Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Экологическая роль полигидроксиалканоатов — закономерности биоразрушения в природной среде и взаимодействия с микроорганизмами

Диссертация: Экологическая роль полигидроксиалканоатов — закономерности биоразрушения в природной среде и взаимодействия с микроорганизмами
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Работа проводилась в комплексе с сотрудниками лаборатории хемоавтотрофного биосинтеза Института биофизики СО РАН. Автор выражает глубокую благодарность д.б.н. Т. Г. Воловой за постоянную поддержку и помощь в работе, искреннюю признательность коллегам и сотрудникам лаборатории А. Н. Бояидину, Г. С. Калачевой, Н. О. Жила, А. В. Горевой, Е. Д. Николаевой за предоставленный материал и участие… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Негативные последствия накопления в биосфере продуктов химического синтеза
      • 1. 1. 1. Синтетические пластики — глобальная экологическая проблема
      • 1. 1. 2. Биологическая опасность загрязнения биосферы ксенобиотиками
    • 1. 2. Эколого-биотехнологические альтернативы продуктам химического синтеза
      • 1. 2. 1. Перспективность разрушаемых пластиков
      • 1. 2. 2. Экологический потенциал биопрепаратов
    • 1. 3. Биотехнологический ресурс полигидроксиалканоатов как альтернативы синтетическим полимерным материалам
    • 1. 4. Производство и сферы применения ПГА
      • 1. 4. 1. Состояние и перспективы наращивания объемов выпуска ПГА
      • 1. 4. 2. Потенциальные сферы применения ПГА
    • 1. 5. Закономерности биодеградации ПГА
      • 1. 5. 1. Механизм биоразрушения ПГА в лабораторных исследованиях
      • 1. 5. 2. Исследования биодеградации ПГА в природных условиях
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты исследования
      • 2. 1. 1. Синтез и выделение полигидроксиалканоатов
      • 2. 1. 2. Изготовление экспериментальных образцов полигидроксиалканоатов и их характеристика
    • 2. 2. Методы исследования свойств полимеров
      • 2. 2. 1. Исследование химической структуры ПГА
      • 2. 2. 2. Исследование структуры поверхности, физико-химических и физико-механических свойств полимерных образцов
    • 2. 3. Методы исследования биодеградации образцов полигидроксиалканоатов
      • 2. 3. 1. Исследование биоразрушаемости образцов ПГА в лабораторных условиях
      • 2. 3. 2. Исследование биоразрушаемости образцов ПГА в натурных экспериментах
    • 2. 4. Микробиологические исследования
    • 2. 5. Молекулярно-генетические исследования
    • 2. 6. Конструирование и исследование долговременных форм сельскохозяйственных препаратов, депонированных в матрикс из ПГА
      • 2. 6. 1. Методика депонирования препаратов в полимерный матрикс
      • 2. 6. 2. Исследование динамики оттока препаратов в почву
      • 2. 6. 3. Исследование эффективности разработанных долговременных форм препаратов
    • 2. 7. Конструирование биофунгицидов, иммобилизованных на микроносителях из ПГА, и исследование их эффективности
      • 2. 7. 1. Методы оценки эффективности биопрепарата на основе спор гриба Т. harzianum для защиты сеянцев Picea obovata (Ledeb.)
      • 2. 7. 2. Методы определения потенциала ПГА в качестве микроносителя для создания биофунгицидов нового поколения
    • 2. 8. Статистическая обработка результатов
  • ГЛАВА 3. КОНСТРУИРОВАНИЕ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ОБРАЗЦОВ ПГА И ИССЛЕДОВАНИЕ ПРОЦЕССА БИОРАЗРУШЕНИЯ В ЛАБОРАТОРНЫХ УСЛОВИЯХ
    • 3. 1. Получение и характеристика полимерных изделий из ПГА
    • 3. 2. Исследование разрушаемости ПГА в лабораторных условиях
    • 3. 3. Последствия взаимодействия ПГА с микроорганизмами в процессе биоразрушения в лабораторных микроэкосистемах
  • ГЛАВА 4. ЗАКОНОМЕРНОСТИ БИОРАЗРУШЕНИЯ ПОЛИГИДРОКСИ-АЛКАНОАТОВ ПОЧВЕННЫМИ МИКРОБИОЦЕНОЗАМИ
    • 4. 1. Исследование биоразрушения полигидроксиалканоатов в почвах средних широт Сибирского региона
    • 4. 2. Исследование биоразрушения полигидроксиалканоатов в почвах в тропических условиях
  • ГЛАВА 5. ЗАКОНОМЕРНОСТИ БИР A3 РУШЕНИЯ ПГА В ПРИРОДНЫХ ВОДОЕМАХ
    • 5. 1. Исследование биоразрушения полигидроксиалканоатов в морской воде в тропических условиях
    • 5. 2. Исследование деградации ПГА в солоноватоводном озере Шира
  • ГЛАВА 6. КОНСТРУИРОВАНИЕ И ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ДОЛГОВРЕМЕННЫХ ФОРМ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ПРЕПАРАТОВ, ДЕПОНИРОВАННЫХ В МАТРИКС ИЗ ПОЛИГИДРОКСИАЛКАНОАТОВ
    • 6. 1. Долговременная форма гербицидного средства, депонированного в матрикс из ПГА
    • 6. 2. Использование ПГА для разработки пролонгированной формы азотных удобрений
  • ГЛАВА 7. КОНСТРУИРОВАНИЕ НОВЫХ ФОРМ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ НА ОСНОВЕ ИММОБИЛИЗОВАННЫХ СПОР ГРИБОВ TRICHODERMA
    • 7. 1. Эффективность биопрепаратов на основе штаммов грибов рода Trichoderma в защите сеянцев хвойных в лесопитомниках
    • 7. 2. Оценка эффективности новых форм биопрепаратов на основе штаммов грибов рода Trichoderma, иммобилизованных на носителе

Экологическая роль полигидроксиалканоатов — закономерности биоразрушения в природной среде и взаимодействия с микроорганизмами (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность работы обусловлена критическим состоянием природной среды, подверженной антропогенной нагрузке в результате чрезмерного применения продуктов химического синтеза и необходимостью перехода на новые, экологически безопасные технологии производства средств жизнеобеспечения.

В результате активной хозяйственной деятельности и на фоне роста населения планеты во все более широком масштабе увеличивается производство и потребление химических веществ. Объемы выпуска синтетических пластмасс приближаются к 300 млн. тонн в годих основная часть скапливается на свалках, так как повторной переработке в развитых странах подвергается не более 16−20% (Kijchavengkul, Auras, 2008; Chanprateep, 2010). Под полигоны и свалки твердых бытовых отходов ежегодно отчуждается до 10 тыс. га земель, в том числе плодородных, изымаемых из сельскохозяйственного оборота. Полиэтиленовый мусор выводит из строя канализационные и дренажные системы городов, загрязняет водоемы. По данным Green Pease, ежегодно в воды Мирового океана попадает до 10% от объемов выпускаемых пластиков (Moore et al., 2001; Tanabe et al., 2004).

Интенсивные технологии ведения сельского хозяйства требуют применения огромного количества разнообразных химических веществ для борьбы с вредителями, сорняками и возбудителями болезней культивируемых видов. При этом не боле 10% применяемых и вносимых в окружающую среду пестицидов достигает целиосновная масса этих веществ аккумулируется в биологических объектах, загрязняет почвы, водоемы, вызывает гибель полезных организмов и нарушает равновесие в природных экосистемах (Hansen et al., 2004; Hasler et al. 2010).

Традиционное повсеместное применение продуктов химического синтеза, получаемых из невозобновляемых природных ресурсов, приводит к 5 чрезмерному росту количества неутилизируемых отходов, что вступает в противоречие с мероприятиями, направленными на защиту окружающей среды и создает глобальную экологическую проблему. Одним из путей снижения антропогенного давления на экосистемы является замена синтетических полимеров природными, которые подвержены биологической деструкции и разлагаются в естественной среде, вовлекаясь в круговорот (Kijchavengkul, Auras, 2008; Волова, 2004; Asrar, Gruys, 2002; Штильман, 2006).

Развитие науки и техники приводит к все более широкому внедрению в практику целевых продуктов, синтезируемых микроорганизмами. Ценным продуктом биотехнологии являются микробные полигидроксиалканоаты (ПГА), которые обладают спектром полезных свойств, в том числе биосовместимостыо и биоразрушаемостью. ПГА перспективны в качестве материала и изделий биомедицинского назначения, разрушаемой упаковки пищи и напитков, предметов гигиены и санитарии, изделий и препаратов для коммунального и сельского хозяйства (Sudech, Doi, 2000; Stock et al., 2000; Asrar, Gruys, 2002; Volova, 2004; Hazer, Steinbuchel, 2007).

Наблюдаемые сегодня наращивание объемов выпуска и расширение сфер применения ПГА делают необходимым изучение способности окружающей среды к трансформации этого вида биологической продукции. Однако количество работ, в которых были бы всесторонне рассмотрены различные аспекты разрушения ПГА в природной среде, в целом невеликобольшинство исследований выполнено в лабораторных условиях без учета всей сложности этого процесса (Mergeret et al., 1993; Jendrossek, 2001, 2002; Bonartseva et al., 2003, Woolnough et al., 2008).

Вместе с тем, разрушаемость ПГА зависит от многих составляющих, таких как химический состав и структура полимера, микробная составляющая биоты как главного агента их биодеградации, а таюке условий среды, которые, в свою очередь, определяются биологическими, гидротермическими, климатическими и погодными условиями. Результаты б по разрушаемое&tradeПГА, полученные в лаборатории, не позволяют прогнозировать поведение и разрушение ПГА в сложных и изменяющихся природных экосистемах. Для этого необходимо комплексное исследование, которое даст ответы на ряд ключевых вопросов: 1) как состав микробиоценоза среды влияет на процесс разрушения ПГА и какие микроорганизмы являются истинными и активными деструкторами ПГА применительно к конкретным внешним условиям- 2) какое воздействие на скорость разрушения оказывают химический состав ПГА, способ изготовления изделий, геометрия и размеры образцов- 3) как изменяются макрои микроструктура ПГА и их свойства (кристалличность, молекулярная масса, полидисперсность) в процессе разрушения- 4) насколько значимо влияние на этот процесс физико-химических условий среды- 5) каким образом процесс разрушения ПГА будет протекать в регионах, различающихся погодными и климатическими условиями.

Необходимость проведения комплексного исследования, позволяющего адекватно и всесторонне изучить этот многофакторный процесс, послужила основанием для настоящей работы, и позволила поставить ее цель и определить задачи.

Цель работы — комплексное исследование взаимодействия полигидроксиалканоатов с природными микробиоценозами и выявление закономерностей биоразрушения в различных климатических зонах во взаимосвязи с физико-химической структурой полимеров.

