М.: Изд-во МГУ. 1990.
  2. К.Ю., Василевская С. Е. Цитогенетический анализ ооцитов, полученных у женщин старшей возрастной группы в программе ЭКО. // Проблемы репродукции. 1998. — № 2. — С.34−36.
  3. O.A., Корсак B.C., Северова E.JI., Кирсанов A.A., Козлов В. В. Влияние возраста женщины на процесс оплодотворения ооцитов и развитие эмбрионов в культуре. // Проблемы репродукции. 1998. — № 6. -С.48−51.
  4. В.А. Методы эмбриологических исследований (пособие к Большому практикуму по эмбриологии). М.: Изд-во МГУ. 1996.
  5. O.A., Горбачевский Ю. В. Преимущество современных препаратов гидроксиэтилированного крахмала в ряду плазмозамещающих инфузионных растворов. // Вестник службы крови России. 1998. — № 3. -С.41−45.
  6. A.B., Захидов С. Т., Маршак Т. Д., Кулибин А. Ю., Семенова M.JI., Макаров A.A. Генетическая нестабильность мужских половых клеток у мышей-долгожителей SAMP1, склонных к ускоренному старению. // Доклады Академии Наук. 2003. — Т.392, № 2. — С.267−270.
  7. А.П. Раннее развитие млекопитающих. JL: Наука. 1988.
  8. А.П., Пучков В. Ф., Баранов B.C., Самошкина H.A., Чеботарь H.A. Лабораторные млекопитающие: мышь (Mus musculus), крыса (Ratus norvegicus), кролик (Orictolagus cuniculus), хомячок (Cricetus griseous). Объекты биологии развития. M: «Наука». 1975.
  9. Е.Е. Применение антисмысловых олигонуклеотидов к мРНК генов HRK и FASL при культивировании in vitro ооцитов и эмбрионов человека: Автореф. дис. канд. биол. наук. М. 2006.
  10. Ю.Захидов С. Т., Семенова М. Л., Гордеева О. Ф., Беляева A.A. Сперматогенез у мышей линии SAMP1, склонных к ускоренному старению. // Доклады Академии Наук. 1999. — Т.365, № 3. — С.403−405.
  11. И.Зеленин A.B., Кайгородов В. А., Прасолов B.C. Генная терапия сегодня и завтра. // Молекулярная биология. 1998. — Т.32. — С.219−228.
  12. Д.А., Заева В.В.,. Болт А. И, Володина О. Ю. Вспомогательная репродукция человека и болезни геномного импринтинга. // Проблемы репродукции. 2005. — № 2. — С. 14−18.
  13. В.А., Зеленина И. А., Семенова М. Л., Шафеи P.A., Зеленин A.B. Баллистическая трансфекция клеток млекопитающих in vivo. // Онтогенез. 1995. — Т.26. — С.467−480.
  14. Н.Кулибин А. Ю., Захидов С. Т., Маршак Т. Д., Гопко A.B., Михалева Я. Ю., Семенова M.JI. Изучение сперматогенной структуры у мышей-долгожителей SAMP1, склонных к ускоренному старению. // Доклады Академии Наук. 2005. — Т.404, № 6. — С.831−834.
  15. Мак-Ларен Э. Химеры млекопитающих. М: Мир. 1979.
  16. Л.Ф., Кизилова Е. А. Железнова А.И., Голубица А. Н., Мазуров М. М. Взаимодействие гомо- и гетеротипических эмбриональных стволовых клеток с развивающимися зародышами. // Онтогенез. 1998. -Т.29, № 2. — С.96−103.
  17. М. Биология развития млекопитающих. Методы. -М: Мир. 1990.
  18. B.И., Леонова Б. В. М: Медицинское информационное агентство. 2000.1. C.15−36.
  19. Новиков В. С. Программированная клеточная гибель. СПб: Наука. 1996.
  20. О.В., Жданов Р. И. Генный перенос с помощью невирусных векторов на основе поликатионов и гидрофобных поликатионов в целях генной терапии. // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 1999. — № 4. — С.7−15.
  21. Г. Е., Кнорре Д. Г. Белковые и пептидные конструкции для доставки в клетку олигонуклеотидов и ДНК. // Вопросы медицинской химии. 1999. — № 6.
  22. М.Л., Захарова Е. Е., Кошелева Н. В., Заева В. В., Залетов С. Ю. Антисмысловые олигонуклеотиды как действующие агенты для улучшения качества эмбрионов человека при культивировании in vitro. II Проблемы репродукции. 2006. — № 1. — С.46−52.
  23. М.Л., Захарова Е. Е., Кошелева Н. В., Залетов С. Ю., Заева В.В Способ управления качеством ооцитов и композиция для добавления всреду культивирования ооцитов. // Патент РФ на изобретение № 2 281 777 от 20 августа 2006.
  24. Семенова M. JL, Захарова Е. Е., Кошелева Н. В., Залетов С. Ю., Заева В. В Способ культивирования зиготы и/или эмбриона и композиция для добавления в среду культивирования зигот и/или эмбрионов. // Патент РФ на изобретение № 2 281 778 от 20 августа 2006.
  25. В.З. Таргетинг генов как современная методология изучения их функции. // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. -1996. № 2. — С.3−13.
  26. Д.О., Парфенова Е. В., Ткачук В. А., Марч K.JI. Стромальные клетки жировой ткани пластический тип клеток, обладающих высоким терапевтическим потенциалом. // Цитология. — 2006. — т.48, № 2. — С.83−93.
  27. .П., Лактионов П.П, Власов В. В Белки, участвующие в связывании и поглощении клетками нуклеиновых кислот // Биохимия. -2006. Т.71, вып. 6. — С.725−741.
  28. ЗО.Чумаков П. М. Функция гена р53: выбор между жизнью и смертью. // Биохимия. 2000. — Т. 65, № 1. — С.34−47.
  29. ЗЬЯрилин А. А. Апоптоз: природа феномена и его роль в норме и патологии. // Актуальные проблемы патофизиологии: избранные лекции / Под ред. Мороза Б. Б. -М: Медицина. 2001. С. 13−56.
  30. Ailhaud G., Grimaldi P., Negrel R. Cellular and molecular aspects of adipose tissue development. // Annu. Rev. Nutr. 1992. — v. 12. — P.207−215.
