Π”ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌΡ‹, курсовыС, Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚Ρ‹, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅...
Брочная ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² ΡƒΡ‡Ρ‘Π±Π΅

ΠœΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ β€” ?-Π»ΠΈΠ°Π·Π° Citrobacter freundii: очистка, кристаллизация, Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСскиС ΠΈ каталитичСскиС ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€Ρ‹ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈ Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠΎΠ²

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

Π’ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½Π΅Π΅ дСсятилСтиС, Π² ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½ΠΎΠΌ благодаря Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΡŽ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² рСнтгСноструктурного Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° ΠΈ Π±Ρ‹ΡΡ‚Ρ€ΠΎΠΉ ΠΊΠΈΠ½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠΈ, установлСны Π΄Π΅Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ дСйствия ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚ранствСнныС структуры для ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат-зависимых Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², Π² ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΡƒΡŽ ΠΎΡ‡Π΅Ρ€Π΅Π΄ΡŒ ΠΏΡ€ΠΈΠ½Π°Π΄Π»Π΅ΠΆΠ°Ρ‰ΠΈΡ… ΠΊ ΠΊΠ»Π°ΡΡΡƒ трансфСраз. Π—Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ успСхи достигнуты ΠΈ Π² ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… исслСдованиях. Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ структуры ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° дСйствия… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • Бписок ΠΎΠ±ΠΎΠ·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠΉ ΠΈ ΡΠΎΠΊΡ€Π°Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠΉ

ΠžΠ±Π·ΠΎΡ€ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π°. ΠœΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ, структура ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π² ΠΌΠ΅Π΄ΠΈΡ†ΠΈΠ½Π΅.

1. Π₯имичСскиС основы многообразия Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ, ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат зависимыми Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ.:.Π³.

2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π°: рСакционная ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΈΠ΅ источников.

3: ΠœΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ Π°, Ρƒ-элиминирования ΠΈ Ρƒ-замСгцСния, ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ -Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·ΠΎΠΉ ΠΈ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΠΌΠΈ ΠŸΠ›Π€-зависимыми Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ, ΠΏΡ€ΠΈΠ½Π°Π΄Π»Π΅ΠΆΠ°Ρ‰ΠΈΠΌΠΈ ΠΊ Ρƒ-сСмСйству. «

4. ΠšΡ€ΠΈΡΡ‚Π°Π»Π»ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠ°Ρ структура ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹.

5. ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ Π² ΠΌΠ΅Π΄ΠΈΡ†ΠΈΠ½Π΅.

ΠœΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ β€” ?-Π»ΠΈΠ°Π·Π° Citrobacter freundii: очистка, кристаллизация, Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСскиС ΠΈ каталитичСскиС ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€Ρ‹ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈ Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠΎΠ² (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π€Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹, содСрТащиС Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ ΠΊΠΎΡ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π° ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат, ΠΈΠ³Ρ€Π°ΡŽΡ‚ ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½Π½ΡƒΡŽ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π² Π°Π·ΠΎΡ‚истом ΠΎΠ±ΠΌΠ΅Π½Π΅. Они ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‚ Ρ€Π°Π·Π½ΠΎΠΎΠ±Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Π΅ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ ΠΏΡ€Π΅Π²Ρ€Π°Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠΉ аминокислоттрансаминированиС, Ρ€Π°Ρ†Π΅ΠΌΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡŽ, Π°ΠΈ Π -дСкарбоксилированиС, Ρ€Π΅Ρ‚Ρ€ΠΎ-альдольноС расщСплСниС, (3- ΠΈ Ρƒ-элиминированиС ΠΈ Π·Π°ΠΌΠ΅Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠ΅. Π¦Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат-зависимых Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π² ΠΌΠ΅Ρ‚Π°Π±ΠΎΠ»ΠΈΠ·ΠΌΠ΅ аминокислот ΠΈ Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² опрСдСляСт Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ исслСдования ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ² ΠΈΡ… Π΄Π΅ΠΉΡΡ‚вия ΠΈ Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ ΠΈΡ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ².

ΠœΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π° (КЀ 4.4.1.11) ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат-зависимый Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚, ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΉ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΡŽ Π°, Ρƒ-элиминирования L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π° (ΠΈΠ»ΠΈ Π΅Π³ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ…) с ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ Π°-ΠΊΠ΅Ρ‚ΠΎΠ±ΡƒΡ‚ΠΈΡ€Π°Ρ‚Π°, ΠΌΠ΅Ρ‚Π°Π½Ρ‚ΠΈΠΎΠ»Π° ΠΈ Π°ΠΌΠΌΠΈΠ°ΠΊΠ°: ΠΎ ΠΎ.

Π€Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΡŽ Ρƒ-замСщСния L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π° ΠΈ Π΅Π³ΠΎ Π°Π½Π°Π»ΠΎΠ³ΠΎΠ², Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π°,|3-элиминирования ΠΈ Ρ€-замСщСния L-цистСина ΠΈ Π΅Π³ΠΎ Π°Π½Π°Π»ΠΎΠ³ΠΎΠ².

Π’ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½Π΅Π΅ дСсятилСтиС, Π² ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½ΠΎΠΌ благодаря Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΡŽ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² рСнтгСноструктурного Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° ΠΈ Π±Ρ‹ΡΡ‚Ρ€ΠΎΠΉ ΠΊΠΈΠ½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠΈ, установлСны Π΄Π΅Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ дСйствия ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚ранствСнныС структуры для ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат-зависимых Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², Π² ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΡƒΡŽ ΠΎΡ‡Π΅Ρ€Π΅Π΄ΡŒ ΠΏΡ€ΠΈΠ½Π°Π΄Π»Π΅ΠΆΠ°Ρ‰ΠΈΡ… ΠΊ ΠΊΠ»Π°ΡΡΡƒ трансфСраз. Π—Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ успСхи достигнуты ΠΈ Π² ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… исслСдованиях.

3-ΡΠ»ΠΈΠΌΠΈΠ½ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΈ Π -Π·Π°ΠΌΠ΅Ρ‰Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π»ΠΈΠ°Π·. Однако ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат-зависимой Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Ρƒ-элиминирования аминокислот являСтся ΠΎΠ΄Π½ΠΈΠΌ ΠΈΠ· Π½Π°ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π΅ ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ….

Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ структуры ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° дСйствия ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΠΈΡ‚ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚ΡŒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ Π²Π°ΠΆΠ½Ρ‹Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ΅ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Ρƒ-элиминирования ΠΈ. закономСрностях Π²Π·Π°ΠΈΠΌΠΎΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ структура-функция, ΠΎΠ±Π΅ΡΠΏΠ΅Ρ‡ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π°Π·Π½ΠΎΠΎΠ±Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€Π΅Π²Ρ€Π°Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠΉ аминокислот ΠΏΡ€ΠΈ участии ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΊΠΎΡ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π°.

К Π½Π°ΡΡ‚ΠΎΡΡ‰Π΅ΠΌΡƒ Π²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½ΠΈ Π³Π΅Π½, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρƒ, Π±Ρ‹Π» Π½Π°ΠΉΠ΄Π΅Π½ Π² Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΎΠΌ количСствС сСквСнированных Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠΎΠ² ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ², Π² Ρ‚ΠΎΠΌ числС ΠΈ Π² Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ… ΠΏΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ…. Π€Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Π±Ρ‹Π» Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ Π½Π°ΠΉΠ΄Π΅Π½ Π² ΠΏΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… эукариотах Trichomonas vaginalis ΠΈ Entamoeba hystolytica. Однако этот Π³Π΅Π½ Π½Π΅ Π½Π°ΠΉΠ΄Π΅Π½ Ρƒ ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…. ΠŸΠΎΡΡ‚ΠΎΠΌΡƒ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΌΠΈ эффСктивными Π°Π½Ρ‚ΠΈΠΏΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ срСдствами.