Для достижения цели необходимо решить следующие задачи:

— сконструировать из ПГА различной химической структуры экспериментальные образцы изделий и изучить закономерности их биоразрушения и последствия взаимодействия с микроорганизмами в лабораторных микроэкосистемах;

— исследовать биоразрушение ПГА в природных экосистемах (почвах и водоемах повышенной солености), расположенных в разных климатических зонах (Сибирский регион, тропики) — 7

— изучить особенности микробиоценозов в районах исследования и выделить доминантные микроорганизмы, участвующие в биоразрушении ПГАс применением индикаторных сред отобрать первичных биодеструкторов;

— идентифицировать на основе культуральных, морфо-физиологических и молекулярно-генетических методов доминантные микроорганизмы-деструкторы ПГА, характерные для конкретных природных микроэкосистем;

— изучить динамику биодеградации ПГА в сопоставлении с микробиологическими и физико-химическими характеристиками среды с учетом химического состава и формы полимерных образцов;

— исследовать изменения микроструктуры и физико-химических свойств ПГА в процессе биодеградации для формирования представлений о механизме разрушения этого класса полимеров;

— оценить эффективность ПГА для конструирования экологически безопасных и адресных препаратов сельскохозяйственного назначения.

Работа проводилась в комплексе с сотрудниками лаборатории хемоавтотрофного биосинтеза Института биофизики СО РАН. Автор выражает глубокую благодарность д.б.н. Т. Г. Воловой за постоянную поддержку и помощь в работе, искреннюю признательность коллегам и сотрудникам лаборатории А. Н. Бояидину, Г. С. Калачевой, Н. О. Жила, А. В. Горевой, Е. Д. Николаевой за предоставленный материал и участие в комплексных экспериментах, изложенных в совместных публикациях. Особая благодарность за помощь при выполнении целого ряда работ по теме диссертации и научные консультации сотрудникам Института химической биологии и фундаментальной медицины СО? АН М. Л. Филипенко и Е. А. Храпову (молекулярно-генетические исследования), с.н.с. лаборатории кристаллофизики Института физики им. Киренского СО РАН А. Д. Васильеву (исследование физико-химических свойств ПГА), сотрудникам Тропцентра Н. Л. Филичеву, А. Л. Левину, Нгуен Куанг Тан и Ле Тхи Ми Хиеп (исследование биодеградации ПГА в тропиках).

выводы

1. Из полигидроксиалканоатов (ПГА) различной химической структуры, отличающихся физико-химическими свойствами, сконструированы экспериментальные образцы изделий в виде пленок, объемных форм и микрогранулизучена их биоразрушаемость в лабораторных микроэкосистемах. Установлено положительное влияние ПГА как дополнительного субстрата на рост и развитие микроорганизмов в почвезависимость процесса биодеградации от температуры среды в диапазоне 1635 °Сотсутствие деградации изделий из ПГА при рН 5,2−7,5 в стерильных условиях.

2. Изучена динамика биодеградации изделий из ПГА в природных экосистемах, расположенных в различных регионах и климатических условиях, и установлено, что периоды, в течение которых масса изделий из полимеров уменьшается на 1А от исходной, могут варьировать от 68,5 до 270 суток в почвах Сибири, от 16 до 380 суток в тропических почвах Вьетнамаот 73 до 324 суток в солоноватоводном озере Шираот 127 до 220 суток в морской воде Южно-Китайского моря. Продолжительность периода биодеградации ПГА существенно зависит от численности и физиологической активности микроорганизмов, определяемых характеристикой природной среды, прежде всего, температурным режимом и влажностью, а также от таксономической характеристики микробиоценозов, сформировавшихся в природных экосистемах районов исследований.

3. Установлено, что на поверхности полимерных образцов формируются микробиоценозы, специфичные для конкретной природной среды, качественно и количественно отличающиеся от микрофлоры контрольных образцов фоновой воды и почвы. С использованием диагностических сред установлено, что количество микроорганизмовпервичных деструкторов, обладающих ПГА-экзодеполимеразами, в 10−15 раз ниже общего количества микроорганизмов, участвующих в ассимиляции изучаемых полимеров.

4. Основываясь на культуральных, морфо-физиологических признаках и результатах определения нуклеотидных последовательностей гена 16S (28S) рРНК идентифицированы первичные микроорганизмы-деструкторы ПГА, характерные для микробиоценозов анализируемых экосистем. Во всех районах исследований как первичные деструкторы ПГА определены бактерии из рода Bacillus и микромицеты из родов Paecilomyces и Penicillium. Доминантными деструкторами ПГА в почвах Сибири являются: бактерии родов Variovorax, Stenotrophomonas, Acine tob acter, Pseudomonas, Bacillus и Xanthomonas и микромицеты Penicillium, Paecilomyces, Acremonium, Verticillium и Zygosporiumв тропических почвах: бактерии родов Burkholderia, Bacillus, Cupriavidus, Streptomyces, Nocardiopsis, Mycobacterium, и микромицеты Gongronella, Penicillium, Acremonium, Paecilomyces и Trichodermaв прибрежной воде Южно-Китайского моря: бактерии родов Enterobacter, Bacillus и Gracilibacillus, микромицеты рода Malbranchea.

5. Исследованы изменения микроструктуры и физико-химических свойств ПГА различного состава в процессе биодеградации. Установлено, что разрушение изделий из ПГА сопровождается снижением молекулярной массы полимеров и возрастанием полидисперсности, что свидетельствует о деструкции С-цепей в полимере и увеличении количества фрагментов с различной степенью полимеризуемости. В почвах разрушение полимеров сопровождается повышением степени кристалличности как показателя преимущественного взаимодействия ПГА-экзодеполимераз с аморфной фазой полимерав морской воде ферментативной атаке деполимеразами одновременно подвергаются обе фазы, кристаллическая и аморфная, в связи с чем степень кристалличности ПГА не изменяется.

6. Установлено, что механизм биоразрушения ПГА различного химического состава отличается в районах исследований: в условиях тропиков быстрее разрушаются образцы из гомополимера 3209 гидроксибутирата, в условиях Сибири — образцы из сополимера 3-гидроксибутирата с 3-гидроксивалератом. Выявленные закономерности объясняются различием видового состава ключевых микроорганизмов-деструкторов и связаны со специфичностью действия микробных ПГА-экзодеполимераз.

8. На основе изученных закономерностей биоразрушения ПГА почвенными микробиоценозами сконструированы и положительно оценены экспериментальные формы препаратов сельскохозяйственного назначениягербицида (Зеллек), азотного удобрения (карбамида) и грибного биопрепарата (триходермина), — депонированных в полимерный матрикс из ПГА. Разработанные формы препаратов обеспечивают контролируемый и локальный выход активного вещества в течение вегетационного периода растений, не проявляют ингибирующего действия на развитие почвенной микрофлоры и не уступают по эффективности традиционным формам. Использование данных препаратов позволяет без снижения эффективности действия сократить нормы внесения химических веществ в среду и их аккумуляцию в биосфере.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Накопленные знания в области биотехнологии и материаловедения разрушаемых полигидроксиалканоатов (ПГА), достигнутый уровень и имеющаяся в Научно-образовательном центре «Енисей» и на базовой кафедре биотехнологии в Сибирском федеральном университете научно-практическая база позволили реализовать новый этап исследований ПГА, направленный на выявление способности окружающей среды к трансформации этого вида биоматериалов, используемых в качестве технического аналога неразрушаемых синтетических полимеров.

Такие разрушаемые биополимеры обладают спектром высоких потребительских свойств, среди которых — вариабельность химической структуры и базовых физико-химических свойств, высокая биологическая совместимость с высшими организмами, включая человека, истинная биологическая разрушаемость в биологических средах без образования токсичных для организмов и природы в целом продуктов, термопластичность, возможность переработки в специализированные изделия из различных фазовых состояний общепринятыми методами, высокая механическая прочность. Это открывает возможности получения из ПГА широкого спектра разрушаемых в природной среде изделий — от упаковки до специализированной продукции бытового, коммунального и сельскохозяйственного назначения, включая долговременные и адресные препараты нового поколения для защиты культурных растений. Проведенное комплексное исследование по изучению взаимодействия полигидроксиалканоатов с природными микробиоценозами почвенных и водных экосистем, актуализированное необходимостью перехода на экологичные биоразрушаемые материалы, альтернативные продуктам химического синтеза, и перспективами расширения сфер применения ПГА, выявило характерные особенности в динамике биодеструкции изделий из ПГА различной химической структуры в регионах, отличающихся

204 погодными и климатическими условиями. Было показано, что климатические условия не являются решающим фактором при определении продолжительности периодов деградации ПГА-изделий, поскольку ключевая роль в реализации процесса трансформации ПГА в окружающей среде принадлежит микроорганизмам. Активное разрушение тонких пленок и объемных прессованных форм ПГА обеспечивают высокая численность микроорганизмов (не менее чем 107 КОЕ в 1 г) и их физиологическая активность при стабильной температуре и влажности. Отличия в динамике биоразрушения изделий из гомополимера ПЗГБ и сополимеров ПЗГБ/ЗГВ в Сибирском регионе и в тропиках связаны с тем, что в исследуемых районах доминируют разные виды микроорганизмов — первичных деструкторов, синтезирующие специфические ПГА-экзодеполимеразы.

Во всех случаях начальный процесс разрушения образцов полимера характеризуется выраженным латентным периодом, длительность которого составляет от нескольких суток до 1−1,5 месяцев. На продолжительность периода биодеградации оказывают влияние способ изготовления и форма полимерного изделия — двумерные пленки разрушаются быстрее, чем объемные прессованные образцы. Специфичен и характер трансформации изделий разной геометрии: разрушение пленок происходит по всей поверхности, а у прессованных образцов образуются полости и каналы на стыках гранул полимера, и развивается глубинная деструкция.

Важной особенностью биоразрушения ПГА является равномерное и постепенное течение этого процесса, что дает возможность использовать такого рода полимеры для создания долговременных форм сельскохозяйственных препаратов нового поколения. Выявленные закономерности разрушения ПГА в почвах и водоемах позволяют конструировать изделия различной геометрии из гомоили сополимеров, предназначенные для использования в конкретных регионах.

Проведены комплексные исследования закономерностей биоразрушения пленочных и объемных прессованных форм из микробных

205 полигидроксиалканоатов различной химической структуры в природных микроэкосистемах: Сибирских почвах в местах произрастания лиственных (береза) и хвойных (лиственница) деревьев (окрестности г. Красноярска), тропических почвах (в районе г. Ханоя и на морском побережье г. Пячанга), морской воде (Южно-Китайском море) и солоноватоводном озере Шира. Установлено, что разрушение ПГА-изделий сопровождается падением их веса, снижением молекулярной массы и полидисперсности полимеров, зависит от химической структуры ПГА, способа изготовления изделий, температуры среды и структуры микробиоценоза.

Установлено, что ПГА стимулируют рост и развитие микрофлоры в качестве дополнительного субстрата. Впервые показано, что ПГА оказывает селективное действие на микроорганизмы, концентрирующиеся вблизи поверхности ПГА-изделий, таким образом, на поверхности полимерных образцов формируется микробиоценоз, специфичный для конкретной природной среды, качественно и количественно отличающийся от контрольных образцов. Как правило, на пленках и объемных формах таксономический состав микробного сообщества (как бактериального, так и грибного) более разнообразный, чем в фоновой среде. При этом увеличивается количество не только первичных деструкторов, но в большей степени — растет численность микроорганизмов, участвующих в ассимиляции продуктов биораспада полимера, и не обладающих собственными ПГА-деполимеразами.