  31. Agarwal A., Gupta S., Sharma R. Oxidative stress and its implications in female infertility a clinician’s perspective. // Reprod. Biomed. Online. — 2005. — V. ll,№ 5.-P.641−650.
  32. Akhtar S., Juliano R.L. Cellular uptake and intracellular fate of antisense oligonucleotides // Trends Cell Biol. 1992. — V.2, № 5. — P. 139−144.
  33. Alikani M., Calderon G., Tomkin G., Garrisi J., Kokot M., Cohen J. Cleavage anomalies in early human embryos and survival after prolonged culture in-vitro. // Hum. Reprod. 2000. — V.15, № 12. — P.2634−2643.
  34. Alikani M., Cohen J., Tomkin G., Garrisi G.J., Mack C., Scott R.T. Human embryo fragmentation in vitro and its implications for pregnancy and implantation. // Fertil. Steril. 1999. — V.71, № 5. — P.836−842.
  35. Allen W.R. The development and application of the modern reproductive technologies to horse breeding. // Reprod. Domest. Anim. 2005. — V.40, № 4. -P.310−329.
  36. Aoki F., Hara K.T., Schultz R.M. Acquisition of transcriptional competence in the 1-cell mouse embryo: requirement for recruitment of maternal mRNAs. // Mol. Reprod. Dev. 2003. — V.64. — P.270−274.
  37. Baertschi A J. Antisense oligonucleotide strategies in physiology. // Mol. Cell. Endocrinol. 1994. — V. 101, № 1−2. — P. R15-R24.
  38. Balcerzak D., Poussard S., Brustis J.J., Elamrani N., Soriano M., Cottin P., Ducastaing A. An antisense oligodeoxyribonucleotide to m-calpain mRNA inhibits myoblast fusion // J. Cell Sci. 1995. — V.108. — P.2077−2082.
  39. Ball H.A., Van Scott M.R., Robinson C.B. Sense and antisense: therapeutic potential of oligonucleotides and interference RNA in asthma and allergic disorders. // Clin. Rev. Allergy Immunol. 2004. — V.27, № 3. — P.207−17.
  40. Ball H.A., Sandrasagra A., Tang L., Van Scott M., Wild J., Nyce J.W. Clinical potential of respirable antisense oligonucleotides (RASONs) in asthma. // Am. J. Pharmacogenomics. 2003. — V.3, № 2. — P.97−106.
  41. Belikova A.M., Zarytova V.F., Grineva N.I. Synthesis of ribonucleosides and diribonucleoside phosphates containing 2-chloroethylamine and nitrogen mustard residues // Tetrahedron Lett. 1967. — V.37. — P.3557−3562.
  42. Beraldi R., Pittoggi C., Sciamanna I., Mattei E., Spadafora C. Expression of LINE-1 retroposons is essential for murine preimplantation development. // Mol. Reprod. Dev. 2006. — V.73, № 3. — P.279−287.
  43. Biggers J.D., Moore B.D., Whittingham D.G. Development of mouse embryos in vivo after cultivation from two-cell ova to blastocysts in vitro. // Nature. -1965. V.206, № 985. — P.734−735.
  44. Blake KR, Murakami A, Spitz SA, Glave SA, Reddy MP, Ts’o PO, Miller PS. Hybridization arrest of globin synthesis in rabbit reticulocyte lysates and cells by oligodeoxyribonucleoside methylphosphonates // Biochemistry. 1985. -V.24, № 22. — P.6139−6145.
  45. Bondurant M.C., Yamashita T., Muta K., Krantz S.B., Koury M.J. C-myc expression affects proliferation but not terminal differentiation or survival of explanted erythroid progenitor cells // J. Cell. Physiol. 1996. — V.168, № 2. -P.255−263.
  46. Bongso A, Ng SC, Lim J, Fong CY, Ratnam S. Preimplantation genetics: chromosomes of fragmented human embryos. // Fertil. Steril. 1991. — V.56, № 1. -P.66−70.
  47. Borland R.M. Transport processes in the mammalian blastocyst. // Development in mammals. / Ed. Johnson M.H., Elsevier/North-Holland Biomedical Press, 1977. P.31−67.
  48. Brenner C.A., Adler R.R., Rappolee D.A., Pedersen R.A., Werb Z. Genes for extracellular-matrix-degrading metalloproteinases and their inhibitor, TIMP, are expressed during early mammalian development. // Genes Dev. 1989. -V.6. — P.848−859.
  49. Brinster R.L., Troike D.E. Requirements for blastocyst development in vitro. II J. Anim. Sci. 1979. — V.49, № 2. — P.26−34.
  50. Campos L.S. Neurospheres: insights into neural stem cell biology // J. Neurosci. Res. 2004. — V.78. — P.761−769.
  51. Chandrakanthan V., Li A., Chami O., O’Neill C. Effects of in vitro fertilization and embryo culture on TRP53 and Bax expression in B6 mouse embryos. // Reprod. Biol. Endocrinol. 2006. — V.4. — P.61−71.
  52. Chou W.Y., Marky L.A., Zaunczkowski D., Breslauer K.J. The thermodynamics of drug-DNA interactions: ethidium bromide and propidium iodide. // J. Biomol. Struct. Dyn. 1987. — V.2. — P.345−359.
  53. Christians E., Campion E., Thompson E.M., Renard J.P. Expression of the HSP 70.1 gene, a landmark of early zygotic activity in the mouse embryo, is restricted to the first burst of transcription. // Development. 1995. — V.121. -P.l 13−122.
  54. Clarke D.L., Johansson C.B., Wilbertz J., Veress B., Nilsson E., Karlstrom H., Lendahl U., Frisen J. Generalized potential of adult neural stem cells. // Science. -2000. V.288. — P. l660−1663.
  55. Collins J.E., Fleming T.P. Epithelial differentiation in the mouse preimplantation embryo: making adhesive cell contacts for the first time. // Trends Biochem. Sci. 1995. — V.20, № 8. — P.307−312.
  56. Coucouvanis E., Martin G.R. Signals for death and survival: a two step mechanism for cavitation in the vertebrate embryo. // Cell. 1995. — V.84. -P.279−287.
  57. Cui X.S., Li X.Y., Shen X.H., Bae Y.J., Kang J.J., Kim N.H. Transcriptional profile in mouse four-cell, morula, and blastocyst: Genes implicated in compaction and blastocoel formation. // Mol. Reprod. Dev. 2007. — V.74, № 2. — P.133−143.