Π’ 70-Ρ… Π³ΠΎΠ΄Π°Ρ… стала извСстна Π°Π±ΡΠΎΠ»ΡŽΡ‚Π½Π°Ρ ΠΏΠΎΡ‚Ρ€Π΅Π±Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… Ρ€Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Π² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π΅ ΠΈ Π² ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½Π΅Π΅ врСмя появляСтся всС большС исслСдований, связанных с ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ ΠΊΠ°ΠΊ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΈΠ²ΠΎΠΎΠΏΡƒΡ…ΠΎΠ»Π΅Π²ΠΎΠ³ΠΎ Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π°. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π²Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ (ΠΊΠ°ΠΊ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°, Ρ‚Π°ΠΊ ΠΈ Π² ΡΠΎΡΡ‚Π°Π²Π΅ Ρ€Π΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠΈ адСновирусного Π²Π΅ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ²) Π² ΠΎΠΏΡƒΡ…ΠΎΠ»Π΅Π²Ρ‹Π΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ ΠΊ ΠΈΡ… Π³ΠΈΠ±Π΅Π»ΠΈ. Π’ Ρ€Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°Ρ… Π² ΠΏΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ствии ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ наблюдалось Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ сниТСниС уровня ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš, ΠΊΠΎΡ€Ρ€Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π²ΡˆΠ΅Π΅ с Π·Π°ΠΌΠ΅Π΄Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ роста ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ.

Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π° Π±Ρ‹Π»Π° ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π° Π² Π³ΠΎΠΌΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠΌ Π²ΠΈΠ΄Π΅ ΡΡ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ Π½Π΅Π΄Π°Π²Π½ΠΎ — Π² 1977 Π³. ΠΈΠ· ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Pseudomonas putida. К Π½Π°ΡΡ‚ΠΎΡΡ‰Π΅ΠΌΡƒ Π²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½ΠΈ ΠΎΡ‡ΠΈΡ‰Π΅Π½Π° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π° Π½Π΅ΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΈΡ… источников (Pseudomonas putida, Pseudomonas ovalis, Aeromonas, Brevibacterium lines, Trichomonas vaginalis, Pseudomonas taetrolens ΠΈ Citrobacter freundii), ΠΎΠ΄Π½Π°ΠΊΠΎ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСских ΠΈ ΠΊΠ°Ρ‚алитичСских свойствах этих Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² вСсьма ΠΎΠ³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅Π½Ρ‹.

Π’ ΡΠ²ΡΠ·ΠΈ с ΠΏΠ΅Ρ€ΡΠΏΠ΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ использования ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ Π² ΠΌΠ΅Π΄ΠΈΡ†ΠΈΠ½Π΅ цСлСсообразно всСстороннС ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹, Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ· Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… источников.

ЦСлью Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ являлось исслСдованиС Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСских ΠΈ ΠΊΠ°Ρ‚алитичСских ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ Citrobacter freundii.

Π’ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ Π±Ρ‹Π»ΠΈ поставлСны ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ:

1)Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° получСния Π³ΠΎΠΌΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ Citrobacter freundii,.

2) ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΡΠ΅ΠΊΠ²Π΅Π½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π³Π΅Π½Π° Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° ΠΈ ΡΠΎΠ·Π΄Π°Π½ΠΈΠ΅ ΡˆΡ‚Π°ΠΌΠΌΠ°-супСрпродуцСнта,.

3) ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ стационарных каталитичСских ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°,.

4) поиск условий выращивания кристаллов ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹, ΠΏΡ€ΠΈΠ³ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… для рСнтгСноструктурных исслСдований.

Бписок ΠΎΠ±ΠΎΠ·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠΉ ΠΈ ΡΠΎΠΊΡ€Π°Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠΉ.

АГВ — Об-Π°Π»ΠΊΠΈΠ»Π³ΡƒΠ°Π½ΠΈΠ΄ΠΈΠ½-Π”ΠΠš алкилтрансфСраза, ДНЀГ — 2,4-Π΄ΠΈΠ½ΠΈΡ‚Ρ€ΠΎΡ„Π΅Π½ΠΈΠ»Π³ΠΈΠ΄Ρ€Π°Π·ΠΈΠ½, Π”Π’Π’ — Π΄ΠΈΡ‚ΠΈΠΎΡ‚Ρ€Π΅ΠΈΡ‚ΠΎΠ»,.

ДЭАЭ-Ρ†Π΅Π»Π»ΡŽΠ»ΠΎΠ·Π° — диэтиламиноэтил Ρ†Π΅Π»Π»ΡŽΠ»ΠΎΠ·Π°, Π›Π”Π“ — Π»Π°ΠΊΡ‚Π°Ρ‚Π΄Π΅Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ³ΠΈΠ½Π°Π·Π° Ρ‚ΠΈΠΏ II ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ†Ρ‹ ΠΊΡ€ΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°, ΠŸΠΠΠ“ — ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ°ΠΊΡ€ΠΈΠ»Π°ΠΌΠΈΠ΄Π½Ρ‹ΠΉ гСль, ΠŸΠ›Π€ — ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ΄ΠΎΠΊΡΠ°Π»ΡŒ-5'-фосфат,.

ΠŸΠ­Π“ ΠœΠœΠ•— полиэтилСн гликоль ΠΌΠΎΠ½ΠΎΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ эфир,.

5−10 Π’Π“Π€ — N5-N10-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»Π΅Π½-Ρ‚Π΅Ρ‚Ρ€Π°Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΠ»Π°Ρ‚.

ЀМБЀ — Ρ„Π΅Π½ΠΈΠ»ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»-ΡΡƒΠ»ΡŒΡ„ΠΎΠ½ΠΈΠ»Ρ„Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠ΄,.

Π₯ЭНМ — хлорэтилнитрозомочСвина,.

ЭДВА — этилСндиаминтСтрауксусная кислота,.

LB-срСда — Lauria-Bertani срСда,.

NADH — Π½ΠΈΠΊΠΎΡ‚ΠΈΠ½Π°ΠΌΠΈΠ΄ Π°Π΄Π΅Π½ΠΈΠ½ Π΄ΠΈΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄ фосфат, восстановлСнная Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°, rMGL — ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π°, Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Π½Ρ‚Π½Ρ‹ΠΉ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚.

ΠžΠ±Π·ΠΎΡ€ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹.

ΠœΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π°. ΠœΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ, структура ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π² ΠΌΠ΅Π΄ΠΈΡ†ΠΈΠ½Π΅.

Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ очистки ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ ΠΈΠ· ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Citrobacter freundii.

2. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π° нуклСотидная ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° хромосомы Citrobacter freundii, содСрТащая Π³Π΅Π½, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρƒ. Для супСрпродукции ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ Citrobacter freundii сконструирована гибридная ΠΏΠ»Π°Π·ΠΌΠΈΠ΄Π° pET-mgl. Π Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ‚Π½Ρ‹ΠΉ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ Π² Π³ΠΎΠΌΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠΌ Π²ΠΈΠ΄Π΅.

3. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Ρ‹ кинСтичСскиС ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€Ρ‹ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ Π°, ΡƒΠΈ ΠΎΡ, (3-элиминирования ряда субстратов для эндогСнного ΠΈ Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ². УстановлСны Π·Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ различия ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² kcat ΠΈ ΠšΠΌ ΠΎΡ‚ Π°Π½Π°Π»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² для ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ ΠΈΠ· Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… источников.

4. Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½Ρ‹ спСктры поглощСния ΠΈ ΠΊΡ€ΡƒΠ³ΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ Π΄ΠΈΡ…Ρ€ΠΎΠΈΠ·ΠΌΠ° Ρ…ΠΎΠ»ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€Π΅Π½Π½ΠΈΠΉ альдимин ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ Π² ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΈ Π·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠΉ рН 6,0−8,0 сущСствуСт Π² ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ΅, Π² ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΉ ΠΏΡ€Π΅ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΌ являСтся Ρ‚Π°ΡƒΡ‚ΠΎΠΌΠ΅Ρ€ ΠΊΠ΅Ρ‚ΠΈΠΌΠΈΠ½Π°.

5. ИсслСдована рН-Π·Π°Π²ΠΈΡΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π°, Ρƒ-элиминирования L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π° ΠΈ ΠΏΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½Π° кинСтичСская схСма Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ. Π”Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ… Ρ‚ΠΈΠΏΠΎΠ² кинСтичСских ΠΈΠ·ΠΎΡ‚ΠΎΠΏΠ½Ρ‹Ρ… эффСктов Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π°, Ρƒ-элиминирования L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π° ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π»ΠΈ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ стадии ΠΎΡ‚Ρ€Ρ‹Π²Π° ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΠ½ΠΎΠ² ΠΎΡ‚ Π°ΠΈ |3-Π°Ρ‚ΠΎΠΌΠΎΠ² ΡƒΠ³Π»Π΅Ρ€ΠΎΠ΄Π° Π½Π΅ ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ся ΡΠΊΠΎΡ€ΠΎΡΡ‚ΡŒ-Π»ΠΈΠΌΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌΠΈ.

6. ΠŸΠΎΠ΄ΠΎΠ±Ρ€Π°Π½Ρ‹ условия получСния кристаллов ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ Citrobacter freundii, ΠΏΡ€ΠΈΠ³ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… для рСнтгСноструктурного Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π°. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Ρ‹ кристаллы, позволившиС ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚Ρ€Π°Π½ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΡƒΡŽ структуру Ρ…ΠΎΠ»ΠΎΡ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° с Ρ€Π°Π·Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ 1,9 А.

Настоящая Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° финансово ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½Π° Π³Ρ€Π°Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ Российского Π€ΠΎΠ½Π΄Π° Ρ„ΡƒΠ½Π΄Π°ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… исслСдований (№ 99−449 251, 02−04−48 010), Π³Ρ€Π°Π½Ρ‚ΠΎΠΌ ΠŸΡ€Π΅Π·ΠΈΠ΄Π΅Π½Ρ‚Π° Π Π€ ΠΏΠΎ ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠΊΠ΅ Π²Π΅Π΄ΡƒΡ‰ΠΈΡ… Π½Π°ΡƒΡ‡Π½Ρ‹Ρ… школ НШ-1800.2003.4.