В природных средах всегда присутствуют микроорганизмыпотенциальные потребители ПГА, способные к его трансформацииих численность может составлять от 4 до 15% (в среднем — 7−10%) от общего числа органотрофных микроорганизмов и увеличиваться в присутствии субстрата-ПГА.

В морской деструкции полимеров активное участие принимают бактерии в отличие от почв, где помимо бактерий значительную роль играют микромицеты. По совокупности культуральных, морфо-физиологических

206 признаков и результатов анализа нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК у бактерий и 28S — у грибов, идентифицированы первичные микроорганизмы-деструкторы ПГА. Во всех исследованных регионах активными деструкторами ПГА являются представители родов Bacillus, Paecilomyces и Penicillium, остальные микроорганизмы — специфичны для различных природных экосистем.

Отличия видового состава сообществ микроорганизмов-деструкторов объясняют выявленные различия в характере биоразрушения ПГА. В почвах разрушение полимеров сопровождается повышением степени кристалличности, что свидетельствует о преимущественном разрушении аморфной фазы по сравнению с кристаллическойв морской воде в условиях тропиков степень кристалличности полимеров (Сх) не изменяется, следовательно, ферментативной атаке ПГА-деполимеразами микроорганизмов-деструкторов подвергаются обе фазы — кристаллическая и аморфная.