  58. Dandekar P.V., Glass R.H. Development of mouse embryos in vitro is affected by strain and culture medium. // Gamete Res. 1987. — V.17, № 4. P.279−285.
  59. Denker H.W. Implantation: a cell biological paradox. // J. Exp. Zool. 1993. -V.266, № 6. — P.541−558.
  60. Devreker F., Englert Y. In vitro development and metabolism of the human embryo up to the blastocyst stage. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. -2000.-V.92.-P.51−56.
  61. Dharma S.J., Kelkar R.L., Nandedkar T.D. Fas and Fas ligand protein and mRNA in normal and atretic mouse ovarian follicles. // Reproduction. 2003. -V.126, № 6. — P.783−789.
  62. Dohi Y., Shimaoka H., Ikeuchi M., Ohgushi H., Yonemasu K., Minami T. Role of metallothionein isoforms in bone formation processes in rat marrow mesenchymal stem cells in culture // Biol. Trace Elem. Res. 2005. — V.104, № 1. -P.57−70.
  63. Dokka S, Toledo-Velasquez D, Shi X, Wang L, Rojanasakul Y. Cellular delivery of oligonucleotides by synthetic import peptide carrier. // Pharm. Res. 1997. V.14, № 12. — P.1759−1764.
  64. Downs S.M., Dow M.P. Hypoxanthine-maintained two-cell block in mouse embryos: dependence on glucose and effect of hypoxanthine phosphoribosyltransferase inhibitors. // Biol. Reprod. 1991. — V.44, № 6. -P.1025−1039.
  65. Dozortsev D., Ermilov A., El-Mowafi D.M., Diamond M. The impact of cellular fragmentation induced experimentally at different stages of mouse preimplantation development. // Hum. Reprod. 1998. — V.13, № 5. — P.1307−1311.
  66. Driver S.E., Robinson G.S., Flanagan J., Shen W., Smith L.E.H., Thomas D.W., Roberts P.C. Oligonucleotidebased inhibition of embryonic gene expression // Nat. Biotechnol. 1999. — V.17. — P. 1184−1187.
  67. Ducibella T. Surface changes of the developing trophoblast cell. // Development in mammals / Ed. Johnson M.H., Elsevier/North-Holland Biomedical Press. 1977. P.5−30.
  68. Dvorak M. The differentiation of rat ova during cleavage. // Advances in anatomy, embryology, and cell biology- V.55, fasc.2, Spinger-Verlag Berlin Heidelberg New York, 1978.
  69. Ebner T. Yaman C., Moser M., Sommergruber M., Polz W., Tews G. Embryo fragmentation in vitro and its impact on treatment and pregnancy outcome. // Fertil. Steril. 2001. — V.76, № 2. -P.281−285
  70. Exley G.E., Tang C., McElhinny A.S., Warner C.M. Expression of caspase and Bcl-2 apoptotic family members in mouse preimplantation embryo. // Biol. Reprod. 1999. — V.61. — P.231−239.
  71. Fischer B. Development retardation in cultured preimplantation rabbit embryos. // J. Reprod. Fertil. 1987. — V.79, № 1. — P. 115−123.
  72. Fleming T.P., Kwong W.Y., Porter R., Ursell E., Fesenko I., Wilkins A., Miller D.J., Watkins A.J., Eckert J.J. The embryo and its future. // Biol. Reprod. -2004. -V.71.- P. 1046−1054.
  73. Fleming J.V., Fontanier N., Harries D.N., Rees W.D. The growth arrest genes gas5, gas6, and CHOP-10 (gaddl53) are expressed in the mouse preimplantation embiyo. // Mol. Reprod. Dev. 1997. — V.48. — P.310−316.
  74. Floyd Z.E., Zvonic S., Nuttall M.E., Gimble J.M. Fine-Tuning Reception in the Bone: PPARgamma and Company // PPAR Res. 2006. — V.2006: 52 950. -P.1−7.
  75. Fuchimoto D., Mizukoshi A., Schultz R.M., Sakai S., Aoki F. Posttranscriptional regulation of cyclin A1 and cyclin A2 during mouse oocyte meiotic maturation and preimplantation development. // Biol. Reprod. 2001. -V.65. — P.986−993.
  76. Fulka J.Jr., First N.L., Fulka J., Moor R.M. Checkpoint control of the G2/M phase transition during the first mitotic cycle in mammalian eggs. // Hum. Reprod. 1999. — V.14, № 6. — P.1582−1587.
  77. Gardner D.K., Lane M. Ex vivo early development and effects on gene expression and imprinting. // Reprod. Fertil. Dev. 2005. — V.17. — P.361−370.
  78. Gardner R.L., Johnson M.H. Investigation of cellular interaction and deployment in the early mammalian embryo using interspecific chimaeras between the rat and mouse. // Ciba Found. Symp. 1975. — V.0, № 29. — P. 183 200.
  79. Garrett D.J., Larson J.E., Dunn D., Marrero L., Cohen J.C. In utero recombinant adeno-assotiated virus gene transfer in mice, rats, and primates // BMC Biotechnology. 2003. — V.3. — P. 16.
  80. Gasparro F.P., Dall’Amico R., O’Malley M., Heald P.W., Edelson R.L. Cell membrane DNA: a new target for psoralen photoadduct formation // Photochem. Photobiol. 1990. — V.52, № 2. — P.315−321.
  81. Geiger H., Sick S., Bonifer C., Muller A.M. Globin gene expression is reprogrammed in chimeras generated by injecting adult hematopoietic stem cells into mouse blastocysts. // Cell. 1998. — V.93, № 6. — P. 1055−1065.
  82. Geller B.L. Antibacterial antisense //Curr. Opin. Mol. Ther. 2005. — V.7, № 2 -P.109−113.
  83. Greco B., Low H.P., Johnson E.C., Salmonsen R.A., Gallant J., Jones S.N., Ross A.H., Recht L.D. Differentiation prevents assessment of neural stem cell pluripotency after blastocyst injection. // Stem Cells. 2004. — V.22, № 4. -P.600−608.
  84. Gregoire F.M., Smas C.M., Sul H.S. Understanding adipocyte differentiation. // Physiol. Rev. 1998. — V.78, № 3. — P.783−809.
  85. Hamilton AJ, Baulcombe DC A species of small antisense RNA in posttranscriptional gene silencing in plants // Science. 1999. — V.286, № 5441. — P.950−952.