Автор приносит Π±Π»Π°Π³ΠΎΠ΄Π°Ρ€Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π΄.Ρ….Π½. Π’. Π’. Π”Π΅ΠΌΠΈΠ΄ΠΊΠΈΠ½ΠΎΠΉ Π·Π° Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎΠ΅ руководствочлСн-ΠΊΠΎΡ€. РАН, ΠΏΡ€ΠΎΡ„. А. Π“. Π“Π°Π±ΠΈΠ±ΠΎΠ²Ρƒ Π·Π° ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚ΠΈΠ΅ Π² ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠΈ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ²ΠΊ.Ρ….Π½. A.M. ΠšΡ€ΠΈΡ†Ρ‹Π½Ρƒ Π·Π° ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚ΠΈΠ΅ Π² ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠΈ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ²ΠΊ.Ρ….Π½. Н. Π“. Π€Π°Π»Π΅Π΅Π²Ρƒ Π·Π° ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚ΠΈΠ΅ Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅, обсуТдСнии Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² ΠΈ ΡΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· [Π°HJ-L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π°- [сс, Π , РН3]-Π¬-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π°ΠΏΡ€ΠΎΡ„. Π“. Π‘. Π—Π°Π²ΠΈΠ»ΡŒΠ³Π΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΠΌΡƒ, ΠΊ.Π±.Π½. И. ΠœΠ°Π½ΡƒΡ…ΠΎΠ²Ρƒ, ΠΊ.Π±.Π½. Π‘. РасторгуСву Π·Π° ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚ΠΈΠ΅ Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ ΠΏΠΎ ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΏΡ€ΠΎΡ„. М. Π‘. Π“Π°Ρ€Π±Π΅Ρ€, ΠΊ.Π±.Π½. А. Π”. Никулину, ΠΊ.Ρ….Π½. Π‘. Π’. Π Π΅Π²Ρ‚ΠΎΠ²ΠΈΡ‡,* ΠΊ.Π±.Π½. Π‘. Π’. Никонову Π·Π° Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ΅ участиС Π² Ρ€Π°ΡΡˆΠΈΡ„Ρ€ΠΎΠ²ΠΊΠ΅ кристалличСской структуры Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΊ.Ρ„.ΠΌ.Π½. Н. П. Π‘Π°ΠΆΡƒΠ»ΠΈΠ½ΠΎΠΉ Π·Π° ΠΎΠ±Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΡƒ ΠΈ ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΡΠΏΠ΅ΠΊΡ‚Ρ€Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ…ΠΏΡ€ΠΎΡ„. Н. Π‘. АндрССвой Π·Π° ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² ΠΏΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ΅ тСкста диссСртацииН.И.Π‘ΠΈΠ½ΠΈΡ†Ρ‹Π½ΠΎΠΉ ΠΈ ΠΊ.Ρ….Π½. Π›. Н. Π—Π°ΠΊΠΎΠΌΡ‹Ρ€Π΄ΠΈΠ½ΠΎΠΉ Π·Π° ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚ΠΈΠ΅ Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ΠΊ.Ρ….Π½. М. Π’. Π‘Π°Ρ€Π±ΠΎΠ»ΠΈΠ½ΠΎΠΉ Π·Π° ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚ΠΈΠ΅ Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ ΠΏΠΎ ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ ΠΈ Π² ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠΈ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ²ΠΊ.Ρ….Π½. Π’. Π’. ΠšΡƒΠ»ΠΈΠΊΠΎΠ²ΠΎΠΉ Π·Π° ΠΊΡ€ΠΈΡ‚ичСскоС Ρ‡Ρ‚Π΅Π½ΠΈΠ΅ рукописи ΠΈ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² ΠΏΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ΅ тСкста диссСртациик.Ρ….Π½. А. М. Никитину Π·Π° ΠΊΡ€ΠΈΡ‚ичСскиС замСчания ΠΈ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠΈ Ρ„ΠΎΡ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΉ кристаллов фСрмСнтасотрудникам Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ химичСских основ Π±ΠΈΠΎΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π° ΠΈ Π²ΡΠ΅ΠΌ сотрудникам Π˜ΠœΠ‘ РАН Π·Π° ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Gyorgy P. The history of vitamin B6. I/The American journal of clinical nutrition, 1956, v.4, 4, p.313−317.
  2. Umbreit W.W. and Gunsalus I.C. The function of pyridoxine derivatives: arginine and glutamic acid decarboxylases. IIJ Biol Chem, 1945, v. 159, p.333−341.
  3. Π”. Биохимия. Π₯имичСскиС Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π² ΠΆΠΈΠ²ΠΎΠΉ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ΅. М., ΠœΠΈΡ€, 1980, Ρ‚.2, с. 75.
  4. John R.A. Pyridoxal phosphate-dependent enzymes. Review. IIBiochimica et Biophysica Acta, 1995, v.1248, 2, p.81−96.
  5. A.E., ШСмякин M.M. ВСория процСссов аминокислотного ΠΎΠ±ΠΌΠ΅Π½Π°, ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… пиридоксалСвыми энзимами. //Биохимия, 1953, Ρ‚. 18, с. 393−411.
  6. Metzler, D.E., Ikawa, М., and Snell- Π•.Π•., Transamination of Pyridoxamine and Amino Acids with Glyoxylic Acid. //J.Amer.Chem.Soc., 1954, 76, 644−648.
  7. Clausen Π’., Laber B. and Messerschmidt A. Mode of action of cystathionine (3-lyase. //Biol. Chem., 1997, v. 378, p. 321−326.
  8. Dunathan H.C. Conformation and reaction specificity in pyridoxal phosphate enzymes. UProc. Natl. Acad. Sci. USA, 1966, 55, 712−716.
  9. A.C. & Kirsch J.F. Pyridoxal phosphate enzymes: mechanistic, structural, and evolutionary considerations. HAnnu. Rev. Biochem., 2004, v.73, p.383−415.
  10. V.I. & Karpeisky M.Ya. Dynamic three-dimensional model for enzymic transamination. //Adv. Enzymol. Relat. Areas Mol. Biol. 1969, 32, 21−53.
  11. Enzyme Nomenclature, Recommendations of the Nomenclature Committee of the International Union of Biochemistry and Molecular Biology. Acad. Press, 2002.
  12. Tanaka H., Esaki N., Soda K. A versatile bacterial enzyme: L-methionine y-lyase. //Enzyme Microb. Technol., 1985, v. 7, p.530−537.
  13. Tanaka H., Esaki N., Soda K. Synthesis of optically active sulfur and selenium amino acids with microbial enzymes. HAppl. Biochem. Biotechnol. 1985, 11 71−82.
  14. Alexander F.W., Sandmeier E., Mehta P.K., Christen P. Evolutionary relationships among pyridoxal-5'-phosphate-dependent enzymes: regio-specific a, P and y-families. //Eur. J. Biochem., 1994, v. 219, p. 953−960.
  15. Kreis W., Hession C. Isolation and purification of L-methionine-alpha-deamino-mercaptomethane-lyase (L-methioninase) from Clostridium sporogenes. //Cancer Res 1973, 33, 1862−1865
  16. Π’.И., Π‘Π΅Ρ€Π΅Π·ΠΎΠ² Π’. Π’., Π—Π°Π½ΠΈΠ½ Π’. А. Π¨Ρ‚Π°ΠΌΠΌ Pseudomonas taetrolens Π’ΠšΠœΠ’-904 ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΡ†Π΅Π½Ρ‚ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹: АвторскоС ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΠΎ 967 077, 1982.
  17. Nakayama Π’., Esaki N., Lee W.J., Tanaka I., Tanaka H., Soda К., Purification and properties of L-methionine y-lyase from Aeromonas sp. l/Agric. Biol. Chem., 1984, v. 48, p. 2367−2369.
  18. Esaki N., Soda K. L-methionine gamma-lyase from Pseudomonas putida and Aeromonas. //Methods Enzymol., 1987, v. 143, p. 459−465.
  19. Kobayashi Π’., Hakamada Y., Adachi S., Hitomi J., Yoshimatsu Π’., Koike K., Kawai S. and Ito S. Purification and properties of an alkaline protease from alkalophilic Bacillus sp. KSM-K16 HAppl. Microbiol. Biotechnol., 1995, v. 43 (3), p. 473−481.
  20. Faleev N.G., Troitskaya M.V., Paskonova E.A., Saporovskaya M.B., Belikov V.M. L-Methionine y-lyase in Citrobacter intermedius cells: Stereochemical requirements with respect to the tiol structure. //Enzyme Microb. Technol., 1996, v. 19, p. 590−593.