Комплексное исследование процессов биоразрушения ПГА в природных средах обеспечило получение данных, необходимых для прогнозирования сценария биораспада ПГА в природе, и составило основу для конструирования долговременных форм сельскохозяйственных препаратов нового поколения. Показана возможность использования ПГА в качестве основы для депонирования препаратов. Такие долговременные формы препаратов обеспечивают контролируемый и адресный выход активного начала в течение вегетационного периода растений, что позволяет сократить нормы внесения химических веществ в среду для ограничения масштабов их аккумуляции в трофических цепях биоты и снижения негативного воздействия на биосферу.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ф. К. Промышленное применение грибов рода Trichodermci Казань : УНИПРЕСС ДАС, 2006. — 268 с.
  2. А. Ф., Швинка Ю. Э., Стрикауска С. В., Виестурс У. Э., Лисовска А. Я., Бичевскис Е. Я., Свока И. М., Беника Р. Г. Использование триходермина для защиты растений от фитопатогенных микромицетов // Вест. с.-х. науки, 1989. № 9(397).-С. 114−118.
  3. И. А. Особенности распространения и свойства бактерий рода Bacillus, ассоциированных с гидробионтами и водой залива Петра Великого, Японское море // Микробиол. 2008. — Т. 77. — № 4. — С. 558−565.
  4. И. А., Жукова Н. В. Сезонная динамика численности и биоразнообразия морских гетеротрофных бактерий, населяющих беспозвоночные животные и воду залива Петра Великого, Японское море //Микробиол. -2009.-Т. 78.-№ 3.-С. 414−420.
  5. А. Б. Физико-химический анализ почв. Методические указания по определению элементов питания: азота, калия, фосфора в почве. / Воронеж: Изд-во Воронежского гос. ун-та, 2000. 20 с.
  6. Биологические средства защиты растений. Технологии их изготовления и применения. /Под ред. В. А. Павлюшина, К. Е. Воронина. СПб.: ВИЗР, 2005. — 360 с.
  7. Е. В центре внимания биоразлагаемые полимеры Электронный pecypc.//The Chemical Journal. 2005. — С. 68−71. Режимдоступа: http://tcj.ru/2005/5/biorazl 5 2005.pdf (дата обращения 23.09.2012)
  8. Э.Ф. Агрохимическая характеристика дерново-карбонатной почвы дендрария. // Отчет о НИР. Институт Леса СО РАН. Красноярск. 1990
  9. Р., Мосс У., Уивер Р., Холлис Д., Джордан Дж., Кук Э., Дейншвар М. Определитель нетривиальных патогенных грамотрицательных бактерий. М.: Мир, 1999. — 1784 с.
  10. Т. Г., Стасишина Г. Н. Штамм бактерий Alcaligenes еШгоркт продуцент белковой биомассы. — Патент РФ № 2 053 292. Опубл. 27.01.1996.
  11. Т. Г., Калачева Г. С., Константинова В. М. Влияние условий роста на накопление полиоксибутирата водородными бактериями // Прикл. биохим. и микробиол. 1992. — Т. 28. — С. 221−222.
  12. Т. Г., Луковенко С. Г., Васильев А. Д. Получение и исследование физико-химических свойств микробных полиоксиалканоатов // Биотехнология. 1992. — № 1. — С. 19−22.
  13. Т. Г., Беляева О. Г., Калачева Г. С., Плотников В. Ф., Луковенко С. Г. Получение и исследование микробных гетерополимерных полиоксиалканоатов // Докл. РАН. 1996 а. — Т. 346.-С. 558−561.
  14. Т. Г., Калачева Г. С., Пузырь А. П. Влияние внутриклеточного пула полиоксибутирата на рост водородных бактерий в неоптимальных условиях // Микробиол. 1996, б. — Т. 65.-С. 594−598.
  15. Т. Г., Калачева Г. С. Способ получения полимера (3-оксимасляной кислоты. Патент РФ № 2 051 967. Опубл. 10.01.1996.
  16. Т. Г., Калачева Г. С., Константинова В. М. Способ получения гетерополимера /?-оксимасляной и /?-оксивалериановой кислот. -Патент России № 2 051 968. Опубл. 10.01.1996.
  17. Т. Г., Гительзон И. И., Пузырь А. П. Размерная гетерогенность в бактериальной популяции, аккумулирующей и деградирующей полиоксибутират // Докл. РАН. 1996, б. — Т. 346. -С. 256−258.
  18. Т. Г., Севастьянов В. И., Шишацкая Е. И. Полиоксиалканоаты (ПОА) биоразрушаемые полимеры для медицины. — Новосибирск: СО РАН, 2003. — 330 с.
  19. Т.Г., Севастьянов В. И., Шишацкая Е. И. Полиоксиалканоаты (ПОА) бноразрушаемые полимеры для медицины- 2-ое изд-е. -Красноярск: Платина, 2006. — 288 с.
  20. Т.Г. Биосинтез на водороде. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2004.-397с.
  21. Т. Г., Войнова О. Н., Калачева Г. С., Гродницкая И. Д. Перспективы использования резорбируемых полиэфиров для конструирования безопасных форм пестицидов // Доклады Академии Наук. 2008. — Т. 419. — № 2. — С. 272−275.
  22. Т. Г., Гладышев М. И., Трусова М. Ю., Жила Н. О. Идентификация микроорганизмов деструкторов полигидроксиалканоатов в природных условиях // Микробиол. — 2006. -Т. 80. — № 5. — С.682−688.
  23. Т. Г., Шишацкая Е. И. Биоразрушаемые полимеры: синтез, свойства, применение./ Под ред. проф. Э. Дж. Сински. Красноярск: Красноярский писатель, 2011. — 329 с.
  24. А. Р., Тихменев Е. А. Микробиологическая характеристика почв разнотравно-вейникового лиственничника бассейна р. Дукча. // Вестн. Северо-Восточного гос. ун-та. 2010. — № 13. — С. 78−81.
  25. Н. Р. Развитие инновационных процессов в защите растений // Защита и карантин растений. 2010. — № 4. — С. 4−7.
  26. А. В. Полигидроксиалканоаты в качестве резорбируемых матриксов для депонирования и доставки лекарственных препаратов: автореферат дис. на соискание степени канд. биол. наук. 03.01.06 -биотехнология. Красноярск, 2010. — 22 с.
  27. ГОСТ 12.1.007. Вредные вещества. Классификация и общие требования безопасности (от 10 марта 1976 года № 579 срок введения с 01.01.1977 г.).
  28. И. Д., Сорокин Н. Д. Использование микромицетов Trichoderma в биоремедиации почв лесопитомников. // Изв. РАН. Серия биологическая. 2006. — № 4. — С. 491−495.
  29. Т. И., Гукасян В. М., Малиновский А. Л., Тюльпанова В. А., Голованова Т. И. Использование микробного антагонизма в борьбе с инфекционным полеганием сеянцев хвойных // Сибирский экологический журнал. 1997. — № 5. — С. 501−504.
  30. И. И., Садыкова В. С., Бондарь П. Н., Зобова Н. В., Громовых Т. И. Перспективы использования новых биопрепаратов для защиты злаков в Средней Сибири // Вестник КрасГАУ. 2008. — № 1 (22). — С. 74−78.
  31. Т. И., Литовка Ю. А., Громовых В. С., Махова Е. Г. Эффективность действия Trichoderma asperellum (штамм МГ 97) на развитие фузариоза на сеянцах Larix sibirica II Микол. и фитопатол. — 2002. — Т. 36. — Вып. 4. — С. 70−75.
  32. И. В., Гоготов И. Н., Бечина Е. М., Семенов Я. В. Гидрогеназная активность водородоокисляющих бактерий Alcaligenes eutrophus II Микробиол. 1977. — Т. 46. — Вып. 4. — С. 625−630.
  33. Де Жен П.-Ж. Смачивание: статика и динамика. // Успехи физических наук. 1987. — Вып. 151. — С. 619−681.
  34. Европейские биопластики Электронный ресурс.: http://en.european-bioplastics.org/ (дата обращения 25.09.2012)
  35. Л. Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. -Л.: Наука, 1986. 192 с.
  36. Л. Д. Грибы р. Trichoderma регуляторы численности возбудителей корневых гнилей пшеницы. // Защита и карантин растений. -2008. — № 11.-С. 17−18.
  37. Ю. П. Введение в экологию Черного моря. Одесса: Эвен, 2006. — 224 с.
  38. Д. Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии. -М.: Изд-во МГУ, 1990. 303 с
  39. Д. Г., Бабьева И. П., Зенова Г. М. Биология почв. М.: Изд-во: МГУ, 2005. — 448 с.
  40. Зыонг Хоанг Бик. Почвы Центральной части Южного Вьетнама. Минералообразование, эволюция: автореферат дис. на соискание степени канд. с.-х. наук. 03.00.27 почвоведение. — М., 1999.
  41. В. Г. Основы экотокискологии. М.: Колос, 2007. — 231 с.
  42. Ким Н. Ю. Безотходная переработка одубины хвойных пород: Автореф. дис.. канд. техн. наук. Красноярск, 2001. -24 с.
  43. В. Г. Усложняющаяся фитосанитарная ситуация требует новых решений // Защита и карантин растений. 2010. — № 7.-С. 4−7.
  44. П.А. Микробные популяции в природе. М.: Изд-во МГУ, 1989.-С. 77−90.
  45. А. Г., Желифонова В. П., Винокурова Н. Г., Антипова Т. В., Иванушкина Н. Е. Изучение биодеградации поли-?гидроксибутирата микроскопическими грибами // Микробиол. -1999. Т. 68. — № 3. — С. 340−346.
  46. Г. И., Белевцева Н. А. Биологическая защита сеянцев от полегания // Лесное хозяйство. 1994. — N 2. — С. 43−44.
  47. Г. Ф. Биометрия. Учебное пособие. 4-е изд., перераб. и доп. -М.: Высшая школа, 1990. 352 с.
  48. Т. А., Рязанова Т. В., Чупрова Н. А., Власов А. В., Мукина Л. Р. Влияние вида субстрата на интенсивность спорообразования грибов рода Trichoderma. //РЖ 19Е. Природные органические соединения и их синтетические аналоги. 2006. — № 18. — С. 423 427.
  49. Е. Г. Обратная сторона упаковки // Наука и жизнь. 2007. -№ 3.-С. 44−51.
  50. Н. С., Чекалова К. В., Алексеева О. Б., Возможности продления срока хранения и периода активности биопрепаратов // Гавриш. 2006. — № 3. — С. 27−29.
  51. . В., Айздайчер Н. A. Dunaliella salina (Chlorophyta) как тест-объект для оценки загрязнения морской среды детергентами // Биология моря. 2005. — Т. 31. — № 4. — С. 274—279.
  52. В. Л., Чекунова Л. Н., Мышкина В. Л. Биодеструкция поли-{3-гидроксибутирата микроскопическими грибами: испытание грибостойкости и фунгицидных свойств полимера // Микол. и фитопатол. 2002. — Т. 36, вып. 5. — С. 59−63.
  53. А. И., Егорова М. А., Захарчук Л. М. Практикум по микробиологии. М.: Академия, 2005. — 608 с.
  54. И. И., Шенин Ю. Д., Цыпленков А. Е., Фоминых Т. С.,
  55. П. В., Бойкова И. В. Биологические особенности пептидов игептаеновых ароматических макролидов, выделенных из
  56. Streptomyces chrysomallus Р-21 и S. globisporus Л-242 штаммовпродуцентов полифункциональных биопрепаратов Хризомал и217
  57. Глоберин для защиты растений от болезней разной этиологии // Вестник защиты растений. 2009. — № 2. — С. 3−19.
  58. Новые технологии. Биопрепараты для защиты растений. // Аргументы и факты: Есть идея. 1993. — № 11 (18).
  59. Определитель бактерий Берджи / Под ред. Дж. Хоулт, Н. Криг, П. Снит, Дж. Стейли, С. Уилльямс. М.: Мир, 1997.
  60. Н. В., Русанов И. И., Карначук О. Н., Рогозин Д. Ю., Брянцева И. А., Лунина О. Н., Юсупов С. К., Парначев В. В., Иванов М. В. Микробные процессы циклов углерода и серы в озере Шира (Хакасия) // Микробиол. 2003. — Т. 72. — № 2. — С. 259−267.
  61. Л. М., Оразова М. X., Звягинцев Д. Г. Гетерогенность корня как местообитания микроорганизмов // Микробиол. 1994. — Т. 63. — Вып.4. — С. 706−714.
  62. А. Г., Пармон В. Н. Биоразлагаемые полимеры вперед в будущее // Экология и промышленность. — 2010. — № 5. — С. 4−8.
  63. О. И. Биологический метод защиты сельскохозяйственных растений от вредителей и болезней : обз. инф. Киев: УкрНИИНТИ, 1988.-59 с.
  64. Н. Д. Отношение водородных бактерий к окиси углерода // Микробиол. 1979. — Т. 48. — Вып. 2. — С. 360−362.
  65. Н. Д., Жилина Т. Н. К систематике водородных бактерий //Микробиол. 1968.-Т. 309. — К 1.-С. 223−226.
  66. Д. Определитель патогенных и условно-патогенных грибов / Под ред. Д. Саттон, А. Фотергилл, М. Ринальди. М.: Мир, 2001. -468 с