  86. Hardy K., Stark J., Winston R.M.L. Maintanance of the inner cell mass in human blastocysts from fragmented embryos. // Biol. Reprod. 2003. — V.68. -P.l 165−1169.
  87. Hardy K., Spanos S. Growth factor expression and function in the human and mouse preimplantation embryo. // J. Endocrinol. 2002. — V.172. — P.221−236.
  88. Hardy K. Apoptosis in the human embryo. // Rev. Reprod. 1999. — V.4. -P.125−134.
  89. Hardy K., Warner A., Winston R.M., Becker D.L. Expression of intercellular junctions during preimplantation development of the human embryo. // Mol. Hum. Reprod. 1996. — V.2, № 8. -P.621−632.
  90. Harder F., Kirchhof N., Petrovic S., Wiese S., Muller A.M. Erythroid-like cells from neural stem cells injected into blastocysts.// Exp. Hematol. 2004. -V.32, № 7. — P.673−682.
  91. Harder F., Henschler R., Junghahn I., Marimes C. Lamers, Albrecht M. Muller. Human hematopoiesis in murine embryos after injecting human cord blood-derived hematopoietic stem cells into murine blastocysts.// Blood. -2002. V.99, № 2.-P.719−721.
  92. Harris C.A., Johnson E.M. Jr. BH3-only Bcl-2 family members are coordinate^ regulated by the JNK pathway and require Bax to induce apoptosis in neurons. // J. Biol. Chem. 2001. — V.276, № 41. — P.37 754−37 760.
  93. Hartleberg G.M., Haugland R.P., Haugland R.P. Single color reduced-biohazard viability assay. // International Society for analitical cytology Meeting, 2002.
  94. Hawley P., Gibson I. Interaction of oligodeoxynucleotides with mammalian cells // Antisense Nucleic Acid Drug Dev. 1996. — V.6, № 3. — P.185−195.
  95. Heasman J. Morpholino oligos: making sense of antisense? // Dev. Biol. -2002. V.243. -P.209−214.
  96. Heichman K.A., Roberts J.M. Rules to replicate by. // Cell. 1994. — V.79, № 18. -P.557−562.
  97. Hengartner M.O. The biochemistry of apoptosis. // Nature. 2000. — V.407, № 6805. — P.770−776.
  98. Herdewijn P. Antisense oligonucleotides. // Verh. K. Acad. Geneeskd. Belg. 1996. — V.58, № 4. — P.359−381.
  99. Heyer B., MacAuley A., Behrendtsen O., Werb Z. Hypersensitivity to DNA damage leads to increased apoptosis during early mouse development. // Genes Dev. -2000. V.14. — P.2072−2084.
  100. Hill M.A. Early human development. // Clin. Obstet. Gynecol. 2007. -V.50, № 1. — P.2−9.
  101. Hnida C., Engenheiro E., Ziebe S. Computer-controlled, multilevel, morphometric analysis of blastomere size as biomarker of fragmentation and multinuclearity in human embryos. // Hum. Reprod. 2004. V.19, № 2. -P.288−293.
  102. Hogan B., Beddington R., Costantini F., Lacy E. Manipulation the Mouse Embryo. A laboratory manual. Second edition. // Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1994.
  103. Hosokawa M. A higher oxidative status accelerates senescence and aggravates age-dependent disorders in SAMP strains of mice. // Mech. Ageing Dev. -2002. V.123. — P.1553−1561.
  104. Hosokawa M., Fujisawa H., Bing-Hua Z., Juro H., Higuchi K. In vitro study of the mechanisms of senescence acceleration. // Exp. Gerontol. 1997b. -V.32, №½.-P. 197−203.
  105. Howell S.J., Shalet S.M. Effect of cancer therapy on pituitary-testicular axis. // Int. J. Androl. 2002. — V.25. — P.269−276.
  106. Igney F.H., Krammer P.H. Death and anti-death: tumour resistance to apoptosis. // Nat. Rev. Cancer. 2002. — V.2. — P.277−288.
  107. Inohara N., Ding L., Chen S., Nuenz G. Harakiri, a novel regulator of cell death, encodes a protein that activates apoptosis and interects selectively with survival- promoting proteins Bcl-2 and Bcl-XL. // EMBO J. 1997. — V.16, № 7.-P. 1686−1694.
  108. Iversen P.L., Zhu S., Meyer A., Zon G. Cellular uptake and subcellular distribution of phosphorothioate oligonucleotides into cultured cells. // Antisense Res. Dev. 1992. — V.2, № 3. — P.211−222.
  109. Jaeger L.B., Banks W.A. Antisense therapeutics and the treatment of CNS disease. // Front. Biosci. 2004. — V.9. — P. 1720−1727.
  110. Janny L., Menezo Y.J. Maternal age effect on early human embryonic development and blastocyst formation. // Mol. Reprod. Dev. 1996. — V.45, № 1. -P.31−37.
  111. Jen K-Y., Gewirtz A.M. Suppression of gene expression by targeted distruption of messenger RNA: available options and current strategies. // Stem cells.-2000.-№ 18.-P.307−319.
  112. Johnson M.H., Ziomek C.A. Induction of polarity in mouse 8-cell blastomeres: specificity, geometry, and stability. // J. Cell Biol. 1981. — V.91.- P.303−308.
  113. Junghans M., Kreuter J., Zimmer A. Phosphodiester and phosphorothioate oligonucleotide condensation and preparation of antisense nanoparticles // Biochim. Biophys. Acta. 2001. — V. 1544. — P. 177−188.
  114. Junghans M., Kreuter J., Zimmer A. Antisense delivery using protamine-oligonucleotide particles // Nucleic Acids Res. 2000. — V.28, № 10. — E45.
  115. Jurisicova A., Acton B.M. Deadly decisions: the role of genes regulating programmed cell death in human preimplantation embryo development // Reproduction. 2004. — V.128. — P.281−291.
  116. Jurisicova A., Latham K.E., Casper R.F., Varmuza S.L. Expression and regulation of genes associated with cell death during murine preimplantation embryo development. // Mol. Reprod. Dev. 1998a. — V.51. — P.243−253.
  117. Jurisicova A., Rogers I., Fasciani A., Casper R., Varmuza S. Effect of maternal age and conditions of fertilization on programmed cell death during murine preimplantation embryo development. // Mol. Hum. Reprod. 1998b. -V.4,№ 2.-P. 139−145.