  21. Tanaka H., Esaki N., Soda K. Properties of L-methionine gamma-lyase from Pseudomonas ovalis. //Biochemistry, 1977, v. 16, p. 100 106.
  22. Dias Π’., Weimer B. Purification and characterization of L-methionine y-lyase from Brevibacterium lines B12. HAppl. Environ. Microbiol., 1998, v. 64 (9), p. 3327−3331.
  23. Yoshimura M., Nakano Y., Yamashita Y., Oho Π’., Saito Π’., Koga T. Formation of methyl mercaptan from L-methionine by Porphyromonas gingivalis. //Infect. Immun. 2000, v. 68, p. 6912−6916.
  24. M., Nakano Y., Fukamachi H., Koga T. 3-Chloro-DL-alanine resistance by L-methionine-alpha-deamino-gamma-mercaptomethane-lyase activity. IIFEBS Lett., 2002, v. 523(1−3), p. 119−122.
  25. Takami H., Takaki Y., Uchiyama I. Genome sequence of Oceanobacillus iheyensis isolated from the Iheya Ridge and its unexpected adaptive capabilities to extreme environments. //Nucleic Acids Res., 2002, v. 30 (18), p. 3927−3935.
  26. Tokoro M., Asai Π’., Kobayashi S., Takeuchi Π’., and Nozaki T. Identification and characterization of two isoenzymes of methionine y-lyase from Entamoeba histolytica. IIJ. Biol. Chem., 2003, v. 278, p. 42 717−42 727.
  27. Daraselia N., Dernovoy D., Tian Y., Borodovsky M., Tatusov R., Tatusova T. Reannotation of Shewanella oneidensis genome. HOMICS, 2003, v. 7 (2), p. 171−175.
  28. Brettin T.S., Bruce D., Challacombe J.F., Gilna P., Han C., Hill K., Hitchcock P., Jackson P., Keim P., Longmire J., Lucas S., Okinaka R., Richardson P., Rubin E. and Tice H. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP085976.
  29. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP603484.
  30. Giovannoni S.J., Cho J.-C., Ferriera S., Johnson J., Kravitz S., Halpern A., Remington K., Beeson K., Tran Π’., Rogers Y.-H., Friedman R. and Venter J.C. //Direct Submission, Proteins, ACCESSION YP458784.
  31. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION ZP00606108.
  32. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter J.C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP525366.
  33. Copeland A., Lucas- S., Lapidus A., Barry K., Detter J.C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP484072.
  34. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION ZP00587584.
  35. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION ZP01435953.
  36. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter C., Glavina i Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP563524.
  37. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP750060.
  38. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter J.C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP738587.
  39. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter J.C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P: //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION ZP00815415.
  40. Copeland A., Lucas S., Lapidus A., Barry K., Detter C., Glavina Π’., Hammon N., Israni S., Pitluck S. and Richardson P. //Direct Submission, ENTREZ, Proteins, ACCESSION YP614731.
  41. Fukamachi H., Nakano Y., Okano S., Shibata Y., Abiko Y., Yamashita Y. High production of methyl mercaptan by L-methionine-alpha-deamino-gamma-mercaptomethane lyase from Treponema denticola. /1Biochem. Biophys. Res. Commun., 2005, v. 331(1), p. 127 131. i
  42. Esaki N., Suzuki Π’., Tanaka H., Soda K., Rando R.R. Deamination and gamma-addition reactions of vinylglycine by L-methionine gamma-lyase. //FEBS Lett., 1977, v. 84 (2), p. 309−312.
  43. Johnston M., Jankowski D., Marcotte P., Tanaka H., Esaki N., Soda K. and Walsh Ch. Suicide inactivation of bacterial cystathionine y-synthase and methionine y-lyase during processing of propargylglycine. //Biochemistry, 1979, v. 18, p. 4690−4701.
  44. Johnston M., Raines R, Chang M., Esaki N., Soda K., Walsh C. Mechanistic studies on reactions of bacterial methionine gamma-lyase with olefinic amino acids. //Biochemistry, 1981, v. 20 (15), p. 43 254 333.
  45. N., Nakayama Π’., Sawada S., Tanaka H., Soda K. !H NMR studies of substrate hydrogen exchange reactions catalyzed by L-methionine gamma-lyase. //Biochemistry, 1985, v. 24 (15), p. 38 573 862.
  46. Inoue H., Inagaki K., Adachi N., Tamura Π’., Esaki N., Soda K. and Tanaka H. Role of Tyrosine 114 of L-methionine y-lyase from Pseudomonas putida. UBiosci. Biotechnol. Biochem., 2000, v. 64 (11), p. 2336−2343.
  47. Christen P., Mehta P.K. From cofactor to enzymes. The molecular evolution of pyridoxal-5'-phosphate-dependent enzymes. Review. HChem Rec., 2001, v. 1 (6), p. 436−447.
  48. Johnston M., Marcotte P., Donovan J., Walsh C. Mechanistic studies with vinylglycine and beta-haloaminobutyrates as substrates for cystathionine gamma-synthetase from Salmonella typhimurium. IIBiochemistry, 1979, v. 18, p. 1729−1738.
  49. Guggenheim S. and Flavin M. Cystathionine gamma-synthase from Salmonella. //J. Biol. Chem., 1971, v. 246, p. 3562−3568.
  50. Silverman R.B., Abeles R.H. Mechanism of inactivation of gamma-cystathionase by beta, beta, beta trifluoroalanine. 11 Biochemistry, 1977, v. 16 (25), p. 5515−5520.
  51. Lockwood B.C. and Coombs G.H. Purification and characterization of methionine y-lyase from Trichomonas vaginalis. 11 Biochem. J., 1991, v. 279, p. 675−682.
  52. Tanaka H., Esaki N., Yamamoto Π’., Soda K. Purification and properties of methioninase from Pseudomonas ovalis. IIFEBS Letters, 1976, v. 66, p.307−311.
  53. Flavin M. and Guggenheim S., in Yamada K., Katunuma N. and Wada H. (Editors), Symposium on pyridoxal enzymes, Maruzen Company, Ltd., Tokyo, 1968, p.89.
  54. Davis L., and Metzler D.E. Pyridoxal-linked elimination and replacement reactions. In: The Enzymes (3rd Ed.) Ed. Boyer P.D., Wiley and Sons, N.Y., 1972, v. 3, p. 33−74.
  55. R.G., Korpela Π’., Martell A.E. Matsushima Y., Metzler C.M., Metzler D.E. Morozov Y.V., Ralston I.M., Savin F.A., Torchinsky Y.M. & Ueno H. The Transaminases, New York, Wiley, 1985, p. 37−105.
  56. Karube Y. and Matsushima Y. A model for an intermediate in pyridoxal catalyzed gamma-elimination and gamma-replacement reactions of amino acids. IIJ. Am. Chem. Soc., 1977, v. 99, p. 13 561 358. β€’
  57. D.E., Harris C.M., Johnston R.J., Siano D.B. & Thomson J.A. Spectra of 3-hydroxypyridines. Band-shape analysis and evaluation of tautomeric equilibria. ПBiochemistry, 1973, v. 12, p. 5377−5392.
  58. Walsh C. Enzymatic Reaction Mechanism- Freeman, San Francisco, 1979, p. 777−827.
  59. B.I. & Flavin M. Cystathionine-synthase. The nature of intramolecular proton shifts in the elimination reaction. IIJ. Biol. Chem., 1972, v. 247, p. 6412−6419.
  60. Jansonius J.N. Structure, evolution and action of vitamin B6-dependent enzymes. //Curr. Opin. Struct. Biol., 1998, v. 8(6), p. 75 969. Review.
  61. Grishin N.V., Phillips M.A., Goldsmith E.J. Modeling of the spatial structure of eukaryotic ornithine decarboxylases. //Protein Sci., 1995, v. 4(7), p. 1291−1304.