  67. О. В., Михалева Л. В., Воробьев Н. И., Кочетков В. В. Разложение коры хвойных деревьев грибами и бактериями // Микол. и фитопатол. 2001. — Т. 35. — Вып. 6. — С. 38−47.
  68. Т. Ш. Грибы рода триходерма и их использование впрактике. Алма-Ата: Наука, 1982. — 248 с.218
  69. М. Г., Лачининский А. В. Вредные саранчовые: мировой обзор. // Защита и карантин растений. 2007. — № 11. — С. 24−28.
  70. Справочник пестицидов и агрохимикатов, разрешенных на территории РФ 2011 г. Электронный ресурс.: http://greenport.ru/spravochnik-pesticzidov-i-agroxirnikatov.htnil (дата обращения 25.09.2012)
  71. А. П., Никонов П. В., Ющенко Н. П. Триходермин // Защита растений. 1993. — № 6. — С. 40.
  72. К. А. Микробиологические методы защиты растений // Вестник АН Каз ССР. 1990. — № 6. — С. 29−36.
  73. В. А., Громовых Т. И., Малиновский А. Л., Козлова Т. Л., Арефьева И. А. Шипилова И. А. Биотехнология новых форм грибных фунгицидов для защиты растений // Сибирский экологический журнал. 1997. — № 5. — С. 495−500.
  74. В. А., Гузеев В. В. Биоразлагаемые полимеры, состояние и перспективы использования // Пластические массы. -2001. -№ 2. С. 42−46.
  75. Л., Джонс Д. Биоматериалы, искусственные органы и инжиниринг тканей. / Под ред. А. А. Лушниковой. Серия «Мир биологии и медицины» — М.: Техносфера, 2007. — 304 с.
  76. А. Ф., Черкасов В. А., Захарченко В. А., Гончаров Н. Р. Справочник агронома по защите растений. М.: Агропромиздат, 1990.-367 с.
  77. В. Ф., Кузнецов Б. Н., Щипко М. Л., Волова Т. Г., Павлов М. Л. Фундаментальные основы комплексной переработки углей
  78. КАТЭК для получения энергии, синтез-газа и новых материалов с заданными свойствами. Новосибирск: Наука, 2005. — 231 с
  79. Е. И. Клеточные матриксы из резорбируемых полигидроксиалканоатов // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2007, б. — Т. 2, № 2. — С.68−76.
  80. О. Н., Шишацкая Е. И., Волова Т. Г. Разрушаемые полимеры: потребности, производство, применение. Красноярск: Новые информационные технологии, 2010. — 156 с.
  81. О. Н., Хлебопрос Р. Г., Волова Т. Г. Анализ рынка биопластиков и перспективы его развития. Красноярск: ДарМа-печать, 2009. — 60 с.
  82. М. И. Полимеры медико-биологического назначения. М.: Академкнига, 2006. — 399 с.
  83. М. Л., Волова Т. Г., Кузнецов Б. Н., Рудковский А. В. Разработка процесса газификации бурого угля с целью получения синтез-газа для биосинтеза полиоксиалканоатов // Химия твердого топлива. 2003. — № 8. — С .645−650.
  84. Е. Е., Гродницкая И. Д. Инфекционное полегание сеянцев хвойных в лесных питомниках Красноярского края // Микол. и фитопатол. 1996. — Т. 30. — Вып. 2. — С.56 — 60.
  85. Э. Б., Карпун Н. Н. Роль альбита в повышении устойчивости микробиоценоза почв к пестицидным нагрузкам. // Защита и карантин растений. 2011. — № 9. — С. 30−30.
  86. В. А. Перспективы биометода на Кубани // Защита и карантин растений. 1996. — № 8. — С. 14−15.
  87. Abe Н., Doi Y. Enzymatic and environmental degradation of racemic poly (3-hydroxybutyric acid) s with different stereoregularities // Macromol. 1996. — Vol. 29. — P. 8683−8688.
  88. Abe H., Doi Y. Structural effects on enzymatic degradabilities for poly®-3-hydroxybutyric acid. and its copolymers: mini rewiew // Int. J. Biol. Macromol. 1999.-Vol. 25.-№ 1−3. — P. 185−192.
  89. Abe H., Doi Y., Aoki H., Akehata T. Solid-state structures and enzymatic degradability for melt-crystallized films of copoly-mers of ®-3-hydroxybutyric acid with different hydroxyalkanoic acids // Macromol. -1998.-Vol. 31.-P. 1791−1797.
  90. Abe H., Kikkawa Y., Aoki H., Akehata T., Iwata T., Doi Y. Crystallization behavior and thermal properties of melt-crystallized poly®-3-hydroxybutyricacid-co-6-hydroxyhexanoicacid. films // Int. J. Biol. Macromol. 1999. — Vol. 25. — P. 177−183
  91. Abe H., Marsubara I., Doi Y. Physical properties and enzymatic degradability of polymer blends of bacterial poly®-3-hydroxybutyrate. stereoisomers // Macromol. 1995. — Vol. 28. — P. 844−853.
  92. Abou-Zeid D. M., Muller R. J., Deckwer W. D. Degradation of natural and synthetic polyesters under anaerobic conditions // J. Biotechnol. -2001.-Vol. 86.-P. 113−126.
  93. Abou-Zeid D. M., Muller R. J., Deckwer W. D. Biodegradation of alifatic homopolyesters and aliphatic-aromatic copolyesters by anaerobic microorganisms // Biomacromol. 2004. — Vol. 5. — P. 16 871 697.
  94. Akelah A. Novel utilizations of conventional agrochemicals by controlled release formulations. // Mater. Sci. Eng. 1996. — Vol. 4. — P. 83−98.
  95. Alper R., Lundrgren D. G. Properties of poly-P-hydroxybutyrate. I. General considerations concerning the naturally occurring polymer // Biopolymers. 1963. — Vol. 1. — P. 545−546.
  96. Anderson A. J., Dawes E. A. Occurrence, metabolism, metabolic role, and industrial uses of bacterial polyhydroxyalkanoates // Microbiol. Rev. 1990. — Vol. 54. — P. 450−472.
  97. Ashby R. D., Foglia T. A. Poly (hydroxyalkanoate) biosynthesis from triglyceride substrates // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998. — Vol. 49. -P. 431−437.
  98. Asrar J., Gruys K. J. Biodegradable Polymer (Biopol®) // Series of Biopolymers in 10 vol. / A. Steinbuchel Ed. Wiley-VCY Verlag GmbH. -2002.-Vol. 4.-P. 55−86.
  99. Audic J.-L., Chaufer B., Daufin G. Non-food applications of milk components and dairy co-products: a review // Lait. 2003. — Vol. 83. -P. 417−438.
  100. Babel W., Ackerman J.U., Breuer U. Physiology, regulation, and limits of the synthesis of poly (3HB) // Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. -2001.-Vol. 71.-P. 125−157.
  101. Baek J.-M., Howell C. R., Kenerley C. M. The role of an extracellular chitinase from Trichoderma virens Gv29−8 in the biocontrol of Rhizoctonia solani II Cur. Gen. 1999. — Vol. 35. — № 1. — P. 41−50.
  102. Bahri Z., Taverdet J. L. Elaboration and characterization of microparticles loaded by pesticide model // Powder Tech. 2006. — Vol. 172. — P. 31 -41.
  103. Baligar P. N., Kaliwal B. B. Temporal effect of carbofuran, a carbamate insecticide in the interruption of estrous cycle and follicular toxicity in female Swiss albino mice // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2003. — Vol. 71(2).-P. 422−428.
  104. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. Vol 2: The Proteobacteria. 2nd ed. // Ed. George M. Garrity. Springer. — 2005. — 2816 p.
  105. Bhatt R., Shah D., Patel K. C., Trivedi U. PHA-rubber blends: Synthesis, characterization and biodegradation // Bioresource Technol. -2008.-Vol. 99.-P. 4615−4620.
  106. Bonartsev A. P., Zaikov G. E., Krylova L. P. Biodegradation and medical application of microbial poIy (3-hydroxybutyrate) // Biotechnology, Biodegradation Water and Foodstuffs, Nova Science Publishers, Inc., 2009. P. 1−35.
  107. Bonartseva G. A., Myshkina V. L., Nikolaeva D. A. Aerobic and anaerobic microbial degradation of poly-P-hydroxybutyrate produced by Azotobacter chroococcum // Appl. Biochem. Biotechnol. 2003. — Vol. 109.-P. 285−301.
  108. Borman E. J., Leibner M., Beer B. Growth-associated production of polyhydroxybutyric acid by Azotobacter beijernckii from organic nitrogen substrates // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998. — Vol. 48. -P. 84−88.
  109. Brandi H., Gross R. A., Lenz R. W., Fuller C. W. Pseudomonas oleovorans as a source of Poly (p-hydroxyalkanoates) for potential application as biodegrad-able polyesters // Appl. Environ. Microbiol. -1988.-Vol. 54.-P. 1977−1982.
  110. Brandi H., Puchner P. Biodegradation of plastic bottles made from 'Biopol' in an aquatic ecosystem under in situ conditions // Biodegrad. -1992. Vol. 2. — P. 237−243.
  111. Braunegg G., Lefebvre G., Genzer K. F. Polyhydroxyalkanoates, biopolyesters from renewable resources: Physiological and engineeringaspects (Rewiew article) // J. Biotechnol. 1998. — Vol. 65. — P. 127— 161.
  112. Bravo A., Soberon M., Likitvivatanavong S., Gill S. S. Bacillus thuringiensis: a story of a successful bioinsecticide. // Insect Biochem. Mol. Biol. 2011. — Vol. 41. — №. 7. — P. 423−431.
  113. Briese B. H., Jendrossek D., Schlegel H. G. Degradation of poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) by aerobic sewage sludge // FEMS Microbiol. Lett. 1994.-Vol. 117.-P. 107−112.
  114. Brucato C., Wong S. Extracellular poly (3-hydroxybutyrate) from Penicillum funiculosum: general charac-teristics and active // Arch. Biochem. Byophys. 1991. — Vol. 290. — P. 497−502.
  115. Burges H. D. Formulation of microbial biopesticides: beneficial microorganisms, nematodes and seed treatments. Springer, 1998. -412 p.
  116. Calabia B. P., Tokiwa Y. A novel PHB depolymerase from thermophilic Streptomyces sp. // Biotechnol. Lett. 2006. — Vol. 28. — P. 383−388.
  117. Calabia B. P., Tokiwa, Y. Microbial degradation of poly (D-3-hydroxybutyrate) by a new thermophilic Streptomyces isolate. // Biotechnol. Lett. 2004. — Vol. 26. — P.15−19.
  118. Chanprateep S. Current trends in biodegradable polyhydroxyalkanoates // J. Biosci. Bioeng. 2010. — Vol. 6. — P. 621−632.
  119. Catcheside D. E. A., Ralph J. P. Biological processing of coal // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999. — Vol. 52. — P. 16−24.
  120. Chen G.-Q. A microbial polyhydroxyalkanoates (PHA) based bio- and materials industry // Chem. Soc. Rev. 2009. — Vol. 38. — P. 24 342 446.
  121. Chen H.-J., Pan S.-C., Shaw G.-C. Identification and characterization of a novel intracellular poly (3-hydroxybutyrate) depolymerase from Bacillus megaterium // Appl. Environ. Microbiol. 2009. — Vol. 75. -P. 5290−5299.
  122. Chen G.-Q. Plastics from bacteria. Natural functions and applications: Microbiology Monographs. Vol. 14 / Eds. G.-Q. Chen, A. Steinbuchel. -Springer, 2010.-453 p.
  123. Choi J., Lee S. Y. Process analysis and economic evaluation for poly (3-hydroxybutyrate) production by fermentation // Bioprocess Eng. 1997. -Vol. 17.-P. 335−342.
  124. Choi J., Lee S. Y. Efficient and economical recovery of poly-(3-hydroxybutyrate) from recombinant Escherichia coli by simple digestion with chemicals // Biotechnol. Bioeng. 1999, a. — Vol. 62. -P. 546−553.
  125. Choi J., Lee S. Y. Factors affecting the economics of polyhydroxyalkanoate production by bacterial fermentation // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999, b.-Vol. 51.-P. 13−21.
  126. Chowdhury A. A. Poly-?-hydroxybuttersaure abbauende Bakterien und Exoenzym // Arch. Mikrobiol. 1963. — Vol. 47. — P. 167−200.
  127. Clarinval A. M., Halleux J. Classification of biodegradable polymers // Biodegradable Polymers for Industrial Applications / Ed. R. Smith. -Cambridge: Woodhead Publishing, 2005. P. 3−31.
  128. Colak A., Guner S. Polyhydroxyalkanoate degrading hydrolase-like activities by Pseudomonas sp. isolated from soil // Int. Biodeterior. & Biodegrad. 2004. — Vol. 53. — P. 103−109.
  129. Cromwick A. M., Foglia T., Lenz R.V. The microbial production of poly (hydroxyalkanoates) from tallow // Appl. Microbiol. Biotechnol. -1996.-Vol. 46.-P. 464−469.