  118. Kakinuma Y., Saito F., Ohsawa S., Furuichi T., Miura M. A sulfatase regulating the migratory potency of oligodendrocyte progenitor cells through tyrosine phosphorylation of beta-catenin // J. Neurosci. Res. 2004. — V.77, № 5. -P.653−661.
  119. Kaneko K.J., Cullinan E.B., Latham K.E., DePamphilis M.L. Transcription factor mTEAD-2 is selectively expressed at the beginning of zygotic gene expression in the mouse. // Development. 1997. — V.124. — P. 1963−1973.
  120. Katovich M.J., Grobe J.L., Huentelman M., Raizada M.K. Angiotensinconverting enzyme 2 as a novel target for gene therapy for hypertension. //Exp. Physiol. 2005. — V.90, № 3. — P.299−305.
  121. Kawamura K., Fukuda J., Kodama H., Kumagai J., Tanaka T. Expression of Fas and Fas ligand mRNA in rat and human preimplantation embryos. // Mol. Hum. Reprod. -2001. V.7, № 5. — P.431−436.
  122. Kawanishi S., Hiraku Y. Amplification of anticancer drug-induced DNA damage and apoptosis by DNA-binding compounds.// Curr. Med. Chem. Anticancer Agents. 2004. — V.4, № 5. — P.415−419.
  123. Khosla S., Dean W., Reik W., Feil R. Culture of preimplantation embryos and long-term effects on gene expression and phenotype // Hum. Reprod. Update. -2001. V.7, № 4. — P.419−427.
  124. Kim J.H., Do H.J., Choi S.J., Cho H.J., Park K.H., Yang H.M., Lee S.H., Kim D.K., Kwack K., Oh S.K., Moon S.Y., Cha K.Y., Chung H.M. Efficient gene delivery in differentiated human embryonic stem cells // Exp. Mol. Med. -2005. -V. 37, №l.p. 36−44.
  125. Kim S.U., Han Y.H., Lee T.H., Hyun B.H., Lee S.H., Lee D.S., Yu D.Y. Effective production of microinjectable blastocysts for germ-line transmission of embryonic stem cells.// Exp. Anim. 2004. — V.53, № 5. — P.475−477.
  126. Kimber S.J. Spanswick C. Blastocyst implantation: the adhesion cascade. // Semin. Cell Dev. Biol. 2000. — V. l 1, № 2. — P.77−92.
  127. King R.W., Jackson P.K., Kirschner M.W. Mitosis in transition // Cell. -1994. V.79, № 18. — P.563−571.
  128. Koestenbauer S., Vanderzwalmen P., Hammer A., Schoonjans L., Danloy S., Zech H., Dohr G., Zech N.H. Apoptosis affects integration frequency: Adult stem cells injected in blastocysts show high caspase-3 activity. // Cell Biol. Int. 2007, in press.
  129. Kurreck J. Antisense technologies. Improvement through novel chemical modifications // Eur. J. Biochem. 2003. — V.270, № 8. — P. 1628−1644.
  130. Laktionov P.P., Dazard J.E., Vives E., Rykova E.Y., Piette J., Vlassov V.V., Lebleu B. Characterisation of membrane oligonucleotide-binding proteins and oligonucleotide uptake in keratinocytes // Nucleic Acids Res. 1999. — V.27, № 11.-P.2315−2324.
  131. Ledley F. D. Nonviral gene therapy: the promise of genes as pharmaceutical products. // Hum. Gene Ther. 1995. — V.6. — P. 1129−1144.
  132. Lee R.H., Kim B.C., Choi I.S., Kim H., Choi H.S., Suh K.T., Bae Y.C., Jung J.S. Characterization and expression analysis of mesenchymal stem cells from human bone marrow and adipose tissue. // Cell. Physiol. Biochem. 2004. -V.14.-P.311−324.
  133. Levy R., Benchaib M., Cordonier H., Souchier C., Guerin J.F. Annexin V labelling and terminal transferase-mediated DNA end labelling (TUNEL) assay in human arested embryos. // Mol. Hum. Reprod. 1998. — V.4, № 8. — P.775−783.
  134. Liang L., Bickenbach J.R. Somatic epidermal stem cells can produce multiple cell lineages during development. // Stem Cells. 2002. — V.20, № 1. -P.21−31.
  135. Loke S.L., Stein C.A., Zhang X.H., Mori K., Nakanishi M., Subasinghe C., Cohen J.S., Neckers L.M. Characterization of oligonucleotide transport into living cells. // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1989. — V.86, № 10. — P.3474−3478.
  136. Los M., Wesselborg S., Schulze-Osthoff K. The role of caspases in development, immunity, and apoptotic signal transduction: lessons from knockout mice. // Immunity. 1999. — V.10. — P.629−639.
  137. Lundstrom K., Boulikas T. Viral and non-viral vectors in gene therapy: technology development and clinical trials // Technol. Cancer Res. Treat. -2003. V.2, № 5. — P.471−486.
  138. Lv W, Zhang C, Hao J. RNAi technology: a revolutionary tool for the colorectal cancer therapeutics. // World J. Gastroenterol. 2006. — V.12, № 29. -P.4636−4639.
  139. Lysik M.A., Wu-Pong S. Innovations in oligonucleotide drug delivery. // J. Pharm. Sci. 2003. — V.92, № 8. — P.1559−1573.
  140. Markina N.V., Salimov R.M., Poletaeva I.I. Behavioral screening of two mouse lines selected for different brain weight. // Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 2001. — V.25. — P. 1083−1109.
  141. Menendez P., Wang L., Bhatia M. Genetic manipulation of human embryonic stem cells: a system to study early human development and potential therapeutic applications // Curr. Gene Ther. 2005. — V.5, № 4. — P.375−385.
  142. Michaelson J.S., Bader D., Kuo F., Kozak C., Leder P. Loss of Daxx, a promiscuously interacting protein, results in extensive apoptosis in early mouse development. // Genes Dev. 1999. — V. 13. — P. 1918−1923.
  143. Miyamoto H., Manabe N., Mitani Y., Sugimoto N., Watanabe T., Aruga C., Sato E. Female reproductive properties and prenatal development of a senescence-accelerated mouse strain. // J. Exp. Zool. 1995. — V.272, № 2 -P.l 16−122.