  62. Qu K., Martin D.L., Lawrence C.E. Motifs and structural fold of the cofactor binding site of human glutamate decarboxylase. //Protein ScL, 1998, v. 7(5), p. 1092−1105.
  63. Revtovich S.V., Mamaeva D.V., Morozova E.A., Nikulin A.D., Nikonov S.V., Garber M.B., Demidkina T.V. Crystal Sructure of Citrobacter freundii L-methionine-lyase, 2004, PDB: 1Y4I.
  64. Sato D., Yamagata W., Kamei K., Nozaki Π’., Harada S. Expression, purification and crystallization of L-methionine gamma-lyase 2 from Entamoeba histolytica. IIActa Crystallograph. Sect. F Struct. Biol. Cryst. Commun., 2006, v. 62, p. 1034−1036.
  65. Clausen Π’., Huber R., Laber Π’., Pohlenz H., and Messerchmidt A Crystal structure of pyridoxal 5'-phosphate dependent cystathionine (3-lyase from E. Coli at 1.83 A. IIJ. Mol. Biol., 1996, v. 262, p. 202 -224.
  66. Kack H., Sandmark J., Gibson K., Schneider G., Lindqvist Y. Crystal structure of diaminopelargonic acid synthase: evolutionaryrelationships between pyridoxal-5'-phosphate-dependent enzymes. //J. Mol. Biol., 1999, v. 291(4), p. 857−876.
  67. Mamaeva D.V., Morozova E.A., Nikulin A.D., Revtovich S.V., Nikonov S.V., Garber M.B., and Demidkina T.V. Structure of Citrobacter freundii L-methionine gammarlyase. HActa Crystallograph. Sect. F Struct. Biol. Cryst. Commun., 2005, v. 61, p.546.549.
  68. Tanaka H., Yamada H., Esaki N., Soda K. Selective determination of L-methionine and L-cysteine with bacterial L-methionine y-lyase and antitumor activity of the enzyme. IIJ. Appl. Biochem., 1980, v. 2, p. 439−444.
  69. Fung K.W., Kuan S.S., Sung H.Y., Guilbault G.G. Methionine selective enzyme electrode. 11 Anal. Chem., 1979, v. 51, p. 2319−2324.
  70. Yoshimura M., Nakano Y., Koga T. L-Methionine-gamma-lyase, as a target to inhibit malodorous bacterial growth by trifluoromethionine. 11 Biochem. Biophys. Res. Commun., 2002, v.292(4), p. 964−968.
  71. Nakano Y., Yoshimura M., Koga T. Methyl mercaptan production by periodontal bacteria. Hint. Dent. J., 2002, v. 3, p. 217−220.
  72. Arfi K., Amarita F., Spinnler H.E., Bonnarme P. Catabolism of volatile sulfur compounds precursors by Brevibacterium linens and Geotrichum candidum, two microorganisms of the cheese ecosystem. IIJ Biotechnol., 2003, v. 105(3), p. 245−253.
  73. Bonnarme P., Lapadatescu C., Yvon M., Spinnler H.E. L-methionine degradation potentialities of cheese-ripeningmicroorganisms. IIJ Dairy Res., 2001, v. 68(4), p. 663−674.
  74. Amarita F., Requena Π’., Taborda G., Amigo L., Pelaez C. Lactobacillus casei and Lactobacillus plantarum initiate catabolism of methionine by transamination. IIAppl Microbiol., 2001, v. 90(6), p. 971−978.
  75. Bonnarme P., Psoni L., Spinnler H.E. Diversity of L-methionine catabolism pathways in cheese-ripening bacteria. IIAppl Environ Microbiol., 2000, v. 66(12), p. 5514−5517.
  76. Dias Π’., Weimer B. Conversion of methionine to thiols by lactococci, lactotiacilli, and- brevibacteria. IIAppl Environ Microbiol., 1998, v. 64(9), p. 3320−3326.
  77. Weimer Π’., Seefeldt K., Dias B. Sulfur metabolism in bacteria associated3 with cheese. Review. IIAntonie Van Leeuwenhoek., 1999, v. 76(1−4), p. 247−261.
  78. Hoffman R.M. Methioninase: A therapeutic for diseases, related-to altered-methionine metabolism and transmethylation: cancer, heart disease, obesity, aging, and Parkinson’s disease. Ulluman Cell, 1 997, v. 10, p. 69−80.
  79. Cellarier E., Durando X., Vasson M.P., Farges M.C., Demiden A., Maurizis J.C., Madelmont J: C. and Chollet P. 11 Cancer Treat Rev., 2003, v. 29, p. 489−499.
  80. Jones P.A. Death and methylation. //Nature, 2001, v. 409, p. 141 144.
  81. Breillout F., Antoine E., Poupon M.F. Methionine dependency of malignant tumors: a possible approach for therapy. IIJ Natl Cancer Inst., 1990, v. 82, p. 1628−1632.
  82. Hoffman R.M. Altered methionine metabolism and transmethylation in cancer. IIAnticancer Res., 1985, v. 5, p. 1−30.
  83. Kokkinakis D.M., Hoffman R.M. Frenkel E.P., et al. Synergy between methionine stress and chemotherapy in the treatment of brain tumor xenografts in athymic mice. 11 Cancer Res., 2001, v. 61, p. 40 174 023.
  84. Poirson-Bichat F., Goncalves RA, Miccoli L., Dutrillaux Π’., Poupon MF. Methionine depletion enhances the antitumoral efficacy of cytotoxic agents in drug-resistant human tumor xenografts. HClin. Cancer Res., 2000, v. 6, p. 643−653.
  85. Guo HY, Herrera H., Groce A., Hoffman RM, Expression of the biochemical defect of methionine dependence in fresh patient tumors in primary histoculture. 11 Cancer Res., 1993, v. 53, p. 2479−2483.
  86. Halpern B.C., Clark B.R., Hardy D.N., Halpern R.M., Smith R.A. The effect of remplacement of methionine by homocysteine on survival of malignant and normal adult mammalian cells in culture. I/Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1974, v. 71, p. 1 133−1 136.
  87. Stern P.H., Hoffman R.M. Enhanced in vitro selective toxicity of chemotherapeutic agents for human cancer cells based on a metabolic defect. HJ. Natl. Cancer Inst., 1986, v. 76, p. 629−639.
  88. Hoffman R.M. Methionine dependence in cancer cells A review. Illn Vitro, 1982, v. 18, p. 421−428.
  89. Kreis W., Baker A., Ryan V., Bertasso A. Effect of nutritional and enzymatic methionine deprivation upon human normal and malignant cells in tissue culture. I/Cancer Res., 1980, v. 40, p. 634 641.
  90. Mecham J.O., Rowitch D., Wallace C.D. Stern P.H., Hoffman R.M. The methabolic defect of methionine dependence occurs frequently in human tumor cell lines. //Biochem Biophys Res Commun, 1983, v. 117, p.429−434.
  91. Ashe H., Clark BR, Chu F., et al. N5-methyltetrahydrofolate: homocisteine methyltransferase activity in extracts from normal, malignant and embryonic tissue culture cells. IIBiochem Biophys Res Commun., 1974, v. 57, p. 417−425.
  92. Poirier L.A., Wilson M.J. The elevated requirement for methionine by transformed rat liver epithelial cells in vitro. IIAnn N Y Acad Sci., 1980, v. 349, p. 283−293.
  93. Kenyon S.H., Waterfield C.J., Timbrell J.A., Nicolaou A. Methionine synthase activity and sulphur amino acid levels in the rat liver tumor cells HTC and Phi-1. IIBiochem Pharmacol., 2000, v. 63, p. 381−391.
  94. Judde J.G., Ellis M., Frost P. Biochemical analysis of the role of transmethylation in the methionine dependence of tumor- cells. //Cancer Res., 1989, v. 49, p. 4859−4865.
  95. Liteplo R.G., Hipwell S.E., Rosenblatt D.S., Sillaots S., Lue-Shing H. Changes in cobalamin metabolism are associated with the altered methionine auxotrophy of highly growth autonomous human melanoma cells. HJ Cell Physiol, 1991, v. 149, p. 332−338.