  130. Cruz I. de la, Hidalgo-Gallego A., Lora I. M., Benitez T., Pintor-Toro J., Liobell A. Isolation and characterization of three chitinases from Trichoderma harzianum II Eur. J. Biochem. 1993. — Vol. 206. — P. 859−867.
  131. Damalas C. A., Eleftherohorinos I. G. Pesticide exposure, safety issues, and risk assessment indicators // Int. J. Environ. Res. Public Health. -2011.-Vol. 8.-P. 1402−1419.
  132. Dawes E. A., Senior P. J. The role and regulation of energy reserve polymers in microorganisms // Adv. Microb. Physiol. 1973. — Vol. 10. -P. 135−266.
  133. De Koning G. J. M. Physical properties of bacterial poly®-3-hydroxyalkanoates. // Can. J. Microbiol. 1995. — Vol. 41(Suppl 1). -P. 303−309.
  134. Delafield F. P., Doudoroff M., Palleroni N. J., Lusty C. J., Contopoulos R. Decomposition of poIy-P-hydroxybutyrate by Pseudomonas II J. Bacteriol. 1965. — Vol. 90. — P. 1455−1466.
  135. Di Pietro A., Lorito M., Hayes C. K., Broadway R. M., Harman G. E. Endochitinase from Gliocladium virens: isolation, characterization, and synergistic antifungal activity in combination with gliotoxin // Phytopathol. 1993.-Vol. 83.-P. 308−313.
  136. Doi Y., Kawaguchi Y., Koyama N., Nakamura S., Hiramitsu M., Kimora H. Synthesis and degradation of polyhydroxyalkanoates in Alcaligenes eutrophus II FEMS Microbiol. Lett. 1992 a. — Vol. 103. -P. 103−108.
  137. Doi Y., Kanesawa Y., Kawaguchi Y., Kunioka M. Hydrolytic degradation of microbial polyesters in the marine environment // Polym. Degrad. Stab. 1992 b. — Vol. 36. — P. 173−177.
  138. Doi Y., Segawa A., Kunioka M. Biodegradable poly (3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate) produced from gammabutyrolactone and butyricacid by Alcaligenes eutrophus II Polym. Commun. 1989. — Vol. 30. -P. 169−171.
  139. Doi Y., Segawa A., Kunioka M. Biosynthesis and characterization of poly (3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate) in Alcaligenes eutrophus //Int. J. Biol. Macromol. 1990.-Vol. 12.-P. 106−111.
  140. Dowling D., CTGara F. Metabolites of Pseudomonas involved in the biocontrol plant diseases // Trends Biotechnol. 1994. — Vol. 12. — № 4. -P. 133−141.
  141. Dutta R. C. Drug carriers in pharmaceutical design: promises and progress // Curr. Pharm. Des. 2007. — Vol. 13. — P. 761−769.
  142. Ellar D., Lundgren D. G., Okamura K., Marchessault R.H. Morphology of poly-beta-hydroxybutyrate granules // J. Mol. Biol. 1968. — Vol. 35. — P. 489−502.
  143. Erkske D., Viskere I., Dzene A., Tupureina V., Savenkova L. Biobased polymer composites for films and coatings // Proc. Estonian Acad. Sei. Chem. 2006. — Vol. 55. — № 2. — P. 70−77.
  144. Fakoussa R. M., Hofrichter M. Biotechnology and microbiology on coal degradation // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999. — Vol. 52. — P. 2540.
  145. Fernandez-Urrusuno R., Gines J. M., Morillo E. Development of controlled release formulations of alachlor in ethylcellulose // J. Microencapsul. 2000. — Vol. 17. — P. 331−342.
  146. Fuchtenbusch B., Steinbuchel A. Biosynthesis of polyhydroxyalkanoates from low-rank coal liquefaction products by
  147. Pseudomonas oleovorans and Rhodococcus ruber II Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999. — Vol. 52. — P. 91−95.
  148. Freeman S., Maymon M., Kirshner B., Rav-David D., Elad Y. Use of GUS transformants of Trichoderma harzianum isolate T39 (TRICHODEX) for studying interactions on leaf surfaces. // Biocontrol Sci. Technol. 2002. — Vol. 12. — № 3. — P. 401−407.
  149. Gaevsky N. A., Zotina T. A., Gorbaneva T. B. Vertical structure and photosynthetic activity of Lake Shira phytoplankton // Aquatic Ecology. -2002.-Vol. 36.-P. 165−178.
  150. Gerngross T. U., Martin D. P. Enzyme-catalyzed synthesis of poly®-(3-hydroxybutyrate.: formation of macroscopic granules in vitro // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. — Vol. 92. — P. 6279−6283.
  151. Ghisalberti E. L., Sivasithamparam K. The role of secondary metabolites produced by Trichoderma species in biological control // Petria.- 1991.-Vol. l.-P. 130−131.
  152. Giri S., Prasad S. B., Giri A., Sharma G. D. Genotoxic effects of malathion: an organophosphorus insecticide, using three mammalian bioassays in vivo. // Mutat. Res. 2002. — Vol. 15. — 514 (1−2). — P. 223−231.
  153. Giri S., Sharma G. D., Giri A. The carbamate pesticide carbosulfan induces mutagenic effects in chicks in vivo. // Assam Univers. J. Sci. Technol.-2011.-Vol. 7. -№ 1.
  154. Grage K., Jahns A. C., Parlane N., Palanisamy R., Rasiah I. A., Atwood J.
  155. A., Rehm B. H. A. Bacterial polyhydroxyalkanoate granules: biogenesis, structure, and potential use as nano-/micro-beads in biotechnological andbiomedical applications // Biomacromol. 2009. — Vol. 13. — P. 660−669.228
  156. Gravston S. J., Campbell C. D. Influence of root exudate heterogeneity on microbial deversity in the rhizospera // J. Exp. Bot. 1995. — Vol. 46. -№ 1.-P. 29.
  157. Grillo R., de Melo N. F., Lima R., Lourenco R. W., Rosa A. H., Fraceto L. F. Characterization of atrazine-loaded biodegradable poly (hydroxybutyrate-co-hydroxyvalerate) microspheres. // J. Polym. Environ.-2010.-Vol. 18.-P. 26−32.
  158. Han X., Chena S., Ни X. Controlled-release fertilizer encapsulated by starch/polyvinyl alcohol coating // The Third Membrane Science and Technology Conference of Visegrad Countries (PERMEA) 2009. -Vol. 240.-P. 21−26.
  159. Hanafi M. M., Eltaib S.M., Ahmad M.B. Physical and chemical characteristics of controlled release compound fertilizers // Eur. Polym. J. 2000. — Vol. 36. — P.2081−2088.
  160. Hanson L. E., Howell C.R. Elicitors of plant defense responses from biocontrol strains of Trichoderma virens. // Phytopathol. 2004. — Vol. 94.-P. 171−176.
  161. Harman С. E., Kovach J., Latone В., Agosin J., San Martin R., Riegel D. G., Tronsmo A., Pearson R. C. Integrated and biocontrol of Botrytis on grape and strawberry. // Fifth Int. Gliocladium and Trichoderma workshop. Beltsville. MD, April 1995.
  162. Hazenberg W., Witholt B. Efficient production of medium-chain-length poly-(3-hydroxyalkanoates) from octane by Pseudomonas oleovorans: economic considerations // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1997. — Vol. 48. -P. 588−596.
  163. Hazer B., Steinbuchel A. Increased diversification of polyhydroxyalkanoates by modification reactions for industrial and medical applications // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007. — Vol. 74. -P. 1−12.
  164. Hocking P. J., Marchessault R. H., Timmins M. R., Lenz R. W., Fuller R. C. Enzymatic degradation of single crystals of bacterial and synthetic poly (?-hydroxybutyrate) // Macromol. 1996 a. — Vol. 29. — P. 24 722 478.
  165. Imam S. H., Gordon S. H., Shogren R. L., Tosteson T. R., Govind N. S., Green R. V. Degradation of starch-poly (?-hydroxybutyrate-co-?-hydroxyvalerate) bioplastics in tropical coastal waters // Appl. Environ. Microbiol. 1999. — Vol. 65. — P. 431 -437.
  166. Inagaki K., Kan Y., Takahashi S. Biodegradable polyester monofilaments and their manufacture // Patent № 8 218 216. Japan. -1996.
  167. Janssen P. H., Schink B. Pathway of anaerobic poly-?-hydroxybutyrate degradation by Ilyobacter delafieldii II Biodegradation. 1993. — Vol. 4.-P. 179−185.
  168. Jarosiewicz A., Tomaszewska M. Controlled release NPK fertilizer encapsulated by polymeric membranes // J. Agric Food Chem. 2003. -Vol. 51 — P.413−417.
  169. Jendrossek D. Polyhydroxyalkanoate granules are complex subcelluar organelles (carbonosomes) // J. Bacteriol. 2009. — Vol. 191. — P. 31 953 202.
  170. Jendrossek D. Book Review: Biopolymers, Volume 2: Polyisoprenoids / Ed. T. Koyama and A. Steinbuchel// Chembiochem. 2002. -Vol. 3. -№ 8.
  171. Jendrossek D. Microbial degradation of polyesters: a review on extracellular poly (hydroxyalkanoic acid) depolymerases // Polym. Degrad. Stab. 1998. — Vol. 59. — P. 317−325.
  172. Jendrossek D. Microbial degradation of polyesters // Adv. Biochem. Engin. Biotechnol. 2001. — Vol. 71. — P. 293−325.
  173. Jendrossek D., Handrick R. Microbial degradation of polyhydroxyalkanoates // Annu. Rev. Microbiol. 2002. — Vol. 56. — P. 403−432.
  174. Jendrossek D., Schirmer A., Schlegel H. Biodegradation of polyhydroxyalkanoic acids // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1996. -Vol. 46.-P. 451−463.
  175. Jiang Y., Ye J., Wu H., Zhang H. Cloning and expression of the polyhydroxyalkanoate depolymerase gene from Pseu-domonas putida, and characterization of the gene product // Biotechnol. Lett. 2004. -Vol. 26.-P. 1585−1588.
  176. Kalacheva G. S., Gubanov V. G., Gribovskaya I. V., Gladchenko I. A., Zinenko G. K., Savitsky S. V. Chemical analysis of Lake Shira water (1997−2000) // Aquatic Ecology. 2002. — Vol. 36. — P. 123−141.
  177. Kanampiu F., Karaya H., Burnet M., Gressel J. Needs for and effectiveness of slow release herbicide seed treatment Striga control formulations for protection against early season crop phytotoxicity // J. Crop Protection. 2009. — Vol. 28. — P.845−853.
  178. Kanewasa Y., Tanahashi N., Doi Y., Saito T. Enzymatic degradation of microbial poly (3-hydroxyalkanoates) // Polym. Degrad. Stab. 1994. -Vol. 45.-P. 179−185.
  179. Kasuya K., Ohura T., Masuda K., Doi Y. Substrate and binding specificities of bacterial polyhydroxybutyrate depolymerases // Int. J Biol Macromol. 1999. — Vol. 24. — P. 329−336.
  180. Kessler B., Witholt B. Factors involved in the regulatory network of polyhydroxyalkanoate metabolism // J. Biotechnol. 2001. — Vol. 86. -P. 97−104.
  181. Kijchavengkul T., Auras R. Perspective compostability of polymers // polymer international. 2008. — Vol. 57. — P. 793−804.
  182. Kim D. Y., Jung S. B., Choi G. G. Biosynthesis of polyhydroxyalkanoate copolyester containing cyclohexyl groups by Pseudomoims oleovorans II Int. J. Biol. Macromol. 2001. — Vol. 29. -P. 145−150.
  183. Kim D.Y., Kim H.C., Kim S.Y., Rhee Y.H. Molecular characterization of extracellular medium-chain-length poly (3-hydroxyalkanoate) depolymerase genes from Pseudomonas alcaligenes strains // J. Microbiol. 2005. — Vol. 43. — P. 285−294.
  184. Kim H. J., Kim D. Y., Nam J. S., Bae K. S., Rhee Y. H. Characterization of an extracellular medium-chain-length poly (3-hydroxyalkanoate) depolymerase from Streptomyces sp. KJ-72 // Antonievan Leeuwenhoek. 2003. — Vol. 83.-P. 183−189.
  185. Kim D. Y., Kim H. W., Chung M. G., Rhee Y. H. Biosynthesis, modification, and biodegradation of bacterial medium-chain-length polyhydroxyalkanoates // J. Microbiol. 2007. — Vol. 45. — №. 2. — P. 87−97.
  186. Kim D. Y., Rhee Y. H. Biodergadation of microbial and synthetic polyesters by fungi // Appl. Microbiol. Biothechnol. 2003. — Vol. 61. — P. 300−308.