  144. Morris M.C., Chaloin L., Mery J., Heitz F., Divita G. A novel potent strategy for gene delivery using a single peptide vector as a carrier // Nucleic Acids Res. 1999. — V.27, №. 17. — P.3 510−3 517.
  145. Munne S., Cohen J. Chromosome abnormalities in human embryos. // Hum. Reprod. Update. 1998. — V.4, № 6. — P.842−855.
  146. Munne S., Magli C., Adler A., Wright G., de Boer K., Mortimer D., Tucker M., Cohen J., Gianaroli L. Treatment-related chromosome abnormalities in human embryos. // Hum. Reprod. 1997. — V.12, № 4. — P.780−784.
  147. Muroya S, Nakajima I, Oe M, Chikuni K. Effect of phase limited inhibition of MyoD expression on the terminal differentiation of bovine myoblasts: no alteration of Myf5 or myogenin expression // Dev. Growth Differ. 2005. -V.47, № 7. — P.483−492.
  148. Nakagami H., Morishita R., Maeda K., Kikuchi Y., Ogihara T., Kaneda Y. Adipose tissue-derived stromal cells as a novel option for regenerative cell therapy. // J. Atheroscler. Thromb. 2006. — V.13, № 2. — P.77−81.
  149. Neubert D., Merker H.-J., Kwasigroch T.E. et al. Methods in Prenatal Toxicology.//Germany 1977- 123−125.
  150. Nowak K.J., Davies K.E. Duchenne muscular dystrophy and dystrophin: pathogenesis and opportunities for treatment // EMBO Rep. 2004. — V.5. -P.872−876.
  151. Odagiri Y., Uchida H., Hosokawa M., Takemoto K., Morley A.A., Takeda T. Accelerated accumulation of somatic mutations in the senescence-accelerated mouse. //Nat. Genet. 1998. — V. l9, № 2. — P. 116−117.
  152. Oltvai Z.N., Korsmeyer S.J. Checkpoints of dueling dimers foil death wishes. // Cell. 1994. — V.79, № 21. — P. 189−192.
  153. Oltvai Z.N., Milliman C.L., Korsmeyer S.J. Bcl-2 heterodimerizes in vivo with a conserved homolog, Bax, that accelerates programed cell death. // Cell. -1993.-V.74.-P.609−619.
  154. O’Neill C. Role of autocrine mediators in the regulation of embryo viability: lessons from animal models. // J. Assist. Reprod. Genet. 1998. — V.15, № 8. -P.460−465.
  155. Orgel L.E. The maintenance of the accuracy of protein synthesis and its relevance to ageing. // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 1963. — V.49. — P.517−521.
  156. Ovitt C.E., Scholer H.R. The molecular biology of Oct-4 in the early mouse embryo. // Mol. Hum. Reprod. 1998. — V. 11. — P. 1021 -1031.
  157. Pampfer S. Apoptosis in rodent peri-implantation embryos: differential susceptibility of inner cell mass and trophectoderm cell lineages a review. // Placenta. — 2000. — V.21. Supplement A, Trophoblast Research. V.14. — P. S3-S10.
  158. Pampfer S., Donnay I. Apoptosis at the time of embryo implantation in mouse and rat. // Cell Death Differ. 1999. — V.6. — P.533−545.
  159. Paria BC, Dey SK, Andrews GK. Antisense c-myc effects on preimplantation mouse embryo development. // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. -1992. V.89, № 21. — P. 10 051−10 055.
  160. Perez G.I., Tao X-J, Tilly J.L. Fragmentation and death (a.k.a. apoptosis) of ovulated oocytes. // Mol. Hum. Reprod. 1999. — V.5, № 5. — P.414−420.
  161. Persengiev SP, Zhu X, Green MR Nonspecific, concentration-dependent stimulation and repression of mammalian gene expresssion by small interfering RNAs (siRNAs) // RNA. 2004. — V. 10. — P. 12−18.
  162. Phillips M.I., Kimura B. Antisense therapeutics for hypertension: targeting the renin-angiotensin system //Methods Mol. Med. 2005. — V.106. — P.51−68.
  163. Pignatelli M., Cortes-Canteli M., Santos A., Perez-Castillo A. Involvement of the NGFI-A gene in the differentiation of neuroblastoma cells // FEBS Lett.- 1999. V.461, № 1−2. — P.37−42.
  164. Plank C., Zauner W., Wagner E. Application of membrane-active peptides for drug and gene delivery across cellular membranes. // Adv. Drug Deliv. Rev.- 1998.-V.34, №l.-P.21−35.
  165. Pooga M., Land T., Bartfai T., Langel. PNA oligomers as tools for specific modulation of gene expression. // Biomol. Eng. 2001. — V.17, № 6. — P. 183 192.
  166. Pool T.B. Development of culture media for human assisted reproductive technology. // Fertil. Steril. 2004. — V.81. — P.287−289.
  167. Pope C.E. Embryo technology in conservation efforts for endangered felids. // Theriogenology. 2000. — V.53, № 1. — P. 163−174.
  168. Quinn P., Barros C., Whittingam D.G. Preservation of hamster oocytes to assay the fertilization capacity for human speematozoa. // J. Reprod. Fertil. -1982. V.66, № 1. — P.161−168.
  169. Rappolee D.A., Brenner C.A., Schultz R., Mark D., Werb Z. Developmental expression of PDGF, TGF-alpha, and TGF-beta genes in preimplantation mouse embryos. // Science. 1988. — V.241. — P. 1823−1825.
  170. Reed J.C. Cytochrome c: can’t live with it can’t live without it. // Cell. -1997a. -V.91.-P.559−562.
  171. Reed J.C. Double identity for proteins of the Bcl-2 family. // Nature. -1997b.-V.387.-P.773−776.
  172. Ribas R.C., Taylor J.E., McCorquodale C., Mauricio A.C., Sousa M., Wilmut I. Effect of zona pellucida removal on DNA methylation in early mouse embryos. // Biol. Reprod. 2006. — V.74, № 2. — P.307−313.
  173. Romanov Y.A., Darevskaya A.N., Merzlikina N.V., Buravkova L.B. Mesenchymal stem cells from human bone marrow and adipose tissue: isolation, characterization, and differentiation potentialities // Bull. Exp. Biol. Med. 2005. — V.140, № 1. — P.138−143.