  96. Fiskerstrand Π’., Christensen Π’., Tysnes O.B., Ueland P.M., Refsum H. Development and reversion of methionine dependence in a human glioma cell line: relation to homocysteine remethylation and cobalamin status. HCancer Res., 1994, v. 54, p. 4899−4906.
  97. Jacobsen S.J., North J.A., Rao N.A., Mangum J.H. 5-Methyltetrahydrofolate: synthesis and utilization in normal and SV40transformed BHK-21 cells. UBiochem Biophys Res Commun, 1977, v. 76, p. 46−53.
  98. Frosst P., Blom H.J., Milos R., et al. A candidate genetic risk factor for vascular disease: a common mutation in methylentetrahydrofolate reductase. //Nat Genet, 1995, v. 10, p. 111 113.
  99. Van der Put N.M., Gabreels F., Stevens E.M., et al. A second common mutation in the methylentetrahydrofolate reductase gene: an additional risk factor for neural-tube defects? //Am J Hum Genet, 1998, v. 62, p. 1044−1051.
  100. Bergstrom M., Ericson K., Hagenfeldt L., et al. PET study of methionine accumulation in glioma and normal brain tissue: competition with branched chain amino acids. HJ Comput Assist Tomogr, 1987, v. 11, p. 208−213.
  101. Zingg J.M., Jones P.A., Genetic and epigenetic aspects of DNA methylation on genome expression, evolution, mutation and carcinogenesis. //Carcinogenesis, 1997, v. 18, p. 869−882.
  102. Baylin S.B., Herman J.G., Graff J.R., Vertino P.M., Issa J.P. Alterations in DNA methylation: a fundemental aspect of neoplasia. HAdv Cancer Res., 1998, v. 72, p. 141−196.
  103. Dumontet C., Roch A.M., Quash G. Methionine dependence of tumor cells: programmed cell survival? //Oncol Res., 1996, v. 8, p. 469−471.
  104. Fitchen J.H., Riscoe M.K., Dana B.W., Lawrence H.J., Ferro A.J. Methylthioadenosine phosphorylase deficiency in human leukemias and solid tumors. //Cancer Res., 1986, v. 46, p. 5409−5412.
  105. Nobori Π’., Szinai I., Amox D., et al. Methylthioadenosine phosphorylase deficiency in human non-small cell lung cancers. //Cancer Res., 1993, v. 53, p. 1098−1101.
  106. Traweek S.T., Riscoe M.K., Ferro A.J., Braziel R.M., Magenis R.E., Fitchen J.H. Methylthioadenosine phosphorilase deficiency in acute leukemia: pathologic, cytogenetic, and clinical features. IIBlood, 1988, v. 71, p. 1568−1573.
  107. Nobori Π’., Karras J.G., Delia Ragione F., Waltz T.A., Chen P.P., Carson D.A. Absence of methylthyoadenosine phosphorylase in human gliomas. UCancer Res., 1991, v. 51, p. 3193−3197.
  108. Ogier G., Chantepie J., Deshayes C., et al. Contribution of 4-methylthio-2-oxobutanoate and its transaminase to the growth of methionine-dependent cells in culture. Effect of transaminase inhibitors. 11 Biochem Pharmacol,. 1993, v. 45, p. 1631−1644.
  109. Tang Π’., Li Y.N., Kruger W.D. Defects in methylthioadenosine phosphorylase are associated with but not responsible for methionine-dependent tumor cell growth. UCancer Res., 2000, v. 60, p. 55 435 547.
  110. Kreis W., Hession C. Biological effects of enzymatic deprivationof L-methionine in cell culture and an experimental tumor. UCancer
  111. Res., 1973, v. 33, p. 1866−1869.
  112. Tan Y., Xu M., Guo H., Sun X., Kubota Π’., Hoffman RM. Anticancer efficacy of methioninase in vivo. //Anticancer Res., 1996, v. 16, p. 3931−3936.
  113. Hori H., Takabayashi K., Orvis L., Carson DA, Nobori Π’., Gene cloning and characterization of Pseudomonas putida L-methionine alpha-deamino-gamma-mercaptomethane-lyase. UCancer Res., 1996, v. 56, p. 2116−2122.
  114. Tan Y., Zavala Sr.J., Xu M., Zavala Jr. J, Hoffman RM. Serum methionine depletion without side effects by methioninase in metastatic breast cancer patients. 11 Anticancer Res., 1996, v. 16, p. 3937−3942.
  115. Tan Y., Zavala Sr.J., Han Q., et al. Recombinant methioninase infusion reduces the biochemical endpoint of serum methionine with minimal toxity in high-stage cancer patients. 11 Anticancer Res., 1997, v. 17, p. 3857−3860.
  116. Tan Y., Sun X., Xu M., An Z., Tan X., Han Q., Miljkovic D.A., Yang M., Hoffman R.M. Polyethilene glycol conjugation of recombinant methioninase for cancer therapy. UProtein Expr. Purif., 1998, v. 12 (1), p. 45−52.
  117. Miki K., Xu M., Gupta A., Ba Y., Tan Y., Al-Rafaie W., Bouvet M., Makuuchi M., Moossa A.R., Hoffman R.M. Methioninase cancer gene therapy with selenomethionine as suicide prodrug substrate. UCancer Res., 2001, v. 61, p.6805−6810.
  118. Peters G.J., Backus H.H., Freemantle S., et al. Induction of thymidylate synthase as a 5-fluorouracil resistance mechanism. IIBiochim. Biophys. Acta, 2002, v. 1587, p. 194−205.
  119. D.M., Zalcberg J.R. 5-Fluorouracil: a pharmacological paradigm in the use of cytotoxics. HClin Exp Pharmacol Physiol., 1998, v. 25, p. 887−895.
  120. Yoshioka Π’., Wada Π’., Uchida N., et al. Anticancer efficacy in vivo and in vitro, synergy with 5-fluorouracil, and safety of recombinant methioninase. //Cancer Res., 1998, v. 58, p. 2583−2587.
  121. Machover D., Zittoun J., Broet P., et al. Cytotoxic synergism of methioninase in combination with 5-fluorouracil and folinic acid. //Biochem Pharmacol., 2001, v., 61, p. 867−876.
  122. Gou H., Lishko V.K., Herrera H., Groce A., Kubota Π’., Hoffman R.M. Therapeutic tumor-specific cell cycle block induced by methionine starvation in vivo. //Cancer Res., 1993, v. 53, p. 56 765 679.
  123. Goseki N., Yamazaki S., Endo M., et al. Antitumor effect of methionine-depleting total parental nutrition with doxorubicin administration on Yoshida sarcoma-bearing rats. //Cancer, 1992, v. 69, p. 1865−1872.
  124. Kokkinakis D.M., von Wronski M.A., Vuong Π’.Н., Brent T.P., Schold Jr.S.C. Regulation of ΠžΠ±-methylguanine-DNAmethyltransferase by methionine in human tumour cells J/Br.
  125. J.Cancer, 1997, v. 75, p. 779−788.
  126. Tan Y., Sun X., Xu M., et al. Efficacy of recombinant methioninase in combination with cisplatin on human colon tumors in nude mice. HClin. Cancer Res., 1999, v. 5, p. 2157−2163.
  127. Hoshiya Y., Kubota Π’., Matsuzaki S.W., Kitajima M., Hoffman R.M. Methionine starvation modulates the efficacy of cisplatin on human breast cancer in nude mice. //Anticancer Res., 1996, v. 16, p. 3515−3517.
  128. Technique de Chromatographie adaptees a la Purification des Proteines et des Macromolecules Biologiques. Formation GE Healthcare & CNRS, Montpellier, 2006.
  129. Π’.М. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ биология. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° ΠΈ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ². Под Ρ€Π΅Π΄. Π°ΠΊ. А. Π‘. Π‘ΠΏΠΈΡ€ΠΈΠ½Π°, Москва, «Π’Ρ‹ΡΡˆΠ°Ρ школа», 1996, 334 с.
  130. Π’.И. Π€ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСскиС ΠΈ ΡΠ½Π·ΠΈΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠ΅ свойства L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ ΠΈΠ· Pseudomonas taetrolens: АвторСф. дис. Π½Π° ΡΠΎΠΈΡΠΊΠ°Π½ΠΈΠ΅ ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΎΠΉ стСпСни ΠΊΠ°Π½Π΄.Π±ΠΈΠΎΠ».Π½Π°ΡƒΠΊ. М.: Российский унивСрситСт Π΄Ρ€ΡƒΠΆΠ±Ρ‹ Π½Π°Ρ€ΠΎΠ΄ΠΎΠ², 1992.