  187. Kita K., Ishimaru K., Teraoka M. Yanase H., Kato N. Properties of poly (3-hydroxybutyrate) depolymerase from a marine bacterium, Alcaligenes eutrophus AE122 // Appl. Environ. Microbiol. 1995. -Vol. 61.-P. 1727−1730.
  188. Knoll M., Hamm T. M., Wagner F., Martinez V., Pleiss J. The PHA depolymerase engineering database: A systematic analysis tool for the diverse family of polyhydroxyalkanoate (PHA) depolymerases // BMC Bioinformatics. 2009. — Vol. 10. — P. 89−97.
  189. Koyama N., Doi Y. Effects of solid-state structures on the enzymatic degradability of bacterial PHA // Macromol. 1997. — Vol. 30. — P. 826−832.
  190. Kulkarni A. R., Soppimath K. S., Aminabhavi T. M., Dave A. ML, Mehta M. H. Glutaraldehydecrosslinked sodium alginate beads containing liquid pesticide for soil application // J. Control Release. -2000.-Vol. 63.-P. 97−105.
  191. Kumagai Y., Doi Y. Enzymatic degradation and morphologies of binary blends of microbial poly (3-hydroxy butyrate) with poly (e-caprolactone), poly (l, 4-butylene adipate) and poly (vinyl acetate) // Polym. Degrad. Stab. 1992 a. — Vol. 36. — P. 241−248.
  192. Kumagai Y., Doi Y. Enzymatic degradation of binary blends of microbial poly (3-hydroxybutyrate) with enzymatically active polymers // Polym. Degrad. Stab. 1992 b. — Vol. 37. — P. 253−256.
  193. Kumagai Y., Kanasawa Y., Doi Y. Enzymatic degradation of microbial poly (3-hydroxybutyrate) films // Macromol. Chem. 1992 c. — Vol. 193.-P. 53−57.
  194. Kumar R., Singh S., Singh O. V. Bioconversion of lignocellulosic biomass: biochemical and molecular perspectives // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008. — Vol. 35. — P. 377−391.
  195. Kusaka S., Iwata T., Doi Y. Properties and biodegradability of ultra-high-molecular-weight poly®-3-hydroxybutyrate. produced by recombinant Escherichia coli III Int. J. Biol. Macromol. 1999. — Vol. 25. — P. 87−94.
  196. Lee K.-M., Gimore D. F., Huss M. J. Fungal degradation of the bioplastic PHB (poly-3-hydroxybutyric acid) // J. Polym. Environ. -2005.-Vol. 13. -№ 3.-P. 213−219.
  197. Lee S. Y. Bacterial polyhydroxyalkanoates (review) // Biotechnol. and Bioengin. 1996. — Vol. 49. — P. 1−14.
  198. Lee S. Y. Poly (3-hydroxyalkanoate) production from xylose by recombinant Escherichia coli II Bioprocess Engin. 1998. — Vol. 18. -P. 397−399.
  199. Lenz R. W., Marchessault R. H. Bacterial polyesters: biosynthesis, biodegradable plastics and biotechnology // Biomacromol. 2005. -Vol. 6.-P. 1−7.
  200. Liang R., Liu M. Preparation and properties of a double-coated slow-release and water-retention urea fertilizer // J. Agric. Food Chem. 2006. -Vol .54.-P. 1392−1398.
  201. Lim S.-P., Gan S.-N., Tan I. Degradation of medium-chain-length polyhydroxyalkanoates in tropical forest and mangrove soils // Appl. Biochem. Biotechnol. 2005. — Vol. 126. — P. 23−32.
  202. Lootz D., Holbe J., Behrend D., Schmitz K. P. Comparative studies of the degradation kinetics and effect on mechanical properties of polylactide and polyhydroxybutyric acid in vitro // Biomed. Tech. -1998.-Vol. 43.-P. 428−429.
  203. Lorito M., Peterbauer C., Hayes C. K., Harman G. E. Synergistic interaction between fungal cell wall degrading enzymes and different antifungal compounds enhances inhibition of spore germination. // Microbiol. 1994. — Vol. 140. — P. 623−629.
  204. Lu X. Y., Wu Q., Chen G. Q. Production of poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyhexanoate) with flexible 3-hydroxyhexanoate content in Aeromonas hydrophila CGMCC 0911 // Appl. Microbiol. Biotechnol. -2004.-Vol. 64.-P. 41−45.
  205. Luengo J. M., Garcia B., Sandoval A. Bioplastics from microorganisms // Curr. Opin. Biotechnol. 2003. — Vol. 6. — P. 251−260.
  206. Madison L. L., Huisman G. W. Metabolic engineering of poly (3-hydroxyalkanoates): From DNA to plastic // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1999.-Vol. 63.-P. 21−53.
  207. Martin D. P., Skraly F. A., Williams S. F. Polyhydroxyalkanoate compositions having controlled degradation rates // PCT Patent application. № WO 99/32 536.
  208. Matavulj N., Molitoris H. Fungal degradation of polyhydroxyalkanoates and a semiquantitative assay for screening their degradation by terrestrial fungi // FEMS Microbiol Rev. 1992. — Vol. 103. — P. 323 332.
  209. Matsusaki H., Abe H., Doi Y. Biosynthesis and properties of poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyalkanoates) by recombinant strains of Pseudomonas sp. 6 1−3 // Biomacromol. 2000. — Vol. 1. — P. 17−22.
  210. McPartland J. M., Clarke R. C., Watson D. P. Hemp diseases and pests: management and biological control: an advanced treatise. CABI, 2000.-251 p.
  211. Mergaert J., Anderson C., Wouters A., Swings J. Microbial degradationof poly (3-hydroxybutyrate) and poly (3-hydroxybutyrate-co-3236hydroxy valerate) in compost // J. Environ. Polym. Degrad. 1994. -Vol. 2.-P. 177−183.
  212. Mergaert J., Webb A., Anderson C. Wouters A., Swings J. Microbial degradation of poly (3-hydroxybutyrate) and poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) in soils // Appl. Environ. Microbiol. 1993. — Vol. 59.-P. 3233−3238.
  213. Mergaert J., Swings J. Biodiversity of microorganisms that degrade bacterial and synthetic polyesters // J. Indust. Microbiol. 1996. — Vol. 17.-P. 463−469.
  214. Mergaert J., Wouters A., Swings J., Anderson C. In situ biodegradation of poly (3-hydroxybutyrate) and poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) in natural waters // Can. J. Microbiol. 1995. — Vol. 41. -No. 13.-P. 154−159.
  215. Mikova G., Chodak I. Properties and modification of poly (3-hydroxybutanoate) // Chem. Listy. 2006. — Vol. 100. — P. 1075−1083.
  216. Miller N. D., Williams D. F. On the biodegradation of poly-/?-hydroxybutyrate (PHB) homopolymer and poly-/?-hydroxybutyrate-hydroxyvalerate copolymers // Biomater. 1987. — Vol. 8.-P. 129−137.
  217. Mondai G., Aggarwal R., Srivastava K. D. Hyphal interaction between Trichoderma koningii and Ustilago segetum tritici through scanning electron microscopy // Cur. Sci. (India). 1996. — Vol. 70. — № 6. — P. 425−426.
  218. Moore C. A., Moore S. L., Leecaster M. K., Weisberg S. B. comparison of plastic and plankton in the North Pacific Central Gyre // Marine Pollution Bui. -2001.-Vol. 42.-P. 1297−1300.
  219. Mukai K., Doi Y. Microbial degradation of polyhydroxyalkanoates // RIKEN Review. 1993,-№. 3.-P. 21−22.
  220. Mukhopadhyay A. N. Biological seed treatment with Gliocladium and Trichoderma for control of chickpea and lentil wilt complex. // Fifth International Gliocladium and Trichoderma workshop. Beltsville, MD, Apri. 1995.
  221. Nakamura S., Kunioka M., Doi Y. Biosynthesis and characterization of bacterial poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxypropionate) // J. Macromol. Sei. 1991.-Vol. 28.-P. 15−24.
  222. Neto J. New strategies in the production of polyhydroxyalkanoates from glycerol and meat and bone meal: PhD thesis. Graz University of Technology, 2006.
  223. Nishida H., Tokiwa Y. Effects of high-order structure of poly (3-hydroxybutyrate) on its biodegradation. II. Effects of crustal structure on microbial degradation // J. Environ. Polymer. Degrad. 1993. — Vol. l.-P. 65−80.
  224. Noda I., Green Ph., Satkowski M., Schechtman L. A. Preparation and properties of novel class of polyhydroxyalkanoate copolymers // Biomacromol. 2005. — Vol. 6. — P. 580−586.
  225. Nojiri M., Saito T. Structure and function of poly (3-hydroxybutyrate) depolymerase from Alcaligenes faecalis Tl. // J. Bacteriol. 1997. — № 11. — Vol. 179(22). — P. 6965−6970.
  226. Oda Y., Osaka H., Urakami Y., Tonomura K. Purification and properties of poly (3-hydroxybutyrate) depolymerase from the fungus
  227. Paecilomyces lilacinus D218 // Curr. Microbiol. 1997. — Vol. 34. — P. 230−232.
  228. Oda Y., Asari H., Urakami T., Tonomura K. Microbial degradation of poly (3-hydroxybutyrate) and polycaprolactone by filamentous fungi // J. Ferment. Bioeng. 1995. — Vol. 80. — P. 265−269.
  229. Oeding V., Schlegel H. G. Beta-ketothiolase from Hydrogenomonas eutropha HI6 and its significance in the regulation of poly-beta-hydroxybutyrate metabolism // Biochem. J. 1973. — Vol. 134. — P. 239−48.
  230. Patterson B. M., Davis G. B., McKinley A. J. Laboratory column experiments using polymer mats to remove selected VOCs, PAHs, and pesticides from ground water // Ground Water Monitoring & Remediation. -2002.-Vol.22. P. 99−106.
  231. Perez-Martinez J. I., Morillo E., Maqueda C., Gines J. M. Ethyl cellulose polymer microspheres for controlled release of norfluazon // Pest. Manag. 2001. — Vol. 57. — P. 688−694.
  232. Piletska E. V., Turner N. W., Turner A. P. F., Piletsky S. A. Controlled release of the herbicide simazine from computationally designed molecularly imprinted polymers // J. Control. Release. 2005. -Vol.108. -P.132−139.
  233. Pivkin M.V., Khudyakova Y. V. A new species of Aphanoascus (Ascomycota) with a Malbranchea anamorph from marine bottom deposits // Mycotaxon. 2002. Vol. 81. — P. 7−10.
  234. Quinteros R., Goodwin S., Lenz R., Park W. Extracellular degradation of medium chain length poly (3-hydroxyalkanoates) by Comamonas sp. II Int. J. Biol. Macromol. 1999. — Vol. 25. — № 1−3. — P. 135−143.
  235. Ramsay J. A., Berger E., Voyer R., Chavarie C., Ramsay B. A. Extraction of poly-3-hydroxybutyrate using chlorinated solvents // Biotechnol. Tech. 1994. — Vol. 8. — P. 589−594.
  236. Reddy C. S. K., Ghai R., Rashmi V. C. Kalia polyhydroxyalkanoates: an overview//Biores. Technol.-2003. Vol. 87. — P. 137−146.
  237. Reddy S. V., Thirumala M., Mahmood S. K. Biodegradation of polyhydroxyalkanoates // Int. J. Microbiol. 2008. — Vol. 4. — No. 2.
  238. Renard E., Walls M., Guerin P., Langlois V. Hydrolytic degradation of blends of polyhydroxyalkanoates and functionalized polyhydroxyalkanoates // Polym. Degrad. Stab. 2004. — Vol. 85. — P. 779−787.
  239. Rhee Y. H., Kim Y. H., Shin K. S. Haracterization of an extracellular poly (3-hydroxyoctanoate) depolymerase from the marine isolate Pseudomonas luteola M13−4 // Enzyme Microb. Technol. 2006. — Vol. 38.-P. 529−535.
  240. Rizzarelli P., Puglisi C., Montaudo G. Soil burial and enzymatic degradation in solution of aliphatic co-polyesters // Polym. Degrad. Stab. 2004. — Vol. 85. — P. 855−863.
  241. Rocha, J. de R. de S., Oliveira, N. T. de Biocontrol of Colletotrichum gloeosporioides, anthracnose agent on passion fruit (Passiflora edulis), with Trichoderma koningii II Sum. Phytopathol. 1998. — Vol. 24. — P. 272−275.
  242. Romen F., Reinhardt S., Jendrossek D. Thermotolerant poly (3-hydroxybutyrate)-degrading bacteria from hot compost andcharacterization of the PHB depolymetrase of Schlegella sp. KB la // Arch. Microbiol. 2004. — Vol. 182. — P. 157−164.