  174. Schmajuk G., Sierakowska H., Kole R. Antisense oligonucleotides with different backbones. Modification of splicing pathways and efficacy of uptake //J. Biol. Chem. 1999. — V.274, № 31. -P.21 783−21 789.
  175. Schultz R.M. Preimplantation embryo development. // Molecular biology in reproductive medicine / Ed. Fauser B.C.J.M., The Parthenon Publishing Group. 1999.-P.313−332.
  176. Schultz R.M., Davis WJr., Stein P., Svoboda P. Reprogramming of gene expression during preimplantation development. // J. Exp. Zool. 1999. -V.285. — P.276−282.
  177. Scott L., Alvero R., Leondires M., Miller B. The morphology of human pronuclear embryos is positively related to blastocyst development and implantation. // Hum. Reprod. 2000. — V.15, № 11. — P.2394−2403.
  178. Semenova M.L., Kramarenko G.G., Aleksandrova A.A., Galllant S., Boldyrev A.A. Na/K-ATPase activity and postimplantation embryo loss in SAMP1 mice. // Ann. reports on SAM studies. 2001. — V.7, № 12/13. — P. 107−108.
  179. Sharpe C.C., Dockrell M.E., Noor M.I., Monia B.P., Hendry B.M. Role of Ras isoforms in the stimulated proliferation of human renal fibroblasts in primary culture // J. Am. Soc. Nephrol. 2000. — V. 11, № 9. — P. 1600−1606.
  180. Sharp P.A. RNAi and double-strand RNA // Genes Dev. 1999. — V.13, № 2. -P.139−141.
  181. Shiel M.J., Caplan M.J. The generation of epithelial polarity in mammmalian and Drosophila embryos. // Dev. Biol. 1995. — V.6. — P.39−46.
  182. Siddall L.S., Barcroft L.C., Watson A.J. Targeting gene expression in the preimplantation mouse embryo using morpholino antisense oligonucleotides. // Mol. Reprod .Dev. 2002. — V.63, № 4. — P.413−421.
  183. Skiadas C.C., Jackson K.V., Racowsky C. Early compaction on day 3 may be associated with increased implantation potential. // Fertil. Steril. 2006. -V.86, № 5. -P.1386−1391.
  184. Solti L., Crichton E.G., Loskutoff N.M., Cseh S. Economical and ecological importance of indigenous livestock and the application of assisted reroduction to their preservation. // Theriogenology. 2000. — V.53, № 1. — P.149−162.
  185. Spanos S., Rice S., Karagiannis P., Taylor D., Becker D.L., Winston R.M.L., Hardy K. Caspase activity and expression of cell deth during development of human preimplantation embryos. // Reproduction. 2002. -V.124. — P.353−363.
  186. Spink N., Brown D.G., Skelly J.N., Neidle S. Sequence-dependent effects in drug-DNA interaction: the crystal structure of Hoechst 33 258 bound to the d (CGCAAATTTGCG) 2 duplex. // Nucleic Acids Res. 1994. — V.22, № 9. -P.1607−1612.
  187. Stein C.A., Cohen J.S. Oligodeoxynucleotides as inhibitors of gene expression: a review. // Cancer Res. 1988. — V.48, № 10. — P.2659−2668.
  188. Suzuki O., Asano T., Yamamoto Y., Takano K., Koura M. Development in vitro of preimplantation embryos from 55 mouse strains. // Reprod. Fertil. Dev.- 1996. V.8, № 6. — P.975−980.
  189. Takeda T., Hosokawa M., Higuchi K. Senescence- accelerated mouse (SAM): a novel murine model of senescence. // Exp. Gerontol. 1997a. — V.32, №½. — P.105−109.
  190. Takeda T., Matsushita T., Kurozumi M., Takemura K., Higuchi K., Hosokawa M. Pathobiology of the senescence-accelerated mouse (SAM). // Exp. Gerontol. 1997b. — V.32, №½. — P. l 17−127.
  191. Tam P.P.L., Rossant J. Mouse embryonic chimeras: tools for studying mammalian development.// Development. 2003. — V. 130, № 25. — P. 61 556 163.
  192. Templeton A., Morris J.K., Parslow W. Factors that affect outcome of in-vitro fertilisation treatment. // Lancet. 1996. — V.348. — P. 1402−1406.
  193. Tilly J.L., Robles R. Apoptosis and its impact in clinical reproductive medicine. // Molecular biology in reproductive medicine / Ed. Fauser B.C.J.M., The Parthenon Publishing Group. 1999. P.79−101.
  194. Tsujimoto Y., Shimizu S. Bcl-2 family: life-or-death switch. // FEBS Lett. -2000.-V.466.-P.6−10.
  195. Van Blerkom J., Davis P., Mathwig V., Alexander S. Domains of high-polarized and low-polarized mitochondria may occur in mouse and human oocytes and early embryos. // Hum. Reprod. 2002. — V.17, № 2. — P.393−406.
  196. Van Blerkom J., Davis P., Alexander S. A microscopic and biochemical study of fragmentation phenotypes in stage-appropriate human embryos. // Hum. Reprod. 2001. — V. 16, № 4. — P.719−729.
  197. Van Blerkom J., Davis P. DNA strand breaks and phosphatidylserine redistribution in newly ovulated and cultured mouse and human oocytes: occurence and relationship to apoptosis. // Hum. Reprod. 1998. — V.13, № 5.1. P.1317−1324.
  198. Van der Auwera I., D’Hooghe T. Superovulation of female mice delays embryonic and fetal development. // Hum. Reprod. 2001. — V.16, № 6. -P.1237−1243.
  199. Vaux D.L., Korsmeyer S.J. Cell death in development. // Cell. 1999. -V.96. -P.245−254.
  200. Vaux D.L., Strasser A. The molecular biology of apoptosis (review). // Proc. Natl. Acad. U.S.A. 1996. — V.93. — P.2239−2244.
  201. Voss A.K., Thomas T., Petrou P., Anastassiadis K., Scholer H., Gruss P. Taube nuss is a novel gene essential for the survival of pluripotent cells of early mouse embryos. // Development. 2000. — V.127. — P.5449−5461.
  202. Waid D.K., McLoon S.C. Ganglion cells influence the fate of dividing retinal cells in culture // Development. 1998. — V.125, № 6. — P. 1059−1066.