  131. Nakayama Π’., Esaki N., Sugie К., Beresov Π’.Π’., Tanaka Н., and Soda К. Purification of bacterial L-methionine y-lyase. 11 Anal. Biochem., 1984, v. 138, p. 421−424.
  132. Tanaka H., Esaki N., Yamamoto T. and Soda K. Purification and properties of methioninase from Pseudomonas ovalis. IIFEBS Lett., 1976, v. 66 (2), p. 307−31 1.
  133. Ito S., Nakamura Π’., Eguchi Y. Purification and characterization of methioninase from Pseudomonas putida. //J. Biochemistry (Tokyo), 1976, v. 79, p. 1263 1272.
  134. P. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ очистки Π±Π΅Π»ΠΊΠ°. M., ΠœΠΈΡ€, 1985.
  135. Tanaka Н., Esaki N., Soda К. Bacterial L-methionine y-lyase: characterization and application. //Sulfur Amino Acids: Biochemical and Clinical Aspects, Alan R. Liss, Inc., 150 Fifth Avenue, New York, NY10011, 1983, p.365−377.
  136. H., Inagaki K., Sugimoto M., Esaki N., Soda K. & Tanaka H. Structural analysis of the L-methionine gamma-lyase gene from Pseudomonas putida. //J.Biochem., 1995, v. 117, p. 1120−1125.
  137. Goodal G., Mottram J.C., Coombs G.H., and Laptom A.J. PDB-Entry 1E5E, 2000.
  138. Bazhulina N.P., Morozov Yu.V., Papisova A.I., Demidkina T.V. Pyridoxal 5'-phosphate Schiff base in Citrobacter freundii tyrosine phenol-lyase: ionic and tautomeric equilibria. // EJB, 2000, v. 267, p. 1830−1836.
  139. N.P., Bokovoi V.A., Morozov Yu.V., Fiodorova L.I. & Chekhov V.O. Spectroscopic behavior of pyridoxal 5'-phosphate amino acid aldimines. Tautomer and isomer equilibria. //Molekulyarnaya Biologiya (in Russian), 1991, v. 25, p. 546−555.
  140. C.M., Viswanath R. & Metzler D.E. Equilibria and absorption spectra of tryptophanase. //J. Biol. Chem., 1991, v. 266, p. 9374−9381.
  141. Ph. & Metzler D.E., eds), Wiley-Interscience, NY, USA, 1985, p. 37 108.
  142. Aitken S.M., and Kirsch J.F. Kinetics of the yeast cystathionine beta-synthase forward and reverse reactions: continuous assays and the equilibrium constant for the reaction. 11 Biochemistry, 2003, v. 42, p. 571−578.
  143. A itken S.M., Kim D.H., and Kirsch J.F. Escherichia coli cystathionine gamma-synthase does not obey ping-pong kinetics. Novel continuous assays for the elimination and substitution reactions. //Biochemistry, 2003, v. 42, p. 11 297−11 306.
  144. Cook P.F., and Cleland W.W. pH variation of isotope effects in enzyme-catalyzed reactions. 1. Isotope- and pH-dependent steps the same. //Biochemitry, 1981, v. 20, p. 1797−1805.
  145. Sambrook J., Fritsch E.F.& Maniatis T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989.
  146. F., Nicklen S. & Coulsen A.R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. UProc. Natl. Acad. Sci. USA., 1977, v. 74, p. 5463−5467.
  147. C.M., Π—Π°Π²ΠΈΠ»ΡŒΠ³Π΅Π»ΡŒΡΠΊΠΈΠΉ Π“. Π‘. //Π“Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ°, 2003, Ρ‚. 39, с. 218−224.
  148. Fridemann Π’.Π•., Haugen G.E. The determination of keto acids in blood and urine. IIJ. Biol. Chem., 1943, v. 177(2), p. 415−442.
  149. Π­. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ дСйствия Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ². М., ΠœΠΈΡ€, 1980.
  150. Cleland W. Statistical analysis of enzyme kinetic data. //Methods Enzymol., 1979, v. 63, p. 103−138.
  151. Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. IIJ. Biol. Chem., 1951, v. 193, p. 265−275.
  152. Peterson E.A., Sober H.A. Preparation of crystalline phosphorylated derivatives of Vitamin B6. HJ. Amer. Chem. Soc., 1954, v. 76, p 169−175.
  153. D.E., Harris C.M., Johnson R.J. & Siano D.B. Spectra of 3-hydroxypyridines. Band-shape analysis and evaluation of tautomeric equilibria. //Biochemistry, 1973, v. 12, p. 5377−5392.
  154. P.V., Long F.A. //J. Phys. Chem. 1960, v. 64, p. 188−194.
  155. Manukhov I.V., Demidkina T.V., Mamaeva D.V., Rastorguev S.M. and Zavilgelsky G.B. Citrobacter freundii methionine y-lyase (megL) and putative amino acid permease (aap) genes, complete cds, 2003, Gene bank accession number: AY204910.
  156. Mamaeva D.V., Morozova E.A., Nikulin A.D., Revtovich S.V., Nikonov S.V., Garber M.B., Demidkina T.V. Structure of Citrobacter freundii L-methionine y-lyase. Acta Cryst., 2005, F61, p. 546−549.
  157. И.Π’., МамаСва Π”. Π’., ΠœΠΎΡ€ΠΎΠ·ΠΎΠ²Π° Π•. А., РасторгуСв Π‘. М., Π€Π°Π»Π΅Π΅Π² Н. Π“., Π”Π΅ΠΌΠΈΠ΄ΠΊΠΈΠ½Π° Π’. Π’. Π—Π°Π²ΠΈΠ»ΡŒΠ³Π΅Π»ΡŒΡΠΊΠΈΠΉ Π“.Π‘. L-ΠœΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π° Citrobacter freundii'. ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π³Π΅Π½Π° ΠΈ ΠΊΠΈΠ½Π΅Ρ‚ичСскиС ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€Ρ‹ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°. Биохимия (Москва), 2006, Ρ‚. 71(4), с. 454 463.
  158. Revtovich S.V., Mamaeva D.V., Morozova Π•.А., Nikulin A.D., Nikonov S.V., Garber M.B., Demidkina T.V. Crystal Sructure of Citrobacter freundii L-methionine y-lyase, 2004, PDB: 1Y4I.
  159. ΠœΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Ρ‹ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹, ΠΎΠΏΡƒΠ±Π»ΠΈΠΊΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ Π² Π²ΠΈΠ΄Π΅ тСзисов сообщСнийна конфСрСнциях
  160. Π”.Π’., Π‘Π°Ρ€Π±ΠΎΠ»ΠΈΠ½Π° М. Π’., Π”Π΅ΠΌΠΈΠ΄ΠΊΠΈΠ½Π° Π’.Π’. L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Π° Citrobacter freundii-. ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ очистки ΠΈ Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ свойства. ВСзисы ΡˆΠΊΠΎΠ»Ρ‹-ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ «Π“ΠΎΡ€ΠΈΠ·ΠΎΠ½Ρ‚Ρ‹ Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСской Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ», ΠŸΡƒΡ‰ΠΈΠ½ΠΎ, Россия, 2000, Ρ‚.2, с. 250.
  161. Mamaeva D.V., Faleev N.G., Demidkina T.V. Purification and some properties of L-methionine y-lyase from Citrobacter freundii. The 5-th International Engelhardt Conference on molecular biology. June 2126, 2001, Moscow (Russia), posters session.
  162. Π”.Π’., Π€Π°Π»Π΅Π΅Π² Н. Π“., Π”Π΅ΠΌΠΈΠ΄ΠΊΠΈΠ½Π° Π’. Π’. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΡΠ²ΠΎΠΉΡΡ‚Π²Π° L-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΎΠ½ΠΈΠ½ — Ρƒ-Π»ΠΈΠ°Π·Ρ‹ ΠΈΠ· Citrobacter freundii. Ill съСзд биохимичСского общСства РАН. ВСзисы Π½Π°ΡƒΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π΄ΠΎΠΊΠ»Π°Π΄ΠΎΠ², с. 592, 26 ΠΈΡŽΠ½Ρ — 1 ΠΈΡŽΠ»Ρ 2002, Π‘Π°Π½ΠΊΡ‚-ΠŸΠ΅Ρ‚Π΅Ρ€Π±ΡƒΡ€Π³, Россия.
  163. Manukhov I.V., Rastorguev S.M., Zavilgelsky G.B., Mamaeva D.V., Demidkina T.V. Gene cloning and characterization of Citrobacter freundii L-methionine y-lyase. 1st Congress of European of
  164. Microbiologists. Poster session. Slovenia, Ljubljana, Cankarjevdom, June 29 July 3, 2003. ΠΊ
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