  243. Rutkowska M., Krasowska K., Heimowska A. Environmental degradation of blends of atactic poly (R, S)-3-hydroxybutyrate. with natural PHBV in Baltic sea water and compost with activated sludge // J. Polym. Environ.-2008.-Vol. 16.-P. 183−191.
  244. Ruth K., de Roo G., Egli T., Ren Q. Identification of two acyl-CoA synthetases from Pseudomonas putida GPol: one is located at the surface of polyhydroxyalkanoate granules // Biomacromol. 2008. -Vol. 9.-P. 1652−1659.
  245. Ryu H. W., Hahn S. K., Chang Y. K., Chang H N. Production of poly (3-hydroxybutyric acid) in cell density fed-batch culture of Alcaligenes eutrophus with phosphate limitation // Biotechnol. Bioeng. 1997. -Vol. 55.-P. 28−32.
  246. Sang B.-I., Hori K., Tanji Y., Unno H. Fungal contribution to in situ biodegradation of poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) film in soil // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2002. — Vol. 58. — P. 241−247.
  247. Sanyal P., Samaddar P., Paul A. Degradation of poly (3-hydroxybutyrate) and poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) by some soil Aspergillus spp. II J. Polym. Environ. 2006. — Vol. 14. — P. 257−263.
  248. Savenkova L., Gercbergaa Z., Mutera O., Nikolaeva V., Dzene A., Tupureina V. PHB-based films as matrices for pesticides // Process Biochemistry. 2002. — Vol. 37. — P. 719−722.
  249. Scandola M., Ceccorulli G., Pizzoli M., Gazzano M. Study of the crystal phase and crystallization rate of bacterial Poly (?-hydroxybutyrate-co-?-hydroxyvalerate) // Macromol. 1992. — Vol. 25. — P. 1405−1410.
  250. Schmack G., Gorenflo V., Steinbuchel A. Biotechnological production and characterization of polyesters containing 4-hydroxyvaleric acid andmedium-chain-length hydroxyalkanoic acids // Macromol. 1998. -Vol. 31.-P. 644−649.
  251. Scott G. Degradable polymers. Principles and applications. Nederlands: Kluwer Academic Publ, 2002. — 500 p.
  252. Senior P. J., Dawes E. A. The regulation of poly-?-hydroxybutyrate metabolism in Azotobacter beijerinckii II Biochem. J. 1973. — Vol. 134.-P. 225−238.
  253. Shangguan Y.-Y., Wang Y.-W., Wu Q., Chen, G. Q. The mechanical properties and in vitro biodegradation and biocompatibility of UV-treated poly (3-xydroxybutyrate-co-3-hydroxyhexanoate) // Biomaterials.- 2006. Vol. 27. — № 11. — P. 2349−2357.
  254. Shinomiya M., Iwata T., Doi Y. The adsorbtion of substrate-binding domain of PHB depolymerases to the surface of poly (3-hydroxybutyric acid) // Int. J. Biol. Macromol. 1998. — Vol. 22. — P. 129−135.
  255. Shishido M., Petersen D. J., Massicotte H. B., Chanway C. P. Pine and spurce seedling growth and micorrhizal infection after inoculation with plant growth promoting Pseudomonas strains // FEMS Microbiol. Ecol.- 1996.-Vol. 21(2). P. 109−119.
  256. Schlegel H. G., Kaltwasser H., Gottschalk G. Ein submersverfahren zur kultur wasserstoffoxidierender bakterien: wachstumsphysiologische Untersuchungen//Arch. Mikrobiol.- 1961.-Vol. 38.-P. 209−222.
  257. Schmack G., Gorenflo V., Steinbuchel A. Biotechnological production and characterization of polyesters containing 4-hydroxyvaleric acid and medium-chain-length hydroxyalkanoic acids // Macromol. 1998. -Vol. 31.-P. 644−649.
  258. Shukla P. G., Kalidhass B., Shah A., Palaskar D.V. Preparation and characterization of Microcapsules of water-soluble pesticide Monocrotophos using polyurethane as carrier material // J. Microencapsul. 2002. — Vol. 19(3). — P. 293−304.
  259. Sim S. J., Snell K. D., Hogan S. A., Stubbe J., Rha C., Sinskey A. J. PHA syntase activity controls the molecular weight and polydispersity of polyhydroxybutyrate in vivo // Nat. Biotechnol. 1997. — Vol. 15. -P. 63−67.
  260. Sivan A., Chet I. The possible role of comprtition between Trichoderma harzianum and Fusarium oxysporum on rhizosphere colonization // Phytopathology. 1989. — Vol. 79. — P. 198−203.
  261. Soderlund D. M., Knippe D. C. The molecular biology of knockdown resistance to pyrethroid insecticides.// Insect Biochem. Mol. Biol. -2003.-Vol. 33.-P. 563−577.
  262. Solaiman D. K. Y., Ashby R. D., Foglia T. A. Medium-chain-length poly (?-hydroxyalkanoate) synthesis from triacylglycerols by Pseudomonas saccharophila II Cur. Microbiol. 1999. — Vol. 38. — P. 151−154.
  263. Solaiman D. K. Y., Ashby R. D., Foglia T. A., Marmer W. N. Conversion of agricultural feedstock and coproducts into poly (hydroxyalkanoates) // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2006. — Vol. 71.-P. 783−789.
  264. Sopena F., Cabrera A., Maqueda C., Morillo E. Controlled release of the herbicide norflurason into water from ethylcellulose formulations // J. Agricult. Food Chem. 2005. — Vol. 53. — P. 3540−3547.
  265. Sridewi N., Bhubalan K., Sudesh K. Degradation of commercially important polyhydroxoalkanoates in tropical mangrove ecosystem // Polym. Degrad. Stab. 2006. — Vol. 91. — P. 2931 -2940.
  266. Steinbuchel A., Hein S. Biochemical and molecular basis of microbial synthesis of polyhydroxyalkanoates in microorganisms // Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. -2001. Vol. 71. — P. 81−123.
  267. Steinbuchel A., Hustede E., Liebergesell M., Pieper U., Timm A., Valentin H. Molecular basis for biosynthesis and accumulation of polyhydroxyalkanoic acids in bacteria // FEMS Microbiol. Rev. 1992. -Vol. 103.-P. 217−230.
  268. Steinbuchel A., Valentin H.E. Diversity of bacterial polyhydroxyalkanoic acids // FEMS Microbiol Lett. 1995. — Vol. 128. -P. 219−228.
  269. Stock U., Nagashima M., Khalil P. N. et al. Tissue-engineered valved conduits in the pulmonary circulation // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. -2000. Vol. 119. — № 4. — P. 732−740.
  270. Sudesh K., Abe H., Doi Y. Synthesis, structure and properties of polyhydroxyalkanoates: biological polyesters // Prog. Polym. Sei. -2000.-Vol. 25.-P. 1503−1555.
  271. Takeda M., Koizumi J., Yabe K., Adachi K. Thermostable poly (3-hydroxybutyrate) depolymerase of a thermophilic strain of Leptothrix sp. isolated from a hot spring // J. Ferment. Bioeng. 1998. — Vol. 85. -P. 375−380.
  272. Tanaka K., Ishizaki A., Kanamaru T., Kawano T. Production of poly (D-3-hydroxybutyrate) from C02, H2 and 02 by high cell density autotrophic cultivation of Alcaligenes eutrophus II Biotechnol. Bioeng. 1995. — Vol. 45. — P. 268−275.
  273. Tokiwa Y., Calabia B. P. Degradation of microbial polyesters // Biotechnol. Lett. 2004.-Vol. 26. — P. 1181−1189.
  274. The Prokaryotes. A handbook on the biology of bacteria. V. 1−7. 3rd ed. // Eds. Dworkin M. et al. Springer, 2006.
  275. Tombolini R., Gaag D., Gerhardson B., Jansson J. Colonization pattern of the biocontrol strain Pseudomonas chlororaphis MA 342 on barley seeds visualized by using green fluorescent protein // Appl. Envir. Microbiol. 1999. — Vol. 65. — P. 3674−3680.245
  276. Tronsmo A., Hjeljord L. G. Trichoderma harzianum used in biological control of diseases on apples in Norway. //Fifth International Gliocladium and Trichoderma workshop. Beltsville. MD, April. 1995.
  277. Urmeneta J., Mas-Castella J., Guerrero R. Biodegradation of poly-(beta)-hydroxyalkanoates in a lake sediment sample increases bacterial sulfate reduction // Appl. Envir. Microbiol. 1995. — Vol. 61. — P. 2046−2048.
  278. Van de Peer Y., De Wachter R. TREECON: a software package for the construction and drawing of evolutionary trees // Comput. Applic. Biosci.- 1993, — Vol. 9.-P. 177−182.
  279. Volova T. G., Gladyshev M. I., Trusova M. Y., Zhila N.O. Degradation of polyhydroxyalkanoates in eutrophic reservoir // Pol. Degrad. Stab. 2007. -Vol. 92.-P. 580−586.
  280. Volova T. G. Polyhydroxyalkanoates plastic materials of the 21st century: production, properties, application. — NY.: Nova Science Pub, 2004.-282 p.
  281. Volova T. G. Hydrogen-Based Biosynthesis. NY.: Nova Science Pub. Inc., 2009.- 398 p.
  282. Wang Y.-W., Wu Q., Chen G.-Q. Evaluation of three-dimentional scaffolds made of blends of hydroxyapatite and poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyhexanoate) for bone reconstruction // Biomaterials. 2005. — Vol. 26. — P. 899−904.
  283. Wardle D. A., Parkinson D., Waller J. E. Interspecific competitive interactions between pairs of fungal species in natural substrates // Oecologia. 1993. — Vol. 94. — P. 165−172.
  284. Watanabe T. Pictorial atlas of soil fungi: morphologies of fungi and key species. CRC Press, 2002. — 486 p.
  285. Weiner R. M. Biopolymers from marine prokaryotes // Trends Biotechnol. 1997. — Vol. 15. — P. 390−394
  286. Weiss B., Amler S., Amler R. W. Pesticides // Pediatrics. 2004. — Vol. 113(4 Suppl). — P. 1030−1036.
  287. Wong H. H., Lee S. L. Poly (3-hydroxybutyrate) production from they by high density cultivation of recombinant Escherichia coli II Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998. — Vol. 50. — P. 30−33.
  288. Woolnough C. A., Charlton T., Yee L. H., Sarris M., Foster L. J. Surface changes in polyhydroxyalkanoate films during biodegradation and biofouling // Polym. Int. 2008. — Vol. 57. — No. 9. — P. 1042−1051.
  289. Wu C.-S. Controlled release evaluation of bacterial fertilizer using polymer composites as matrix // J. Control. Release. 2008 a. — Vol. 132. — P. 4248.
  290. Wu L., Liu M., Liang R. Preparation and properties of a double-coated slow-release NPK compound fertilizer with superabsorbent and water-retention // Biores. Technol. 2008 b. — Vol. 99. — P. 547−554.
  291. Yamane T., Fukunage M., Lee Y. W. Increased PHB productivity by high-cell-density fed-batch culture of Alcaligenes latus, a growth-associated PHB producer // Biotechnol. Bioeng. 1996. — Vol. 50. — P. 197−202.
  292. Yamane H., Terao K., Hiki S., Kawahara Y., Kimura Y., Saito T. Processing melt spun polyhydroxybutyrate fibers // Polymer. 2001 a. -Vol. 42.-P. 3241−3249.
  293. Yamane H., Terao K., Hiki S., Kawahara Y., Kimura Y., Saito T. Enzymatic degradation of bacterial homo-poly (3-hydroxybutyrate) melt spun fibers // Polymer. 2001 b. — Vol. 42. — P. 7873−7878.
  294. Yasin M., Tighe B. J. Polymers for medical devices: VII.
  295. Hydoxybutyrate-hydroxyvalerate copolymers: physical and degradative247325.326.327.328.329.330.properties of blends with polycaprolacton // Clin. Materials. 1992 a. -Vol. 10. -№. 2.-P. 21−28.
  296. Yasin M., Tighe B. J. Polymers for medical devices: VIII. Hydoxybutyrate-hydroxyvalerate copolymers: physical and degradative properties of blends with polycaprolacton // Biomaterials. 1992 b. -Vol. 13. — №. l.-P. 9−16.
  297. Zadereev E. S., Tolomeyev A. P. The vertical distribution of zooplankton in brackish meromictic lake with deep-water chlorophyll maximum // Hydrobiol. 2007. — Vol. 576. — P. 69−82.
  298. National Center for Biotechnology Information (NCBI) Электронный ресурс.: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST (дата обращения 16.08.12)
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!