  203. Wang X., Sharma R.K., Sikka S.C., Thomas A.J. Jr., Falcone T., Agarwal A. Oxidative stress is associated with increased apoptosis leading to spermatozoa DNA damage in patients with male factor infertility. // Fertil. Steril. 2003. -V.80,№ 3.-P.531−535.
  204. Warner C.M., McElhinny A.S., Wu L., Cieluch C., Ke X., Cao W., Tang C., Exley G.E. Role of the Ped gene and apoptosis genes in control of preimplantation development. // J. Assist. Reprod. Genet. 1998. — V.15, № 5. -P.331−337.
  205. Watson A.J., Barcroft L.C. Regulation of blastocyst formation. // Front. Biosci. 2001. — V.6. — P. d708-d730.
  206. Weigent D.A., Blalock J.E., LeBoeuf R.D. An antisense oligodeoxynucleotide to growth hormone messenger ribonucleic acid inhibits lymphocyte proliferation. // Endocrinology. 1991. — V. 128. — P.2053−2057.
  207. Weiss B., Davidkova G., Zhou L.W. Antisense RNA gene therapy for studying and modulating biological processes. // Cell. Mol. Life Sci. 1999. -V.55, № 3. — P.334−358.
  208. West A.P., Cooke B.A. A novel method to modulate desensitization and truncation of luteinizing hormone receptors using antisense oligodeoxynucleotides. // Mol. Cell. Endocrinol. 1991. — V.79. — P. R9-R14.
  209. Weyermann J., Lochmann D., Zimmer A. Comparison of antisense oligonucleotide drug delivery systems // J. Control. Release. 2004. — V.100. -P.411−423.
  210. Wiley L.M. Trophectoderm: the first epithelium to develop in the mammalian embryo. // Scanning Microsc. 1988. — V.2, № 1. — P.417−426.
  211. Wingard L.B., Brody T.M., Larner J., Schwartz A. Human pharmacology: molecular-to-clinic // United States of America Mosby-Year Book. 1991.
  212. Winston N. Regulation of early embryo development: functional redundancy between cyclin subtypes. // Reprod. Fertil. Dev. 2001. — V.13. -P.59−67.
  213. Wu L., Exley G.E., Warner C.M. Differential expression of Ped gene candidates in preimplantation mouse embryos. // Biol. Reprod. 1998. — V.59. — P.941−952.
  214. Wuu Y.D., Pampfer S., Becquet P., Vanderheyden I., Lee K.H., De Hertogh R. Tumor necrosis factor a decreases the viability of mouse blastocysts in vitro and in vivo. // Biol. Reprod. 1999. — V.60. — P.479−483.
  215. Wu-Pong S. Alternative interpretations of the oligonucleotide transport literature: insights from nature. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2000. — V.44, № 1. -P.59−70.
  216. Wu-Pong S, Weiss TL, Hunt CA. Antisense c-myc oligodeoxyribonucleotide cellular uptake. // Pharm. Res. 1992. — V.9, № 8. -P.1010−1017.
  217. Xu J., Cheung T., Chan S.T., Ho P., Yeung W.S. The incidence of cytoplasmic fragmentation in mouse embryos in vitro is not affected by inhibition of caspase activity. // Fertil. Steril. 2001. — V.75, № 5. — P.986−991.
  218. Yao G.-Q., Sun B.H., Weir E.C., Insogna K.L. A role for cell-surface CSF-1 in osteoblast-mediated osteoclastogenesis // Calcif. Tissue Int. 2002. — V.70. -P.339−346.
  219. Yakubov L.A., Deeva E.A., Zarytova V.F., Ivanova E.M., Ryte A.S., Yurchenko L.V., Vlassov V.V. Mechanism of oligonucleotide uptake by cells: involvement of specific receptors? // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1989. -V.86, № 17. — P.6454−6458.
  220. Yang J., Ding X., Zhang Y., Bo X., Zhang M., Wang S. Fibronectin is essential for hepatitis B virus propagation in vitro: May be a potential cellular target? // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2006. — V.344. — P.757−764.
  221. Yang H. W, Hwang K.J., Kwon H.C., Kim H.S., Choi K.W., Oh K.S. Detection of reactive oxygen species (ROS) and apoptosis in human fragmented embryos. // Hum. Reprod. 1998. — V.4, № 4. — P.998−1002.
  222. Yoshinaga K. Uterine receptivity for blastocyst implantation. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1988. — V.541. — P.424−431.
  223. Yu R.K., Yanagisawa M. Glycobiology of neural stem cells. // CNS Neurol. Disord. Drug Targets. 2006. — V.5, № 4. — P.415−423.
  224. Zakeri Z., Lockshin R.A., Criado-Rodriguez L.M., Martinez-A.C. A generalized caspase inhibitor disrupts early mammalian development. // Int. J. Dev. Biol. 2005. — V.49, № 1. — P.43−47.
  225. Zaletov S., Zaeva V., Semenova M., Zakharova E., Kosheleva N. An antisense approach can improve pregnancy rate. // Abstracts of the 22th Annual Meeting of the ESHRE, Prague, Czech Republic. 2006. — P. 122.
  226. Zamecnik P.C., Stephenson M.L. Inhibition of Rous sarcoma virus replication and cell transformation by a specific oligodeoxynucleotide // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1978. — V. 75, № 1. -P.280−284.
  227. Zander D.L., Thompson J.C., Lane M. Perturbations in mouse embryo development and viability caused by ammonium are more sereve after exposure at the cleavage stages. // Biol. Reprod. 2006. — V.74. — P.288−294.
  228. Zheng P., Schramm R.D., Latham K.E. Developmental regulation and in vitro culture effects on expression of DNA repair and cell cycle checkpoint control genes in rhesus monkey oocytes and embryos. // Biol. Reprod. 2005. -V.72, № 6. P.1359−1369.
  229. Zhou B-B.S., Elledge S.J. The DNA damage response: putting checkpoints in perspective. // Nature. 2000. — V.408. — P.433−439.
  230. Zuk P.A., Zhu M., Mizuno H., Huang J., Futrell J.W., Katz A.J., Benhaim P., Lorenz P., Hedrick M.H. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. // Tissue Eng. 2001. — V.7, № 2. — P.211−228.
  231. Zuker M. Mfold web server for nucleic acid folding and hybridixation prediction. //Nucleic Acids Res. 2003. — V.31, № 13. — P.3406−3415.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!